JP6303714B2 - Dna損傷抑制剤及びその製造方法 - Google Patents
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Description
[2] 前記[1]のDNA損傷抑制剤は、8−ヒドロキシ−2’−デオキシグアノシン(8−OHdG)の産生抑制作用を有することが好ましい。
[3] 前記[1]又は[2]のDNA損傷抑制剤においては、前記オリゴ糖類が、マンノース、グルコース、ガラクトース及びフルクトースからなる群より選択される1種以上の単糖類が2〜10分子結合したものであることが好ましい。
[4] 前記[1]〜[3]のいずれかのDNA損傷抑制剤においては、前記オリゴ糖類中のマンノース残基の割合が、70質量%以上であることが好ましい。
[5] 前記[1]又は[2]のDNA損傷抑制剤においては、前記オリゴ糖類が、マンノースが2〜10分子結合したオリゴ糖類であることが好ましい。
[6] 前記[1]又は[2]のDNA損傷抑制剤においては、前記オリゴ糖類が、マンノースが2〜10分子結合したβ−1,4−マンノオリゴ糖類であることが好ましい。
[7] 前記[1]〜[6]のいずれかのDNA損傷抑制剤においては、前記オリゴ糖類の含量割合が、DNA損傷抑制剤の総固形分に対して60質量%以上であることが好ましい。
[8] 本発明に係るDNA損傷抑制剤の製造方法は、マンナンを加水分解処理し、得られたオリゴ糖類を有効成分とするDNA損傷抑制剤を製造し、前記オリゴ糖類が、マンノースを主体とした単糖類が2〜10分子結合したオリゴ糖、又は、前記オリゴ糖と単糖類とからなり、かつ、各構成単糖がβ−1,4結合したオリゴ糖の含有割合が50質量%以上である。
[9] 前記[8]のDNA損傷抑制剤の製造方法においては、コーヒー豆及び/又はコーヒー抽出残渣からマンナンを得、得られたマンナンを加水分解処理することが好ましい。
また、本発明に係るDNA損傷抑制剤は、オリゴ糖類を有効成分とするため、安全に摂取可能であり、医薬、機能性飲食品等としても好適である。
微生物発酵により分解する方法としては、例えば水性媒体に懸濁させたコーヒー抽出残渣にセルラーゼ、ヘミセルラーゼなどを産出する微生物を植菌して培養させればよい。使用する微生物は、細菌類や担子菌類などコーヒー抽出残渣中のマンナンを分解する酵素を産出するものであれば良く、使用する微生物によって培養条件などは適宜選択すればよい。
マンノオリゴ糖を経口摂取することによる、尿中の8−OHdG量に対する影響を調べた。
粉砕して粒径を約1mmにしたコーヒー抽出残渣を、総固形分濃度が約14質量%の水と粉砕物からなるスラリーに調製した後、4mの熱栓流反応器内において熱処理した。当該熱処理においては、当該スラリーを、滞留時間8分間に対応する速度で高圧蒸気とともに栓流反応器にポンプ輸送し、6.35mmφオリフィスを用いて約210℃に維持した。その後、当該スラリーを大気圧下に噴出することによって、反応を急止した。得られたスラリーを濾過して、不溶性固形分から可溶性固形分を含む液を分離した。この可溶性固形分含有液を、活性炭で脱色した後、濃縮、乾燥することによって、マンノースを主体とする単糖類が1〜10分子結合したオリゴ糖類を含有する組成物を得た。
得られたマンノオリゴ糖をマウスに経口投与し、尿中の8−OHdG量に対する影響を調べた。
実験にはICR系雄マウスを用いた。検疫及び馴化期間をかねて14日間の予備飼育を行った後、体重の推移及び一般状態に異常が認められない個体16匹を2群(1群8匹)に分けて実験に供した。動物は温度、湿度、換気回数、及び照明時間をコントロールされた環境下飼育された。実験飼料は、牛脂を含んだ高脂肪飼料をベース(対照飼料)として、前記で調製したマンノオリゴ糖を5質量%となるように配合した飼料を試験飼料とした。一方の群のマウスには試験飼料を、残る一方の群のマウスには対照飼料を、28日間にわたり自由摂取させた。投与期間終了24時間前より、蓄積尿を採取して−80℃下で保存した。
採取された尿は、DNA損傷のマーカーである8−OHdG、及び尿中に常時排泄されているクレアチニン含量の測定に供した。8−OHdG含量は、[8−OHdG測定値(ng/mL)]/[クレアチニン測定値(mg/dL)]で計算した。
各群の尿中の8−OHdGの測定結果(平均値)を図1に示す。マンノオリゴ糖を配合した試験飼料を投与した群は、対照飼料を投与した群と比べて、尿中の8−OHdG量が少なくなることが確認された。つまり、マンノオリゴ糖を経口摂取することにより、生体内におけるDNA損傷が抑制されることが明らかである。
実施例1で調製されたマンノオリゴ糖を含有するコーヒー飲料を摂取することによる、尿中の8−OHdG量に対する影響を調べた。
表1に示す組成で、コーヒー抽出液、マンノオリゴ糖(実施例1で調製したもの)、重曹、乳化剤、高甘味度甘味料及び水を混合したものを、試験飲料とした。試験飲料は、275gボトル缶に充填した後、常法に従い殺菌した。
ヒト試験は、BMI25〜30の成人男女6名に対して実施した。被験者は、12週間にわたって試験飲料を1日1本摂取した。採尿は、試験飲料摂取前及び摂取後で実施した。採取された尿は、DNA損傷のマーカーである8−OHdG、脂質の過酸化マーカーであるヘキサノイルリジン(HEL)、及び尿中に常時排泄されているクレアチニンの各含量の測定に供した。8−OHdG量及びHEL量は、それぞれ、[尿中8−OHdG量測定値(ng/mL)]/[尿中クレアチニン量測定値(mg/dL)]、及び[尿中HEL量測定値(pmol/mL)]/[尿中クレアチニン量測定値(mg/dL)]で算出した。
Claims (9)
- オリゴ糖類を有効成分とし、
前記オリゴ糖類は、マンノースを主体とした単糖類が2〜10分子結合したオリゴ糖、又は、前記オリゴ糖と単糖類とからなり、
前記オリゴ糖類中の各構成単糖がβ−1,4結合したオリゴ糖の含有割合が50質量%以上であることを特徴とする、DNA損傷抑制剤。 - 8−ヒドロキシ−2’−デオキシグアノシン(8−OHdG)の産生抑制作用を有する、請求項1に記載のDNA損傷抑制剤。
- 前記オリゴ糖類が、マンノース、グルコース、ガラクトース及びフルクトースからなる群より選択される1種以上の単糖類が2〜10分子結合したものである、請求項1又は2に記載のDNA損傷抑制剤。
- 前記オリゴ糖類中のマンノース残基の割合が、70質量%以上である、請求項1〜3のいずれか一項に記載のDNA損傷抑制剤。
- 前記オリゴ糖類が、マンノースが2〜10分子結合したオリゴ糖類である、請求項1又は2に記載のDNA損傷抑制剤。
- 前記オリゴ糖類が、マンノースが2〜10分子結合したβ−1,4−マンノオリゴ糖類である、請求項1又は2に記載のDNA損傷抑制剤。
- 前記オリゴ糖類の含量割合が、DNA損傷抑制剤の総固形分に対して60質量%以上である、請求項1〜6のいずれか一項に記載のDNA損傷抑制剤。
- マンナンを加水分解処理し、得られたオリゴ糖類を有効成分とするDNA損傷抑制剤を製造し、
前記オリゴ糖類が、マンノースを主体とした単糖類が2〜10分子結合したオリゴ糖、又は、前記オリゴ糖と単糖類とからなり、かつ、各構成単糖がβ−1,4結合したオリゴ糖の含有割合が50質量%以上である、DNA損傷抑制剤の製造方法。 - コーヒー豆及び/又はコーヒー抽出残渣からマンナンを得、得られたマンナンを加水分解処理する、請求項8に記載のDNA損傷抑制剤の製造方法。
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