JP6474681B2 - 白髪防止又は改善化粧料 - Google Patents
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Description
テルミナリア根の乾燥物1.0gに10倍質量のメタノール10gを加え、室温で3日間抽出・乾燥を行い、テルミナリア抽出物を0.1g得た。
ウスベニタチアオイ根の乾燥物1.0gに10倍質量の50(V/V)%エチルアルコール10gを加え、室温で3日間抽出・乾燥を行い、ウスベニタチアオイ抽出物を0.08g得た。
マウスES細胞(D3ES株)2.00×104 Cells/mLをES細胞用培地(15% FBS DMEM with 100 U/mL LIF、0.1 mM 2−メルカプトエタノール)に分散し、ゼラチンでコートした24ウェルプレートの各ウェルに500 μLずつ播種した。37℃, 5%CO2下で24時間インキュベート後、培地を除去し、PBS (-) で洗浄した。色素細胞分化用培地(10% FBS α−MEMを100 nM Dexamethasone、20 pM bFGF、10 pM Cholera Toxin 及び100 ng/mL EDN3)と培地交換を行い、マウスES細胞からメラノブラストへ分化誘導を行った。分化誘導前(0日目)、分化誘導後、3日目、6日目、9日目のES細胞のTotal RNAの抽出をTotal RNA Purification Kit(JenaBioscience)を用いて行った。回収したTotal RNAはPrimeScriptTM RT Reagent Kit (Perfect Real Time) (TaKaRa)を用いてcDNAに逆転写し、Real time PCRに供した。Real time PCRはPower SYBR Green PCR Master Mix(Applied Biosystems)を用いて7500 Real Time PCR System(Applied Biosystems)で行い、色素細胞分化進行度の指標となる遺伝としてTYR, TRP2, TRP1 mRNA及びハウスキーピング遺伝子としてHPRT mRNAの発現度を測定した。Real Time PCR用プライマーを表1に示す。TYR, TRP2, TRP1 mRNAの発現量の変化は、コントロールを分化誘導前(0日目)とし、分化誘導後、TYR, TRP2, TRP1 mRNAのCt値をHPRTのCt値で補正した値を1とし、それに対する相対量としてmRNA発現度(ratio/control)を求めた。結果を表2に示した。
マウスES細胞を上述の分化誘導系に供し、6日間培養したものをメラノブラストとして使用し、細胞遊走能をOris Cell Migration Assay Plate(Platypus Technologies)を用いて評価した。メラノブラストを1.0×106 cells/mLとなるように10% FBS α−MEMに分散し、100 μLをSeeding Stopperの隙間から分注し、Seeding Stopperの周囲に細胞を播種した。37℃, 5% CO2で18 hr培養後、Seeding Stopperを取り除いた。PBS (-) で洗浄し、接着していない細胞を除いたあと、テルミナリア、ウスベニタチアオイの固形蒸発残分が200 ppm, 20 ppmとなるように10% FBS α−MEMで希釈した培地を添加し培養を開始した。被験物質を添加せず、10% FBS α−MEMを添加したものをcontrolとした。37℃, 5% CO2で48 hr培養後、PBS (-) で洗浄した。
WST asaay試薬(Cell Counting Kit, DOJINDO)10%を配合した10% FBS α−MEMを各ウェルに200 μLずつ添加した。37℃, 5%CO2下で30 minインキュベートした。96ウェルプレートに100 μLずつ取り分けた。マイクロプレートリーダーにて655 nmと450 nmの吸光度を測定した。450 nmの吸光度 (Abs(450 nm)) から655 nmの吸光度 (Abs(655 nm)) を引き、Abs (450 nm) に与える被験物質の濁度の影響を除去した。下記の式で算出された値を細胞増殖度として解析に用いた。
細胞増殖度= 被験物質 (Abs (450 nm)- Abs(655 nm))-blank(Abs (450 nm)- Abs(655 nm))
細胞増殖度を算出した後の各ウェルから培地を除き、PBS (-) で洗浄した。Calcein-AM水溶液(5 μL Calcein-AM溶液 (1 mg/mL in DMSO) を10 mL PBS (-) に加え、Calcein-AM水溶液を調製)を添加し、15 min反応させた。Calcein-AM水溶液を除き、PBS (-) に交換した。Detection Maskをプレートに取り付け、蛍光マイクロプレートリーダーで各ウェルのexcitation:485 nm, emission:520 nmの蛍光強度を測定し、ウェルの中央部に遊走した細胞数を検出した。細胞を播種していないCalcein-AM水溶液のみを添加したプレートの蛍光強度を測定し、blankとした。各プレートの蛍光強度からblankを差し引いた値を細胞遊走度とし、測定した細胞増殖度で割った値から以下の式でcontrolに対する遊走率を算出した。結果を表3に示す。テルミナリアおよびウスベニタチアオイにメラノブラスト遊走促進効果が見出された。
遊走率(%)=((被験物質 細胞遊走度-blank 細胞遊走度)/被験物質 細胞増殖度)/((control細胞遊走度-blank細胞遊走度)/control細胞増殖度)×100
累積塗布によるヒトによる白髪防止効果被験者として、各被験物質ごとに白髪のある40〜60歳の男女、各15名に1日2回(朝、夜)連続3ヵ月間、本発明品と比較例のそれぞれを一定区画内で左右頭皮に別々に使用させ、塗布部位の状態を試験前後で比較し、白髪防止、改善効果を調べた。本試験には、次の配合組成により各種白髪防止用ヘアトニックを調製し、その累積塗布による、白髪防止効果について調べた。本発明の有効成分を配合したローションを毎日塗布しながら白髪の発生を防止する割合を塗布開始前及び塗布開始後3ヵ月における毛髪100本あたりの白髪の本数を数えた。
具体的には、左右とも一定区画を設け、その区画内の毛髪を100本数える。毛髪100本中50本が白髪であった場合に、3月使用後、同一区画内の100本の毛髪の根元の状態で白髪の本数を数え、もともと白髪であった髪の根元が黒くなっていれば、黒髪としてカウントし、白髪が40本になっていれば、40/50×100=80%となる。一方、毛髪100本中50本が白髪であった場合に、3月使用後同一区画内の100本の毛髪の根元の状態で白髪の本数を数え、もともと黒かった髪の根元が白くなっている場合は、白髪としてカウントし、白髪が100本中60本になっていれば、60/50×100=120%となる。
結果は表4に示す。表4からも明らかなように、ヒトによる塗布試験においても、テルミナリアおよびウスベニタチアオイに高い効果が認められた。
尚、表4中「テルミナリア」と記載しているのは、上記白髪防止用ヘアトニックで「テルミナリア」を有効成分とした場合であることを示す。同様に「ウスベニタチアオイ」とし記載しているのは、同様に上記白髪防止用ヘアトニックで「ウスベニタチアオイ」を有効成分とした場合を示す。
***(著効):塗布開始前の白髪の本数に対して塗布後の白髪の本数が80%未満
**(有効):塗布開始前の白髪の本数に対して塗布後の白髪の本数が、80%以上90%未満
*(やや有効):塗布開始前の白髪の本数に対して塗布後の白髪の本数が、90%以上100%未満
−(無効):塗布開始前の白髪の本数に対して塗布後の白髪の本数が100%以上
Claims (2)
- テルミナリア(Terminalia sericea Burck)抽出物及び/又はウスベニタチアオイ(Althaea officinalis)抽出物を有効成分として含有することを特徴とするメラノブラスト遊走促進剤。
- 請求項1に記載のメラノブラスト遊走促進剤を有効成分として含有することを特徴とする白髪防止又は白髪改善化粧料。
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