JP6414904B2 - 微細藻類、藍藻類及びそれらの代謝産物の産生のためのプロセス - Google Patents
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Description
微細藻類及び/又は藍藻類における少なくとも1種の代謝産物の産生増強のためのプロセスであって、
(i)産生期を通じて微細藻類又は藍藻類株を培養するステップと、
(ii)(a)約pH6以下のpHへのpH低下、その後の約pH7以上のpHへのpH上昇、及び(b)少なくとも400μmol/m2/秒への光照射量の増加を含む刺激に微細藻類又は藍藻類の培養物を曝露するステップと、
を含むプロセスが提供される。
微細藻類及び/又は藍藻類の産生若しくは増殖又はそれらに由来する少なくとも1種の代謝産物の産生のためのプロセスであって、
(i)(a)微細藻類又は藍藻類をプロセス水原料において培養し、プロセス水原料で増殖可能な微細藻類又は藍藻類を選択するステップ、及び/又は(b)微細藻類又は藍藻類を、約400〜700nmの光波長のスペクトル内の赤色光及び青色光の2つのピークを発光する発光ダイオード(LED)の下で培養するステップを含む適応段階と、
(ii)選択された(i)の微細藻類又は藍藻類を、適応段階で使用されたのと同じプロセス水原料で及び/又は適応段階で使用されたのと同じ光条件下で培養するステップを含む産生期と、
を含むプロセスが提供される。
微細藻類及び/又は藍藻類における少なくとも1種の代謝産物の産生増強のためのプロセスであって、
(i)産生期を通じて微細藻類又は藍藻類株を培養するステップと、
(ii)(a)約pH6以下のpHへのpH低下、その後の約pH7以上のpHへのpH上昇、及び(b)少なくとも400μmol/m2/秒への光照射量の増加を含む刺激に微細藻類又は藍藻類の培養物を曝露するステップと、
を含むプロセスを提供する。
産生期における微細藻類又は藍藻類株の増殖は典型的には指数速度で生じる。すなわち、いくつかの実施形態において、産生期は培養物の指数増殖期に対応する。
約400nm〜700nmの波長の連続的人工光、及び/又は
約50μmol/m2/秒〜200μmol/m2/秒の連続的人工光、及び/又は
約20℃〜40℃の温度、及び/又は
約500mV〜800mVの酸素レベル、及び/又は
約pH6〜pH9のpH
から選択され得る。
本発明のプロセスの第2ステップでは、微細藻類又は藍藻類の培養物を刺激に曝露し、ここで、刺激は、(a)約pH6以下のpHへのpH低下、その後の約pH7以上のpHへのpH上昇、及び(b)少なくとも約400μmol/m2/秒への光照射量の増加を含むか、それから本質的になるか又はそれからなる。
微細藻類又は藍藻類株の刺激への曝露の1つの効果は、微細藻類又は藍藻類における特定の代謝産物の産生を誘導又は促進することである。本明細書で定義される刺激への特定の微細藻類及び/又は藍藻類株の曝露が特定の代謝産物の大量の産生を導き、その特定の代謝産物は使用される微生物の株に依存的であることが本発明者らによって注目されている。したがって、上述の本発明のプロセスを実施する目的は、微細藻類及び/又は藍藻類の細胞における少なくとも1種の代謝産物の産生を増強することである。そのような代謝産物は、典型的には、培養物を刺激に曝露した後のさらなる増殖期間の後に回収される。代謝産物は、当業者に知られている任意の適切な手段(例えば、Bligh,E.G.and Dyer,W.J. 1959 A rapid method for total lipid extraction and purification. Can.J.Biochem.Physiol. 37: 911−917に記載の手段)を用いて回収、精製及び/又は分析され得る。
GC−MS測定を使用する場合は、藻類生成物の試料25mgを内部標準と培養試験管中で混合する。メタノール中の0.5N水酸化ナトリウム1.5mlを添加し、試験管に栓をして100℃、5分間加熱する。冷却し、2ml BF3/メタノール試薬を添加し、試験管に栓をして混合し、100℃、30分間加熱する。冷却し、イソ−ヘキサン+BHTの2ml、次いで飽和塩化ナトリウム5ml、試験管に栓をして30秒間強く撹拌。室温に冷却し、層に分離させる。上部のイソヘキサン層を無水硫酸ナトリウムの短いカラムに通し、回収。水層をイソ−ヘキサン+(ブチルヒドロキシトルエン)BHT 2mlで抽出し、上部のイソヘキサン層を無水硫酸ナトリウムのカラムに通し、他の試料とともに溶媒を回収。カラムをイソ−ヘキサン+BHT 2mlで洗浄し、同じ試料試験管に入れた。
本発明のプロセスと併せて使用するための微細藻類又は藍藻類は、任意の適切な藻類又は藍藻類株から選択され得る。適切な微細藻類株は、緑色微細藻類;淡水微細藻類;緑藻植物門;プレウロクロリス科;トラキジスカス種;クロロギッバ(Chlorogibba)種;及びディクチオスファエリウム・クロレロイデスから選択され得る。適切な藍藻類株は、クロオコッカス目(Chroococcales);シネコシスティス(Synechocystis)属又はシネココッカス(Synechoccocus)属から選択され得る。
微細藻類及び/又は藍藻類の産生若しくは増殖又はそれらに由来する少なくとも1種の代謝産物の産生のためのプロセスであって、
(i)(a)微細藻類又は藍藻類をプロセス水原料で培養し、プロセス水原料で増殖可能な微細藻類又は藍藻類を選択するステップ、及び/又は(b)微細藻類又は藍藻類を、約400〜700nmの光波長のスペクトル内の赤色光及び青色光の2つのピークを発光する発光ダイオード(LED)の下で培養するステップを含む適応段階と、
(ii)選択された(i)の微細藻類又は藍藻類を、適応段階で使用されたのと同じプロセス水原料で及び/又は適応段階で使用されたのと同じ光条件下で培養するステップを含む産生期と、
を含むプロセスが提供される。
プロセス水原料は、産業プロセスシステム又は家庭廃水システムから供給され得る。窒素及びリン酸などの重要な藻類増殖栄養素は典型的には前記原料中に存在する。微量元素及びビタミンなどの他の藻類賦活物質が存在してもよい。食品、清涼飲料及び醸造所の部門はそのような適切な多量のプロセス水流を有する。他の栄養素が豊富でない淡水源も、栄養素が標準的増殖培地において使用されるレベルと同等まで添加される場合は使用することができる。
約400nm〜700nmの波長の連続的人工光、及び/又は
約50μmol/m2/秒〜200μmol/m2/秒の連続的人工光、及び/又は
約20℃〜29℃の温度、及び/又は
約pH7〜pH9のpH
を含む最適培養条件下、適応段階においてプロセス水原料中で培養される。
a)調整された連続光PAR波長及びプロセス水ストレスを用いて、EPAに富むプレウロクロリス科を含む緑藻植物門内の種(species)に属する藻類並びにクロオコッカス目シネコシスティス属及びシネココッカス属の藍藻類を単離、継代培養及び調製するために使用される上流培養期。プレウロクロリス科の藻類及びクロオコッカス目シネコシスティス属及びシネココッカス属の藍藻類は、同様の光放出及び水源を使用するバイオリアクターにおける大規模化のために現状で準備が整っている。結果は、栄養素を添加した標準水で、日光又は蛍光照明で増殖させた同じ培養物と比較して2倍に及ぶ増殖速度の増大が種々の株にわたって予測されることを示す。
b)緑藻植物門プレウロクロリス科の藻類又はクロオコッカス目シネコシスティス属及びシネココッカス属の藍藻類を産業プロセス水、+/−栄養素(NaNO3(0.25g/L);CaCl2・2H2O(0.025g/L);MgSO4・7H2O(0.075g/L);K2HPO4(0.075g/L);NaCl(0.025g/L);KH2PO4(0.175g/L);FeSO4・7H20(4.98mg/L);H2SO4(0.01μl/L);H3BO3(0.1142g/L);ZnSO4・7H2O(0.00882g/L);MnCl2・4H2O(0.00144g/L);MoO3(0.00071g/L);CuSO4・5H2O(0.00157g/L);Co(NO3)2・6H2O(0.00049g/L);EDTA(0.005g/L);KOH(0.031g/L)を含む100%標準BB増殖培地)中で増殖させ、連続流システム中において特定のPAR光線波長及び照射量レベルが指数増殖期におけるバイオマス生成物の設定比率での連日回収を可能にするように維持される光バイオリアクター期。前述の脂質、脂肪酸及びそれらの代謝産物並びに生体タンパク質を含み、プレウロクロリス科の藻類又はクロオコッカス目シネコシスティス属及びシネココッカス属の藍藻類のバイオマス生成物。バイオリアクターには、プロセス水、又は次の回収前に藻類細胞密度を指数増殖段階に回復させるように栄養素で改良されたプロセス水が補充される。
本発明は、ソーラー、風、水、地熱、熱及び/又は他の再生可能エネルギーなどの標準的又は再生可能なエネルギーの任意の組み合わせを用いて、光バイオリアクターに動力を供給し、連続的で高い収量の藻類バイオマスを産生する、統合されたプロセスを提供する。効率的で費用対効果の高い方法を使用することによって、藻類バイオマスは、バイオディーゼル、バイオ灯油、ガソリン、エタノール及び他の有用な副産物を産生するためにさらに精製される。
システムは、ソーラー、風、水、地熱、熱及び/又は他の再生可能エネルギーなどのエネルギーを用いる自家動力式のものとすることができる。これらの種々のエネルギー源は、エネルギーを保存及び供給するために拡張可能な貯蔵設備(例えば蓄電池群)を使用する商業的動力管理システムを通じて管理される。
プロセスは、標準的及び/又は再生可能エネルギー源の組み合わせによって動力を供給される多様な低電圧光(例えば、LED及び他の発光源)を使用し、ここで、光は、脂質又は他の商業的に有用な副産物を損なうことなく藻類の増殖を最適化するために調整される。
EPS産生に使用される微細藻類株は、標準的フラスコ培養で産業プロセス水の不均一な供給において維持され、調整された光線パターンを有する低エネルギーLED設備を介してPAR照明を供給される。光は、PBR内で内部から又は外部から供給され得る。培養物は、廃水成分及びLED照明に適応した細胞を選択するために毎月継代培養する。この表現型選択プロセスは、各継代培養でのEPS産生について確認するための評価ステップを含む。母培養物は、適応プロセスを継続するためにこれらの増殖条件下で維持される。
微細藻類の産生のための小規模PBRを開発するために非常に多くの作業が行われてきた(g)。商用規模PBR(>100,000L)は、大容量を有さねばならず、専有する空間の観点から小さな専有面積を有するべきである。付加的に透明な表面、高い物質移動速度を有さねばならず、多量のバイオマス収量を産生できなければならない。さらにPBRのすべての設計は、微細藻類の個々の株の固有の要求を考慮するべきであり、維持に手がかからず頑丈であるべきである。
藻類培養システムは、人工光、ソーラー光又は両方によって照らされ得る。閉鎖PBRにおける高バイオマス微細藻類産生を調節するために最も重要な要因の1つは、光照射量及び発せられる光スペクトルの質である。PBRが屋外に設置される場合、日中及び夏季に見られる高い光レベルに限定され得るが、これは地理的に変動する。天然の太陽光中の紫外線(「UV」)のレベルは、日中のいくつかの時点で藻類の光阻害を生じる可能性もあり、このため、人工光を使用するPBRの潜在的調節を欠いている。
浄化排煙がCO2とともに、藻類増殖のための栄養培地として使用される改良プロセス水を供給する「廃」流の潜在的使用は、文献において長期間議論されてきた。今日までに確立された重要で、成功した実証プロジェクトがいくつかある。ハイブリッドシステムを使用すると、藻類は産業用発電CO2排出の20%を再利用するために使用され得ると推定されている。CO2を捕捉する新規の安価な材料が開発されると、これはPBRの費用及びエネルギー必要量を低下させる。
藻類多糖類は、現在商業的に使用されている(d)。土壌藻類は、種々の細胞外高分子物質(EPS)、特にそれらの生体機能に重要な役割を果たしている可能性のある多糖類を排出することが知られている(e)。菌体外多糖(EPS)形成藻類株は、バッチ期及びその前に形成されたEPS内に潜在的な毒性要素を捕捉することによって改善するために水中でも使用されるという利益を有する。銅などの元素がこれらの粘液質化合物によって結合され得るという明らかな証拠がある(i)。このことは、下流での放出又は使用のために水質浄化が主な目的である場合に明らかな価値を有する。EPS組成物について行われた炭水化物分析は、94〜95%中性単糖及び約5〜6%ウロン酸を示した。後者は、重金属の結合のために特に重要である。
プレウロクロリス科の藻類又はクロオコッカス目シネコシスティス属及びシネココッカス属の藍藻類を栄養改良水、継続的PAR照明条件(波長400〜700nm内)で6か月間プレインキュベートし、定期的に継代培養した。単離された培養物を、それらを指数増殖期にするためにさらに継代培養し、一連の50Lバイオリアクターにおいて使用した。藻類接種物の開始細胞密度は、継代培養藻類から採取した1ミリリットル当たり細胞106個であり、栄養改良水を含む50Lバイオリアクターに移し、連続的PAR照明条件(波長400〜700nm)の存在下で指数増殖期に達するようにした。プロセスは、pH(6〜9に維持);温度(20〜40℃に維持);通気(0.02〜1.0v/v/m−1分間当たり液体体積当たりの空気体積);及び/又はCO2(始動の終了時に0%、初回回収時に少なくとも0.7%だが、経時的にはシステム内で5%に達する場合がある);O2500〜800mVに維持);PBR通気での初回細胞での最大光照射量(600μmol m−2 s−1)、通気、CO2(開始時0%添加CO2、回収時までに0.7%に上昇);細胞密度、温度(平均27℃)及び光到達量(1日24時間)を含む種々のパラメーターについて調節した。最大指数増殖の近くに達したときに、500g湿潤藻類バイオマス生成物をリアクターから取り出した。メタノール/塩化アセチル/ヘキサンを含有する溶媒混合物を添加し、天然脂肪酸(lipid acid)のメチルエステルを産生した。メチルエステルは、ヘキサン及びアセトン溶液を用いるクロマトグラフィーによって分離し、次に蒸発させてエイコサペンタエン酸1.6gを得た。クロマトグラフィーは、ミリスチン酸、パルミチン酸、ベヘン酸、ラウリン酸、リノール酸、αリノレン酸、ステアリン酸などの純粋な試料ももたらした。
バイオマス50.08gを6時間、105℃で乾燥させた。エクシケーター(exicator)で冷却後、試料を1時間、105℃のオーブン内に置き、再度秤量した。ソックスレー抽出器内で乾燥バイオマスを260ml石油エーテル中で8時間、抽出カプセル内で抽出した。真空回転蒸発器での溶媒の蒸発後、試料に窒素の細流を通すことによって試料をさらに乾燥させ、冷却後に再度秤量した。脂質を得るために、試料をヘキサン50mlに溶解し、半分に分けた。活性炭10グラムを第1試料に添加し、溶液をろ過し、再度蒸発させ、窒素を通し、秤量した。まだ少し着色していたことから、第2試料については活性炭20を使用した。
ディクチオスファエリウム・クロレロイデス(ALG03)をボールド基本培地中で4日間増殖させた。図5aは、藻類が27℃、最適光照射量での最適増殖のために比較的低いレベルの栄養素を必要とすることを示す。図5bは、藻類が27℃、25%BB培地中、7日間、低光量で最も増殖することを示す。
ガラクトース(約20〜21%)
グルコース(約20〜21%)
未同定ヘキソース(約12〜13%)
ラムノース(約12%)
未同定メチル化ヘキソース(約9〜10%)
未同定メチル化ヘキソース(約7〜8%)
マンノース(約6〜7%)
キシロース(約3〜4%)
アラビノース(約1〜2%)
不明単糖(約0.5%まで)
不明単糖(約0.5〜1.0%まで)
ウロン酸(約5〜6%)
12週間にわたる温室試験において痩せた砂質土でニラを育てるために細流灌漑を使用した結果は、図11の画像で見ることができる。左から右へ;藻類を含まない対照;植栽で使用される菌根真菌共生生物(グロムス菌種の混合物);毎週使用される藻類;藻類及び菌根真菌共生生物。結果は、ニラの生育及び栄養において1週間に2回添加されたディクチオスファエリウム・クロレロイデスALG03細胞の増殖促進効果を明らかに示す。適応した菌根真菌共生生物混合物とともに使用した藻類細胞の相乗効果が観察された。
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Claims (14)
- クロロギッバ属(Chlorogibba)から選択される微細藻類におけるエイコサペンタエン酸の産生増強のためのプロセスであって、
(i)産生期を通じてクロロギッバ属の微細藻類株を培養するステップと、
(ii)(a)pH7〜pH9のpHからpH5〜pH6のpHへのpH低下、その後のpH7〜pH9のpHへのpH上昇、及び(b)50〜200μmol/m2/秒から400〜2000μmol/m2/秒へのLED送達照射量の増加を含む刺激に微細藻類の培養物を曝露するステップと、
を含むプロセス。 - 産生期は指数増殖期に対応する、請求項1に記載のプロセス。
- 産生期は、指数増殖を可能にする条件下での微細藻類株の増殖を含む、請求項1又は2に記載のプロセス。
- 産生期は、光バイオリアクターにおける微細藻類株の増殖を含む、請求項1〜3のいずれか一項に記載のプロセス。
- 産生期は、PARスペクトル400〜700nm内の赤色光及び青色光の2つのピークを発光するLEDの下での微細藻類株の増殖を含む、請求項1〜4のいずれか一項に記載のプロセス。
- 前記培養物は天然の太陽光に曝露されない、請求項1〜5のいずれか一項に記載のプロセス。
- 微細藻類の培養物を、指数増殖のピークで及び/又は定常増殖期の開始時に前記刺激に曝露する、請求項1〜6のいずれか一項に記載のプロセス。
- 前記刺激はさらに炭素源の添加を含む、請求項1〜7のいずれか一項に記載のプロセス。
- pH低下はCO2の添加によって開始される、請求項1〜8のいずれか一項に記載のプロセス。
- pHは、30分間〜2時間の期間、pH5〜pH6のpHに低下し、前記期間は光照射量の増加に先行する、請求項1〜9のいずれか一項に記載のプロセス。
- 微細藻類の前記刺激への曝露に続いて、微細藻類を代謝産物の回収前に48時間のさらなる期間培養する、請求項1〜10のいずれか一項に記載のプロセス。
- 微細藻類株はクロロギッバ種(Chlorogibba sp.)である、請求項1〜11のいずれか一項に記載のプロセス。
- 微細藻類株は、受託番号CCAP817/1の下にCulture Collection of Algae and Protozoaに寄託されたクロロギッバ・アロルゲイ(Chlorogibba allorgei)の株又はそれに由来する変異株である、請求項1〜11のいずれか一項に記載のプロセス。
- 培養物を刺激に曝露した後のさらなる増殖期間の後にエイコサペンタエン酸を回収する追加のステップを含む、請求項1〜13のいずれか一項に記載のプロセス。
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