JP6346689B2 - 高感度膵液検出用蛍光プローブ、及び膵液検出方法 - Google Patents

Description

本発明は、膵液検出用の蛍光プローブに関する。より詳細には、膵液中のプロテアーゼ
活性を検出するための蛍光プローブ、当該蛍光プローブを用いた検出方法、及び当該プロ
ーブを含む検出キットに関する。

膵臓がんによる死亡者数は年々増加の一途を辿っており、世界的にもがんの死因別統計
で上位に位置付けられている。しかしながら、膵臓がんに対する効果的な治療法は極めて
少なく、完治が期待できるほぼ唯一の治療法として、がん部位の外科的切除が行われてい
る。また、胆管がんについても、膵臓との合流地点にがんの発生や転移が認められた場合
には、膵臓の同時切除が選択される。

現在、このような膵切除の手術件数は、米国でおよそ４万件、日本でも１万件以上に至
っているが、術後の死亡率は経験豊富な医療施設でも数パーセントに及び、手術経験の少
ない医師による場合にはそれが更に増加することが報告されている。その原因の一つとし
て、膵切除後に膵断面から膵液が漏れる「膵液漏」が挙げられる。膵液漏が起こると、細
菌感染を引き起こすだけでなく、膵液の自己消化作用により血管が消化され大出血を起こ
し、死に至る危険性がある（非特許文献１）。このため膵液漏は、膵切除術における最も
重要な課題となっている。膵液漏の発生とその重篤化を防ぐために様々な膵切除法と術後
管理法が検討されているものの、いまだに３０〜５０％の頻度で膵液漏が生じている。

膵液漏の防止を困難にする要因は、正常な膵管は非常に細く、同定し難いため、全ての
膵管断端を結紮処理することは困難であることに加え、無色透明な膵液の漏出を術中に視
認可能とする技術がないことである。現在、膵液漏を検出するための手法として、ＩＳＧ
ＰＦ（Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ ｓｔｕｄｙ ｇｒｏｕｐ ｏｎ ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ
ｆｉｓｔｕｌａ）によって提唱されている、腹腔内ドレーン排液中における糖分解酵素
であるアミラーゼの濃度の測定が用いられている（非特許文献２及び３）。しかしながら
、当該手法は、検出結果を得るまでに時間を要することに加えて、重篤な術後合併症を引
き起こす膵液の上記自己消化作用の主体と考えられるプロテアーゼを直接測定するもので
はなく、術後の膵液漏の重篤度を必ずしも正確に反映するとは限らないことが指摘されて
いる（非特許文献４及び５）。

このような背景から、手術中に膵管を同定し、膵液の漏出を迅速かつ的確に確認するた
めの、従来のアミラーゼ濃度の測定に代わる新たな膵液漏の検出方法の確立が強く望まれ
ている。

Ｄ．Ｆｕｋｓ ｅｔ ａｌ．、Ａｍ Ｊ Ｓｕｒｇ．、２００９、１９７、 ７０２−７０９． Ｃ．Ｂａｓｓｉ ｅｔ ａｌ．、Ｓｕｒｇｅｒｙ．、２００５，１３８、８−１３． Ｅ．Ｍｏｌｉｎａｒｉ、Ｃ．Ｂａｓｓｉ、Ｒ．Ｓａｌｖｉａ、ｅｔ ａｌ．、Ａｎｎ Ｓｕｒｇ．、２００７、２４６、２８１−２８７． Ｈ．Ｓｈｉｎｃｈｉ、Ｋ．Ｗａｄａ、ＬＷ．Ｔｒａｖｅｒｓｏ、Ｊ Ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔ Ｓｕｒｇ．、２００６、１０、４９０−４９８． ＹＭ．Ｓｈｙｒ、ＣＨ．Ｓｕ、 ＣＷ．Ｗｕ、ｅｔ ａｌ．、Ｗｏｒｌｄ Ｊ Ｓｕｒｇ．、２００３、２７、６０６−６１０．

本発明の解決しようする課題は、術中或いは術後において膵液の漏出の存在を迅速かつ
高感度に検出及びイメージングすることができる蛍光プローブ、さらには、当該蛍光プロ
ーブを用いた検出方法及び検出キットを提供することにある。

本発明者らは、上記課題を解決するべく鋭意検討を行った結果、アミノ酸残基を有する
キサンテン骨格の化合物を蛍光プローブとして用いることにより、膵液中に含まれるプロ
テアーゼであるキモトリプシン等を特異的にかつｏｎ／ｏｆｆ蛍光応答で検出することが
でき、それによって、迅速かつ高感度に膵液の検出が可能となることを見出した。また、
手術で摘出した直後の膵臓の離断面を紙片等に付着させ、当該紙片等に上記蛍光プローブ
を噴霧するという簡単な手順によって、噴霧からわずか１分後に膵液のイメージングが可
能となり、膵液漏の存在とその場所の特定を極めて容易に行えることを見出した。これら
知見に基づき、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は、一態様において、以下の式（Ｉ）で表される化合物又はその塩を
含む膵液検出用蛍光プローブを提供するものである。

式中、Ａはアミノ酸残基又はＮ−置換アミノ酸残基を表し、ここで、Ａは隣接する式中
のＮＨとアミド結合を形成して連結しており；Ｒ^１は水素原子又はベンゼン環に結合する
1個ないし4個の同一又は異なる置換基を表し；Ｒ^２、Ｒ^３、Ｒ^４、Ｒ^５、Ｒ^６、及びＲ^７
はそれぞれ独立に水素原子、水酸基、アルキル基、又はハロゲン原子を表し；Ｒ^８及びＲ
^９はそれぞれ独立に水素原子又はアルキル基を示し；ＸはＣ_１-Ｃ_３アルキレン基を表す
。好ましくは、Ｒ^１、Ｒ^２、Ｒ^３、Ｒ^４、Ｒ^５、Ｒ^６、Ｒ^７、Ｒ^８及びＲ^９が水素原子で
あり、Ｘがメチレン基である。

上記のＡを表すアミノ酸残基及びＮ−置換アミノ酸残基を構成するアミノ酸は、好まし
くは疎水性アミノ酸、より好ましくは芳香族アミノ酸から選択される。これらは、特に、
本発明の蛍光プローブがキモトリプシンを標的とする場合に好適である。

本発明の一つの好ましい態様において、Ａは以下の式（ＩＩ）で表される基である。こ
こで、式（ＩＩ）中のカルボニル基と式（Ｉ）中のＮＨがアミド結合を形成して連結して
いる。

式中、Ｒ^１０は、置換又は無置換のアシル基を表す。置換アシル基はカルボキシ基から
水酸基を除いたアミノ酸残基、あるいは１個乃至５個のアミノ酸よりなるペプチド鎖のＣ
末端カルボキシ基から水酸基を除いた基であってもよい。当該置換基は、同一でも異なっ
てもよい１以上の任意の置換基を有することができる。Ｒ^１０は、アセチル基、カルボベ
ンゾキシ基、ベンゾイル基、スクシニル基、グルタリル基、又はこれらを一部に含む置換
基から選択されることが好ましい。Ｒ^１０が、カルボキシ基から水酸基を除いたアミノ酸
残基、あるいは１個乃至５個のアミノ酸よりなるペプチド鎖のＣ末端カルボキシ基から水
酸基を除いた基である場合には、いずれもＮ末端が、アセチル基、カルボベンゾキシ基、
ベンゾイル基、スクシニル基、グルタリル基、又はこれらを一部に含む置換基で置換され
ていることが好ましい。また、Ｒ^１１は水素原子又は水酸基を表し、水酸基である場合に
は、Ｒ^１１は、好ましくはパラ位である。

本発明の一つの好ましい態様において、Ａは以下の式（ＩＩＩ）〜（ＶＩ）で表される
基から選択される１の置換基である。ここで、式（ＩＩＩ）中のフェニルアラニン残基部
分のカルボニル基と式（Ｉ）中のＮＨがアミド結合を形成して連結している。式（Ｖ）〜
（ＶＩ）についても同様である。また、式（ＩＶ）中のチロシン残基部分のカルボニル基
と式（Ｉ）中のＮＨがアミド結合を形成して連結している。

また、本発明の蛍光プローブがγ−グルタミルトランスフェラーゼを標的とする場合に
は、Ａはγ−グルタミル基である態様が好適である。

別の態様において、本発明は、上記蛍光プローブを体液試料と接触させ、当該試料中に
含まれるプロテアーゼと蛍光プローブの反応による蛍光応答又は吸光度変化を観測するこ
とにより、膵液の存在を検出することを特徴とする、膵液検出方法を提供するものである
。

好ましい態様では、上記プロテアーゼは、キモトリプシン又はγ−グルタミルトランス
フェラーゼであり、より好ましくは、キモトリプシンである。

上記プロテアーゼがキモトリプシンである場合、蛍光プローブと体液試料を接触させる
際に上記体液試料中にトリプシンを添加することが好ましい。キモトリプシンは、膵液中
に前駆体であるキモトリプシノーゲンとして分泌されるため、トリプシンの添加によって
活性型のキモトリプシンに変換させた後、本発明の蛍光プローブによる測定を行うことが
好適であることによるものである。

好ましくは、本発明の検出方法において、前記蛍光応答を、蛍光イメージング手段を用
いて可視化することができる。膵液漏が疑われる箇所を紙片等に付着させて本発明の蛍光
プローブを噴霧すれば、蛍光イメージング手段を用いることによって、プローブ分子によ
る蛍光応答を二次元で表示できるため、膵管の位置、或いは膵液漏が生じている箇所を瞬
時に視認することが可能となる。

更に別の態様において、本発明は、上記蛍光プローブを含む膵液検出用キットを提供す
るものである。上記プロテアーゼがキモトリプシンである場合、好ましくは、上記蛍光プ
ローブとトリプシンを含む膵液検出用キットであって、当該キットが使用されるまでの期
間において蛍光プローブとトリプシンが混合することなく格納されていることを特徴とす
る、膵液検出用キットである。

本発明は、アミノ酸残基を有するキサンテン骨格の化合物を蛍光プローブとして用いる
ことにより、膵液中に含まれるプロテアーゼであるキモトリプシン等を特異的にかつｏｎ
／ｏｆｆ蛍光応答で短時間で検出でき、それによって、術中或いは術後において膵液の漏
出の存在を迅速かつ高感度に検出及びイメージングすることできるという優れた効果を奏
するものである。

本発明の蛍光プローブ及び検出方法によれば、被検体に蛍光プローブを添加するという
簡便な操作を行うだけで、わずか数分で膵液の検出が可能であり、加えて、膵液漏による
術後合併症の主因であるプロテアーゼ活性を直接測定することができる。従って、従来の
アミラーゼ濃度測定による膵液検出に比べて、より迅速かつ高い信頼性で膵液を検出でき
るという点で優れている。

また、本発明によれば、膵管及び膵臓切離における膵液漏の場所を、蛍光イメージング
手段を用いて正確に特定できるため、膵液の漏出部位を追加縫合等により確実に閉鎖して
膵液漏の発生を予防することができ、膵液漏による重篤な合併症の防止が可能となる。

さらに、本発明によって手術中に膵断端からの膵液の漏出の有無を確認したところ、蛍
光応答を認めた症例において、蛍光応答を認めなかった症例よりも術後膵漏の発生が有意
に高かったことから、術後膵液漏の高リスク群を識別して、従来よりも安全かつ効率的に
術後ドレーン管理を行うことが可能となり、重篤な膵液漏れの発生とその結果起こる在院
死亡率の改善に寄与するものである。

本発明は、上記のように検出手順が簡便であることに加えて、生体にとって安全な可視
光により行うことができ、また、使用する蛍光プローブの量も極めて微量であることから
体内への直接散布による膵液漏の可視化も十分に可能であり、これらの点で極めて実用性
に優れたものである。

よって、本発明を外科開腹手術時、腹腔鏡手術時に適用することで、被検者個々の膵液
のプロテアーゼ活性を迅速に把握できるため、術式の選択においても有益である。

図１は、本発明の蛍光プローブであるｇＰｈｅ−ＨＭＲＧへのキモトリプシン添加による吸収スペクトル変化（図１ａ）及び蛍光スペクトル変化を示した図（図１ｂ）である。 図２は、本発明の蛍光プローブであるｇＰｈｅ−ＨＭＲＧへのキモトリプシン添加による蛍光強度の時間変化を示した図である。図中の矢印は、キモトリプシンの添加時点を示している。 図３は、本発明の蛍光プローブであるｇＧｌｕ−ＨＭＲＧへの膵液サンプル添加による蛍光強度変化及び当該応答のγ−グルタミルトランスフェラーゼ特異性を示した図である。図中、阻害剤について、添加した場合を「＋」、添加していない場合を「−」で示している。棒グラフの値は、標本数3で標準誤差を算出したものである（*はp ＜０．０５、**はｐ ＜０．０１を示す）。 図４は、本発明の蛍光プローブであるｇＰｈｅ−ＨＭＲＧへの膵液サンプル添加による蛍光強度変化及び当該応答のキモトリプシン特異性を示した図である。図中、阻害剤及びトリプシンについて、それぞれ添加した場合を「＋」、添加していない場合を「−」で示している。棒グラフの値は、標本数3で標準誤差を算出したものである（*はp ＜０．０５、**はｐ ＜０．０１を示す）。 図５は、患者から採取した膵液、腹水、及び腸液について、ｇＧｌｕ−ＨＭＲＧ、ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ、及び、トリプシン添加ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ（ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ−Ｔｒｙ）の蛍光強度の時間変化を示した図である。 図６は、本発明の蛍光プローブであるＢｚ−Ｔｙｒ−ＨＭＲＧ、Ｇｌｔ−ＡＡＦ−ＨＭＲＧ、及びＳｕｃ−ＡＡＰＦ−ＨＭＲＧへのキモトリプシン添加による蛍光強度変化及び当該応答のキモトリプシン特異性を示した図である。 図７は、本発明の蛍光プローブであるｇＰｈｅ−ＨＭＲＧを用いた膵液の蛍光イメージング画像を示した図である。図７ａは、膵液の付着箇所を示すため白色光画像であり、図７ｂの左側は、５００−７２０ｎｍにおけるカラーイメージであり、右側は５４０ｎｍにおける蛍光イメージである。 図８は、本発明の蛍光プローブであるｇＧｌｕ−ＨＭＲＧを用いた膵液の蛍光イメージング画像を示した図である。図８ａは、膵液の付着箇所を示すため白色光画像であり、図８ｂの左側は、５００−７２０ｎｍにおけるカラーイメージであり、右側は５４０ｎｍにおける蛍光イメージである。

以下、本発明の実施形態について説明する。本発明の範囲はこれらの説明に拘束される
ことはなく、以下の例示以外についても、本発明の趣旨を損なわない範囲で適宜変更し実
施することができる。

本明細書において、アルキル基は直鎖状、分枝鎖状、環状、又はそれらの組み合わせか
らなるアルキル基のいずれであってもよい。アルキル基の炭素数は特に限定されないが、
例えば炭素数１〜６個程度、好ましくは炭素数１〜４個程度である。本明細書において、
アルキル基は任意の置換基を1個以上有していてもよい。該置換基としては、例えば、ア
ルコキシ基、ハロゲン原子（フッ素原子、塩素原子、臭素原子、又はヨウ素原子のいずれ
であってもよい）、アミノ基、モノ若しくはジ置換アミノ基、置換シリル基、又はアシル
基などを挙げることができるが、これらに限定されることはない。アルキル基が２個以上
の置換基を有する場合には、それらは同一でも異なっていてもよい。アルキル部分を含む
他の置換基（例えばアルキルオキシ基やアラルキル基など）のアルキル部分についても同
様である。

また、本明細書において、アリール基は単環性アリール基又は縮合多環性アルール基の
いずれであってもよく、環構成原子としてヘテロ原子（例えば、酸素原子、窒素原子、又
は硫黄原子など）を１個以上含んでいてもよい。本明細書において、アリール基はその環
上に任意の置換基を1個以上有していてもよい。該置換基としては、例えば、アルコキシ
基、ハロゲン原子、アミノ基、モノ若しくはジ置換アミノ基、置換シリル基、又はアシル
基などを挙げることができるが、これらに限定されることはない。アリール基が２個以上
の置換基を有する場合には、それらは同一でも異なっていてもよい。アリール部分を含む
他の置換基（例えばアリールオキシ基やアラルキル基など）のアリール部分についても同
様である。

（１）蛍光プローブ分子
本発明の蛍光プローブは、一態様において、以下の一般式（Ｉ）で表される構造を有す
る化合物である。

上記一般式（Ｉ）において、Ｒ^１は水素原子又はベンゼン環に結合する１個ないし４個
の置換基を示す。置換基としては、例えば、アルキル基、アルコキシ基、ハロゲン原子、
アミノ基、モノ若しくはジ置換アミノ基、置換シリル基、又はアシル基などを挙げること
ができるが、これらに限定されることはない。ベンゼン環上に２個以上の置換基を有する
場合には、それらは同一でも異なっていてもよい。Ｒ^１としては水素原子が好ましい。

Ｒ^２、Ｒ^３、Ｒ^４、Ｒ^５、Ｒ^６、及びＲ^７はそれぞれ独立に水素原子、水酸基、アルキ
ル基、又はハロゲン原子を示す。Ｒ^２及びＲ^７が水素原子であることが好ましい。また、
Ｒ^３、Ｒ^４、Ｒ^５、Ｒ^６が水素原子であることも好ましい。Ｒ^２、Ｒ^３、Ｒ^４、Ｒ^５、Ｒ
^６、及びＲ^７がいずれも水素原子であることがさらに好ましい。

Ｒ^８及びＲ^９はそれぞれ独立に水素原子又はアルキル基を示す。Ｒ^８及びＲ^９がともに
アルキル基を示す場合には、それらは同一でも異なっていてもよい。例えば、Ｒ^８及びＲ
^９の両者が水素原子である場合、及びＲ^８がアルキル基であり、かつＲ^９が水素原子であ
る場合が好ましく、Ｒ^８及びＲ^９の両者が水素原子である場合がさらに好ましい。

ＸはＣ^１−Ｃ^３アルキレン基を示す。アルキレン基は直鎖状アルキレン基又は分枝鎖状
アルキレン基のいずれであってもよい。例えば、メチレン基（−ＣＨ_２−）、エチレン基
（−ＣＨ_２−ＣＨ_２−）、プロピレン基（−ＣＨ_２−ＣＨ_２−ＣＨ_２−）のほか、分枝鎖
状アルキレン基として−ＣＨ（ＣＨ_３）−、−ＣＨ_２−ＣＨ（ＣＨ_３）−、−ＣＨ（ＣＨ
_２ＣＨ_３）−なども使用することができる。これらのうち、メチレン基又はエチレン基が
好ましく、メチレン基がさらに好ましい。

Ａはアミノ酸残基又はＮ−置換アミノ酸残基を示す。本明細書において、「アミノ酸残
基」とは、アミノ酸のカルボキシ基から水酸基を除去した残りの部分構造と等しく、いわ
ゆるＮ−末端残基と同様の構造を有するものを意味する。ただし、これは、Ａが複数のア
ミノ酸残基が連結して構成される場合を除外するものではなく、かかる場合はＣ−末端の
アミノ酸残基が、上記のようにアミノ酸のカルボキシ基から水酸基を除去し、且つアミノ
基から水素原子を除去した部分構造となれば良く、中間及びＮ−末端のアミノ酸残基は通
常のペプチド鎖と同様に連結することができる。

従って、Ａは隣接する式中のＮＨとアミド結合を形成して連結しており、すなわち、ア
ミノ酸残基のカルボニル部分と式（Ｉ）ＮＨとがアミド結合を形成することで、キサンテ
ン骨格と連結している。また、「Ｎ−置換アミノ酸残基」とは、上記アミノ酸残基のアミ
ノ基における水素原子が置換されているものをいう。

本明細書において、「アミノ酸」は、アミノ基とカルボキシ基の両方を有する化合物で
あれば任意の化合物を用いることができ、天然及非天然のものを含む。中性アミノ酸、塩
基性アミノ酸、又は酸性アミノ酸のいずれであってもよく、それ自体が神経伝達物質など
の伝達物質として機能するアミノ酸のほか、生理活性ペプチド（ジペプチド、トリペプチ
ド、テトラペプチドのほか、オリゴペプチドを含む）やタンパク質などのポリペプチド化
合物の構成成分であるアミノ酸を用いることができ、例えばαアミノ酸、βアミノ酸、γ
アミノ酸などであってもよい。アミノ酸としては、光学活性アミノ酸を用いることが好ま
しい。例えば、αアミノ酸についてはD-又はL-アミノ酸のいずれを用いてもよいが、生体
において機能する光学活性アミノ酸を選択することが好ましい場合がある。

ここで、特定のプロテアーゼを特異的に検出するという観点からは、Ａは標的とするプ
ロテアーゼによって加水分解されて、式（Ｉ）におけるＡ−ＮＨのアミド結合が切断可能
なアミノ酸残基を用いることが好ましい。そのようなアミノ酸の非限定的な例としては、
タンパク質を構成する20種類のＬ-アミノ酸のほか、セレノシステイン、ピロリシン、シ
スチン、ヒドロキシプロリン、ヒドロキシリジン、チロキシン、Ｏ-ホスホセリン、又は
デスモシンや、β-アラニン、サルコシン、オルニチン、クレアチン、γアミノ酪酸、又
はオパインなどが挙げられる。

例えば、膵液中に含まれるキモトプシンを蛍光検出の標的とする場合、Ａにおけるアミ
ノ酸残基は、芳香族アミノ酸又は疎水性アミノ酸により構成されることが好ましい。その
ようなアミノ酸の非限定的な例は、フェニルアラニン、トリプトファン、チロシン、ロイ
シン、イソロイシン、ノルロイシン、バリン、ノルバリン、メチオニン、及びそれらのＮ
−置換残基が挙げられるが、好ましくは、フェニルアラニン、トリプトファン、チロシン
、及びそれらのＮ−置換残基であり、より好ましくは、フェニルアラニン及びＮ−置換フ
ェニルアラニン残基、チロシン及びＮ−置換チロシンである。

また、膵液中に含まれるγ-グルタミルトランスフェラーゼを蛍光検出の標的とする場
合、Ａは、γ−グルタミルであることが好適である。

Ａの好ましい態様は、以下式（ＩＩ）で示されるＮ−置換フェニルアラニン残基及びＮ
−置換チロシン残基であり、これは、上記のようにキモトプシンを標的とする場合に好ま
しい。

式（ＩＩ）中のカルボニル基と式（Ｉ）中のＮＨがアミド結合を形成し、それによって
、式（Ｉ）のキサンテン骨格と連結している。

Ｒ^１０は、置換又は無置換のアシル基である。ここで、該アシル基は、１個又は２個以
上のヘテロ原子を含んでいてもよく、任意の置換基を1個以上有していてもよい。該置換
基としては、例えば、アルキル基、アルケニル基、アルキニル基、アリール基、アルコキ
シ基、アミド基、ハロゲン原子、アミノ基、モノ若しくはジ置換アミノ基、置換シリル基
、又はアシル基などを挙げることができるが、これらに限定されるものではない。２個以
上の置換基を有する場合には、それらは同一でも異なっていてもよい。置換アシル基とし
てはカルボキシ基から水酸基を除いたアミノ酸残基であってもよい。より好ましくは、Ｒ
^１０は、脂肪族アシル基又は芳香族アシル基であり、芳香族基を置換基として有する脂肪
族アシル基であってもよい。これらの置換基もまた、１個又は２個以上のヘテロ原子を含
んでいてもよく、上記と同様、更に任意の置換基を1個以上有していてもよい。さらに、
Ｒ^１０は、カルボキシ基、アミノ基、カルボニル基、アミド基、水酸基などの極性基をＲ
^１０の末端に有するアシル基が好ましい。１つの態様において、Ｒ^１０は、アセチル基（
ＣＨ_３ＣＯ−）、カルボベンゾキシ基（ｃｂｚ基）（Ｃ_６Ｈ_５ＣＨ_２ＯＣＯ−）、ベンゾ
イル基（Ｃ_６Ｈ_５ＣＯ−）、スクシニル基（ＨＯＯＣ−ＣＨ_２ＣＨ_２ＣＯ−）、グルタリ
ル基（ＨＯＯＣ−ＣＨ_２ＣＨ_２ＣＨ_２ＣＯ−）、又はこれらを一部に含む置換基であるこ
とが好ましい。Ｒ^１０が、カルボキシ基から水酸基を除いたアミノ酸残基、あるいは１個
乃至５個のアミノ酸よりなるペプチド鎖のＣ末端カルボキシ基から水酸基を除いた基であ
る場合には、いずれもＮ末端がアミノ酸残基のＮ末端が、アセチル基、カルボベンゾキシ
基、ベンゾイル基、スクシニル基、グルタリル基、又はこれらを一部に含む置換基から選
択される基であることが好ましい。また、Ｒ^１１は水素原子又は水酸基を表し、水酸基で
ある場合には、Ｒ^１１は、好ましくはパラ位である。

Ａの好ましい態様の一つは、以下式（ＩＩＩ）〜（ＶＩ）で表される基から選択される
１の置換基である。これは、上記のようにキモトプシンを標的とする場合に好ましい。

上記一般式（Ｉ）で表される化合物（Ａが式（ＩＩ）〜式（ＶＩ）の態様の場合を含む
。以下の記載においても同じ。）は塩として存在する場合がある。塩としては、塩基付加
塩、酸付加塩、アミノ酸塩などを挙げることができる。塩基付加塩としては、例えば、ナ
トリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、マグネシウム塩などの金属塩、アンモニウム塩
、又はトリエチルアミン塩、ピペリジン塩、モルホリン塩などの有機アミン塩を挙げるこ
とができ、酸付加塩としては、例えば、塩酸塩、硫酸塩、硝酸塩などの鉱酸塩、メタンス
ルホン酸塩、パラトルエンスルホン酸塩、クエン酸塩、シュウ酸塩などの有機酸塩を挙げ
ることができる。アミノ酸塩としてはグリシン塩などを例示することができる。もっとも
、本発明の化合物の塩はこれらに限定されることはない。

一般式（Ｉ）で表される化合物は、置換基の種類に応じて１個または２個以上の不斉炭
素を有する場合があり、光学異性体又はジアステレオ異性体などの立体異性体が存在する
場合がある。純粋な形態の立体異性体、立体異性体の任意の混合物、ラセミ体などはいず
れも本発明の範囲に包含される。

一般式（Ｉ）で表される化合物又はその塩は、水和物又は溶媒和物として存在する場合
もあるが、これらの物質はいずれも本発明の範囲に包含される。溶媒和物を形成する溶媒
の種類は特に限定されないが、例えば、エタノール、アセトン、イソプロパノールなどの
溶媒を例示することができる。

一般式（Ｉ）で表される化合物は、例えば、３位及び６位にアミノ基を有し、９位に２
−カルボキシフェニル基又は２−アルコキシカルボニルフェニル基を有するキサンテン化
合物などを原料として用い、９位の２−カルボキシフェニル基又は２−アルコキシカルボ
ニルフェニル基をヒドロキシアルキル基に変換した後に３位のアミノ基にアミノ酸残基又
はＮ−置換アミノ酸残基を結合させることにより容易に製造することができる。原料とし
て使用可能な３，６−ジアミノキサンテン化合物としては、例えば、いずれも市販されて
いるローダミン１１０やローダミン１２３などを例示することができるが、これらに限定
されることはなく目的化合物の構造に応じて適宜のキサンテン化合物を選択することがで
きる。また、一般式（Ｉ）で表される化合物におけるキサンテン骨格部分の酸素原子を、
特定の置換基を有する炭素原子やケイ素原子、ゲルマニウム原子、スズ原子或いは鉛原子
に置換した態様の骨格を有する化合物を用いて、本発明における一般式（Ｉ）と同様の機
能を有する蛍光プローブを製造することもできる。

本明細書の実施例には、一般式（Ｉ）で表される本発明の化合物に包含される代表的化
合物についての製造方法が具体的に示されているので、当業者は本明細書の開示を参照す
ることにより、及び必要に応じて出発原料や試薬、反応条件などを適宜選択することによ
り、一般式（Ｉ）に包含される任意の化合物を容易に製造することができる。

（２）蛍光プローブ分子の発光機構
本発明の蛍光プローブは、一般式（Ｉ）で示されるキサンテン骨格上部が閉環状態では
、中性領域（例えばｐＨ５ないし９の範囲）において当該蛍光プローブ自体は実質的に無
蛍光である。一方、Ａ−ＮＨとのアミド結合がプロテアーゼにより加水分解されると速や
かに開環した互変異性体となって強蛍光性の下記化合物が生じる。

すなわち、一般式（Ｉ）で表される化合物又はその塩を有効成分として含む本発明の蛍
光プローブは、膵液中に存在するプロテアーゼによって加水分解され、強い蛍光を発する
上記開環化合物を与える性質を有しており、体液等の被検体に添加することによって、数
十秒から数分で強い蛍光を発するようになる。従って、本発明の蛍光プローブを用いるこ
とによって、プロテアーゼ活性を蛍光強度の変化により測定し、当該プロテアーゼを含む
膵液の存在を検出することが可能となる。

より詳細には、例えば、一般式（Ｉ）で表される化合物又はその塩は、中性領域におい
て例えば４４０〜５００ｎｍ程度の励起光を照射した場合にはほとんど蛍光を発しないが
、上記開環化合物は同じ条件下において極めて強い蛍光（例えばｅｍｉｓｓｉｏｎ：５２
４ｎｍ）を発する性質を有している。従って、本発明の蛍光プローブを用いて検出を行う
場合には、通常は４４０〜５００ｎｍ程度の可視光、好ましくは４４５〜４９０ｎｍ程度
、さらに好ましくは４５０〜４８０ｎｍ程度の可視光を照射すればよい。観測すべき蛍光
波長は通常は５１０〜８００ｎｍ程度であり、例えば５１６〜５５６ｎｍ程度の蛍光を観
測することが好ましい。

（３）蛍光プローブを用いた膵液検出方法。
本発明の膵液検出方法では、上記蛍光プローブを体液試料と接触させ、当該試料中に含
まれるプロテアーゼと蛍光プローブの反応による蛍光応答を観測することにより、膵液の
存在を検出することができる。好ましい態様では、上記プロテアーゼは、キモトリプシン
又はγ−グルタミルトランスフェラーゼであり、より好ましくは、キモトリプシンである
。本明細書において「検出」という用語は、定量、定性など種々の目的の測定を含めて最
も広義に解釈されるべきである。なお、一般式（Ｉ）で表される化合物又はその塩は、中
性領域において３５０ｎｍ以上の波長の光をほとんど吸収しないが、膵液中に存在するプ
ロテアーゼによって加水分解されて上記開環化合物に変化すると、その構造変化に伴って
、紫外可視領域の吸収スペクトルが変化して３５０ｎｍ以上の波長の光も吸収するように
なるので、場合によって、紫外可視吸光スペクトルの変化（例えば、特定の吸収波長にお
ける吸光度の変化）によって上記プロテアーゼと蛍光プローブの反応を検出することも可
能である。

キモトリプシンは、膵液中に前駆体であるキモトリプシノーゲンとして分泌されるが、
トリプシンとの反応によって活性化されることが知られている。従って、トリプシンの添
加によって活性型のキモトリプシンに変換させた後、本発明の蛍光プローブによる測定を
行うため、蛍光プローブを測定試料に添加等を行う前又は同時に当該測定試料中にトリプ
シンを添加することが好ましい。

蛍光検出の被検体である体液試料の形態は、特に限定されるものではないが、例えば、
術中又は術後に患者等の腹腔内から採取した液体、切除した膵臓をろ紙等の紙片やタオル
など吸水性の任意の材料に付着させたもの、或いは、腫瘍部の切除後に体内に残っている
膵臓自体の表面等に付着或いは流出している液体などが挙げられる。

被検体である体液試料と蛍光プローブを接触させる手段としては、代表的には、蛍光プ
ローブを含む溶液を試料添加、塗布、或いは噴霧することが挙げられるが、上記体液試料
の形態や測定環境等に応じて適宜選択することが可能である。

蛍光応答を観測する手段は、広い測定波長を有する蛍光光度計を用いることができるが
、蛍光発光部位を２次元画像として表示可能な蛍光イメージング装置を用いることもでき
る。蛍光イメージングの手段を用いることによって、蛍光応答を二次元で可視化できるた
め、膵管の位置、或いは膵液漏が生じている箇所を瞬時に視認することが可能となる。特
に、手術中等において被験者から採取した体液試料をその場で測定を行うために、小型で
持ち運び可能な蛍光検出器及び蛍光イメージング装置が好ましい。

本発明の膵液検出方法は、例えば手術中、検査中、手術後に行うことができる。本明細
書において「手術」の用語は、内視鏡又は腹腔鏡などの鏡視下手術などを含めて、膵臓が
ん等の膵臓疾患や胆管がん等の治療のために適用される任意の手術を包含する。また、「
検査」の用語は、内視鏡を用いた検査及び検査に伴う組織の切除や採取などの処置のほか
、生体から分離・採取された組織に対して行う検査などを包含する。これらの用語は最も
広義に解釈しなければならず、いかなる意味においても限定的に解釈してはならない。

本発明の方法によるプロテアーゼの測定は、一般的には中性条件下に行うことができ、
例えば、ｐＨ５．０〜９．０の範囲、好ましくはｐＨ６．０〜８．０の範囲、より好まし
くはｐＨ６．８〜７．６の範囲で行うことができる。ＰＨを調整する手段としては、例え
ば、リン酸バッファー等の当該技術分野において周知の任意のｐＨ調節剤や緩衝液を用い
ることができる。

本発明の蛍光プローブの適用濃度は特に限定されないが、例えば１〜１，０００μＭ程
度の濃度の溶液を適用することができる。

本発明の蛍光プローブとしては、上記一般式（Ｉ）で表される化合物又はその塩をその
まま用いてもよいが、必要に応じて、試薬の調製に通常用いられる添加剤を配合して組成
物として用いてもよい。例えば、生理的環境で試薬を用いるための添加剤として、溶解補
助剤、ｐＨ調節剤、緩衝剤、等張化剤などの添加剤を用いることができ、これらの配合量
は当業者に適宜選択可能である。これらの組成物は、一般的には、粉末形態の混合物、凍
結乾燥物、顆粒剤、錠剤、液剤など適宜の形態の組成物として提供されるが、使用時に注
射用蒸留水や適宜の緩衝液に溶解して適用すればよい。

（４）膵液検出用キット
本発明の膵液検出方法においては、上記蛍光プローブを含む膵液検出用キットを用いる
ことが好ましい。特に、上記プロテアーゼがキモトリプシンである場合、上記蛍光プロー
ブとトリプシンを含み、測定が行われるまでの期間において蛍光プローブとトリプシンが
混合することなく格納されていることが好ましい。これは、蛍光プローブとトリプシンと
を長時間混在させた場合には、それらが反応するおそれもあり得るため、検体を測定する
直前まで別々に保管させることが望ましいことによる。しかしながら、キットの利便性等
の観点から、蛍光プローブとトリプシンは、必ずしも別個の独立した容器に格納されてい
る必要はなく、これらが混合されない環境である限り、一体化した或いは連結した複数の
格納領域を有する容器を用いることができる。

当該キットにおいて、通常、本発明の蛍光プローブ或いはトリプシンは溶液として調製
されているが、例えば、粉末形態の混合物、凍結乾燥物、顆粒剤、錠剤、液剤など適宜の
形態の組成物として提供され、使用時に注射用蒸留水や適宜の緩衝液に溶解して適用する
こともできる。

また、当該キットには、必要に応じてそれ以外の試薬等を適宜含んでいてもよい。例え
ば、添加剤として、溶解補助剤、ｐＨ調節剤、緩衝剤、等張化剤などの添加剤を用いるこ
とができ、これらの配合量は当業者に適宜選択可能である。

以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらによって限定さ
れるものではない。

以下のスキームに従って、本発明の蛍光プローブであるｇＰｈｅ−ＨＲＭＧ（グルタリ
ル−フェニルアラニン ヒドロキシメチル ローダミングリーン）を合成した。

（ａ）化合物１の合成
ＨＭＲＧ ５５ｍｇ（０．１７４ｍｍｏｌ、１ｅｑ．）とトリエチルアミン ５３．６
μＬ（０．１６７ｍｍｏｌ、２．２ｅｑ．）をジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）２ｍＬに
溶かしアルゴン雰囲気下にて０℃で１０分間撹拌した。続いて、クロロぎ酸９−フルオレ
ニルメチル６７ｍｇ（０．２６１ｍｍｏｌ、１．５ｅｑ．）を溶解したＤＭＦ ０．５ｍ
Ｌを加え１５時間攪拌した。反応溶媒を減圧除去し、残渣をシリカゲルクロマトグラフィ
ーで精製して（ジクロルメタン/メタノール＝９５／５）目的化合物（３６ｍｇ、２２％
）を得た。なお、ＨＭＲＧの合成については、実施例２（ａ）を参照。

^１Ｈ ＮＭＲ （４００ ＭＨｚ， ＣＤ_３ＯＤ）: δ ７．７８ （ｄ， ２Ｈ， Ｊ ＝ ８
．１ Ｈｚ）， ７．６１ （ｄ， ２Ｈ， Ｊ ＝ ７．３ Ｈｚ）， ７．４４−７．３２ （
ｍ， ４Ｈ）， ６．８９−６．８７ （ｍ ，３Ｈ）， ６．７４−６．７１ （ｍ， ２Ｈ
）， ６．４９−６．４５ （ｍ， １Ｈ）， ６．３５ （ｄｄ， １Ｈ， Ｊ ＝ ８．４ Ｈ
ｚ， １．８Ｈｚ）， ５．２７ （ｓ， ２Ｈ）， ４．５５ （ｄ， ２Ｈ， Ｊ ＝ ６．６
Ｈｚ）， ４．２７ （ｔ， １Ｈ， Ｊ ＝ ６．６ Ｈｚ）． ＨＲＭＳ （ＥＳＩ^＋） Ｃ
ａｌｃｄ ＦＯＲ [Ｍ＋Ｈ]^＋， ５３９．１９７０８， Ｆｏｕｎｄ， ５３９．１９５２
１ （−１．８７ ｍｍｕ）．

（ｂ）化合物２の合成
化合物１ ３６ｍｇ（０．０６７ｍｍｏｌ、１ｅｑ．）とＮ，Ｎ−ジイソプロピルエチ
ルアミン（ＤＩＥＡ）３０．０μＬ（０．１６７ｍｍｏｌ、２．５ｅｑ．）をＤＭＦ２ｍ
Ｌに溶かしアルゴン雰囲気下にて０℃で１０分間撹拌した。続いてＢｏｃ−Ｐｈｅ−ＯＨ
（Ｎ−（ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル）−Ｌ−フェニルアラニン）４４．４ｍｇ（０．
１６７ ｍｍｏｌ、２．５ｅｑ．）とＯ−（７−アザベンゾトリアゾール−１−イル）−
Ｎ，Ｎ，Ｎ'，Ｎ'−テトラメチルウロニウムヘキサフルオロホスファート（ＨＡＴＵ）６
３．５ｍｇ（０．１６７ｍｍｏｌ、２．５ ｅｑ．）を溶かしたＤＭＦ ０．５ｍＬを加
え１５時間撹拌した。反応溶媒を減圧除去し、残渣をシリカゲルクロマトグラフィーで精
製して（ｎ−ヘキサン／酢酸エチル＝６６／３４）目的化合物（４２ｍｇ、８１％）を得
た。

^１Ｈ ＮＭＲ （４００ ＭＨｚ， ＣＤ_３ＯＤ）: δ ８．０１ （ｓ， １Ｈ）， ７．７
７ （ｄ， ２Ｈ， Ｊ ＝ ７．３ Ｈｚ）， ７．６１ （ｄ， ２Ｈ， Ｊ ＝ ７．３ Ｈｚ
）， ７．４１ （ｄ， ２Ｈ， Ｊ ＝ ７．３ Ｈｚ）， ７．３７ （ｓ， １Ｈ）， ７．
３４−７．２９ （ｍ， ５Ｈ）， ７．２３−７．２１ （ｍ ，５Ｈ）， ７．０６ （ｓ
， １Ｈ）， ６．９８−６．９４ （ｍ， ２Ｈ）， ６．８４−６．８１ （ｍ， ３Ｈ）
， ５．２８ （ｓ， ２Ｈ）， ４．５４ （ｄ， ２Ｈ， Ｊ ＝ ６．６ Ｈｚ）， ４．５
１−４．４８ （ｍ， １Ｈ）， ４．２６ （ｔ， １Ｈ， Ｊ ＝ ６．６ Ｈｚ）， ３．１
３−３．１１（ｍ， ２Ｈ）， １．４０ （ｓ， ９Ｈ）． ＨＲＭＳ （ＥＳＩ^＋） Ｃａ
ｌｃｄ ＦＯＲ [Ｍ＋Ｈ]^＋， ７８６．３１７９２， Ｆｏｕｎｄ， ７８６．３１６５２
（−１．４１ ｍｍｕ）．

（ｃ）ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧの合成
化合物２ ４２ｍｇ（０．０５３ ｍｍｏｌ、１ｅｑ．）を２０％トリフルオロ酢酸（
ＴＦＡ）／ジクロルメタン溶液に溶解し、３０分間室温で撹拌した。溶媒を減圧除去し、
得られた固体をジクロルメタン及び炭酸水素ナトリウムの飽和水溶液で抽出した。有機層
に硫酸ナトリウム加えてろ過した後に、溶媒を除去し固体を得た。得られた固体を５ｍＬ
のジクロルメタンに溶解し、グルタル酸無水物２２．８ｍｇ（０．２００ｍｍｏｌ、３．
８ｅｑ．）とＴＥＡ ２８．２μＬ（０．２００ｍｍｏｌ、３．８ｅｑ．）を加え、アル
ゴン雰囲気下に室温で１５時間撹拌した。続いて溶媒を減圧除去し、２０％ピペリジン／
ＤＭＦ溶液を加え、３０分間室温で攪拌した。溶媒を除去し、ＨＰＬＣを用いて精製を行
い（ｅｌｕｅｎｔ Ａ （Ｈ_２Ｏ ０．１％ＴＦＡ） ａｎｄ ｅｌｕｅｎｔ Ｂ（ＣＨ
_３ＣＮ ８０％，Ｈ_２Ｏ ２０％）（Ａ／Ｂ＝８０／２０ｔｏ０／１００ ４０ｍｉｎ）
）目的化合物（1３．７ｍｇ，４５％） を得た。

^１Ｈ ＮＭＲ （４００ ＭＨｚ， ＣＤ_３ＯＤ）: δ ８．４２ （ｓ， １Ｈ）， ７．７
２−7.70 （ｍ， ２Ｈ）， ７．５８ （１Ｈ， ｔ， Ｊ ＝ ６．８ Ｈｚ）， ７．４２−
７．１８ （ｍ， ９Ｈ）, ７．０３ （１Ｈ， ｄ， Ｊ ＝ ９．３ Ｈｚ）， ６．９５ （
ｓ， １Ｈ）， ４．７５ （ｔ， １Ｈ， Ｊ ＝ ７．６ Ｈｚ）， ４．３４ （ｓ， ２Ｈ
）， ３．１９−３．１３ （ｍ， １Ｈ）， ３．０３−３．００ （ｍ， １Ｈ）， ２．
２９−２．２１ （ｍ， ４Ｈ）， １．８５−１．７８ （ｍ， ２Ｈ）．
^１３Ｃ ＮＭＲ （１００ ＭＨｚ， ＣＤ_３ＯＤ）: d １７６．８， １７５．５， １７３
．４， １６４．６， １６１．７， １６０．１， １５６．９， １４８．３， １４１．
２， １３７．９， １３４．８， １３１．７， １３０．５， １３０．３， １２９．８
， １２９．５， １２９．０， １２８．０， １２１．５， １１９．５， １１９．４，
１１８．６， １０７．１， ９８．５， ６３．１， ５７．３， ３８．９， ３５．６
， ３３．９， ２２．１． ＨＲＭＳ （ＥＳＩ^＋） Ｃａｌｃｄ ＦＯＲ [Ｍ＋Ｈ]^＋， ５
７８．２２９１１， Ｆｏｕｎｄ， ５７８．２２６５９ （−２．５２ ｍｍｕ）．

以下のスキームに従って、本発明の蛍光プローブであるｇＧｌｕ−ＨＲＭＧ（γ−グル
タミル ヒドロキシメチル ローダミングリーン）を合成した。

（ａ）化合物３（ＨＭＲＧ）の合成
ローダミン１１０ ２８５ｍｇ（０．８ｍｍｏｌ、１ｅｑ．）をメタノール １０ｍＬ
に溶かし硫酸を加えてアルゴン雰囲気下に８０℃で１０時間攪拌した。反応溶媒を減圧除
去し、残渣を飽和重曹水および水で洗浄した。得られた固体をテトラヒドロフラン（ＴＨ
Ｆ）１０ｍＬに溶解させ、アルゴン雰囲気下に０℃で５Ｍ ナトリウムメトキシド溶液（
メタノール中）４００μＬ（０．８ｍｍｏｌ、１ｅｑ．）を加えて１０分間攪拌した。続
いてリチウムアルミニウムハイドライド ３３３ｍｇ（８ｍｍｏｌ，１０ｅｑ．）を加え
て３時間攪拌した。飽和塩化アンモニウム水溶液を５ｍＬ加え、溶媒を減圧除去し、得ら
れた固体をジクロルメタン及び酒石酸４水和物カリウム・ナトリウム塩の飽和水溶液で抽
出した。有機層に硫酸ナトリウムを加えてろ過した後、溶媒を除去し、固体を得た。得ら
れた固体をジクロルメタンに溶解し、クロラニル １９６ｍｇ（１ｍｍｏｌ、１ｅｑ．）
を加えて３０分間室温で攪拌した。溶媒を減圧下で除去し、残渣をシリカゲルクロマトグ
ラフィーで精製して（ジクロルメタン／メタノール＝１０：１）目的化合物（１０４ ｍ
ｇ，４１％）を得た。

^１Ｈ ＮＭＲ （３００ ＭＨｚ， ＣＤ_３ＯＤ）: δ ７．６４ （ｄ， １Ｈ， Ｊ ＝ ７
．７ Ｈｚ）， ７．５６ （ｔ， １Ｈ， Ｊ ＝ ７．６ Ｈｚ）， ７．４４ （ｔ， １Ｈ
， Ｊ ＝ ７．５ Ｈｚ）， ７．１７ （ｄ， １Ｈ， Ｊ ＝ ７．５ Ｈｚ）， ７．０３
− 7.00 （ｍ， ２Ｈ）， ６．７１−６．７４ （ｍ， ４Ｈ）， ４．２３ （ｓ， ２Ｈ
）
^１３Ｃ ＮＭＲ （７５ ＭＨｚ， ＣＤ_３ＯＤ）: δ １６１．５， １５９．９， １５９
．６， １４１．０， １３３．４， １３２．２， １３１．３， １３０．３， １２９．
５， １２８．８， １１８．０， １１５．０， ９８．４， ６２．８
ＨＲＭＳ （ＥＳＩ^＋） Ｃａｌｃｄ ＦＯＲ [Ｍ＋Ｈ]^＋， ３１７．１２９００， Ｆｏｕ
ｎｄ， ３１７．１２８６２ （−０．３８ ｍｍｕ）

（ｂ）ｇＧｌｕ−ＨＭＲＧの合成
化合物３（０．０５ｍｍｏｌ １ｅｑ．）、ＨＡＴＵ（０．１１ｍｍｏｌ、２ｅｑ．）
、及びＮ，Ｎ−ジイソプロピルエチルアミン（０．１１ｍｍｏｌ、２ｅｑ．）をジメチル
ホルムアミド（ＤＭＦ）２ｍＬに溶解し、アルゴン雰囲気下に０℃で１０分間攪拌した。
続いてＢｏｃ−Ｇｌｕ−ＯｔＢｕ（０．０５ｍｍｏｌ、１ｅｑ．）を溶解したＤＭＦ ０
．５ｍＬを加え１５時間攪拌した。反応溶媒を減圧除去した後に得られた固体をジクロル
メタン２ｍＬとトリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）２ｍＬに溶かし、３０分間攪拌した。溶媒を
除去し、ＨＰＬＣを用いて精製を行い（ｅｌｕｅｎｔ Ａ：Ｈ_２Ｏ ０．１％ＴＦＡ及び
ｅｌｕｅｎｔ Ｂ：ＣＨ_３ＣＮ ８０％，Ｈ_２Ｏ ２０％ ０．１％ ＴＦＡ；Ａ／Ｂ＝
８０／２０ ｔｏ ０／１００ ＦＯＲ ４０ ｍｉｎ．）、目的化合物を得た。

^１Ｈ ＮＭＲ （４００ ＭＨｚ， ＣＤ_３ＯＤ）: δ ８．３９ （ｓ， １Ｈ）， ７．６
２−７．６１ （ｍ， ２Ｈ）， ７．５０−７．４７ （ｍ， １Ｈ）, 7.39 （ｄ， １Ｈ
， Ｊ ＝ ７．８ Ｈｚ）， ７．２４ −７．２２ （ｍ， ３Ｈ）， ６．９４ （ｄ， １
Ｈ, J = ８．３ Ｈz）, ６．８６ （ｓ， １Ｈ）， ４．２５ （ｓ， ２Ｈ）， ３．９６
（ｔ， １Ｈ， Ｊ ＝ ６．３ Ｈｚ）， ２．７１−２．６９ （ｍ， ２Ｈ）， ２．３０
−２．２７ （ｍ， ２Ｈ）
^１３Ｃ ＮＭＲ （７５ ＭＨｚ，ＣＤ_３ＯＤ）: δ１７３．４， １７１．８， １６４．
５， １６３．１， １６０．７， １５７．１， １４８．７， １４１．２， １３４．９
， １３１．９， １３１．７， １３０．５， １２９．８， １２９．０， １２１．４，
１１９．４， １１８．５， １０６．９， ９８．５， ６３．１， ５３．５， ３３．
４， ２６．６
ＨＲＭＳ （ＥＳＩ^＋） Ｃａｌｃｄ ＦＯＲ [Ｍ＋Ｈ]^＋， ４４６．１７１６０， Ｆｏｕ
ｎｄ， ４４６．１７１９５ （＋０．３６ ｍｍｕ）．

以下のスキームに従って、本発明の蛍光プローブであるＢｚ−Ｔｙｒ−ＨＭＲＧ（ベン
ゾイルチロシン ヒドロキシメチル ローダミングリーン）を合成した。

（ａ）化合物４（Ｂｚ−Ｔｙｒ（Ａｃ）−ＯＨ、Ｎ−ベンゾイル−Ｏ−アセチル−チロシ
ン）の合成
水酸化ナトリウム ２６３ｍｇ（６．５６ｍｍｏｌ）を水 １．７５ｍＬに溶解した。
この水酸化ナトリウム水溶液中にＢｚ−Ｔｙｒ−ＯＨ ５００ｍｇ（１．７５ｍｍｏｌ）
を加えて溶解し、氷片を数個加えて０℃に冷却した。無水酢酸 ６２０μＬ（６．５６ｍ
ｍｏｌ）を加え、０℃で２０分間攪拌した。次いで、酢酸エチル ２０ｍＬと水 ５０ｍ
Ｌを加え、３Ｍ塩酸でｐＨ２とした。有機層を分液し、再度酢酸エチル ２０ｍＬを加え
て分液後、有機層を合わせて硫酸ナトリウムで乾燥した。酢酸エチルを減圧除去し、酢酸
エチルとヘキサンを用いて再結晶して化合物４（３７９ｍｇ、６６％）を得た。
^１Ｈ ＮＭＲ （４００ＭＨｚ，ＣＤＣｌ_３）： δ ７．６８（ｍ，２Ｈ），δ ７．
５１（ｍ，１Ｈ），δ ７．４１（ｍ，２Ｈ），δ ７．２０（ｄ，Ｊ＝８．３，２Ｈ）
，７．０２（ｄ，Ｊ＝８．３，２Ｈ），δ ６．６６（ｄ，Ｊ＝７．３，１Ｈ），δ ５
．０８（ｍ，１Ｈ），δ ３．３５（ｄｄ，Ｊ＝１４．２，５．５、１Ｈ）δ ３．２７
（ｄｄ，Ｊ＝１４．２，５．５、１Ｈ），δ ２．３０（ｓ，３Ｈ）
^１３Ｃ ＮＭＲ（１００ＭＨｚ，ＣＤＣｌ_３）： δ １７４．１，１６９．９，１６
７．８，１４９．９，１３３．５，１３３．４，１３２．２，１３０．６，１２８．８．
１２７．２，１２１．８，５３．６，３６．７，２１．２

（ｂ）化合物５（Ｂｚ−Ｔｙｒ−ＨＭＲＧ）の合成
化合物４ １５．１ｍｇ（０．０４６ｍｍｏｌ、５ｅｑ．）とＨＡＴＵ １７．５ｍｇ（
０．０４６ｍｍｏｌ，５ｅｑ．）をＤＭＦ １ｍＬに溶かし窒素雰囲気下に０℃に冷却し
た。続いて、Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルエチルアミン ９．９μＬ（０．０５５ｍｍｏｌ、
６ｅｑ．）を加え、３分間攪拌した。これを、化合物１ ５ｍｇ（０．００９ｍｍｏｌ）
をＤＭＦ １ｍＬに溶解して、窒素雰囲気下に０℃に冷却した溶液中に加え、ゆっくりと
室温に戻して２４時間攪拌した。反応溶媒を減圧除去し、残渣に２０ｍＬのジクロロメタ
ンを加え、１Ｍ塩酸 ２０ｍＬで洗浄した。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥後、ジクロロ
メタンを減圧除去し、残渣をシリカゲルクロマトグラフィーで精製した（ヘキサン／酢酸
エチル＝７／３→５／５）。目的化合物を含む分画を減圧下濃縮し、残渣をＴＨＦ ２ｍ
Ｌに溶解後、ジエチルアミン９６μＬ（０．９２ｍｍｏｌ）を加えて室温で２４時間攪拌
した。反応溶媒を減圧除去し、残渣を２ｍＬのメタノールに溶解して０．１Ｍ水酸化ナト
リウム水溶液１００μＬを加え、室温で１時間攪拌した。１Ｍ塩酸 １００μＬを加えた
後、反応溶媒を減圧除去し、残渣をＨＰＬＣで精製して（ｅｌｕｅｎｔ Ａ：Ｈ_２Ｏ ０
．１％ＴＦＡ及びｅｌｕｅｎｔ Ｂ：アセトニトリル ０．１％ＴＦＡ；Ａ／Ｂ＝８０／
２０ ｔｏ ０／１００ ＦＯＲ ３０ｍｉｎ．）、化合物５を得た。
ＨＲＭＳ（ＥＳＩ^＋） Ｃａｌｃｄ ＦＯＲ ［Ｍ＋Ｈ］^＋，５８４．２１８００， Ｆ
ｏｕｎｄ，５８４．２１８８７（０．８７ｍｍｕ）．

以下のスキームに従って、本発明の蛍光プローブであるＧｌｔ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ｐｈ
ｅ−ＨＭＲＧ（Ｇｌｔ−ＡＡＦ−ＨＭＲＧ；グルタリル−アラニン−アラニン−フェニル
アラニン ヒドロキシメチル ローダミングリーン）及びＳｕｃ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ｐｒ
ｏ−Ｐｈｅ−ＨＭＲＧ（Ｓｕｃ−ＡＡＰＦ−ＨＭＲＧ；スクシニル−アラニン−アラニン
−プロリン−フェニルアラニン ヒドロキシメチル ローダミングリーン）を合成した。

（ａ）Ｎ−Ｂｏｃ保護ペプチドＢｏｃ−ＡＡＦ−ＯＨ（化合物６）及びＢｏｃ−ＡＡＰＦ
−ＯＨ（化合物９）の合成
Ｎ−Ｂｏｃ保護ペプチドである化合物６及び９はＰｒｏｔｅｉｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇ
ｉｅｓ社製のＰｒｅｌｕｄｅ自動固相合成装置を使って、Ｈ−Ｐｈｅ−Ｔｒｔ（２−Ｃｌ
）−Ｒｅｓｉｎ（０．９４ｍｍｏｌ／ｇ、１００−２００ｍｅｓｈ、１％ＤＶＢ（ジビニ
ルベンゼン））を用いて以下に示す通常のＦｍｏｃ固相合成法で合成した。
（１）ペプチドカップリングサイクル：Ｆｍｏｃアミノ酸（レジンの４当量）とＯ−（ベ
ンゾトリアゾール−１−イル）−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’，−テトラメチルウロニウムヘキサ
フルオロりん酸塩（ＨＢＴＵ：レジンの４当量）をＤＭＦに溶解させ、ジイソプロピルエ
チルアミン（ＤＩＰＥＡ：レジンの８当量）を加えて攪拌した。この溶液を、Ｎ末脱保護
ペプチドをカップリングさせたレジンに加えて２．５分攪拌した。
（２）Ｆｍｏｃ脱保護サイクル：Ｆｍｏｃ保護基の脱保護は、２０％（ｖ／ｖ）ピペリジ
ン／ＤＭＦ溶液をレジンに加え、１２分攪拌することで行った。
（３）レジンからの切り出し： 酢酸１０％、２，２，２−トリフルオロエタノール２０
％、ジクロロメタン７０％の溶液をレジンに加え、１時間攪拌してペプチドをレジンから
切り出した。レジンを濾過で除き、ろ液を減圧除去し、残渣に過剰量の冷却ジイソプロピ
ルエーテルを加えて生じた沈殿をろ取し、Ｎ−Ｂｏｃ保護ペプチドの化合物６及び９を得
た。
Ｎ−Ｂｏｃ保護ペプチド（化合物６） Ｂｏｃ−ＡＡＦ−ＯＨ
ＥＳＩ-ＭＳ : ｍ/ｚ ４０７[Ｍ]^＋
Ｎ−Ｂｏｃ保護ペプチド（化合物９） Ｂｏｃ−ＡＡＰＦ−ＯＨ
ＥＳＩ-ＭＳ : ｍ/ｚ ５０４[Ｍ]^＋

（ｂ）化合物７の合成
Ｎ−Ｂｏｃ保護ペプチドの化合物６ ３０．０ｍｇ（０．０７４ｍｍｏｌ、４ｅｑ．）
とＨＡＴＵ ３５．０ｍｇ（０．０９２ｍｍｏｌ，５ｅｑ．）をＤＭＦ １ｍＬに溶かし
窒素雰囲気下に０℃に冷却した。続いて、Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルエチルアミン １９．
７μＬ（０．１１ｍｍｏｌ、６ｅｑ．）を加え、３分間攪拌した。これを、化合物１ １
０ｍｇ（０．０１８ｍｍｏｌ）をＤＭＦ １ｍＬに溶解して、窒素雰囲気下に０℃に冷却
した溶液中に加え、 ゆっくりと室温に戻して２４時間攪拌した。反応溶媒を減圧除去し
、残渣をシリカゲルクロマトグラフィーで精製し（ヘキサン／酢酸エチル＝５／５）、化
合物７を得た。
ＥＳＩ-ＭＳ : ｍ/ｚ ９２８[Ｍ]^＋

（ｃ）化合物８（Ｇｌｔ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ｐｈｅ−ＨＭＲＧ（Ｇｌｔ−ＡＡＦ−ＨＭＲ
Ｇ；グルタリル−アラニン−アラニン−フェニルアラニン ヒドロキシメチル ローダミ
ングリーン））の合成
（ｂ）で得られた化合物７を２０％ＴＦＡ／ジクロロメタン溶液に溶解し、室温で３０
分間攪拌した。次いで、反応溶媒を減圧除去し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液１０ｍＬ
とジクロロメタン１０ｍＬを加えて分液し、有機層を硫酸ナトリウムで乾燥した。有機溶
媒を減圧除去し、ジクロロメタン ５ｍＬ、無水グルタル酸 ９．７ｍｇ（０．０８５ｍ
ｍｏｌ、４．７ｅｑ．）及びトリエチルアミン １１．８μＬ（０．０８５ｍｍｏｌ、４
．７ｅｑ．）を加え室温で２０時間攪拌した。次いで、反応溶媒を減圧除去し、２０％ピ
ペリジン／ＤＭＦ溶液１ｍＬを加え室温で1時間攪拌した。反応溶媒を減圧除去し、残渣
をＨＰＬＣで精製して（ｅｌｕｅｎｔ Ａ：Ｈ_２Ｏ ０．１％ＴＦＡ及びｅｌｕｅｎｔ
Ｂ：アセトニトリル ０．１％ＴＦＡ；Ａ／Ｂ＝８０／２０ ｔｏ ０／１００ ＦＯＲ
３０ｍｉｎ．）、化合物８のＧｌｔ−ＡＡＦ−ＨＭＲＧを得た（３．０ｍｇ、２３％（
２工程））。
ＨＲＭＳ（ＥＳＩ^＋） Ｃａｌｃｄ ＦＯＲ ［Ｍ＋Ｎａ］^＋，７４２．２８４７３，
Ｆｏｕｎｄ，７４２．２８２６８（−２．０５ｍｍｕ）．

（ｄ）化合物１０の合成
Ｎ−Ｂｏｃ保護ペプチドの化合物９ ３７．３ｍｇ（０．０７４ｍｍｏｌ、４ｅｑ．）
とＨＡＴＵ ３５．０ｍｇ（０．０９２ｍｍｏｌ，５ｅｑ．）をＤＭＦ １ｍＬに溶かし
窒素雰囲気下に０℃に冷却した。続いて、Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルエチルアミン １９．
７μＬ（０．１１ｍｍｏｌ、６ｅｑ．）を加え、３分間攪拌した。これを、化合物１ １
０ｍｇ（０．０１８ｍｍｏｌ）をＤＭＦ １ｍＬに溶解して、窒素雰囲気下に０℃に冷却
した溶液中に加え、 ゆっくりと室温に戻して２４時間攪拌した。反応溶媒を減圧除去し
、残渣をシリカゲルクロマトグラフィーで精製して（ヘキサン／酢酸エチル＝７／３ ｔ
ｏ ３／７）、化合物１０を得た。
ＥＳＩ-ＭＳ : ｍ/ｚ １０２５[Ｍ]^＋

（ｅ）化合物１１（Ｓｕｃ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｈｅ−ＨＭＲＧ（Ｓｕｃ−ＡＡ
ＰＦ−ＨＭＲＧ；スクシニル−アラニン−アラニン−プロリン−フェニルアラニン ヒド
ロキシメチル ローダミングリーン））の合成
（ｄ）で得られた化合物１０を２０％ＴＦＡ／ジクロロメタン溶液に溶解し、室温で３
０分間攪拌した。次いで、反応溶媒を減圧除去し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液１０ｍ
Ｌとジクロロメタン１０ｍＬを加えて分液し、有機層を硫酸ナトリウムで乾燥した。有機
溶媒を減圧除去し、ジクロロメタン ５ｍＬ、無水コハク酸 ７．８ｍｇ（０．０７８ｍ
ｍｏｌ、４ｅｑ．）及びトリエチルアミン １０．９μＬ（０．０７８ｍｍｏｌ、４ｅｑ
．）を加え室温で２０時間攪拌した。次いで、反応溶媒を減圧除去し、２０％ピペリジン
／ＤＭＦ溶液１ｍＬを加え室温で1時間攪拌した。反応溶媒を減圧除去し、残渣をＨＰＬ
Ｃで精製して（ｅｌｕｅｎｔ Ａ：Ｈ_２Ｏ ０．１％ＴＦＡ及びｅｌｕｅｎｔ Ｂ：アセ
トニトリル ０．１％ＴＦＡ；Ａ／Ｂ＝８０／２０ ｔｏ ０／１００ ＦＯＲ ３０ｍ
ｉｎ．）、化合物８のＳｕｃ−ＡＡＰＦ−ＨＭＲＧを得た（４．１ｍｇ、２８％（２工程
））。
ＨＲＭＳ（ＥＳＩ^＋） Ｃａｌｃｄ ＦＯＲ ［Ｍ＋Ｎａ］^＋，８２５．３２１８５，
Ｆｏｕｎｄ，８２５．３２１２２（−０．６３ｍｍｕ）．

キモトリプシンを用いた蛍光アッセイ
実施例１で合成した、Ｎ−置換フェニルアラニンに基づくアミノ酸残基を有するｇＰｈ
ｅ−ＨＭＲＧ化合物を中性リン酸バッファーに溶解して、キモトリプシンを作用させ、そ
の蛍光アッセイを行った。ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧの２．４ｍＭ ジメチルスルホキシド（Ｄ
ＭＳＯ）溶液 ３μＬを３ｍＬの０．１Ｍ リン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ７．４）
に最終濃度２．４μＭとなるように溶解し、キモトリプシン（ウシ膵臓由来のａ−キモト
リプシン：ＳＩＧＭＡ Ｃ４１２９−２５０ＭＧ）４．６ Ｕを加えて３７℃で酵素反応
を行った。励起波長は５０１ｎｍとした。得られた結果を図１及び２に示す。

蛍光アッセイの結果、キモトリプシンの添加によって、吸収及び蛍光強度の顕著な増加
が認められた（図１）。その応答速度についても、蛍光のピーク波長である５２４ｎｍに
ついて、キモトリプシン添加直後から蛍光強度の急激な増大が観測され、ほぼ６００秒後
には飽和に至ることが認められた（図２）。これらの結果は、キモトリプシンとｇＰｈｅ
−ＨＭＲＧとの酵素反応により、ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧのアミド結合が加水分解されて開環
体を生じること、すなわち、ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧがキモトリプシンに対するｏｎ／ｏｆｆ
蛍光プローブとして機能することを示すものである。また、図１の吸収スペクトル変化に
おいて、５００ｎｍ付近の吸光度の大きな変化が見られたことから、当該波長領域におけ
る吸光度の変化を観測することによっても、キモトリプシンとｇＰｈｅ−ＨＭＲＧの反応
を認識できることが分かる。

ヒト膵液を用いたｉｎ ｖｉｔｒｏ蛍光アッセイ（ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ、ｇＧｌｕ−ＨＭ
ＲＧ）
実施例１で合成したｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ、及び実施例２で合成したグルタミン酸残基を
有するｇＧｌｕ−ＨＭＲＧを蛍光プローブとして用いて膵臓がんあるいは胆管がん患者か
ら得られた膵液の酵素活性を評価した。蛍光プローブのＤＭＳＯ溶液（１ｍＭ）のうち1
μＬを１８０μＬの０．１Ｍ リン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ７．４）に最終濃度０
．９μＭとなるように溶解し、膵液２０μＬを加え、３７℃で３０分間、酵素反応を行っ
た。ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧの場合には、５７ ＢＡＥＥ ｕｎｉｔｓのトリプシン（ウシ膵
臓由来のトリプシン：ＳＩＧＭＡ Ｔ１４２６−１００ＭＧ）を添加したプローブ溶液を
用いて同様の酵素反応を行った。また、比較のための阻害剤処理に関しては、ｇＧｌｕ−
ＨＭＲＧの場合、γ−グルタミルトランスフェラーゼ阻害剤（ＧＧｓ−Ｔｏｐ：和光純薬
０７５−０５４７１）の水溶液（１０ｍＭ）のうち１μＬ、ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧの場合、
キモトリプシン阻害剤（キモスタチン：ＳＩＧＭＡ Ｃ７２６８）のＤＭＳＯ溶液（１０
ｍＭ）のうち1μＬをプローブ溶液にそれぞれ加えた。蛍光測定装置の励起波長は４７８
−４９２ｎｍ、蛍光波長は５２３−５４８ｎｍを用いた。ｇＧｌｕ−ＨＭＲＧ及びｇＰｈ
ｅ−ＨＭＲＧについて得られた結果をそれぞれ図３及び４に示す。

ｇＧｌｕーＨＭＲＧによるアッセイの結果、いずれの膵液サンプル（Ｎｏ．１〜Ｎｏ．
５）においても、蛍光強度の増加が観測された。また、γ−グルタミルトランスフェラー
ゼ特異的阻害剤を添加した場合には蛍光強度が有意に減少したことから、ｇＧｌｕーＨＭ
ＲＧは膵液中のγ−グルタミルトランスフェラーゼ活性を特異的に検出できることが確認
された。

ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧによるアッセイの場合、キモトリプシン阻害剤の有無による影響に
加えて、ターゲットのキモトリプシンは前駆体（キモトリプシノーゲン）として膵液中に
存在していることから、当該前記体を活性化するトリプシンの添加の有無による影響につ
いても併せて測定を行った（図４）。その結果、溶液中にトリプシンを含む場合には、い
ずれの膵液サンプル（Ｎｏ．１〜Ｎｏ．５）においても蛍光強度の顕著な増大が認められ
た。すなわち、ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧは、前駆体であるキモトリプシノーゲンには蛍光応答
をほとんど示さないが、トリプシンによる活性後のキモトリプシンに対して優れた蛍光応
答を示した。また、キモトリプシンの阻害剤であるキモスタチンを添加した場合には、蛍
光強度が有意に減少した。これらの結果から、ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧは膵液中のキモトリプ
シン活性を特異的に検出できることが確認された。

さらに、膵臓の切除手術を受けた患者から採取したドレーンサンプルを用いて、膵液以
外の体液に対する蛍光プローブの応答挙動の比較を行った。１８人の患者から採取した、
膵液、腹水、及び腸液の計７６サンプルについて、ｇＧｌｕ−ＨＭＲＧ、ｇＰｈｅ−ＨＭ
ＲＧ、及び、トリプシン添加ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ（ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ−Ｔｒｙ）の蛍光
強度変化を測定した。

９６ウェルのマイクロプレートリーダー（ＳＨ−８０００、日立）の各ウェルに、１８
０μＬのプローブ溶液（１．１μＭ）を入れ、次いで２０μＬの採取サンプルを添加混合
し、３７℃でインキュベーションしてそれぞれ５分後、１５分後、３０分後の蛍光応答を
測定した。ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ−Ｔｒｙには、トリプシンを最終濃度が０．５２５μＢＴ
ＥＥ／μＬとなるよう添加した。蛍光測定装置の励起波長は４９０ｎｍ、蛍光波長は５２
０ｎｍを用いた。得られた蛍光応答の結果を各サンプルの平均値として図５に示す。

図５より、トリプシン添加しないｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ単独の場合はいずれの体液に対し
ても有意な蛍光応答は観測されなかったが、トリプシンを添加したｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ−
Ｔｒｙでは、膵液に対してのみ大きな蛍光強度の増加が見られた。これは、膵液中におい
て、ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧが、トリプシン添加によって活性化されたキモトリプシンと特異
的に反応することを示すものである。一方、ｇＧｌｕ−ＨＭＲＧでは、膵液に対して蛍光
強度の増加が見られたものの、腹水及び腸液に対しても蛍光強度の増加が観測され、特に
、腸液に対しては膵液の場合よりも大きな蛍光強度の増加が観測された。これは、腸液中
に含まれるγ−グルタミルトランスフェラーゼに応答したものと考えられる。これらの結
果から、他の体液と膵液を区別して特定するためにキモトリプシン活性を指標とすること
が非常に有効であり、かつ、ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧとトリプシンを併用することで膵液を選
択的に検出できることが実証された。

なお、上述のように、ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ（トリプシン添加）のほうが、ｇＧｌｕ−Ｈ
ＭＲＧに比べて優れた蛍光応答を示したが、蛍光プローブ分子単独で（すなわち、トリプ
シン添加を要せず）膵液を検出できるという点で、腸液等が存在しない環境の場合にはｇ
Ｇｌｕ−ＨＭＲＧが非常に有益であると考えられる。

ｉｎ ｖｉｔｒｏ蛍光アッセイ（化合物５、８、及び１１）
上記実施例６と同様に、実施例３で合成したＢｚ−Ｔｙｒ−ＨＭＲＧ（化合物５）、及
び実施例４で合成したＧｌｔ−ＡＡＦ−ＨＭＲＧ（化合物８）とＳｕｃ−ＡＡＰＦ−ＨＭ
ＲＧ（化合物１１）を蛍光プローブとして用いて、キモトリプシンとの反応性を評価した
。測定条件は、以下のとおりである。

＜測定条件＞
基質終濃度：１μＭ（ｐＨ３での吸光度からストック濃度を算出、調整）
緩衝液：ＰＢＳ、ｐＨ７．４
阻害剤（キモスタチン）：１０μＭ
キモトリプシン：２Ｕ
インキュベーション時間：１０分、２０分、３０分（図６は、３０分後の蛍光強度値）
測定装置：コロナプレートリーダー(ＳＨ８０００)
励起蛍光波長：５０１ｎｍ、５２４ｎｍ

得られた蛍光応答の結果をそれぞれ複数サンプルの平均値として図６に示す。その結果
、全ての蛍光プローブにおいて蛍光強度の増加が観測された。また、キモトリプシン阻害
剤（キモスタチン）を添加した場合には蛍光強度が有意に減少したことから、これらの蛍
光プローブはいずれも膵液中のキモトリプシン活性を特異的に検出できることが実証され
た。

ヒト膵液の蛍光イメージング
蛍光プローブとしてｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ及びｇＧｌｕ−ＨＭＲＧを用いて、膵離断面の
膵液の蛍光イメージングを行った。測定対象である膵液を保持される材料として、手術中
で使用する場合等を想定し、医療現場で使用されている拭きタオルおよび実験用のろ紙(
紙自体のバックグラウンド蛍光が低いもの)を用いた。具体的な手順は、外科手術で摘出
した直後の膵臓片を採取し、その離断面に拭きタオルおよびろ紙を接着させて膵液を付着
させた。その後、接着させた紙にｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ(トリプシンを含む)及びｇＧｌｕ−
ＨＭＲＧのプローブ溶液を噴霧してイメージングを開始した。プローブ溶液は、プローブ
のＤＭＳＯ溶液（１０ｍＭ）の１０μＬを２ｍＬのＲＰＭＩ１６４０培地（ＧＩＮＢＯ
１１８３５）に最終濃度５０μＭとなるよう溶解させ、ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧにはトリプシ
ン（５２．６ ＢＴＥＥ ｕｎｉｔｓ）を加えた溶液を用いた。励起フィルターは４３５
−４８０ｎｍ、蛍光フィルターは４９０ｎｍのロングパスフィルターを用いた。得られた
イメージ画像を図７及び図８に示す。

図７ａ及び図８ａは、膵液の付着箇所を白色光画像で示したものである。図７ｂ及び図
８ｂの左側は、５００−７２０ｎｍにおけるカラーイメージであり、右側は５４０ｎｍに
おける蛍光イメージを示す。その結果、ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧ及びｇＧｌｕ−ＨＭＲＧのい
ずれにおいても、プローブを噴霧してから数分で膵液付着部分の可視化に成功した。特に
、ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧでは、噴霧から１分後には、肉眼で判別可能な明確な蛍光応答が認
められた。加えて、ｇＰｈｅ−ＨＭＲＧでは、膵液以外の体液付着部分（図７ａ中の青色
実線枠内）については、蛍光応答が観測されなかったことから、蛍光応答を確認すること
によって、膵液の存在を選択的に検出及びイメージング可能であることが実証された。

Claims (13)

1. 以下の式（Ｉ）で表される化合物又はその塩を含む蛍光プローブを体液試料と接触させ、当該試料中に含まれるプロテアーゼと前記蛍光プローブの反応による蛍光応答又は吸光度変化を観測することにより、膵液の存在を検出することを特徴とする、膵液検出方法：
   

   

   
   （式中、Ａはアミノ酸残基又はＮ−置換アミノ酸残基を表し、ここで、Ａは隣接する式中のＮＨとアミド結合を形成して連結しており；Ｒ ^１ は水素原子又はベンゼン環に結合する1個ないし4個の同一又は異なる置換基を表し；Ｒ ^２ 、Ｒ ^３ 、Ｒ ^４ 、Ｒ ^５ 、Ｒ ^６ 、及びＲ ^７ はそれぞれ独立に水素原子、水酸基、アルキル基、又はハロゲン原子を表し；Ｒ ^８ 及びＲ ^９ はそれぞれ独立に水素原子又はアルキル基を示し；ＸはＣ _１ -Ｃ _３ アルキレン基を表す）。
2. 前記アミノ酸が芳香族アミノ酸から選択される、請求項１に記載の検出方法。
3. Ａが以下の式（ＩＩ）で表される基である、請求項１に記載の検出方法：
   

   

   
   （式中、Ｒ ^１０ は置換又は無置換のアシル基を表し、Ｒ ^１１ は水素原子又は水酸基を表す）。
4. Ｒ ^１０ が、アセチル基、カルボベンゾキシ基、ベンゾイル基、スクシニル基、グルタリル基、あるいは、Ｎ末端にアセチル基、カルボベンゾキシ基、ベンゾイル基、スクシニル基、グルタリル基が置換したアミノ酸残基、あるいはＮ末端アミノ基にアセチル基、カルボベンゾキシ基、ベンゾイル基、スクシニル基、グルタリル基が置換した、１個乃至５個のアミノ酸よりなるペプチド基、又はこれらを一部に含む置換基から選択される、請求項３に記載の検出方法。
5. Ａが以下の式（ＩＩＩ）〜（ＶＩ）で表される基から選択される、請求項１に記載の検出方法。
   

   

   
   

   

   
   

   

   
   

   
6. Ｒ ^１ 、Ｒ ^２ 、Ｒ ^３ 、Ｒ ^４ 、Ｒ ^５ 、Ｒ ^６ 、Ｒ ^７ 、Ｒ ^８ 及びＲ ^９ が水素原子であり、Ｘがメチレン基である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の検出方法。
7. Ａがγ−グルタミル基である、請求項１に記載の検出方法。
8. Ｒ ^１ 、Ｒ ^２ 、Ｒ ^３ 、Ｒ ^４ 、Ｒ ^５ 、Ｒ ^６ 、Ｒ ^７ 、Ｒ ^８ 及びＲ ^９ が水素原子であり、Ｘがメチレン基である、請求項７に記載の検出方法。
9. 前記プロテアーゼが、キモトリプシンである、請求項１に記載の検出方法。
10. 前記蛍光プローブと前記体液試料を接触させる際に、当該体液試料中にトリプシンを添加することを含む、請求項９に記載の検出方法。
11. 前記プロテアーゼが、γ−グルタミルトランスフェラーゼである、請求項１に記載の検出方法。
12. 蛍光イメージング手段を用いて前記蛍光応答を可視化することを更なる特徴とする、請求項１〜１１のいずれか１項に記載の検出方法。
13. 以下の式（Ｉ）で表される化合物又はその塩を含む蛍光プローブとトリプシンを含む膵液検出用キットであって、当該キットが使用されるまでの期間において前記蛍光プローブと前記トリプシンが混合することなく格納されていることを特徴とする、膵液検出用キット：
    

    

    
    （式中、Ａはアミノ酸残基又はＮ−置換アミノ酸残基を表し、ここで、Ａは隣接する式中のＮＨとアミド結合を形成して連結しており；Ｒ ^１ は水素原子又はベンゼン環に結合する1個ないし4個の同一又は異なる置換基を表し；Ｒ ^２ 、Ｒ ^３ 、Ｒ ^４ 、Ｒ ^５ 、Ｒ ^６ 、及びＲ ^７ はそれぞれ独立に水素原子、水酸基、アルキル基、又はハロゲン原子を表し；Ｒ ^８ 及びＲ ^９ はそれぞれ独立に水素原子又はアルキル基を示し；ＸはＣ _１ -Ｃ _３ アルキレン基を表す）。

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