JP6440875B2 - 酸化ストレスを阻害するための方法および組成物 - Google Patents

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Description

関連出願
この出願は、２０１３年１０月２９日に出願された米国仮特許出願第６１／８９６，８０５号（この全体の内容は、参考として本明細書に援用される）に対する優先権の利益を主張する。
連邦政府によって資金供与を受けた研究または開発に関する声明
この発明は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈによって付与された契約ＥＹ０２３２９１−０１の下、政府の支援を受けてなされた。政府は、本発明に一定の権利を有する。
細胞は、その機能不全および死をもたらす遺伝的および環境的要因によって損なわれ得る。例えば、網膜において、特殊化された感覚ニューロン、光受容体（杆体および錐体）と共に、網膜神経節細胞（ＲＰＧ）、網膜の出力ニューロンは、遺伝的および／または環境的な理由によって機能不全となって死に、部分的または完全な視力喪失をもたらし得るニューロン細胞型である。
網膜は、主要な２種類の感光性光受容体細胞、即ち、杆体細胞および錐体細胞を含有する。錐体細胞は、色覚に関与し、杆体細胞と比較して、機能するためにより明るい光を必要とする。長波長、中波長および短波長の光（それぞれ赤色、緑色および青色と称されることが多いが、感受性ピークは実際にはこれらの色にはない）に対し最大の感受性を有する、３種類の錐体が存在する。錐体は、大部分は、網膜中心窩およびその付近に集中している。ごく僅かなパーセンテージの光受容体が、網膜辺縁における錐体である。対象物を直接的に見る場合と同様に、対象物は、その像が錐体濃縮スポットに結ばれるときに、焦点において最もシャープに見られる。錐体細胞および杆体は、網膜における中間の細胞を通して視神経の神経線維に接続される。杆体および錐体が光によって刺激されると、神経は、これらの線維を通して脳へとインパルスを送る。
錐体細胞の生存性の低下は、様々な網膜障害、特に、網膜色素変性症に関連する。網膜色素変性症は、現在不治であり、盲目となることが多い遺伝性網膜変性症（ＲＤ）のファミリーである。これは、３，０００の個体のうちおよそ１の個体に罹患し、単一の疾患対立遺伝子に起因する最も蔓延した形態のＲＤである（ＲｅｔＮｅｔ、ｗｗｗ．ｓｐｈ．ｕｔｈ．ｔｍｃ．ｅｄｕ／Ｒｅｔｎｅｔ／）。その表現型は、杆体光受容体の機能不全および死による初期夜間視力喪失と、続く進行性錐体喪失によって特徴付けられる（Ｍａｄｒｅｐｅｒｌａ， Ｓ．Ａ．ら（１９９０年）Ａｒｃｈ Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ １０８巻、３５８〜６１頁）。その上、網膜色素変性症は、例えば、夜盲症、進行性周辺視力喪失によってさらに特徴付けられ、最終的に全盲、暗いモザイク様網膜色素沈着からなる眼底検査上の変化、網膜血管の減弱、視神経乳頭の蝋様蒼白および進行型においては黄斑変性症をもたらす。錐体は、色および高い視力に関与するため、その喪失は、クオリティ・オブ・ライフの低下をもたらす。多くの事例において、疾患を引き起こす対立遺伝子は、杆体において排他的に発現される；にもかかわらず、錐体細胞死が、杆体細胞死に続いて起こる。実際に現在まで、ヒトまたはマウスにおいて、杆体が死滅して錐体が生存することが公知の形態のＲＤは存在しない。対照的に、錐体特異的遺伝子における変異は、錐体死のみを生じる。
Ｍａｄｒｅｐｅｒｌａ，Ｓ．Ａ．ら、Ａｒｃｈ Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ（１９９０年）１０８巻、３５８〜６１頁
よって、当技術分野において、網膜細胞機能の減少に起因する視力喪失を予防、処置、診断および予後診断するための療法の必要がある。
本発明は、細胞、例えば、光受容体細胞における酸化ストレスを阻害するための方法と、酸化ストレス、例えば、光受容体細胞の酸化ストレスに関連する障害を処置または予防するための方法を対象とする。本発明は、少なくとも一部には、酸化ストレスを受ける光受容体細胞におけるある特定の遺伝子（抗酸化防御タンパク質をコードする遺伝子）の発現および／または活性の増大が、酸化と戦うおよび／またはフリーラジカルを解毒するために役立ち得るという発見に基づく。特に、酸化防止プログラムの全般的な上方調節に関与するタンパク質（例えば、転写因子）をコードする遺伝子の発現の増大と、フリーラジカルを解毒する抗酸化酵素をコードする遺伝子の発現の増大は、光受容体生存性を増大させることが示された。
したがって、本発明は、例えば、スーパーオキシドジスムターゼ２（ＳＯＤ２）、カタラーゼ、ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体ガンマコアクチベーター１−アルファ（ＰＧＣ１α）および核因子赤血球由来２様２（Ｎｒｆ２）を含む抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させることによる、光受容体細胞の酸化ストレスを阻害するための方法と、細胞酸化ストレスに関連する障害、例えば、網膜色素変性症の処置および／または予防のための方法を提供する。
一態様において、本発明は、網膜障害によって損なわれた光受容体細胞の酸化ストレスを阻害するための方法を提供する。本方法は、細胞を抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させる薬剤と接触させ、これにより、光受容体細胞の酸化ストレスを阻害するステップを含む。
別の態様において、本発明は、細胞の酸化ストレスを阻害するための方法を提供する。本方法は、カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはＮｒｆ２、またはこれらのいずれかの組合せもしくはサブコンビネーションをコードする核酸分子と細胞を接触させ、これにより、細胞における酸化ストレスを阻害するステップを含む。一部の実施形態において、細胞は、例えば、錐体および／または杆体細胞等、光受容体細胞である。一部の実施形態において、細胞は、ニューロン細胞である。ある特定の実施形態において、細胞は、これにおける欠損が神経学的障害を生じるニューロン細胞である。
別の態様において、本発明は、網膜障害によって損なわれた光受容体細胞の生存性を延長させるための方法を提供する。本方法は、抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させる薬剤と細胞を接触させ、これにより、光受容体細胞の酸化ストレスを阻害するステップを含む。ある特定の実施形態において、光受容体細胞の生存性は、例えば、約１週間、約２週間、約３週間、約４週間、約５週間、約６週間、約７週間、約８週間、約３ヶ月間、約４ヶ月間、約５ヶ月間、約６ヶ月間、約７ヶ月間、約８ヶ月間、約９ヶ月間、約１０ヶ月間、約１１ヶ月間、約１２ヶ月間、約２年間、約３年間、約４年間、約５年間、約１０年間、約１５年間、約２０年間、約２５年間、約３０年間、約４０年間、約５０年間、約６０年間、約７０年間および約８０年間延長される。
別の態様において、本発明は、被験体における網膜障害を処置または予防するための方法を提供する。本方法は、抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させる薬剤を被験体に投与し、これにより、眼障害を処置または予防するステップを含む。
さらに別の態様において、本発明は、被験体における網膜色素変性症を処置または予防するための方法を提供する。本方法は、抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させる薬剤を被験体に投与し、これにより、被験体における網膜色素変性症を処置または予防するステップを含む。
さらなる態様において、本発明は、被験体における酸化ストレスに関連する障害を処置または予防するための方法を提供する。本方法は、カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはＮｒｆ２をコードする１種または複数の核酸分子を被験体に投与し、これにより、被験体における酸化ストレスに関連する障害を処置または予防するステップを含む。一部の実施形態において、障害は、眼障害である。一部の実施形態において、障害は、神経学的障害、例えば、アルツハイマー病、パーキンソン病、ハンチントン病および筋萎縮性側索硬化症である。
本発明の前述の態様のいずれかにおいて、抗酸化防御タンパク質の発現の増大は、活性酸素種（ＲＯＳ）のレベルを低下させる。ある特定の実施形態において、ＲＯＳは、例えば、フリーラジカル種を含む。一部の実施形態において、抗酸化防御タンパク質は、フリーラジカルと戦う。前述の方法のある特定の実施形態において、光受容体細胞は、錐体および／または杆体細胞である。
一部の実施形態において、眼障害は、網膜色素変性症、加齢性黄斑変性症、錐体杆体ジストロフィー、杆体錐体ジストロフィーおよび緑内障からなる群より選択される。一実施形態において、眼障害は、網膜障害である。
前述の方法のある特定の実施形態において、眼障害は、錐体細胞の生存性減少および／または杆体細胞の生存性減少に関連する。一部の実施形態において、眼障害は、遺伝的障害である。他の実施形態において、眼障害は、血管漏出および／または成長に関連しない。ある特定の実施形態において、眼障害は、糖尿病および／または糖尿病性網膜症に関連しない。さらなる実施形態において、眼障害は、ＮＡＲＰ（ニューロパチー、運動失調症および網膜色素変性症）ではない。
前述の方法の一実施形態において、薬剤は、抗酸化防御タンパク質をコードする核酸分子である。ある特定の実施形態において、核酸分子は、抗酸化防御遺伝子を含む。一部の実施形態において、抗酸化防御遺伝子は、転写因子または抗酸化酵素をコードする。特定の実施形態において、抗酸化防御遺伝子は、カタラーゼ、スーパーオキシドジスムターゼ２（ＳＯＤ２）、ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体ガンマコアクチベーター１−アルファ（ＰＧＣ１α）、核因子赤血球由来２様２（Ｎｒｆ２）およびこれらのいずれかの組合せからなる群より選択される。
よって、本発明の方法において、抗酸化防御遺伝子の次の組合せのいずれかを使用することができる：カタラーゼ；ＳＯＤ２；ＰＧＣ１α；ｎｒｆ２；カタラーゼおよびＳＯＤ２；ＳＯＤ２およびＰＧＣ１α；ＰＧＣ１αおよびｎｒｆ２；カタラーゼおよびＰＧＣ１α；カタラーゼおよびｎｒｆ２；ＳＯＤ２およびｎｒｆ２；カタラーゼ、ＳＯＤ２およびＰＧＣ１α；ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよびｎｒｆ２；カタラーゼ、ＰＧＣ１αおよびｎｒｆ２；カタラーゼ、ＳＯＤ２およびｎｒｆ２；またはカタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよびｎｒｆ２。
ある特定の実施形態において、核酸分子は、ベクター内に含有される。例示的な実施形態において、ベクターは、レトロウイルスベクター、アデノウイルスベクター、アデノウイルス／レトロウイルスキメラベクター、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクター、単純ヘルペスウイルスＩベクターまたは単純ヘルペスウイルスＩＩベクター、パルボウイルスベクター、細網内皮症ウイルスベクター、ポリオウイルスベクター、パピローマウイルスベクター、ワクシニアウイルスベクターおよびレンチウイルスベクターからなる群より選択される。一実施形態において、ベクターは、ＡＡＶベクター、例えば、ＡＡＶ２／５またはＡＡＶ２／８ベクターである。
網膜障害または特に網膜色素変性症を処置または予防する前述の態様において、投与は、眼内投与である。例示的な実施形態において、眼内投与は、硝子体内、結膜下、テノン下（ｓｕｂ−ｔｅｎｏｎ）、眼周囲、眼球後、脈絡膜上および強膜内投与からなる群より選択される。一実施形態において、眼内投与は、網膜下または硝子体内投与である。
別の態様において、本発明は、被験体における網膜色素変性症を処置または予防するための方法を提供する。本方法は、単離されたＮｒｆ２核酸分子を被験体に投与し、これにより、被験体における網膜色素変性症を処置または予防するステップを含む。
さらに別の態様において、本発明は、被験体における網膜色素変性症を処置または予防するための方法を提供する。本方法は、単離されたＮｒｆ２核酸分子および単離されたＰＧＣ１α核酸分子を被験体に投与し、これにより、被験体における網膜色素変性症を処置または予防するステップを含む。
一実施形態において、核酸分子は、レトロウイルスベクター、アデノウイルスベクター、アデノウイルス／レトロウイルスキメラベクター、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクター、単純ヘルペスウイルスＩベクターまたは単純ヘルペスウイルスＩＩベクター、パルボウイルスベクター、細網内皮症ウイルスベクター、ポリオウイルスベクター、パピローマウイルスベクター、ワクシニアウイルスベクターおよびレンチウイルスベクターからなる群より選択されるベクター等、ベクター内に含有される。一実施形態において、ベクターは、ＡＡＶベクター、例えば、ＡＡＶ２／５またはＡＡＶ２／８ベクターである。
一実施形態において、投与は、硝子体内投与、網膜下投与、結膜下投与、テノン下投与、眼周囲投与、眼球後投与、脈絡膜上投与および強膜内投与等、眼内投与である。特定の一実施形態において、眼内投与は、網膜下または硝子体内投与である。
一態様において、本発明は、単離されたＮｒｆ２核酸分子を含む、眼内投与に適した医薬組成物を提供する。
別の態様において、本発明は、単離されたＮｒｆ２核酸分子と、単離されたＰＧＣ１α核酸分子とを含む、眼内投与に適した医薬組成物を提供する。
一実施形態において、治療または予防有効量の核酸分子が、眼内投与に適した組成物に含有される。
一態様において、本発明は、Ｎｒｆ２をコードする核酸分子に作動可能に連結した網膜細胞型特異的プロモーターを含むウイルスベクターを含む組成物を提供する。
別の態様において、本発明は、ＰＧＣ１αをコードする核酸分子に作動可能に連結した網膜細胞型特異的プロモーターを含むウイルスベクターを含む組成物を提供する。
さらに別の態様において、本発明は、Ｎｒｆ２およびＰＧＣ１αをコードする核酸分子に作動可能に連結した網膜細胞型特異的プロモーターを含むウイルスベクターを含む組成物を提供する。
網膜細胞型特異的プロモーターは、杆体特異的プロモーター、錐体特異的プロモーターおよび／または杆体および錐体特異的プロモーターとなり得る。
一実施形態において、組成物は、眼内投与、例えば、網膜下または硝子体内投与に適している。
本発明の他の特色および利点は、次の詳細な説明および特許請求の範囲から明らかとなるであろう。
例えば、本発明は以下の項目を提供する。
（項目１）
網膜障害によって損なわれた光受容体細胞の酸化ストレスを阻害するための方法であって、前記細胞を、抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させる薬剤と接触させ、これにより、前記光受容体細胞の酸化ストレスを阻害するステップを含む、方法。
（項目２）
網膜障害によって損なわれた光受容体細胞の生存性を延長させるための方法であって、前記細胞を、抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させる薬剤と接触させ、これにより、前記網膜障害によって損なわれた前記光受容体細胞の生存性を延長させるステップを含む、方法。
（項目３）
被験体における網膜障害を処置または予防するための方法であって、前記被験体に、抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させる薬剤を投与し、これにより、前記眼障害を処置または予防するステップを含む、方法。
（項目４）
被験体における網膜色素変性症を処置または予防するための方法であって、前記被験体に、抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させる薬剤を投与し、これにより、前記被験体における網膜色素変性症を処置または予防するステップを含む、方法。（項目５）
前記抗酸化防御タンパク質が、活性酸素種（ＲＯＳ）のレベルを低下させる、項目１から４のいずれか一項に記載の方法。
（項目６）
前記光受容体細胞が、錐体および／または杆体細胞である、項目１から４のいずれか一項に記載の方法。
（項目７）
前記眼障害が、網膜色素変性症、加齢性黄斑変性症、錐体杆体ジストロフィーおよび杆体錐体ジストロフィーからなる群より選択される、項目１から４のいずれか一項に記載の方法。
（項目８）
前記眼障害が、錐体細胞の生存性減少および／または杆体細胞の生存性減少に関連する、項目１から４のいずれか一項に記載の方法。
（項目９）
前記眼障害が、遺伝的障害である、項目１から４のいずれか一項に記載の方法。
（項目１０）
前記眼障害が、血管漏出および／または成長に関連しない、項目１から４のいずれか一項に記載の方法。
（項目１１）
前記薬剤が、核酸分子である、項目１から４のいずれか一項に記載の方法。
（項目１２）
前記核酸分子が、抗酸化防御遺伝子を含む、項目１１に記載の方法。
（項目１３）
前記抗酸化防御遺伝子が、転写因子または抗酸化酵素をコードする、項目１２に記載の方法。
（項目１４）
前記抗酸化防御遺伝子が、カタラーゼ、スーパーオキシドジスムターゼ２（ＳＯＤ２）、ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体ガンマコアクチベーター１−アルファ（ＰＧＣ１α）および核因子赤血球由来２様２（ｎｒｆ２）ならびにこれらのいずれかの組合せからなる群より選択される、項目１２に記載の方法。
（項目１５）
前記核酸分子が、ベクター内に含有される、項目１１に記載の方法。
（項目１６）
前記ベクターが、レトロウイルスベクター、アデノウイルスベクター、アデノウイルス／レトロウイルスキメラベクター、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクター、単純ヘルペスウイルスＩベクターまたは単純ヘルペスウイルスＩＩベクター、パルボウイルスベクター、細網内皮症ウイルスベクター、ポリオウイルスベクター、パピローマウイルスベクター、ワクシニアウイルスベクターおよびレンチウイルスベクターからなる群より選択される、項目１５に記載の方法。
（項目１７）
前記ベクターが、ＡＡＶベクターである、項目１６に記載の方法。
（項目１８）
前記ＡＡＶベクターが、ＡＡＶ２／５ベクターまたはＡＡＶ２／８ベクターである、項目１７に記載の方法。
（項目１９）
前記投与が、眼内投与である、項目３または４に記載の方法。
（項目２０）
前記眼内投与が、硝子体内投与、網膜下投与、結膜下投与、テノン下投与、眼周囲投与、眼球後投与、脈絡膜上投与および強膜内投与からなる群より選択される、項目１９に記載の方法。
（項目２１）
細胞における酸化ストレスを阻害するための方法であって、前記細胞を、カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはＮｒｆ２を含む核酸分子と接触させ、これにより、細胞における酸化ストレスを阻害するステップを含む、方法。
（項目２２）
被験体における酸化ストレスに関連する障害を処置または予防するための方法であって、前記被験体に、カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはＮｒｆ２を含む核酸分子を投与し、これにより、前記被験体における酸化ストレスに関連する障害を処置または予防するステップを含む、方法。
（項目２３）
前記核酸が、ベクター内に含有される、項目２１または２２に記載の方法。
（項目２４）
前記細胞が、光受容体細胞である、項目２１に記載の方法。
（項目２５）
前記障害が、眼障害である、項目２２に記載の方法。
（項目２６）
前記眼障害が、網膜色素変性症である、項目２５に記載の方法。
（項目２７）
被験体における網膜色素変性症を処置または予防するための方法であって、前記被験体に、単離されたＮｒｆ２核酸分子を投与し、これにより、前記被験体における網膜色素変性症を処置または予防するステップを含む、方法。
（項目２８）
被験体における網膜色素変性症を処置または予防するための方法であって、前記被験体に、単離されたＮｒｆ２核酸分子および単離されたＰＧＣ１α核酸分子を投与し、これにより、前記被験体における網膜色素変性症を処置または予防するステップを含む、方法。（項目２９）
前記核酸分子が、ベクター内に含有される、項目２７または２８に記載の方法。
（項目３０）
前記ベクターが、レトロウイルスベクター、アデノウイルスベクター、アデノウイルス／レトロウイルスキメラベクター、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクター、単純ヘルペスウイルスＩベクターまたは単純ヘルペスウイルスＩＩベクター、パルボウイルスベクター、細網内皮症ウイルスベクター、ポリオウイルスベクター、パピローマウイルスベクター、ワクシニアウイルスベクターおよびレンチウイルスベクターからなる群より選択される、項目２９に記載の方法。
（項目３１）
前記ベクターが、ＡＡＶベクターである、項目３０に記載の方法。
（項目３２）
前記ＡＡＶベクターが、ＡＡＶ２／５ベクターまたはＡＡＶ２／８ベクターである、項目３１に記載の方法。
（項目３３）
前記投与が、眼内投与である、項目３または４に記載の方法。
（項目３４）
前記眼内投与が、硝子体内投与、網膜下投与、結膜下投与、テノン下投与、眼周囲投与、眼球後投与、脈絡膜上投与および強膜内投与からなる群より選択される、項目３３に記載の方法。
（項目３５）
単離されたＮｒｆ２核酸分子を含む、眼内投与に適した医薬組成物。
（項目３６）
単離されたＮｒｆ２核酸分子と、単離されたＰＧＣ１α核酸分子とを含む、眼内投与に適した医薬組成物。
（項目３７）
Ｎｒｆ２をコードする核酸分子に作動可能に連結した網膜細胞型特異的プロモーターを含むウイルスベクターを含む組成物。
（項目３８）
ＰＧＣ１αをコードする核酸分子に作動可能に連結した網膜細胞型特異的プロモーターを含むウイルスベクターを含む組成物。
（項目３９）
Ｎｒｆ２およびＰＧＣ１αをコードする核酸分子に作動可能に連結した網膜細胞型特異的プロモーターを含むウイルスベクターを含む組成物。
（項目４０）
前記網膜細胞型特異的プロモーターが、杆体特異的プロモーターである、項目３７から３９のいずれか一項に記載の組成物。
（項目４１）
前記網膜細胞型特異的プロモーターが、錐体特異的プロモーターである、項目３７から３９のいずれか一項に記載の組成物。
（項目４２）
前記網膜細胞型特異的プロモーターが、杆体および錐体特異的プロモーターである、項目３７から３９のいずれか一項に記載の組成物。
（項目４３）
眼内投与に適している、項目３７から３９のいずれか一項に記載の組成物。
図１Ａ〜図１Ｆは、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰによるＷＴおよびｒｄ１網膜の感染を描写する。（Ａ）ＷＴ（野生型）網膜をＰ０にてＡＡＶＣＭＶ−ＧＦＰに感染させ、Ｐ３０にて収集した。凍結切片の低拡大率像は、網膜の至るところに及ぶ感染の広範な拡散を示す。（Ｂ）錐体が十分に感染し、高レベルのＧＦＰを発現することを示す、Ａにおける外顆粒層のより高い拡大率の視野（抗ＧＦＰは薄灰色、ＰＮＡ（錐体マーカー）は中程度の灰色）。角括弧は錐体の全体を示し、上矢印は錐体外節（ＯＳ）を（中程度の灰色のＰＮＡ染色）、中央矢印は錐体内節（ＩＳ）を、下矢印は錐体細胞体を指す。（Ｃ）ｒｄ１網膜を感染させた以外はＡに同じ。（Ｄ）Ｃのより高い拡大率の視野であり、Ｐ３０にて残る錐体は、抗ＧＦＰ（薄灰色）およびＰＮＡ（中程度の灰色）で十分に染色された。矢印は、単一の錐体を指し、角括弧は、錐体細胞体の層を示す。（Ｅ）感染したが、より低レベルで発現する（Ｂと比較、矢印は錐体を指す）ことを示すためのより長い露光によって可視化された、Ａに示す網膜由来の杆体。（Ｆ）Ｐ０にてＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰに感染したｒｄ１網膜のフラットマウント像。視神経頭の１ｍｍから得た６０×（２５０ミクロン平方面積）像であり、残る外顆粒層における焦点面を示し、実験用ウイルスに感染した網膜において行われた定量化の種類を表す。 図２Ａ〜図２Ｄは、ＷＴ網膜における酸化防止酵素の内在性発現を描写する。ＷＴ Ｐ３０網膜の凍結切片に抗血清をかけ（中程度の灰色）、抗ＰＮＡを使用して錐体ＯＳを同定した（薄灰色）。（Ａ）抗ＳＯＤ２および抗ＰＮＡ、（Ｂ）錐体ＯＳにおける染色を強調するための抗ＳＯＤ２、（Ｃ）抗Ｇｐｘ１および抗ＰＮＡ、（Ｄ）抗Ｇｐｘ１のみ。矢印は錐体を示す。Ｄにおける上の角括弧はＯＳの区域を表示し、下の角括弧区域は錐体細胞体およびＩＳを表示する。 図３Ａ〜図３Ｄは、ＳＯＤ２のノックダウンが、酸化産物を生じることを描写する。ＳＯＤ２を指向するｓｈＲＮＡまたは無関係ｓｈＲＮＡを、Ｐ０にエレクトロポレーションによりＷＴ網膜へと送達した。エレクトロポレーションされた細胞の同定のために同時エレクトロポレーションされたプラスミドが含まれた（ＣＡＧ−ＧＦＰ）。（Ａ）抗ＧＦＰ（薄灰色）および酸化脂質の指標であるアクロレイン（中程度の灰色）で染色した、対照ｓｈＲＮＡをエレクトロポレーションされたＰ３０における網膜由来の凍結切片。（Ａ’）アクロレインを示し、陽性の細胞は存在しなかった。（Ｂ）抗ＧＦＰおよびアクロレインで染色したＳＯＤ２ ｓｈＲＮＡ。（Ｂ’）アクロレイン陽性細胞は全てＧＦＰ＋であった。矢印により２例を示す。上の角括弧はＯＳおよびＩＳを表示し、下の角括弧は外顆粒層を表示する（杆体および錐体の細胞体）。 図４Ａ〜図４Ｃは、Ｇｐｘ１のノックダウンが、急速な細胞死をもたらすことを描写する。Ｇｐｘ１を指向するｓｈＲＮＡを、Ｐ０にエレクトロポレーションによりＷＴマウスへと送達した。エレクトロポレーションされた細胞の同定のために同時エレクトロポレーションされたプラスミドが含まれた（ＣＡＧ−ＧＦＰ）。（Ａ）ＤＡＰＩ（中程度の灰色区域）で染色したＰ３０の網膜由来の低拡大率凍結切片、エレクトロポレーションされた領域を矢印で示す。（Ｂ）ＴＵＮＥＬ染色は、エレクトロポレーションの区域における陽性細胞を明らかにした。（Ｃ）抗ＧＦＰは、エレクトロポレーションされた区域が、ＴＵＮＥＬ＋細胞を有する区域であることを示す。対照ｓｈＲＮＡは、ごく僅かなＴＵＮＥＬ＋細胞しか示さなかった（図示せず）。 図５Ａ〜図５Ｃは、網膜におけるＰＧＣ１αの内在性発現を描写する。ＷＴ成体網膜を抗ＰＧＣ１αで染色した。大部分の核が陽性であり、錐体において杆体よりも高い発現が見られた。（Ａ）大部分の網膜細胞における核局在を示す中程度の灰色の抗ＰＧＣ１α（パネルＡにおける矢印、環状の中程度の灰色染色）。（Ｂ）抗ＰＮＡを使用して錐体における発現（薄灰色、例えば、パネルＢ上部の薄い鉛直線）および核（暗灰色、ＤＡＰＩ、例えば、矢印が置かれた大きい区域）を示す以外は（Ａ）と同じ切片。矢印は錐体核を示す。（Ｃ）抗錐体アレスチン（薄灰色）および抗ＰＧＣ１αによる異なる切片の染色も、錐体染色を示す。矢印は、二重染色された錐体の例を示す。 図６Ａ〜図６Ｃは、ＷＴ、ｒｄ１０およびｒｈｏ−／−網膜におけるＮｒｆ２の内在性発現を描写する。Ｎｒｆ２タンパク質の抗血清を、ＷＴ Ｐ３０網膜の凍結切片にかけ（中程度の灰色）、抗ＰＮＡを使用して、錐体ＯＳ（薄灰色）を同定した。ＷＴ網膜（Ａ）のＩＳ、外顆粒層（ＯＮＬ）および内顆粒層（ＩＮＬ）において低レベルのＮｒｆ２（灰色）が発現される。ｒｄ１０ Ｐ１８網膜（Ｂ）およびｒｈｏ−／−Ｐ３０網膜（Ｃ）の錐体（杆体よりも高い）においてＮｒｆ２レベル（中程度の灰色）が上昇する。矢印は、より高レベルのＮｒｆ２タンパク質を有する錐体細胞体を指す。ＢおよびＣにおける角括弧は、ＯＮＬ層を表示する。 図７は、高力価ＡＡＶベクターの同時注射が、多くの細胞に同時感染をもたらすことを描写する。Ｐ０ ＷＴ網膜に、一方はＧＦＰ（薄灰色）をコードし、もう一方はｔｄＴｏｍａｔｏ（明るい薄灰色）をコードする、２種のＡＡＶベクターの混合物を注射した。矢印は、二重感染した錐体の例を示す。２個の網膜にわたる２００個の細胞の定量化は、ＰＮＡ染色によって同定された錐体の１００％が同時感染し、全光受容体の８５％が同時感染したことを示した。 図８は、感染に使用したＡＡＶ２／８ベクターゲノムの模式図を提示する。これらは、酸化防止遺伝子と共に構築されたＣＭＶプロモーターおよびベータ−グロビンイントロンを含む。感染細胞の追跡を可能にするために、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰを、抗酸化遺伝子を発現するＡＡＶベクターと共に混合した。 図９Ａ〜図９Ｄは、ｒｄ１網膜におけるＡＡＶベクターによる抗酸化酵素ＳＯＤ２およびカタラーゼの発現を描写する。抗酸化酵素の抗血清（中程度の灰色、Ａ’〜Ｄ’）を、ｒｄ１ Ｐ６０網膜の凍結切片にかけ、ＧＦＰ発現（薄灰色、Ａ〜Ｄ）を使用して、残る錐体を追跡した。ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰのみを感染した対照ｒｄ１網膜は、ＳＯＤ２（Ａ、Ａ’）およびカタラーゼ（Ｃ、Ｃ’）発現を殆ど示さなかったが、３種のウイルスの混合物に感染した網膜において、高レベルのＳＯＤ２（Ｂ、Ｂ’）およびカタラーゼ（Ｄ、Ｄ’）発現が明らかであった。 図１０Ａ〜図１０Ｄは、ＡＡＶによる酸化防止酵素遺伝子の送達が、錐体生存を促進することを描写する。Ｐ０ ｒｄ１網膜を、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＳＯＤ２−およびＡＡＶ−ＣＭＶ−カタラーゼ（図８に示すベクター）により網膜下に同時感染させた。対照ｒｄ１網膜を、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰに感染させた。Ｐ５０において、凍結切片を調製し、網膜中心を通る切片のＧＦＰ（薄灰色、Ｂ、Ｄ）を撮像した。対照ウイルスに感染した網膜切片（Ａ、Ｂ）。網膜中心におけるＧＦＰ＋細胞の非存在に留意（Ｂ）。酸化防止ウイルスに感染した網膜切片（Ｃ、Ｄ）。錐体細胞体を示す強膜位置における網膜中心（矢印、Ｄ）にＧＦＰ＋細胞が存在することに留意（例えば、図１Ｄを参照）。 図１１は、過剰発現ＳＯＤ２およびカタラーゼが、錐体生存を延長することを実証する。ＳＯＤ２およびカタラーゼを発現するＡＡＶベクターに感染したＷＴおよびｒｄ１網膜における平均錐体密度を示した。各網膜の視神経頭の中心から１．５ｍｍ背側、腹側、鼻側および側頭における４個の２５０μｍ×２５０μｍの正方形における錐体密度を定量化し、時点当たり群当たり２０個前後の網膜を解析した。成体ＷＴ網膜は、一定の錐体密度を有する（０．０６２５ｍｍ２当たりほぼ３５０個の錐体）。平均（±ＳＥＭ）錐体密度は、Ｐ５０、Ｐ６０およびＰ７０においてより大きく、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ（暗灰色線）のみによる対照網膜と比較して、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＳＯＤ２およびＡＡＶ−ＣＭＶ−カタラーゼ（中程度の灰色線）で処置したｒｄ１網膜におけるＰ５０において有意により大きかった（ｐ＜０．０５）。 図１２Ａ〜図１２Ｄは、ＳＯＤ２およびカタラーゼの過剰発現が、錐体の外節（ＯＳ）および内節（ＩＳ）を保存することを実証する。ＳＯＤ２およびカタラーゼを発現するＡＡＶベクターに感染した、フラットマウントしたＰ６０ ＷＴおよびｒｄ１網膜の高拡大率像。網膜を抗ＰＮＡ（中程度の灰色、Ａ、Ｂ’、Ｃ’）で染色して、錐体ＯＳおよびＩＳを示す。長いＯＳおよびＩＳ（Ａ）が、ＷＴ網膜に存在したが、ｒｄ１ Ｐ６０網膜における残る錐体（ＧＦＰでマーク、薄灰色、Ｂ）は、ＯＳおよびＩＳを欠く（Ｂ’）。ＳＯＤ２およびカタラーゼの過剰発現は、ｒｄ１ Ｐ６０網膜における錐体ＯＳおよびＩＳ（ＣおよびＣ’）をレスキューした。ＰＮＡ染色により錐体のパーセンテージを計数することにより表現型を定量化した。数値は、平均±ｓ．ｄ．として示した。１群当たりｎ＝３網膜。 図１３Ａ〜図１３Ｂは、ＳＯＤ２およびカタラーゼの過剰発現が、視運動アッセイによって測定される光受容体機能を保存することを実証する。ｒｄ１０マウスの非注射左眼（中程度の灰色）およびＡＡＶベクター注射右眼（薄灰色）の視力を示す。ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ（マウスＩＤ１〜５、ｎ＝５）による対照処置マウスおよびＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＳＯＤ２＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−カタラーゼ処置マウス（マウスＩＤ６〜１０、ｎ＝５）をＰ４０（Ａ）およびＰ５０（Ｂ）に検査した。Ｐ４０およびＰ５０に、検査した大部分の抗酸化処置マウスは、左よりも高い右眼視力を有したが、大部分の対照処置マウスは、同様の左および右眼応答を有した。２群（対照処置ｖｓ抗酸化ＡＡＶ処置マウス）の間の左および右眼の差は、Ｐ５０において有意であった（Ｐ＜０．０５）（Ｂ）。 図１４は、ＳＯＤ２およびカタラーゼの過剰発現が、光誘発神経節細胞活性によって測定される光受容体機能を保存することを実証する。グラフの左側は、神経節細胞活性記録のためにＰ７０に収集した、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰおよびＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＳＯＤ２＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−カタラーゼで処置したｒｄ１０マウス由来の網膜の結果を示す。提示されているデータは、３個の対照処置網膜由来の総計３５個の神経節細胞および３個の抗酸化ＡＡＶベクター処置網膜由来の総計２６個の細胞に由来する。グラフの右側は、この実験のためにＰ１００に収集したｒｈｏ−／−マウスのＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２を注射した網膜由来の結果を示す。各網膜から１０個の神経節細胞を光誘発活性に関して測定した。各神経節細胞のピーク発火率（ｐｅａｋ ｆｉｒｉｎｇ ｒａｔｅ）（スパイク／秒）は、１秒間の光刺激（波長：３５６ｎｍ＋５０５ｎｍ、光強度：１０１０光子ｃｍ−２ｓ−１）の２０回の試行にわたり平均した。ＯＮ、ＯＦＦおよびＯＮ／ＯＦＦ神経節細胞がこの解析のために含まれた。抗酸化ＡＡＶベクター処置網膜の平均ピーク発火率（白線）は、対照処置網膜と比較してより高く、その差は統計的に有意である（ｐ＜０．０５）。 図１５Ａ〜図１５Ｂは、ＰＧＣ１αおよびＮｒｆ２の過剰発現が、網膜中心および中央における錐体光受容体を守ることを実証する顕微鏡写真である。対照群（Ａ；ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ処置）および抗酸化転写因子群（Ｂ；ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＰＧＣ１α＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２処置）由来の代表的なフラットマウントしたｒｄ１ Ｐ５０網膜を示す。錐体光受容体をＧＦＰ（緑色）によって追跡した。ＡおよびＢの右のボックスは、視神経頭から１．５ｍｍ背側の区域の拡大図である。対照動物（Ａ）の網膜中心および中央（四角で強調）におけるＧＦＰの非存在に留意されたい。多くのＧＦＰ陽性細胞が、抗酸化転写因子ＡＡＶ処置網膜（Ｂ）において明らかである。 図１６は、ＰＧＣ１αおよびＮｒｆ２の過剰発現が、錐体生存を延長することを実証する。Ｐ３０、Ｐ５０およびＰ８０にＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＰＧＣ１α＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２ベクターで処置したｒｄ１網膜の平均（±ＳＥＭ）錐体密度を示す（薄灰色線）。平均（±ＳＥＭ）錐体密度は、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰによる対照網膜と比較して、ＳＯＤ２およびカタラーゼを過剰発現する網膜においてＰ５０にて有意により大きかった（ｐ＜０．００１）。ＰＧＣ１αおよびＮｒｆ２処置網膜の平均錐体密度は、Ｐ５０における対照網膜（ｐ＜０．００１）ならびにＳＯＤ２およびカタラーゼ処置網膜（ｐ＜０．００１）よりも有意に大きく、Ｐ８０における対照網膜（ｐ＜０．０５）よりも依然として有意に大きかった。 図１７Ａ〜図１７Ｂは、ＰＧＣ１αおよびＮｒｆ２の過剰発現が、網膜中心における錐体の外節（ＯＳ）および内節（ＩＳ）を保存することを実証する。ＰＧＣ１ａおよびＮｒｆ２（Ａ、Ａ’）を発現するＡＡＶベクターに感染した、フラットマウントしたＰ３０ ＷＴおよびｒｄ１網膜の中央背側領域の高拡大率像。網膜を抗ＰＮＡ（Ａ’、Ｂ’）で染色して、錐体外節（ＯＳ）および内節（ＩＳ）を示し、より多くのＯＳおよびＩＳが、ＰＧＣ１ａおよびＮｒｆ２過剰発現（Ａ、Ａ’）で処置した網膜に存在し、対照ｒｄ１網膜は、ＯＳおよびＩＳ（Ｂ、Ｂ’）を欠いた。 図１８Ａ〜図１８Ｄは、Ｎｒｆ２およびＰＧＣ１αの過剰発現が、錐体外節（ＯＳ）を保存することを実証する。ＡおよびＢは、ＡＡＶ−ＧＦＰ＋ＮＲＦ２＋ＰＧＣ１αに感染した外節の顕微鏡写真であり、ＣおよびＤは、ＡＡＶ−ＧＦＰに感染した外節の顕微鏡写真である。ＡおよびＣは、ＧＦＰおよび赤色／緑色オプシンが染色され、ＢおよびＤは、赤色／緑色オプシンが染色される。ＡおよびＢに示す通り、赤色／緑色オプシンタンパク質は、残る錐体外節構造に局在したが、対照網膜における細胞体の細胞質に誤って局在した。矢印は、錐体外節の例を示す。 図１９は、Ｎｒｆ２単独の過剰発現が、錐体生存を延長することを実証するグラフである。ＧＦＰ＋ＰＧＣ１ａ（下の線）、ＧＦＰ＋Ｎｒｆ２（上の線）およびＧＦＰ＋ＰＧＣ１ａ＋Ｎｒｆ２（中央線）を発現するＡＡＶベクターに感染したｒｄ１網膜における平均錐体密度を示す。Ｐ５０での平均錐体密度は、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２で処置した網膜において、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＰＧＣ１α＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２を発現するＡＡＶベクターで処置したものよりも大きかった。 図２０は、Ｎｒｆ２の過剰発現が、錐体外節を保存することを実証するグラフである。ＰＮＡ染色を有する錐体のパーセンテージを計数することにより、表現型を定量化した。Ｐ５０網膜の中央背側領域を定量化のために選んだ。数値を平均±ＳＥＭとして示す。 図２１Ａ〜図２１Ｄは、Ｎｒｆ２の処置が、スーパーオキシドレベルを低下させることを実証する顕微鏡写真である。出生後日数（Ｐ）４５に、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰで処置したｒｄ１０マウスまたはＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２で処置したｒｄ１０マウスへとヒドロエチジン（ＤＨＥ）を腹腔内注射した。１８時間後にマウスを安楽死させ、網膜を収集した。ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ注射網膜（Ｃ）におけるより強い蛍光は、より高レベルのスーパーオキシド種の産生を実証する。最小蛍光は、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２で処置した網膜（Ａ）に存在した。ＢおよびＤは、ＡおよびＣにおける網膜のＧＦＰ緑色蛍光を示す。 図２２Ａ〜図２２Ｆは、Ｎｒｆ２の過剰発現が、錐体における脂質酸化を低下させることを実証する顕微鏡写真である。Ｐ３０ ｒｄ１網膜を収集し、アクロレイン修飾タンパク質に対し免疫染色した。アクロレインは、脂質過酸化の代謝物であり、タンパク質と反応することができる。ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２に感染した網膜（Ｄ〜Ｆ）は、低下したレベルの抗アクロレイン染色を有し、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰに感染した対照網膜（Ａ〜Ｃ）と比較してより低レベルの脂質酸化を実証する。 図２３Ａ〜図２３Ｂは、Ｎｒｆ２の過剰発現が、視運動アッセイによって示されるより優れた視力をもたらすことを実証するグラフである。ｒｄ１０マウスの右眼にＡＡＶベクター注射を与えた一方、左眼は注射せず、動物内対照とした。Ｐ５０ ｒｄ１０マウスの右および左眼を別々に検査し、視力を（Ａ）に示す。ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２処置を与えた右眼の平均視力（±ＳＥＭ）は、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ処置を与えた右眼よりも高い。各動物の右眼／左眼視力の比を使用して、処置なし動物間の変動を最小化した。ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２処置網膜のＲ／Ｌ比は、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ処置網膜よりも有意に高かった（ｐ＜０．０５）（Ｂ）。 図２４Ａ〜図２４Ｃは、Ｎｒｆ２の過剰発現が、明所視網膜電図検査（ＥＲＧ）によって評価されるより優れた視覚的機能をもたらすことを実証する。Ｐ４０ ｒｄ１０マウスを、明所視ＥＲＧにより錐体惹起電気的シグナルに関して検査した。代表的な波形を（Ａ〜Ｂ）に示す。ＡＡＶ−ＣＭＧ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２処置マウスの右眼は、実質的により優れた波形を有した。右眼／左眼ｂ−波振幅の比は、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２処置マウスにおいて、対照マウスよりも有意に高かった（Ｃ）。 図２５Ａ〜図２５Ｂは、ＳＯＤ２およびカタラーゼの過剰発現が、ロドプシンヌルマウス（ｒｈｏ−／−）の網膜における錐体の外節を保存することを実証する。６ヶ月齢のｒｈｏ−／−マウスの網膜を、ＳＯＤ２およびカタラーゼを発現するＡＡＶベクターに感染させた。網膜を抗ＰＮＡで染色して、錐体外節（ＯＳ）を示した。Ａは、ＰＮＡおよびＧＦＰ染色を示す。Ｂは、ＰＮＡ染色を示す。 図２６Ａおよび図２６Ｂは、野生型マウスにおける視神経挫傷後の網膜神経節細胞生存（Ａ）および軸索再生（Ｂ）に対するＮｒｆ２およびＳｏｄ２の発現増大の効果を描写するグラフである。
本発明は、少なくとも一部には、酸化ストレスを受ける光受容体細胞における抗酸化防御タンパク質（複数可）をコードする遺伝子の発現および／または活性の増大が、罹患細胞における酸化ストレスを阻害することができるという発見に基づく。杆体は、外顆粒層（ＯＮＬ）における主要な細胞型であるため、錐体は、杆体死の後に大いに変更された環境を経験する。錐体外節（ＯＳ）が崩壊すると、これは、網膜色素上皮（ＲＰＥ）との密接な関連を失い、よって、その核酸、タンパク質および脂質のより大規模な酸化によって証明される通り、過酸素環境に曝露される。よって、ＲＰのマウスモデルにおける錐体細胞が、酸化の徴候を示すことが発見された。したがって、抗酸化酵素および酸化防止プログラムを全般的に上方調節する転写因子を含む抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性の増大は、細胞酸化ストレスの阻害に役立ち、よって、光受容体生存性を増大させることができる。したがって、本発明は、少なくとも１種の抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させることにより、光受容体の酸化ストレスを阻害するための方法と、細胞酸化ストレスに関連する障害、例えば、網膜色素変性症の処置および／または予防のための方法を提供する。
冠詞「ａ」および「ａｎ」は、該冠詞の文法上の目的語の１個または２個以上（即ち、少なくとも１個）を指すように本明細書において使用されている。例として、「エレメント（ａｎ ｅｌｅｍｅｎｔ）」は、１個のエレメントまたは２個以上のエレメント、例えば、複数のエレメントを意味する。
用語「含む」は、語句「が挙げられるがこれらに限定されない」を意味するように本明細書において使用されており、これと互換的に使用されている。
用語「または」は、文脈がそれ以外の事柄を明らかに示さない限り、用語「および／または」を意味するように本明細書において使用されており、これと互換的に使用されている。
本明細書において、用語「酸化ストレスを阻害する」および「酸化ストレスの阻害」は、酸化ストレスの防止と共に、その寛解、減少または低下を指す。
本明細書において、用語「抗酸化防御タンパク質」は、分子の酸化を阻害するいずれかのタンパク質を含む。より具体的には、「抗酸化防御タンパク質」は、酸化防止プログラムに関与するいずれかの上流エレメント（例えば、転写因子）と、上流エレメントの増強の結果として活性化され得るいずれかの下流エレメント（例えば、抗酸化酵素）とを包含する。例示的な抗酸化防御タンパク質は、スーパーオキシドジスムターゼ２（ＳＯＤ２）、カタラーゼ、ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体ガンマコアクチベーター１−アルファ（ＰＧＣ１α）および核因子赤血球由来２様２（Ｎｒｆ２）を含む。
本明細書において、用語「酸化ストレス」は、例えば、ＤＮＡ損傷、脂質過酸化およびタンパク質の酸化を含む細胞損傷を生じる活性酸素種（ＲＯＳ）のレベルの増大をもたらす、光受容体細胞の正常な還元−酸化状態におけるいずれかの不均衡を指す。
本明細書において、用語「抗酸化酵素」および「酵素スカベンジャー」は、フリーラジカル、即ち、活性酸素種（ＲＯＳ）を解毒または寛解することができる抗酸化タンパク質を指すよう互換的に使用されている。その例として、アルファ−１−ミクログロブリン、スーパーオキシドジスムターゼ、カタラーゼ、ラクトペルオキシダーゼ、グルタチオンペルオキシダーゼおよびペルオキシレドキシンが挙げられるがこれらに限定されない。
本明細書において、用語「ＲＯＳのレベルを低下させる」は、ＲＯＳのレベルを生理学的に許容される無毒性レベルへと減少させることと共に、ＲＯＳのさらなる生成を防止することを指す。
本発明の一実施形態において、本方法における使用に適した細胞は、光受容体細胞、即ち、網膜に存在する特殊化された細胞である。網膜は、約１億２千万個の別々の杆体細胞（夜間視力）および７百万個の錐体細胞（昼間視力および色覚）ならびに数百万個の他の構造支持および相互接続細胞を含有する薄い透明な組織である。光受容体細胞は、網膜の感光性細胞である「杆体」および「錐体」からなる。杆体は、杆体感光色素であるロドプシンを含有し、錐体は、光に応答し、最終的に網膜の出力細胞、神経節細胞における神経放電の引き金を引く他の別個の感光色素を含有する。最終的に、このシグナルは、脳の視覚野および他の標的位置における視覚的刺激として登録される。網膜色素上皮（ＲＰＥ）細胞は、光受容体の正常機能および生存に関与する種々の因子を産生、貯蔵および輸送する。光を感じることもできる網膜細胞は、感光性神経節細胞からなる。メラノプシン神経節細胞として公知のこのような細胞は、網膜内層に存在し、視蓋前野（中脳）、視床下部における視交叉上核および外側膝状体（視床）へと突出する樹状突起および長い軸索を有する。一実施形態において、光受容体細胞は、杆体である。一部の実施形態において、光受容体細胞は、視神経とは別個のものである。一実施形態において、光受容体細胞は、錐体である。一実施形態において、感光性細胞は、メラノプシン神経節細胞である。
本明細書において、用語「網膜障害」は、網膜の障害を一般に指す。一実施形態において、網膜障害は、錐体細胞および／または杆体細胞の酸化ストレス、生存性減少、例えば、死に関連する。さらに、特定の実施形態において、網膜障害は、例えば、糖尿病性網膜症の場合のような血管漏出および／または成長に関連しないが、その代わりに、錐体細胞および／または杆体細胞の生存性低下によって主に特徴付けられる。ある特定の実施形態において、網膜障害は、遺伝的障害である。特定の実施形態において、網膜障害は、網膜色素変性症である。別の実施形態において、網膜障害は、加齢性黄斑変性症である。別の実施形態において、網膜障害は、錐体杆体ジストロフィーである。別の実施形態において、網膜障害は、杆体錐体ジストロフィーである。他の実施形態において、網膜障害は、血管漏出および／または成長に関連しない。ある特定の実施形態において、網膜障害は、糖尿病および／または糖尿病性網膜症に関連しない。さらなる実施形態において、網膜障害は、ＮＡＲＰ（ニューロパチー、運動失調症、および網膜色素変性症）ではない。さらに別の実施形態において、網膜障害は、神経学的障害ではない。ある特定の実施形態において、網膜障害は、損なわれた視神経および／または脳の障害に関連する障害ではない。前述の実施形態において、網膜障害は、損なわれた光受容体細胞に関連し、神経学的障害ではない。
本明細書において、用語「網膜色素変性症」または「ＲＰ」は、当技術分野において公知であり、杆体および錐体の遺伝的障害の異種群を包含する。網膜色素変性症は、多くの場合次の症状発現によって特徴付けられる網膜変性症を一般に指す：夜盲症、進行性周辺視力喪失、最終的に全盲をもたらす；暗いモザイク様網膜色素沈着、網膜血管の減弱、視神経乳頭の蝋様蒼白および進行型黄斑変性症に存する眼底検査上の変化。一部の事例において、色素沈着が欠如し得る。網膜色素変性症は、硝子体の変性性混濁および白内障に関連し得る。家族歴は、網膜色素変性症において顕著である；遺伝のパターンは、常染色体劣性、常染色体優性またはＸ連鎖となり得る；常染色体劣性型は、最も一般的であり、散発的に起こり得る。
本明細書において、用語「錐体杆体ジストロフィー」または「ＣＲＤ」および「杆体錐体ジストロフィー」または「ＲＣＤ」は、錐体および杆体光受容体細胞の悪化を引き起こし、多くの場合盲目をもたらす、当技術分野において認められている遺伝性進行性疾患を指す。ＣＲＤは、錐体細胞の生存性低下または死と、続く杆体細胞の生存性低下または死によって特徴付けられる。対照的に、ＲＣＤは、杆体細胞の生存性低下または死と、続く錐体細胞の生存性低下または死によって特徴付けられる。
本明細書において、用語「加齢性黄斑変性症」は、「黄斑変性症」または「ＡＭＤ」とも称され、高齢個体の間に盲目を引き起こす当技術分野において認められている病態を指す。加齢性黄斑変性症は、湿潤型および乾燥型のＡＲＭＤの両方を含む。全症例の約９０パーセントを占める乾燥型のＡＲＭＤは、萎縮性、非滲出性またはドルーゼノイド（ｄｒｕｓｅｎｏｉｄ）（加齢性）黄斑変性症としても公知である。乾燥型のＡＲＭＤにより、ドルーゼンは、ブルッフ膜の下／内にある網膜色素上皮（ＲＰＥ）組織に典型的に蓄積する。続いて、ドルーゼンが、黄斑における光受容体の機能に干渉すると、視力喪失が起こり得る。乾燥型のＡＲＭＤは、長年にわたり漸進的な視力喪失を生じる。乾燥型のＡＲＭＤは、湿潤型のＡＲＭＤをもたらし得る。滲出性または血管新生（加齢性）黄斑変性症としても公知の湿潤型のＡＲＭＤは、急速に進行し、中心視力に重度の損傷を引き起こし得る。黄斑ジストロフィーは、最も頻繁に遭遇する若年性発病型の黄斑ジストロフィーである、スタルガルト黄斑ジストロフィーまたは黄色斑眼底としても公知のスタルガルト病を含む。
本明細書において、用語「神経学的障害」は、神経変性障害および脱髄性障害を包含する。一部の実施形態において、本発明の組成物は、パーキンソン病、タウオパチー、アルツハイマー病、石灰化を伴うびまん性神経原線維変化、核上性まひ、進行性、ＴＤＰ−４３タンパク質症、筋萎縮性側索硬化症、多発性硬化症、前頭側頭葉変性症（Ｆｒｏｎｔｏｔｅｍｐｏｒａｉ Ｌｏｂａｒ Ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ）、レヴィー小体病、ＡＩＤＳ認知症複合、失語症、原発性進行性、原発性進行性非流暢失語症、認知症、血管性、ＣＡＤＡＳＩＬ、認知症、多発梗塞性（Ｍｕｌｔｉ−ｌｎｆａｒｃｔ）、石灰化を伴うびまん性神経原線維変化、前頭側頭葉変性症、前頭側頭認知症、原発性進行性非流暢失語症、クリューバー・ビューシー症候群、ピック病、運動ニューロン疾患、球まひ、進行性、筋萎縮、脊髄性、多系統萎縮症、オリーブ橋小脳萎縮症、シャイ・ドレーガー症候群、線条体黒質変性症（Ｓｔｒｉａｔｏｎｉｇｒａｉ Ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ）、オリーブ橋小脳萎縮症、新生物随伴症候群、神経系、ランバート・イートン筋無力症候群、辺縁系脳炎、脊髄炎、横行、オプソクローヌス・ミオクローヌス症候群、傍腫瘍性小脳変性症、腫瘍随伴性多発ニューロパチー、ポリオ後症候群、プリオン病、脳症、牛海綿状、ゲルストマン・ストロイスラー・シャインカー疾患、不眠症、致死性家族性、クールー、スクレイピー、消耗病、慢性、クロイツフェルト・ヤコブ（Ｃｒｅｕｔｚｆｅｉｄｔ−Ｊａｋｏｂ）症候群、シャイ・ドレーガー症候群、亜急性連合変性症、遺伝性変性障害（Ｈｅｒｅｄｏｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ Ｄｉｓｏｒｄｅｒ）、神経系、アレキサンダー病、アミロイドニューロパチー、家族性、延髄脊髄性萎縮、Ｘ連鎖、カナバン病、コケーン症候群、変形性筋失調症、ゲルストマン・ストロイスラー（Ｓｔｒａｕｓｓｉｅｒ）・シャインカー疾患、肝レンズ核変性症、遺伝性中枢神経系脱髄性疾患、遺伝性感覚性自律性ニューロパチー、遺伝性感覚性運動性ニューロパチー、ハンチントン病、ラフォーラ病、レッシュ・ナイハン症候群、メンケス縮れ毛症候群、先天性ミオトニー、筋緊張性ジストロフィー、神経線維腫症、神経セロイドリポフスチン症、視神経萎縮、遺伝性、パントテン酸キナーゼ関連神経変性症、レット症候群、小児期の脊髄性筋萎縮、脊髄小脳変性症、トゥレット症候群、結節性硬化症、ウンフェルリヒト・ルントボルク症候群その他等が挙げられるがこれらに限定されない神経学的障害の処置と共に、アルツハイマー病および関連する認知症の処置に有用である。一実施形態において、神経学的疾患は、パーキンソン病ではない。
本明細書において、用語「核酸分子」は、ＤＮＡ分子（例えば、ｃＤＮＡまたはゲノムＤＮＡ）およびＲＮＡ分子（例えば、ｍＲＮＡ）ならびにヌクレオチドアナログを使用して生成されるＤＮＡまたはＲＮＡのアナログを含むことが意図される。核酸分子は、一本鎖であっても二本鎖であってもよいが、好ましくは、二本鎖ＤＮＡである。本発明の方法において使用される核酸分子は、標準分子生物学技法を使用して単離することができる。目的の核酸配列の全体または一部をハイブリダイゼーションプローブとして使用して、標準ハイブリダイゼーションおよびクローニング技法を使用して核酸分子を単離することができる（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ， Ｊ．、Ｆｒｉｔｓｈ， Ｅ． Ｆ．およびＭａｎｉａｔｉｓ， Ｔ．、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ． Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ．、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、Ｎ．Ｙ．、１９８９年に記載）。
「単離された」核酸分子は、該核酸の天然の供給源に存在する他の核酸分子から分離された核酸分子である。例えば、ゲノムＤＮＡに関して、用語「単離された」は、該ゲノムＤＮＡが天然に関連する染色体から分離された核酸分子を含む。好ましくは、「単離された」核酸分子は、該核酸分子が由来する生物のゲノムＤＮＡにおいて該核酸分子に天然に隣接する配列（即ち、該核酸分子の５’および３’末端に位置する配列）を含まない。
本発明の方法における使用のための核酸分子は、目的の核酸分子の配列に基づき設計された合成オリゴヌクレオチドプライマーを使用したポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって単離することもできる。本発明の方法において使用される核酸分子は、標準ＰＣＲ増幅技法に従って、鋳型としてのｃＤＮＡ、ｍＲＮＡあるいはゲノムＤＮＡと、適切なオリゴヌクレオチドプライマーを使用して増幅することができる。さらに、目的のヌクレオチド配列に相当するオリゴヌクレオチドは、標準合成技法により、例えば、自動ＤＮＡ合成機を使用して調製することができる。
本発明の方法における使用のための核酸は、例えば、標準組換えＤＮＡ技法により調製することもできる。本発明の核酸は、標準技法を使用して化学合成することもできる。ポリデオキシヌクレオチドを化学合成する様々な方法は公知であり、市販のＤＮＡ合成機において自動化された固相合成を含む（例えば、参照により本明細書に援用されるＩｔａｋｕｒａら、米国特許第４，５９８，０４９号；Ｃａｒｕｔｈｅｒｓら、米国特許第４，４５８，０６６号；ならびにＩｔａｋｕｒａ、米国特許第４，４０１，７９６号および同第４，３７３，０７１号を参照）。
本明細書において、「アンチセンス」核酸は、タンパク質をコードする「センス」核酸と相補的な、例えば、二本鎖ｃＤＮＡ分子のコード鎖と相補的な、ｍＲＮＡ配列と相補的な、または遺伝子のコード鎖と相補的なヌクレオチド配列を含む。したがって、アンチセンス核酸は、センス核酸と水素結合することができる。
一実施形態において、本発明の核酸分子は、ｓｉＲＮＡ分子である。別の実施形態において、本発明の核酸分子は、ｓｈＲＮＡ分子である。一実施形態において、本発明の核酸分子は、ＲＮＡｉを媒介する。
別の実施形態において、本発明の核酸分子は、翻訳阻害を媒介する。ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）は、ｄｓＲＮＡと同じ配列を含有するメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）を分解するための二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）を使用する、転写後標的化遺伝子サイレンシング技法である（Ｓｈａｒｐ， Ｐ．Ａ．およびＺａｍｏｒｅ， Ｐ．Ｄ．、２８７巻、２４３１〜２４３２頁（２０００年）；Ｚａｍｏｒｅ， Ｐ．Ｄ．ら、Ｃｅｌｌ １０１巻、２５〜３３頁（２０００年）。Ｔｕｓｃｈｌ， Ｔ．ら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖ．１３巻、３１９１〜３１９７頁（１９９９年）；Ｃｏｔｔｒｅｌｌ ＴＲおよびＤｏｅｒｉｎｇ ＴＬ．、２００３年、Ｔｒｅｎｄｓ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．、１１巻：３７〜４３頁；Ｂｕｓｈｍａｎ Ｆ．、２００３年、ＭｏＩ Ｔｈｅｒａｐｙ．、７巻：９〜１０頁；ＭｃＭａｎｕｓ ＭＴおよびＳｈａｒｐ ＰＡ．、２００２年、Ｎａｔ Ｒｅｖ Ｇｅｎｅｔ．３巻：７３７〜４７頁）。この過程は、内在性リボヌクレアーゼが、より長いｄｓＲＮＡをより短い、例えば、低分子干渉ＲＮＡまたはｓｉＲＮＡと命名される２１または２２ヌクレオチド長ＲＮＡへと切断すると行われる。次に、このより小型のＲＮＡセグメントは、標的ｍＲＮＡの分解を媒介する。ＲＮＡｉの合成のためのキットは、例えば、Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ ＢｉｏｌａｂｓまたはＡｍｂｉｏｎから市販されている。一実施形態において、アンチセンスＲＮＡにおける使用について本明細書に記載されている化学のうち１種または複数を、ＲＮＡｉを媒介する分子において用いることができる。
本明細書において、用語「ベクター」は、それに連結された別の核酸を輸送することができる核酸分子を指す。ベクターの１種類は、追加的なＤＮＡセグメントをそれにライゲーションすることができる環状二本鎖ＤＮＡループを指す「プラスミド」である。別の種類のベクターは、ウイルスベクターであり、追加的なＤＮＡセグメントをウイルスゲノムにライゲーションすることができる。ある特定のベクターは、それが導入された宿主細胞において自律複製することができる（例えば、細菌複製起点を有する細菌ベクターおよびエピソーム哺乳動物ベクター）。他のベクター（例えば、非エピソーム哺乳動物ベクター）は、宿主細胞への導入の際に宿主細胞のゲノムに組み込まれ、これにより、宿主ゲノムと共に複製される。さらに、ある特定のベクターは、それが動作可能に連結された遺伝子または核酸分子の発現を導くことができ、「発現ベクター」または「組換え発現ベクター」または単純に「発現ベクター」と称される。原核生物における発現に必要な核酸配列は通常、プロモーター、オペレーター（任意選択の）およびリボソーム結合部位を、多くの場合他の配列と共に含む。真核細胞は、プロモーター、エンハンサーならびに終結およびポリアデニル化シグナルを利用することが公知である。一部の実施形態において、「発現ベクター」は、ウイルスエンベロープタンパク質のシュードタイピングを可能にするために使用される。
発現ベクターは、多くの場合、プラスミドの形態である。本明細書において、プラスミドは、最も一般的に使用される形態のベクターであるため、「プラスミド」および「ベクター」は、互換的に使用することができる。しかし、本発明は、等価な機能を果たすウイルスベクター（例えば、複製欠損レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、レンチウイルス）等、その他の形態の発現ベクターを含むことが意図される。
本明細書において、用語「レトロウイルス」は、その複製サイクルにおいて逆転写酵素を利用するＲＮＡウイルスに関連して使用されている。レトロウイルスゲノムＲＮＡは、逆転写酵素によって二本鎖ＤＮＡに変換される。この二本鎖ＤＮＡ型のウイルスは、感染した細胞の染色体に組み込まれることが可能である；組み込まれると、これは「プロウイルス」と称される。プロウイルスは、ＲＮＡポリメラーゼＩＩの鋳型として機能し、新たなウイルス粒子の産生に必要とされる構造タンパク質および酵素をコードするＲＮＡ分子の発現を導く。プロウイルスの各末端は、「長い末端反復」または「ＬＴＲ」と呼ばれる構造である。ＬＴＲは、転写制御エレメント、ポリアデニル化シグナルならびにウイルスゲノムの複製および組み込みに必要とされる配列を含む、多数の調節シグナルを含有する。ＬＴＲは、数百塩基対の長さとなり得る。
用語「ＡＡＶベクター」は、ＡＡＶ−１、ＡＡＶ−２、ＡＡＶ−３、ＡＡＶ−４、ＡＡＶ−５またはＡＡＶＸ７を限定することなく含む、アデノ随伴ウイルス血清型に由来するベクターを指す。「ｒＡＡＶベクター」は、ＡＡＶヌクレオチド配列と共に異種ヌクレオチド配列を含むベクターを指す。ｒＡＡＶベクターは、ウイルスの生成に、シスで１４５塩基末端反復のみを必要とする。他のあらゆるウイルス配列は不必要であり、トランスで供給され得る（Ｍｕｚｙｃｚｋａ（１９９２年）Ｃｕｒｒ． Ｔｏｐｉｃｓ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５８巻：９７頁）。典型的には、ｒＡＡＶベクターゲノムは、ベクターによって効率的にパッケージングされ得る導入遺伝子のサイズを最大化するために、逆方向末端反復（ＩＴＲ）配列のみを保持する。ＩＴＲは、野生型ヌクレオチド配列である必要はなく、配列が機能的レスキュー、複製およびパッケージングをもたらす限りにおいて、例えば、ヌクレオチドの挿入、欠失または置換により変更されていてよい。特定の実施形態において、ＡＡＶベクターは、ＡＡＶ２／５またはＡＡＶ２／８ベクターである。適したＡＡＶベクターは、例えば、参照により本明細書にその内容全体が援用される米国特許第７，０５６，５０２号およびＹａｎら（２００２年）Ｊ． Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ７６巻（５号）：２０４３〜２０５３頁に記載されている。
本明細書において、用語「レンチウイルス」は、ゆっくり発症する疾患を生じるレトロウイルスの群（または属）を指す。この群内に含まれるウイルスは、ＨＩＶ（ヒト免疫不全ウイルス；ＨＩＶ１型およびＨＩＶ２型等が挙げられるがこれらに限定されない）、ヒト後天性免疫不全症候群（ＡＩＤＳ）の病原因子；ヒツジにおける脳炎（ビスナ）または肺炎（マエディ）の原因となるビスナ−マエディ；ヤギにおける免疫不全、関節炎および脳症の原因となるヤギ関節炎−脳炎ウイルス；ウマにおける自己免疫性溶血性貧血および脳症の原因となるウマ感染性貧血ウイルス（ＥＩＡＶ）；ネコにおける免疫不全の原因となるネコ免疫不全ウイルス（ＦＩＶ）；ウシ類におけるリンパ節症、リンパ球増加症およびおそらく中枢神経系感染症の原因となるウシ免疫不全ウイルス（ＢＩＶ）；ならびに類人霊長類における免疫不全および脳症の原因となるサル免疫不全ウイルス（ＳＩＶ）を含む。これらのウイルスによって引き起こされる疾患は、長いインキュベーション期間および長引く経過によって特徴付けられる。通常、このウイルスは、単球およびマクロファージに潜在的に感染して、そこから他の細胞へと拡散する。ＨＩＶ、ＦＩＶおよびＳＩＶは、Ｔリンパ球（即ち、Ｔ細胞）にも容易に感染する。本発明の一実施形態において、レンチウイルスは、ＨＩＶではない。
用語「プロモーター」は、本明細書において、ＲＮＡポリメラーゼが結合するＤＮＡ鎖の認識部位を指す。プロモーターは、ＲＮＡポリメラーゼと開始複合体を形成して、転写活性を開始および駆動する。この複合体は、「エンハンサー」と命名された活性化配列または「サイレンサー」と命名された阻害配列により修飾され得る。
用語「形質転換」、「トランスフェクション」および「形質導入」は、レシピエント細胞への核酸、例えば、ウイルスベクターの導入を指す。
本明細書において、用語「被験体」は、温血動物、好ましくは、ヒトを含む哺乳動物を含む。好ましい実施形態において、被験体は、霊長類である。さらにより好ましい実施形態において、霊長類は、ヒトである。
本明細書において、様々な形態の用語「モジュレートする」は、刺激（例えば、特定の応答または活性の増大または上方調節）および阻害（例えば、特定の応答または活性の減少または下方調節）を含むことが意図される。
本明細書において、用語「接触」（即ち、薬剤と細胞との接触）は、薬剤および細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで共にインキュベートする（例えば、薬剤を培養中の細胞に添加する）または薬剤および被験体の細胞がｉｎ ｖｉｖｏで接触されるように薬剤を被験体に投与することを含むことが意図される。用語「接触」は、被験体において天然に生じ得る薬剤への細胞の曝露（即ち、天然の生理学的過程の結果として生じ得る曝露）を含むとは意図されない。
本明細書において、用語、被験体への「投与」は、眼内投与または静脈内投与による送達を含む、被験体における所望の位置への組成物の送達のためのいずれか適した経路による、被験体への例えば酸化ストレスを阻害することができる本発明の組成物の分配、送達または適用を含む。それに代えてまたはそれと組み合わせて、送達は、局所的、非経口的または経口経路、脳内注射、筋肉内注射、皮下／皮内注射、静脈内注射、頬側投与、経皮送達、および直腸、結腸、膣内、鼻内または気道経路による投与によるものである。
本発明の方法の様々な追加的な態様は、次のサブセクションにさらに詳細に記載されている。
本発明の方法
本発明は、光受容体細胞を、抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させる薬剤と接触させるステップを一般に含む、光受容体細胞の酸化ストレスを阻害するための方法を提供する。
本発明は、また、被験体における網膜障害、例えば、光受容体細胞の酸化ストレスに関連する網膜障害を処置または予防するための方法を提供する。本方法は、被験体に、抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させる薬剤を投与するステップを一般に含む。
別の態様において、本発明は、被験体における網膜色素変性症を処置または予防するための方法を提供する。このような方法は、被験体に、抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させる薬剤を投与するステップを一般に含む。
本発明は、光受容体細胞、例えば、酸化ストレスに関連する障害によって損なわれた光受容体細胞の生存性を延長するための方法をさらに提供する。本方法は、細胞を、抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させる薬剤と接触させるステップを一般に含む。
本発明の方法において、細胞は、単一の抗酸化防御遺伝子または抗酸化防御タンパク質の組合せと接触させることができる、または被験体にこれを投与することができる。適した抗酸化防御遺伝子は、カタラーゼ、スーパーオキシドジスムターゼ２（ＳＯＤ２）、ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体ガンマコアクチベーター１−アルファ（ＰＧＣ１α）、核因子赤血球由来２様２（ｎｒｆ２）を含む。本発明の方法における使用のための抗酸化防御遺伝子の適した組合せは、カタラーゼ；ＳＯＤ２；ＰＧＣ１α；ｎｒｆ２；カタラーゼおよびＳＯＤ２；ＳＯＤ２およびＰＧＣ１α；ＰＧＣ１αおよびｎｒｆ２；カタラーゼおよびＰＧＣ１α；カタラーゼおよびｎｒｆ２；ＳＯＤ２およびｎｒｆ２；カタラーゼ、ＳＯＤ２およびＰＧＣ１α；ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよびｎｒｆ２；カタラーゼ、ＰＧＣ１αおよびｎｒｆ２；カタラーゼ、ＳＯＤ２およびｎｒｆ２；またはカタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよびｎｒｆ２を含む。
一実施形態において、本明細書に記載されている方法は、ｉｎ ｖｉｔｒｏで行うことができる。例えば、一実施形態において、抗酸化防御タンパク質（例えば、カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２）の細胞内レベルを細胞においてｉｎ ｖｉｔｒｏでモジュレートすることができ、次に、処置された細胞を被験体に投与または再投与することができる。一実施形態において、細胞は、哺乳動物細胞、例えば、ヒト細胞である。方法をｉｎ ｖｉｔｒｏで実施するために、標準方法によって被験体から細胞を得て、抗酸化防御タンパク質（例えば、カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２）の細胞内レベルを刺激する薬剤と共にｉｎ ｖｉｔｒｏでインキュベート（例えば、培養）することができる。細胞を単離するための方法は、当技術分野において周知である。細胞は、同じ被験体に、あるいは細胞のドナーと適合性の別の被験体に再投与することができる。
被験体への細胞の投与のため、被験体に投与する前に、細胞から培養物における残留薬剤を先ず除去することが好ましくなり得る。これは、例えば、細胞の勾配遠心分離によりまたは組織の洗浄により行うことができる。細胞のｅｘ ｖｉｖｏ遺伝子修飾と続く被験体への再投与のための方法は、当技術分野において周知であり、例えば、参照により本明細書にその内容全体が援用される米国特許第５，３９９，３４６号に記載されている。
一実施形態において、本発明は、本明細書に記載されている治療有効量の薬剤を被験体に投与することによる、ｉｎ ｖｉｖｏにおける抗酸化防御タンパク質（例えば、カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２）の細胞内レベルのモジュレーションのための方法を提供する。例えば、カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２の細胞内レベルは、光受容体細胞の細胞酸化ストレスに関連する網膜障害等、網膜障害を処置または予防するようにモジュレートすることができる。
特許請求されているモジュレーション方法は、天然に存在する事象を含むことを意図しない。例えば、用語「薬剤」または「モジュレーター」は、被験体の細胞によって産生される内在性メディエーターを包括することを意図しない。
障害の処置および／または予防のための本発明の方法の適用は、長期または短期で、障害の治癒、障害に伴う少なくとも１種の症状の減少、または単純に被験体への一過性の有益な効果をもたらすことができる。したがって、本明細書において、用語「処置する」、「処置」および「処置すること」は、このような状態またはこのような状態の少なくとも１種の症状を治癒、癒す、緩和、軽減、変更、矯正、寛解、改善または影響を与える目的で、例えば、光受容体細胞の酸化ストレスに関連する網膜障害を患う、またはこのような状態に対し感受性の被験体への、本明細書に記載されている薬剤の適用または投与を含む。本明細書において、状態の再発が、低下される、遅らせる、遅延されるまたは予防される場合においても、状態は「処置される」。
本発明のレジメンを使用した処置に適した被験体は、酸化ストレスに関連する網膜障害となるべきであるまたはその発症に対し感受性である。例えば、被験体は、障害の発症に遺伝的に素因がある場合がある。あるいは、網膜色素変性症等の網膜障害に関連する、視力、錐体および／または杆体細胞の死滅速度、夜間視力、周辺視力、網膜血管の減弱ならびに他の眼底検査上の因子等が挙げられるがこれらに限定されない因子の異常進行は、網膜障害の存在またはその素因を示すことができる。
本明細書に記載されている薬剤は、必要に応じて投与されて、所望の効果を達成することができ、状態の重症度、被験体の年齢および病歴、ならびに組成物の性質、例えば、遺伝子の正体または影響される生化学的経路等が挙げられるがこれらに限定されない、種々の因子に依存する。様々な実施形態において、組成物は、１日に少なくとも２、３、４、５または６回投与することができる。その上、治療または予防レジメンは、少なくとも約２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３または２４週間の期間に及び得る。
カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２の細胞内レベルを上方調節する薬剤の能力は、本明細書に記載されている通りに、例えば、細胞生存性をモジュレートする薬剤の能力を決定することにより（例えば、アポトーシスのモジュレーション）、ラミンＡもしくはカスパーゼ３の切断；活性酸素種の産生；アクロレインの免疫組織化学的検出、および酸化剤（例えば、パラコート）への細胞の曝露後の網膜抽出物におけるカルボニル付加物のＥＬＩＳＡを使用した酸化の評価；ならびに／または光受容体特異的オプシンの発現およびタンパク質合成により決定することができる。
様々な実施形態において、本発明の方法は、処置の有効性をモニターするステップをさらに含む。例えば、網膜色素変性症等の網膜障害に関連する、視力、錐体および／または杆体細胞の死滅速度、夜間視力、周辺視力、網膜血管の減弱ならびに他の眼底検査上の変化をモニターして、処置の有効性を評価することができる。その上、処置および／または予防の対象である特定の障害に関連する細胞の死滅速度をモニターすることができる。あるいは、例えば、リン脂質産生によって測定される、このような細胞の生存性をモニターすることができる。後述する実施例セクションに記載されているアッセイを使用して、処置の有効性をモニターすることもできる（例えば、網膜電図検査−ＥＲＧ）。
一実施形態において、本発明の方法における使用のための薬剤は、抗酸化防御タンパク質、例えば、スーパーオキシドジスムターゼ２（ＳＯＤ２）、カタラーゼ、ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体ガンマコアクチベーター１−アルファ（ＰＧＣ１α）および核因子赤血球由来２様２（ｎｒｆ２）（またはこれらの組合せ）をコードする核酸分子である。
一実施形態において、核酸分子は、スーパーオキシドジスムターゼ２（ＳＯＤ２）をコードする。ＳＯＤ２は、鉄／マンガンスーパーオキシドジスムターゼファミリーのメンバーである。これは、ホモ四量体を形成し、サブユニット当たり１個のマンガンイオンに結合するミトコンドリアタンパク質をコードする。このタンパク質は、酸化的リン酸化のスーパーオキシド副産物に結合し、これを過酸化水素および二原子酸素に変換する。ＳＯＤ２には３種の選択的転写物が存在し、それらのアミノ酸配列は公知であり、例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受託番号ＧＩ：６７７８２３０４、ＧＩ：６７７８２３０６およびＧＩ：６７７８２３０８に見出すことができる。
別の実施形態において、核酸分子は、カタラーゼをコードする。カタラーゼは、ほぼ全ての好気性細胞のペルオキシソームに存在するヘム酵素である。カタラーゼは、活性酸素種過酸化水素を水および酸素に変換し、これにより、過酸化水素の毒性効果を和らげる。カタラーゼのアミノ酸配列は公知であり、例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受託番号ＧＩ：２６０４３６９０６に見出すことができる。
別の実施形態において、核酸分子は、ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体ガンマコアクチベーター１−アルファ（ＰＧＣ１α）をコードする。ＰＧＣ１αは、エネルギー代謝に関与する遺伝子を調節する転写コアクチベーターである。ＰＧＣ１αは、ＰＰＡＲガンマと相互作用し、これは、複数の転写因子とＰＧＣ１αとの相互作用を可能にする。ＰＧＣ１αは、ｃＡＭＰ応答エレメント結合タンパク質（ＣＲＥＢ）および核呼吸因子（ＮＲＦ）と相互作用し、その活性を調節することができる［核呼吸因子の維持に正確］。これは、外部生理学的刺激およびミトコンドリア生合成の調節の間に直接的なリンクをもたらす。ＰＧＣ１αのアミノ酸配列は公知であり、例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受託番号ＧＩ：１１６２８４３７４に見出すことができる。
別の実施形態において、核酸分子は、塩基性ロイシンジッパー（ｂＺＩＰ）タンパク質の小ファミリーのメンバーの転写因子である、核因子（赤血球由来２）様２（ｎｒｆ２）をコードする。コードされた転写因子は、そのプロモーターにおいて抗酸化応答エレメント（ＡＲＥ）を含有する遺伝子を調節する。ｎｒｆ２には３種の選択的転写物が存在し、それらのアミノ酸配列は公知であり、例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受託番号ＧＩ：３７２６２０３４７、ＧＩ：３７２６２０３４８およびＧＩ：３７２６２０３４６に見出すことができる。
一実施形態において、錐体細胞等、光受容体細胞の生存性または生存は、短期生存性、例えば、約１週間、約２週間、約３週間、約４週間、約５週間、約６週間、約７週間、約８週間、約３年間、約４年間、約５年間、約１０年間、約１５年間、約２０年間、約２５年間、約３０年間、約４０年間、約５０年間、約６０年間、約７０年間および約８０年間である。
よって、上述の本発明の方法は、光受容体細胞の酸化ストレスおよび関連する障害の処置または予防に使用することができる。一実施形態において、障害は、網膜色素変性症、加齢性黄斑変性症、錐体杆体ジストロフィーおよび杆体錐体ジストロフィー等が挙げられるがこれらに限定されない網膜障害である。他の実施形態において、網膜障害は、血管漏出および／または成長に関連しない。ある特定の実施形態において、網膜障害は、糖尿病に関連しない。別の実施形態において、網膜障害は、糖尿病性網膜症ではない。さらなる実施形態において、網膜障害は、ＮＡＲＰ（ニューロパチー、運動失調症および網膜色素変性症）ではない。一実施形態において、障害は、錐体および／または杆体細胞の生存性減少に関連する網膜障害である。さらに別の実施形態において、障害は、遺伝的障害である。
一実施形態において、本発明は、障害の発症に対し感受性の被験体を選択し、有効量の本発明の核酸分子、ベクターおよび／または組成物を前記被験体に投与し、これにより、前記被験体における障害を処置または予防することによる、被験体における光受容体細胞の酸化ストレスに関連する網膜障害、例えば網膜色素変性症等、網膜障害を処置または予防する方法を対象とする。
酸化ストレスの結果としての活性酸素種への曝露による変性から光受容体細胞を救うための全体的な戦略は、例えば、抗酸化防御タンパク質（複数可）の発現および／または活性を増大させることにより活性酸素種を阻害および／または除去することにより、過酸素環境を低下または排除させる遺伝子を該細胞に供給することである。
一般に、本発明の核酸分子および／またはベクターは、所望の効果を誘発するため、例えば、光受容体細胞における酸化ストレスを阻害するための治療有効量で提供される。投与される核酸分子および／またはベクターの量は、処置の回数および量の両方に従って、処置される被験体の臨床状態、年齢および体重ならびに障害の重症度等の因子にも依存するであろう。投与に必要とされる活性成分の正確な量は、遺伝子療法専門家の判断に依存し、個々の患者それぞれに特定のものとなる。例えば、本発明の核酸分子を含むウイルスベクターは、１ｍｌ当たり約１×１０５〜約１×１０９コロニー形成単位（ｃｆｕ）に及ぶ力価で投与されるが、範囲は変動し得る。好ましい力価は、約１×１０６〜約１×１０８ｃｆｕ／ｍｌに及ぶ。
治療有効量（即ち、有効投薬量）の本発明の核酸分子および／またはベクターは、約０．００１〜３０ｍｇ／ｋｇ体重、好ましくは、約０．０１〜２５ｍｇ／ｋｇ体重、より好ましくは、約０．１〜２０ｍｇ／ｋｇ体重、さらにより好ましくは、約１〜１０ｍｇ／ｋｇ、２〜９ｍｇ／ｋｇ、３〜８ｍｇ／ｋｇ、４〜７ｍｇ／ｋｇまたは５〜６ｍｇ／ｋｇ体重に及び得る。当業者であれば、疾患または障害の重症度、以前の処置、被験体の一般的な健康状態および／または年齢ならびに存在する他の疾患等が挙げられるがこれらに限定されない、ある特定の因子が、被験体の有効な処置に必要とされる投薬量に影響し得ることを認めるであろう。さらに、治療有効量の本発明の核酸分子および／またはベクターによる被験体の処置は、単一の処置を含むことができる、あるいは好ましくは、一連の処置を含むことができる。処置に使用される有効投薬量が、特定の処置の経過にわたり増加または減少し得ることも認められるであろう。投薬量の変化は、本明細書に記載されている診断アッセイの結果に起因し得る。医薬組成物は、投与のための説明書と共に、容器、包装またはディスペンサーに含まれていてよい。
用語「予防的」または「治療的」処置は、被験体への対象組成物のうち１種または複数の投与を指す。望まれない状態（例えば、宿主動物の疾患または他の望まれない状態）の臨床的な症状発現に先立ち投与される場合、処置は予防的である、即ち、望まれない状態の発症から宿主を保護する一方、望まれない状態の症状発現の後に投与される場合、処置は治療的である（即ち、現存する望まれない状態またはそれから生じる副作用を縮小、寛解または維持することが意図される）。
「治療有効量」は、本明細書において、神経変性疾患を処置するために患者に投与される場合、疾患の処置をもたらすのに十分な（例えば、現存する疾患または疾患の１種もしくは複数の症状を縮小、寛解または維持することにより）、本発明の核酸分子および／またはベクターの量を含むことが意図される。「治療有効量」は、核酸分子、ペプチドおよび／またはベクター、核酸分子および／またはベクターが投与される方法、疾患およびその重症度、ならびに病歴、年齢、体重、家族歴、遺伝的構成、神経変性疾患発現によって媒介される病理学的過程のステージ、あるとすれば先行するまたは同時的処置の種類、ならびに処置しようとする患者の他の個々の特徴に応じて変動し得る。
「予防有効量」は、本明細書において、例えば網膜障害を未だ経験していないまたはその症状を呈していないが、該疾患の素因がある可能性がある被験体に投与される場合、疾患または疾患の１種もしくは複数の症状を予防または寛解するのに十分な、核酸分子および／またはベクターの量を含むことが意図される。疾患の寛解は、疾患の経過を遅らせる、または後に発症する疾患の重症度を低下させることを含む。「予防有効量」は、核酸分子および／またはベクター、核酸分子および／またはベクターが投与される方法、疾患リスクの程度、ならびに病歴、年齢、体重、家族歴、遺伝的構成、あるとすれば先行するまたは同時的処置の種類、ならびに処置しようとする患者の他の個々の特徴に応じて変動し得る。
「治療有効量」または「予防有効量」は、いずれかの処置に適用できる妥当な利益／リスク比で、ある所望の局所または全身性効果を生じる核酸分子および／またはベクターの量も含む。本発明の方法において用いられる核酸分子および／またはベクターは、このような処置に適用できる妥当な利益／リスク比を生じるために十分な量で投与することができる。
「予防する」または「予防」は、疾患または障害を得るリスクの低下を指す（即ち、疾患に曝露され得るまたはその素因があるが、該疾患を未だ経験していないまたはその症状を呈していない患者において、該疾患の臨床症状のうち少なくとも１種を発症させない）。
本明細書において、用語「処置する」または「処置」は、検出可能であれ検出不能であれ、１種または複数の症状の緩和または寛解、感染の程度の縮小、感染の安定化された（即ち、悪化していない）状態、感染性状態の寛解または抑止等が挙げられるがこれらに限定されない、有益なまたは所望の結果を指す。「処置」は、処置の非存在下で予想される生存と比較した生存の延長を意味することもできる。
本発明のある特定の実施形態において、薬剤、例えば、本発明の単離された核酸分子および／またはベクターは、追加的な治療剤または処置と組み合わせて投与される。組成物および追加的な治療剤は、同じ組成物において組み合わせて投与することができる、あるいは追加的な治療剤は、別々の組成物の一部としてまたは本明細書に記載されている別の方法によって投与することができる。
本発明の方法における使用に適した追加的な治療剤の例として、網膜色素変性症および加齢性黄斑変性症等、網膜障害を処置することが公知の薬剤が挙げられ、例えば、脂溶性ビタミン（例えば、ビタミンＡ、ビタミンＥおよびアスコルビン酸）、カルシウムチャネル遮断薬（例えば、ジルチアゼム）、炭酸脱水酵素阻害剤（例えば、アセタゾールアミドおよびメタゾールアミド）、抗血管新生薬（例えば、抗ＶＥＧＦ抗体）、成長因子（例えば、杆体由来錐体生存因子（ＲｄＣＶＦ）、ＢＤＮＦ、ＣＮＴＦ、ｂＦＧＦおよびＰＥＤＦ）、抗酸化剤、他の遺伝子療法剤（例えば、オプトジェネティクス遺伝子療法、例えば、チャネルロドプシン、メラノプシンおよびハロロドプシン）および例えば、ミュラー細胞を光受容体前駆体に再プログラミングすることにより光受容体再生を駆動する化合物（例えば、アルファ−アミノアジペート）が挙げられる。本発明の処置方法と組み合わせた使用のための例示的な処置は、例えば、網膜および／または網膜色素上皮移植、幹細胞療法、網膜プロテーゼ、レーザー光凝固術、光ダイナミック療法、低視力者用補助器具植え込み、黄斑下外科手術ならびに網膜位置変更（ｒｅｔｉｎａｌ ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｉｏｎ）を含む。
本発明の方法における使用のための薬剤
刺激性薬剤
本発明の方法は、細胞における抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させる刺激性薬剤を使用することができる。このような刺激性薬剤の例として、タンパク質、核酸分子、例えば、核酸分子を含む発現ベクター、ならびに細胞における抗酸化防御タンパク質の発現および／または活性を増大させるタンパク質の発現および／または活性を刺激する化学薬剤が挙げられる。
好ましい刺激性薬剤は、目的のタンパク質をコードする核酸分子である。例えば、標準分子生物学技法を使用して、ｃＤＮＡ（全長または部分的ｃＤＮＡ配列）を組換え発現ベクターにクローニングし、このベクターを細胞にトランスフェクトする。ｃＤＮＡは、例えば、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を使用した増幅により、または適切なｃＤＮＡライブラリーのスクリーニングにより得ることができる。
ｃＤＮＡの単離または増幅後に、ＤＮＡ断片を適した発現ベクターに導入する。例えば、宿主細胞におけるタンパク質の発現に適した形態の目的のタンパク質をコードする核酸分子は、目的のタンパク質をコードする核酸分子の核酸配列に基づくヌクレオチド配列を使用して調製することができる。
一実施形態において、刺激性薬剤は、誘導性構築物に存在することができる。別の実施形態において、刺激性薬剤は、構成的発現をもたらす構築物に存在することができる。
一実施形態において、本発明の核酸分子は、ベクター、例えば、組換え発現ベクターにおいて、細胞、例えば、光受容体細胞にまたは被験体に送達することができる。別の実施形態において、本発明の核酸分子は、ベクターの非存在下で、細胞、例えば、光受容体細胞にまたは被験体に送達することができる。
本明細書において、用語「ベクター」は、それに連結された別の核酸を輸送することができる核酸分子を指す。ベクターの１種類は、追加的なＤＮＡセグメントをそれにライゲーションし得る環状二本鎖ＤＮＡループを指す「プラスミド」である。別の種類のベクターは、ウイルスベクターであり、追加的なＤＮＡセグメントをウイルスゲノムにライゲーションし得る。ある特定のベクターは、それが導入された宿主細胞において自律複製することができる（例えば、細菌複製起点を有する細菌ベクターおよびエピソーム哺乳動物ベクター）。他のベクター（例えば、非エピソーム哺乳動物ベクター）は、宿主細胞への導入後に宿主細胞のゲノムに組み込まれ、これにより、宿主ゲノムと共に複製される。さらに、ある特定のベクターは、それに動作可能に連結された遺伝子の発現を導くことができる。このようなベクターは、本明細書において、「発現ベクター」と称される。一般に、組換えＤＮＡ技法において有用な発現ベクターは、多くの場合、プラスミドの形態である。本明細書において、「プラスミド」および「ベクター」は、互換的に使用することができる。しかし、本発明は、等価な機能を果たすウイルスベクター（例えば、複製欠損レトロウイルス、アデノウイルスおよびアデノ随伴ウイルス）等、その他の形態の発現ベクターを含むことが意図される。
本発明の組換え発現ベクターは、宿主細胞における核酸の発現に適した形態の本発明の核酸を含み、これは、組換え発現ベクターが、発現しようとする核酸配列に動作可能に連結された、発現のために使用される宿主細胞に基づいて選択された１種または複数の調節配列を含むことを意味する。組換え発現ベクター内において、「作動可能に連結した」は、目的のヌクレオチド配列が、ヌクレオチド配列の発現を可能にする様式で調節配列（複数可）に連結されている（例えば、ｉｎ ｖｉｔｒｏ転写／翻訳系において、またはベクターが宿主細胞に導入される場合は宿主細胞において）ことを意味することが意図される。用語「調節配列」は、プロモーター、エンハンサーおよび他の発現制御エレメント（例えば、ポリアデニル化シグナル）を含むことが意図される。このような調節配列は、例えば、Ｇｏｅｄｄｅｌ；Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ： Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ １８５巻、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、Ｃａｌｉｆ．（１９９０年）に記載されている。調節配列は、多くの種類の宿主細胞においてヌクレオチド配列の構成的発現を導く配列、構成的に活性を有する配列、誘導性の配列、およびある特定の宿主細胞においてのみヌクレオチド配列の発現を導く配列（例えば、組織特異的調節配列）を含む。当業者であれば、発現ベクターの設計が、形質転換するべき宿主細胞の選択、所望のタンパク質発現レベルその他等の因子に依存し得ることを認められよう。本発明の発現ベクターを宿主細胞に導入して、これにより、本明細書に記載されている核酸にコードされた、融合タンパク質またはその一部を含むタンパク質またはその一部を産生することができる。
一実施形態において、抗酸化防御タンパク質をコードする核酸分子は、哺乳動物発現ベクターを使用して、哺乳動物細胞において発現される。哺乳動物発現ベクターの例として、ｐＣＤＭ８（Ｓｅｅｄ， Ｂ．（１９８７年）Ｎａｔｕｒｅ ３２９巻：８４０頁）およびｐＭＴ２ＰＣ（Ｋａｕｆｍａｎら（１９８７年）ＥＭＢＯ Ｊ．６巻：１８７〜１９５頁）が挙げられる。哺乳動物細胞において使用される場合、発現ベクターの制御機能は、多くの場合、ウイルス調節エレメントによってもたらされる。
ある特定の実施形態において、本発明の核酸分子は、ウイルスベクター内に含有され、細胞、例えば、光受容体細胞にまたは被験体に送達され得る。好ましくは、ウイルスベクターは、遺伝子療法のためのその使用が当技術分野において周知のベクターである。ベクターまたはビリオンの形成のための技法は、「Ｗｏｒｋｉｎｇ Ｔｏｗａｒｄ Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ」、Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ＤＮＡの第２８章、第２版、Ｗａｔｓｏｎ， Ｊ． Ｄ．ら編、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ： Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｂｏｏｋｓ、５６７〜５８１頁（１９９２年）に全般的に記載されている。適したウイルスベクターまたはビリオンの概説は、Ｗｉｌｓｏｎ， Ｊ． Ｍ．、Ｃｌｉｎ． Ｅｘｐ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．１０７巻（追補１号）：３１〜３２頁（１９９７年）、ならびにＮａｋａｎｉｓｈｉ， Ｍ．、Ｃｒｉｔ． Ｒｅｖ． Ｔｈｅｒａｐｅｕ．
Ｄｒｕｇ Ｃａｒｒｉｅｒ Ｓｙｓｔｅｍｓ １２巻：２６３〜３１０頁（１９９５年）；Ｒｏｂｂｉｎｓ， Ｐ． Ｄ．ら、Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１６巻：３５〜４０頁（１９９８年）；Ｚｈａｎｇ， Ｊ．ら、Ｃａｎｃｅｒ Ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ Ｒｅｖ．１５巻：３８５〜４０１頁（１９９６年）；およびＫｒａｍｍ， Ｃ． Ｍ．ら、Ｂｒａｉｎ Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ ５巻：３４５〜３８１頁（１９９５年）に記されている。このようなベクターは、ＲＮＡ（Ｖｉｌｅ， Ｒ． Ｇ．ら、Ｂｒ． Ｍｅｄ Ｂｕｌｌ．５１巻：１２〜３０頁（１９９５年））またはＤＮＡ（Ａｌｉ Ｍ．ら、Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．１巻：３６７〜３８４頁（１９９４年））を含有するウイルスに由来し得る。
遺伝子療法技術分野において利用され、よって、本発明における使用に適したウイルスベクター系の例として、次のものが挙げられる：レトロウイルス（Ｖｉｌｅ， Ｒ． Ｇ．、上記参照；米国特許第５，７４１，４８６号および同第５，７６３，２４２号）；アデノウイルス（Ｂｒｏｄｙ， Ｓ． Ｌ．ら、Ａｎｎ． Ｎ．Ｙ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．７１６巻：９０〜１０１頁（１９９４年）；Ｈｅｉｓｅ， Ｃ．ら、Ｎａｔ． Ｍｅｄ．３巻：６３９〜６４５頁（１９９７年））；アデノウイルス／レトロウイルスキメラ（Ｂｉｌｂａｏ， Ｇ．ら、ＦＡＳＥＢ Ｊ．１１巻：６２４〜６３４頁（１９９７年）；Ｆｅｎｇ， Ｍ．ら、Ｎａｔ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１５巻：８６６〜８７０頁（１９９７年））；アデノ随伴ウイルス（Ｆｌｏｔｔｅ， Ｔ． Ｒ．およびＣａｒｔｅｒ，
Ｂ． Ｊ．、Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．２巻：３５７〜３６２頁（１９９５年）；米国特許第５，７５６，２８３号）；単純ヘルペスウイルスＩまたはＩＩ（Ｌａｔｃｈｍａｎ， Ｄ． Ｓ．、Ｍｏｌ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２巻：１７９〜１９５頁（１９９４年）；米国特許第５，７６３，２１７号；Ｃｈａｓｅ， Ｍ．ら、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１６巻：４４４〜４４８頁（１９９８年））；パルボウイルス（Ｓｈａｕｇｈｎｅｓｓｙ， Ｅ．ら、Ｓｅｍｉｎ Ｏｎｃｏｌ．２３巻：１５９〜１７１頁（１９９６年））；細網内皮症ウイルス（Ｄｏｎｂｕｒｇ， Ｒ．、Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐ．２巻：３０１〜３１０頁（１９９５年））。本発明の遺伝子療法方法において、染色体外複製ベクターを使用することもできる。このようなベクターは、例えば、参照により本明細書にその内容全体が援用されるＣａｌｏｓ， Ｍ． Ｐ．（１９９６年）Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．１２巻：４６３〜４６６頁に記載されている。遺伝子送達のためのベクターとして使用することができる他のウイルスは、ポリオウイルス、パピローマウイルス、ワクシニアウイルス、レンチウイルスと共に、２種またはそれを超えるウイルスの有利な側面を取り込むハイブリッドまたはキメラベクターを含む（Ｎａｋａｎｉｓｈｉ， Ｍ．（１９９５年）Ｃｒｉｔ． Ｒｅｖ． Ｔｈｅｒａｐｅｕ． Ｄｒｕｇ Ｃａｒｒｉｅｒ Ｓｙｓｔｅｍｓ １２巻：２６３〜３１０頁； Ｚｈａｎｇ， Ｊ．ら（１９９６年）Ｃａｎｃｅｒ Ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ Ｒｅｖ．１５巻：３８５〜４０１頁；Ｊａｃｏｂｙ， Ｄ． Ｒ．ら（１９９７年）Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ４巻：１２８１〜１２８３頁）。
本明細書において、用語「レトロウイルス」は、その複製サイクルにおいて逆転写酵素を利用するＲＮＡウイルスに関連して使用されている。レトロウイルスゲノムＲＮＡは、逆転写酵素によって二本鎖ＤＮＡに変換される。この二本鎖ＤＮＡ型のウイルスは、感染した細胞の染色体に組み込まれることが可能である；組み込まれると、これは「プロウイルス」と称される。プロウイルスは、ＲＮＡポリメラーゼＩＩの鋳型として機能し、新たなウイルス粒子の産生に必要とされる構造タンパク質および酵素をコードするＲＮＡ分子の発現を導く。プロウイルスの各末端は、「長い末端反復」または「ＬＴＲ」と呼ばれる構造である。ＬＴＲは、転写制御エレメント、ポリアデニル化シグナルならびにウイルスゲノムの複製および組み込みに必要とされる配列を含む、多数の調節シグナルを含有する。ＬＴＲは、数百塩基対の長さとなり得る。
用語「ＡＡＶベクター」は、ＡＡＶ−１、ＡＡＶ−２、ＡＡＶ−３、ＡＡＶ−４、ＡＡＶ−５またはＡＡＶＸ７を限定することなく含む、アデノ随伴ウイルス血清型に由来するベクターを指す。「ｒＡＡＶベクター」は、ＡＡＶヌクレオチド配列と共に異種ヌクレオチド配列を含むベクターを指す。ｒＡＡＶベクターは、ウイルスの生成に、シスで１４５塩基末端反復のみを必要とする。他のあらゆるウイルス配列は不必要であり、トランスで供給され得る（Ｍｕｚｙｃｚｋａ（１９９２年）Ｃｕｒｒ． Ｔｏｐｉｃｓ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５８巻：９７頁）。典型的には、ｒＡＡＶベクターゲノムは、ベクターによって効率的にパッケージングされ得る導入遺伝子のサイズを最大化するために、逆方向末端反復（ＩＴＲ）配列のみを保持する。ＩＴＲは、野生型ヌクレオチド配列である必要はなく、配列が機能的レスキュー、複製およびパッケージングをもたらす限りにおいて、例えば、ヌクレオチドの挿入、欠失または置換により変更されていてよい。特定の実施形態において、ＡＡＶベクターは、ＡＡＶ２／５またはＡＡＶ２／８ベクターである。適したＡＡＶベクターは、例えば、参照により本明細書にその内容全体が援用される米国特許第７，０５６，５０２号およびＹａｎら（２００２年）Ｊ． Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ７６巻（５号）：２０４３〜２０５３頁に記載されている。
本明細書において、用語「レンチウイルス」は、ゆっくり発症する疾患を生じるレトロウイルスの群（または属）を指す。この群内に含まれるウイルスは、ＨＩＶ（ヒト免疫不全ウイルス；ＨＩＶ１型およびＨＩＶ２型等が挙げられるがこれらに限定されない）、ヒト後天性免疫不全症候群（ＡＩＤＳ）の病原因子；ヒツジにおける脳炎（ビスナ）または肺炎（マエディ）の原因となるビスナ−マエディ；ヤギにおける免疫不全、関節炎および脳症の原因となるヤギ関節炎−脳炎ウイルス；ウマにおける自己免疫性溶血性貧血および脳症の原因となるウマ感染性貧血ウイルス（ＥＩＡＶ）；ネコにおける免疫不全の原因となるネコ免疫不全ウイルス（ＦＩＶ）；ウシ類におけるリンパ節症、リンパ球増加症およびおそらく中枢神経系感染症の原因となるウシ免疫不全ウイルス（ＢＩＶ）；ならびに類人霊長類における免疫不全および脳症の原因となるサル免疫不全ウイルス（ＳＩＶ）を含む。これらのウイルスによって引き起こされる疾患は、長いインキュベーション期間および長引く経過によって特徴付けられる。通常、このウイルスは、単球およびマクロファージに潜在的に感染して、そこから他の細胞へと拡散する。ＨＩＶ、ＦＩＶおよびＳＩＶは、Ｔリンパ球（即ち、Ｔ細胞）にも容易に感染する。本発明の一実施形態において、レンチウイルスは、ＨＩＶではない。
本明細書において、用語「アデノウイルス」（「Ａｄ」）は、約３６ｋｂの直鎖状ゲノムを有する二本鎖ＤＮＡウイルスの群を指す。例えば、Ｂｅｒｋｎｅｒら、Ｃｕｒｒ． Ｔｏｐ． Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１５８巻：３９〜６１頁（１９９２年）を参照されたい。一部の実施形態において、アデノウイルスに基づくベクターは、Ａｄ−２またはＡｄ−５に基づくベクターである。例えば、Ｍｕｚｙｃｚｋａ、Ｃｕｒｒ． Ｔｏｐ． Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１５８巻：９７〜１２３頁、１９９２年；Ａｌｉら、１９９４年、Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ １巻：３６７〜３８４頁；米国特許第４，７９７，３６８号および同第５，３９９，３４６号を参照されたい。アデノウイルス株Ａｄ５型ｄｌ３２４または他の株のアデノウイルス（例えば、Ａｄ２、Ａｄ３、Ａｄ７等）に由来する適したアデノウイルスベクターは、当業者に周知である。組換えアデノウイルスは、有効な遺伝子送達ビヒクルとなるために分裂する細胞を必要としないという点において有利であり、多種多様な細胞型の感染に使用することができる。その上、導入されたアデノウイルスＤＮＡ（およびその中に含有される外来ＤＮＡ）は、宿主細胞のゲノムに組み込まれず、エピソームのままであり、これにより、導入されたＤＮＡが宿主ゲノムに組み込まれるようになる状況（例えば、レトロウイルスＤＮＡ）における挿入変異誘発の結果生じ得る潜在的な問題を回避する。さらに、外来ＤＮＡのためのアデノウイルスゲノムの運搬容量は、他の遺伝子送達ベクターと比べて大きい（最大８キロベース）（Ｈａｊ−Ａｈｍａｎｄら、Ｊ． Ｖｉｒｏｌ．５７巻、２６７〜２７３頁［１９８６年］）。
一実施形態において、アデノウイルスは、複製欠損アデノウイルスである。現在使用されている大部分の複製欠損アデノウイルスベクターは、ウイルスＥ１およびＥ３遺伝子の全体または部分が欠失されているが、アデノウイルス遺伝物質の８０％も保持する。全ウイルスコード領域を欠失したアデノウイルスベクターもＫｏｃｈａｎｅｋらおよびＣｈａｍｂｅｒｌａｉｎら（米国特許第５，９８５，８４６号および米国特許第６，０８３，７５０号）によって記載されている。このようなウイルスは、「ヘルパー」ウイルスと称される第２のウイルスによってもたらされるウイルス産物の非存在下では、ウイルスとして複製することができない。
一実施形態において、アデノウイルスベクターは、「ガットレス（ｇｕｔｌｅｓｓ）」ベクターである。このようなベクターは、最小量のアデノウイルスＤＮＡを含有し、いかなるアデノウイルス抗原も発現することができない（そのため、用語「ガットレス」）。ガットレス複製欠損Ａｄベクターは、ガットレス複製欠損Ａｄベクターが遺伝子療法において使用される際に、ウイルスタンパク質に対し免疫学的応答を生じるアデノウイルス遺伝子を発現する問題を完全に排除しつつ、外来ＤＮＡの大型インサートを収容する顕著な利点をもたらす。ガットレス複製欠損Ａｄベクターを産生するための方法は、例えば、Ｋｏｃｈａｎｅｋらに対する米国特許第５，９８１，２２５号、ならびにＣｈａｍｂｅｒｌａｉｎらに対する米国特許第６，０６３，６２２号および同第６，４５１，５９６号；Ｐａｒｋｓら、ＰＮＡＳ ９３巻：１３５６５頁（１９９６年）およびＬｉｅｂｅｒら、Ｊ． Ｖｉｒｏｌ．７０巻：８９４４〜８９６０頁（１９９６年）に記載されている。
別の実施形態において、アデノウイルスベクターは、「条件的に複製型のアデノウイルス」（「ＣＲＡｄ」）である。ＣＲＡｄは、（ｉ）ウイルスプロモーターを組織特異的プロモーターに置き換えること、または（ｉｉ）標的細胞によってのみ補償される複製に重要なウイルス遺伝子の欠失のいずれかにより、特異的な細胞において優先的に複製するように遺伝子改変されている。当業者であれば、上皮細胞特異的プロモーターを同定することができよう。
他の技術分野で公知のアデノウイルスベクターを本発明の方法において使用することができる。例として、修飾された指向性のための組換え線維タンパク質を有するＡｄベクター（例えば、ｖａｎ Ｂｅｕｓｅｃｈｅｍら、２０００年、Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．７巻：１９４０〜１９４６頁に記載）、プロテアーゼ前処理ウイルスベクター（例えば、Ｋｕｒｉｙａｍａら、２０００年、Ｈｕｍ． Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．１１巻：２２１９〜２２３０頁に記載）、Ｅ２ａ温度感受性変異体Ａｄベクター（例えば、Ｅｎｇｅｌｈａｒｄｔら、１９９４年、Ｈｕｍ． Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．５巻：１２１７〜１２２９頁に記載）および「ガットレス」Ａｄベクター（例えば、Ａｒｍｅｎｔａｎｏら、１９９７年、Ｊ． Ｖｉｒｏｌ．７１巻：２４０８〜２４１６頁；Ｃｈｅｎら、１９９７年、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ９４巻：１６４５〜１６５０頁；Ｓｃｈｉｅｄｅｒら、１９９８年、Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ １８巻：１８０〜１８３頁に記載）が挙げられる。
特定の実施形態において、本発明の方法における使用のためのウイルスベクターは、ＡＡＶベクターである。特定の実施形態において、ウイルスベクターは、ＡＡＶ２／５またはＡＡＶ２／８ベクターである。このようなベクターは、例えば、参照により本明細書にその内容全体が援用される米国特許第７，０５６，５０２号に記載されている。別の実施形態において、本発明における使用に適したアデノウイルスベクターは、Ｖ７０８Ｉ変異を有するＡＡＶ２バリアント等、硝子体内投与の際に全網膜細胞型に形質導入することができるアデノウイルスベクターを含むことができる。追加的な適したアデノウイルスベクターは、投与の際にウイルスカプシドに対し液性免疫応答を生じないアデノウイルスベクター（例えば、Ｄａｌｋａｒａら、２０１３年、Ｓｃｉ Ｔｒａｎｓｌ Ｍｅｄ．５巻、１８９ｒａ７６を参照）および例えば、ＡＡＶカプシドタンパク質におけるチロシン残基のリン酸化を防止する変異を有するベクター等、ベクターのユビキチン化およびプロテアソーム媒介性分解の低下によりＡＡＶベクターの核輸送を容易にするアデノウイルスベクター（例えば、Ｐａｎｇら、２０１０年、Ｔｈｅ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｇｅｎｅ ＆ Ｃｅｌｌ Ｔｈｅｒａｐｙ．、１９巻、２号：２３４〜２４２頁に記載）である。
ベクターは、１種または複数のプロモーターまたはエンハンサーを含み、その選択は、当業者に公知であろう。例えば、一般的に使用されるプロモーターは、ポリオーマ、アデノウイルス２、サイトメガロウイルスおよびサルウイルス４０に由来する。適したプロモーターとして、レトロウイルスの長い末端反復（ＬＴＲ）、ＳＶ４０プロモーター、ヒトサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターならびに当業者に公知の他のウイルスおよび真核細胞プロモーターが挙げられるがこれらに限定されない。原核および真核細胞の両方のための他の適した発現系に関して、Ｓａｍｂｒｏｏｋ， Ｊ．、Ｆｒｉｔｓｈ， Ｅ． Ｆ．およびＭａｎｉａｔｉｓ， Ｔ．、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ
Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ．、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、Ｎ．Ｙ．、１９８９年の第１６および１７章を参照されたい。
別の実施形態において、ウイルスベクターは、特定の細胞型において優先的に核酸の発現を導くことができる（例えば、組織特異的調節エレメントが、核酸の発現に使用される）。組織特異的調節エレメントは、当技術分野において公知である。一実施形態において、本発明のベクターおよび方法における使用のための組織特異的プロモーターは、網膜細胞特異的プロモーターである。一実施形態において、網膜細胞特異的プロモーターは、杆体、錐体および双極細胞特異的プロモーターである。一実施形態において、網膜細胞特異的プロモーターは、杆体および錐体特異的プロモーターである。一実施形態において、網膜細胞特異的プロモーターは、杆体特異的プロモーターである。一実施形態において、網膜細胞特異的プロモーターは、錐体特異的プロモーターである。
適した網膜細胞特異的プロモーターは、当技術分野において公知であり、例えば、ロドプシン調節配列、Ｎｒｌ、Ｃｒｘ、Ｒａｘその他（ＭａｔｓｕｄａおよびＣｅｐｋｏ（２００７年）Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ．１０４巻：１０２７頁）、オプシンプロモーター、例えば、錐体オプシン、光受容体間レチノイド結合タンパク質プロモーター（ＩＲＢＰ１５６）、ロドプシンキナーゼ（ＲＫ）プロモーター、神経ロイシンジッパー（ＮＲＬＬ）プロモーター（例えば、Ｓｅｍｐｌｅ−Ｒｏｗｌａｎｄら（２０１０年）Ｍｏｌｅｃ Ｖｉｓｉｏｎ １６巻：９１６頁を参照）またはこれらの組合せを含む。追加的な適したプロモーターは、錐体アレスチン、Ｃａｂｐ５、Ｃｒａｌｂｐ、Ｎｄｒｇ４、クラスタリン、Ｈｅｓ１、ビメンチンプロモーター、表面抗原分類（ＣＤ４４）プロモーターおよびグリア線維酸性タンパク質（ＧＦＡＰ）プロモーターを含むことができる。
遺伝子療法ベクターの構築および治療目的による罹患した動物へのその導入におけるガイダンスは、先述の刊行物と共に、参照により本明細書にその内容全体が援用される米国特許第５，６３１，２３６号、同第５，６８８，７７３号、同第５，６９１，１７７号、同第５，６７０，４８８号、同第５，５２９，７７４号、同第５，６０１，８１８号およびＰＣＴ公開第ＷＯ９５／０６４８６号において得ることができる。
一般に、目的の細胞のトランスフェクションおよび形質転換のための方法は、当技術分野において公知である。例えば、ウイルスは、目的のニューロン細胞と接触させて置くことができる、あるいは、神経変性障害を患う被験体に注射することができる。
本明細書において、用語「形質転換」および「トランスフェクション」は、外来核酸（例えば、ＤＮＡ）を宿主細胞に導入するための種々の当技術分野において認められている技法を指すことが意図され、リン酸カルシウムもしくは塩化カルシウム共沈殿、ＤＥＡＥ−デキストラン媒介性トランスフェクション、リポフェクション（例えば、ＬＩＰＯＦＥＣＴＩＮ（登録商標）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｃｏｒｐ．、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）、ＬＩＰＯＦＥＣＴＡＭＩＮＥ（登録商標）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、ＦＵＧＥＮＥ（登録商標）（Ｒｏｃｈｅ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ、Ｂａｓｅｌ、Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）、ＪＥＴＰＥＩ（商標）（Ｐｏｌｙｐｌｕｓ−ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ
Ｉｎｃ．、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、ＮＹ）、ＥＦＦＥＣＴＥＮＥ（登録商標）（Ｑｉａｇｅｎ、Ｖａｌｅｎｃｉａ、ＣＡ）、ＤＲＥＡＭＦＥＣＴ（商標）（ＯＺ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）その他等、例えば、市販の試薬を使用）またはエレクトロポレーション（例えば、ｉｎ ｖｉｖｏエレクトロポレーション）を含む。宿主細胞の形質転換またはトランスフェクションに適した方法は、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ．、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、Ｎ．Ｙ．、１９８９年）および他の研究室マニュアルに見出すことができる。
上述の通り、本発明の核酸分子を、ベクターに挿入し、遺伝子療法ベクターとして使用することができる。遺伝子療法ベクターは、例えば、静脈内注射、局所投与（例えば、米国特許第５，３２８，４７０号を参照）、定位的注射（例えば、Ｃｈｅｎら（１９９４年）Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ．、９１巻：３０５４頁を参照）またはｉｎ ｖｉｖｏエレクトロポレーション（例えば、ＭａｔｓｕｄａおよびＣｅｐｋｏ（２００７年）Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ．、１０４巻：１０２７頁を参照）によって被験体に送達することができる。本明細書に記載されている核酸および／または遺伝子療法ベクターの局所投与は、当技術分野におけるいずれか適した方法によって為すことができ、例えば、注射（例えば、硝子体内または網膜下または硝子体下注射）、遺伝子銃、ゲル、油もしくはクリームにおける核酸の局所適用、エレクトロポレーション、脂質に基づくトランスフェクション試薬の使用、経強膜送達、強膜プラグもしくは薬物送達デバイスの植え込みまたは他のいずれかの適したトランスフェクション方法を含む。
一実施形態において、パッケージング細胞株は、所望の核酸分子を運搬するレトロウイルスベクターにより形質導入されて、産生細胞株を形成する。パッケージング細胞は、例えば、エレクトロポレーション、ＣａＰＯ４沈殿またはリポソームの使用を含む、当技術分野において公知のいずれかの手段によって形質導入することができる。トランスフェクトすることができるパッケージング細胞の例として、ＢＯＳＣ２３、Ｂｉｎｇ、ＰＥ５０１、ＰＡ３１７、．ＰＳＩ．−２、．ＰＳＩ．−ＡＭ、ＰＡ１２、Ｔ１９−１４Ｘ、ＶＴ−１９−１７−Ｈ２、．ＰＳＩ．−ＣＲＥ、．ＰＳＩ．−ＣＲＩＰ、ＧＰ＋Ｅ８６、ＧＰ＋ｅｎｖＡｍ１２およびＤＡＮ細胞株が挙げられるがこれらに限定されない。レトロウイルス産生パッケージング細胞およびこれを構築する方法に関するガイダンスは、参照により本明細書にその内容全体が援用されるＳｈｏｒｔら、Ｊ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． Ｒｅｓ．２７巻：４２７〜４３３頁（１９９０年）；Ｍｉｌｌｅｒ， Ａ． Ｄ．、Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．１巻：５〜１４頁（１９９０年）；Ｄａｎｏｓ， Ｏ「Ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｒｅｔｒｏｖｉｒａｌ Ｐａｃｋａｇｉｎｇ Ｃｅｌｌ Ｌｉｎｅｓ」、Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ（Ｍ． Ｃｏｌｌｉｎｓ編）、８巻、Ｔｈｅ Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ Ｉｎｃ．、Ｃｌｉｆｔｏｎ、Ｎ．Ｊ．、１７〜２６頁（１９９１年）；Ｍｕｒｄｏｃｈ， Ｂ．ら、Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ４巻：７４４〜７４９頁（１９９７年）；ならびに米国特許第５，５２９，７７４号および同第５，５９１，６２４号に見出すことができる。
レトロウイルスベクターは、水疱性口内炎ウイルス（ＶＳＶ）エンベロープ糖タンパク質Ｇによりパッケージングされていてもよい（「シュードタイピング」）。このようなベクターは、より安定的であり、１０９ｃｆｕ／ｍｌに濃縮することができ、その直接的注射を可能にする（Ｂｕｒｎｓ， Ｊ． Ｃ．ら（１９９３年）Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ９０巻：８０３３〜８０３７頁）。
次に、産生細胞を所望の位置にまたはその付近に、例えば、眼内にグラフトすることができる。高力価レトロウイルス産生細胞の直接的注射（Ｍｕｒｄｏｃｈ， Ｂ．ら、Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．４巻：７４４〜７４９頁（１９９７年）；Ｏｎｏｄｅｒａ， Ｍ．ら、Ｈｕｍ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．８巻：１１８９〜１１９４頁（１９９７年））は、レトロウイルス配列を用いた効率的ｉｎ ｓｉｔｕ感染を可能にする（Ｒａｉｎｏｖ， Ｎ． Ｇ．ら、Ｃａｎｃｅｒ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．３巻：９９〜１０６頁（１９９６年）；Ｒａｍ， Ｚ．ら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．５３巻：８３〜８８頁（１９９３年））。眼内に注射された産生細胞は、一般に、注射部位から遊走しない。さらに、これが宿主によって拒絶される場合もあるが、拒絶は５〜１０日間は起こらず、その期間までに、付近の細胞のレトロウイルス感染が行われている（Ｒａｍ， Ｚ．ら、Ｊ． Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．７９巻：４００〜４０７頁（１９９３年））。一般に、ベクター産生細胞（ＶＰＣ）投薬量は、約２．５×１０８、約１×１０８、約１．５×１０８、約２×１０８、約２．５×１０８、約３×１０８、約３．５×１０８、約４×１０８、約４．５×１０８、約５×１０８、約５．５×１０８、約６×１０８、約６．５×１０８、約７×１０８、約７．５×１０８、約８×１０８、約８．５×１０８、約９×１０８、約９．５×１０８および約１×１０９ＶＰＣに及ぶ。産生細胞の正確な量は、利用できる注射可能容量、患者の臨床状態および障害の重症度等が挙げられるがこれらに限定されない多数の因子に基づき、当業者によって最終的に決定されるであろう。
産生細胞の正確な量は、利用できる注射可能容量、患者の臨床状態および障害の重症度等が挙げられるがこれらに限定されない多数の因子に基づき、当業者によって最終的に決定されるであろう。
好ましくは、本発明において使用されるウイルスベクターのウイルスゲノムは、複製するその能力を除去または限定するように修飾されるべきであるが、ある特定の細胞を標的化することができる複製ベクターのように、複製条件的ウイルスも本発明において有用となる（例えば、Ｚｈａｎｇ， Ｊ．ら（１９９６年）Ｃａｎｃｅｒ Ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ Ｒｅｖ．１５巻：３８５〜４０１頁を参照）。
核酸分子は、遺伝子移入のための非ウイルス方法、好ましくは、遺伝子療法におけるその使用が当技術分野において公知の方法を使用して送達することもできる（Ｎａｋａｎｉｓｈｉ， Ｍ．、Ｃｒｉｔ． Ｒｅｖ． Ｔｈｅｒａｐｅｕ． Ｄｒｕｇ Ｃａｒｒｉｅｒ Ｓｙｓｔｅｍｓ １２巻：２６３〜３１０頁（１９９５年）；Ａｂｄａｌｌａｈ， Ｂ．ら、Ｂｉｏｌ Ｃｅｌｌ ８５巻：１〜７頁（１９９５年）；Ｚｈａｎｇ， Ｊ．ら、Ｃａｎｃｅｒ Ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ Ｒｅｖ．１５巻：３８５〜４０１頁（１９９６年）；Ｐｈｉｌｉｐｓ， Ｓ． Ｃ．、Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ ２３巻：１３〜１６頁（１９９５年）；Ｌｅｅ， Ｒ． Ｊ．およびＨｕａｎｇ， Ｌ．、Ｃｒｉｔ． Ｒｅｖ． Ｔｈｅｒ． Ｄｒｕｇ Ｃａｒｒｉｅｒ Ｓｙｓｔ．１４巻：１７３〜２０６頁（１９９７年））。遺伝子送達のためのこのような非ウイルスベクターの例として、原核生物ベクター、カチオン性リポソーム、ＤＮＡ−タンパク質複合体、非ウイルスＴ７自己遺伝子ベクター（Ｃｈｅｎ， Ｘ．ら、Ｈｕｍ． Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．９巻：７２９〜７３６頁（１９９８年））、融合性リポソーム、核酸（「ネイキッドＤＮＡ」）の直接的注射、粒子または受容体媒介性遺伝子移入、ＤＮＡ−アデノウイルスコンジュゲートまたは非ウイルスおよびウイルス構成成分に関与する他の分子コンジュゲート等のハイブリッドベクター、スターバーストポリアミドアミンデンドリマー（Ｋｕｋｏｗｓｋａ−Ｌａｔａｌｌｏ， Ｊ． Ｆ．ら、Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９３巻：４８９７〜４９０２頁（１９９６年）；Ｔａｎｇ， Ｍ． Ｘ．ら、Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇ． Ｃｈｅｍ．７巻：７０３〜７１４頁（１９９６年））、カチオン性ペプチド（Ｗｙｍａｎ， Ｔ． Ｂ．ら、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３６巻：３００８〜３０１７頁（１９９７年））ならびに哺乳動物人工染色体（Ａｓｃｅｎｚｉｏｎｉ， Ｆ．ら、Ｃａｎｃｅｒ
Ｌｅｔｔ．１１８巻：１３５〜１４２頁（１９９７年））が挙げられる。
アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、レトロウイルスその他等が挙げられるがこれらに限定されない、核酸送達に使用可能ないかなる適したウイルスを使用してもよい。例えば、ＬＩＡレトロウイルスを使用して、核酸を送達することができる（Ｃｅｐｋｏら（１９９８年）Ｃｕｒｒ． Ｔｏｐ． Ｄｅｖ． Ｂｉｏｌ．３６巻：５１頁；ＤｙｅｒおよびＣｅｐｋｏ（２００１年）Ｊ． Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．２１巻：４２５９頁）。
一実施形態において、単一のウイルスベクターを使用して、複数の核酸分子を運搬する。別の実施形態において、それぞれ１種または複数の目的の遺伝子を運搬する２種のウイルスベクターが使用される。２種のウイルスベクターが使用される場合、両者は、同じまたは異なる種類のウイルスに由来することができ、同時にまたは逐次的に（即ち、特異的な順序を考慮せず）投与することができる。
遺伝子送達は、内部リボソーム進入部位（ＩＲＥＳ）配列を含むことにより増強させて、バイシストロニックメッセージにおける複数の遺伝子の協調的発現を達成することができる。ＩＲＥＳは、ポリオおよび脳心筋炎ウイルス（ＥＭＣＶ）を含むピコルナウイルスの５’非形質導入領域に典型的な５００〜６００ｂｐを含有する配列である。例えば、Ｇｈａｔｔａｓ， Ｉ． Ｒ．ら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ａｎｄ Ｃｅｌｌｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ １１巻：５８４８〜５８５９頁（１９９１年）；Ｍｏｒｇａｎ， Ｒ． Ａ．ら、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ２０巻：１２９３〜１２９９頁（１９９２年）を参照されたい。このアプローチは、インターロイキン−１２の２種のサブユニットの効率的レトロウイルス同時発現のために使用されてきた（Ｔａｈａｒａ， Ｈ．ら、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５４巻：６４６６〜６４７４頁（１９９５年））。同様に、ウイルス配列、ピコルナウイルス２Ａ配列を使用して、２種以上のタンパク質をコードするｍＲＮＡを作製することができる。ウイルス２Ａペプチドは、１６〜２０アミノ酸であり、２種の目的のタンパク質の間に位置する切断ペプチドとして用いることができ、その２種の別々のタンパク質への切断を促進する（Ｆｕｒｌｅｒら、Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒ．８巻：８６４〜８７３頁（２００１年）。別の代替物は、別個のプロモーターの制御下で複数の遺伝子を含有するベクターのためのものである。
一般に、目的の細胞のウイルス感染のための方法は、当技術分野において公知である。ウイルスは、目的のニューロン細胞と接触させて置くことができる、あるいは光受容体細胞酸化ストレスに関連する障害を患う被験体に注射することができる。
本発明の一態様において、治療用核酸分子またはこれを含有するベクターは、薬学的に許容される担体を含有する医薬組成物の形態となる。本明細書において、「薬学的に許容される担体」は、生理学的に適合性のありとあらゆる溶媒、分散媒、コーティング、抗細菌および抗真菌剤、等張性および吸収遅延剤その他を含む。一実施形態において、担体は、眼内、非経口的、静脈内、腹腔内、局所的または筋肉内投与に適している。別の実施形態において、担体は、経口投与に適している。薬学的に許容される担体は、無菌水溶液または分散物および無菌注射用溶液または分散物の即時調製のための無菌粉末を含む。薬学的活性物質のためのこのような媒体および薬剤の使用は、当技術分野において周知である。いずれか従来の媒体または薬剤が、遺伝子療法ベクターと不適合性である場合を除いて、本発明の医薬組成物におけるその使用が企図される。補足的活性化合物を組成物に取り込むこともできる。
特定の実施形態において、本発明の医薬組成物は、注射用組成物の形態で投与される。ベクターは、液体の溶液または懸濁液のいずれかとして、注射剤として調製することができる。調製物は、乳化されていてもよい。適した賦形剤は、例えば、水、食塩水、デキストロース、グリセロール、エタノールその他およびこれらの組合せである。加えて、必要に応じて、調製物は、湿潤剤または乳化剤、ｐＨ緩衝剤、アジュバントまたは免疫賦活薬等、少量の補助的物質を含有することができる。
特定の実施形態において、核酸分子および／またはベクターは、眼内投与に適した組成物に取り込まれる。例えば、組成物は、例えば、注射による、硝子体内、結膜下、テノン下、眼周囲、眼球後、脈絡膜上および／または強膜内投与のために設計して、網膜障害を有効に処置することができる。その上、縫合されたまたは詰め替え可能なドームを投与部位の上に置いて、好まれない方向における活性薬剤の「洗浄除去」、浸出および／または拡散を予防または低下させることができる。
本明細書に記載されている比較的高い粘性の組成物を使用して、例えば、後眼部への注射により、核酸分子および／またはベクターの有効な、好ましくは、実質的に持続性の送達をもたらすことができる。粘性誘導薬剤は、望ましい懸濁液形態における核酸分子および／またはベクターの維持に役立ち、これにより、眼の底部表面における組成物の堆積を防止することができる。このような組成物は、これにより参照により本明細書にその内容全体が援用される米国特許第５，２９２，７２４号に記載されている通りに調製することができる。
一般に、核酸分子は、所望の効果、例えば、抗酸化防御タンパク質（例えば、カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２）の発現および／または活性の増大を誘発するための治療有効量で提供される。処置の回数および量の両方に従って投与するべきベクターの量は、処置しようとする被験体の臨床状態、年齢および体重ならびに障害の重症度等の因子にも依存する。投与に必要とされる活性成分の正確な量は、遺伝子療法専門家の判断に依存し、個々の患者それぞれに特定のものとなる。一般に、ウイルスベクターは、１ｍｌ当たり約１×１０５、約１．５×１０５、約２×１０５、約２．５×１０５、約３×１０５、約３．５×１０５、約４×１０５、約４．５×１０５、約５×１０５、約５．５×１０５、約６×１０５、約６．５×１０５、約７×１０５、約７．５×１０５、約８×１０５、約８．５×１０５、約９×１０５、約９．５×１０５、約１×１０６、約１．５×１０６、約２×１０６、約２．５×１０６、約３×１０６、約３．５×１０６、約４×１０６、約４．５×１０６、約５×１０６、約５．５×１０６、約６×１０６、約６．５×１０６、約７×１０６、約７．５×１０６、約８×１０６、約８．５×１０、約９×１０６、約９．５×１０６、約１×１０７、約１．５×１０７、約２×１０７、約２．５×１０７、約３×１０７、約３．５×１０７、約４×１０７、約４．５×１０７、約５×１０７、約５．５×１０７、約６×１０７、約６．５×１０７、約７×１０７、約７．５×１０７、約８×１０７、約８．５×１０７、約９×１０７、約９．５×１０７、約１×１０８、約１．５×１０８、約２×１０８、約２．５×１０８、約３×１０８、約３．５×１０８、約４×１０８、約４．５×１０８、約５×１０８、約５．５×１０８、約６×１０８、約６．５×１０８、約７×１０８、約７．５×１０８、約８×１０８、約８．５×１０８、約９×１０８、約９．５×１０８および約１×１０９コロニー形成単位（ｃｆｕ）に及ぶ力価で投与されるが、範囲は変動し得る。好ましい力価は、約１×１０６〜約１×１０８ｃｆｕ／ｍｌに及ぶ。
細胞における抗酸化防御タンパク質（カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２）の発現および／または活性を増大させるための刺激性薬剤の他の例は、後述する小分子化合物、抗体または他のタンパク質である。
阻害性薬剤
本発明の方法は、抗酸化防御タンパク質（カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２）の発現および／または活性の増大を相殺する負の調節因子を阻害する薬剤を使用することもできる。このような薬剤は、例えば、抗酸化防御タンパク質（カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２）の発現および／または活性の増大を相殺する負の調節因子の発現、プロセシング、翻訳後修飾または活性を特異的に阻害するように作用する細胞内結合分子となり得る。本明細書において、用語「細胞内結合分子」は、例えば、タンパク質または該タンパク質をコードする核酸（例えば、ｍＲＮＡ分子）に結合することにより、該タンパク質のプロセシング、発現または活性を阻害するように細胞内で作用する分子を含むことが意図される。
さらに詳細に後述する細胞内結合分子の例として、抗酸化防御タンパク質（カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２）の発現および／または活性の増大を相殺する負の調節因子の活性を特異的に阻害するアンチセンス核酸、細胞内抗体、ペプチド性化合物および化学薬剤が挙げられる。
一実施形態において、このような薬剤は、抗酸化防御タンパク質（カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２）の発現および／または活性の増大を相殺する負の調節因子をコードする遺伝子もしくは該遺伝子の一部に相補的なアンチセンス核酸分子、または該アンチセンス核酸分子をコードする組換え発現ベクターである。細胞における特定のタンパク質の発現を下方調節するためのアンチセンス核酸の使用は、当技術分野において周知である（例えば、これらそれぞれ、参照により本明細書に援用されるＷｅｉｎｔｒａｕｂ， Ｈ．ら、Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ ＲＮＡ ａｓ ａ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｔｏｏｌ ｆｏｒ ｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ、Ｒｅｖｉｅｗｓ − Ｔｒｅｎｄｓ ｉｎ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ、１巻（１号）１９８６年；Ａｓｋａｒｉ， Ｆ． Ｋ．およびＭｃＤｏｎｎｅｌｌ， Ｗ．Ｍ．（１９９６年）Ｎ． Ｅｎｇ Ｊ． Ｍｅｄ．３３４巻：３１６〜３１８頁；Ｂｅｎｎｅｔｔ， Ｍ．Ｒ．およびＳｃｈｗａｒｔｚ， Ｓ．Ｍ．（１９９５年）Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ ９２巻：１９８１〜１９９３頁；Ｍｅｒｃｏｌａ， Ｄ．およびＣｏｈｅｎ， Ｊ．Ｓ．（１９９５年）Ｃａｎｃｅｒ Ｇｅｎｅ
Ｔｈｅｒ．＿：４７〜５９頁；Ｒｏｓｓｉ， Ｊ．Ｊ．（１９９５年）Ｂｒ． Ｍｅｄ． Ｂｕｌｌ．５１巻：２１７〜２２５頁；Ｗａｇｎｅｒ， Ｒ．Ｗ．（１９９４年）Ｎａｔｕｒｅ ３７２巻：３３３〜３３５頁を参照）。アンチセンス核酸分子は、別の核酸分子のコード鎖に相補的なヌクレオチド配列（例えば、ｍＲＮＡ配列）を含み、したがって、他の核酸分子のコード鎖と水素結合することができる。
ｍＲＮＡの配列に相補的なアンチセンス配列は、ｍＲＮＡのコード領域、ｍＲＮＡの５’もしくは３’非翻訳領域、またはコード領域および非翻訳領域にまたがる領域（例えば、５’非翻訳領域およびコード領域の接合部における）に存在する配列に相補的となり得る。さらに、アンチセンス核酸は、ｍＲＮＡをコードする遺伝子の調節領域、例えば、転写開始配列または調節エレメントと配列が相補的となり得る。好ましくは、アンチセンス核酸は、コード鎖における開始コドンに先行するもしくはそれに及ぶ、またはｍＲＮＡの３’非翻訳領域における領域と相補的となるように設計される。
本発明のアンチセンス核酸は、ワトソン・クリック塩基対形成の法則に従って設計することができる。アンチセンス核酸分子は、ｍＲＮＡのコード領域全体に相補的となり得るが、より好ましくは、ｍＲＮＡのコードまたは非コード領域の一部のみに対しアンチセンスである。
アンチセンスオリゴヌクレオチドは、例えば、約５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５または５０ヌクレオチドの長さとなり得る。本発明のアンチセンス核酸は、当技術分野において公知の手順を使用した化学合成および酵素によるライゲーション反応を使用して構築することができる。例えば、アンチセンス核酸（例えば、アンチセンスオリゴヌクレオチド）は、天然に存在するヌクレオチド、または分子の生物学的安定性を増大させるように、もしくはアンチセンスおよびセンス核酸の間に形成される二重鎖の物理的安定性を増大させるように設計された様々に修飾されたヌクレオチドを使用して化学合成することができ、例えば、ホスホロチオエート誘導体およびアクリジン置換ヌクレオチドを使用することができる。アンチセンス核酸の作製に使用することができる修飾ヌクレオチドの例として、５−フルオロウラシル、５−ブロモウラシル、５−クロロウラシル、５−ヨードウラシル、ヒポキサンチン、キサンチン、４−アセチルシトシン、５−（カルボキシヒドロキシルメチル）ウラシル、５−カルボキシメチルアミノメチル−２−チオウリジン、５−カルボキシメチルアミノメチルウラシル、ジヒドロウラシル、ベータ−Ｄ−ガラクトシルキューオシン（ｑｕｅｏｓｉｎｅ）、イノシン、Ｎ６−イソペンテニルアデニン、１−メチルグアニン、１−メチルイノシン、２，２−ジメチルグアニン、２−メチルアデニン、２−メチルグアニン、３−メチルシトシン、５−メチルシトシン、Ｎ６−アデニン、７−メチルグアニン、５−メチルアミノメチルウラシル、５−メトキシアミノメチル−２−チオウラシル、ベータ−Ｄ−マンノシルキューオシン（ｑｕｅｏｓｉｎｅ）、５’−メトキシカルボキシメチルウラシル、５−メトキシウラシル、２−メチルチオ−Ｎ６−イソペンテニルアデニン、ウラシル−５−オキシ酢酸（ｖ）、ワイブトキソシン、シュードウラシル、キューオシン（ｑｕｅｏｓｉｎｅ）、２−チオシトシン、５−メチル−２−チオウラシル、２−チオウラシル、４−チオウラシル、５−メチルウラシル、ウラシル−５−オキシ酢酸メチルエステル、ウラシル−５−オキシ酢酸（ｖ）、５−メチル−２−チオウラシル、３−（３−アミノ−３−Ｎ−２−カルボキシプロピル）ウラシル、（ａｃｐ３）ｗおよび２，６−ジアミノプリンが挙げられる。細胞における発現を阻害するために、１種または複数のアンチセンスオリゴヌクレオチドを使用することができる。
あるいは、アンチセンス核酸は、ｃＤＮＡの全体または一部がアンチセンス配向性でサブクローニングされた（即ち、挿入された核酸から転写される核酸が、目的の標的核酸に対しアンチセンス配向性のものである）発現ベクターを使用して、生物学的に産生することができる。目的の細胞においてアンチセンスＲＮＡ分子の発現を導く、アンチセンス配向性でクローニングされた核酸に動作可能に連結された調節配列を選ぶことができ、例えば、アンチセンスＲＮＡの構成的、組織特異的または誘導性発現を導く、プロモーターおよび／またはエンハンサーまたは他の調節配列を選ぶことができる。アンチセンス発現ベクターは、ｃＤＮＡ（またはその一部）が、アンチセンス配向性でベクターにクローニングされることを除いて、組換え発現ベクターを構築するための標準組換えＤＮＡ方法に従って調製される。アンチセンス発現ベクターは、例えば、組換えプラスミド、ファージミドまたは弱毒化ウイルスの形態となり得る。アンチセンス発現ベクターは、標準トランスフェクション技法を使用して細胞に導入することができる。
アンチセンス核酸分子は、典型的に、タンパク質をコードする細胞ｍＲＮＡおよび／またはゲノムＤＮＡとハイブリダイズまたはこれに結合して、これにより、例えば、転写および／または翻訳を阻害することにより、タンパク質の発現を阻害するように、被験体に投与される、またはｉｎ ｓｉｔｕで生成される。ハイブリダイゼーションは、従来のヌクレオチドによって相補的に行って、安定的二重鎖を形成することができる、あるいは例えば、ＤＮＡ二重鎖に結合するアンチセンス核酸分子の場合、二重らせんの主溝における特異的な相互作用による。本発明のアンチセンス核酸分子の投与の経路の例として、組織部位における直接的注射が挙げられる。あるいは、アンチセンス核酸分子は、選択された細胞を標的化するように修飾することができ、そこで全身性に投与される。例えば、全身性投与のため、アンチセンス分子は、例えば、アンチセンス核酸分子を細胞表面受容体または抗原に結合するペプチドまたは抗体に連結することにより、選択された細胞表面上に発現される受容体または抗原に特異的に結合するように修飾することができる。アンチセンス核酸分子は、本明細書に記載されているベクターを使用して、細胞に送達することもできる。アンチセンス分子の十分な細胞内濃度を達成するために、アンチセンス核酸分子が、強力なｐｏｌ ＩＩまたはｐｏｌ ＩＩＩプロモーターの制御下に置かれたベクター構築物が好まれる。
さらに別の実施形態において、本発明の方法において使用することができるアンチセンス核酸分子は、α−アノマー核酸分子である。α−アノマー核酸分子は、通常の８ユニットとは対照的に、鎖が互いに平行となる相補的ＲＮＡと特異的二本鎖ハイブリッドを形成する（参照により本明細書に援用されるＧａｕｌｔｉｅｒら（１９８７年）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１５巻：６６２５〜６６４１頁）。アンチセンス核酸分子は、２’−ｏ−メチルリボヌクレオチド（参照により本明細書に援用されるＩｎｏｕｅら（１９８７年）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１５巻：６１３１〜６１４８頁）またはキメラＲＮＡ−ＤＮＡアナログ（参照により本明細書に援用されるＩｎｏｕｅら（１９８７年）ＦＥＢＳＬｅｔｔ．２１５巻：３２７〜３３０頁）を含むこともできる。
さらに別の実施形態において、本発明の方法において使用することができるアンチセンス核酸分子は、リボザイムである。リボザイムは、それに対する相補的領域を有するｍＲＮＡ等、一本鎖核酸を切断することができるリボヌクレアーゼ活性を有する触媒ＲＮＡ分子である。よって、リボザイム（例えば、ハンマーヘッド型リボザイム（参照により本明細書に援用されるＨａｓｅｌｈｏｆｆおよびＧｅｒｌａｃｈ（１９８８年）Ｎａｔｕｒｅ
３３４巻：５８５〜５９１頁に記載））を使用して、ｍＲＮＡ転写物を触媒的に切断して、これにより、ｍＲＮＡの翻訳を阻害することができる。ｃＤＮＡのヌクレオチド配列に基づき、目的のコード核酸分子に対し特異性を有するリボザイムを設計することができる。例えば、活性部位のヌクレオチド配列が、目的のコードｍＲＮＡにおける切断しようとするヌクレオチド配列に相補的である、テトラヒメナ（Ｔｅｔｒａｈｙｎｅｎａ）Ｌ−１９ ＩＶＳ ＲＮＡの誘導体を構築することができる。例えば、これらそれぞれ、参照により本明細書に援用されるＣｅｃｈら、米国特許第４，９８７，０７１号；Ｃｅｃｈら、米国特許第５，１１６，７４２号を参照されたい。あるいは、目的のｍＲＮＡを使用して、ＲＮＡ分子のプールから、特異的リボヌクレアーゼ活性を有する触媒ＲＮＡを選択することができる。例えば、参照により本明細書に援用されるＢａｒｔｅｌ， Ｄ．およびＳｚｏｓｔａｋ， Ｊ．Ｗ．（１９９３年）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６１巻：１４１１〜１４１８頁を参照されたい。
別の実施形態において、ＲＮＡｉを促進する薬剤を使用して、抗酸化防御タンパク質（カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２）の発現および／または活性の増大を相殺する負の調節因子の発現を阻害することができる。ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉは、二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）を使用して、該ｄｓＲＮＡと同じ配列を含有するメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）を分解する、転写後標的化遺伝子サイレンシング技法である（これらそれぞれ、参照により本明細書に援用されるＳｈａｒｐ， Ｐ．Ａ．およびＺａｍｏｒｅ， Ｐ．Ｄ．、２８７巻、２４３１〜２４３２頁（２０００年）；Ｚａｍｏｒｅら、Ｃｅｌｌ １０１巻、２５〜３３頁（２０００年）、Ｔｕｓｃｈｌら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖ．１３巻、３１９１〜３１９７頁（１９９９年）；Ｃｏｔｔｒｅｌｌ ＴＲおよびＤｏｅｒｉｎｇ ＴＬ．、２００３年、Ｔｒｅｎｄｓ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１１巻：３７〜４３頁；Ｂｕｓｈｍａｎ Ｆ．、２００３年、Ｍｏｌ Ｔｈｅｒａｐｙ．７巻：９〜１０頁；ＭｃＭａｎｕｓ ＭＴおよびＳｈａｒｐ ＰＡ．、２００２年、Ｎａｔ． Ｒｅｖ． Ｇｅｎｅｔ．、３巻：７３７〜４７頁）。この過程は、内在性リボヌクレアーゼが、より長いｄｓＲＮＡをより短く、例えば、２１または２２ヌクレオチド長ＲＮＡに切断すると起こり、低分子干渉ＲＮＡまたはｓｉＲＮＡと命名される。次に、より小さいＲＮＡセグメントが、標的ｍＲＮＡの分解を媒介する。ＲＮＡｉの合成のためのキットは、例えば、Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ ＢｉｏｌａｂｓまたはＡｍｂｉｏｎから市販されている。一実施形態において、アンチセンスＲＮＡにおける使用について上述されている化学のうち１種または複数は、ＲＮＡｉを媒介する分子において用いることができる。
本発明の方法における薬剤として抗体を使用することもできる。一実施形態において、抗体は、タンパク質活性を阻害する細胞内抗体である。このような細胞内抗体は、当技術分野において周知の方法を使用して調製され、この方法は、細胞へのベクターの導入の際に、細胞の細胞内区画において抗体鎖が機能的な抗体として発現されるような形態で、抗体鎖をコードする組換え発現ベクターの調製に一般に関与する。
本発明の阻害方法に従った転写因子活性の阻害のため、タンパク質に特異的に結合する細胞内抗体が、細胞の核内で発現される。細胞内抗体の核発現は、抗体軽鎖および重鎖遺伝子からＮ末端疎水性リーダー配列をコードするヌクレオチド配列を除去し、軽鎖および重鎖遺伝子のＮまたはＣ末端のいずれかに核局在化シグナルをコードするヌクレオチド配列を付加することにより達成することができる（例えば、これらそれぞれ、参照により本明細書に援用されるＢｉｏｃｃａら（１９９０年）ＥＭＢＯ Ｊ．、９巻：１０１〜１０８頁；Ｍｈａｓｈｉｌｋａｒら（１９９５年）ＥＭＢＯ Ｊ．、１４巻：１５４２〜１５５１頁を参照）。細胞内抗体鎖の核標的化のための使用に好ましい核局在化シグナルは、ＳＶ４０ラージＴ抗原の核局在化シグナルである（これらそれぞれ、参照により本明細書に援用されるＢｉｏｃｃａら（１９９０年）ＥＭＢＯ Ｊ．、９巻：１０１〜１０８頁；Ｍｈａｓｈｉｌｋａｒら（１９９５年）ＥＭＢＯ Ｊ．、１４巻：１５４２〜１５５１頁を参照）。
細胞内抗体発現ベクターを調製するために、目的の標的タンパク質に特異的な抗体鎖をコードする抗体軽鎖および重鎖ｃＤＮＡは、典型的には、該タンパク質に特異的なモノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマから単離される。抗体は、適した被験体（例えば、ウサギ、ヤギ、マウスまたは他の哺乳動物）を例えば、タンパク質免疫原で免疫化することにより調製することができる。適切な免疫原性調製物は、例えば、組換えにより発現されたタンパク質または化学合成されたペプチドを含有することができる。調製物は、フロイント完全もしくは不完全アジュバントまたは同様の免疫賦活性化合物等、アジュバントをさらに含むことができる。抗体産生細胞を被験体から得て、ＫｏｈｌｅｒおよびＭｉｌｓｔｅｉｎ（１９７５年、Ｎａｔｕｒｅ ２５６巻：４９５〜４９７頁；参照により本明細書に援用される）によって本来記載されたハイブリドーマ技法等、標準技法によるモノクローナル抗体の調製に使用することができる（これらそれぞれ、参照により本明細書に援用されるＢｒｏｗｎら（１９８１年）Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ １２７巻：５３９〜４６頁；Ｂｒｏｗｎら（１９８０年）ＪＢｉｏｌ Ｃｈｅｍ ２５５巻：４９８０〜８３頁；Ｙｅｈら（１９７６年）ＰＮＡＳ ７６巻：２９２７〜３１頁；Ｙｅｈら（１９８２年）Ｉｎｔ．Ｊ． Ｃａｎｃｅｒ ２９巻：２６９〜７５頁も参照されたい）。モノクローナル抗体ハイブリドーマを産生するための技術は周知である（全般的に、これらそれぞれ、参照により本明細書に援用されるＲ． Ｈ． Ｋｅｎｎｅｔｈ、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ
Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ： Ａ Ｎｅｗ Ｄｉｍｅｎｓｉｏｎ Ｉｎ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ａｎａｌｙｓｅｓ、Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｒｐ．、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８０年）；Ｅ． Ａ． Ｌｅｒｎｅｒ（１９８１年）Ｙａｌｅ Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｍｅｄ．、５４巻：３８７〜４０２頁；Ｍ． Ｌ． Ｇｅｆｔｅｒら（１９７７年）Ｓｏｍａｔｉｃ Ｃｅｌｌ Ｇｅｎｅｔ．、３巻：２３１〜３６頁を参照）。簡潔に説明すると、不死細胞株（典型的には骨髄腫）が、上述のタンパク質免疫原で免疫化した哺乳動物由来のリンパ球（典型的には脾細胞）に融合され、得られたハイブリドーマ細胞の培養上清が、スクリーニングされて、目的のタンパク質に特異的に結合するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを同定する。モノクローナル抗体を作製する目的のために、リンパ球（Ｉｙｍｐｈｏｃｙｔｅ）および不死化細胞株の融合に使用される多くの周知プロトコールのいずれかを適用してもよい（例えば、これらそれぞれ、参照により本明細書に援用されるＧ． Ｇａｌｆｒｅら（１９７７年）Ｎａｔｕｒｅ ２６６巻：５５０〜５２頁；Ｇｅｆｔｅｒら、Ｓｏｍａｔｉｃ Ｃｅｌｌ Ｇｅｎｅｔ．、上記引用；Ｌｅｒｎｅｒ， Ｙａｌｅ Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｍｅｄ．、上記引用；Ｋｅｎｎｅｔｈ、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ、上記引用を参照）。さらに、当業者であれば、同様に有用となり得るこのような方法の多くの変種が存在することを認められよう。
典型的には、不死細胞株（例えば、骨髄腫細胞株）は、リンパ球（Ｉｙｍｐｈｏｃｙｔｅ）と同じ哺乳動物種に由来する。例えば、マウスハイブリドーマは、本発明の免疫原性調製物で免疫化したマウス由来のリンパ球（Ｉｙｍｐｈｏｃｙｔｅ）を不死化マウス細胞株と融合することにより作製することができる。好ましい不死細胞株は、ヒポキサンチン、アミノプテリンおよびチミジンを含有する培養培地（「ＨＡＴ培地」）に対し感受性のマウス骨髄腫細胞株である。多数の骨髄腫細胞株のいずれかを標準技法に従って融合パートナーとして使用してもよく、例えば、Ｐ３−ＮＳｌ／ｌ−Ａｇ４−１、Ｐ３−ｘ６３−Ａｇ８．６５３またはＳｐ２／Ｏ−Ａｇｌ４骨髄腫系列が挙げられる。これらの骨髄腫系列は、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、Ｍｄから入手できる。典型的には、ＨＡＴ感受性マウス骨髄腫細胞は、ポリエチレングリコール（「ＰＥＧ」）を使用して、マウス脾細胞に融合される。融合から得られるハイブリドーマ細胞は続いて、非融合および非生産的に融合された骨髄腫細胞を死滅させるＨＡＴ培地を使用して選択される（非融合脾細胞は、形質転換されていないため、数日後に死滅する）。タンパク質に特異的に結合するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞は、例えば、標準ＥＬＩＳＡアッセイを使用して、このような抗体に関してハイブリドーマ培養上清をスクリーニングすることにより同定される。
モノクローナル抗体分泌ハイブリドーマ調製の代替として、タンパク質に結合するモノクローナル抗体は、組換えコンビナトリアル免疫グロブリンライブラリー（例えば、抗体ファージディスプレイライブラリー）をタンパク質またはそのペプチドでスクリーニングすることにより同定および単離し、これにより、該タンパク質に特異的に結合する免疫グロブリンライブラリーメンバーを単離することができる。ファージディスプレイライブラリーを作製およびスクリーニングするためのキットは、市販されている（例えば、これらそれぞれ、参照により本明細書に援用されるＰｈａｒｍａｃｉａ Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｐｈａｇｅ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｓｙｓｔｅｍ、カタログ番号２７−９４００−０１；およびＳｔｒａｔａｇｅｎｅ ＳｕｒＪＺＡＰＴＭ Ｐｈａｇｅ Ｄｉｓｐｌａｙ Ｋｉｔ、カタログ番号２４０６１２）。
抗体ディスプレイライブラリーの作製およびスクリーニングにおける使用に特に受け入れられる方法および化合物の例も、例えば、これらそれぞれ、参照により本明細書に援用されるＬａｄｎｅｒら、米国特許第５，２２３，４０９号；Ｋａｎｇら、国際公開第ＷＯ９２／１８６１９号；Ｄｏｗｅｒら、国際公開第ＷＯ９１／１７２７１号；Ｗｉｎｔｅｒら、国際公開第ＷＯ９２／２０７９１号；Ｍａｒｋｌａｎｄら、国際公開第ＷＯ９２／１５６７９号；Ｂｒｅｉｔｌｉｎｇら、国際公開第ＷＯ９３／０１２８８号；ＭｃＣａｆｆｅｒｔｙら、国際公開第ＷＯ９２／０１０４７号；Ｇａｒｒａｒｄら、国際公開第ＷＯ９２／０９６９０号；Ｆｕｃｈｓら（１９９１年）Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ９巻：１３７０〜１３７２頁；Ｈａｙら（１９９２年）Ｈｕｍ Ａｎｔｉｂｏｄ Ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ ３巻：８１〜８５頁；Ｈｕｓｅら（１９８９年）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４６巻：１２７５〜１２８１頁；Ｇｒｉｆｅｔｈｓら（１９９３年）ＥＭＢＯ Ｊ １２巻：７２５〜７３４頁；Ｈａｗｋｉｎｓら（１９９２年）ＪＭｏｌ Ｂｉｏｌ ２２６巻：８８９〜８９６頁；Ｃｌａｒｋｓｏｎら（１９９１年）Ｎａｔｕｒｅ ３５２巻：６２４〜６２８頁；Ｇｒａｍら（１９９２年）ＰＮＡＳ ８９巻：３５７６〜３５８０頁；Ｇａｒｒａｄら（１９９１年）Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ９巻：１３７３〜１３７７頁；Ｈｏｏｇｅｎｂｏｏｍら（１９９１年）ＮｕｃＡｃｉｄ Ｒｅｓ １９巻：４１３３〜４１３７頁；Ｂａｒｂａｓら（１９９１年）ＰＮＡＳ ８８巻：７９７８〜７９８２頁；ＭｃＣａｆｆｅｒｔｙら、Ｎａｔｕｒｅ（１９９０年）３４８巻：５５２〜５５４頁に見出すことができる。
別の実施形態において、リボソームディスプレイを使用して、本発明の方法における使用のための抗体を同定するためのディスプレイプラットフォームとしてバクテリオファージを置き換えることができる（例えば、これらそれぞれ、参照により本明細書に援用されるＨａｎｅｓら、２０００年、Ｎａｔ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１８巻：１２８７頁；Ｗｉｌｓｏｎら、２００１年、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ
９８巻：３７５０頁；Ｉｒｖｉｎｇら、２００１年、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｍｅｔｈｏｄｓ ２４８巻：３１頁を参照）。さらに別の実施形態において、細胞表面ライブラリーを抗体に関してスクリーニングすることができる（これらそれぞれ、参照により本明細書に援用されるＢｏｄｅｒら、２０００年、Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ９７巻：１０７０１頁；Ｄａｕｇｈｅｒｔｙら、２０００年、Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｍｅｔｈｏｄｓ ２４３巻：２１１頁）。このような手順は、モノクローナル抗体の単離およびその後のクローニングのための伝統的ハイブリドーマ技法の代替法をもたらす。
別の実施形態において、本発明の方法において使用することができる抗体は、内在性免疫グロブリン産生ができないトランスジェニック動物（例えば、マウス）において作製された実質的にヒトの抗体である（例えば、これらそれぞれ、参照により本明細書に援用される米国特許第６，０７５，１８１号、同第５，９３９，５９８号、同第５，５９１，６６９号および同第５，５８９，３６９号を参照）。
例えば、キメラおよび生殖系列変異体マウスにおける抗体重鎖連結領域のホモ接合型欠失が、内在性抗体産生の完全阻害をもたらすことが記載されてきた。このような生殖系列変異体マウスへのヒト免疫グロブリン遺伝子アレイの移入は、抗原負荷の際にヒト抗体の産生をもたらす。ＳＣＩＤマウスを使用してヒト抗体を作製する別の好ましい手段は、参照により本明細書に援用される米国特許第５，８１１，５２４号に開示されている。このようなヒト抗体に関連する遺伝物質を、本明細書に記載されている通りに単離および操作することもできることが認められよう。
本発明の方法における使用のための組換え抗体を作製するためのさらに別の高度に効率的な手段は、参照により本明細書に援用されるＮｅｗｍａｎ、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、１０巻：１４５５〜１４６０頁（１９９２年）によって開示されている。具体的には、この技法は、サル可変ドメインおよびヒト定常配列を含有する霊長類化（ｐｒｉｍａｔｉｚｅｄ）抗体の作製をもたらす。この参考文献は、参照により本明細書にその内容全体が援用される。さらに、この技法は、これらそれぞれ、参照により本明細書に援用される米国特許第５，６５８，５７０号、同第５，６９３，７８０号および同第５，７５６，０９６号にも記載されている。
モノクローナル抗体が同定されたら（例えば、ハイブリドーマ由来モノクローナル抗体またはコンビナトリアルライブラリー由来の組換え抗体のいずれかであり、既に当技術分野において公知のモノクローナル抗体を含む）、モノクローナル抗体の軽鎖および重鎖をコードするＤＮＡを標準分子生物学技法により単離する。ハイブリドーマ由来抗体のため、軽鎖および重鎖ｃＤＮＡは、例えば、ＰＣＲ増幅またはｃＤＮＡライブラリースクリーニングにより得ることができる。ファージディスプレイライブラリー由来等、組換え抗体のため、軽鎖および重鎖をコードするｃＤＮＡは、ライブラリースクリーニングプロセスにおいて単離されたディスプレイパッケージ（例えば、ファージ）から回収することができる。ＰＣＲプライマーまたはｃＤＮＡライブラリープローブを調製することができる抗体軽鎖および重鎖遺伝子のヌクレオチド配列は、当技術分野において公知である。例えば、多くのこのような配列は、Ｋａｂａｔ， Ｅ．Ａ．ら（１９９１年）Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ、第５版、Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ、ＮＩＨ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ Ｎｏ．９１−３２４２および「Ｖｂａｓｅ」ヒト生殖系列配列データベースに開示されている。
得られたら、抗体軽鎖および重鎖配列を、標準方法を使用して組換え発現ベクターにクローニングする。上述の通り、軽鎖および重鎖の疎水性リーダーをコードする配列を除去し、核局在化シグナル（例えば、ＳＶ４０ラージＴ抗原由来）をコードする配列を、軽鎖および重鎖の両方のアミノまたはカルボキシ末端のいずれかをコードする配列にインフレームで連結する。発現ベクターは、いくつかの異なる形態のうち１種における細胞内抗体をコードすることができる。例えば、一実施形態において、ベクターは、全長抗体が細胞内に発現されるように、全長抗体軽鎖および重鎖をコードする。別の実施形態において、ベクターは、Ｆａｂ断片が細胞内に発現されるように、全長軽鎖をコードするが、重鎖のＶＨ／ＣＨ１領域のみをコードする。
別の実施形態において、本発明の方法における使用のための阻害性薬剤は、抗酸化防御タンパク質（カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２）の発現および／または活性の増大を相殺する負の調節因子のアミノ酸配列に由来するペプチド性化合物である。
本発明の方法において有用なペプチド性化合物は、該ペプチドをコードする発現ベクターを細胞に導入することにより、細胞内に作製することができる。このような発現ベクターは、ペプチド性化合物のアミノ酸配列をコードするオリゴヌクレオチドを使用した標準技法により作製することができる。ペプチドは、別のタンパク質またはペプチドとの融合体（例えば、ＧＳＴ融合体）として細胞内に発現させることができる。細胞におけるペプチドの組換え合成の代替として、ペプチドは、標準ペプチド合成技法を使用した化学合成によって作製することができる。
次に、合成されたペプチドは、ペプチドを細胞に導入するための当技術分野において公知の種々の手段によって細胞に導入することができる（例えば、リポソームその他）。
細胞における抗酸化防御タンパク質（カタラーゼ、ＳＯＤ２、ＰＧＣ１αおよび／またはｎｒｆ２）の発現および／または活性の増大を相殺する負の調節因子を阻害する別の形態の阻害性薬剤は、化学的小分子化合物である。
本発明の医薬組成物
本発明の一態様において、治療用核酸分子および／またはこれを含有するベクターは、薬学的に許容される担体を含有する医薬組成物の形態となる。本明細書において、「薬学的に許容される担体」は、生理学的に適合性のありとあらゆる溶媒、分散媒、コーティング、抗細菌および抗真菌剤、等張性および吸収遅延剤その他を含む。一実施形態において、薬学的に許容される担体は、リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）ではない。一実施形態において、担体は、眼内、局所的、非経口的、静脈内、腹腔内または筋肉内投与に適している。別の実施形態において、担体は、経口投与に適している。薬学的に許容される担体は、無菌水溶液または分散物および無菌注射用溶液または分散物の即時調製のための無菌粉末を含む。薬学的活性物質のためのこのような媒体および薬剤の使用は、当技術分野において周知である。いずれか従来の媒体または薬剤が、遺伝子療法ベクターと不適合性である場合を除いて、本発明の医薬組成物におけるその使用が企図される。補足的活性化合物を組成物に取り込むこともできる。
特定の実施形態において、本発明の医薬組成物は、注射用組成物の形態で投与される。組成物は、液体の溶液または懸濁液のいずれかとして、注射剤として調製することができる。調製物は、乳化されていてもよい。適した賦形剤は、例えば、水、食塩水、デキストロース、グリセロール、エタノールその他およびこれらの組合せである。加えて、必要に応じて、調製物は、湿潤剤または乳化剤、ｐＨ緩衝剤、アジュバントまたは免疫賦活薬等、少量の補助的物質を含有することができる。
特定の実施形態において、核酸分子および／またはベクターは、眼内投与に適した組成物に取り込まれる。例えば、組成物は、例えば、注射による、硝子体内、網膜下、結膜下、テノン下、眼周囲、眼球後、脈絡膜上および／または強膜内投与のために設計して、網膜障害を有効に処置することができる。その上、縫合されたまたは詰め替え可能なドームを投与部位の上に置いて、好まれない方向における活性薬剤の「洗浄除去」、浸出および／または拡散を防止または低下させることができる。
本明細書に記載されている比較的高い粘性の組成物を使用して、例えば、後眼部への注射により、核酸分子および／またはベクターの有効な、好ましくは、実質的に持続性の送達をもたらすことができる。粘性誘導薬剤は、望ましい懸濁液形態における核酸分子および／またはベクターの維持に役立ち、これにより、眼の底部表面における組成物の堆積を防止することができる。このような組成物は、これにより参照により本明細書にその内容全体が援用される米国特許第５，２９２，７２４号に記載されている通りに調製することができる。
無菌注射用溶液は、必要に応じて上に列挙されている成分の１種または組合せと共に、適切な溶媒において必要とされる量で本発明の組成物を取り込むことにより調製し、続いて濾過滅菌することができる。一般に、分散物は、基本分散媒および上に列挙される成分由来の必要とされる他の成分を含有する無菌ビヒクルに活性化合物を取り込むことにより調製される。無菌注射用溶液の調製のための無菌粉末の場合、好ましい調製方法は、活性成分プラス以前に滅菌濾過されたその溶液由来のいずれか追加的な所望の成分の粉末を生じる真空乾燥およびフリーズドライである。
経口組成物は、一般に、不活性希釈剤または食用担体を含む。これは、ゼラチンカプセルに封入または錠剤へと圧縮することができる。経口治療投与の目的のため、活性化合物は、賦形剤と共に取り込み、錠剤、トローチまたはカプセルの形態で使用することができる。経口組成物は、口腔洗浄薬としての使用のための流体担体を使用して調製することもでき、該流体担体における化合物は、経口適用され、すすいでから喀出または嚥下される。薬学的に適合性の結合剤および／またはアジュバント材料は、組成物の部分として含まれ得る。錠剤、丸剤、カプセル、トローチその他は、次の成分または同様の性質の化合物のいずれかを含有することができる：微結晶性セルロース、トラガカント・ゴムもしくはゼラチン等、結合剤；デンプンもしくはラクトース等、賦形剤、アルギン酸、Ｐｒｉｍｏｇｅｌもしくはコーンスターチ等、崩壊剤；ステアリン酸マグネシウムもしくはＳｔｅｒｏｔｅｓ等、潤滑剤；コロイド性二酸化ケイ素等、流動促進剤；スクロースもしくはサッカリン等、甘味剤；またはペパーミント、サリチル酸メチルもしくはオレンジ香味料等、矯味矯臭剤。
一実施形態において、本発明の組成物は、インプラントおよびマイクロカプセル化送達系を含む、放出制御製剤等、身体からの急速な排除から化合物を保護する担体と共に調製される。エチレン酢酸ビニル、ポリ酸無水物、ポリグリコール酸、コラーゲン、ポリオルトエステルおよびポリ乳酸等、生分解性、生体適合性ポリマーを使用することができる。このような製剤の調製のための方法は、当業者には明らかであろう。材料は、Ａｌｚａ ＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎおよびＮｏｖａ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ，Ｉｎｃから商業的に得ることもできる。リポソーム懸濁液（ウイルス抗原に対するモノクローナル抗体により感染細胞に標的化されたリポソームを含む）を薬学的に許容される担体として使用することもできる。これは、当業者に公知の方法、例えば、米国特許第４，５２２，８１１号に記載されている方法に従って調製することができる。
鼻用組成物は、一般に、点鼻薬（ｎａｓａｌ ｓｐｒａｙ）および吸入薬を含む。点鼻薬および吸入薬は、１種または複数の活性構成成分と、保存料、粘性修飾因子、乳化剤、緩衝剤その他等の賦形剤とを含有することができる。点鼻薬は、局所および／または全身性使用のために鼻腔に適用することができる。点鼻薬は、活性構成成分の定量の送達に適した非加圧式ディスペンサーにより分配することができる。鼻用吸入薬は、局所および／または全身性使用のための経口吸入による肺への送達のために企図される。鼻用吸入薬は、１種または複数の活性構成成分の定量の送達のための閉鎖容器系によって分配することができる。
一実施形態において、鼻用吸入薬は、エアロゾルと共に使用される。これは、化合物を含有する水性エアロゾル、リポソーム調製物または固体粒子を調製することにより達成される。非水性（例えば、フルオロカーボン噴霧体）懸濁液を使用することができる。音波ネブライザーを使用して、化合物の分解をもたらし得る剪断への薬剤の曝露を最小化することができる。
通常、水性エアロゾルは、従来の薬学的に許容される担体および安定剤と共に、薬剤の水溶液または懸濁液を製剤化することにより作製される。担体および安定剤は、特定の化合物の要件と共に変動するが、典型的には、非イオン性界面活性剤（Ｔｗｅｅｎ、Ｐｌｕｒｏｎｉｃまたはポリエチレングリコール）、血清アルブミン等の無害タンパク質、ソルビタンエステル、オレイン酸、レシチン、グリシン等のアミノ酸、バッファー、塩、糖または糖アルコールを含む。エアロゾルは、一般に、等張性溶液から調製される。
全身性投与は、経粘膜的または経皮手段によるものとなることもできる。経粘膜的または経皮投与のため、透過するべき障壁に適切な浸透剤が、製剤において使用される。このような浸透剤は一般に、当技術分野において公知であり、例えば、経粘膜的投与のためには、洗剤、胆汁酸塩およびフシジン酸誘導体を含む。経粘膜的投与は、点鼻薬または坐剤の使用により達成することができる。経皮投与のため、活性化合物は、一般に当技術分野において公知の通り、軟膏、膏薬、ゲルまたはクリームに製剤化される。
本発明の組成物は、直腸送達のために坐剤（例えば、カカオバターおよび他のグリセリド等、従来の坐剤基剤と共に）または停留かん腸の形態で調製することもできる。
投与および投薬量の均一性を容易にするための単位剤形（ｄｏｓａｇｅ ｕｎｉｔ ｆｏｒｍ）で経口または非経口的組成物を製剤化することは、特に有利である。単位剤形は、本明細書において、処置しようとする被験体のための単位投薬量として適する物理的に別々の単位を指す；必要とされる医薬品担体に関連して所望の治療効果を生じるように計算された、所定量の活性化合物を含有する各単位。本発明の単位剤形の仕様は、活性化合物の特有の特徴および達成すべき特定の治療効果、および個体の処置のためのこのような活性化合物の配合技術分野に固有の限定によって指示され、これに直接的に依存する。
本明細書に記載されている核酸分子の毒性および治療有効性は、例えば、ＬＤ５０（集団の５０％に致死的な用量）およびＥＤ５０（集団の５０％において治療的に有効な用量）を決定するための、細胞培養または実験動物における標準製薬手順によって決定することができる。毒性および治療効果の間の用量比は、治療指数であり、比、ＬＤ５０／ＥＤ５０として表現することができる。高い治療指数を示す化合物が好まれる。毒性副作用を示す化合物を使用することができるが、非感染細胞への潜在的な損傷を最小化し、これにより、副作用を低下させるために、罹患組織の部位へとこのような化合物を標的化する送達系の設計に注意を払うべきである。
細胞培養アッセイおよび／または動物試験から得られるデータは、ヒトにおける使用のための投薬量の範囲を処方することにおいて使用することができる。投薬量は、典型的には、毒性が殆どないまたは全くないＥＤ５０を含む循環濃度の範囲内に収まる。投薬量は、用いた剤形および利用した投与経路に応じて、この範囲内で変動し得る。本発明の方法において使用されるいずれかの化合物のため、治療有効用量は、細胞培養アッセイから最初に推定することができる。動物モデルにおいて用量を処方して、細胞培養において決定されるＩＣ５０（即ち、症状の最大半量阻害を達成する被験化合物の濃度）を含む循環血漿濃度範囲を達成することができる。このような情報を使用して、ヒトにおける有用な用量をより正確に決定することができる。血漿中レベルは、例えば、高速液体クロマトグラフィーにより測定することができる。
限定として解釈するべきではない次の実施例により、本発明をさらに説明する。本願と共に図面を通して引用されているあらゆる参考文献、特許および公開特許出願の内容は、これにより参照により援用される。
材料と方法
マウス系統
網膜色素変性症（ＲＰ）の３匹のマウスモデル、ｒｄ１、ｒｄ１０およびロドプシンノックアウト（ｒｈｏ−／−）を次の試験のために選んだ。これらの動物は、ホスホジエステラーゼ６ベータ遺伝子ｒｄ１対立遺伝子のホモ接合性により、急速な杆体死と、その後に比較的急速な錐体死を示すので、ＦＶＢ／ＮＪバックグラウンドにおけるｒｄ１対立遺伝子を選んだ。ｒｄ１と比較して、ホスホジエステラーゼ６ベータ遺伝子ｒｄ１０対立遺伝子を保有するマウスの表現型は、網膜変性症の僅かにより後の発病によって特徴付けられる。これらの試験において使用したｒｄ１０マウスは、コンジェニックＣ５７ＢＬ／６Ｊバックグラウンドにおけるものであり、よって、行動学的アッセイおよびＥＲＧアッセイに適した。
これらの試験において使用したマウスの第３の系統は、Ｌｅｍら（ＰＮＡＳ ９６巻（２号）：７３６〜４１頁、１９９９年）に記載されているロドプシンｒｈｏヌル対立遺伝子（ｒｈｏ）を保有する。この系統は、中等度のスピードの変性を有する。加えて、ロドプシン遺伝子の変異は、ヒトにおける常染色体ＲＰに存在する最も一般的な変異である。
感染プロトコール
一般に、Ｐ０新生仔を氷上で麻酔した。約０．３μｌのＡＡＶウイルスを、細引きした（ｐｕｌｌｅｄ）ガラスピペットを使用して網膜下空間に導入した。盲目のための動物モデルのいくつかは、緩徐な変性を有するため、動物を１週間〜１年間生存させた。この期間において、動物の視覚誘導行動を検査した。最後に、動物を安楽死させ、その眼を組織学的に検査した。
実験ベクターのいくつかは、組織学的マーカーをコードしないため、ベクターを等しい力価のＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰと同時注射して、ＧＦＰの使用により感染の追跡を可能にした。この場合、実験用ウイルス注射と同じ最終力価の対照ベクター、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰプラスＡＡＶ−ＣＭＶ−ｔｄＴｏｍａｔｏも注射した。ＧＦＰおよびｔｄＴｏｍａｔｏウイルスの組合せを注射し、錐体の１００％が同時感染し、ＯＮＬにおける全細胞の８５％が同時感染したことが示され、これは主に、杆体の同時感染率であった（図７）。細引きしたガラスピペットおよびＥｐｐｅｎｄｏｒｆ ｐｉｃｏｓｐｒｉｔｚｅｒを使用して、０．３マイクロリットルのウイルス懸濁液により、Ｐ０における網膜下空間への注射を行った。動物を離乳させ、後述するアッセイを行うまで標準固形飼料および１２時間明／１２時間暗で維持した。ｒｄ１マウスの解析の時点は、８週間（Ｗ）および１２Ｗであった。ｒｄ１マウスにおける錐体死の動態の以前の記載に基づき、これらの時点を選んだが、これらは、網膜の中心５０％に殆ど錐体が残らない（８Ｗ）ポイントであり、１２Ｗには網膜のおよそ９０％内の錐体が残らない。
発現および機能の検査
タンパク質発現および機能に関してベクターを最初に検査するために、これを野生型（ＷＴ）網膜においてアッセイした。Ｐ０ ＷＴマウスを等しい比のＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰおよび抗酸化ベクターにより同時感染させ、Ｐ２１に屠殺した。ＡＡＶ８は、およそ１週間以内に発現することができ、感染細胞の大部分は杆体となる。ＣＭＶプロモーターは、錐体におけるほど杆体において強力ではないが、免疫組織化学的にＧＦＰ発現を見る（例えば、図１Ｅを参照）およびウエスタンブロット上では十分に強力である。タンパク質解析のために抽出物を調製し、ウエスタンブロットを行った。市販の抗血清を使用した（例えば、図２を参照）。対照網膜をＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰ＋／−ＡＡＶ−ＣＭＶ−ｔｄｔｏｍａｔｏウイルスのみに感染させた。どの程度ベクターが発現しているか評価するために、ＧＦＰと比べた、および酸化防止遺伝子の内在性レベルと比べたＡＡＶ形質導入遺伝子のレベルを評価した。杆体は、網膜における細胞の７０％であるため、このレベルは、ブロットにおいて容易に目に見えた。
組織切片におけるアクロレインの免疫組織化学的検出を使用した酸化の評価により、感染したマウスを酸化防止遺伝子の機能に関して評価した。図３に示す通り、アクロレイン染色のために切片を処理した。
網膜電図検査（ＥＲＧ）
Ｋｏｍｅｉｍａら（ＰＮＡＳ、１０３巻（３０号）：１１３００〜０５頁、２００６年）に従って明所視ＥＲＧを行った。一般に、より高いｂ−波を有するｒｄ１０マウスは、より高い錐体生存と相関する。
マウスを一晩暗順応させ、麻酔し、両方の瞳孔を散大させた。Ｇａｎｚｆｅｌｄドームにおいて１分間の間隔で提示した白色光（１．３７×１０５ｃｄ／ｍ２）の１０ｍｓｅｃ閃光により、暗所で杆体支配的応答を誘発させた。明順応し、１Ｈｚで提示した同じ閃光（１．３７×１０５ｃｄ／ｍ２）による４１ｃｄ／ｍ２杆体脱感作白バックグラウンドの存在下で錐体応答を誘発した。両眼からＥＲＧを同時にモニターし、錐体応答に対してシグナルを平均した。
行動学的アッセイ
行動学的アッセイは、明および暗環境における移動運動検査（Ｃｏｌｌｉｎｓら、Ｊ ｏｆ Ｎｅｕｒｏｓｃｉ Ｍｅｔｈｏｄｓ、６０巻（１〜２号）：９５〜９８頁、１９９５年；Ｌｅｇａｌｉら、Ｎａｔ Ｎｅｕｒｏｓｃｉ、１１巻（６号）：６６７〜７５頁、２００８年を参照）、強制選択水泳（ｆｏｒｃｅｄ−ｃｈｏｉｃｅ ｓｗｉｍ）検査（Ｐｒｕｓｋｙら、Ｖｉｓｉｏｎ Ｒｅｓ、４０巻（１６号）：２２０１〜０９頁、２０００年；ＷｏｎｇおよびＢｒｏｗｎ、Ｇｅｎｅｓ、Ｂｒａｉｎ ＆ Ｂｅｈａｖ、５巻（５号）：３８９〜４０３頁、２００６年を参照）、視運動検査（Ａｂｄｅｌｊａｌｉｌら、Ｖｉｓｉｏｎ Ｒｅｓ、４５巻（１１号）：１４３９〜４６頁、２００５年；Ｌｅｇａｌｉら、Ｎａｔ Ｎｅｕｒｏｓｃｉ、１１巻（６号）：６６７〜７５頁、２００８年；Ｐｒｕｓｋｙら、Ｉｎｖｅｓｔ Ｏｐｈｔｈａｌ ａｎｄ Ｖｉｓｕａｌ Ｓｃｉ、４５巻（１２号）：４６１１〜１６頁、２００４年を参照）および視覚性断崖（ｖｉｓｕａｌ ｃｌｉｆｆ）検査（Ｎａｇａｒら、Ｎｅｕｒｏｓｃｉ、１６０巻（２号）：５１７〜２９頁、２００９年を参照）を含む。
視運動デバイスは、中心にプラットフォームを備えた回転ドラムのように見える。覚醒したマウスをプラットフォームに置き、チャンバーに慣らした。これは、プラットフォームを飛び降りるか否かによって評価した。デバイスに動物を慣らすには、典型的に約５分間を要する。研究者は、動物を観察し、動物がプラットフォームに１〜２分間残ったら、検査を始めた。運動をシミュレートするために、ドラムの内部表面にストライプを明滅させて投射した。ストライプの厚さ、閃光の頻度、コントラストおよび色を時間をわたって変更させて、視覚的性能を決定した。ビデオカメラをマウスに向けて、シミュレートされた運動に対するその応答を評価した。盲目マウスは応答せず；目の見えるマウスはその身体運動を増加させて、動きを追跡するかのようにその頭部も回した。各マウスを実験経過にわたり総計４〜６回検査し、これを３週間〜６ヶ月間持続した。視運動検査は、他の検査では容易に測定されない明瞭度および感度を測定することができるという利点を有する。実験の終結時に、屠殺前に動物をＥＲＧに関して検査した。
光誘発神経節細胞活性記録
動物を麻酔する前に一晩暗順応させた。可視光曝露を最小化するための赤外照明下において、網膜を解剖し、３７度酸素付加リンゲル培地における濾紙片上に、神経節細胞の側を上にマウントした。１０１０光子ｃｍ−２ｓ−１の強度の１秒間の可視光（３６５ｎｍ＋５０５ｎｍ）で網膜を刺激した。単一の神経節細胞の光誘発スパイクを電極により記録し、応答を２０回の試行により平均した。
組織学的解析
眼球を除去し、ＰＢＳ中４％ホルムアルデヒドに置き、その前眼部および水晶体を除去した。この固定液において３０分間固定を続けた。固定された組織を３０％スクロース／ＰＢＳに３時間または一晩浸漬し、ショック凍結し、上側−下側経線に沿って２０μｍの厚さで切片作製した。ローダミン標識したピーナッツ凝集素（ＰＮＡ）、赤色／緑色オプシンおよび青色オプシン抗体を染色に使用した。染色された切片を共焦点レーザー走査顕微鏡において撮影した。定量的比較のため、励起エネルギーレベルおよび曝露持続時間を対となる試料で同じに維持し、撮像して、本来のシグナル強度のダイナミックレンジを保存した。ＩｍａｇｅＪおよびＩｍａｒｉｓソフトウェアを使用して、画像データを定量的に解析した。
錐体の数を決定するための２種類のアッセイを使用して、網膜を組織学的に評価した。網膜全体のフラットマウントを作製し、各網膜の一貫した区域における明るいＧＦＰ細胞の数に関してスコア化した。１２時の位置における焼灼鉄によって付けられたマークに基づきフラットマウント網膜を方向づけ、４個の四分円にマークを付けた。Ｋｏｍｅｉｍａら（ＰＮＡＳ １０３巻（３０号）：１１３００〜０５頁、２００６年）に記載されている通りに、視神経頭から１．５ｍｍの距離で、視神経頭および辺縁の間の線において、定量化のために各網膜四分円における１つの正方形を選んだ。図１Ｆに例証される通り、このような距離に位置する各四分円において、６０×顕微鏡視野を撮影した。Ｉｍａｒｉｓソフトウェアを使用して、明るいＧＦＰ＋細胞の数を定量化した。網膜切片を調製し、抗ＧＦＰと共に抗錐体アレスチンおよび／またはＰＮＡ結合でも染色した（図１Ｂ）。切片は、網膜の５０％において背腹軸に沿って、網膜の５０％において前後軸に沿って作製した。切片全体を通して、錐体マーカーが陽性の細胞の数に関して視神経頭付近の２枚の切片を定量化した。共焦点イメージングおよびＩｍａｒｉｓソフトウェアをこの解析のために使用した。しかし、変性網膜において、非常に異形の錐体は、多くの場合、錐体アレスチンおよびＰＮＡの定量化が困難であることが判明した。ウイルスのＣＭＶプロモーターからの明るいＧＦＰは、スコア化するより頑強な方式をもたらしたため、本発明者らは、抗ＧＦＰによっても染色した。
（実施例１：網膜色素変性症マウスモデルの錐体細胞死に対する抗酸化酵素スーパーオキシドジスムターゼ（ＳＯＤ２）およびカタラーゼの効果）
錐体が、ＲＰにおける酸化の徴候を示すことが一般に認識されている。例えば、錐体は、食餌に抗酸化剤を供給した、あるいは抗酸化遺伝子を過剰発現するように遺伝子導入により修飾したマウスにおいてより長く生存する。加えて、アデノウイルスベクターによりＲＰＥ細胞へと送達されたカタラーゼが、光損傷から隣接する光受容体を保護したことが示された（Ｒｅｘら、Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ １５巻（１０号）：９６０〜６７頁、２００４年を参照）。続いて、錐体への直接的な抗酸化酵素のＡＡＶ媒介性送達は、錐体を保護することができ、加えて、全錐体が感染した訳ではない場合であっても、付近の非感染錐体に対する利益がある場合もある。
ｒｄ１およびｒｄ１０ヌルマウスにおいて系統毎に少なくとも３回実験を行った。いずれかの系統特異的陰性応答が生じる場合は、より多くの成功の機会を得るために、異なる上流変異および変性の異なる動態を有するこれら２系統を検査した。いずれかの陽性の再現性ある組合せが、錐体特異的プロモーターを有するＡＡＶベクターにおいて検査される。
抗酸化防御遺伝子をコードするＡＡＶベクター
抗酸化防御遺伝子、ＳＯＤ２およびカタラーゼをコードする例示的なＡＡＶベクターを図８に描写する。ＳＯＤ２、ＧＰＸ４およびカタラーゼは、光受容体生存性に関係付けられていた（例えば、Ｕｓｕｉら、Ｍｏｌ Ｔｈｅｒａｐ １７巻（５号）：７７８〜８６頁、２００９年；Ｕｅｔａら、ＪＢＣ ２８７巻（１０号）：７６７５〜８２頁、２０１２年を参照）。ペルオキシソーム標的化配列をオルニチントランスカルバミラーゼ由来のミトコンドリア標的化配列に置き換える、Ｕｓａｉら（Ｍｏｌ Ｔｈｅｒａｐ １７巻（５号）：７７８〜８６頁、２００９年）による修飾を有するカタラーゼ対立遺伝子を作製した。この対立遺伝子は、有効であることが判明したが、正常ペルオキシソーム標的化バージョンは有効ではなかった。
ウイルス調製物の感染力を増大する、Ｃ末端チロシンにチロシン変異を有する、ＡＡＶカプシド８型においてベクターをパッケージングした。部位特異的変異誘発を使用して、このカプシド対立遺伝子を作製した。イオジキサノール（Ｉｏｄｉｘｉｎｏｌ）勾配遠心分離と、続くイオン交換カラム精製を使用して、このようなベクターの産生および精製を行った。最終力価は、１０１２〜１０１４ウイルス粒子（ｖｐ）／ｍｌに及び、優れた感染力を有する（図１および図７）。
結果
ＡＡＶベクター
例えば、レーバー先天黒内障患者におけるＡＡＶベクターの使用に成功した。よって、ＲＰ網膜への遺伝子の送達のために、これらのベクターを選んだ。ＡＡＶにより使用することができるプロモーターは、約４．７ＫｂのＤＮＡであるウイルスの幾分限定された容量のために、比較的小さくなる必要がある。ＣＭＶは、非常に広範に発現されるプロモーターではあるが、杆体よりも錐体において活性が高い（図１Ｂ、図１Ｅ）。加えて、ＣＭＶは、ＲＰＥにおいて高レベル発現を駆動することができる。ＲＰＥと共に網膜に過剰なフリーラジカルが存在する場合、これは、カタラーゼによるＲＰＥの形質導入にアデノウイルスが使用された試験において観察された利益を有し得る（Ｒｅｘら、Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ １５巻（１０号）：９６０〜６７頁、２００４年を参照）。よって、初期実験のためにＣＭＶを選んだ。ウイルスが、網膜下空間に正確に送達される場合（動物の約２／３で起こる）、より高齢のステージではなくＰ０に注射することにより、網膜を通して実質的に全ての錐体が感染することが判明した（図１Ａ〜図１Ｄ）。ウイルスのこの広範な播種は、２種の原因によるものである可能性が高い。一方は、Ｐ０網膜の網膜下空間が、ＯＳが存在する前のこの初期ステージにはＯＳおよびＲＰＥ接続を欠くため、比較的オープンであること。よって、ウイルス接種材料は、接種部位から自由に拡散する。さらに、錐体は、網膜下空間の強膜側付近に位置し、ウイルス拡散および細胞への侵入に干渉し得るＯＳおよび内節（ＩＳ）の層は存在しない。よって、これは、ウイルス粒子によって容易にアクセスされる。実際に、この注射プロトコールは、非常に頑強であることが判明し、ＣＭＶ−ＧＦＰは非常に明るいため、明るいＧＦＰ細胞の数を錐体生存の代理として使用することができる（図１Ｆ）。これは、被験遺伝子の送達後の錐体生存の比較的迅速な評価を可能にした。二次スクリーニングにおいて錐体マーカー、錐体アレスチンまたはＰＮＡを染色することにより、このような結果を追跡調査した（図１Ｂ）。
酸化防止酵素
変性の経過における野生型（ＷＴ）およびＲＰ網膜（ｒｄ、一般に）における抗酸化酵素の発現（図２）を検査した。酸素のフリーラジカルからＨ２Ｏ２への変換は、ＳＯＤ酵素、ＳＯＤ１〜３によって行われる。この反応後に、Ｈ２Ｏ２は、カタラーゼまたはグルタチオンペルオキシダーゼによって水および酸素に変換される。ミトコンドリアにおける電子伝達鎖は、全細胞におけるフリーラジカルの主要な供給源であり、光受容体は、そのＩＳにおける全細胞型の中で最高密度のミトコンドリアのうちの１つを有することが公知であるため、高レベルのＧＰＸ１およびＳＯＤ２が光受容体のＩＳに見出されたことに驚きはない（図２Ａ〜図２Ｄ）。
これらが観察された後に、杆体光受容体が、その生存のためにＳＯＤ２またはＧＰＸ１に依存したかどうかを決定した。この目的のため、Ｐ０にエレクトロポレーションを使用して、低分子ヘアピン型（ｓｈ）ＲＮＡプラスミドをＷＴ網膜に送達した（ＭａｔｓｕｄａおよびＣｅｐｋｏ、ＰＮＡＳ １０４巻（３号）：１０２７〜３２頁、２００７年を参照）。この方法は、主に有糸分裂前駆細胞を標的化し、この細胞は、娘細胞にプラスミドを渡し、その８０％は杆体である（錐体は、この時点では有糸分裂後であり、有効にエレクトロポレーションされない）。遍在性ＣＡＧプロモーターにおいて、ＧＦＰを発現するプラスミドと共に、ヘアピンプラスミドを同時エレクトロポレーションした。ＳＯＤ２ノックダウンによる網膜におけるアクロレイン染色によって明らかにされる通り、より高レベルの酸化脂質が存在した（図３）。ＴＵＮＥＬ染色から分かるように、ＧＰＸ１ ｓｈＲＮＡによってエレクトロポレーションした杆体は死滅した（図４）。これらのデータは、光受容体細胞が、頑強な酸化防止能力を必要とするという仮説を支持する。死滅が、単一の酸化防止酵素の喪失後に非常に急速に起こったことは興味深く、これらの酵素が重複性ではないことを示唆する。ＧＰＸ４は、脂質酸化においてより活性であるが、ＧＰＸ１は、それが標的化する具体的な分子については何ら公知ではないため、この結果は、その異なる活性によるものである可能性がある。さらに、酸化防止酵素は、異なる区画、即ち、ミトコンドリア、細胞質またはペルオキシソームを標的化し得るため、酵素局在化が重要となり得る。
よって、２セットのベクターを作製した。一方のセットにおいて、２種の酸化防止防御遺伝子が、同じＡＡＶベクターから発現された。このような感染を追跡するために、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰとの同時感染を使用した。図１に示す通り、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＧＦＰは、錐体において非常に明るく、定量化を可能にし、図７に示す通り、同時感染率は高い。第２のセットのベクターにおいて、２種の酸化防止防御遺伝子が、２種の異なるＡＡＶベクターから発現され、ＧＦＰは、このベクターのうち少なくとも一方に含まれた。２種の異なるベクターに遺伝子を有することの利点は、酸化防止遺伝子の様々な組合せの検査と、単一の遺伝子のみの検査が可能となることである。
ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＳＯＤ２およびＡＡＶ−ＣＭＶ−カタラーゼによるＰ０ ｒｄ１網膜の同時感染のデータは、これらのベクターに同時感染したｒｄ１マウスのＰ５０においてより優れた錐体生存を示す（図１０および図１１）。網膜の中心部分を通って採取された切片における網膜の強膜部分における明るいＧＦＰ細胞の数を定量化した。対照における明るいＧＦＰ＋細胞の数は、２５９＋／−１１３錐体／切片であり、ＳＯＤ２＋カタラーゼ感染網膜における数は、３４２＋／−２９．３錐体／切片であった。
その上、ｒｄ１網膜におけるＳＯＤ２およびカタラーゼ同時過剰発現は、改善された錐体生存を示す。検査した全時点において（Ｐ３０、Ｐ５０、Ｐ６０およびＰ７０）、ＳＯＤ２＋カタラーゼを過剰発現する網膜における錐体密度は、ＧＦＰ過剰発現を有する網膜よりも高い。出生後日数５０において、ＳＯＤ２＋カタラーゼを過剰発現する網膜における錐体密度は、およそ１．５倍高い（１９６＋／−２２．３錐体／０．０６２５ｍｍ２ ｖｓ１３３＋／−６０錐体／０．０６２５ｍｍ２、ｐ値＜０．０２）（図１１）。さらに、光伝達が行われ、錐体機能の重要な指標である錐体外節は、ＳＯＤ２＋カタラーゼ同時過剰発現の際にｒｄ網膜においてより良く保存されている（図１２）。錐体外節は、出生後日数６０においてｒｄ１網膜に含まれるが（図１２Ｂ）、これらは、ＳＯＤ２およびカタラーゼ過剰発現を有する網膜における大部分の残る錐体に存在する（図１２Ｃ）。この表現型の定量化は、ＳＯＤ２およびカタラーゼ過剰発現を有する網膜における明らかなＰＮＡ染色を有する、錐体のパーセンテージの大幅な増大を示した（図１２Ｄ）。
さらに、ＳＯＤ２およびカタラーゼの両方を過剰発現するマウスは、視運動応答（図１３）および光誘発神経節細胞活性（図１４）によって評価される、より優れた全体的な光受容体機能を示した。視運動アッセイによって示される通り、ＳＯＤ２およびカタラーゼをコードするＡＡＶベクターを注射された眼は、出生後日数４０および５０において、非注射眼および対照注射眼の両方と比較してより高い視力を有する（図１３）。出生後日数５０において、左および右眼視力の差（右眼視力−左眼視力）は、対照群および抗酸化ＡＡＶ処置群の間で統計的に有意である（０．００４４サイクル／度ｖｓ０．０８３４サイクル／度、Ｐ＜０．０２）（図１３Ｂ）。加えて、ＳＯＤ２およびカタラーゼを過剰発現する網膜は、神経節細胞の増大した光誘発活性を有した（図１４、左側）。生存する錐体の光応答は、網膜から脳への出力シグナルである神経節細胞活性によって評価した。光刺激のパラメータ（波長および強度）は、錐体光受容体を活性化するが、本質的に感光性網膜神経節細胞（ｉｐＲＧＣ）を活性化しないように選択した。ピーク発火率（スパイク／秒）によって測定される平均神経節細胞活性は、ＳＯＤ２およびカタラーゼ過剰発現を有する網膜において、対照網膜よりも高かった（１０６スパイク／秒ｖｓ３８．７スパイク／秒、ｐ＜０．００５）（図１４）。抗酸化遺伝子療法を与えたマウスは、明−暗ボックスアッセイ、視覚性断崖アッセイおよび網膜電図検査を含む他の機能アッセイによりさらに検査される。
６ヶ月齢ｒｈｏ−／−マウス網膜をＡＡＶ−ＧＦＰ＋ＳＯＤ２＋カタラーゼで処置することにより、他の網膜変性症モデルにおける錐体をレスキューする抗酸化処置の能力を検査した。図２５に示す結果は、抗酸化処置を使用して、盲目をもたらす複数の変異を処置することができることを実証する。
（実施例２：網膜色素変性症のマウスモデルにおける錐体細胞死に対する転写因子ＰＧＣ１αおよびＮｒｆ２の効果）
少なくとも１種の抗酸化酵素の発現の代わりにまたはこれと組み合わせて、酸化防止プログラムの全般的な上方調節は、より優れた錐体生存をもたらし得る（例えば、ＰＧＣ１αおよびＮｒｆ２の発現および／または活性の上方調節により）。ＷＴ網膜における免疫組織化学を使用して、ＰＧＣ１αの発現を検査した（図５）。タンパク質は、全網膜ニューロンにおいて非常に高レベルで見出され、錐体において、杆体よりも高いレベルが見られた。
代替主要調節因子は、Ｎｒｆ２、塩基性ロイシン（ｌｅｕｃｉｎ）ジッパー転写因子である。Ｎｒｆ２は、内在性細胞ストレス防御機序の一部であり、酸化防止酵素の転写を調節することも示された。Ｎｒｆ２は、通常、ユビキチン依存性分解を介したその細胞質結合パートナーＫｅｌｃｈ様ＥＣＨ関連タンパク質１（Ｋｅａｐ１）タンパク質によって、健康細胞において低レベルで維持される。酸化剤による活性化により、Ｋｅａｐ１媒介性Ｎｒｆ２ターンオーバーは、破壊され、Ｎｒｆ２は、蓄積し、核にトランスロケーションし、そこで抗酸化応答エレメント（ＡＲＥ）による小型のＭａｆタンパク質による抗酸化遺伝子の転写をモジュレートする。ＡＲＥは、多くの抗酸化遺伝子の５’領域に見出されるシス作用性エンハンサーである。
マウスＰＧＣ１α対立遺伝子のｃＤＮＡ（２．４Ｋｂ）をＡＡＶ２／８ベクター系に挿入し、ＣＭＶプロモーターの制御下におけるＰＧＣ１αタンパク質の発現を可能にした。トランスフェクトした培養細胞株のウエスタンブロットおよびＰ０のＢｌ６Ｊ網膜の感染の際の感染網膜における免疫組織化学の両方を使用して、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＰＧＣ１αからのＰＧＣ１α発現をアッセイした。ＰＧＣ１α機能性を決定するために、半定量的ＲＴ／ＰＣＲを使用して、その公知標的遺伝子の一部の発現レベルをアッセイした。簡潔に説明すると、標準方法（ＲＮＡｅａｓｙキット、Ｑｉａｇｅｎ）を使用して、Ｐ２１における網膜ＲＮＡ調製物を得て、ＳＯＤ２、ＧＰＸ１および４、カタラーゼならびに脱共役タンパク質（ＵＣＰ）のレベルを対照感染およびＰＧＣ１α感染網膜の間で比較する。パラコートによる負荷後に、上述の通り、より優れた酸化保護（アクロレインおよびカルボニル付加物のＥＬＩＳＡ）のためのアッセイも行う。
ＡｄｄｇｅｎｅからマウスＮｒｆ２遺伝子の全長対立遺伝子を得た。ＣＭＶプロモーターによって駆動されるＮｒｆ２タンパク質を発現するＡＡＶ２／８ベクターを産生した。ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２プラスミドをトランスフェクトした培養細胞株におけるウエスタンブロットと、続く感染網膜における免疫組織化学により、その発現を確認した。数種類の標的遺伝子のＲＴ／ＰＣＲを上述の通りに行った。
結果
ＰＧＣ１αタンパク質は、大部分の網膜細胞型において発現され、錐体光受容体において、杆体よりも高いレベルであった（図５）。ＰＧＣ１αは、分裂促進および抗酸化経路を正に調節するため、その発現パターンは、錐体のより優れた抗酸化能力のためのより高い代謝要求および要件を示す。Ｎｒｆ２は、他方では、正常網膜の光受容体および他の網膜細胞において非常に低レベルで発現される（図６Ａ）。しかし、網膜変性症の杆体光受容体細胞死フェーズにおいて、免疫組織化学によって評価されるＮｒｆ２タンパク質レベルは上昇した（図６Ｂ〜図６Ｃ）。先に記載された通り、Ｎｒｆ２−Ｋｅａｐ１系は、酸化剤の細胞センサーとして機能する。よって、上昇したＮｒｆ２レベルは、杆体変性の際の錐体におけるより高い酸化ストレスおよび酸化剤に対処するより大きい必要を示唆する。網膜変性症における錐体におけるこのＮｒｆ２タンパク質レベルの増大は、別個の遺伝的変異を有する２種の異なるｒｄマウスモデルにおいて観察され、錐体における増大する酸化ストレスが、網膜色素変性症を含む網膜変性症疾患の一般的な問題であることを示唆する。
ＡＡＶベクターによるＰＧＣ１αおよびＮｒｆ２の同時過剰発現は、Ｐ５０のｒｄ１網膜における錐体生存を延長する（図１５）。変性は、ｒｄマウス網膜における中心から辺縁へと進行するため、Ｐ５０において、死滅した錐体光受容体の大部分は、網膜の中心区域に存在する（図１５Ａ）。ＰＧＣ１αおよびＮｒｆ２の過剰発現は、Ｐ５０に網膜中心における錐体生存をレスキューした（図１５Ｂ）。
レスキュー表現型の定量化は、ＰＧＣ１αおよびＮｒｆ２過剰発現が、錐体生存をレスキューしたことを示し、処置網膜において、対照網膜よりも有意に高い錐体密度であった（２７３＋／−６錐体／０．０６２５ｍｍ２ｖｓ１３３＋／−６０錐体／０．０６２５ｍｍ２、ｐ＜０．０５）（図１６）。
加えて、ＰＧＣ１αおよびＮｒｆ２同時過剰発現は、Ｐ５０に、ＳＯＤ２およびカタラーゼの同時過剰発現よりもよく錐体生存を促進した（ｐ＜０．００１）。さらに、このレスキューは、Ｐ８０に、対照網膜よりも依然として有意に高かった（ｐ＜０．０５）（図１６）。
ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＰＧＣ１αおよびＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２をトランスフェクトしたＰ３０ ｒｄ１網膜の同時感染のデータは、ＰＧＣ１αおよびＮｒｆ２同時過剰発現が、Ｐ３０（図１７および図１８）、Ｐ４０およびＰ５０に、ｒｄ１網膜における錐体外節を保存することを示す。錐体外節の定量化は、Ｎｒｆ２過剰発現が、錐体外節を保存したことを示し、処置網膜において、対照網膜よりも有意に高いパーセンテージであった（ｐ＜０．０５）（図２０）。
その上、Ｎｒｆ２単独の過剰発現は、Ｐ５０にｒｄ１網膜における錐体生存を延長した（図１９）。Ｐ５０において、Ｎｒｆ２を過剰発現する網膜における平均錐体密度は、ＰＧＣ１α単独またはＮｒｆ２およびＰＧＣ１αのいずれかによる網膜よりも高かった。さらに、Ｎｒｆ２の処置は、Ｐ４５に、ｒｄ１０マウスへのＮｒｆ２の添加によりスーパーオキシドレベルが低下したことを示し（図２１）、Ｎｒｆ２の過剰発現は、Ｐ３０のｒｄ１マウスにおける錐体における脂質酸化を低下させた（図２２）。
さらに、Ｎｒｆ２を過剰発現するマウスは、視運動アッセイ（図２３）、網膜電図検査（図２４）および光誘発神経節細胞活性（図１４、右側）によって評価される、より優れた全体的光受容体機能を示すことが示された。視運動アッセイによって示される通り、Ｎｆｒ２をコードするＡＡＶベクターを注射された眼は、Ｐ５０に、非注射眼および対照注射眼の両方と比較して、より高い視力を有する（図２３）。各動物の右眼／左眼視力の比を使用して、処置なしの動物間の変動を最小化した。ＡＡＶ−ＣＭＶ−Ｎｒｆ２処置網膜のＲ／Ｌ比は、対照処置網膜よりも有意に高かった（ｐ＜０．０５）。加えて、Ｎｒｆ２を過剰発現する網膜は、網膜電図検査解析によって示される通り、実質的により優れた波形を有した。右眼／左眼ｂ−波振幅の比は、Ｎｒｆ２処置マウスにおいて、対照マウスよりも有意に高かった（図２４）。
Ｎｒｆ２を過剰発現する網膜は、神経節細胞の増大した光誘発活性も有した（図１４）。上述する神経節細胞活性により、生存する錐体の光応答を評価した。平均神経節細胞活性は、Ｎｒｆ２過剰発現を有する網膜において、対照網膜よりも高かった（図１４）。これらの機能アッセイの結果は、網膜色素変性症のマウスモデルにおける錐体機能が、Ｎｒｆ２処置により保存されたことを実証する。
（実施例３：網膜神経節細胞に対する転写因子Ｎｒｆ２および抗酸化酵素スーパーオキシドジスムターゼ（ＳＯＤ２）の効果）
網膜は、網膜神経節細胞（ＲＧＣ）を脳内のその標的に接続する、１個の白質路、視神経を有する構造である。周囲の灰白質からのこれらの軸索の単離は、神経の挫傷による純粋軸索傷害を作製して、緑内障のモデルとして使用する特有の機会を提供する（例えば、ＴｅｍｐｌｅｔｏｎおよびＧｅｉｓｅｒｔ（２０１２年）Ｍｏｌ Ｖｉｓｉｏｎ １８巻：２１４７〜２１５２頁を参照）。視神経挫傷（ＯＮＣ）は、比較的軽度であり、眼血流を妨げないため、視神経離断等、他の方法を上回る利点を有する。ＯＮＣは、多数のマウス系統における神経節細胞傷害を検査するための単純な同調的アプローチとして、特に有用である。この実験モデルは、緑内障のマウスモデルにおいて起こる同じ分子変化による傷害（ｉｎｓｕｌｔ）を生じ、誘導されたおよび／または内因性の眼内圧上昇の両方が存在する。
したがって、視神経挫傷後のＲＧＣの生存に対する抗酸化防御タンパク質、Ｎｒｆ２およびＳｏｄ２の発現増大の効果を検査した。２週間前にその一方の眼がＡＡＶ２−ＧＦＰ（ｎ＝４）、ＡＡＶ２−Ｎｒｆ２（ｎ＝８）またはＡＡＶ２−Ｓｏｄ２（ｎ＝８）に感染した野生型マウスを麻酔し、視神経を挫傷させた。挫傷２週間後に、動物を屠殺し、網膜のフラットマウントを調製し、ＲＧＣマーカー、ニューロンベータＩＩＩ／チューブリンマーカーＴＵＪ１および軸索再生マーカー、ＧＡＰ４３による免疫組織化学的染色により、ＲＧＣの数を計数した。図２６に実証されている通り、Ｎｒｆ２またはＳｏｄ２による処置は、軸索再生を増大させなかったが（図２６Ｂ）、Ｎｒｆ２およびＳｏｄ２の両方は、ＡＡＶ２−ＧＦＰによる処置と比較して、ＲＧＣ生存を有意に促進した（図２６Ａ）。したがって、１種または複数の抗酸化防御タンパク質の発現増大は、被験体における緑内障等、網膜障害の処置に有用である。
均等物
当業者であれば、本明細書に記載されている本発明の特異的な実施形態の多くの均等物を認識できよう、あるいは単なるルーチン実験法を使用してそれを確かめることができる。このような均等物は、次の特許請求の範囲によって包含されることが意図される。

Claims (12)

  1. 被験体における加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）を予防または処置するための医薬組成物であって、Ｎｒｆ２をコードする核酸分子を含む組換えＡＡＶベクターを含む、医薬組成物。
  2. 前記組換えＡＡＶベクターが、組換えＡＡＶ８ベクターおよび組換えＡＡＶ２／８ベクターからなる群から選択される、請求項１に記載の医薬組成物。
  3. 前記核酸分子がＣＭＶプロモーターに作動可能に連結している、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  4. 前記核酸分子が網膜細胞型特異的プロモーターに作動可能に連結している、請求項１または２に記載の医薬組成物。
  5. 前記網膜細胞型特異的プロモーターが、杆体特異的プロモーターである、請求項４に記載の医薬組成物。
  6. 前記網膜細胞型特異的プロモーターが、錐体特異的プロモーターである、請求項４に記載の医薬組成物。
  7. 前記網膜細胞型特異的プロモーターが、杆体および錐体特異的プロモーターである、請求項４に記載の医薬組成物。
  8. 前記網膜細胞型特異的プロモーターが、網膜色素上皮（ＲＰＥ）細胞プロモーターである、請求項４に記載の医薬組成物。
  9. 前記核酸分子がさらに、カタラーゼ、スーパーオキシドジスムターゼ２（ＳＯＤ２）およびペルオキシソーム増殖因子活性化受容体ガンマコアクチベーター１−アルファ（ＰＧＣ１α）ならびにこれらのいずれかの組合せからなる群より選択される抗酸化防御遺伝子をコードする、請求項１から８のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  10. 前記組成物が、眼内投与に適している、請求項１から９のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  11. 前記眼内投与が、硝子体内投与、網膜下投与、結膜下投与、テノン下投与、眼周囲投与、眼球後投与、脈絡膜上投与および強膜内投与からなる群より選択される、請求項１０に記載の医薬組成物。
  12. 加齢性黄斑変性症を有する被験体を処置するための医薬の製造における、請求項１から１１のいずれか一項に記載の組成物の使用。
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