JP6208582B2 - アントラサイクリン系化学療法剤を含有しているerbb2標的免疫リポソームによる治療における心臓毒性を抑制するための用量及び投与 - Google Patents
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Description
本出願は、2010年12月6日に出願された米国仮特許出願第61/420,225号、2010年12月7日に出願された同第61/420,688号、及び2011年3月4日に出願された同61/449,602号の優先権を主張する。前記各出願の内容はその全てが参照により本明細書に取り込まれている。
適用されない
適用されない
DOXIL(登録商標)(ドキソルビシンHClリポソーム注射)は典型的なリポソームアントラサイクリン系化学療法剤である。DOXILは通常、mg/m2で示され、ドキソルビシンHCL当量(dox equiv.、各用量中のドキソルビシンの全質量を意味する)として特徴付けられている用量で静脈内に投与される。各用量は通常、y週間毎にxmg/m2(dox equiv.)の用量を生ずるように、週単位で測られる間隔で投与される。最初のリポソームドキソルビシン用量は一般に、注入に関連する反応の危険性を最小化するために1mg/分の初期速度で投与される。注入に関連する副作用が観察されなかったら、注入速度を上昇させて1時間以上かけて薬剤の投与を完遂する。
DOXILは一般に、50mg/m2 dox equiv.の用量で卵巣癌患者に静脈内投与される。患者が疾患を進行させず、心臓毒性の兆候を示さず、そして治療に耐え続けている限り、患者は通常、4週間に1度投与される。臨床試験における応答時間の中央値は4ヶ月であったので、最低4治療単位が推奨されている。手足症候群(HFS)、口内炎、又は血液毒性のような副作用を管理するために、服用を遅延及び減少させてもよい。制吐剤による前治療又はこれとの併用は考慮に値する。
DOXILは通常、KS患者に20mg/m2(dox equiv.)の用量で静脈内に投与される。患者が治療に対して十分に応答してこれを許容する限り、KS患者における服用は通常3週間に1度繰り返される。
多発性骨肉腫の患者を治療するために、DOXILをVELCADE(登録商標)(ボルテゾミブ(bortezomib))と共に投与する。ボルテゾミブを、1.3mg/m2の用量で静脈内ボーラス投与法で、3週間毎に、1、4、8及び11日目に投与する。DOXILは通常これらの患者に30mg/m2の用量で各4日目のボルテゾミブ投与に続いて1時間かけて静脈内注入する。疾患が進行するまで又は許容できない毒性が発生するまで、通常患者は最大8治療単位まで治療される。
用量1 用量2 用量3 用量4 用量5
1週間に1度 10mg/m 2 20mg/m 2 30mg/m 2 40mg/m 2 50mg/m 2
2週間に1度 10mg/m 2 20mg/m 2 30mg/m 2 40mg/m 2 50mg/m 2
3週間に1度 10mg/m 2 20mg/m 2 30mg/m 2 40mg/m 2 50mg/m 2
4週間に1度 10mg/m 2 20mg/m 2 30mg/m 2 40mg/m 2 50mg/m 2
5週間に1度 10mg/m 2 20mg/m 2 30mg/m 2 40mg/m 2 50mg/m 2
FISHによって若しくはIHCによって又は細胞当りのHER2受容体の平均数を決定することによって確認されるように、HER2を過剰に発現している局所進行性/切除不能の又は転移性進行性乳癌を有する患者に、MM−302を4週間に1度、8、16、30、40、又は50mg/m2を、60分かけて静脈内(IV)注入により投与する。1)絶対好中球数(ANC)≧1,500/μL;2)血小板数≧100,000/μL;及び3)ヘモグロビン≧9g/dL(輸血許容)から明らかなように、患者は適切な骨髄予備能を有していなければならない。1)血清総ビリルビン≦ULNの1.5倍;並びに2)アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ(AST)、アラニンアミノトランスフェラーゼ(ALT)及びアルカリホスファターゼ(ALP)が正常であるか又は正常上限の2.5倍まで(ULN;肝転移及び/又は骨転移がある場合はALPに関して5倍のULNは許容される)から明らかなように、患者は適切な肝機能を有していなければならない。血清クレアチニン≦ULNの1.5倍から明らかなように、患者は適切な腎機能を有していなければならない。患者は、以前の手術、放射線治療又は乳癌の治療を意図するその他の治療の何れかの臨床関連毒性作用から回復していなければならない。生殖能力のある 男性と同様に妊娠の可能性がある女性及び彼らのパートナーにも、治療中及びMM−302の最終投与から90日間、性行為を慎むか又は避妊の効果的な形態を用いるように警告しなければならない。治療の約30日以内にECHO又はMUGAで測定された≧50の左心室駆出分画率から明らかなように、患者は適切な心臓機能を有していなければならない。妊娠中又は授乳中の患者及びNYHAクラスIII又はIVの鬱血性心不全、或いは<50%の左心室駆出分画率(LVEF)、或いは延長したQTC間隔(≧460ms)を有する患者は、MM−302で治療しないことが好ましい。
材料:
ドキソルビシンは SIGMA-ALDRICH, Inc. (St. Louis, MO) 製である。FITC結合レクチン(lycopersicon esculentum(トマト)レクチン、Cat#FL−1171)は Vector Laboratories, Inc. (Burlingame, CA) から入手した。酢酸、メタノール、及びアセトニトリルは EMD Chemicals Inc. (Gibbstown, NJ) 製である。水及びトリフルオロ酢酸(TFA)はJ. T. Baker (Phillipsburg, NJ) 製である。HOECHST33342・三塩酸塩・三水和物、ProLong Gold(登録商標)、及びDiIC18(5)−DS(DiI5)は、Invitrogen (Carlsbad, CA) 製である。コレステロール及び1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスフォエタノールアミン−N−[アミノ(ポリエチレングリコール)−2000](アンモニウム塩)(PEG−DSPE)は、Avanti Polar Lipids Inc.製である。水素化大豆ホスファチジルコリン(HSPC)はLipoid (Newark, NJ) 製である。RPMIはLonza (Walkersville, MD) 製であり、ウシ胎仔血清(FBS)はTissue Culture Biologicals製であり、そしてペニシリンG/硫酸ストレプトマイシン混合物はGIBCO (Invitrogen)製である。
既述のようにして(Kirpotin et. al., Cancer Res. 2006;66:6732-40; Park et al., Clin Cancer Res. 2002;8:1172-81)、硫酸アンモニウム勾配を用いてリポソームを製造しドキソルビシンを取り込ませた。脂質成分はHSPC、コレステロール、及びPEG−DSPE(3:2:0.3、モル:モル:モル)である。Nellis et al.,(Biotechnol Prog. 2005; 21:205-20; Biotechnol Prog. 2005; 21:221-32)によって報告されているように、抗ErbB2(F5)−PEG−DSPE結合物を製造し、そしてリポソームに組み込んで免疫リポソームを形成する。DiIC18(5)−DS(DiI5)染色剤を総リン脂質の0.3モル%の濃度で、脂質成分と可溶化した以外は、上記のようにしてDiI−5−標識化リポソーム、MM−302−DiI5及びPLD−DiI5を製造する。全ての場合に、取り込まれなかった遊離ドキソルビシンを、Sephadex(登録商標)G−75サイズ排除カラムを用いHepes緩衝食塩水(pH6.5)で溶出して除去する。F5−リポ−DiI5を、ドキソルビシンを用いずに上記と同様な方法で製造して、HEPES緩衝食塩水(pH6.5)の水性溶液を取り込む。
BT474−M3細胞(Noble, Cancer Chemother. Pharmacol. 2009 64:741-51 を参照されたい)は、HER2過剰発現ヒト乳癌細胞である。BT474−M3細胞は10%FBS及び1%ペニシリンG/硫酸ストレプトマイシンを含有しているRPMI培地で培養される。胚幹細胞由来(ESCd)心筋細胞を、 P.W. Zandstra, Institute of Biomaterials and Biomedical Engineering, University of Toronto, Toronto, Ontario, Canada; (Bauwens et al., Tissue Eng Part A. 2011 Apr 25, PMID 21417693;)から入手した。これらの細胞は、LIMドメインホメオボックス遺伝子Isl−1、トロポニンT、及びミオシン軽鎖2cのような心筋細胞の適切な細胞マーカーを発現することが示されている。トロポニン陽性細胞のパーセントを分化後に確認する。トロポニンTについて70%未満の陽性を含有しているバッチを廃棄する。誘導多能性幹細胞由来(iPSd)細胞をCell Dynamics Internationalから入手して製造会社のプロトコルに従って取り扱う。
5〜7週齢の雌性ヌードマウスをCharles River Laboratories 又は Taconic Farms, Inc.から購入する(NCrヌードマウス)。別段に指示されない限り、マウスはマウスの背部右脇腹内に(皮下注射で、s.c.)BT474−M3乳癌細胞又はNCI−N87胃癌細胞(NCI−DPT、RPMI100μL中10×106細胞)を接種される。腫瘍が平均体積〜200mm3に達したときに、以下に記載のような検討を行った。
ホモ接合型NCrヌードマウスの右上側から二番目の乳房脂肪体に15×106個のBT474−M3細胞を接種する。BT474−M3腫瘍を、ドキソルビシンを有さない蛍光標識された(以下に記載されるようにDiI5で)、HER2標的化又は非標的化リポソーム4mg/mlの単回用量で注射した。24時間後に、腫瘍を摘出して機械的又は酵素的手段で解離する。抗HER2による表面染色の後、細胞をFACSCalibur(登録商標)装置(BD Biosciences)上でのフローサイトメトリーによって分析する。HER2のシグナルが増大することによって定義された狭く囲われた細胞サブセットにおいて、上昇したリポソーム含有量を有する細胞の全てを含めたパーセントをプロットすることによって、フローサイトメトリーのデータセットを所定の閾値を上回るHER2の表面発現レベルとリポソームの取り込みとの間の関係について分析する。
BT474−M3腫瘍異種移植組織を抗HER2抗体で染色してDAPIで対比染色する。スライドを、Aperio(登録商標)Scanscope(登録商標)を用いて倍率20倍で画像化して、画像を分析する。HER2膜染色の強度を、(HER2層の内縁の平均値)+(HER2層の外縁の平均値)として単一細胞を基準として定量する。
3mg/kg(q7d、n=3、総用量)で、PBS(コントロール)、MM−302又はPLDを投与されたマウス由来の平均腫瘍体積に基づいて、マウスを3つの処置群(n=7/群)に無作為に分ける。1週間に2回腫瘍をノギスで測定する。式:幅2×長さ×0.52、を用いて腫瘍体積を計算する。1週間に2回マウスの体重を測定して体重減少を観察する。
各種レベルのHER2を発現している複数の細胞株を15μg/mlのMM−302又はPLDで2時間処置して、細胞内ドキソルビシンをHPLCで定量する。マウス4T1乳癌細胞及びヒトHeLa子宮頸癌細胞をATCCから得て、ATCCのアドバイスに従って増殖させる。市販の抗HER2抗体(BD Biosciences #340552)を用いるフローサイトメトリーで、細胞をヒトHER2発現について特徴付ける。この抗体はマウスHER2とは交差反応しないがヒトHER2を検出する。ヒトHER2をコードするネオマイシン選択可能な発現ベクターをGeneCopeia(Z2866) から入手する。4T1及びHeLa細胞をこの構築物で、非脂質ポリマートランスフェクション試薬 MegaTran(登録商標)1.0(Origene)を用い製造会社の使用説明書に従って、トランスフェクトした。400〜500μg/mlのジェネテシン/ネオマイシン(Invitrogen)を用いてトランスフェクトした細胞を選択する。生存細胞を減少したジェネテシン/ネオマイシン(100μg/ml)の下で増殖させ、BD Biosciences FACSAria(登録商標)装置でふるい分けして、親のHeLa細胞で観察されるものを上回るヒトHER2の発現を有する濃縮された細胞集団を得る。次いで選別により濃縮された細胞を限定希釈によってサブクローン化し、コロニーをHER2表面レベルによってランク付けし、HER2を異なった範囲で発現する4T1及びHeLa細胞の代表的な集団を得る。フローサイトメトリーで測定されるHER2による表面染色の蛍光強度を、製造会社の使用説明書に従ってQuantum(登録商標)Simply Cellular(登録商標)抗マウスIgGミクロスフェア(Bangs Laboratories #815)に結合する同じ抗体を用いた染色と比較して、細胞のHER2表面受容体の数を計算する。
iPSd心筋細胞(Cell Dynamics International Cat# CMC-100-110-001)を、製造会社の説明書に従って、24ウェルの組織培養プレートに250,000細胞/ウェルで蒔く。2日後に、ウェル中の培地を0.5ml除去して、MM−302、PLD又は遊離ドキソルビシンを15.0μg/ml(dox equiv.)で含む0.5mlと置き換える。プレートを「8の字様」に20回回転させて細胞のリポソームへの曝露を最大にする。細胞をMM−302、PLD、又は遊離ドキソルビシンと示された期間培養して、その後培地を除去し、細胞を0.5mlのPBSで一回洗浄する。PBSを除去して、0.5mlの0.05%トリプシンを各ウェルに添加する。細胞を観察して、細胞の剥離が始まったら、FBSを含有している0.5mlの培地を各ウェルに添加してトリプシンを不活性化する。細胞を採取してマイクロ遠心分離管に入れる。細胞を1,500rpmで4℃、5分間回転させる。細胞ペレットを1.0%酢酸のメタノール溶液0.5ml中にボルテックス及びピペッティングすることによって再懸濁し、−80℃で1時間放置してドキソルビシンを抽出する。再懸濁した細胞ペレットを含有しているマイクロ遠心分離管を低温室で10分間10,000rpmで回転させて、450μlの上澄液をHPLC管に移す。サンプルをHPLC機械上で操作してサンプル当りの濃度をドキソルビシンの標準曲線に関連する値によって決定する。
PBS、ドキソルビシン、MM−302−DiI5、又はPLD−DiI5の何れかを単回静脈内(i.v.)用量(全て3mg/kg)で投与されたマウスを、それぞれ4群に無作為に分ける。マウス(n=4/時点/群)を、単回投与後0.5、4、24、及び96時間(ドキソルビシン)又は168時間(MM−302−DiI5及びPLD−DiI5)に屠殺する。屠殺の5分前に、血管系を標識化するために100μlのFITC−レクチンをマウスに注射する。
心臓組織の重さを量り、3分間TissueLyser(登録商標)(Qiagen)を用いて1mlの水で分離させる。次いで、100μlのホモジネートを新しい管に移して1%酢酸/メタノールを900μl添加する。培養細胞に関しては、細胞を、上記のように薬剤で処置し、トリプシン処置して、1.0%酢酸のメタノール溶液を用いて溶解する。溶解物を10秒間ボルテックスして、−80℃で1時間放置する。サンプルを室温(RT)で10分間、10,000RPMで回転させる。上澄液及びドキソルビシン標準品をC18逆相カラム(Synergi(登録商標)POLAR−RP(登録商標)80Å250x4.60mm 4μm カラム)を用いるHPLC(Dionex)で分析する。ドキソルビシンは、30%アセトニトリル;70%0.1%トリフルオロ酢酸(TFA)/H2Oから55%アセトニトリル;45%0.1%TFA/H2Oの濃度勾配を流速1.0ml/分、7分間で走らせて溶出する。ドキソルビシンのピークは、485nmで励起され、590nmで発光し、インライン蛍光検出器を用いて6.5分に検出される。心臓組織からのドキソルビシンの抽出効率は、既知量のドキソルビシンでスパイクしたコントロールの心臓で測定されるように、83%であった。
厚さ10μmの心臓切片を室温で30分間風乾し、封入剤(ProLong(登録商標)Gold、Invitrogen)で1:10,000に希釈したHoechst(登録商標)33342で対比染色して、封入する。スライドを、Plan−Neofluar(登録商標)40x/1.3油DIC対物レンズを有し、Enterprise(351、364nm)、Argon(458、477、488、514nm)、HeNel(543nm)及びHeNe2(594)レーザーを備えるLSM510Zeiss(登録商標)共焦点顕微鏡上で画像化する。画像分析及び核ドキソルビシンの定量化はDefiniens(登録商標)Developer XD(登録商標)(Definiens, Parsippany, NJ)を用いて実施する。核をHoechstチャンネルに区分する。ドキソルビシン陽性の核をドキソルビシンチャンネルに区分する。ドキソルビシン陽性の核のパーセントを、Hoechstチャンネル中の総核対象物で割ったドキソルビシンチャンネル中の対象物の数の比として定量する。
幹細胞由来の心筋細胞をトリプシン処置し、洗浄して、HER2レベルを上記「HER2を発現している細胞株のリポソームの取り込み」に記載されているようにして測定する。
ESCd心筋細胞を3時間指示された濃度のMM302、PLD及びドキソルビシンで処置する。細胞をPBSで2回洗浄し、新鮮な培地を加えて、細胞を更に24時間培養する。細胞の生存能を、Promega(Madison, WI)のCellTiter−Glo(登録商標)を用いて評価して生存細胞のパーセントを未処置群と比較して決定する。
15,000iPSd(iCELL(登録商標))心筋細胞(Cellular Dynamics International, Madison WI)を製造会社のプロトコルに従ってプレートに蒔く。細胞を24時間指示されている濃度の遊離ドキソルビシン、PLD又はMM−302で処置する。上澄液を採取して、製造会社のプロトコルに従ってヒトトロポニンI ELISA(カタログ番号:GWB−83A61F、Genway Biotech, San Diego CA)を用いて分析する。PrestoBlue(登録商標)Cell Viability Assay(カタログ番号:A−13261、Invitrogen, Grand Island, NY)が、製造会社のプロトコルに従って100μl中で残っている細胞に対して実施される。
心筋細胞を上記のように処置する。3.7%のホルムアルデヒドを用いて細胞を固定し、0.1%のTween−20(PBS−T)を含有しているPBSで2回洗浄して、メタノールで透過処理する。LI−COR(登録商標)Odyssey(登録商標)Blocking Buffer(Lincoln, NE)とPBS−Tの1:1混合物を用いて細胞を室温(RT)で1時間ブロックする。Cell Signaling Technology(Berverly, MA)から得られる指示されている一次抗体の1:400希釈液で細胞を染色して、4℃で1晩振とう培養する。細胞を洗浄して、蛍光標識した二次抗体の1:2,000希釈液で1時間RTにて培養する。細胞を、Hoechst33342の1:10,000希釈液及びPierce Protein Research Products(Rockford, IL)から得られるWole Cell Stainの1:1,000希釈液でRTにて30分間染色して、DNAと全細胞をそれぞれ可視化する。10倍対物レンズを有するApplied Precision Instruments ArrayWorx (登録商標)High Content Scanner(Issaquah, WA)を用いてHoechst33342/Whole Cell Stain(460nm)、ドキソルビシン(595nm)、及びAPC/DiI5(657nm)についてプレートを走査する。ソフトウェアImageRailを用いて画像を分析する(Millard et al., Nat Methods. 2011;8:487-92 に記載されているように)。核及び全細胞シグナルについて強度閾値を確立する。次いで、この閾値を全画像に適用して区分した個々の細胞に用いる。データは、指示されたチャンネルについて所定のウェル中の全細胞に関する平均画素強度として表わされる。
iPS由来心筋細胞(iCell(登録商標)iPS由来ヒト心筋細胞−Cellular Dynamics International (CDI), Madison, Wisconsin - CDI # CMC-100-010-001, Lot 1258680)を、iCell(登録商標)Plating Medium (CDI # CMM-100-110-005, Lot 1013740 )及び iCell(登録商標) Maintenance Medium (CDI # CMM-100-120-005, Lot 1000305) を用いて培養して、MM−302の成分に曝露する。次いで、心筋細胞中のリン酸化AKT(pAKT)及びリン酸化ERK(pERK)のレベルを免疫染色及びハイコンテント顕微鏡法を用いて測定する。細胞を、トラスツズマブ、ラパチニブ、又はMM−302抗体(F5−scFv)のいずれかで、及びドキソルビシンを含有していないMM−302の5.0μg/mlと等価な濃度のMM−302分子(リポソーム)(F5−リポ)で前処置する。10nM及び5nMのヘレグリンでの10分間の刺激に続いて、(A)pAKT及び(B)pERKのそれぞれについて上に記載したように細胞を染色し、そしてハイコンテント顕微鏡法を用いて画像化する。以下の一次抗体をブロッキングバッファーで1:400に希釈して用いる:pERK抗体−Cell Signaling Technology (CST - Danvers Massachusetts)−Catalog 9106L (Phospho-p44/42 MAPK (Erk1/2) (Thr202/Tyr204) (E10) Mouse mAb #9106);pAKT抗体−CST−Catalog 4060L (Phospho-Akt (Ser473) (D9E) XP(登録商標)Rabbit mAb #4060)。二次抗体は、抗マウスIgG(H+L)、F(ab’)2断片(Alexa Fluor(登録商標)647 Conjugate)−CST−Catalog 4410;抗ウサギIgG(H+L)、F(ab’)2断片(Alexa Fluor(登録商標)647 Conjugate)−CST−Catalog 4414 である。全細胞染色及びDNA染色(Hoechst33342)を上記のように用いる。画像を分析して個々の細胞をHoechst33342核染色に基づいて区分する。単一細胞のシグナル伝達強度をそれぞれの染色について定量して個々の細胞の平均相対強度として表わす。
多数の細胞株における細胞表面HER2発現のレベルを上記のように確認した。次いでこれらの同じ細胞株を15μg/mlのMM302(図1A、表1)又はPLD(図1B、表2)で180分処置し、その後細胞を採取して細胞に結合しているドキソルビシンの量をHPLCで定量した。処置後にそれぞれの細胞株について細胞当りのHER2受容体の数 対 同一細胞株における細胞当りのドキソルビシンの量をプロッティングすることによって、増大するHER2レベルと増大するドキソルビシンの間の関係が明らかになる。この提示により、細胞当り約200,000のHER2受容体に変曲点があると考えられ、ここでこの数より多くを発現している細胞は一貫してより高いレベルの細胞に結合したドキソルビシン有していると考えられる。纏めると、これらの結果は、変曲点以上のレベルのHER2を発現している細胞(HER2過剰発現癌のような)による高い取り込み、及び変曲点以下のレベルのHER2を発現している細胞(正常組織の細胞、例えば、心筋細胞のような)には取り込まれないか最小限取り込まれるという、MM−302の特異性を裏付けている。
MM−302のHER2過剰発現腫瘍細胞への結合及び内部移行のレベルを測定するために、BT474−M3細胞(1.7×106HER2/細胞)を15μg/mlのMM−302、PLD又は遊離ドキソルビシンと最大3時間培養した(図2A)。総細胞結合(図2A)及び核内ドキソルビシン蓄積(図2B)から分かるように、MM−302は効果的に腫瘍細胞内に取り込まれた。対照的に、標的化されていない類似物であるPLDは、感知できるほどのいかなる蓄積も示さず、このことはインビトロでリポソームドキソルビシンを効果的に送達するために標的化の必要性を示している。コントロールとしての、遊離ドキソルビシンは自由に細胞に入って核内に蓄積することが示された。結果は、HER2過剰発現腫瘍細胞へのMM−302の効果的な結合及び内部移行を示した。
異種移植モデル由来の標的腫瘍細胞内へのMM−302のHER2介在取り込みを、非標的化リポソームドキソルビシンと比較して明らかにするための実験を行った。乳房脂肪体にBT474−M3異種移植腫瘍を担持しているマウスにDiI5で標識したMM−302(DiI5−F5−PLD)又はUT−PLD(DiI5−UT−PL)を注射した。腫瘍の単一細胞懸濁液を調製してFITC−HER2抗体で染色した。DiI5陽性−HER2陽性細胞をFACSで測定した。上昇したドキソルビシンレベルを有する特徴的な細胞集団が確認され、リポソームは腫瘍間質腔内に蓄積されているばかりではなく、細胞自体の中にも取り込まれていることが示された(図3A)。これはHER2標的化リポソームで処置した腫瘍に由来する細胞サンプルにおいて特に明らかだった。上昇したリポソーム含量を有する細胞のパーセントは細胞当り平均100,000及び200,000のHER2受容体を発現する細胞サブセットで上昇し始めた。非標的化リポソームはHER2陽性細胞への優先的な取り込みを示さなかった。これらの結果は、インビボにおける腫瘍細胞へのMM−302の取り込みがHER2依存性であることを明らかにし、さらに細胞当り少なくとも100,000〜200,000のHER2受容体がMM−302の有意な結合及び内部移行を可能にするために必要であることを裏付けている。
ヒト心筋細胞は低レベルのHER2を発現することが報告されているので、MM−302を取り込む可能性を有していると考えられていた。インビトロにおいてヒト心臓細胞に対するMM−302の効果を検討するために、ESCd及びiPSdヒト心筋細胞を入手した。心筋細胞上のHER2受容体レベルは、qFACSによって、ESCd及びiPSdヒト心筋細胞において、それぞれ細胞当り約70,000及び200,000受容体であると確認した。これらの結果は、報告されているヒト心臓組織における低いHER2発現と一致している(Fuchs et al., Breast Cancer Res Treat. 2003;82:23-8)。
低レベルのドキソルビシンへの曝露は細胞毒性になることがある。MM−302又はPLDによる処置が心筋細胞の生存能に影響するかどうかを確認するために、ESCd心筋細胞を指示された濃度の遊離ドキソルビシン、PLD又はMM−302と3時間培養した後、洗浄して、新鮮な培地と24時間培養した。遊離のドキソルビシンによる処置は0.2μg/ml程度の低い濃度で生存能の損失をもたらした(図4C)。反対に、MM−302及びPLDによる処置は、最大45μg/mlの非常に優れた治療濃度を含む、試験した何れの濃度でも生存能の減少をもたらさなかった。MM−302又はPLDによる処置が心筋細胞の生存能に影響するかを更に試験するために、iPSd心筋細胞を指示された濃度の遊離ドキソルビシン、PLD又はMM−302で24時間処置した。ドキソルビシンによる処置はPLD及びMM−302による処置と比べて生存能の顕著な減少をもたらした(図4D)。上昇したレベルの心臓トロポニンの存在は心臓障害の臨床指標である。(D)におけるiPSd心筋細胞由来の上澄液をトロポニンIのレベルについて分析した。図4Eに示されるように、ドキソルビシン処置はPLD又はMM−302による処置と比べてトロポニンIの顕著な増大をもたらした。これらの結果は、ESCd及びiPSd心筋細胞がドキソルビシンに対して感受性があること、及びMM−302及びPLDによる処置は心筋細胞の生存能に影響を与えるのに十分なドキソルビシン曝露をもたらさないことを明らかにしている。
ドキソルビシンとトラスツズマブの併用は、この組み合わせで治療された患者で観察された心臓事象の受入れ難い高発生率により禁忌である。この組み合わせに関連する心臓毒性の作用メカニズムは、ドキソルビシンによる細胞ストレスの誘発と、ドキソルビシンによって誘発された細胞ストレスへの応答に必要とされるHER2シグナル伝達経路のトラスツズマブ介在性の阻害による細胞ストレスの誘発とが、同時に起こることであると考えられる。
F5のような特異性の高い抗体断片を有するリポソームの標的化は、一般に、リポソームの総組織沈着を変化させず、むしろ血管外溢出に続くそれらの微小分布を変化させる。MM−302(四角)、PLD(UT−PLD、三角)及びドキソルビシン(遊離dox、丸)のマクロレベル生体内分布を、上記のように接種したNCI−N87腫瘍担持マウスのマウス心臓組織(図7A)、ヒト異種移植腫瘍組織(図7B)及び足組織(図7C)において比較した。マウス(n=4/時点/群)にMM−302、PLD、又は遊離ドキソルビシン(全て、3mg/kg、dox equiv.)を静脈内注射して、注射後0.5、4、24、及び96時間(ドキソルビシンに関して)又は168時間(MM−302及びPLDに関して)に心臓を採取して、ドキソルビシンをHPLCで定量した(図7A)。遊離ドキソルビシンの注射は2つのリポソーム製剤と比べて0.5時間目に心臓に高いピークの曝露をもたらした(注射した用量(i.d.)/組織gの10%)。遊離ドキソルビシン注射後の心臓組織からのドキソルビシンのクリアランスはMM−302及びPLDと比べてより速く、そして24時間におけるドキソルビシンの検出量(i.d./組織gの0.77%)はバックグラウンドに接近していた。MM−302とPLDの両方は24時間がピーク(MM−302とPLDがそれぞれ2.8%と2.6%)である持続した蓄積プロファイルを有したが、168時間目に値はバックグラウンドに戻った。これらの結果は別のPLD製剤の心臓生体内分布について先に報告されたデータのそれと類似の範囲内であった。MM−302とPLDの心臓生体内分布の間に有意な差異は観察されなかった。
遊離ドキソルビシン、MM−302−DiI5又はPLD−DiI5の何れか(全て3mg/kg dox equiv.)を注射したマウスの注射後0.5、4及び24時間の心臓組織から作成した凍結切片において、ドキソルビシン(自然蛍光性)及びリポソーム(DiI5標識化)の微小分布を分析した。心臓血管を可視化するために、屠殺前5分にマウスにFITCレクチンを静脈内注射した。心臓切片を蛍光共焦点顕微鏡で画像化した。3時点で分析した(0.5、4及び24時間)異なる処置群の代表的な領域を図7Dに示す。非処置心臓も画像化して、代表的な画像を図7D(左図)に示す。ドキソルビシンと核シグナルとの共局在化を図7Dの下図に示す。0.5時間時点におけるドキソルビシンとMM−302の両方についての、核ドキソルビシンシグナルの高倍率画像を図7Eに示す。MM−302では核内にドキソルビシンシグナルが見えないのに対して、遊離ドキソルビシンでは大部分の核がドキソルビシン陽性である。画像を上記のように分析して、ドキソルビシン陽性核のパーセントを確認した。遊離ドキソルビシンの注射は0.5時間時点で、約50%の核がドキソルビシンに陽性を示し、ドキソルビシンの顕著な核内蓄積をもたらした。しかしながら、4時間までにはわずか23%の核がドキソルビシンに対して陽性であって、24時間時点でシグナルは基底レベル内に戻った。
当業者は、本明細書に記載されている特定の実施態様の多くの均等物を確認するか、通常の実験以上のものを用いずに評価及び実施できるだろう。このような均等物は以下の特許請求の範囲の範囲内であることが意図されている。従属クレームに開示されている実施態様の何れかの組み合わせは本開示の範囲内であることが意図されている。
本明細書中に言及されている米国及び外国の特許及び係属中の特許出願、並びに刊行物はその全てが参照により本明細書に明確に取り込まれている。
Claims (7)
- HER2標的化免疫リポソームとして製剤化されるドキソルビシンを1回分の量である30mg/m 2 で提供するように製剤化された、封入されたドキソルビシンを含有するHER2標的化免疫リポソームを含有してなる医薬組成物であり、
ここで、ドキソルビシンを封入するHER2標的化免疫リポソーム組成物は、滅菌した10mMのヒスチジン−HCl(pH6.5)及び10%スクロース中で製剤化され、ホスファチジルコリン、コレステロール及びPEG誘導体化ホスファチジルエタノールアミンからなる脂質膜を含有してなり、該PEG誘導体化ホスファチジルエタノールアミンはリン脂質分子200に対してPEG分子約1つの量を有しており、
脂質膜のリン脂質分子1780につき約1つのPEG鎖が、その末端にHER2に結合するF5単鎖Fv抗体断片を有し、
膜によって封入される水性スペースが、リン脂質1モルあたりドキソルビシン130〜170gを含み、
それぞれのリポソームが、その表面にHER2に対するF5単鎖Fv抗体を平均で45コピー担持し、
該医薬組成物が、ヒトの癌を治療するために3週間に1回投与される、
細胞あたり約200,000個以上のHER2受容体の発現によって特徴付けられるヒトの癌を治療するための医薬組成物。 - HER2標的化免疫リポソームに封入されたドキソルビシンが、ドキソルビシン硫酸塩である、請求項1に記載の医薬組成物。
- 癌が、乳癌、カポジ肉腫、卵巣癌、又は多発性骨髄腫である、請求項1又は2に記載の医薬組成物。
- HER2受容体の発現によって特徴付けられる癌が、更にHER22+、HER23+又はHER2 FISH陽性であると特徴付けられる、請求項1〜3の何れか一項に記載の医薬組成物。
- ドキソルビシンを封入するHER2標的化リポソームとして製剤化された30mg/m 2 のドキソルビシンの投与が、非標的化リポソ−ム組成物として製剤化された30mg/m 2 のドキソルビシンの投与と比較して、心臓毒性の増大を引き起こさない、請求項1〜4の何れか一項に記載の医薬組成物。
- ドキソルビシンを封入するHER2標的化リポソームとして製剤化された30mg/m 2 のドキソルビシンの患者への投与が、患者の血流中に免疫リポソームのピーク濃度をもたらし、
ここで、ほぼ該ピーク濃度で免疫リポソームを含有する培地中で培養することによりインビトロでヒト心筋細胞を処置することが、免疫リポソームを含有しない培地で培養したコントロールのヒト心筋細胞と比較して、培養された心筋細胞中のpERK又はpAKTのヘレグリン刺激による増大を減少させないか、又は5%未満減少させる、
請求項1〜5の何れか一項に記載の医薬組成物。 - ドキソルビシンを封入するHER2標的化リポソームを投与されたときの患者の血流中の免疫リポソーム濃度が、血清の免疫リポソーム濃度として測定される、請求項6に記載の医薬組成物。
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