JP6407247B2 - 組織サンプルからのタンパク質キネティックスバイオマーカーを、生体内で同位体標識した後の、体液からのタンパク質キネティックスバイオマーカーに取りかえるための方法 - Google Patents
組織サンプルからのタンパク質キネティックスバイオマーカーを、生体内で同位体標識した後の、体液からのタンパク質キネティックスバイオマーカーに取りかえるための方法 Download PDFInfo
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Description
この出願は、2013年3月15日に提出された米国仮特許出願第61/801,815の利益を主張し、その全文が参照により本明細書に組み込まれる。
1.分野
本開示は、概して、タンパク質キネティックスを測定するための方法に関し、より具体的には、同位体標識に基づく、体液中のバイオマーカーを用いて、組織タンパク質のキネティックスを測定するための方法に関する。
調査のための細胞または組織のサンプリングである生検は、種々の疾患(例えば、癌)の診断と治療において重要な役割を果たしている。多くの場合、生検は、疾患の病因に重要であると知られている目的の組織中の特定のタンパク質に関する情報を取得するために行われる。例えば、コラーゲンI型またはVI型、基質タンパク質、およびルミカン(マトリックスプロテオグリカン)は、肝線維症において役割を果たすことが知られている。従来、侵襲的な生検は、肝繊維症に罹っているか、または肝繊維症のリスクがある、被検体におけるコラーゲンまたはルミカンのキネティックスを含むコラーゲンまたはルミカンの調査を可能にするために実施されていた。最も侵襲的な手段であろう生検は、被検体にリスク要素を与え、また、多くの場合、高価である。
本開示の特定の態様は、提供される体液中のタンパク質の測定によって、医療目的の組織中のタンパク質の、合成速度、分解速度、運搬速度、または他の動態学的パラメータの速度を、組織の身体的試料採取を必要とせずに測定するための方法に関する。これらの方法は医療目的の組織中の標的タンパクも、医療目的の組織から漏出する、または放出され得ることに起因して、体液(例えば、血漿)中で見出され得るという発見を利用している。それゆえ、同位体標識(例えば、放射性同位体または安定な非放射性同位体)で標的タンパク質を標識することによって、同位体標識タンパク質を、医療目的の組織自体よりも非侵襲的な手段で有利に入手できる体液から収集、濃縮および/または単離することができる。
図1は、“仮想生検”方法の例示的な概要を示している。
以下の説明は、例示的な方法、パラメータなどを示す。しかし、そのような説明は、本開示の範囲の限定を意図するものではなくて、例示的な実施形態の説明として提供されることを認識するべきである。
本開示の実施では、他で指摘しない限り、当該技術分野の範囲内である、分子生物学(組み換え技術を含む)、微生物学、細胞生物学、生化学および免疫学、の従来技術を使用する。そのような技術は、Molecular Cloning: A Laboratory Manual, second edition (Sambrook et al., 1989) Cold Spring Harbor Press、Oligonucleotide Synthesis (M. J. Gait, ed., 1984)、Methods in Molecular Biology, Humana Press、Cell Biology: A Laboratory Notebook (J. E. Cellis, ed., 1998) Academic Press、Animal Cell Culture (R. I. Freshney, ed., 1987)、Introduction to Cell and Tissue Culture (J. P. Mather and P. E. Roberts, 1998) Plenum Press、Cell and Tissue Culture: Laboratory Procedures (A. Doyle, J. B. Griffiths, and D. G. Newell, eds., 1993-8) 3. Wiley and Sons、Methods in Enzymology (Academic Press, Inc.)、Handbook of Experimental Immunology (D. M. Weir and C. C. Blackwell, eds.)、Gene Transfer Vectors for Mammalian Cells (J. M. Miller and M. P. Cabs, eds., 1987)、Current Protocols in Molecular Biology (F. M. Ausubel et al., eds., 1987)、PCR: The Polymerase Chain Reaction, (Mullis et al., eds., 1994)、Current Protocols in Immunology (J. E. Coligan et al., eds., 1991)、Short Protocols in Molecular Biology (Wiley and Sons, 1999)、and Mass isotopomer distribution analysis at eight years: theoretical, analytic and experimental considerations by Hellerstein and Neese (Am J Physiol 276 (Endocrinol Metab. 39) E1146-E1162, 1999)などの、文献に十分に説明されている。さらに、市販のアッセイキットおよび試薬を使用する実験手順は、他で言及しない限り、製造者が規定したプロトコルに従って、典型的に用いられる。
他で定義しない限り、本明細書で使用されるすべての、技術用語、記号、および他の科学用語は、本開示が属する技術分野の当業者によって一般的に理解される意味を有することを意図するものである。いくつかの場合、一般的に理解される意味を有する用語は、明確性のために、および/または、前もって参照するために、本明細書で定義され、また、本明細書における、そのような定義の包含は、当該技術分野で通常理解されることと実質的に異なることを意味すると、必ずしも解釈されるべきではない。本明細書で記載または参照されている技術および実験手順は、当業者によって、例えば、Mass isotopomer distribution analysis at eight years: theoretical, analytic and experimental considerations by Hellerstein and Neese (Am J Physiol 276 (Endocrinol Metab. 39) E1146-E1162, 1999)などの従来の方法論を用いて、通常よく理解され、かつ一般的に使用される。必要に応じて、市販のキットおよび試薬の使用に関する実験手順は、他で指摘しないかぎり、製造者によって規定されたプロトコルおよび/またはパラメータに従って、通常に行われる。
本開示は、体液中のタンパク質の測定によって、組織の身体的試料採取を必要とせずに、医療目的の組織中のタンパク質の動態学的パラメータを測定する方法に関する。当該方法は、組織中の1つ以上の標的タンパク質を選択することと、1つ以上の同位体標識標的タンパク質を生成するために、同位体標識分子が1つ以上の標的タンパク質に入り込み、当該1つ以上の標的タンパク質を標識するのに十分な期間、被検体に同位体標識分子を投与することと、体液を収集することであって、当該体液は、組織から漏出したか、または放出された1つ以上の同位体標識標的タンパク質を含有している、収集することと、当該体液から1つ以上の同位体標識標的タンパク質を濃縮または単離することと、濃縮または単離された1つ以上の同位体標識標的タンパク質の、同位体含有量、取り込み速度、ならびに/または、同位体含有量および/もしくは同位体標識パターンの、変化パターンもしくは変化速度の、質量分析測定を実施することと、濃縮または単離された1つ以上の同位体標識標的タンパク質の少なくとも1つの動態学的パラメータを計算することであって、体液からの1つ以上の同位体標識標的タンパク質の動態学的パラメータは、組織中の1つ以上の標的タンパク質の対応する動態学的パラメータを反映している、計算することと、体液中の1つ以上の標的タンパク質の対応する少なくとも1つの動態学的パラメータに基づいて、組織中の1つ以上の標的タンパク質の少なくとも1つの動態学的パラメータを推測することと、を含む。それぞれ特定された標的タンパク質または標的ペプチドに対応するアイソトポマーエンベロープ中のイオンの、相対的質量アイソトポマー存在量および絶対的質量アイソトポマー存在量は、質量分析によって定量化され、それぞれ特定された標的タンパク質または標的ペプチドの分子流束速度は、目的タンパク質の動態学的パラメータを決定するために計算される。
好適な標的タンパク質は、体液中で検出可能な任意のタンパク質を含み得る。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、組織コラーゲン沈着または繊維形成に関連している。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、コラーゲン合成繊維芽細胞に由来してもよい。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、ルミカン、パールカン、フィブロネクチン、プロコラーゲンおよびコラーゲンを含んでもよい。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、任意のクレアチンキナーゼタンパク質(例えば、EC2.7.3.2の酵素活性を有すると知られている、または予測されている任意のタンパク質)を含んでもよい。クレアチンキナーゼタンパク質は、脳型(B)または筋肉型(M)のいずれかである2つのサブユニットからなってもよい。このように、クレアチンキナーゼタンパク質は、MM、MBおよびBBを含むサブユニットの組み合わせであってもよい。組織が異なると、これらのタンパク質を異なる割合で発現することが知られている。例えば、クレアチンキナーゼMMは、骨格筋に、極めて特有であり、心臓組織(例えば、心筋)は、他の組織より、クレアチンキナーゼMBを高い割合で発現することが知られている。いくつかの実施形態において、標的タンパク質は、膵臓β細胞の分泌顆粒に由来する血液タンパク質、例えば、インスリン、を含んでもよい。
<1.標識前駆体分子>
[a.同位体標識]
分子流束速度を測定する第1の工程は、細胞、組織または生物に同位体標識前駆体分子を投与することを含む。同位体標識前駆体分子は、安定な同位体、または放射性同位体であってもよい。使用され得る同位体標識は、2H、13C、15N、18O、3H、14C、35S、32P、125I、131I、または有機体システムに存在する元素の他のアイソトープを含むが、これらに限定されない。一実施形態において、同位体標識は、2Hである。
前駆体分子は、タンパク質または有機代謝物に取り込まれる同位体標識を有する任意の分子であってもよい。同位体標識は、本明細書で開示されるすべての前駆体分子を修飾し、同位体標識前駆体分子を形成するために使用されてもよい。
タンパク質前駆体分子は、当該技術分野で知られる任意のタンパク質前駆体分子であってもよい。これらの前駆体分子は、CO2、NH3、グルコース、酪酸、H2O、酢酸および脂肪酸であってもよい。
1つ以上の同位体標識前駆体を投与する形態は、同位体標識前駆体の吸収特性と、各々の化合物が標的化される特定の生合成プールとに応じて、異なってもよい。前駆体は、生物、植物、およびヒトを含む動物に、生体内分析のために、直接、投与されてもよい。さらに、前駆体は、生細胞に、インビトロで投与されてもよい。特定のタイプの生細胞は、肝細胞、脂肪細胞、筋細胞、線維芽細胞、神経細胞、膵臓β細胞、腸管上皮細胞、白血球、リンパ球、赤血球、微生物細胞、およびインビトロで生存および機能し続けることができる任意の他の細胞型を含む。
本発明の方法の実施において、一態様では、タンパク質および有機代謝物は、当該技術分野で知られる方法に従って、細胞、組織または生物から得られる。当該方法は、目的のタンパク質または有機代謝物に対して特異的であってもよい。目的のタンパク質および有機代謝物は、生物学的サンプルから単離されてもよい。
いくつかの実施形態において、同位体標識標的タンパク質は、体液から濃縮されるか、または単離される。タンパク質または有機代謝物は、当該技術分野で知られる標準の生化学的方法を使用して、生物学的サンプル(例えば、体液)から、部分的に、精製されるか、濃縮されるか、または単離されてもよい。例えば、タンパク質を濃縮または単離する好適な方法は、免疫沈降、クロマトグラフィー(例えば、サイズ排除、疎水性相互作用、親和性、金属結合、免疫親和性またはHPLC)、密度勾配を介した遠心分離などを含んでもよいが、これらに限定されない。濃縮および単離するための好適な方法は、例えば、タンパク質の存在量、タンパク質の生化学的特性、サンプルのタイプ(例えば、体液)、および必要とされる相対的な濃縮度または純度に依存してもよい。
液体クロマトグラフィー−タンデム型質量分析(LC/MS/MS)、ガスクロマトグラフィー−質量分析(GC−MS)、同位体比質量分析、GC−同位体比−燃焼−MS、GC−同位体比−熱分解−MS、液体クロマトグラフィーMS、エレクトロスプレーイオン化MS、マトリックス支援レーザー脱離飛行時間MS、フーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴MS、およびサイクロイドMSを含むが、これらに限定されない質量分析などの種々の方法によって、タンパク質および有機代謝物中の同位体濃縮度は決定され得る。
測定された質量スペクトルピークの高さ、または代わりとしての、当該ピーク下の領域は、親(ゼロ質量同位体)アイソトポマー(the parent (zero mass isotope) isotopomer)に対する比として表現される。サンプル中のアイソトポマーの存在量に対する相対値および絶対値を与える任意の計算方法が、本発明の目的のために、そのようなデータを記述することに使用されてもよいことが理解される。
次に、標識タンパク質および非標識タンパク質の割合が計算される。第一に、実施者は、分子の単離アイソトポマー分子種に対して測定された過剰モル比を決定する。次に、実施者は、測定された過剰比の内部パターンを、理論パターンと比較する。上記の理論パターンは、米国特許第5,338,686号、5,910,403号および6,010,846号(これらの全文が参照により本明細書に組み込まれる)に記載されている二項分布関係または多項分布関係を用いて計算され得る。当該計算は、質量アイソトポマー分布分析(MIDA)を含む。質量アイソトポマー分布分析(MIDA)組み合わせアルゴリズムのバリエーションは、当業者に知られる種々で多数の情報源で論じられている。当該方法は、Chinkes, et al.(1996)、およびKelleher and Masterson (1992)、および 米国特許出願Ser. No. 10/279,399と同様に、Hellerstein and Neese(1999)によってさらに論じられている(これらのすべては、全文が参照により本明細書に組み込まれる)。上記に引用された参考文献に加えて、当該方法を実行する計算ソフトウェアが、カリフォルニア大学バークレー校のMarc Hellerstein教授から公的に入手可能である。
MXの部分存在量=AX=存在量MXi=0n存在量Mi、
体液からの1つ以上の同位体標識標的タンパク質の動態学的パラメータが、当該技術分野で知られる任意の方法によって、組織中の1つ以上の標的タンパク質の対応する動態学的パラメータを反映することを、当業者が確立してもよい。当該方法は、例えば、個々の被検体中の1つ以上の標的タンパク質の動態学的パラメータの測定を独立に比較することを含む。
同位体標識標的タンパク質の動態学的パラメータは、体液から濃縮または単離された標的タンパク質の測定に基づいて計算される。次に、いくつかの実施形態において、この動態学的パラメータは、医療目的の組織中の標的タンパク質の対応する動態学的パラメータを推測するために使用される。組織中の標的タンパク質の動態学的パラメータと、体液中の標的タンパク質の動態学的パラメータとは関係づけられてもよいが(すなわち、体液中の標的タンパク質の動態学的パラメータは、組織中の対応する動態学的パラメータを反映する)、これらが等価である必要はない。組織における動態学的パラメータ、および体液における動態学的パラメータは、当該技術分野で知られる任意の方法によって測定および比較されてもよい。組織中のタンパク質の動態学的パラメータと、体液中のタンパク質の動態学的パラメータとは、組織からの、タンパク質の流出または放出の、既知または未知の速度によって、数学的に関係づけられてもよい。組織からの、タンパク質の流出速度または放出速度を決定するための種々の方法が、当該技術分野で知られている。
元の組織中の目的のタンパク質の代謝回転キネティックスは、ヒト患者の診断、管理、または治療の選択のために、診断テストとして用いられてもよい。実施例を通して、骨格筋クレアチンキナーゼMM(用語“クレアチンキナーゼM型”および“CK−M”は、本明細書において交換可能で使用される)、ミオグロビンまたはトロポニンの合成速度および/または分解速度の、体液からの測定は、サルコペニア、悪液質、栄養失調、虚弱、運動性障害、リハビリテーション、筋ジストロフィー、または骨格筋量もしくは骨格筋機能の他の障害、を伴った患者の診断、管理、または治療の選択で使用され得る。心不全、心臓移植、高血圧、虚血性心疾患、または心筋量もしくは心筋機能の他の疾患、を伴った患者の診断、管理、または治療の選択における、心筋クレアチンキナーゼMB合成速度および/または分解速度の、体液からの測定。別の実施例を通して、C型肝炎もしくはB型肝炎、アルコール性肝線維症、脂肪肝疾患、または他の線維形成性障害を伴った患者の医療モニタリングで使用するための、ルミカン合成の血液測定から、肝臓繊維形成の速度が決定され得る。
この実施例では、体液バイオマーカーを介して肝臓コラーゲン合成速度を決定することによって肝臓繊維形成を評価する仮想生検の使用を説明する。この実施例では、体液中のバイオマーカーが前もって特定されていない場合に、組織タンパク質合成(および対応するそれの速度)の仮想生検体液バイオマーカーを発見する手引きを示す。
11人のすべての被検体を、UCSF肝臓センター(UCSF Liver Center)で募集した。当該被検体は、緊急に診断的生検を受ける必要があった。被検体は、紹介日から外科生検日までの期間のあいだの外来で、14日間から56日間のあいだ、非放射性安定同位体トレーサーである重水を飲んだ。血液、尿および18ゲージの肝臓の生検材料を収集した。50%の生検材料を用いて、疾患および繊維性強度の病理学的診断のための組織学的組織スライドを作製した。残りの組織を、下記の動態学的分析のために用いた。被検体は、様々な診断[Hep Cウイルス(HCV)、自己免疫性肝炎(AIH)、肝細胞癌(HCC)]、および様々な繊維性スコア[0〜4の範囲において]を有していた。当該調査は、UCSFのヒト研究委員会(the Committee on Human Research)によって認可された。すべての関係者は、書面によるインフォームドコンセントを与え、ヘルシンキプロトコルの宣言に従った。
6人の患者からの肝臓生検組織を、計量し(3〜13mg)、純粋な脱イオン水中のFast Prep-24(商標)(MP Biomedical)ビーズミルで実質的に均質化した。均質化した組織を、次に、アセトン沈殿にかけ、全組織タンパク質を精製した。9倍の量の低温のアセトンを、ホモジェネートと混合し、−20℃で、20分間、インキュベートし、続けて、4℃で5分間の、1000×gの遠心分離を行った。ペレットを、H2O中で再懸濁し、全タンパク質定量化を、BCA Protein Assay Kit(Thermo、イリノイ州ロックフォード)を介して実施した。各々の患者から、80μgの肝臓タンパク質を単離し、25mM重炭酸アンモニウム(pH=8)中のProteasMax(商標)界面活性剤(0.1%;Promega、ウィスコンシン州マディソン)および尿素(4M)を使用して変性させた。当該溶液を、室温で20分間、混合しながらTCEP(5mM)で還元し、続けて、暗所で20分間、ヨードアセトアミド(10mM)でインキュベーションし、還元されたシステインを化学的に修飾した。次に、肝臓タンパク質を、トリプシン(Promega、ウィスコンシン州マディソン)で、37℃で一晩かけて消化した。翌日、全量の5%にギ酸を添加し、LC−MS/MSの前に、C18 spec tip(Varian、カリフォルニア州パロアルト)を用いてペプチドを濃縮および脱塩した。
multi-affinity spin cartridge (Hu14, Agilent、カリフォルニア州サンタクララ)を用いて、製造者の推奨に従って、8人の患者の血漿(10μL)から、高存在量タンパク質を枯渇させた。残りのタンパク質成分を、BCA Protein Assay Kit(Thermo、イリノイ州ロックフォード)を用いて定量し、50μgのタンパク質を、トリプシン消化のために各々の患者から単離した。25mM重炭酸アンモニウム(pH=8)中のProteasMax(商標)界面活性剤(0.1%;Promega、ウィスコンシン州マディソン)および尿素(4M)を用いて、血漿タンパク質サンプルを変性させた。当該溶液を、室温で20分間、混合しながらTCEP(5mM)で還元し、続けて、暗所で20分間、ヨードアセトアミド(10mM)でインキュベーションし、還元されたシステインを化学的に修飾した。次に、血漿タンパク質を、トリプシン(Promega、ウィスコンシン州マディソン)で、37℃で一晩かけて消化した。翌日、全量の5%にギ酸を添加し、LC−MS/MSの前に、C18 spec tip(Varian、カリフォルニア州パロアルト)を用いてペプチドを濃縮および脱塩した。
一定分量の血漿を1:100で希釈し、80℃での一晩かけた蒸留のために、反転密封されるスクリューキャップバイアル(inverted sealed screw-capped vials)のキャップに入れた。血漿から蒸留した水中の重水素モルパーセント過剰度(MPE)の直接測定によって、体内水分の2H2O濃縮度を決定した。公開された方法(G. Lis, et al., Anal. Chem. 80 (2008) 287-293)に従って、laser water isotope analyzer(LGR、カリフォルニア州ロスガトス)を用いて、2H2O標準曲線に対して、MPEを測定した。
ペプチドの同位体分布を、HPLC Chip-Cube Polaris Chip(Agilent、カリフォルニア州サンタクララ)を備えたAgilent 6550 QToFを用いて測定した。各々のサンプルを、分析ごとに2回注入した。第1の注入のあいだ、MSMSフラグメンテーションスペクトルを、ペプチド特定のために収集した。第2の注入のあいだ、MSMSフラグメンテーションを実施せず、より長い滞留時間(毎秒1スペクトル)を、フルスキャン取得に用いた。AgilentのソフトウェアパッケージSpectrum Millを用いて、MSMSフラグメンテーションデータを分析し、タンパク質特定を、Uniprot/Swissprotに基づかせた。ここで、検索の制限として、種=ヒト、トリプシン消化、およびシステインのカルバミドメチル化を用いた。ピログルタミン酸、酸化メチオニン、およびヒドロキシプロリンを、追加の修飾として許容した。アイソトポマーパターンを、AgilentからのMassHunterソフトウェアパッケージを用いてMSスキャンデータから抽出した。計算された中間質量、元素式および滞留時間を用いて、観測された同位体クラスターをフィルタリングした。ビジュアルベイシックのアプリケーションを作成し、ペプチド配列のリストからペプチド元素組成を計算し、体内水分からH/Dを能動的に取り込んだC−H位置の番号(n)に対する様々な前駆体2H2O濃縮度(p)にわたるアイソトポマーパターンを計算する。nに対する理論ペプチド値を、以前に記載されたように決定する(J.C. Price et al., Anal. Biochem. 420 (2012) 73-83)。簡潔に説明すると、トリプシンペプチドは、ペプチドを構成するアミノ酸の個々の値(nAA)の合計であるnの値を示す。その後のデータ処理をマイクロソフトのエクセル(Microsoft Excel)を用いて実行した。
質量分析は、2H標識を有するペプチド中のより高い質量へのシフトを定量化することができる一方で、新しく合成されたタンパク質による既存のタンパク質分子の交換速度の動態学的解釈は、標識されていない種と比較した新しく合成された種の質量アイソトープパターンの理解を必要とする。安定同位体摂動前駆体プールの存在下で合成されたタンパク質の質量アイソトープパターンは、組み合わせ分析(M.K. Hellerstein and R.A. Neese, Am. J. Physiol. 276 (1999) E1146-E1170)によって計算され得る。部分合成量(f)は、集団における、新しく合成されたタンパク質の割合として定義され、全プールの部分として表現される。我々は、標準化されたモノアイソトピックピーク(the normalized monoisotopic peak)の強度における変化に対する絶対値(|EM0|)に、fの計算を基づかせた。原理的には、エンベロープ中の任意の同位体ピークの強度におけるシフトは、同一のfを示すはずである。実際には、我々は、このアイソトポマーに対する部分存在量におけるより大きな変化が原因で(標識された種がEM1〜EM4のあいだで分配する一方で、EM0は減少する。)、信号対雑音比が、|EM0|に対して最も好ましいことを見出す。我々は、方程式k=ln(1−f)/tを用いて、各々の被検体に対する部分合成量測定を、時間独立代謝回転速度kに標準化した。ここで、tは、生検前の、重水への曝露時間である。
我々の算入するための基準に合ったペプチドは、30000カウントより大きいシグナル強度を有していた。タンパク質代謝回転速度を、各々のタンパク質に対するこれらの基準を合格したペプチド集団の平均として計算した。各々のサンプルに対するタンパク質代謝回転速度を決定するために、最小値の2つのペプチドを必要とした。
肝臓サンプルタンパク質(n=6)および血漿サンプルタンパク質(n=8)からのタンパク質代謝回転速度(k)は、互いに相関し、患者組織学的線維化スコア(0〜4)とも相関した。回帰分析を実行し、統計学的に有意な関係(p<0.05)(例えば、肝臓1型コラーゲンおよび血漿ルミカンに対する線維化スコア)を決定した。
図2に図示されたように、2H2Oを、ヒトに投与し、2H2Oは、組織繊維形成中に、コラーゲン、および繊維形成関連タンパク質/コラーゲン関連タンパク質に取り込まれた。次に、可能性のある、肝繊維症の体液診断バイオマーカーを特定するために、肝臓コラーゲン合成速度と相関した合成速度のタンパク質を、血液および尿から選別した。上述のように、肝臓サンプルタンパク質および血漿サンプルタンパク質からのタンパク質代謝回転速度は、互いに相関し、患者組織学的線維化スコアとも相関した。上述のように、回帰分析を実行し、統計学的に有意な関係を決定した。
[ヒトにおける重水素化水標識プロトコル]
全ての手順およびプロトコルは、コロラド州立大学の施設内倫理委員会(the Institutional Review Board)によって認可された。17人の被検体(7人の男性、10人の女性)が、調査に含まれ、各々の志願者は、参加する前に、可能性のあるリスクおよび利益が知らされ、書面の同意書が提供された。当該調査は、ヘルシンキ宣言によって定められたガイドラインに従った。
経口重水素化水摂取のあいだに、唾液スワブ(Saliva swabs)を定期的に収集し、参加者に、唾液試料採取前の30分間、何も飲食しないように指示した。唾液スワブを、分析するまで−80℃で保管した。静脈血を収集し、血漿を遠心分離(1200g、4℃、15分)によって分離し、−80°で保管した。被検体が局所麻酔下(1%リドカイン)にあるうちに、手動吸引の5mmバーグストロム針(5-mm Bergstrom needle)を用いて、外側広筋の筋肉生検サンプル(〜100−150mg)を、取り除き、次に、液体窒素で直ちに凍結させ、−80で保管した。
体内水分濃縮度を、唾液スワブまたは血漿サンプルから決定した。一定分量の血漿または唾液を1:200で希釈し、80℃での一晩かけた蒸留のために、反転密封されるスクリューキャップバイアル(inverted sealed screw-capped vials)のキャップに入れた。血漿から蒸留した水中の重水素モルパーセント過剰度(MPE)の直接測定によって、体内水分の2H2O濃縮度を決定した。laser water isotope analyzer(LGR、カリフォルニア州ロスガトス)を用いて、2H2O標準曲線に対して、MPEを測定した。
10〜30mgの筋肉サンプルを、1X protease inhibitor cocktail(Thermo)を100mg/mlで含むM-PER reagent(Thermo)中でホモジェネートした。当該ホモジェネートを、1000×g、10分間、4℃で遠心分離し、不溶性物質をペレット化した。ホモジェネートからの250μgのタンパク質を、SDS−PAGEおよびLC/MSのために調製した。当該サンプルを、1X XT sample buffer(Bio-Rad)および5mMのTCEP(Sigma)中で、95℃、5分間、インキュベートした。当該サンプルを室温で冷まし、当該サンプルに、ヨードアセトアミド(Sigma)を、15mMの最終濃度になるように添加した。当該サンプルを、室温、暗所で、20分間、インキュベートした。当該サンプルを、Bio-Rad Criterion Cell(165-6001)中の、1X XT MES running buffer(Bio-Rad)を含有するCriterion XT 12 well 4-12% Bis-Tris gels(Bio-Rad)に装填した。10μLのKaliedoscope Pre-Stained Molecular Weight Standard(Bio-Rad)を、サンプルの側方の端に装填した。当該ゲルは、60Vが20分間流され、サンプルを完全にゲルに入れ、次に、当該ゲルは、100Vが1時間半、流された。当該ゲルを、取り除き、5分間、回転させながら200mlのMilliQのH2Oで洗浄することを3回行った。Coomassie(Bio-Rad)を添加し、ゲルをわずかに覆って、回転させながら60分間、インキュベートした。30分間、回転させながら200mlのMilliQのH2Oで洗浄することを4回行うことにより、当該ゲルを脱色し、Kimwipeを水に入れ、染料を吸収させた。10〜15、15〜20、20〜25、25〜37、37〜50、50〜75、75〜100、100〜150および150〜250kDに対応するゲルバンドを、クマシー染色されたゲルから切り出し、37℃で一晩、トリプシン(Proteomics grade, Sigma)消化にかけた。当該ペプチドを、ゲルから抽出し、乾燥させ、LC/MS分析のために3%アセトニトリル/0.1%ギ酸中で再構成した。
1mgのepoxy Dynabeads(Invitrogen)に結合した20μgのgoat-anti-CK-M polyclonal antibody(CalBioreagents)を用いて、クレアチンキナーゼM型(CK−M)を、〜500μlの血漿から免疫沈降した。サンプルを、60分間、室温でインキュベートし、結合したCK−Mを、サンプルバッファー中に溶出し、上述のように、SDS−PAGE分画およびクマシー染色で調製した。37〜50kDに対応するゲルバンドをクマシー染色されたゲルから切り出し、37℃で一晩、トリプシン(Proteomics grade, Sigma)消化にかけた。ペプチドを、ゲルから抽出し、乾燥させ、LC/MS分析のために3%アセトニトリル/0.1%ギ酸中で再構成した。
トリプシン消化されたペプチドを、Chip Nano source and 1200 series nanoflow and capillary HPLC pumps (Agilent Technologies, Santa Clara, CA)を備えたAgilent 6520 QToFまたはAgilent 6550 QToFで、以前に記載されたように分析した(Price et al. 2011, 2012)。両方ともがPolaris C18-A stationary phase(3μmの粒子サイズ)で充填された360nL濃縮カラムおよび0.075×150mm分析用カラム、からなるPolaris HR chip(Agilent #G4240-62030)を用いて、各々のサンプルを、分析ごとに2回注入した。ナノLCの移動相は、18MΩ水中の、3%v/vアセトニトリル、0.1%ギ酸(バッファーA)、および、18MΩ水中の、95%アセトニトリル、0.1%ギ酸(バッファーB)であった。18〜27分間、350nL/分の流速の勾配で、サンプルを溶出した。毎秒6つのMSスキャン、毎秒4つのMSMSスペクトル、および毎サイクル12個に及ぶ前駆体を、収集するように設定された装置で、第1の注入のあいだに、データ依存MSMSフラグメンテーションスペクトルを収集した。第2の注入のあいだには、MSMSフラグメンテーションを実施せず、より長い滞留時間(毎秒1スペクトル)を、フルスキャン取得に用いた。より長い滞留時間は、観測されたアイソトポマーパターンの信号対雑音比を上昇させた。1%の包括的偽発見率(global false discovery rate)を有するスイスプロットマウスデータベース(Swiss-Prot mouse database)(08/2010)を用いたSpectrum Mill MS Proteomics Workbench (version B.04.00, Agilent Technologies、カリフォルニア州サンタクララ)を使用して、MSMSフラグメンテーションデータを分析した。固定修飾(システインのカルバミドメチル化)および可変修飾(酸化メチオニン、ピログルタミン酸)を有効にし、失敗した切断は、2つまでは許容した。ペプチドレベルおよびタンパク質レベルで確認された結果を調べ、再度、タンパク質の非特異的な切断を許容した。6より大きいスコア、および50%より大きく評価されたピーク強度の、ペプチドのリストを、Spectrum Millからエクスポートし、エクセルを使用して、非還元体ペプチド公式データベースにまとめた。ペプチドの元素組成、質量および滞留時間を含むこのデータベースを使用して、Mass Hunter(version B.05.00, Agilent Technologies、カリフォルニア州サンタクララ)のファインドバイフォーミュラアルゴリズム(Find-by-Formula algorithm)で、MSのみの対応する取得ファイルから各々のペプチドのペプチド同位体存在量(動態学的情報を含む)を抽出した。ビジュアルベイシックアプリケーションを作成し、ペプチド配列のリストからペプチド元素組成を計算し、体内水分から水素/重水素(H/D)を能動的に取り込んだC−H位置の番号(n)に対する様々な前駆体2H2O濃縮度(p)にわたるアイソトポマーパターンを計算した。各々の被検体の体内水分濃縮度の入力情報を用い、マイクロソフトエクセルの一連のテンプレートを使用して、続きのデータ処理を実行し、タンパク質レベルにおける部分合成量データを生成した。動態学的データがタンパク質ごとに2つ以上のペプチドを含むように、フィルターをかけた。
ピアソン相関分析(Pearson correlation analysis)(GraphPad Prism)を実行し、血漿中のCK−Mの部分合成量と、筋肉で測定されたCK−Mの部分合成量とを相関させた。さらに、また、血漿CK−Mの部分合成量と、筋肉で測定されたいくつかの筋原線維および細胞質タンパク質の部分合成量とを用いて、相関分析を実行した。すべての相関を、p<0.05で有意と見なした。
2H2Oを、ヒトまたは実験用動物に投与し、血漿クレアチンキナーゼMMを、免疫沈降によって血漿から単離し、トリプシン消化にかけ、LC/MS/MS(液体クロマトグラフィー−タンデム型質量分析)によって分析し、質量アイソトポマーパターンの変化を決定した。当該アイソトポマーパターンから、血漿中のクレアチンキナーゼMMの合成速度を計算した(図9)。血漿クレアチンキナーゼMMの合成速度が、同一の被検体の筋肉生検材料から単離されたクレアチンキナーゼMMの合成速度を密接に反映していることを実証した(図10)。図11で図示されたように、骨格筋クレアチンキナーゼMMの合成速度は、他のいくつかの筋タンパク質の合成速度と密接に相関した(アクチン、図11A、ミオシン2、図11B、トロポニンI、図11C、トロポミオシンα、図11D)。反対に、血漿から単離されたクレアチンキナーゼMB(心筋特有の)は、クレアチンキナーゼMMよりも、はるかに早い合成速度を示した。これは、血液測定からの、組織特有のクレアチンキナーゼ合成の測定を示唆している。
1.G. Lis, L.I. Wassenaar, M.J. Hendry, High-precision laser spectroscopy D/H and 18O/16O measurements of microliter natural water samples, Anal. Chem. 80 (2008) 287-293.
2.M.K. Hellerstein, R.A. Neese, Mass isotopomer distribution analysis at eight years: theoretical, analytic, and experimental considerations, Am. J. Physiol. 276 (1999) E1146-E1170.
3.J.C. Price, W.E. Holmes, K.W. Li, N.A. Floreani, R.A. Neese, S.M. Turner, M.K. Hellerstein, Measurement of human plasma proteome dynamics with 2H2O and liquid chromatography tandem mass spectrometry, Anal. Biochem. 420 (2012) 73-83.
Claims (15)
- 体液中のタンパク質の測定によって、医療目的の組織中のタンパク質の、合成速度、分解速度、運搬速度または他の動態学的パラメータの速度を、上記組織の身体的試料採取を必要とせずに測定するための方法であって、
a)組織中の1つ以上の標的タンパク質を選択すること、
b)1つ以上の同位体標識標的タンパク質を生成するために、同位体標識分子が上記1つ以上の標的タンパク質に入り込み、当該1つ以上の標的タンパク質を標識するのに十分な期間、被検体に上記同位体標識分子を投与すること、
c)体液を収集することであって、当該体液は、上記組織から漏出したか、または放出された1つ以上の同位体標識標的タンパク質を含有している、収集すること、
d)上記体液から上記1つ以上の同位体標識標的タンパク質を濃縮または単離すること、
e)濃縮または単離された上記1つ以上の同位体標識標的タンパク質の、同位体含有量、取り込み速度、ならびに/または、同位体含有量および/もしくは同位体標識パターンの、変化パターンもしくは変化速度の、質量分析測定を実施すること、
f)濃縮または単離された上記1つ以上の同位体標識標的タンパク質の少なくとも1つの動態学的パラメータを計算することであって、上記体液からの上記1つ以上の同位体標識標的タンパク質の動態学的パラメータは、組織中の上記1つ以上の標的タンパク質の対応する動態学的パラメータを反映している、計算すること、および
g)上記体液中の上記1つ以上の標的タンパク質の対応する少なくとも1つの動態学的パラメータに基づいて、上記組織中の上記1つ以上の標的タンパク質の上記少なくとも1つの動態学的パラメータを推測すること、を包含する、方法。 - 上記同位体標識分子は、アミノ酸を標識する普遍的な前駆体である、請求項1に記載の方法。
- 上記同位体標識分子は、2H2O、13C2−ロイシン、3H−フェニルアラニン、15N−グリシン、15N−標識スピルリナ、13CO2、2H3ロイシンおよび13C−グルコースからなる群から選択される、請求項1または2に記載の方法。
- 上記同位体標識分子は、安定な非放射性同位体標識分子である、請求項1〜3の何れか1項に記載の方法。
- 上記同位体標識分子は、2H2Oである、請求項4に記載の方法。
- 上記同位体標識分子は、放射性同位体標識分子である、請求項1〜3の何れか1項に記載の方法。
- 上記組織は、骨格筋、心筋、脳、膵臓β細胞または膵島、および肝臓、肺、腎臓、心臓または皮膚に存在するコラーゲン生成繊維芽細胞からなる群から選択される、請求項1〜6の何れか1項に記載の方法。
- 上記体液は、血液、尿、唾液、胆汁、脳脊髄液、皮膚組織間質液もしくは脂肪組織間質液、唾液、涙液、気管支肺胞洗浄液、口腔咽頭分泌物、腸液、頚膣部分泌物または子宮分泌物および精液からなる群から選択される、請求項1〜7の何れか1項に記載の方法。
- 上記同位体標識分子を、1つ以上の同位体標識標的タンパク質を生成するのに十分な期間、投与し、次に、中断し、
上記同位体標識分子の上記投与が中断されたあとに、上記体液から、上記1つ以上の同位体標識標的タンパク質を濃縮または単離することを行う、請求項1〜8の何れか1項に記載の方法。 - 上記1つ以上の標的タンパク質は、組織コラーゲン沈着または繊維形成に関連しており、かつ/またはコラーゲン合成繊維芽細胞に由来し、
上記1つ以上の標的タンパク質は、ルミカン、パールカン、フィブロネクチン、プロコラーゲンおよびコラーゲンからなる群から選択され、かつ、
上記少なくとも1つの動態学的パラメータは、C型肝炎またはB型肝炎、アルコール性肝繊維症、脂肪肝疾患、肝臓の繊維症、心臓の繊維症、皮膚の繊維症または腎臓の繊維症、および他の繊維形成障害、からなる群から選択される疾患の、診断、治療、予後、管理、層別化、または他の特徴づけのための、医療的に重要なプロセスの速度を明らかにする、請求項1〜9の何れか1項に記載の方法。 - 上記1つ以上の標的タンパク質を、工程(d)と工程(e)とのあいだでトリプシン消化にかけ、
上記1つ以上の標的タンパク質を、トリプシン消化されたペプチドとして工程(e)で分析する、請求項1〜10の何れか1項に記載の方法。 - 上記標的タンパク質は、クレアチンキナーゼMMまたはクレアチンキナーゼMBであり、
上記体液は、血漿であり、
工程(d)は、免疫沈降を包含し、
上記クレアチンキナーゼMMまたはクレアチンキナーゼMBを、工程(d)と工程(e)とのあいだでトリプシン消化にかけ、
上記クレアチンキナーゼMMまたはクレアチンキナーゼMBを、トリプシン消化されたペプチドとして工程(e)で分析し、かつ、
工程(e)は、LC/MS/MSによって、質量アイソトポマー存在量を測定することを包含する、請求項1〜9、11の何れか1項に記載の方法。 - クレアチンキナーゼMMに特異的なトリプシン消化を受けたペプチドを、LC/MS/MSによって、質量アイソトポマー存在量の変化に関して分析し、
質量アイソトポマー存在量の上記変化を使用し、骨格筋組織中のクレアチンキナーゼの合成速度および/または分解速度を計算し、かつ、
骨格筋組織中のクレアチンキナーゼの上記合成速度および/または上記分解速度の上記計算を、サルコペニア、悪液質、栄養失調、虚弱、運動性障害、筋ジストロフィー、または骨格筋量もしくは骨格筋機能の別の障害、に罹った患者の、診断、管理、リハビリテーション、または治療の選択で、使用する、請求項12に記載の方法。 - クレアチンキナーゼMBに特異的なトリプシン消化を受けたペプチドを、LC/MS/MSによって、質量アイソトポマー存在量の変化に関して分析し、
質量アイソトポマー存在量の上記変化を使用して、心臓組織中のクレアチンキナーゼの合成速度および/または分解速度を計算し、かつ、
心臓組織中のクレアチンキナーゼの上記合成速度および/または上記分解速度の上記計算を、心不全、心臓移植、高血圧、虚血性心疾患、または心筋量もしくは心筋機能の別の疾患、を伴った患者の、診断、管理、リハビリテーション、または治療の選択で、使用する、請求項12に記載の方法。 - 上記1つ以上の標的タンパク質は、膵臓β細胞の分泌顆粒に由来する血液タンパク質である、請求項1〜9、11の何れか1項に記載の方法。
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