JP6324486B2 - レーザ・アブレーション・セル - Google Patents
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Description
サンプルを、サンプルの表面が横向き開口を向くように、サンプル・チャンバに配置するステップと、
フロー・チャネルの入口に、キャリア・ガスを供給するステップと、
サンプル・チャンバの入口に、シース・ガスを供給するステップと、
横向きウィンドウと横向き開口とを通過させて、前記表面の上に、パルス・レーザ・ビームを照射することによって、表面から物質をアブレートするステップと、
を、必ずしも上記順序とは限らずに含む。
図1および図2は、本発明の例示的な実施形態によるレーザ・アブレーション・セル1を概略的に図解しており、レーザ・アブレーション・セル1は、以下では、「チューブ・セル」とも称される。アブレーション・セル1は、第1の部分であるセル・トップ10と第2の部分であるセル・ボトム20との2つの部分を備える。管状のフロー・チャネル11は、セル・トップ10に形成され、キャリア・ガス入口12から混合ガス出口13まで延長する。セル・トップ10の底側の壁部15には、横向き開口14が形成されている。セル・トップ10の上側の壁部17には、横断方向の穴が形成されており、UV透過性のシリコン・ウィンドウ16によって閉鎖されている。セル・ボトム20には、サンプル・チャンバ21が提供される。シース・ガス入口22は、サンプル・チャンバ21に通じている。シース・ガス入口22はフロー・チャネル11とは(逆)平行に延長するように示されているが、シース・ガス入口の方向は、任意に選択され得る。好ましくは、シース・ガス入口は、横断方向に対して垂直に延長する。サンプル23はサンプル・チャンバ21に配置され、サンプル23の上側表面24が横向き開口14よりも下に位置するように、セル・ボトム20がセル・トップ10に取り付けられる。
本発明は、誘導結合プラズマ質量分析(LA−ICP−MS)に結合可能なレーザ・アブレーション・セルに関するが、誘導結合プラズマ分析は、生体サンプルを画像化する場合に応用例を有する。よって、本発明は、(i)本発明によるレーザ・アブレーション・セルと、(ii)質量分析計とを備えるLA−ICP−MSを提供する。ある応用例では、サンプルにおける異なる標的分子を、異なる標識原子を用いて標識することが可能であり、次に、LA−ICP−MSが、標識生体サンプルの複数の細胞にわたって用いられる。検出された信号をそれらの信号を生じさせたレーザ・アブレーション・セルにおけるレーザ・アブレーションの既知である位置とリンクさせることにより、この方法は、標識標的分子をサンプル上の特定の位置に局所化することを可能にし、よって、サンプルの画像の構築を可能にする。
LA−ICP−MSは、プルームにおける複数の標識原子のための信号を提供することができる。本発明のレーザ・アブレーション・セルによって生成されるプルームにおける標識の検出は、アブレーション位置における同種の標的の存在を明らかにする。サンプル表面上の既知の空間位置において一連のプルームを生成することによって、MS信号は、サンプル上の標識の位置を明らかにし、よって、信号が、サンプルの画像を構築するのに用いられ得る。区別可能な標識を用いて複数の標的を標識することにより、標識原子の位置と同種の標的の位置とを関連付けして、複雑な画像を構築することが可能であり、既存の技術を用いて達成可能なものをはるかに凌駕する多重化のレベルに到達する。本発明者たちは、生成された画像が、IFMによって決定されている与えられたマーカを表す染色パターンと細胞の割合とを再生できることを示し、それにより、イメージングへの本発明の適切性を確認した。
画像は、単一の標識原子または複数の異なる標識原子を用いて標識されたサンプルから取得可能であり、ここで、標識原子は、ICP−MSによってレーザ・アブレーションのなされたプルームにおいて検出される。複数の異なる原子を参照することは、複数の原子核種がサンプルの標識に用いられることを意味する。これらの原子核種は、ICP−MSを用いて区別することができ(たとえば、それらは異なるm/Qの比率を有する)、結果的に、1つのプルーム内に2つの異なる標識原子が存在することにより、2つの異なるMS信号が生じる。
本発明は、生体サンプルのイメージングの方法を提供する。いくつかの場合には、このサンプルは組織サンプルである。組織サンプルは、複数の相互作用を行う細胞を含んでおり、この方法は、組織サンプルにおけるこれらの細胞の画像を提供するために、これら複数の細胞を、レーザ・アブレーションに供する。一般的に、本発明を、現在はIHC技術によって研究されている組織サンプルを分析するのに用いることができるが、ただし、LA−ICP−MSによる検出に適した標識の使用を伴う。
レーザ・アブレーション・セルの製作
セル・トップ10を、アクリル・ガラス(ポリ(メチルメタクリレート)、PMMA)の直方体から製造した。内径が3mmである長手方向の孔を長軸に沿って直方体に穿孔して、フロー・チャネル11を形成した。セル・トップ10の上側壁部17に、横断方向であり僅かに楕円形の孔を、長さL=4.5mmおよび幅1.5mmを有するように形成し、UV透過性のシリカ・ウィンドウ16によって閉鎖した。上側の孔と同様の寸法の横向き開口14を、セル・トップ10の下側壁部15に形成した。次に、下側壁部15を機械加工し、フロー・チャネル11の領域における該下側壁部の最小厚wを約50マイクロメートルまで低減した。フロー・チャネル11の全長は、約50mmであった。
均一なレーザ・ビーム・プロファイルを備えたArFエキシマ・レーザ・システム(ドイツのゲッチンゲン所在、ラムダ・フィジーク(Lambda Physik)社による)を、アジレント7500cs ICP−四重極−MS装置(ドイツのヴァルトブロン所在のアジレント(Agilent)社によるICP−Q−MS)に連結した。レーザのフルエンスは、17.3J/cm2であった。信頼性レベルを向上させるために、すべてのデータ点は、(特にそうではないとの記載がない限り)3×3のシングルショットマトリックススキャンから導かれ、レーザ・スポット・サイズは10μmであり、隣接するショットの間の間隔は15μmである。ICPトーチへの移動管を、混合ガス出口13に接続された内径が3mmであるPTFE(ポリテトラフルオロエチレン)管で構成した。同様の管を、Ar入口12への供給管としても用いた。Arキャリア・ガス流を、1.1L/分に調整した。長さが50cmである移動管を、直径を変更することなく、直接的にICPトーチに接続した。サンプル・チャンバを通過して提供されるHeシース・ガス流を、0.6L/分に調整した。チューブ・セルのパフォーマンス測定は、10msのドエル時間で、実行した。セルのウォッシュアウトを描写するために、NIST610の基準ガラス上の1Hz、10Hzおよび30Hzのレーザ・アブレーションの間に単一の同位体である27Alの取得を実行した。ICPを1470Wで動作させ、四重極MSを、ピーク・ホッピング・モードにおいて1ピーク当たり1点に設定した。
イメージング能力を示すためのサンプルを、レーザ誘起前方転写法によって作製した。ドナー基板の作製のためには、高品質の溶融シリカガラスを、犠牲動的放出層(DRL)としてのUV吸収性のトリアゼンポリマー(TP)層で被覆し、その上に別の薄膜物質を堆積させた。転写手順においては、308nmのXeClエキシマ・レーザ・ビームを、「ETH」(または「PSI」)という中空マスク上で画像化し、ドナー基板の背面側にインパクトを与える前に、1/4に縮小した。TP−DRLをアブレートし、生成された衝撃波が、PEDOT:PSS(ポリ(スチレンスルホナート)とブレンドしたポリ(3,4−エチレンジオキシチオフェン))でコーティングしたガラス製の受取側基板に向かって該薄膜を推進させた。サンプルは、60nmの厚さの金の「ETH」という薄い層が底部に、80nmの銀の「PSF」が上部に配置されているように(Au/Ag)作製した。走査電子顕微鏡(SEM)によって2つのロゴの堆積を制御するために、パターン堆積の後に、5nmの白金の薄膜を受取側基板の上に均一にコーティングした。
ホルマリン固定パラフィン包理した、ヒト上皮成長因子受容体2(HER2)に富む乳癌組織を、6μmの薄片に切り分けた。このサンプルは、CClmエピトープ回復条件の下で、ディスカバリXTプラットフォーム(ヴェンタナ(Ventana)・メディカル・システムズ社)の上で処理した。その後で、サンプルを、リン酸緩衝食塩水(PBS)/1%のウシ血清アルブミン(BSA)/0.1%のTriton Xを用いて30分間ブロッキングし、50分間200μLの165Ho標識抗HER2と共に5μg/mLで培養した。サンプルは、PBS/0.1%Triton Xで3回洗浄し、室温で乾燥させた。165Hoとの抗体のコンジュゲーションのために、市販のMAXPAR抗体標識キット(DVSサイエンシズ社)を用いた。
チューブ・セルの特徴付けに関して上述したものと同様の構成を、この実験のためにも用いた。852×408μm2の面積を、10Hzの反復率のライン走査によってカバーした。連続的なレーザ・ショットの間の距離と、ライン走査の間の横方向の距離とは、4μmのレーザ・クレータに基づくと、共に4μmであった。実際のレーザ・ビームのサイズは、1〜2μmであった。しかし、より大きな影響を受けた面積が観測され、これは、拡大された熱貫通体積(金属製の薄膜における高い熱拡散と、nsの光−物質の相互作用時間)によって説明され得る。3つの同位体107Ag、195Ptおよび197Auが、ピーク・ホッピング・モードで、各同位体について600μsのドエル時間で、測定された。しかし、各同位体について、装置の四重極設定時間が数ミリ秒であることにより、同位体の全体の組の読み取りが、10ms未満では完了できなかった。明らかに、そのような大きなオーバヘッドの一部(低いデューティ・サイクル)が、高速で高解像度のイメージング実験の間に取得可能な信号の品質を制約する。データ分析は、各シングルショット信号の積分(台形積分方式)に基づいていた。
組織のイメージングは、約1μmの空間解像度でArFエキシマ・レーザに結合されたElement2(サーモ・フィッシャー・サイエンティフィック(Thermo Fisher Scientific)社による)ICPMS上で実行した。動作条件は、高速の過渡信号の最大感度に対して最適化していた。したがって、165Hoだけが記録された。画像分析のために、サンプルをラインごとに、20Hzのレーザ周波数、1×1μm2の画像ピクセル・サイズで走査した。MSのドエル時間は、適用されたレーザ・アブレーション速度に従って、50msに設定した。
チューブ・セルの最適化
チューブ・セル底部とサンプル表面との間のギャップへの分散の依存が、図6(a)に示されている。プロットされたピーク幅は、FW0.01Mにおいて収集された全カウントに正規化した。約350μmのギャップ幅において最小ピーク幅が観察された。この最適化されたギャップ距離を用いて、ArおよびHeガスの流量最適化を実行した。対応する結果は、正規化されたピーク幅に基づいて、図6(b)および図6(c)に示されている。3つの最適化すべてが、正規化されたピーク幅に対して、約10−3ms/カウントという明らかな最小値を生じている。以下の節において報告されるすべての測定は、サンプル・ギャップ及びガス流量に対して最適化された値を用いて実行したものである。異なる設定に応じて、そのような最適値は、変動し得る。
チューブ・セルを約1Hzのレーザ周波数を用いて特徴付けた。典型的な過渡信号(対数スケールで示されている)が、図7(a)にまとめられている。主要元素の単一のウォッシュアウト信号は、FW0.01Mの場合には、約30ms継続する。過渡ピークは、依然として僅かに非対称的な形状を有しており、エアロゾルの遅延したウォッシュアウトが原因で僅かにテールを生じている。ピーク最大値の後では、信号が20msの間に2桁より多く低下したが、これは、積分された信号全体の99.98%より多くを表している。全信号の残存部分(積分された信号面積の0.02%)は、40〜50msの後でバックグラウンドに至るピークのテールにおいて見いだされた。第2の信号減衰の勾配は、高速ウォッシュアウトの場合とは異なり、異なるプロセスを示しており、これは、表面からの再堆積された物質の取り込みに関係することが疑われる。これは、チューブ・セルの底部開口の中へのHeシース・ガスの流れに起因する可能性が高く、このシース・ガスの流れは、レーザ・プルーム注入と平行であり、レーザ・プルームの注入は、クレータの周囲の領域を最も効率的に洗い流す。シングルショットを1秒のブランクだけ間隔があいていることが、さらなるサンプルの除去が生じないことを示す。
チューブ・セルのパフォーマンスのさらなる特徴付けが、図8に示されている。ピーク面積から計算されたピーク幅および感度が、低いm/Q(7Li)から高いm/Q(238U)まで、様々な同位体について示されている。図8(a)から見られるように、すべての同位体測定の平均ピーク幅は、30〜35msという狭い範囲内に含まれる。報告された信号の継続時間は、FW0.01Mに基づいて計算された。m/Qの範囲にわたる標準偏差は、アブレートされた質量、エイリアス効果、およびガス流の動力学における差異に起因するゆらぎの結果である可能性が非常に高い。図8(b)は、さらに、ピーク面積に対して正規化された感度を示しており、これは、単一のショット・アブレーション・モードで10μmのクレータを用いて決定された。シングルショット・モードにおいて一般的に用いられているアブレーション・セルの設定と比較すると、ピーク面積の感度は、10倍改善された。これは、改善されたサンプル輸送効率や改善されたイオン化とは関係なく、純粋に、アブレーション部位からICPへサンプル密度が保存されていることに基づく。
「硬質」サンプルを、様々なイメージング技術によって研究した。結果は、図9に図解されている。まず、パターンの特徴的な詳細を光学顕微鏡(図9(a))と走査電子顕微鏡(SEM、図9(b))とによって画像化した。これらの画像は、高感度且つ高空間解像度のLA−ICPMSの品質を197Au(図9(c))および107Ag(図9(d))について評価するのに用いた。光学およびSEMの画像は、均一性、形状および幾何学的要素に関して、薄膜パターンは完全ではなかったことを示している。しかし、サンプルは、LA−ICPMSによって分析されるのに非常に適していると考えられた。LA−ICPMSは、明白なパターン境界を備えた高度に一貫性を有する画像を生成したのである。薄膜から背景(または裏側)への迅速な信号変化は、約1μmの高い空間解像度のためのインジケータであると考えられた。一方の実験室から他方の実験室へのサンプル移動の間に、「T」の左側のアームに、スクラッチが導入され、このスクラッチさえもが、図9(c)のLA−ICPMSによって画像化されており、対照写真として撮られた図9(a)における光学顕微鏡の画像と整合している。
標準的な四重極質量分析計の深刻な制約は、その連続的なm/Q分析方式である。低分散のチューブ・セルの結果である短い信号パルス継続時間は、LA−ICPに擬似同時的または同時的な質量分析計が結合されていない限り、複数の同位体の記録を制限する。そのような進化したMSの例には、マタウフ・ヘルツォーグMS(MH−MS)と飛行時間MS(TOF−MS)とが含まれる。MH−MS装置の多要素イメージング能力を例証するために、四重極ICPMSについて上述したのと同じLA−ICPシステムを連結した。このシステムを用いて取得された画像は、四重極MSの場合と同様の品質および解像度を有していた。LA−ICP−TOF−MSという連結は、そのような迅速な化学イメージングの用途に同様に適しているということが、ここで言及されるべきである。
本明細書で開示する元素イメージングLA−ICPMSシステムの多くの可能性がある応用例の中で、生体組織の薄い切片におけるバイオマーカの分布を調べることにより、その潜在性を証明することを決定した。当該分析は、第1に、最小の生体単位である細胞の内部におけるバイオマーカの形態を解像して、当該バイオマーカの位置を特定するために、低いμmの解像度を要求する。この情報は、生物学的プロセスの研究において重要であるし、包括的な診断目的のために重要である。第2に、当該分析は、本明細書に開示するアブレーション・セルを用いて実現可能なものとして、ピクセル当たりの測定時間が短いことを要求し、生物学的および生体医学的分析においては統計的目的のため典型的に多数のサンプルと大きな組織面積(500×500μm2)を分析することが必要である。したがって、乳癌の組織切片を分析して、図6に図解されている個々の細胞のヒト上皮成長因子受容体2(HER2)の状態を調べた。この画像は、細胞膜上で高度に発現するHER2のタンパク質を示した。HER2は、最初の乳癌診断の後の、再発のない生存時間、転移までの時間、および全体的な生存時間の主要な決定要素である。この分析では、約1μmの空間解像度が達成された。このような高い空間解像度と化学物質感度とにより、乳癌組織における極めて正確なHER2判定が可能になった。乳癌分析のための重要なバイオマーカの細胞下分解能は、病理学者たちを、彼らの様々な治療選択肢に導くことに適し得る。上で本発明はほんの一例として説明されており、本発明の範囲および精神に留まりながら改変を行うことが可能であることが。理解されるであろう。
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Claims (14)
- サンプルのレーザ・アブレーション用のアブレーション・セル(1)を作動させる方法であって、
前記アブレーション・セル(1)は、
キャリア・ガス(G1)をフロー・チャネル(11)に供給するための入口(12)と、出口(13)とを有するフロー・チャネル(11)と、
該フロー・チャネル(11)の第1の壁部(15)における横向き開口(14)と、
該フロー・チャネルの第2の壁部(17)に配置され、該横向き開口(14)と対向する横向きウィンドウ(16)と、
該横向き開口(14)に隣接するサンプル・チャンバ(21)であって、レーザ・ビーム(41)が該横向きウィンドウ(16)と該横向き開口(14)とを通過して該サンプル・チャンバ(21)に入りサンプル(23)の表面(24)に衝突することが可能である様式で該サンプル(23)を受け取るように構成されており、シース・ガス(G2)を該サンプル・チャンバに供給するための入口(22)を有するサンプル・チャンバ(21)と、を備え、
前記方法は、
サンプル(23)を、該サンプルの表面(24)が前記横向き開口(14)を向くように、前記サンプル・チャンバ(21)に配置するステップと、
前記フロー・チャネル(11)の前記入口(12)に、キャリア・ガス(G1)を供給するステップと、
前記サンプル・チャンバ(21)の前記入口(22)に、シース・ガス(G2)を供給するステップと、
前記横向きウィンドウ(16)と前記横向き開口(14)とを通過させて、該表面(24)の上に、パルス・レーザ・ビーム(41)を照射することによって、該表面(24)から物質をアブレートするステップと、
前記表面(24)上で前記レーザ・ビーム(41)を走査するステップと、
前記表面(24)の化学的イメージを取得するために、得られたエアロゾルを分析するステップと、
を、必ずしも上記順序とは限らずに含み、
前記サンプル(23)が、生体サンプルである、方法。 - 前記サンプルが、人間もしくは動物の組織の組織サンプル、固定化細胞の単分子層、またはバイオフィルムである、請求項1に記載の方法。
- 前記パルス・レーザ・ビーム(41)の各パルスが、擬似瞬間的なレーザ生成エアロゾルの質量分布(25)を生じさせ、前記サンプル(23)が、前記フロー・チャネル(11)から、前記レーザ生成質量分布(25)が前記フロー・チャネル(11)の内部において前記横向き開口(14)と前記横向きウィンドウ(16)との間にその中心を有するような距離に配置される、請求項1または2に記載の方法。
- 前記サンプル(23)が、前記サンプル(23)の前記表面(24)が前記フロー・チャネル(11)の前記中心から0.5ミリメートル〜4.5ミリメートルの範囲の距離を有するように配置される、請求項1から3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記キャリア・ガス(G1)が第1の粘度を有し、前記シース・ガス(G2)が前記第1の粘度よりも低い第2の粘度を有する、請求項1から4のいずれか一項に記載の方法。
- 前記一次的なキャリア・ガス(G1)がアルゴンであり、前記二次的なキャリア・ガス(G2)が少なくとも50%のヘリウムを含むガスである、請求項1から5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記一次的なガス(G1)は、前記フロー・チャネル(11)の前記入口(12)に、第1の体積流量で供給され、
前記二次的なガス(G2)は、前記サンプル・チャンバ(21)の前記入口(22)に、第2の体積流量で供給され、
前記第2の体積流量は前記第1の体積流量の0.3〜1.0倍である、
請求項1から6のいずれか一項に記載の方法。 - サンプル物質のレーザ・アブレーション用のアブレーション・セル(1)であって、
キャリア・ガス(G1)をフロー・チャネル(11)に供給するための入口(12)と、出口(13)とを有するフロー・チャネル(11)と、
該フロー・チャネル(11)の第1の壁部(15)における横向き開口(14)と、
該フロー・チャネルの第2の壁部(17)に配置され、該横向き開口(14)と対向する横向きウィンドウ(16)と、
該横向き開口(14)に隣接するサンプル・チャンバ(21)であって、レーザ・ビーム(41)が該横向きウィンドウ(16)と該横向き開口(14)とを通過して該サンプル・チャンバ(21)に入りサンプル(23)の表面(24)に衝突することが可能である様式で該サンプル(23)を受け取るように構成されており、シース・ガス(G2)を該サンプル・チャンバに供給するための入口(22)を有し、該横向き開口の断面積は約20mm 2 以下である、サンプル・チャンバ(21)と、
を備えるアブレーション・セル(1)。 - キャリア・ガス(G1)をフロー・チャネル(11)に供給するための入口(12)と、出口(13)とを有するフロー・チャネル(11)と、
該フロー・チャネル(11)の第1の壁部(15)における横向き開口(14)と、
該フロー・チャネルの第2の壁部(17)に配置され、該横向き開口(14)と対向する横向きウィンドウ(16)と、
該横向き開口(14)に隣接するサンプル・チャンバ(21)であって、レーザ・ビーム(41)が該横向きウィンドウ(16)と該横向き開口(14)とを通過して該サンプル・チャンバ(21)に入りサンプル(23)の表面(24)に衝突することが可能である様式で該サンプル(23)を受け取るように構成されており、シース・ガス(G2)を該サンプル・チャンバに供給するための入口(22)を有するサンプル・チャンバ(21)と、
を備えるアブレーション・セル(1)と、
ICPトーチ(6)と、
該アブレーション・セルを該ICPトーチ(6)に接続する管(61)であって、該アブレーション・セル(1)の前記フロー・チャネル(11)の断面積とほぼ等しい断面積、または、該アブレーション・セル(1)の前記フロー・チャネル(11)の該断面積に対し、断面のどのような変動も該フロー・チャネルと該管とを通過する層流を著しく妨げることがない程度にのみ僅かに変化する断面積を有する管(61)と、
を備えるICPイオン源。 - 前記フロー・チャネルが、本質的に一定である断面積、または、断面のどのような変動も前記フロー・チャネルを通過する層流を有意に妨げることがない程度にのみ僅かに変動する断面積を有する、請求項1から7のいずれか一項に記載の方法、請求項8に記載のアブレーション・セル、または請求項9に記載のICPイオン源。
- 前記フロー・チャネルの前記入口(12)と前記出口(13)とが、160度から200度までの角度を含むように方向付けられている、請求項1から7または10に記載の方法、請求項8または10に記載のアブレーション・セル、または請求項9または10に記載のICPイオン源。
- 前記フロー・チャネル(11)と前記サンプル・チャンバ(21)とは分離壁によって分離されており、該分離壁が、該フロー・チャネル(11)の前記第1の壁部(15)を形成し、500マイクロメートル未満、好ましくは200マイクロメートル未満の最小厚(w)を有する、請求項1から7、10、または11のいずれか一項に記載の方法、請求項8、10、または11に記載のアブレーション・セル、または請求項9から11のいずれか一項に記載のICPイオン源。
- 前記フロー・チャネル(11)を収容するセル・トップ(10)と、前記サンプル・チャンバ(21)を形成するセル・ボトム(20)とを備えており、該セル・ボトム(20)が、前記サンプル(23)を交換するために、該セル・トップ(10)から取り外し可能である、請求項1から7のいずれか一項に記載の方法、請求項8、または10から12のいずれか一項に記載のアブレーション・セル、または請求項9から12のいずれか一項に記載のICPイオン源。
- 請求項8または10から13のいずれか一項に記載のアブレーション・セル(1)と、
レーザ・ビーム(41)を、前記横向きウィンドウ(16)と前記横向き開口(14)とを通過させて、前記サンプル(23)に放射するレーザ(4)と、
該サンプル(23)と該レーザ・ビーム(41)との間の相対位置を変更するための位置決めデバイス(5)と、
を備えるアブレーション装置。
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