JP6240919B2 - 加齢または筋萎縮の診断用バイオマーカー - Google Patents
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Description
本発明は、これらの知見に基づくものである。
[1]被験者由来の試料中の分泌型MuSKタンパク質又はmRNAを測定する、加齢または筋萎縮の状態を把握する方法、
[2]前記の分泌型MuSKタンパク質が、遊離の状態で存在するMuSKタンパク質である、[1]の方法、
[3]遊離の状態で存在するMuSKタンパク質が、非受容体型MuSKタンパク質、及び/又は、切断型MuSKタンパク質である、[2]の方法、
[4]分泌型MuSKのmRNAを測定する、[1]の方法、
[5]加齢または筋萎縮の状態の把握が、加齢の程度の判定、筋萎縮の早期診断、又は重度の筋萎縮の検出である、[1]〜[4]のいずれかの方法、
[6]分泌型MuSKタンパク質又はmRNAからなる、加齢または筋萎縮の状態を把握するためのバイオマーカー、
[7]前記の分泌型MuSKタンパク質が、遊離の状態で存在するMuSKタンパク質である、[6]のバイオマーカー、
[8]遊離の状態で存在するMuSKタンパク質が、非受容体型MuSKタンパク質、及び/又は、切断型MuSKタンパク質である、[7]のバイオマーカー、
[9]分泌型MuSKのmRNAからなる、[6]のバイオマーカー、
[10]加齢または筋萎縮の状態の把握が、加齢の程度の判定、筋萎縮の早期診断、又は重度の筋萎縮の検出である、[6]〜[9]のいずれかのバイオマーカー、
[11]治療患者由来の試料中の分泌型MuSKタンパク質又はmRNAを測定する、加齢または筋萎縮に対する治療または予防効果の有効性を判定する方法、
[12]加齢または筋萎縮モデル動物、又はその細胞株に試験物質を投与する工程、
前記モデル動物由来の試料中、又は前記細胞株の培養上清中の遊離の状態で存在するMuSKタンパク質又はmRNAを測定する工程、
を含む、加齢または筋萎縮の治療または予防剤のスクリーニング方法、
[13]加齢または筋萎縮モデル動物、又はその細胞株に試験物質を投与する工程、
前記細胞株におけるアセチルコリン受容体(AChR)の凝集を分析する工程、
を含む、加齢または筋萎縮の治療または予防剤のスクリーニング方法、
[14]加齢または筋萎縮モデル動物、又はその細胞株を含む、加齢または筋萎縮の治療または予防剤のスクリーニングキット、
[15]遊離のMuSKタンパク質量、もしくは分泌型MuSKのmRNA発現量を低下させる物質、又はアセチルコリン受容体(AChR)の凝集を増加させる物質を有効成分として含む、加齢または筋萎縮の治療または予防剤、
[16]前記有効成分が、遊離のMuSKタンパク質量、もしくは分泌型MuSKのmRNA発現量を低下させ、且つ、アセチルコリン受容体(AChR)の凝集を増加させる物質である、[15]の治療または予防剤、
[17]前記有効成分が、受容体型MuSKタンパク質の切断を阻害する物質、又は受容体型MuSKタンパク質に対するプロテアーゼの活性化もしくはプロテアーゼの発現量増加を阻害する物質である、[15]又は[16]の加齢または筋萎縮の治療または予防剤、
[18]前記有効成分がADAM阻害剤である、[17]の治療または予防剤、
[19]以下の(a)〜(c)から選択されるタンパク質:
(a)配列番号2又は配列番号12で表されるアミノ酸配列を含むタンパク質、
(b)配列番号2又は配列番号12で表されるアミノ酸配列において1又は数個のアミノ酸が欠失、置換、もしくは付加されたアミノ酸配列を含み、且つ、分泌型MuSKタンパク質活性を有するタンパク質、及び
(c)配列番号2又は配列番号12で表されるアミノ酸配列との同一性が80%以上であるアミノ酸配列を含み、且つ、分泌型MuSKタンパク質活性を有するタンパク質、
[20]前記[19]のタンパク質をコードするポリヌクレオチド、
[21]前記[20]のポリヌクレオチドを含むベクター、
[22]前記[21]のベクターで形質転換された細胞、
[23]前記[22]の細胞を含む、加齢または筋萎縮の治療または予防剤のスクリーニングキット、
に関する。
[1a]分泌型MuSKタンパク質に対する抗体、及び/又は、分泌型MuSKのmRNAを分析可能なプローブ及び/又はプライマーを含む、加齢または筋萎縮の状態を把握するためのキット、
[2a]前記の分泌型MuSKタンパク質が、遊離の状態で存在するMuSKタンパク質である、[1a]のキット、
[3a]遊離の状態で存在するMuSKタンパク質が、非受容体型MuSKタンパク質、及び/又は、切断型MuSKタンパク質である、[2a]のキット、
[4a]分泌型MuSKのmRNAを分析可能なプローブ及び/又はプライマーを含む、[1a]のキット、
[5a]加齢または筋萎縮の状態の把握が、加齢の程度の判定、筋萎縮の早期診断、又は重度の筋萎縮の検出である、[1a]〜[4a]のいずれかのキット、
[11a]分泌型MuSKタンパク質に対する抗体、及び/又は、分泌型MuSKのmRNAを分析可能なプローブ及び/又はプライマーを含む、加齢または筋萎縮に対する治療または予防効果の有効性を判定するためのキット、
に関する。
[15a]加齢または筋萎縮の治療または予防の必要がある対象に、その有効量で、遊離のMuSKタンパク質量、もしくは分泌型MuSKのmRNA発現量を低下させる物質、又はアセチルコリン受容体(AChR)の凝集を増加させる物質を投与することを含む、加齢または筋萎縮の治療または予防方法、
[15b]遊離のMuSKタンパク質量、もしくは分泌型MuSKのmRNA発現量を低下させる物質、又はアセチルコリン受容体(AChR)の凝集を増加させる物質の、加齢または筋萎縮の治療または予防剤の製造への使用、
[15c]加齢または筋萎縮の治療または予防用である、遊離のMuSKタンパク質量、もしくは分泌型MuSKのmRNA発現量を低下させる物質、又はアセチルコリン受容体(AChR)の凝集を増加させる物質、
に関する。
また、重度の筋萎縮とは、神経筋シナプスの機能を喪失しており、且つ、骨格筋の反応性が消失していることを意味する。
本発明のバイオマーカーによれば、加齢または筋萎縮の状態を把握する方法、加齢または筋萎縮に対する治療または予防効果(例えば、投薬療法、運動療法、栄養療法)の有効性を判定する方法、加齢または筋萎縮の治療または予防剤のスクリーニング方法を提供することができる。
本発明では、バイオマーカーとして、分泌型MuSK(muscle-specific kinase)タンパク質又はその遺伝子産物(mRNA)を使用する。MuSKタンパク質には、その機能がよく解析されている受容体型MuSKタンパク質と、生体内での機能が不明な分泌型MuSKタンパク質とが存在し、本発明では分泌型MuSKタンパク質、あるいは、血中等の体液中に遊離の状態で存在するMuSKタンパク質を使用する。
一方、広義の分泌型MuSKタンパク質は、例えば、細胞外ドメインの内、受容体型MuSKタンパク質と分泌型MuSKタンパク質とに共通する配列、例えば、配列番号2(ヒト)における第1〜451番、配列番号12(ヒト)における第1〜373番、配列番号4(マウス)における第1〜451番)を認識する抗体を用いることにより、分析することができる。
また、加齢または筋萎縮の予防または治療(例えば、投薬療法、運動療法、栄養療法)を行った後、分泌型MuSKタンパク質量、すなわち、遊離のMuSKタンパク質量、または分泌型MuSKのmRNA発現量が、前記予防または治療前と比較して低下した場合、その予防または治療効果は有効である(投薬の場合には、その薬が有効である)と判定することができる。
あるいは、筋萎縮等の進行が疑われる被験者に対して、その被験者の青年〜壮年期あるいは任意の年齢期の健常時(または筋萎縮等の早期段階)における測定値を予め取得しておき、その後定期的に、所望の間隔(例えば、2週間〜1年間の間隔)で経時的に測定を行い、健常時における測定値と比較することにより、前記判定を行うことができる。
例えば、健常者の平均値に対して、あるいは、被検者の健常時(または筋萎縮等の早期段階)の測定値に対して、判定時の被験者の測定値が、例えば、その1.2倍以上、ある態様ではその1.4倍以上、別の態様ではその1.5倍以上の場合に、高値であると判定することができる。
具体的には、分泌型MuSKタンパク質量、すなわち、遊離のMuSKタンパク質量、または分泌型MuSKのmRNA発現量が、健常者または健常時(または筋萎縮等の早期段階)と比較して、著しく低値であるか、あるいは、所望の間隔(例えば、2週間〜1年間の間隔)で経時的に測定しても全く上昇しない場合、重度の筋萎縮まで進行している、と判定することができる。
また、重度の筋萎縮である患者に対して筋萎縮の予防(進行防止)または治療を行った後、分泌型MuSKタンパク質量、すなわち、遊離のMuSKタンパク質量、または分泌型MuSKのmRNA発現量が、前記予防または治療前と比較して上昇した場合、その予防または治療効果は有効である(投薬の場合には、その薬が有効である)と判定することができる。
あるいは、ヒト血清中の分泌型MuSKタンパク質(すなわち、遊離のMuSKタンパク質)濃度として、例えば、1ng/mL以下、ある態様では0.5ng/mL以下、別の態様では0.1ng/mL以下、更に別の態様では0.05ng/mL以下の場合に、著しく低値であると判定することができる。
具体的には、分泌型MuSKタンパク質量、すなわち、遊離のMuSKタンパク質量、または分泌型MuSKのmRNA発現量が、健常者または健常時と比較して著しく低値である場合、筋萎縮性側索硬化症と判定することができ、健常者または健常時と比較して高値である場合、重症筋無力症(特には、抗アセチルコリン(AChR)抗体陽性重症筋無力症)と判定することができる。
なお、前記作用機序は現段階での本発明者の推測であり、本発明はこの作用機序に限定されるものではない。
本発明のバイオマーカーは、加齢または筋萎縮の治療または予防剤のスクリーニングに用いることができる。
本発明のスクリーニング方法は、
加齢または筋萎縮モデル動物、又はその細胞株に試験物質を投与する工程(投与工程)、
前記モデル動物由来の試料中、又は前記細胞株の培養上清中の分泌型MuSKタンパク質量、すなわち、遊離のMuSKタンパク質量、又は分泌型MuSKのmRNA発現量を測定する工程(測定工程)、
候補物質を選択する工程(選択工程)
を含み、所望により、
選択した候補物質について、別の評価系を用いて、加齢または筋萎縮の治療または予防効果を確認する工程(確認工程)
を更に含むことができる。
また、前記の分析工程は、確認工程における評価系として用いることもできる。
筋幹細胞(サテライト細胞)は筋芽細胞へと分化し、更に筋管細胞(筋線維細胞)へと分化させることができる。筋幹細胞及び筋芽細胞は増殖可能な細胞であり、筋管細胞(筋線維細胞)は多数の筋芽細胞が融合した多核細胞である。
より具体的には、モデルマウスとImmortmouseとを交配させて、産仔を取得し、得られた産仔から、筋幹細胞を分離する。分離した筋幹細胞を、33℃、10ng/mLのIFN−γ存在下で培養することにより、不死化の誘導を行う。得られた細胞を、37℃で培養することにより、温度感受性SV40 large T抗原を分解し、不死化筋幹細胞を取得することができる。
本発明のスクリーニング方法で選択された候補物質、すなわち、遊離のMuSKタンパク質量、又は分泌型MuSKのmRNA発現量を低下させる物質、あるいは、アセチルコリン受容体(AChR)の凝集を増加させる物質は、本発明の加齢または筋萎縮の治療または予防用医薬組成物(治療又は予防剤)の有効成分として用いることができる。
本発明の治療又は予防用医薬組成物の有効成分である、遊離のMuSKタンパク質量、又は分泌型MuSKのmRNA発現量を低下させる物質としては、本発明のスクリーニング方法で選択された物質であるか否かを問わず、例えば、受容体型MuSKタンパク質の切断を阻害する物質、分泌型MuSKのmRNA発現量を低下させる物質、受容体型MuSKタンパク質に対するプロテアーゼの活性化または発現量の増加を阻害する物質を挙げることができる。
本発明の治療または予防用医薬組成物の有効成分としては、遊離のMuSKタンパク質量、又は分泌型MuSKのmRNA発現量を低下させ、且つ、アセチルコリン受容体(AChR)の凝集を増加させる物質であることが好ましい。
ADAMの阻害剤としてはGM6001、TAPI−1{N−(R)−(2−(Hydroxyaminocarbonyl)methyl)−4−Methylpentanoyl−L−Nal−L−Alanine2−Aminoethyl amide(L−Nal:L−3−(2’−Naphthyl)alanine)}、TAPI−2{N−(R)−(2−(Hydroxyaminocarbonyl)methyl)−4−Methylpentanoyl−L−t−Butyl−Glycyl−L−Alanine2−Aminoethyl amide}などを挙げることができる。
これらの経口剤は、例えば、ゼラチン、アルギン酸ナトリウム、澱粉、コーンスターチ、白糖、乳糖、ぶどう糖、マンニット、カルボキシメチルセルロース、デキストリン、ポリビニルピロリドン、結晶セルロース、大豆レシチン、ショ糖、脂肪酸エステル、タルク、ステアリン酸マグネシウム、ポリエチレングリコール、ケイ酸マグネシウム、無水ケイ酸、又は合成ケイ酸アルミニウムなどの賦形剤、結合剤、崩壊剤、界面活性剤、滑沢剤、流動性促進剤、希釈剤、保存剤、着色剤、香料、矯味剤、安定化剤、保湿剤、防腐剤、又は酸化防止剤等を用いて、常法に従って製造することができる。
例えば、注射剤の調製においては、有効成分の他に、例えば、生理食塩水若しくはリンゲル液等の水溶性溶剤、植物油若しくは脂肪酸エステル等の非水溶性溶剤、ブドウ糖若しくは塩化ナトリウム等の等張化剤、溶解補助剤、安定化剤、防腐剤、懸濁化剤、又は乳化剤などを任意に用いることができる。
また、本発明の医薬組成物は、徐放性ポリマーなどを用いた徐放性製剤の手法を用いて投与してもよい。例えば、本発明の医薬組成物をエチレンビニル酢酸ポリマーのペレットに取り込ませて、このペレットを治療又は予防すべき組織中に外科的に移植することができる。
本発明の医薬組成物を用いる場合の投与量は、例えば、使用する有効成分の種類、病気の種類、患者の年齢、性別、体重、症状の程度、又は投与方法などに応じて適宜決定することができ、経口的に又は非経口的に投与することが可能である。
また、投与形態も医薬品に限定されるものではなく、種々の形態、例えば、機能性食品や健康食品(飲料を含む)、又は飼料として飲食物の形で与えることも可能である。
本発明のタンパク質である分泌型MuSKタンパク質には、
(a)配列番号2又は配列番号12で表されるアミノ酸配列を含むタンパク質(好ましくは、配列番号2又は配列番号12で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質)、
(b)配列番号2又は配列番号12で表されるアミノ酸配列において1又は数個のアミノ酸が欠失、置換、もしくは付加されたアミノ酸配列を含み、且つ、分泌型MuSKタンパク質活性を有するタンパク質(以下、機能的等価改変体と称する)、及び
(c)配列番号2又は配列番号12で表されるアミノ酸配列との同一性が80%以上であるアミノ酸配列を含み、且つ、分泌型MuSKタンパク質活性を有するタンパク質(以下、相同ポリペプチドと称する)
が含まれる。
本明細書において、分泌型MuSKタンパク質活性とは、逆行性シグナルとして神経筋シナプスの神経側(前膜)の形成および機能維持を行う活性を意味する。
Gap penalty = 10
Extend penalty = 0.5
Matrix = EBLOSUM62
マウスの培養筋芽細胞株C2C12のmRNA由来のcDNAライブラリーをlambda ZapIIベクター(Stratagene社)に入れて作成した。スクリーニングに使うヒトMuSK cDNA遺伝子のプローブは、ヒト筋肉由来の全RNA(Stratagene社)から、下記プライマー:
5’−GTTCTCCAGAAGGAACTTCGTCCTGC−3’(配列番号5)
5’−CCGTGCAGCGCAGTAAATGCCATCATC−3’(配列番号6)
を使ってRT−PCRで増幅した。
得られたヒトMuSK cDNA遺伝子プローブをアイソトープで標識して、先に作成したcDNAライブラリーからマウスMuSK cDNAを複数単離して遺伝子配列を解析した。単離したMuSK cDNAには、膜結合配列を含むエキソンとチロシンキナーゼをコードする細胞内領域のエキソンを含むマウス受容体型MuSK cDNAの他に、膜結合領域のあるエキソンの一つ前で、スプライシングすることなく翻訳枠がストップコドンで終わるMuSK cDNAクローン(マウス分泌型MuSK cDNA:配列番号3)を得た。
5’−GGATTAATCATGAGAGAGCT−3’(配列番号7)
5’−GTAAATTTCTCTTAACCTCC−3’(配列番号8)
を使ってRT−PCR法で増幅して、ヒト分泌型MuSK cDNA(配列番号1)をクローニングした。
クローニングしたマウス及びヒトの分泌型MuSK遺伝子を発現ベクターpCDNA3.1-myc-hisに挿入して、293T細胞にFugene6(ロシュ)を使って遺伝子導入した。導入後2日目の培養上清を8%のSDSアクリルアミドゲルに泳動したのち、PVDF膜に転写して、一次抗体に抗myc抗体を使い、西洋ワサビペルオキシダーゼ抗体で標識した二次抗体で検出した(ピアース社)。
ヒト分泌型MuSKタンパク質(配列番号2)は68kDaと66kDaの位置に、マウス分泌型MuSKタンパク質(配列番号4)は58kDaの位置に検出した。
6か月齢のC57BL/6マウスのひらめ筋、同月齢マウスの両側を伸展位でギプス固定して11日後のひらめ筋、同月齢マウスの座骨神経を切断して11日後のひらめ筋、29か月齢の高齢マウスのひらめ筋を、それぞれ採取してmRNAを抽出精製した。分泌型MuSKと受容体型MuSKのmRNAの比較定量をTaqman法(ABI社)を使いリアルタイムPCRで行った。
5’側配列:5’−TGCACAAGACTGCCATATTTAGGT−3’(配列番号9)
を使用し、
3’側配列:5’−CGTTCCTTGACTGGAAACAGTAA−3’(配列番号10)
のTaqmanプローブを使った(カスタムオーダー、ABI社)。
受容体型MuSKの細胞外ドメインは4番目と5番目の間のエキソンを挟むTaqmanプローブ(Mm00448006_m1,ABI社)および受容体型細胞内領域の13番目と14番目のエキソンを挟むTaqmanプライマー(Mm01346926_m1)を用いた。
測定対象マウスとして、8か月齢(コントロール)マウス、20か月齢、27か月齢、32か月齢の各加齢マウス(C57BL/6)、座骨神経を切断して11日後の6か月齢マウス(A/WySnJ)を用意し、各血清試料(10%血清)を以下の測定に使用した。
測定対象者として、2012年9月から2013年10月までに東京都健康長寿医療センター研究所と協力病院の倫理委員会の承認を得て、文書によるインフォームドコンセントを取得した後、筋萎縮性側索硬化症(ALS)患者8名(男性4名、女性4名、32才〜78才)と抗アセチルコリン(AChR)抗体陽性重症筋無力症(MG)患者3名(男性2名、女性1名、23〜79才)から採血を行った。
測定対象マウスとして、野生型マウス(C57BL/6)と、ALS発症モデルマウス(G93A−SOD1)とを用意し、4週齢、6週齢、8週齢、10週齢(以上、発症前)、14週齢(発症初期)、18週齢(発症末期)、死亡時の各血清試料(5%血清)を、実施例4に記載の手順に従って測定した。結果を図4、図5に示す。
野生型マウスでは、血清中の遊離のMuSKタンパク質量に変化は認められなかったが、ALS発症モデルマウスでは、発症前から血清中の遊離のMuSKタンパク質量の上昇が認められ、病気の進行に従って、更なる上昇が認められた。なお、前記モデルマウスは発症から死に至る経過が非常に早く、ヒトにおける発症末期(すなわち、重度の筋萎縮を示す状態)を迎える前に死亡することから、実施例5におけるヒトALS患者の結果と矛盾するものではないと考える。
測定対象マウスとして、野生型マウス(C57BL/6)とMG発症モデルマウス(EAMG)とを用意し、6〜8か月齢の各血清試料(5%血清)を、実施例4に記載の手順に従って測定した。結果を図6に示す。
MG発症モデルマウスでは、発症に伴い、血清中の遊離のMuSKタンパク質量の上昇が認められた。
18〜24週齢のALS発症モデルマウス(G93A−SOD1)から血清を採取し、その血清7.7mLを用いて硫安分画(80%飽和)を行い、上清6.5mLを取得した。遠心式フィルターユニット(アミコン(登録商標)ウルトラ、10KDaフィルター;メルクミリポア)を用いて1.2mLまで濃縮した後、実施例4で作成したマウスモノクローナル抗体(RM−24、MH−30)を用いて免疫沈降を行った。得られた沈殿(以下、免疫沈降物と称する)をSDS緩衝液15μLに溶解し、その全量(15μL)をウエスタンブロッティング(ウサギ抗マウスMuSKモノクローナル抗体No.2−6)で分析した。
比較のために、実施例4で使用した、マウス由来のリコンビナントMuSK細胞外ドメインの分泌タンパク質(リコンビナント マウスMuSKタンパク質、100ng)を同時にウエスタンブロッティングに使用した。
結果を図7に示す。図7において、レーン1は、マウス由来リコンビナントMuSK細胞外ドメインの分泌タンパク質の免疫沈降物(100ng)であり、レーン2は、ALS発症マウス血清の免疫沈降物であり、レーン3は、マウス由来リコンビナントMuSK細胞外ドメインの分泌タンパク質(100ng)である。
マウスの培養筋芽細胞株C2C12を10cmシャーレ8枚に播種し、10%ウシ胎児血清(FCS)含有DMEM培地にて3日間前培養した。培地を、分化培地(2.5%ウマ血清(HS)含有DMEM培地)に置き換え、筋管細胞への分化誘導の開始後1日目、2日目、3日目、5日目に新鮮な培地に置き換えることにより、各培養上清を回収した。
回収した培養上清300mLを硫安分画(80%飽和)にかけ、上清30mLを取得した。得られた上清を抗マウスMuSK抗体カラムにかけて精製し、最後に遠心式フィルターユニット(アミコン(登録商標)ウルトラ、10KDaフィルター;メルクミリポア)を用いて濃縮した。
マウスの培養筋芽細胞株C2C12をシャーレに播種し、10%FCS含有DMEM培地にて3日間前培養した後、培地を分化培地(2.5%HS含有DMEM培地)に置き換え、ADAM(a disintegrin and metalloproteinase)阻害剤GM6001(Calbiochem,#364206)を所定量添加した後、更に22時間培養した。培養後、実施例4に記載の手順に従って、培養上清中の遊離のMuSKタンパク質量を測定した。
DMSOで溶解したGM6001を分化培地(2.5%HS含有DMEM培地)で希釈調製し、24−wellプレートで3日間分化させたマウスC2C12筋管細胞に0.4ml/wellずつ添加して培養した。22時間後に培養上清を回収し、40nM Alexa488標識alpha−ブンガロトキシン含有分化培地で1時間培養してAChR凝集を染色した。
以上、本発明を特定の態様に沿って説明したが、当業者に自明の変形や改良は本発明の範囲に含まれる。
Claims (9)
- 加齢または筋萎縮の状態を把握するために、被験者由来の試料中の遊離の状態で存在するMuSKタンパク質、又は非受容体型MuSKのmRNAを測定する方法。
- 遊離の状態で存在するMuSKタンパク質が、非受容体型MuSKタンパク質、及び/又は、切断型MuSKタンパク質である、請求項1に記載の方法。
- 加齢または筋萎縮の状態の把握が、加齢の程度の判定、筋萎縮の早期診断、又は重度の筋萎縮の検出である、請求項1又は2に記載の方法。
- 遊離の状態で存在するMuSKタンパク質、又は非受容体型MuSKのmRNAからなる、加齢または筋萎縮の状態を把握するためのバイオマーカー。
- 遊離の状態で存在するMuSKタンパク質が、非受容体型MuSKタンパク質、及び/又は、切断型MuSKタンパク質である、請求項4に記載のバイオマーカー。
- 加齢または筋萎縮の状態の把握が、加齢の程度の判定、筋萎縮の早期診断、又は重度の筋萎縮の検出である、請求項4又は5に記載のバイオマーカー。
- 加齢または筋萎縮に対する治療または予防効果の有効性を判定するために、治療患者由来の試料中の遊離の状態で存在するMuSKタンパク質、又は非受容体型MuSKのmRNAを測定する方法。
- 加齢または筋萎縮モデル動物、又はその細胞株に試験物質を投与する工程、
前記モデル動物由来の試料中、又は前記細胞株の培養上清中の遊離の状態で存在するMuSKタンパク質、又は非受容体型MuSKのmRNAを測定する工程、
遊離のMuSKタンパク質量、又は非受容体型MuSKのmRNA発現量が低下した試験物質を、加齢または筋萎縮の治療または予防剤の候補物質として選択する工程
を含む、加齢または筋萎縮の治療または予防剤のスクリーニング方法。 - 前記選択工程が、ADAMに対する阻害剤を加齢または筋萎縮の治療または予防剤の候補物質として選択する工程である、請求項8に記載のスクリーニング方法。
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