JP6199872B2 - クロモバクテリウム（Ｃｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）配合物、組成物、代謝産物、およびそれらの使用 - Google Patents

Description

特にダニ目（Acarina）、コガネムシ科（Scarabeidae）、キイロショウジョウバエ科（Drosophilidae）、トガリキジラミ科（Triozidae）、アリマキ科（Aphidae）、イエバエ科（Muscidae）、ハナバエ科（Anthomyiidae）またはゴミムシダマシ科（Tenebrionidae families）に属する一種または複数種の有害生物の外寄生に対する、クロモバクテリウム（Chromobacterium）種、濾過物、上清、抽出物、殺ダニ剤および殺虫剤としてそれらに由来する殺有害生物剤活性化合物または代謝産物を含む組成物または配合物の使用を提供する。（バイオ殺有害生物剤とも呼ばれる）生物殺有害生物剤配合物、特にクロモバクテリウム（Chromobacterium）種、濾過物、上清、抽出物、それらに由来する代謝産物または殺有害生物剤活性化合物を含む配合物、それらを生成するための方法、および有害生物外寄生の調節としての使用法をさらに提供する。より具体的には、物理的均一性の維持により改善された貯蔵寿命、および太陽光への露出時の分解に対する高い耐性が原因の使用後のより長期の殺虫活性を有する、安定状態の生物殺有害生物剤を提供する。

天然産物は、微生物、植物、および他の生物によって生成される物質である。微生物の天然産物は化学的に多様な多くの供給源をもたらし、医薬品目的での天然産物の利用には長い歴史がある。ヒト治療用の天然産物が力説されているにもかかわらず、５０％を超えるものが天然産物に由来する場合、わずか１１％の殺有害生物剤が天然産物に由来する。それにもかかわらず、天然産物殺有害生物剤には、従来農場と有機農場の両方で有害生物を防除する際に、重要な役割を果たす可能性がある。微生物（細菌、放線菌および真菌）によって生成される二次代謝産物は、昆虫有害生物を効率良く防除するため、および耐性発達のリスクを低減するために、単独または周知の化合物との組合せのいずれかで使用することができる、新規な化学化合物をもたらす。農業用殺虫剤として成功した微生物天然産物の、幾つかのよく知られている例が存在する(Thompson et al.,2000;Arena et al.,1995;Krieg et al.1983)。

微生物殺有害生物剤の開発は、純粋培養での微生物の単離で始まる。次いでそれは、温室内および野外でｉｎ ｖｉｔｒｏ、ｉｎ ｖｉｖｏまたはパイロットスケール試験を使用する効力スペクトルスクリーニングに続く。同時に、微生物によって生成される活性化合物を単離し同定する。微生物殺有害生物剤の商品化のため、微生物は産業規模で発酵により経済的に生成され、生体適合性があり認可された添加剤と配合して、有効性を増大し、野外条件下での施用しやすさおよび貯蔵安定性を最大にしなければならない。

クロモバクテリウム（Chromobacterium）
２０００年、ＵＳＤＡのＭａｒｔｉｎ博士と彼女の同僚は、メリーランドの森林土壌から紫着色細菌（ＰＲＡＡ４−１）を単離した（Martin et al.,2007a）。初期スクリーニングにおいて、彼女たちは、この細菌がコロラドハムシ（Colorado potato beetle）および他の昆虫有害生物に対して毒性であることを発見した（Martin et al.,2007b）。この運動性の、グラム陰性菌はクロモバクテリウム（Chromobacterium）の新たな種、クロモバクテリウムサブスチュガエ種nov（Chromobacterium substugae sp.nov）として同定された（Martin et al.,2007c）。それは通性好気性、運動性の、極鞭毛を有するグラム陰性ベータプロテオバクテリウムである。２５℃においてＬ−寒天プレート上で２〜３日に形成されるコロニーは初期にはクリーム色であり、次の２４時間中に徐々に薄紫色〜濃紫色に変わる。ＰＲＡＡ４−１のコロニーは、２５℃での最適状態、ｐＨ６．５〜８．０、および０〜１．５％（ｗ／ｖ）ＮａＣｌでペプトンベース培地において十分増殖する（Martin et al.,2007a）。

Ｍａｒｔｉｎと彼女の同僚によるクロモバクテリウムサブスチュガエ（C.substugae）の発見以来、少なくとも３種の新しいクロモバクテリウム（Chromobacteria）が単離され、特徴付けされている。Young et al.(2008)は、台湾において湧き水サンプルから、新規なクロモバクテリウム（Chromobacterium）種、クロモバクテリウムアクアチカム（C.aquaticum）を単離し、Kampfer et al.(2009)は、マレーシアにおいて回収した環境サンプルから、２種、クロモバクテリウムピスシンエア（C.piscinae）とクロモバクテリウムシュードビオラセム（C.pseudoviolaceum）を単離した。

知られている全てのクロモバクテリウム（Chromobacterium）種の中で、クロモバクテリウムビオラセム（C.violaceum）、グラム陰性菌は土と水から栄養を得る。クロモバクテリウム（Chromobacterium）によって生成された二次代謝産物に関して公開された情報は、クロモバクテリウムビオラセム（C.violaceum）のみに関する試験に基づく（例えば、クロモバクテリウムビオラセム（C.violaceum）の薬理学的および産業的展望の包括的概要に関してはDuran and Menck (2001)を参照）。それは通常人間に対して非病原性であると考えられるが、しかしながら日和見病原体として、それは時折ヒトと動物で敗血症および致命的感染の原因物質となっている。クロモバクテリウムビオラセム（C.violaceum）は、紫色色素、酸素の存在下で２つのＬ−トリプトファン分子の融合によって生じるビスインドール分子であるビオラセインを、生成することが知られている（Hoshino et al.,1987;Ryan and Drennan;2009）。ビオラセインの生合成は、定足数検知、グラム陰性菌において様々な他の二次代謝経路を調節する一般的機構によって調節される（McClean et al.,1997）。

Duran and Menck (2001)により要約されたクロモバクテリウムビオラセム（C.violaceum）の他の知られている代謝産物には、シアン化水素、フェリオキサミンＥ、Ｂ−ラクタム系グリコペプチドＳＱ２８，５０４およびＳＱ２８，５４６、エアロシアニジン、エアロキャビン、３，６−ジヒドロキシ−インドキサゼン、およびモノバクタムＳＢ−２６．１８０などの抗生物質、および抗腫瘍性デプシペプチドＦＲ９０１２２８がある。Duran and Menck (2001)による概説記事によれば、クロモバクテリウムビオラセム（C.violaceum）は、細胞外多糖およびリポ多糖などの珍しい糖化合物も生成する。

米国特許出願公開第ＵＳ２０１２０１００２３６も、クロモバクテリウム（Chromobacterium）種、より詳細にはクロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）から入手可能またはそれに由来する化合物を開示する。

コダニおよび殺ダニ剤
テトラニカスウルティカエ（Tetranychus urticae）（２スポットハダニ）は四翅（Tetranychidae）科のメンバーである。ハダニはおそらく、観賞植物の最も重大なコダニ有害生物である。それらはさらに、１８０種を超える温室および野外作物において相当なダメージを引き起こす。さらにこれらのコダニは、防除するのが最も困難な節足動物有害生物の中にあり、化学物質に対する耐性は急速に発達し得る（Stamps and Osborne 2009,Osborne,Ehler and Nechols,1999）。

殺ダニ剤は、コダニ（殺コダニ剤）およびマダニ（殺マダニ剤）を殺傷する化合物である。このクラスの殺有害生物剤は多量に存在し、抗生物質、カルバメート、ホルムアミジン殺ダニ剤、ピレスロイド、コダニ成長調節剤、および有機リン殺ダニ剤を含む。化学物質殺有害生物剤以外に、珪藻土および脂肪酸を使用してコダニを防除することができる。それらは典型的に表皮の破壊によって働き、それによってコダニを乾燥除去する。さらに、ペパーミント油などの幾つかの必須油を使用してコダニを防除する。非常に様々な知られている殺ダニ剤化合物があるにもかかわらず、それらが作物に対して引き起こすダメージのため、コダニは依然農業において重大な問題である。コダニは１シーズン中に数世代を産むことができ、それが使用する殺ダニ剤製品に対する耐性の急速な発達を助長する。したがって、新たな標的部位および新規な作用形態がある、新たな殺有害生物剤製品が決定的に必要とされる。

イエバエ
ムスカドメスティカ（Musca domesitca）（イエバエ）は、イエバエ（Muscidae）科のメンバーである。この科は、国内および世界中で経済的問題であると考えられている。イエバエ（Muscidae）科の他のメンバーには、フェイスフライ、サシバエ、およびツノサシバエがある。それらは厄介者と考えられ、ヒトおよび動物疾患の媒介動物である。廃棄物および排出物、ならびにヒトおよび食物における、それらの移動および捕食の習性によって、それらは病原性生物の移動に理想的な作用因子となる。この種は動物に対する有害生物である可能性もあり、開口状態の創傷を介して疾患を伝染させる可能性がある。

植物捕食バエ−スポットウイングキイロショウジョウバエ
スポットウイングキイロショウジョウバエ、キイロショウジョウバエスズキ（Drosophila suzukii）は、米国内で果樹および野菜栽培場への近年の侵入者である。それは、よく知られている関連種、ドロソフィラメラノガスター（Drosophila melanogaster）および他のキイロショウジョウバエ属（Drosophila）より一層破壊的である。キイロショウジョウバエスズキ（D.suzukii）は無傷な果樹および野菜を捕食し、それにダメージを与えることができ、一方で他のキイロショウジョウバエ属（Drosophila）は腐敗した植物材料のみを捕食するからである。

根蛆虫
ハナバエ（Anthomyidae）科の根蛆虫は幾つか異なる植物の根を捕食する。キャベツ根蛆虫は、キャベツ、カリフラワー、ブロッコリー、および芽キャベツに影響を与える。（このグループの野菜は「アブラナ属作物」としても知られる）。ニンジン、タマネギ、および他の野菜作物に影響を与える、異なるタイプの根蛆虫も存在する。アブラナ属作物は寒冷期の野菜なので、キャベツ根蛆虫は米国の北部領域でより一層顕著である。それらは土壌下で孵化および捕食するため防除するのが困難であり、したがって、発育阻害または萎えた葉に気付いたとき、それらがそこに存在することを知るのみであり得る。

モモアカアブラムシ
ミザスペルシカエ（Myzus persicae）、（モモアカアブラムシ）は、アリマキ科（Aphididae family）のメンバーである（ＵＳ２０１１００５４０２２参照）。その一般名によって明らかなように、モモアカアブラムシは広範囲の果樹、野菜および観賞植物の有害生物であり、世界中に存在する。これらの昆虫は非常に有害である。それらは植物し部の捕食による直接ダメージを引き起こすだけでなく、プラムポックスウイルスの潜在的ベクター、果樹の変形および変色を引き起こすＳｈａｒｋａ病の原因物質でもあるからである。結果として、内寄生された樹木は根絶しなければならない。様々な殺有害生物剤でこれらの有害生物を防除するための、幾つかの試みがなされている。しかしながら、耐性は発達することが多い。

ジャガイモシストセンチュウ
バクテリセラコッケレリ（Bactericera cockerelli）、（ジャガイモシストセンチュウ）はトガリキジラミ（Triozidae）科のメンバーであり、グラム陰性菌の外寄生を介したゼブラチップ病の原因物質である。それは北アメリカに固有であるが、それはニュージーランドでも見られている（www.biosecurity.govt.nz/files/pests/potato-tomato-psyllid/psyillid-factsheet.pdf）。ジャガイモシストセンチュウは一般に、ナス科宿主（トマトおよびジャガイモなど）において繁殖する。しかしながら、それらはトウガラシ、チリ、ナス、サツマイモ、ポロポロ（poroporo）、タマリロ（tamarillo）およびサンザシなどの他の植物においても見られている。

リタービートル
アルフィトビウスジアペリヌス（Alphitobius diaperinus）は家禽産業において深刻な有害生物であり、ゴミムシダマシ科（Tenebrionidae family）のメンバーである。Ｂｔ株ＰＳ８６Ｂ１は、アルフィトビウス（Alphitobius）に対して活性を有することが報告されている（Hickle et al.への米国特許第５，１００，６６５号）。Ｂｔテネブリオニス（tenebrionis）も、この甲虫の幼虫に対して活性を有し得る（米国特許第５，２４４，６６０号）。リタービートルおよび他の数種の鞘翅目は、相当な経済的損失をもたらすニワトリおよびシチメンチョウの原生動物、細菌、およびウイルス性疾患のベクターとして働く。リタービートルは、サルモネラエンテリカ（S.enterica）血清型腸炎菌などのより病原性のある品種を含めた、病原性サルモネラ種の相当な保菌者として働く。問題は、サルモネラのような病原性生物に汚染された家禽類が、ヒトの健康を脅かすことである。これらの甲虫は、鶏舎の残物、木材、スタイロフォーム（Styrofoam）、ファイバーグラス、およびポリスチレン製断熱パネルに存在する。幼虫および成虫甲虫は、鳥類排泄物とニワトリ飼料として使用する穀物の両方を食べて育つ。鶏舎内でのこれらの巨大甲虫集団およびそれらの多様な習性によって、ニワトリが保有するサルモネラを根絶するのがさらに難しくなる。重度のリタービートル外寄生の最中、または新たなニワトリ集団を確立する前に、多数の化学物質殺虫剤を用いた残物または塵のいずれの頻繁な改変も、この有害生物を防除するのに完全に有効ではない。

ジムシ科およびコガネムシ科
ジムシ（シクロセファラルリダ（Cyclocephala lurida））、ミナミメンガタカメムシ、リゾトログスマジャリス（Rhizotrogus majalis）、マメコガネ幼虫、ポピラジャポニカ（Popilla japonica）、キンケクチブトゾウムシ幼虫、オティオリンクスサルカタス（Otiorhynchus sulcatus）、セマダラコガネ幼虫、アノマラオリエンタリス（Anomala orientalis）などのジムシ科、コガネムシ科（Scarabaiedae family）のメンバーは、芝生および牧草地に外寄生することが分かっている。成虫コガネムシは、観賞植物、および多数の作物に外寄生することが世界中で分かっている。様々な殺有害生物剤が試験されており、化学物質殺有害生物剤、線虫用（例えば、米国特許第７，６４１，５７３号参照）、およびバチルスチューリンジエンシス（Bacillus thuringiensis）用（米国特許第５，１８５，１５８号参照）、ペロモン、ならびにキャットニップ（catnip）およびチベス（chives）などの天然忌避剤を含む。

ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）
バイオプラスチックは、植物デンプンおよび微生物種などの再生可能資源から合成される、プラスチックの形態として定義される。開発中の幾つかの生分解性プラスチック材料には、ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）、ポリ乳酸、脂肪族ポリエステル、多糖、ならびにこれらのコポリマーおよび／またはブレンドがある。特にＰＨＡは、ポリヒドロキシブチレート、ポリヒドロキシブチレートｃｏ−ヒドロキシバレレート（ＰＨＢＶ）、ポリヒドロキシブチレートｃｏ−ヒドロキシヘキサノエート（ＰＨＢＨｘ）およびポリヒドロキシブチレートｃｏ−ヒドロキシオクトノエート（ＰＨＢＯ）などの幾つかのポリマーエステルを含む。ポリ３−ヒドロキシ酪酸（ＰＨＢ）は、最も一般的な天然微生物ＰＨＡである。ポリヒドロキシアルカノエートは１００％生分解性ポリマーである。それらは、ポリプロピレンのような様々な合成サーモプラスチックと類似した性質を有しているので、ＰＨＡはそれらの適所で使用することができる。さらにＰＨＡは、土壌、湖水、下水および海水中で微生物によって、好気性条件下において水と二酸化炭素に、および嫌気性条件下においてメタンに完全に分解される。鎖中の炭素原子の数に応じて、ＰＨＡは２つの群、３〜５個の炭素原子からなる単鎖長（ＳＣＬ）、および６〜１４個の炭素原子からなる中鎖長（ＭＣＬ）に分類されている（Khanna S,Srivastava AK.2005）。これらの差は主に、特定範囲の炭素長の３ＨＡを許容し得るＰＨＡシンターゼの基質特異性が原因である。他のよく知られているＰＨＡ_ＳＣＬは、４個および５個の炭素モノマー単位を含む、コポリマー、ポリ（３−ヒドロキシブチレート−ｃｏ−３−ヒドロキシバレレート）Ｐ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＶ）である。これらのモノマー単位の割合は変わる可能性があり、これがポリマーの物理的性質に影響を与える。すなわち、３ＨＶ単位の割合が増大すると脆弱性が低下する。

幾つかの微生物種では、過剰な炭素の存在および窒素源の制限中にＰＨＡの蓄積が起こる（Verlinden et al.,2007）。ストレス条件に応じて生成されるＰＨＡは、共通のエネルギー源が不在であるとき利用されるエネルギー保存分子として働く（Solaiman and Ashby,2005）。プラスチックポリマーは、これらの生物中に光屈折非晶質エネルギー保存顆粒として、細胞内に蓄積する（Mukhopadhyay et al.,2005）。３つの酵素ステップを使用してアセチル−ＣｏＡからＰＨＢを合成する（Krans et al.,1997）。バイオテクノロジーの観点から、生分解性であるバイオプラスチックの能力によって、それらは石油化学系プラスチック、環境汚染物質の望ましい代替となる（Lee,1996）。バイオプラスチックの生産の増大によって、二酸化炭素排出を有意に減らし、プラスチック廃棄物生成を削減し、化石燃料の消費を減らすことができる。

ＰＨＡは以下の３つの方法、微生物による生合成、トランスジェニック植物による光合成、および適切な酵素を使用したｉｎ ｖｉｔｒｏ生合成から得ることができる（例えば、米国特許第７，４５５，９９９号、ＷＯ９９１４３１３参照）。大部分の細菌において、窒素、リンまたは酸素などの、炭素源以外の成長制限基質の下で、細胞はＰＨＡを合成する。

蓄積したＰＨＡは、枯渇状態中に炭素源とエネルギー源の両方として働く。ＰＨＡはパワーを低減するためのシンクとしても働き、したがって細胞内における酸化還元調節物質として考えることが可能である。ＰＨＡは、光学活性化合物の化学合成用のキラル前駆体として働き得る、立体規則性化合物としても有用である。このような化合物は、薬剤、医薬品、ホルモン、殺虫剤および除草剤の長期投与用の生分解性担体として特に使用される（Reddy 2003）。それらは、骨板、外科手術による縫合、および血管交換において、それらの圧電性による骨成長の刺激時に骨合成物質としても使用される（Schaefer et al.,2000）。さらに、様々な細菌、例えば、アルカリゲネスユートロフス（Alcaligenes eutrophus）ＮＣＩＭＢ４０１２４（ＥＰ．０４３１８８３Ａ２）および米国特許第７，４５５，９９９号を使用した微生物学的プロセスによるコポリマー生成の方法の、幾つかの開示が存在している。ＥＰ Ｎｏ．２２３６０８９Ａ１は、整形外科用修復デバイスおよび軟質組織固定デバイス用のマルチゾーンインプラントにおける、これらのポリマーの使用を開示する。ＷＯ９１／００９１７Ａ１は、原核生物および真核生物細胞、特に植物における分子レベルでの、遺伝学および酵素学によるポリヒドロキシブチレート（ＰＨＢ）およびポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）ポリエステルの合成の操作により、新規なポリエステルバイオポリマーを制御および修飾するための方法を開示する。ＷＯ２００５／０３０４８２Ａ１は、堆肥パッキング材としての方法および使用を開示する。ＷＯ２００８／１１０５４１は、熱分解に対するポリヒドロキシブチレートの安定化の方法を開示する。

リグニン
リグニンは、高等植物の木部構造の主要構成要素である。処理済リグニンは、木材パルプ反応の副産物として得られる。リグニン産物には、例えば、亜硫酸塩、硫酸塩、およびアルカリ廃液から得ることができる、リグニンスルホン酸塩、アルカリリグニン、およびオキシリグニンがある（Snook,1982,Handbook for Pulp & Paper Technologists,TAPPI,Atlanta）。

リグニンには様々な商業用途があることが分かっている。例えば、アルカリ可溶性リグニンは分散剤として使用されている。米国特許第３，７２６，８５０号は、クレイ、色素、殺有害生物剤、カーボンブラックおよび他の物質の分散剤のとしての、有機化学結合したイオウを実質的に含まない、アルカリ可溶性、オゾン処理リグニン製品の使用を開示する。米国特許第４，６６６，５２２号は、ワックス、油、脂質、アスファルト、およびこれらの混合物のエマルジョンを調製するためのリグニンスルホン酸塩製品の使用を開示する。酢酸リグニンは、水性系印刷用インク組成物における結合剤としての働きなどの、幾つかの施用に有用であることが報告されている（例えば、米国特許第４，６１２，０５１号参照）。米国特許第５，６６８，１８３号は、脂質可溶性物質を分散するためのリグニンスルホン酸塩製品の使用を開示する。さらに、リグニン−殺有害生物剤複合体の結合の幾つかの開示が存在している（例えば、米国特許第３，８１３，２３６号、Ｒｅ．Ｎｏ．２９，２３８として再発行された米国特許第３，９２９，４５３号、米国特許第４，３８１，１９４号、米国特許出願公開第２０１１００１５２３７、米国特許出願公開第２０１０１３６１３２、米国特許出願公開第２０１００２７８８９０、米国特許出願公開第２００８０１１３９２０、米国特許出願公開第２００６２４７１３０、米国特許第７，８６７，５０７号、ＷＯ２００３／００５８１６、米国特許第５，９９４，２６６号参照）。

安息香酸ナトリウム
安息香酸ナトリウムは、食品調製における抗菌剤として、様々な配合物において使用されている。例えば米国特許第６，５９９，５１４号は、抗真菌組成物全体の抗真菌活性に相乗効果をもたらす、抗真菌剤と食品添加剤を含む相乗的抗真菌組成物を開示する。米国特許第６，５９９，５１４号中に開示された食品添加剤は、ソルビン酸とソルビン酸塩、安息香酸と安息香酸塩、ヒドロキシ安息香酸、二酸化硫黄と亜硫酸塩、ビフェニルと誘導体、亜硝酸塩、硝酸塩、乳酸、乳酸塩、クエン酸とクエン酸塩、酒石酸と酒石酸塩、オルトリン酸とオルトリン酸塩、リンゴ酸塩、アジピン酸、コハク酸、１，４−ヘプトノラクトン、ニコチン酸、クエン酸三アンモニウム、クエン酸鉄アンモニウム、カルシウム２ナトリウムＥＤＴＡ、グリセロール、ジ−、トリ−およびポリリン酸塩、脂肪酸（Ｅ４７０）、脂肪酸のモノ−およびジグリセリド（Ｅ４７１）、脂肪酸のモノ−およびジグリセリドのエステル、炭酸塩、グルコン酸塩、塩素（Ｅ９２Ｓ）、ヘキサメタリン酸ナトリウム、ブチル化ヒドロキシアニソール（ＢＨＡ）、ブチル化ヒドロキシトルエン（ＢＨＴ）（Ｅ３２１）、ｔ−ブチルヒドロキノン（ＴＨＢＱ）、没食子酸プロピル、ヘプトン酸カルシウム、フィット酸カルシウム、ジエチルエーテル、ＥＤＴＡ、２ナトリウム２水素ＥＤＴＡ、酢酸エチル、グリセロールモノ−、ジ−およびトリアセテート、グリシン、オキシステアリン、プロパン−１，２−ジオールおよびプロパン−２−０１およびヘプトン酸ナトリウムを含んでいた。

安息香酸ナトリウムは殺有害生物剤配合物においても使用されている。例えば、ＳＣ Ｊｏｈｎｓｏｎによる米国特許第４，６６８，５０７号は、主な安定化形式が腐食阻害である加圧式スチール製エアロゾルデリバリーシステム中に含有される殺有害生物剤における、安息香酸ナトリウムの使用を教示する。米国特許第５，６２０，６７８号は、腐食阻害剤として安息香酸ナトリウムを含む殺虫配合物を開示する。米国特許第４，７３１，３７９号は、動物用シャンプーとして使用するとノミを殺傷する、安息香酸ナトリウムを含有する殺虫組成物を教示する。この特許では、殺虫剤の有効性を高めるため、または製品を安定化するための安息香酸ナトリウムの使用は示されておらず、そうではなくて、処理動物の創傷治癒を支援することが考えられている。米国特許第５，０１７，６２０号は、抗菌剤として使用すると保存中に製品を安定化する、安息香酸ナトリウムおよび他の知られている防腐剤を含有する殺虫組成物を教示する。米国特許第６，８４１，５７２号は、４．０から６．５の間のｐＨを有し、抗真菌および／または抗菌有効濃度のソルビン酸、安息香酸および乳酸、安息香酸、ソルビン酸、ヒドロキシメチルグリシン、乳酸およびプロピオン酸のナトリウム、カリウム、カルシウムおよびアンモニウム塩、ならびにメチル、エチル、プロピルおよびブリルパラベン、少なくとも１つのアニオン性界面活性剤、および場合によっては酸性物質からなる群から選択される１つまたは複数の防腐剤化合物から本質的になる、生きた植物、作物、樹木、収穫前果実、野菜、葉、茎、根および花を処理するための水溶液を開示する。

本発明は以下を提供する。
［１］調節が望まれる場所における、少なくとも一種のダニ有害生物（Acari pests）および／またはイエバエ科（Muscidae）、キイロショウジョウバエ科（Drosophilidae）、ハナバエ科（Anthomyidae）、アリマキ科（Aphididae）、トガリキジラミ科（Triozidae）、ゴミムシダマシ科（Tenebrionidae）、コガネムシ科（Scarabaiedae）に属する少なくとも一種の昆虫有害生物の外寄生（infestation）を調節するための方法であって、上記位置において節足動物および／またはイエバエ科（Muscidae）、キイロショウジョウバエ科（Drosophilidae）、ハナバエ科（Anthomyidae）、アリマキ科（Aphididae）、トガリキジラミ科（Triozidae）、ゴミムシダマシ科（Tenebrionidae）、コガネムシ科（Scarabaiedae）に属する１つまたは複数の昆虫有害生物の外寄生を調節するのに有効である量の、（ａ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種株の上清、濾過物および／または抽出物、および／または上記上清、濾過物および／または抽出物由来の１つもしくは複数の代謝産物、ならびに（ｂ）殺ダニ剤および／またはイエバエ科（Muscidae）、キイロショウジョウバエ科（Drosophilidae）、ハナバエ科（Anthomyidae）、アリマキ科（Aphididae）、トガリキジラミ科（Triozidae）、ゴミムシダマシ科（Tenebrionidae）、コガネムシ科（Scarabaiedae）に属する１つもしくは複数の昆虫有害生物に対して有効である殺虫剤である別の殺有害生物剤物質を施用することを含む方法。
［２］調節が望まれる場所が植物上、植物種子または土壌中である、上記［１］に記載の方法。
［３］上記ダニの外寄生がコダニの外寄生である、上記［１］に記載の方法。
［４］上記コダニの外寄生が四翅（Tetranychus）種の外寄生である、上記［１］に記載の方法。
［５］上記昆虫有害生物の外寄生がイエバエ（Musca）種、ミザス（Myzus）種、バクテリセラ（Bactericera）種、シクロセファラ（Cyclocephala）種、またはアルフィトビウス（Alphitobius）種、キイロショウジョウバエ（Drosophila）種、デリア（Delia）種、リゾトログス（Rhizotrogus）種、ポピラ（Popilla）種、アノマラ（Anomala）種またはオティオリンクス（Otiorhynchus）種の外寄生である、上記［１］に記載の方法。
［６］上記クロモバクテリウム（Chromobacterium）種がクロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）Nov株である、上記［１］に記載の方法。
［７］上記昆虫有害生物の外寄生がムスカドメスティカス（Musca domesitcas）、キイロショウジョウバエスズキ（Drosophila suzukii）、デリアラジカム（Delia radicum）、ミザスペルシカエ（Myzus persicae）、バクテリセラコッケレリ（Bactericera cockerelli）、アルフィトビウスジアペリヌスキシ（Alphitobius diaperinusxi）、シクロセファラルリダ（Cyclocephala lurida）、リゾトログスマジャリス（Rhizotrogus majalis）、ポピラジャポニカ（Popilla japonica）、オティオリンクスサルカタス（Otiorhynchus sulcatus）、アノマラオリエンタリス（Anomala orientalis）の外寄生である、上記［１］に記載の方法。
［８］上記代謝産物が、
（ａ）液体クロマトグラフィー／質量分析法（ＬＣ／ＭＳ）により決定して約８４０〜８９０の分子量を有し、（ｉｉ）約δ８．８９、８．４４、８．２４、８．２３、７．９６、７．６３、６．６６、５．４２、５．３６、５．３１、５．１０、４．１３、４．０７、４．０５、３．９６、３．９５、３．８８、３．７７、３．７３、３．５１、３．４４、３．１７、２．４０、２．２７、２．１１、２．０８、２．０３、２．０１、１．９７、１．９５、１．９０、１．８１、１．６８、１．６３、１．５７、１．５３、１．４８、１．４３、１．３５、１．２４、１．０７、１．０２、０．９６、０．８９、０．８８、０．８７、０．８０の^１ＨＮＭＲ値を有し、（ｉｉｉ）約δ１７３．６２、１７２．９２、１７２．２５、１７２．１７、１７１．６６、１７１．２８、１７０．４５、１３２．１３、１３０．０４、１２９．９８、１２９．６９、１２９．６９、１２５．４８、９８．０５、７０．１１、６９．７５、６８．３０、６８．２５、６４．３４、６０．９４、５４．５４、５２．８２、４９．７２、４８．５７、４５．６８、４０．３８、３９．９０、３８．１８、３６．６０、３１．９８、３１．６２、３１．５８、２９．５３、２８．８３、２７．７８、２４．４１、２３．０６、２２．０９、２０．５６、１９．３１、１８．７８、１７．６６、１５．８０の^１３ＣＮＭＲ値を有する化合物、
（ｂ）以下の（ｉ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種から入手可能である、（ｉｉ）有害生物に対して毒性がある、（ｉｉｉ）液体クロマトグラフィー／質量分析法（ＬＣ／ＭＳ）により決定して約８５０〜９００の分子量を有する、（ｉｖ）０．５ｍＬ／分の流量および２１０ｎｍのＵＶ検出において勾配溶媒系（０〜２０分、９０〜０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２０〜２４分、１００％ＣＨ_３ＣＮ、２４〜２７分、０〜９０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２７〜３０分、９０％水性ＣＨ_３ＣＮ）で水：アセトニトリル（ＣＨ_３ＣＮ）を使用し、逆相Ｃ−１８ＨＰＬＣ（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｌｕｎａ５μＣ１８（２）１００Ａ、１００×４．６０ｍｍ）カラムにおいて約７〜１２分の高圧液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）保持時間を有する、特性を有する化合物、
（ｃ）構造＃＃ＳＴＲ００１＃＃を有する化合物または殺有害生物剤として許容されるその塩もしくは立体異性体、

（式中、Ｒは−Ｈ、１、２、３、４、５、６、７、８または９つのアルキル部分、アリールまたはアリールアルキル部分を含有する低級鎖アルキル、置換低級アルキルであり、ＸはＯ、ＮＨ、ＮＲまたはＳであり、ｎは０、１、２、３、４、５、６、７、８または９であり、Ｒ_１、Ｒ_２、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７、Ｒ_８、Ｒ_９、Ｒ_１０、Ｒ_１１は各々独立にＨであり、同じであるかまたは異なっており、独立にアミノ酸側鎖部分またはアミノ酸側鎖誘導体、アルキル、置換アルキル、アルケニル、置換アルケニル、アルキニル、置換アルキニル、アリール、置換アリール、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、複素環、置換複素環、シクロアルキル、置換シクロアルキル、アルコキシ、置換アルコキシ、チオアルキル、置換チオアルキル、ヒドロキシ、ハロゲン、アミノ、アミド、カルボキシル、−Ｃ（Ｏ）Ｈ、アシル、オキシアシル、カルバメート、スルホニル、スルホンアミド、またはスルフリルである）
（ｄ）構造＃＃ＳＴＲ００１ａ＃＃を有する化合物、

（式中、Ｒは−Ｈ、１、２、３、４、５、６、７、８または９つのアルキル部分、アリールまたはアリールアルキル部分を含有する低級鎖アルキル、置換低級アルキルであり、ＸはＯ、ＮＨ、ＮＲまたはＳであり、Ｒ２ａ、Ｒ２ｂは−Ｈ、アルキル、低級アルキル、置換アルキルおよび置換低級アルキルからなる群から独立に選択され、Ｒ_１、Ｒ_２、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７、Ｒ_８、Ｒ_９、Ｒ_１０、Ｒ_１１は各々独立にＨであり、同じであるかまたは異なっており、独立にアミノ酸側鎖部分またはアミノ酸側鎖誘導体、アルキル、置換アルキル、アルケニル、置換アルケニル、アルキニル、置換アルキニル、アリール、置換アリール、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、複素環、置換複素環、シクロアルキル、置換シクロアルキル、アルコキシ、置換アルコキシ、チオアルキル、置換チオアルキル、ヒドロキシ、ハロゲン、アミノ、アミド、カルボキシル、−Ｃ（Ｏ）Ｈ、アシル、オキシアシル、カルバメート、スルホニル、スルホンアミド、またはスルフリルである）
（ｅ）構造＃＃ＳＴＲ００１ｂ＃＃を有する化合物、

（式中、Ｒは−Ｈ、１、２、３、４、５、６、７、８または９つのアルキル部分、アリールまたはアリールアルキル部分を含有する低級鎖アルキル、置換低級アルキルであり、ＸはＯ、ＮＨ、ＮＲまたはＳであり、ｎは０、１、２、３、４、５、６、７、８または９であり、Ｒ_２ａ、Ｒ_２ｂは−Ｈ、アルキル、低級アルキル、置換アルキルおよび置換低級アルキルからなる群から独立に選択され、Ｒ_１、Ｒ_２、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７、Ｒ_８、Ｒ_９、Ｒ_１０、Ｒ_１１は各々独立にＨであり、同じであるかまたは異なっており、独立にアミノ酸側鎖部分またはアミノ酸側鎖誘導体、アルキル、置換アルキル、アルケニル、置換アルケニル、アルキニル、置換アルキニル、アリール、置換アリール、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、複素環、置換複素環、シクロアルキル、置換シクロアルキル、アルコキシ、置換アルコキシ、チオアルキル、置換チオアルキル、ヒドロキシ、ハロゲン、アミノ、アミド、カルボキシル、−Ｃ（Ｏ）Ｈ、アシル、オキシアシル、カルバメート、スルホニル、スルホンアミド、またはスルフリルである）
（ｆ）構造＃＃ＳＴＲ００１ｃ＃＃を有する化合物、

（式中、Ｒは−Ｈ、１、２、３、４、５、６、７、８または９つのアルキル部分を含有する低級鎖アルキル、アリールまたはアリールアルキル部分、置換低級アルキルであり、ＸはＯ、ＮＨ、ＮＲまたはＳであり、ｎは０、１、２、３、４、５、６、７、８または９であり、Ｒ２ａ、Ｒ２ｂは−Ｈ、アルキル、低級アルキル、置換アルキルおよび置換低級アルキルからなる群から独立に選択され、Ｒ_１、Ｒ_２、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７、Ｒ_８、Ｒ_９、Ｒ_１０、Ｒ_１１は各々独立にＨであり、同じであるかまたは異なっており、独立にアミノ酸側鎖部分またはアミノ酸側鎖誘導体、アルキル、置換アルキル、アルケニル、置換アルケニル、アルキニル、置換アルキニル、アリール、置換アリール、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、複素環、置換複素環、シクロアルキル、置換シクロアルキル、アルコキシ、置換アルコキシ、チオアルキル、置換チオアルキル、ヒドロキシ、ハロゲン、アミノ、アミド、カルボキシル、−Ｃ（Ｏ）Ｈ、アシル、オキシアシル、カルバメート、スルホニル、スルホンアミド、またはスルフリルである）
（ｇ）以下の（ｉ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種から入手可能である、（ｉｉ）有害生物に対して毒性がある、（ｉｉｉ）液体クロマトグラフィー／質量分析法（ＬＣ／ＭＳ）により決定して約３２５〜３６０の分子量を有する、（ｉｖ）０．５ｍＬ／分の流量および２１０ｎｍのＵＶ検出において勾配溶媒系（０〜２０分、９０〜０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２０〜２４分、１００％ＣＨ_３ＣＮ、２４〜２７分、０〜９０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２７〜３０分、９０％水性ＣＨ_３ＣＮ）で水：アセトニトリル（ＣＨ_３ＣＮ）を使用し、逆相Ｃ−１８ＨＰＬＣ（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｌｕｎａ５μＣ１８（２）１００Ａ、１００×４．６０ｍｍ）カラムにおいて約８〜１４分の高圧液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）保持時間を有する、特性を有する化合物、
（ｈ）以下の（ｉ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種から入手可能である、（ｉｉ）有害生物に対して毒性がある、（ｉｉｉ）液体クロマトグラフィー／質量分析法（ＬＣ／ＭＳ）により決定して約３１５〜３５０の分子量を有する、（ｉｖ）０．５ｍＬ／分の流量および２１０ｎｍのＵＶ検出において勾配溶媒系（０〜２０分、９０〜０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２０〜２４分、１００％ＣＨ_３ＣＮ、２４〜２７分、０〜９０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２７〜３０分、９０％水性ＣＨ_３ＣＮ）で水：アセトニトリル（ＣＨ_３ＣＮ）を使用し、逆相Ｃ−１８ＨＰＬＣ（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｌｕｎａ５μＣ１８（２）１００Ａ、１００×４．６０ｍｍ）カラムにおいて約１０〜１５分の高圧液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）保持時間を有する、特性を有する化合物からなる群から選択される化合物である、上記［１］に記載の方法。
［９］上記代謝産物が、

（式中、Ｒは−Ｈ、１、２、３、４、５、６、７、８または９つのアルキル部分、アリールまたはアリールアルキル部分を含有する低級鎖アルキル、置換低級アルキル、ハロゲンであり、Ｒ_１、Ｒ_２、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７、Ｒ_８、Ｒ_９は各々独立にＨであり、同じであるかまたは異なっており、アルキル、置換アルキル、アルケニル、置換アルケニル、アルキニル、置換アルキニル、アリール、置換アリール、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、複素環、置換複素環、シクロアルキル、置換シクロアルキル、アルコキシ、置換アルコキシ、チオアルキル、置換チオアルキル、ヒドロキシ、ハロゲン、アミノ、アミド、カルボキシル、−Ｃ（Ｏ）Ｈ、アシル、オキシアシル、カルバメート、スルホニル、スルホンアミド、またはスルフリルである）構造を有するビオラセイン(violaecin)誘導体である、上記［８］に記載の方法。
［１０］上記代謝産物がビオラセイン、デオキシビオラセインおよびクロマミドＡからなる群から選択される、上記［８］に記載の方法。
［１１］上記位置において節足動物および／またはイエバエ科（Muscidae）、アリマキ科（Aphididae）、トガリキジラミ科（Triozidae）、コガネムシ科（Scarabaeidae）またはゴミムシダマシ科（Tenebrionidae）に属する１つまたは複数の昆虫有害生物の外寄生を調節するのに有効である、（ａ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種株の上清、濾過物および／または抽出物、および／または上記上清、濾過物および／または抽出物由来の１つもしくは複数の代謝産物、ならびに（ｂ）殺ダニ剤および／またはイエバエ科（Muscidae）、キイロショウジョウバエ科（Drosophilidae）、ハナバエ科（Anthomyidae）、アリマキ科（Aphididae）、トガリキジラミ科（Triozidae）、ゴミムシダマシ科（Tenebrionidae）、コガネムシ科（Scarabaiedae）に属する１つもしくは複数の昆虫有害生物に対して有効である可能性がある殺虫剤である別の殺有害生物剤物質を活性成分として含む殺有害生物剤の組合せ。
［１２］植物における有害生物外寄生を調節するための方法であって、上記有害生物外寄生を調節するのに有効である量の、
（Ｉ）（ａ）殺有害生物剤活性を有し、
（ｂ）ＬＴＱ Ｏｒｂｉｔｒａｐ ＸＬハイブリッド型フーリエ変換質量分析計により決定して約９５０〜１４５０の分子量を有し、
（ｃ）５．２２（ｓｅｘｔ、１Ｈ）、２．６２（ｄｄ、１Ｈ）、２．５３（ｄｄ、１Ｈ）、および１．３１（ｄ、３Ｈ）の^１ＨＮＭＲδ値を有し、（ｄ）１６９．２、６７．６、４０．９、および１９．８の^１３ＣＮＭＲδ値を有し、
（ｄ）構造−（−Ｏ−ＣＨＣＨ_３−ＣＨ_２−ＣＯ−）_ｎ−（式中、ｎ＝６〜５０である）を含み、
（ｅ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種から入手可能である化合物、および
（ＩＩ）場合によっては別の殺有害生物剤物質を、植物および／またはその種子および／または上記植物の成長に使用する培養基に施用することを含む方法。
［１３］化合物（Ｉ）が、

（式中、Ｘは独立に−Ｏ、−ＮＲ、または−Ｓであり、ＲはＨまたはＣ_１〜Ｃ_１０アルキルであり、Ｙは独立に−Ｏ、−Ｓであり、ｎ＝６〜５０であり、Ｒ_１、Ｒ_２は各々独立にＨ、アルキル、置換アルキル、アルケニル、置換アルケニル、アルキニル、置換アルキニル、アリール、置換アリール、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、複素環、置換複素環、シクロアルキル、置換シクロアルキル、アルコキシ、置換アルコキシ、チオアルキル、置換チオアルキル、ヒドロキシ、ハロゲン、アミノ、アミド、カルボキシル、−Ｃ（Ｏ）Ｈ、アシル、オキシアシル、カルバメート、スルホニル、スルホンアミド、またはスルフリルである）構造を有する、上記［１２］に記載の方法。
［１４］化合物（Ｉ）が、

（式中、ｎ＝１０〜２５である）構造を有する、上記［１２］に記載の方法。
［１５］有害生物が線虫または土壌媒介菌である、上記［１２］に記載の方法。
［１６］（Ｉ）（ａ）殺有害生物剤活性を有し、
（ｂ）ＬＴＱ Ｏｒｂｉｔｒａｐ ＸＬハイブリッド型フーリエ変換質量分析計により決定して約９５０〜１４５０の分子量を有し、
（ｃ）５．２２（ｓｅｘｔ、１Ｈ）、２．６２（ｄｄ、１Ｈ）、２．５３（ｄｄ、１Ｈ）、および１．３１（ｄ、３Ｈ）の^１ＨＮＭＲδ値を有し、（ｄ）１６９．２、６７．６、４０．９、および１９．８の^１３ＣＮＭＲδ値を有し、
（ｅ）構造−（−Ｏ−ＣＨＣＨ_３−ＣＨ_２−ＣＯ−）_ｎ−（式中、ｎ＝６〜５０である）を含み、
（ｆ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種から入手可能である化合物と、
（ＩＩ）場合によっては別の抗菌または殺有害生物剤物質を含む組合せ。
［１７］（ｉ）殺有害生物剤活性を有し、（ｉｉ）ＬＴＱ Ｏｒｂｉｔｒａｐ ＸＬハイブリッド型フーリエ変換質量分析計により決定して約９５０〜１４５０の分子量を有し、（ｉｉｉ）５．２２（ｓｅｘｔ、１Ｈ）、２．６２（ｄｄ、１Ｈ）、２．５３（ｄｄ、１Ｈ）、および１．３１（ｄ、３Ｈ）の^１ＨＮＭＲδ値を有し（ｉｖ）１６９．２、６７．６、４０．９、および１９．８の^１３ＣＮＭＲδ値を有し、（ｉｖ）構造−（−Ｏ−ＣＨＣＨ_３−ＣＨ_２−ＣＯ−）_ｎ−（式中、ｎ＝６〜５０である）を含み、かつ（ｖ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種から入手可能である化合物を入手するための方法であって、
（Ａ）上記化合物を生成するのに十分な条件下において全細胞培養ブロス中で、クロモバクテリウム（Chromobacterium）種株を培養すること、
（Ｂ）（Ａ）で生成した上記化合物を上記全細胞培養ブロスから単離することを含む方法。
［１８］（ａ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種、濾過物、上清、抽出物、またはそれらに由来し殺有害生物剤活性を有する殺有害生物剤活性物質および
（ｂ）リグニン塩および／または安息香酸塩である太陽光防御物質
を含む、安定状態の生物学的殺有害生物剤組成物。
［１９］上記安息香酸塩がナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、およびそれらの組合せからなる群から選択され、および／または上記リグニン塩がナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、およびそれらの組合せの中和イオン由来のリグニンスルホン酸塩から選択される、上記［１］に記載の組成物。
［２０］上記クロモバクテリウム（Chromobacterium）種がクロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）である、上記［１８］に記載の組成物。
［２１］上記クロモバクテリウム（Chromobacterium）種が少なくとも約５％の量で存在する、および／または上記太陽光防御物質が少なくとも約５％の量で存在する、上記［１８］に記載の組成物。
［２２］太陽光への露出が原因の物理的分離および活性消失に対して生物殺有害生物剤を含む組成物を安定化させるための方法であって、上記生物殺有害生物剤がクロモバクテリウム（Chromobacterium）種であり、太陽光への露出が原因の物理的分離および活性消失に対して生物学的殺有害生物剤組成物を安定化するのに有効な量の安定剤を、上記生物学的殺有害生物剤組成物に施用することを含む方法。
［２３］安定剤およびリグノスルホン酸塩を含む組成物を生成するための、安息香酸塩およびリゴンスルホン酸塩および生物殺有害生物剤からなる群から選択される安定剤の使用であって、得られた上記組成物を太陽光への露出が原因の物理的分離および活性消失に対して安定化させる使用。
クロモバクテリウムピスシンエア（Chromobacterium piscinae）、クロモバクテリウムシュードビオラセム（C.pseudoviolaceum）、クロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）、およびより詳細にはクロモバクテリウムサブスチュガエ種nov（Chromobacterium substugae sp.nov）株、およびさらにより詳細には米国特許第７，２４４，６０７号中に記載されたＮＲＲＬＢ−３０６５５の確認済みの特性を有するクロモバクテリウムサブスチュガエ種nov（Chromobacterium substugae sp.nov）株だけには限られないが、これらを含めた、クロモバクテリウム（Chromobacterium）種株、特にビオラセイン産生株の上清、濾過物および／または抽出物、および／または前記上清、濾過物および／または抽出物由来の１つまたは複数の代謝産物を含むかまたはそれらを使用する、１つまたは複数のダニ（Acari）（節足動物）、イエバエ科（Muscidae）、キイロショウジョウバエ科（Drosophilidae）、ハナバエ科（Anthomyidae）、アリマキ科（Aphididae）、トガリキジラミ科（Triozidae）、ゴミムシダマシ科（Tenebrionidae）、および／またはコガネムシ科（Scarabaiedae）有害生物の外寄生の調節のための組成物および方法を提供する。

具体的には、調節が望まれる場所における、節足動物（ダニまたはダニ目）および／またはハナバエ科（Anthomyidae）、キイロショウジョウバエ科（Drosophilidae）、イエバエ科（Muscidae）、アリマキ科（Aphididae）、トガリキジラミ科（Triozidae）、ゴミムシダマシ科（Tenebrionidae）またはコガネムシ科（Scarabaiedae）に属する一種または複数種の昆虫有害生物の外寄生を調節するための方法であって、前記場所において節足動物および／またはハナバエ科（Anthomyidae）、キイロショウジョウバエ科（Drosophilidae）、イエバエ科（Muscidae）、アリマキ科（Aphididae）、トガリキジラミ科（Triozidae）、ゴミムシダマシ科（Tenebrionidae）またはコガネムシ科（Scarabaiedae）に属する一種もしくは複数種の昆虫有害生物の外寄生を調節するのに有効である量の、（ａ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種株の上清、濾過物および／または抽出物、および／または前記上清、濾過物および／または抽出物由来の１つまたは複数の代謝産物、ならびに（ｂ）別の殺有害生物剤物質、特に殺ダニ剤および／またはダニおよび／またはハナバエ科（Anthomyidae）、キイロショウジョウバエ科（Drosophilidae）、イエバエ科（Muscidae）、アリマキ科（Aphididae）、トガリキジラミ科（Triozidae）、ゴミムシダマシ科（Tenebrionidae）もしくはコガネムシ科（Scarabaiedae family）に属する一種もしくは複数種の昆虫有害生物に対して有効である可能性がある殺虫剤を施用することを含む方法を提供する。

具体的な実施形態では、ダニの外寄生は四翅種（Tetranychidae）（コダニ）の外寄生である。より具体的な実施形態では、コダニの外寄生はテトラニチャスウルティカエ（Tetranychus urticae）の外寄生である。

別の具体的な実施形態では、昆虫有害生物の外寄生はイエバエ（Musca）種、ミザス（Myzus）種、バクテリセラ（Bactericera）種、シクロセファラ（Cyclocephala）種、またはアルフィトビウス（Alphitobius）種、キイロショウジョウバエ（Drosophila）種、デリア（Delia）種、リゾトログス（Rhizotrogus）種、ポピラ（Popilla）種、アノマラオリエンタリス（Anomala）種またはオティオリンクス（Otiorhynchus）種の外寄生である。さらにより具体的な実施形態では、昆虫有害生物の外寄生はムスカドメスティカス（Musca domesitcas）（イエバエ）、キイロショウジョウバエスズキ（Drosophila suzukii）（スポットウイングキイロショウジョウバエ）、デリアラジカム（Delia radicum）（キャベツ根蛆虫）、ミザスペルシカエ（Myzus persicae）（モモアカアブラムシ）、バクテリセラコッケレリ（Bactericera cockerelli）（ジャガイモシストセンチュウ）、アルフィトビウスジアペリヌスキシ（Alphitobius diaperinusxi）（リタービートル）、シクロセファラルリダ（Cyclocephala lurida）（ジムシ）、リゾトログスマジャリス（Rhizotrogus majalis）（ミナミメンガタカメムシ）、ポピラジャポニカ（Popilla japonica）（マメコガネ）、オティオリンクスサルカタス（Otiorhynchus sulcatus）（キンケクチブトゾウムシ）、アノマラオリエンタリス（Anomala orientalis）（セマダラコガネ）である。

ダニ（Acari）、ハナバエ科（Anthomyidae）、キイロショウジョウバエ科（Drosophilidae）、イエバエ科（Muscidae）、アリマキ科（Aphididae）、トガリキジラミ科（Triozidae）、ゴミムシダマシ科（Tenebrionidae）またはコガネムシ科（Scarabaiedae）に属する１つまたは複数の昆虫有害生物に対して有効である可能性があり、（ａ）と（ｂ）が場合によっては相乗効果量で存在し得る、（ａ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種株の上清、濾過物および／または抽出物、および／または前記上清、濾過物および／または抽出物由来の１つまたは複数の代謝産物（複数可）、および（ｂ）別の殺有害生物剤物質、特に殺ダニ剤および／または殺虫剤を活性成分として含む、ダニ（Acari）、ハナバエ科（Anthomyidae）、キイロショウジョウバエ科（Drosophilidae）、イエバエ科（Muscidae）、アリマキ科（Aphididae）、トガリキジラミ科（Triozidae）、ゴミムシダマシ科（Tenebrionidae）またはコガネムシ科（Scarabaiedae）に属する少なくとも１つの節足動物および／または１つまたは複数の昆虫有害生物の外寄生を調節する殺有害生物剤の組合せも本明細書で提供する。殺有害生物剤物質は、（ａ）微生物由来、（ｂ）天然産物および／または（ｃ）化学物質殺有害生物剤、および特に化学物質殺虫剤であってよい。

一実施形態では、代謝産物は、（ａ）殺有害生物剤活性を有し、（ｂ）液体クロマトグラフィー／質量分析法（ＬＣ／ＭＳ）により決定して約８４０〜９００の分子量を有し、かつ（ｃ）０．５ｍＬ／分の流量および２１０ｎｍのＵＶ検出において勾配溶媒系（０〜２０分、９０〜０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２０〜２４分、１００％ＣＨ_３ＣＮ、２４〜２７分、０〜９０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２７〜３０分、９０％水性ＣＨ_３ＣＮ）で水：アセトニトリル（ＣＨ_３ＣＮ）を使用し、逆相Ｃ−１８ＨＰＬＣカラムにおいて約７〜１２分の高圧液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）保持時間を有し、かつ（ｄ）場合によってはクロモバクテリウム（Chromobacterium）種から入手可能である化合物であってよい。一実施形態では、化合物はペプチドであってよい。

特定の実施形態では、化合物は、^１３ＣＮＭＲにより決定して、４３個の炭素、７個のメチル、１０個のメチレン炭素、１２個のメチン、６個のオレフィンメチン、および８個の第四級炭素を有する。さらに特定の実施形態では、化合物は、それぞれ＃＃ＳＴＲ００１＃、＃＃ＳＴＲ００１ａ＃＃、＃＃ＳＴＲ００１ｂ＃＃、＃＃ＳＴＲ００１ｃ＃＃として示す化合物「Ａ」、「Ｂ」、「Ｃ」、「Ｄ」を包含する。

具体的な一実施形態では、化合物「Ａ」は、（ａ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種から入手可能であり、（ｂ）有害生物に対して毒性があり、（ｃ）液体クロマトグラフィー／質量分析法（ＬＣ／ＭＳ）により決定して約８４０〜８９０、およびより詳細には８６０の分子量を有し、（ｄ）δ８．８９、８．４４、８．２４、８．２３、７．９６、７．６３、６．６６、５．４２、５．３６、５．３１、５．１０、４．１３、４．０７、４．０５、３．９６、３．９５、３．８８、３．７７、３．７３、３．５１、３．４４、３．１７、２．４０、２．２７、２．１１、２．０８、２．０３、２．０１、１．９７、１．９５、１．９０、１．８１、１．６８、１．６３、１．５７、１．５３、１．４８、１．４３、１．３５、１．２４、１．０７、１．０２、０．９６、０．８９、０．８８、０．８７、０．８０の^１ＨＮＭＲ値を有し、δ１７３．６２、１７２．９２、１７２．２５、１７２．１７、１７１．６６、１７１．２８、１７０．４５、１３２．１３、１３０．０４、１２９．９８、１２９．６９、１２９．６９、１２５．４８、９８．０５、７０．１１、６９．７５、６８．３０、６８．２５、６４．３４、６０．９４、５４．５４、５２．８２、４９．７２、４８．５７、４５．６８、４０．３８、３９．９０、３８．１８、３６．６０、３１．９８、３１．６２、３１．５８、２９．５３、２８．８３、２７．７８、２４．４１、２３．０６、２２．０９、２０．５６、１９．３１、１８．７８、１７．６６、１５．８０の^１３ＣＮＭＲ値を有し、（ｅ）０．５ｍＬ／分の流量および２１０ｎｍのＵＶ検出において勾配溶媒系（０〜２０分、９０〜０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２０〜２４分、１００％ＣＨ_３ＣＮ、２４〜２７分、０〜９０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２７〜３０分、９０％水性ＣＨ_３ＣＮ）で水：アセトニトリル（ＣＨ_３ＣＮ）を使用し、逆相Ｃ−１８ＨＰＬＣ（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｌｕｎａ５μＣ１８（２）１００Ａ、１００×４．６０ｍｍ）カラムにおいて約７〜１２分、より具体的には約９分、およびより一層具体的には約９．０８分の高圧液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）保持時間を有する。

別の具体的な実施形態では、化合物「Ｂ」は、以下の（ａ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種から入手可能である、（ｂ）有害生物に対して毒性がある、（ｃ）液体クロマトグラフィー／質量分析法（ＬＣ／ＭＳ）により決定して約８５０〜９００、およびより詳細には８７４の分子量を有する、（ｄ）０．５ｍＬ／分の流量および２１０ｎｍのＵＶ検出において勾配溶媒系（０〜２０分、９０〜０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２０〜２４分、１００％ＣＨ_３ＣＮ、２４〜２７分、０〜９０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２７〜３０分、９０％水性ＣＨ_３ＣＮ）で水：アセトニトリル（ＣＨ_３ＣＮ）を使用し、逆相Ｃ−１８ＨＰＬＣ（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｌｕｎａ５μＣ１８（２）１００Ａ、１００×４．６０ｍｍ）カラムにおいて約７〜１２分、より具体的には約９分、およびより一層具体的には約９．５４分の高圧液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）保持時間を有する、特性を有する。

代謝産物は、
（Ａ）構造＃＃ＳＴＲ００１＃＃を有する化合物または殺有害生物剤として許容されるその塩もしくは立体異性体、

（式中、Ｒは−Ｈ、１、２、３、４、５、６、７、８または９つのアルキル部分、アリールまたはアリールアルキル部分を含有する低級鎖アルキル、置換低級アルキルであり、ＸはＯ、ＮＨ、ＮＲまたはＳであり、ｎは０、１、２、３、４、５、６、７、８または９であり、Ｒ_１、Ｒ_２、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７、Ｒ_８、Ｒ_９、Ｒ_１０、Ｒ_１１は各々独立にＨであり、同じであるかまたは異なっており、独立にアミノ酸側鎖部分またはアミノ酸側鎖誘導体、アルキル、置換アルキル、アルケニル、置換アルケニル、アルキニル、置換アルキニル、アリール、置換アリール、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、複素環、置換複素環、シクロアルキル、置換シクロアルキル、アルコキシ、置換アルコキシ、チオアルキル、置換チオアルキル、ヒドロキシ、ハロゲン、アミノ、アミド、カルボキシル、−Ｃ（Ｏ）Ｈ、アシル、オキシアシル、カルバメート、スルホニル、スルホンアミド、またはスルフリルである）
（Ｂ）構造＃＃ＳＴＲ００１ａ＃＃を有する化合物、

（式中、Ｒは−Ｈ、１、２、３、４、５、６、７、８または９つのアルキル部分、アリールまたはアリールアルキル部分を含有する低級鎖アルキル、置換低級アルキルであり、ＸはＯ、ＮＨ、ＮＲまたはＳであり、Ｒ_２ａ、Ｒ_２ｂは−Ｈ、アルキル、低級アルキル、置換アルキルおよび置換低級アルキルからなる群から独立に選択され、Ｒ_１、Ｒ_２、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７、Ｒ_８、Ｒ_９、Ｒ_１０、Ｒ_１１は各々独立にＨであり、同じであるかまたは異なっており、独立にアミノ酸側鎖部分またはアミノ酸側鎖誘導体、アルキル、置換アルキル、アルケニル、置換アルケニル、アルキニル、置換アルキニル、アリール、置換アリール、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、複素環、置換複素環、シクロアルキル、置換シクロアルキル、アルコキシ、置換アルコキシ、チオアルキル、置換チオアルキル、ヒドロキシ、ハロゲン、アミノ、アミド、カルボキシル、−Ｃ（Ｏ）Ｈ、アシル、オキシアシル、カルバメート、スルホニル、スルホンアミド、またはスルフリルである）
（Ｃ）構造＃＃ＳＴＲ００１ｂ＃＃を有する化合物、

（式中、Ｒは−Ｈ、１、２、３、４、５、６、７、８または９つのアルキル部分、アリールまたはアリールアルキル部分を含有する低級鎖アルキル、置換低級アルキルであり、ＸはＯ、ＮＨ、ＮＲまたはＳであり、ｎは０、１、２、３、４、５、６、７、８または９であり、Ｒ_２ａ、Ｒ_２ｂは−Ｈ、アルキル、低級アルキル、置換アルキルおよび置換低級アルキルからなる群から独立に選択され、Ｒ_１、Ｒ_２、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７、Ｒ_８、Ｒ_９、Ｒ_１０、Ｒ_１１は各々独立にＨであり、同じであるかまたは異なっており、独立にアミノ酸側鎖部分またはアミノ酸側鎖誘導体、アルキル、置換アルキル、アルケニル、置換アルケニル、アルキニル、置換アルキニル、アリール、置換アリール、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、複素環、置換複素環、シクロアルキル、置換シクロアルキル、アルコキシ、置換アルコキシ、チオアルキル、置換チオアルキル、ヒドロキシ、ハロゲン、アミノ、アミド、カルボキシル、−Ｃ（Ｏ）Ｈ、アシル、オキシアシル、カルバメート、スルホニル、スルホンアミド、またはスルフリルである）
（Ｄ）構造＃＃ＳＴＲ００１ｃ＃＃を有する化合物、

（式中、Ｒは−Ｈ、１、２、３、４、５、６、７、８または９つのアルキル部分を含有する低級鎖アルキル、アリールまたはアリールアルキル部分、置換低級アルキルであり、ＸはＯ、ＮＨ、ＮＲまたはＳであり、ｎは０、１、２、３、４、５、６、７、８または９であり、Ｒ２ａ、Ｒ２ｂは−Ｈ、アルキル、低級アルキル、置換アルキルおよび置換低級アルキルからなる群から独立に選択され、Ｒ_１、Ｒ_２、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７、Ｒ_８、Ｒ_９、Ｒ_１０、Ｒ_１１は各々独立にＨであり、同じであるかまたは異なっており、独立にアミノ酸側鎖部分またはアミノ酸側鎖誘導体、アルキル、置換アルキル、アルケニル、置換アルケニル、アルキニル、置換アルキニル、アリール、置換アリール、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、複素環、置換複素環、シクロアルキル、置換シクロアルキル、アルコキシ、置換アルコキシ、チオアルキル、置換チオアルキル、ヒドロキシ、ハロゲン、アミノ、アミド、カルボキシル、−Ｃ（Ｏ）Ｈ、アシル、オキシアシル、カルバメート、スルホニル、スルホンアミド、またはスルフリルである）だけには限られないが、これらを含めた化合物であってもよい。

より特定の実施形態では、代謝産物はクロマミドＡ（１）である。

特定の実施形態では、代謝産物は、以下の（ａ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種から入手可能である、（ｂ）１つまたは複数の有害生物に対して毒性がある、（ｃ）液体クロマトグラフィー／質量分析法（ＬＣ／ＭＳ）により決定して約３２５〜３６０、およびより詳細には３４３の分子量を有する、（ｄ）０．５ｍＬ／分の流量および２１０ｎｍのＵＶ検出において勾配溶媒系（０〜２０分、９０〜０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２０〜２４分、１００％ＣＨ_３ＣＮ、２４〜２７分、０〜９０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２７〜３０分、９０％水性ＣＨ_３ＣＮ）で水：アセトニトリル（ＣＨ_３ＣＮ）を使用し、逆相Ｃ−１８ＨＰＬＣ（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｌｕｎａ５μＣ１８（２）１００Ａ、１００×４．６０ｍｍ）カラムにおいて約８〜１４分、より具体的には約１０分、およびより一層具体的には約１０．８８分の高圧液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）保持時間を有する、特性を有する化合物「Ｃ」である。特定の実施形態では、化合物「Ｃ」はビオラセイン（２）、クロモバクテリウムビオラセウム（Chromobacterium violaceum）から初期に単離した周知の化合物であってよい。

別の実施形態では、前述の組成物および方法において使用する別の代謝産物は、以下の（ａ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種から入手可能である、（ｂ）有害生物に対して毒性がある、（ｃ）液体クロマトグラフィー／質量分析法（ＬＣ／ＭＳ）により決定して約３１５〜３５０、およびより詳細には３２７の分子量を有する、（ｄ）０．５ｍＬ／分の流量および２１０ｎｍのＵＶ検出において勾配溶媒系（０〜２０分、９０〜０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２０〜２４分、１００％ＣＨ_３ＣＮ、２４〜２７分、０〜９０％水性ＣＨ_３ＣＮ、２７〜３０分、９０％水性ＣＨ_３ＣＮ）で水：アセトニトリル（ＣＨ_３ＣＮ）を使用し、逆相Ｃ−１８ＨＰＬＣ（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｌｕｎａ５μＣ１８（２）１００Ａ、１００×４．６０ｍｍ）カラムにおいて約１０〜１５分、より具体的には約１２分、およびより一層具体的には約１２．６９分の高圧液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）保持時間を有する、特性を有する化合物「Ｄ」である。特定の実施形態では、化合物「Ｄ」はデオキシビオラセイン（３）、クロモバクテリウムビオラセウム（Chromobacterium violaceum）から初期に単離した周知の化合物として特徴付けることができる。

別の具体的な実施形態では、化合物は以下の

（式中、Ｒは−Ｈ、１、２、３、４、５、６、７、８または９つのアルキル部分、アリールまたはアリールアルキル部分を含有する低級鎖アルキル、置換低級アルキル、ハロゲンであり、Ｒ_１、Ｒ_２、Ｒ_３、Ｒ_４、Ｒ_５、Ｒ_６、Ｒ_７、Ｒ_８、Ｒ_９は各々独立にＨであり、同じであるかまたは異なっており、アルキル、置換アルキル、アルケニル、置換アルケニル、アルキニル、置換アルキニル、アリール、置換アリール、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、複素環、置換複素環、シクロアルキル、置換シクロアルキル、アルコキシ、置換アルコキシ、チオアルキル、置換チオアルキル、ヒドロキシ、ハロゲン、アミノ、アミド、カルボキシル、−Ｃ（Ｏ）Ｈ、アシル、オキシアシル、カルバメート、スルホニル、スルホンアミド、またはスルフリルである）構造を有することができる。

（１）植物における有害生物（例えば、線虫、昆虫、土壌媒介菌）の外寄生を調節するための方法、または土壌中の土壌媒介菌を調節するための方法であって、
前記植物における外寄生を調節するのに有効である量の、
（Ｉ）（ａ）殺有害生物剤および／または抗菌活性を有し、
（ｂ）ＬＴＱ Ｏｒｂｉｔｒａｐ ＸＬハイブリッド型フーリエ変換質量分析計により決定して約９５０〜１４５０の分子量を有し、
（ｃ）５．２２（ｓｅｘｔ、１Ｈ）、２．６２（ｄｄ、１Ｈ）、２．５３（ｄｄ、１Ｈ）、および１．３１（ｄ、３Ｈ）の１ＨＮＭＲδ値を有し、１６９．２、６７．６、４０．９、および１９．８の１３ＣＮＭＲδ値を有し、
（ｄ）構造−（−Ｏ−ＣＨＣＨ３−ＣＨ２−ＣＯ−）ｎ−（式中、ｎ＝６〜５０である）を含み、
（ｅ）クロモバクテリウム（Chromobacterium）種から入手可能である化合物、および
（ＩＩ）場合によっては別の殺有害生物剤物質を、植物および／またはその種子および／または前記植物の成長に使用する培養基に施用することを含む方法をさらに提供する。

化合物（Ｉ）は、

（式中、Ｘは独立に−Ｏ、−ＮＲ、または−Ｓであり、ＲはＨまたはＣ_１〜Ｃ_１０アルキルであり、Ｙは独立に−Ｏ、−Ｓであり、ｎ＝６〜５０であり、Ｒ_１、Ｒ_２は各々独立にＨ、アルキル、置換アルキル、アルケニル、置換アルケニル、アルキニル、置換アルキニル、アリール、置換アリール、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、複素環、置換複素環、シクロアルキル、置換シクロアルキル、アルコキシ、置換アルコキシ、チオアルキル、置換チオアルキル、ヒドロキシ、ハロゲン、アミノ、アミド、カルボキシル、−Ｃ（Ｏ）Ｈ、アシル、オキシアシル、カルバメート、スルホニル、スルホンアミド、またはスルフリルである）構造を有することができる。

特に化合物（Ｉ）は、

（式中、ｎ＝１０〜２５である）構造を有する。

最も具体的な実施形態では、（Ｉ）はアルファ酪酸である。

前述の化合物を入手するための方法をさらに提供する。この方法は、化合物を生成するのに十分な条件下において全細胞ブロス中でクロモバクテリウム（Chromobacterium）種株を培養すること、および全細胞ブロスから生成した化合物を単離することを含む。

関連態様では、太陽光への露出が原因の物理的分離および活性消失に対して生物殺有害生物剤組成物を安定化させるための方法であって、太陽光への露出が原因の物理的分離および活性消失に対して生物殺有害生物剤組成物を安定化するのに有効な量の安定剤を、前記生物殺有害生物剤組成物に施用することを含む方法を開示する。このような作用物質を含む組成物も提供する。特定の実施形態では、殺有害生物剤組成物は、少なくとも約０．５％、および特に乾燥細胞重量に基づいて約０．５ｗｔ％から約３０ｗｔ％の間の量で存在してよい、クロモバクテリウム（Chromobacterium）種、濾過物、上清、抽出物、またはそれらに由来する殺有害生物剤活性物質を含む。特定の実施形態では、安定剤は、ナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、アンモニウム、およびそれらの組合せだけには限られないが、これらを含めた、安息香酸塩および／またはリグニン塩、特にリグニンスルホン酸塩であってよく、少なくとも約２．５ｗｔ％の量で存在してよく、約５％〜１５％の量で存在し得ることが好ましい。

細胞培養ブロスからクロマミドＡ（１）ビオラセイン（２）およびデオキシビオラセイン（３）を入手するための精製スキームの概略図である。 クロマミドＡ（１）ビオラセイン（２）およびデオキシビオラセイン（３）に関する化学構造を示す図である。 ＭＢＩ−２０３ ＴＳＳＭリーフディスクアッセイからの結果を示す図である。ＣＦＤは凍結乾燥した細胞を表し、次いでそれらを水に加えて元に戻し、元の全細胞培養ブロスの１／２倍、１倍および２．５倍用量を表した。 ＭＢＩ−２０３処理ペッパーリーフに曝したジャガイモシストセンチュウのメスが産んだ卵の平均数を示す図である。 ＭＢＩ−２０３処理および未処理ペッパーリーフディスクに曝した５日後に、ジャガイモシストセンチュウのメスが産んだ卵の平均数を示す図である。 成虫を曝した２４時間後の処理済ペッパーリーフディスクにおける、モモアカアブラムシ（ＧＰＡ）若虫および成虫の平均数を示す図である（Ｐ＜０．０００１、ＬＳＤ、α＝０．０５）。同一文字の平均は統計上互いに異ならない。ｄＨ２Ｏ−陰性対照、２０３ １０％ｖ／ｖ−陽性対照。 成虫を曝した３日後のＭＢＩ−２０３処理済ペッパーリーフディスクにおける、モモアカアブラムシの子孫（若虫）の平均数を示す図である（Ｐ＜０．０００１、ＬＳＤ、α＝０．０５）。同一文字の平均は統計上互いに異ならない。ｄＨ_２Ｏ−陰性対照、Ａｖｉｄ １０％ｖ／ｖ−陽性対照。 成虫を曝した３日後のＭＢＩ−２０３およびＤＦ２（ＭＢＩ−２０３配合製品）処理済ペッパーリーフディスクにおける、モモアカアブラムシの子孫（若虫）の平均数を示す図である（Ｐ＜０．０００１、ＬＳＤ、α＝０．０５）。同一文字の平均は統計上互いに異ならない。ｄＨ_２Ｏ−陰性対照、Ａｖｉｄ １０％ｖ／ｖ−陽性対照。 細胞培養ブロスからのビオラセイン（２）およびオリゴ−（β−ヒドロキシ酪酸（４）に関する精製スキームの概略図である。 様々な画分および化合物オリゴ−ヒドロキシ酪酸（１）の抗線虫バイオアッセイの結果を示す図である。 露出後２４時間での処理済ペッパーリーフディスクにおける、モモアカアブラムシ、ミザスペルシカエ（Myzus persicae）（若虫および成虫）の平均数を示す図である。同一文字の平均は統計上互いに異ならない（ＬＳＤ、Ｐ＜０．０００１、α＝０．０５）。２０３Ｍｅ−メタノール溶媒中のＭＢＩ−２０３粗製抽出物、Ｍｅ−メタノール（対照処理）、２０３、Ａｃｅ−アセトン溶媒中のＭＢＩ−２０３粗製抽出物、Ａｃｅ−アセトン（対照処理）、ｄＨ_２Ｏ−陰性対照、Ａｖｉｄ １０％ｖ／ｖ−陽性対照。 露出後２４時間での処理済ペッパーリーフディスクにおける、モモアカアブラムシ、ミザスペルシカエ（Myzus persicae）（若虫および成虫）の平均数を示す図である。同一文字の平均は統計上互いに異ならない（ＬＳＤ、Ｐ＜０．０００１、α＝０．０５）。２０３Ｍｅ−メタノール溶媒中のＭＢＩ−２０３粗製抽出物、Ｍｅ−メタノール（対照処理）、２０３、Ａｃｅ−アセトン溶媒中のＭＢＩ−２０３粗製抽出物、Ａｃｅ−アセトン（対照処理）、ｄＨ_２Ｏ−陰性対照、Ａｖｉｄ １０％ｖ／ｖ−陽性対照。 露出後２４時間での処理済ペッパーリーフディスクにおける、モモアカアブラムシ、ミザスペルシカエ（Myzus persicae）（若虫および成虫）の平均数を示す図である。同一文字の平均は統計上互いに異ならない。Ａｃｅ−アセトンのみ（対照処理、ＤＣＭ−、ＥＡ−、洗浄−、ＭｅＯＨ−．ｄＨ_２Ｏ−陰性対照、２０３ １０％−ＭＢＩ−２０３ｓｔｄ（陽性対照）。 露出後２４時間での処理済ペッパーリーフディスクにおける、モモアカアブラムシ、ミザスペルシカエ（Myzus persicae）（若虫および成虫）の平均数を示す図である。同一文字の平均は統計上互いに異ならない。Ａｃｅ−アセトンのみ（対照処理、ＤＣＭ−、ＥＡ−、洗浄−、ＭｅＯＨ−．ｄＨ_２Ｏ−陰性対照、２０３ １０％−ＭＢＩ−２０３ｓｔｄ（陽性対照）。 成虫を曝した３日後の処理済ペッパーリーフディスクにおける、モモアカアブラムシの子孫（若虫）の平均数を示す図である（Ｐ＜０．００１８、ＬＳＤ、α＝０．０５）。同一文字の平均は統計上互いに異ならない。ＶＬ１−０．５μｇ／ｍＬのビオラセイン、ＶＬ２−１．０μｇ／ｍＬのビオラセイン、アセトン−対照処理、ｄＨ_２Ｏ−陰性対照、Ａｖｉｄ １０％ｖ／ｖ−陽性対照。 成虫を曝した２４時間後の処理済ペッパーリーフディスクにおける、モモアカアブラムシ（ＧＰＡ）若虫および成虫の平均数を示す図である（Ｐ＜０．０００１、ＬＳＤ、α＝０．０５）。同一文字の平均は統計上互いに異ならない。ｄＨ_２Ｏ−陰性対照、２０３ １０％ｖ／ｖ−陽性対照。 成虫を曝した２４時間後の処理済ペッパーリーフディスクにおける、モモアカアブラムシ（ＧＰＡ）若虫および成虫の平均数を示す図である（Ｐ＜０．０００１、ＬＳＤ、α＝０．０５）。同一文字の平均は統計上互いに異ならない。ｄＨ_２Ｏ−陰性対照、２０３ １０％ｖ／ｖ−陽性対照。 水にゼロ合わせした、ＭＢＩ−２０３＠３％の露光前と露光後の死亡率を示す図である。 ＭＢＩ−２０３：キャベツ類植物アブラムシ用スプレーＥＰ／ＥＰ＋安息香酸Ｎａを示す図である。 補正したＭＢＩ−２０３ＥＰ＋／−安息香酸Ｎａ、キャベツ類植物アブラムシ用スプレーを示す図である。 陰性対照に標準化した、露光前／露光後のＭＢＩ−２０３：ＥＰ＋ＣａＣＯ３／安息香酸Ｎａを示す図である。 アッセイ３日と６日での、露光後のＭＢＩ−２０３ ＥＰ ＳＤＰを示す図である。 補正したアッセイ４日目での、太陽光中でのＭＢＩ−２０３ ＥＰｗ／安息香酸Ｎａ＋リグニンを示す図である。 アッセイ４日目での、太陽光中でのＭＢＩ−２０３ ＥＰｗ／安息香酸Ｎａ＋リグニン、活性消失率を示す図である。 アッセイ３日目での、ＭＢＩ−２０３：ＥＰ＋リグニン＋太陽光、ブロッコリーＣＬを示す図である。

本明細書中の組成物および方法は様々な変更形態および代替形の影響を受けやすいが、例示的な実施形態を本明細書中で詳細に記載する。しかしながら、開示する特定の形に本発明を限定する意図はなく、そうではなく逆に本発明は、添付の特許請求の範囲によって定義される、本発明の精神および範囲内にある全ての変更形態、均等物、および代替を包含することは理解されるはずである。

一定範囲の値を提供する場合、各々の介在値、文脈が他のことを明らかに示さない限り下限単位の十分の一まで、その範囲の上限と下限の間、およびその言及範囲の任意の他の言及もしくは介在値が、その中に含まれることは理解される。より狭い範囲も含まれる。言及範囲の任意の具体的に排除される限界を考慮して、これらのより狭い範囲の上限と下限もその中に含まれる。

他に定義しない限り、本明細書中で使用する全ての技術および科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者により一般的に理解されるのと同じ意味を有するものとする。本明細書中に記載するのと類似または同等の任意の方法および材料を、本発明の実践または試験において使用することも可能であるが、好ましい方法および材料をここで記載する。

本明細書中および添付の特許請求の範囲中で使用するように、文脈が他のことを明らかに示さない限り、単数形「ａ」、「ａｎｄ」および「ｔｈｅ」は複数形を含むことを記さなければならない。

本明細書中で定義する「由来」は、特定供給源から直接単離もしくは入手すること、または代替的に特定供給源から単離もしくは入手した物質もしくは生物の確認済みの特性を有することを意味する。

本明細書中で定義する「担体」は、活性成分と一緒に混合または配合して、処理対象の植物もしくは他の物体へのその施用、またはその保存、輸送および／または処理を容易にする不活性の、有機または無機物質である。

本明細書中で定義する用語「調節」を使用して、有害生物外寄生の量または有害生物外寄生の拡大率を変えることを意味する。

本明細書中で定義する用語「有害生物外寄生」は、宿主集団内の疾患もしくは内寄生または成長系内の望ましくない雑草の出現を含めた、有害な効果を引き起こす量の有害生物の存在である。

本明細書中で定義する「殺有害生物剤」は、植物有害生物の死亡率を高めるかまたは増殖率を抑制する生物製品もしくは化学物質由来の物質であり、抗線虫薬、殺虫剤、除草剤、植物用抗真菌剤、植物用殺菌剤、および植物用抗ウイルス剤だけには限られないが、これらを含む。

本明細書中で定義する「生物殺有害生物剤」は、殺有害生物剤的性質を有する微生物である。

生成の方法
前述のように生物殺有害生物剤は、クロモバクテリウム（Chromobacterium）種の確認済みの特性を有する生物、より詳細にはクロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）株の確認済みの特性を有する生物、より詳細にはＮＲＲＬＢ−３０６５５の確認済みの特性を有し得るクロモバクテリウムサブスチュガエ種nov（Chromobacterium substugae sp.nov）株、または代替的に任意の他の微生物を含む、またはその生物に由来する可能性がある。本発明の方法は、これらの生物を培養すること、およびこれらの生物の培養物からのこれらの化合物の単離によって、本発明の化合物および／または組成物を入手することを含む。

特に、当技術分野で知られている方法を使用し栄養培地中で生物を培養する。細胞増殖を可能にするのに適した培地および条件下において実施し、研究室または工業用発酵槽中で、攪拌フラスコ培養、（連続、バッチ、供給バッチ、もしくは固形状態発酵だけには限られないが、これらを含めた）小規模もしくは大規模発酵によって、生物を培養することができる。当技術分野で知られている手順を使用して、炭素および窒素源および無機塩を含む適切な栄養培地中で、培養を実施することができる。利用可能な適切な培地は市販の供給源から入手することができ、または公開済みの組成に従い調製することができる。

培養後、本発明の化合物および／または組成物を細胞培養ブロスから抽出することができる。抽出物はクロマトグラフィーにより分画化することができる。

組成物
本明細書中に開示する組成物および方法において使用する前述の物質は、任意の形式で配合することができる。非制限的な配合物の例には、エマルジョン化可能濃縮物（ＥＣ）、湿潤性粉末（ＷＰ）、可溶性液体（ＳＬ）、エアロゾル、超低量濃縮溶液（ＵＬＶ）、可溶性粉末（ＳＰ）、マイクロカプセル化物質、水中分散性顆粒剤、流動性物質（ＦＬ）、マイクロエマルジョン（ＭＥ）、ナノエマルジョン（ＮＥ）などがあるが、これらだけには限られない。本明細書中に記載する任意の配合物において、活性成分の割合は０．０１％〜９９．９９％の範囲内である。

組成物は液体、ゲルまたは固体の形であってよい。液体組成物は、クロモバクテリウム（Chromobacterium）株、例えばクロモバクテリウムサブスチュガエ種Nov（Chromobacterium substugae sp.Nov）の確認済みの特性を有する株、およびより詳細にはＮＲＲＬＢ−３０６５５の確認済みの特性を有する株（米国特許第７，２４４，６０７号参照）由来の殺有害生物剤化合物を含む。

固形組成物は、殺有害生物剤化合物の溶液中に固形担体を懸濁し、室温での蒸発または６５℃以下での真空蒸発などの穏やかな条件下で、懸濁液を乾燥させることによって調製することができる。

組成物は、クロモバクテリウム（Chromobacterium）株由来のゲルカプセル化合物を含むことができる。このようなゲルカプセル材料は、ゲル形成物質（例えば、ゼラチン、セルロース、またはリグニン）と、生もしくは不活化クロモバクテリウム（Chromobacterium）の培養物もしくは懸濁液、またはクロモバクテリウム（Chromobacterium）の培養物もしくは懸濁液の無細胞濾過物もしくは細胞画分、または噴霧もしくは凍結乾燥培養物、本発明の方法中で使用する殺有害生物剤化合物の溶液中の細胞もしくは細胞画分を混合し、作用物質のゲル形成を誘導することによって調製することができる。

組成物は、活性成分のエマルジョン化、分散、湿潤、拡散、統合、崩壊防除、安定化、および流動性の改善または錆抑制の目的で使用する界面活性剤を追加的に含むことができる。特定の実施形態では、界面活性剤は、好ましくはＥＰＡ Ｉｎｅｒｔｓ Ｌｉｓｔ ４Ｂに属する非植物毒性非イオン性界面活性剤である。別の特定の実施形態では、非イオン性界面活性剤はポリオキシエチレン（２０）モノラウレートである。界面活性剤の濃度は配合物全体の０．１〜３５％の範囲であってよく、好ましい範囲は５〜２５％である。非イオン性、アニオン性、両性およびカチオン性分散剤および乳化剤などの分散剤および乳化剤、ならびに利用する量の選択は、組成物の性質、および本発明の組成物の分散を容易にする作用物質の能力によって決定する。

前述の組成物は、太陽光への露出が原因の物理的分離および活性消失に対して生物殺有害生物剤組成物を安定化させる安定剤も含む。この安定剤は、安息香酸塩またはリグニンスルホン酸塩であってよい。

前述の組成物は、別の微生物および／または殺有害生物剤（例えば、抗線虫薬、抗真菌剤、殺虫剤、抗生物質または抗菌剤）と組合せることができる。微生物は、バシラス（Bacillus）種、シュードモナス（Pseudomonas）種、ブレババシラス（Brevabacillus）種、レカニシリウム（Lecanicillium）種、非アンペロマイセス（non-Ampelomyces ）種、シュードザイマ（Pseudozyma）種、ストレプトマイセス（Streptomyces）種、バークホルデリア（Burkholderdia）種、トリコデルマ（Trichoderma）種、グリオクラジウム（Gliocladium）種由来の作用物質だけには限られないが、これらを含むことができる。あるいは作用物質は、抗真菌および／または殺虫活性を有する天然油または油製品であってよい（例えば、パラフィンオイル、チャノキオイル、レモングラスオイル、丁子油、シナモンオイル、シトラスオイル、ローズマリーオイル）。さらに殺有害生物剤は、ベンズイミダゾール、脱メチル化阻害剤（ＤＭＩ）（例えば、イミダゾール、ピペラジン、ピリミジン、トリアゾール）、モルホリン、ヒドロキシピリミジン、アニリノピリミジン、ホスホロチオレート、キノン外部阻害剤、キノリン、ジカルボキシミド、カルボキシミド、フェニルアミド、アニリノピリミジン、フェニルピロール、芳香族炭化水素、桂皮酸、ヒドロキシアニリド、抗生物質、ポリオキシン、アシルアミン、フタリミド、ベンゼノイド（キシリルアラニン）、イミダゾール、ピペラジン、ピリミジンおよびトリアゾール（例えば、ビテルタノール、マイクロブタニル、ペンコナゾール、プロピコナゾール、トリアジメフォン、ブロムコナゾール、シプロコナゾール、ジニコナゾール、フェンブコナゾール、ヘキサコナゾール、テブコナゾール、テトラコナゾール）、マイクロブタニルからなる群から選択される脱メチル化阻害剤、およびキノン外部阻害剤（例えば、ストロビルリン）だけには限られないが、これらを含み得る１箇所への抗真菌剤であってよい。ストロビルリンは、アゾキシストロビン、クレソキシム−メトイルまたはトリフロキシストロビンだけには限られないが、これらを含むことができる。さらに別の特定の実施形態では、抗真菌剤は、キノン、例えばキノキシフェン（５，７−ジクロロ−４−キノリル４−フルオロフェニルエーテル）である。抗真菌剤は、レイノウトリア（Reynoutria）抽出物から誘導することもできる。

抗真菌剤は、クロロニトリル、キノキサリン、スルファミド、ホスホネート、ホスファイト、ジチオカルバメート、クロルアルキルチオ、フェニルピリジン−アミン、シアノ−アセトアミドオキシムからなる群から選択される複数箇所への有機、化学物質抗真菌剤であってもよい。

前述のように組成物は、殺虫剤をさらに含むことができる。殺虫剤は、アベルメクチン、Ｂｔ、ニームオイル、スピノサド、米国特許出願公開第２０１１−０２０７６０４中で言及されたバークホルデリア（Burkholderdia）種用殺虫剤、ベアウベリアバシアナ（Beauveria bassiana）のような昆虫病原性真菌、ならびに有機塩素系殺虫剤、有機リン殺虫剤、カルバメート、ピレスロイド、およびネオニコチノイドを非制限的に含む化学物質殺虫剤だけには限られないが、これらを含むことができる。

前述のように、組成物は抗線虫薬をさらに含むことができる。この抗線虫薬は、アベルメクチン、バイオーム（バチルスフィルムス（Bacillus firmus））、パステウリア（Pasteuria）種などの微生物用製品、およびサポニンなどの有機物製品だけには限られないが、これらを含むことができる。

使用
前述の組成物、培養物および上清および殺有害生物剤化合物は、殺有害生物剤として使用することができる。特に、前述の化合物または組成物は殺虫剤、（土壌媒介菌に対する）殺菌剤および抗線虫薬として使用することができる。具体的には、前述の方法を使用して防除することができる線虫には、メロイドジン（Meloidogyne）種、チレンコルヒンチャス（Tylenchorhynchus）種、ホプロライムス（Hoplolaimus）種、ヘリコティレンクス（Helicotylenchus）種、プラティレンクス（Pratylenchus）種、ヘテロデラ（Heterodera）種、グロボデラ（Globodera）種、トリコドルス（Trichodorus）種、パラトリコドルス（Paratrichodorus）種、キシフェネア（Xiphinema）種、およびクリコネマ（Criconema）種、特にメロイドジンインコグニタ（Meloidogyne incognita）（根瘤線虫）、ならびにグロボデラロストシエンシス（Globodera rostochiensis）およびグロボデラパイリダ（globodera pailida）（ジャガイモシストセンチュウ）、ヘテロデラグリシン（Heterodera glycines）（ダイズシストセンチュウ）、ヘテロデラスチャッチ（Heterodera schachtii）（ビートシストセンチュウ）、およびヘテロデラアビーナ（Heterodera avenae）（シリアルシストセンチュウ）を非制限的に含めた、根瘤、シスト、および病変線虫などの寄生線虫だけには限られないが、これらを含む。

前述のように、前述の活性成分（複数可）および組成物は、パノニカスシトリ（Panonychus citri）（柑橘ハダニ）、およびパノニカスウルミ（Panonychus ulmi）（アカハダニ）などのパノニカス（Panonychus）種、テトラニカスカンザビ（Tetranychus kanzawi）（カンザワハダニ）、テトラニカスウルティカエ（Tetranychus urticae）（２スポットハダニ）、テトラニカスパシフィカス（Tetranychus pacificus）（パシフィックハダニ）、テトラニカスツルケスタニ（Tetranychus turkestanii）（イチゴダニ）、およびテトラニカスシンナバリヌス（Tetranychus cinnabarinus）（カルミンハダニ）などのテトラニカス（Tetranychus）種、オリゴニカスパニカエ（Oligonychus panicae）（アボカドチャダニ）、オリゴニカスペルセアエ（Oligonychus perseae）（クスノキダニ）、オリゴニカスプラテンシス（Oligonychus pratensis）（バンクスグラスダニ）、およびオリゴニカスコフェア（Oligonychus coffeae）などのオリゴニカス（Oligonychus）種、アクラスコロナタス（Aculus cornatus）（ピーチシルバーダニ）、アクラスフォッケニ（Aculus fockeni）（プラムサビダニ）、およびアクラスリコペルシシ（Aculus lycopersici）（トマトサビダニ）などのアクラス（Aculus）種、エンテトラニカスウィラメッティ（Eotetranychus wilametti）、エンテトラニカスユメンシス（Eotetranychus yumensis）（ユマハダニ）、およびエンテトラニカスセクスマクラティス（Eotetranychus sexmaculatis）（６スポットダニ）などのエンテトラニカス（Eotetranychus）種、ブリオビアルブリオクルス（Bryobia rubrioculus）（チャダニ）、エピトリメルスピリ（Epitrimerus pyri）（ナシサビダニ）、フィトプタスピリ（Phytoptus pyri）（ナシハダニ）、アカリティスエシジ（Acalitis essigi）（レッドベリーダニ）、ポリファゴタルソネムスラタス（Polyphagotarsonemus latus）（ソラマメダニ）、エリオフィエスシェルドニ（Eriophyes sheldoni）（柑橘芽ダニ）、ブレビパルプスレビシ（Brevipalpus lewisi）（シトラスフラットダニ）、フィロコプトルタオレイボラ（Phylocoptruta oleivora）（柑橘サビダニ）、ペトロビアラテエンス（Petrobia lateens）（コムギチャダニ）、オキシエヌスマキシウェリ（Oxyenus maxwelli）（オリーブダニ）、リゾグリファス（Rhizoglyphus）種、チロファグス（Tyrophagus）種、ジプタクスギガントルフィンクス（Diptacus gigantorhyncus）（ビッグヘッドプラムダニ）およびペンタレアメジャー（Penthaleaa major）（白小麦ダニ）、アボカドアカダニ、フラットダニ、クロおよびアカマンゴーハダニ、パパイヤリーフエドゲローラーダニ（Papaya leaf edgeroller mite）、テキサスシトラスダニ（Texas citrus mite）、ヨーロッパアカダニ（European red mite）、グレープエリネウムダニ（Grape erineum mite）（水疱ダニ）、パシフィックハダニ（Pacific spider mite）、ウィラメットハダニ（Willamette spider mite）、ピンクシトラスサビダニ（Pink citrus rust mite）だけには限られないが、これらを含めたコダニなどのダニ（Acari）（節足動物）を含有する場所に施すこともできる。このような場所は、このようなコダニまたは他の節足動物（例えば、アフェニド（aphenids））が侵入する穀物だけには限られないが、これらを含むことができる。このような場所は、このようなコダニまたは他の節足動物（例えば、アフェニド（aphenids））が外寄生する穀物だけには限られないが、これらを含むことができる。

前述の方法によって防除される植物病原性の昆虫には、目（ａ）鱗翅目、例えば、アクレリス（Acleris）種、アドキソフィエス（Adoxophyes）種、アエゲリア（Aegeria）種、アグロティス（Agrotis）種、アラバマアルギランス（Alabama argillaceae）、アミロイス（Amylois）種、アンティカルシアゲマタリス（Anticarsia gemmatalis）、アルチップス（Archips）種、アルギロタエニア（Argyrotaenia）種、オートグラファ（Autographa）種、ブセオラフスカ（Busseola fusca）、カドラーカウテラ（Cadra cautella）、カルポシナニッポネンシス（Carposina nipponensis）、チロ（Chilo）種、コリストネウラ（Choristoneura）種、クリシアアンビグエラ（Clysia ambiguella）、シナファロクロシス（Cnaphalocrocis）種、シネファシア（Cnephasia）種、コチリス（Cochylis）種、コレオフォラ（Coleophora）種、クロシドロミアビノタリス（Crocidolomia binotalis）、クリプトフレビアロイコトレア（Cryptophlebia leucotreta）、シディア（Cydia）種、ディアトラエア（Diatraea）種、ディパロプシスカスタネア（Diparopsis castanea）、エアリアス（Earias）種、エフェスティア（Ephestia）種、ユーコスマ（Eucosma）種、ユーポエシラアンビグエラ（Eupoecilia ambiguella）、ユープロクティス（Euproctis）種、ユークソア（Euxoa）種、グラホリタ（Grapholita）種、ヘドヤヌビフェラナ（Hedya nubiferana）、ヘリオティス（Heliothis）種、ヘルラウンダリス（Hellula undalis）、ヒファントリアクネア（Hyphantria cunea）、ケイフェリアリコペルシセラ（Keiferia lycopersicella）、ロイコプテラシテラ（Leucoptera scitella）、リトコレティス（Lithocollethis）種、ロベシアボトラナ（Lobesia botrana）、リーマントリア（Lymantria）種、リオネティア（Lyonetia）種、マラコソーマ（Malacosoma）種、マメストラブラシカエ（Mamestra brassicae）、マンジュカセクスタ（Manduca Sexta）、オペロフテラ（Operophtera）種、オストリニアヌビラリス（Ostrinia nubilalis）、パムメン（Pammene）種、パンデミス（Pandemis）種、パノリスフラメア（Panolis flammea）、ペクチノフォラゴシピエラ（Pectinophora gossypiella）、フトリマエアオペルクレラ（Phthorimaea operculella）、ピエリスラパエ（Pieris rapae）、ピエリス（Pieris）種、プルテラキシロステラ（Plutella xylostella）、ピレイス（Prays）種、シルポファーガ（Scirpophaga）種、セサミア（Sesamia）種、スパルガノティス（Sparganothis）種、スポンドプテラ（Spodoptera）種、シナンテドン（Synanthedon）種、サウメトポエア（Thaumetopoea）種、トルトリクス（Tortrix）種、トリコプルシアニ（Trichoplusia ni）およびヤポノメウタ（Yponomeuta）種、（ｂ）鞘翅目、例えば、アグリオテス（Agriotes）種、アルフィトビウス（Alphitobius）種、アノモラ（Anomola）種、例えばアノモラオリエンタリス（Anomala orientalis）、アントノムス（Anthonomus）種、アトマリアリネアリス（Atomaria linearis）、カエトクネマティビアリス（Chaetocnema tibialis）、コスモポライト（Cosmopolites）種、クルクリオ（Curculio）種、シクロセファラ（Cyclocephala）種、例えばシクロセファラルリダ（Cyclocephala lurida）、デルメステス（Dermestes）種、ディアブロティカ（Diabrotica）種、エピラチナ（Epilachna）種、エレムヌス（Eremnus）種、レプチノタルサデセムリネアタ（Leptinotarsa decemlineata）、リソルホプトラス（Lissorhoptrus）種、メロロンタ（Melolontha）種、オリカエフィルス（Orycaephilus）種、オチオリンカス（Otiorhynchus）種、オチオリンカスサルカタス（Otiorhynchus sulcatus）、フィリクティヌス（Phlyctinus）種、ポピリア（Popillia）種、例えばポピリアジャポニカ（Popilla japonica）、シリオデス（Psylliodes）種、リゾペルタ（Rhizopertha）種、例えばリゾトロガスマジャリス（Rhizotrogus majalis）、シトフィラス（Sitophilus）種、シトトロガ（Sitotroga）種、テネブリオ（Tenebrio）種、トリボリウム（Tribolium）種およびトロゴデルマ（Trogoderma）種、（ｃ）直翅目、例えば、ブラッタ（Blatta）種、ブラッテラ（Blattella）種、グリロタルパ（Gryllotalpa）種、ロイコファエアマデラエ（Leucophaea maderae）、ロカスタ（Locusta）種、ペリプラネタ（Periplaneta）種およびシストセルカ（Schistocerca）種、（ｄ）等翅目、例えば、レティクリテルメス（Reticulitermes）種、（ｅ）乾癬翅目、例えば、リポセリス（Liposcelis）種、（ｆ）アノプルラ目（Anoplura）、例えば、ヘマトピヌス（Haematopinus）種、リノグナタス（Linognathus）種、ペディクルス（Pediculus）種、ペンフィグス（Pemphigus）種およびフィロキセラ（Phylloxera）種、（ｇ）マロファーガ目（Mallophaga）、例えば、ダマリネア（Damalinea）種およびトリコデクス（Trichodectes）種、（ｈ）総翅目、例えば、フランクリニエラ（Frankliniella）種、ヘルシノトンリップス（Hercinotnrips）種、タエニオスリップス（Taeniothrips）種、スリップスパルミ（Thrips palmi）、スリップスタバチ（Thrips tabaci）およびシルトスリップスアウランティ（Scirtothrips aurantii）、（ｉ）異翅類、例えば、シメックス（Cimex）種、ディスタンティエラテオブロマ（Distantiella theobroma）、ジスデルカス（Dysdercus）種、ユーキスタス（Euchistus）種、ユーリガスター（Eurygaster）種、レプトコリサ（Leptocorisa）種、ネザラ（Nezara）種、ピエスマ（Piesma）種、ロードニウス（Rhodnius）種、サルベルゲラシングラリス（Sahlbergella singularis）、スコッチノファラ（Scotinophara）種およびトニアトーマ（Tniatoma）種、（ｊ）同翅類、例えば、アレウロスリキサスフロコッサス（Aleurothrixus floccosus）、アレイロデスブラシカエ（Aleyrodes brassicae）、アオニジエラ（Aonidiella）種、アフィジダエ（Aphididae）、アフィス（Aphis）種、アスピジオタス（Aspidiotus）種、バクテリセラ（Bactericera）種、ベミシアタバシ（Bemisia tabaci）、セロプラスター（Ceroplaster）種、クリソムファルスアオニジウム（Chrysomphalus aonidium）、クリソムファルスジクチオスペルミ（Chrysomphalus dictyospermi）、コッカスヘスペリダム（Coccus hesperidum）、エムポアスカ（Empoasca）種、エリオソーマラリゲルム（Eriosoma larigerum）、エリスロニューラ（Erythroneura）種、ガスカルディア（Gascardia）種、ラオデルファクス（Laodelphax）種、レカニウムコルニ（Lecanium corni）、レピドサフェス（Lepidosaphes）種、マクロシフス（Macrosiphus）種、ミザス（Myzus）種、ネフォテティックス（Nephotettix）種、ニラパルバタ（Nilaparvata）種、パラトリア（Paratoria）種、ペムフィガス（Pemphigus）種、プラノコッカス（Planococcus）種、シュードアウラカスピス（Pseudaulacaspis）種、シュードコッカス（Pseudococcus）種、プシラ（Psylla）種、プルビナリアアエチオピカ（Pulvinaria aethiopica）、クアドラスピジオタス（Quadraspidiotus）種、ロパロシフム（Rhopalosiphum）種、サイセチア（Saissetia）種、スカホイデウス（Scaphoideus）種、シザフィス（Schizaphis）種、シトビオン（Sitobion）種、トリアレウロデスバポラリオラム（Trialeurodes vaporariorum）、トガリキジラミ（Triozidae）科、トリオザエリスレアエ（Trioza erytreae）およびウナスピスシトリ（Unaspis citri）、（ｋ）半翅鞘、例えば、アクロミルメクスアッタ（Acromyrmex Atta）種、セファス（Cephus）種、ジプリオン（Diprion）種、ジプリオニダエ（Diprionidae）、ギルピニアポリトーマ（Gilpinia polytoma）、ホプロカンパ（Hoplocampa）種、ラシウス（Lasius）種、モノモリウムファラオニス（Monomorium pharaonis）、ネオジプリオン（Neodiprion）種、ソレノプシス（Solenopsis）種およびヴェスパ（Vespa）種、（ｌ）双翅目、例えば、ヤブカ（Aedes）種、アンセリゴナソカッタ（Antherigona soccata）、ビビオホルツラヌス（Bibio hortulanus）、カリホラエリスロセファラ（Calliphora erythrocephala）、セラティティス（Ceratitis）種、クリソミア（Chrysomyia）種、クテレブラ（Cuterebra）種、ダッカス（Dacus）種、デリア（Delia）種、デリアラジカム（Delia radicum）、キイロショウジョウバエ（Drosophila）種、例えばキイロショウジョウバエスズキ（Drosophila suzukii）、ファニア（Fannia）種、ガストロフィラス（Gastrophilus）種、グロッシナ（Glossina）種、ヒポデルマ（Hypoderma）種、ヒポボスカ（Hyppobosca）種、リリオミザ（Liriomyza）種、ルシリア（Lucilia）種、メラナグロミザ（Melanagromyza）種、イエバエ（Musca）種、オエストラス（Oestrus）種、オルセオリア（Orseolia）種、オシネラフリット（Oscinella frit）、ペゴミアヒオスシアミ（Pegomyia hyoscyami）、ホルビア（Phorbia）種、ラゴレティスポモネラ（Rhagoletis pomonella）、シアラ（Sciara）種、ストモキシス（Stomoxys）種、アブ（Tabanus）種、タニア（Tannia）種およびティプラ（Tipula）種、（ｍ）管翅目、例えば、セラトフィラス（Ceratophyllus）種およびキセノシラチェオピス（Xenopsylla cheopis）、（ｎ）総尾目、例えばレピスマサッカリナ（Lepisma saccharina）由来、（ｏ）半翅目、例えばバクテリセラ（Bactericera）種、例えばバクテリセラコッケレリ（Bactericera cockerelli）由来の非クリシダ（non-Culicidae）幼生昆虫があるが、これらだけには限られない。

活性成分は、コガネムシ科（Scarabaiedae）有害生物を含有する場所に施すことができる。これらは、土壌、芝生および様々な観賞植物、樹木および野菜だけには限られないが、これらを含む。

前述の活性成分（複数可）および組成物は、イエバエ科（Muscidae）有害生物を含有する場所に施すこともできる。これらは、屋内環境、ごみ箱、動物、動物（ウシ、ブタ、ヒツジ、ウマなど）が含有される、フェンス、畜舎、納屋、搾乳場、分娩舎などだけには限られないが、これらを含む。

前述の活性成分（複数可）および組成物は、ゴミムシダマシ科（Tenebrionidae）有害生物を含有する活性成分（複数可）および組成物を含有する場所に、さらに施すことができる。これらは、穀類保有柵、動物（ウシ、ブタ、ヒツジ、ウマなど）が含有される、家禽類および家禽類保有柵（フェンス、畜舎、納屋、搾乳場、分娩舎など）だけには限られないが、これらを含む。
［実施例］

前述の組成物および方法を、以下の非制限的な実施例中でさらに例示する。実施例は様々な実施形態を単に例示するものであり、本明細書中に列挙する材料、条件、重量比、プロセスパラメータなどに関して特許請求する本発明を限定するわけではない。

クロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）からのクロマミド、デオキシビオラセインおよびビオラセインの抽出
以下の手順を、クロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）の培養物から抽出した化合物の精製に使用する。

Ｌ−ブロス中１０−Ｌ発酵クロモバクテリウムサブスチュガエ（C.substugae）由来の培養ブロスを、室温で２時間２２５ｒｐｍにおいて樹脂で細胞懸濁液を攪拌することによって、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ ＸＡＤ−７樹脂で抽出する（Asolkar et al.,2006）。樹脂と細胞塊はチーズクロスを介した濾過によって回収し、蒸留水で洗浄して塩を除去する。樹脂、細胞塊、およびチーズクロスを次いでアセトン／メタノール（５０／５０）中に２時間浸し、その後アセトン／メタノールを濾過し、ロータリー式エバポレーターを使用して真空下で乾燥させて粗製抽出物を得る。次いで粗製抽出物を、Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ２０サイズ排除クロマトグラフィー（ＣＨ_２Ｃｌ_２／ＣＨ_３ＯＨ；５０／５０）を使用することにより分画化して７画分を得る（図１）。次いでこれらの画分を、ロータリー式エバポレーターを使用して乾燥状態まで濃縮し、キャベツ根蛆虫（トリコプルシアニ（Trichoplusia ni））またはビートアーミーウォーム（Beet armyworm）スポードプテラエキシグア（Spodoptera exigua）を用いたフィーディングアッセイを使用して、生成した乾燥残渣を生物活性に関してスクリーニングする。次いで活性画分を、逆相ＨＰＬＣ（Ｓｐｅｃｔｒａ Ｓｙｓｔｅｍ Ｐ４０００（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）に施し純化合物を得て、次いでそれを前述のバイオアッセイでスクリーニングして活性化合物を位置特定／同定した。化合物の同一性を確認するため、ＬＣ／ＭＳおよびＮＭＲなどの追加的質量分析データを記録する。

クロマミドＡ（１）および化合物Ｂはそれぞれ画分１および２から得て、一方ビオラセイン（２）およびデオキシビオラセイン（３）はＳｅｐｈａｄｅｘＬＨ２０クロマトグラフィーから得た画分５から精製した。

化合物の精製
ＨＰＬＣＣ−１８カラム（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｌｕｎａ１０ｕＣ１８（２）１００Ａ、２５０×１０）、２．５ｍＬ／分の流量および２１０ｎｍのＵＶ検出において、水：アセトニトリル勾配溶媒系（０〜１０分、８０〜７５％水性ＣＨ_３ＣＮ、１０〜４５分、７５〜６０％水性ＣＨ_３ＣＮ、４５〜５５分、６０〜５０％水性ＣＨ_３ＣＮ、５５〜６５分、５０〜１００％水性ＣＨ_３ＣＮ、６５〜７０分、１００％ＣＨ_３ＣＮ、５５〜７０分、０〜８０％水性ＣＨ_３ＣＮ）を使用することによって、クロマミドＡ（１）の精製を実施した。活性化合物クロマミドＡ（１）は２３．１９分の保持時間を有する。

ＨＰＬＣＣ−１８カラム（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｌｕｎａ１０ｕＣ１８（２）１００Ａ、２５０×１０）、２．５ｍＬ／分の流量および２１０ｎｍのＵＶ検出において、水：アセトニトリル勾配溶媒系（０〜１０分、８０〜７５％水性ＣＨ_３ＣＮ、１０〜４５分、７５〜６０％水性ＣＨ_３ＣＮ、４５〜５５分、６０〜５０％水性ＣＨ_３ＣＮ、５５〜６５分、５０〜１００％水性ＣＨ_３ＣＮ、６５〜７０分、１００％ＣＨ_３ＣＮ、５５〜７０分、０〜８０％水性ＣＨ_３ＣＮ）を使用することによって本発明の化合物Ｂの精製を実施し、化合物Ｂは２６．３９分の保持時間を有していた。

ＨＰＬＣＣ−１８カラム（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｌｕｎａ１０ｕＣ１８（２）１００Ａ、２５０×１０）、２．５ｍＬ／分の流量および２１０ｎｍのＵＶ検出において、水：アセトニトリル勾配溶媒系（０〜１０分、７０〜６０％水性ＣＨ_３ＣＮ、１０〜４０分、６０〜２０％水性ＣＨ_３ＣＮ、４０〜６０分、２０〜０％水性ＣＨ_３ＣＮ、６０〜６５分、１００％水性ＣＨ_３ＣＮ、６５〜７５分、０〜７０％水性ＣＨ_３ＣＮ）を使用することによってビオラセイン（２）およびデオキシビオラセイン（３）の精製を実施し、活性化合物ビオラセイン（２）は７．８６分の保持時間を有しており、デオキシビオラセイン（３）は１２．４５分の保持時間を有していた。

質量分析による化合物の分析
質量分析による活性ピークの分析を、ＬＣＱ ＤＥＣＡ ＸＰ^ｐｌｕｓ質量分析計（Ｔｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ Ｃｏｒｐ．，Ｓａｎ Ｊｏｓｅ，ＣＡ）においてフルスキャンモード（ｍ／ｚ １００〜１５００Ｄａ）でポジティブとネガティブイオン化モードの両方を使用して、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｎｎｉｇａｎ ＬＣＱ Ｄｅｃａ ＸＰ Ｐｌｕｓエレクトロスプレー（ＥＳＩ）装置で実施する。Ｔｈｅｒｍｏ高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）装置は、Ｆｉｎｎｉｇａｎ Ｓｕｒｖｅｙｏｒ ＰＤＡおよび検出器、オートサンプラーおよび、ＭＳポンプおよび４．６ｍｍ×１００ｍｍのＬｕｎａ Ｃ１８ ５μ１００Ａカラム（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ）を備えていた。溶媒系は水（溶媒Ａ）とアセトニトリル（溶媒Ｂ）からなっていた。移動相は１０％溶媒Ｂで始まり、２０分かけて１００％溶媒Ｂまで直線的に増大し、次いで４分間保ち、最後に３分かけて１０％溶媒Ｂに戻し、３分間保つ。流量は０．５ｍＬ／分である。注射体積は１０μＬであり、サンプルはオートサンプラーにおいて室温で保つ。ＬＣおよび逆相クロマトグラフィーを利用して、ＬＣ−ＭＳによって化合物を分析する。質量分析による本発明の化合物の分析を以下の条件下で行う。窒素ガスの流量は、それぞれシースおよび補助／スイープガスの流量に関して３０および１５ａｒｂで固定した。エレクトロスプレーイオン化は、５０００Ｖに設定したスプレー電圧および３５．０Ｖのキャピラリー電圧で実施した。キャピラリー温度は４００℃に設定した。データはＸｃａｌｉｂｕｒソフトウェアで分析した。クロマミドＡ（１）はポジティブイオン化モードで８６０の分子量を有する。別の活性化合物Ｂに関するＬＣ−ＭＳクロマトグラムは、ポジティブイオン化モードで８７４の分子量を示唆する。ビオラセイン（２）およびデオキシビオラセイン（３）は、ポジティブイオン化モードでそれぞれ３１３および３２７の分子量を有していた。

ＮＭＲ質量分析による化合物の分析
ＮＭＲ−ＮＭＲスペクトルをＢｒｕｋｅｒ６００ＭＨｚ勾配磁場型質量分析計で測定した。参照は内部標準物質テトラメチルシラン（ＴＭＳ、０．００ｐｐｍ）に設定する。アミノ酸の分析はＨｉｔａｃｈｉ８８００アミノ酸アナライザーで実施した。

構造解明のため、分子量８６０を有する精製したクロマミドＡを、６００ＭＨｚＮＭＲ装置を使用してさらに分析し、それは８．８９、８．４４、８．２４、８．２３、７．９６、７．６３、６．６６、５．４２、５．３６、５．３１、５．１０、４．１３、４．０７、４．０５、３．９６、３．９５、３．８８、３．７７、３．７３、３．５１、３．４４、３．１７、２．４０、２．２７、２．１１、２．０８、２．０３、２．０１、１．９７、１．９５、１．９０、１．８１、１．６８、１．６３、１．５７、１．５３、１．４８、１．４３、１．３５、１．２４、１．０７、１．０２、０．９６、０．８９、０．８８、０．８７、０．８０の^１ＨＮＭＲδ値を有し（図４参照）、１７３．６２、１７２．９２、１７２．２５、１７２．１７、１７１．６６、１７１．２８、１７０．４５、１３２．１３、１３０．０４、１２９．９８、１２９．６９、１２９．６９、１２５．４８、９８．０５、７０．１１、６９．７５、６８．３０、６８．２５、６４．３４、６０．９４、５４．５４、５２．８２、４９．７２、４８．５７、４５．６８、４０．３８、３９．９０、３８．１８、３６．６０、３１．９８、３１．６２、３１．５８、２９．５３、２８．８３、２７．７８、２４．４１、２３．０６、２２．０９、２０．５６、１９．３１、１８．７８、１７．６６、１５．８０の^１３ＣＮＭＲ値を有する。クロマミドＡは白い固体として単離し、ＥＳＩ高解像度質量分析計により分子式Ｃ_４３Ｈ_６８Ｎ_６Ｏ_１２（不飽和度１３）に関して分析した（ｏｂｓｄＭ^＋ｍ／ｚ８６１．５３７６、ｃａｌｃｄＭ^＋ｍ／ｚ８６１．５３４３）。ＤＭＳＯ−ｄ_６におけるクロマミドＡの^１ＨＮＭＲスペクトルデータは６８のプロトンシグナルを示し、ヘテロ核結合ＮＭＲ（ＨＭＱＣ）分析における炭素結合の欠如のため、その中で９のプロトン［δ_Ｈ：８．８９、８．４４、８．２３、８．２２、７．９６、７．６４、６．６５、５．１０、４．１３］をＮＨまたはＯＨのいずれかとして割り当てた。^１３ＣＮＭＲスペクトルは７のカルボニルシグナル［δ_Ｃ：１７３．６２、１７２．９２、１７２．２５、１．７２．１７、１７１．６６、１７１．２８、１７０．４５］を示し、^１ＨＮＭＲスペクトルでは、６個の特徴的なα−アミノプロトンシグナル［δ_Ｈ：４．０７、４．０６、３．９６、３．９５、３．８８、３．７２］を観察し、それはクロマミドＡがペプチドであることを実証する。

２ＤＮＭＲデータの解釈によって、６、１ロイシン（Ｌｅｕ）、１バリン（Ｖａｌ）および１グルタミン（Ｇｌｎ）の３アミノ酸単位の割り当てに至った。これらのアミノ酸の存在はアミノ酸分析の結果によって確認し、それは前述の３アミノ酸の存在も示した。ＤＥＰＴおよび２ＤＮＭＲスペクトルデータのさらなる分析（ＣＯＳＹ、ＨＳＱＣおよびＨＭＢＣ）によって、以下に示すような３個の下部構造Ｉ、ＩＩおよびＩＩＩの存在が確定した。

１における３個の下部構造の結合は、α−アミノプロトンおよび／または第二級アミドプロトンおよびカルボニル炭素共鳴とケミカルシフトの考慮事項の間の関係を使用して、通常のＨＭＢＣＮＭＲ分析により実施した。下部構造ＩＩ由来のＣ−１０と下部構造Ｉ由来のＣ−９の結合は、ＣＨ_３−４０［δ_Ｈ：１．００］およびアラニンのα−アミノプロトン［δ_Ｈ：３．４２］からＣ−１０炭素［δ_Ｃ：７０．１１］のＨＭＢＣの関係によって確定した。［δ_Ｈ：５．１０］でのヒドロキシルから［δ_Ｃ：４９．７８］でのＣ−９の３結合ＨＭＢＣの関係によって、これをさらに確認した。下部構造ＩＩＩ由来の［δ_Ｈ：３．５０］でのメチレンは、下部構造ＩおよびＩＩと結合したＣ−１９［δ_Ｃ：６８．３１］との３結合ＨＭＢＣの関係を示した。Ｃ−３［δ_Ｃ：９８．０９］における第四級炭素は、Ｈ−２１［δ_Ｈ：３．９５］からの微弱な結合およびそれらのケミカルシフト値を介してＣ−２１［δ_Ｃ：６４．４０］と結合し一環系を形成した。最後に、Ｈ_３−３６［δ_Ｈ：１．４３］からＣ−１［δ_Ｃ：１７２．１７］の３結合ＨＭＢＣの関係により閉環結合が確かになり、これによりクロマミドＡ（１）の平面結合を割り当てることができた。

分子量８７４を有する化合物Ｂは類似したＮＭＲおよびＵＶデータを示し、この化合物Ｂもペプチドのクラスに属することが示唆された。

ビオラセイン（２）およびデオキシビオラセイン（３）に関する構造は、文献中に公開されたデータと、これらの化合物のデータの比較によって割り当てた。クロマミドＡ、ビオラセインおよびデオキシビオラセインの構造は図２中に示す。

クロマミドＡのアミノ酸分析
液相加水分解（６ＮＨＣＬ、１％フェノール、１１０℃、２４時間、真空中）を使用することにより、クロマミドＡ（０．０５ｍｇ）を加水分解した。冷却後、反応混合物は乾燥させ、加水分解産物は１．０ｍＬ体積までＮｏｒｌｅｕ希釈バッファー中に溶かした。５０μｌのサンプルを分析用にイオン交換カラムに充填した。

標準および較正用に、Ｎａ−ｂａｓｅｄ Ｈｉｔａｃｈｉ ８８００（Ｓｉｇｍａ、Ａ−９９０６）におけるタンパク質加水分解産物用のアミノ酸標準溶液を使用して応答因子を決定し、このようにして全アミノ酸用にＨｉｔａｃｈｉ ８８００アナライザーを較正する。各々の注射液は、サンプル体積の変動およびクロマトグラフィーの変数に関する結果の補正を可能にするために、内部標準物質としてノルロイシンを含有する。系はＰｉｃｋｅｒｉｎｇＮａバッファー、Ｐｉｅｒｃｅ Ｓｅｑｕａｎａｌ ｇｒａｄｅ ＨＣｌ（加水分解）、トランスゲノミックイオン交換カラム、およびＭｏｌｅｃｕｌａｒ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ Ｆａｃｉｌｉｔｙ（ＭＳＦ）、ＵＣ Ｄａｖｉｓにより開発された最適法を利用し、サンプル中に存在する個々のアミノ酸を報告する。サンプル（クロマミドＡ）において存在したアミノ酸はＧｌｘ（グルタミン／グルタミン酸）、ｌｅｕ（ロイシン）およびＶａｌ（バリン）であることが分かった。

２スポットハダニに対するクロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）（ＭＢＩ−２０３）の効果−マメ科植物
凍結乾燥ＭＢＩ−２０３を蒸留水と混合して、様々な濃度の全細胞ブロスの細胞を均等にした。非外寄生状態のマメ科植物、ファセオラスブルガリス（Phaseolus vulgaris）にはＭＢＩ−２０３を噴霧した。次いで噴霧した植物からリーフディスクを採取し、２スポットハダニ、テトラニカスウルティカエ（Tetranychus urticae）の食料源としてペトリ皿に置いた。１０匹のコダニを各々の皿に置き、７５°Ｆ、１２：１２（Ｌ：Ｄ）でインキュベートした。生存状態および死亡状態のコダニの評価は外寄生後１、３、および７日で記録した。１×ＣＦＤは、全細胞ブロスの細胞濃度に戻した凍結乾燥物質である（０．０１０３ｇ凍結乾燥／ｍＬｄＨ_２Ｏ）。結果は図３中に示す。

２スポットハダニに対するクロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）（ＭＢＩ−２０３）の効果−マリゴールド
マリゴールド、センジュギク（Tagetes erecta）に２スポットハダニ、テトラニカスウルティカエ（Tetranychus urticae）を外寄生させた。配合製品（ＭＢＩ−２０３）またはケノポジウムアンブロシオイデス（Chenopodium ambrosioides）（ＡｇｒａＱｕｅｓｔ、Ｉｎｃ．，Ｄａｖｉｓ、ＣＡによりＲＥＱＵＩＥＭ（登録商標）として販売）を外寄生状態の植物に施し、温度範囲約７２〜８５°Ｆで温室内に保った。サンプルを得るため、６ｃｍ^２の葉表面を採取し、生存状態および死亡状態の若虫と未成熟虫の数を数えた。結果は表１中に示す。

２スポットハダニ（ＴＳＳＭ）に対するクロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）（ＭＢＩ−２０３）スクリーニングの効果−サヤインゲン
ＴＳＳＭまたはアバメクチン耐性ＴＳＳＭを外寄生させたサヤインゲンに、約１００ｇａｌ／エーカーで０．５％、１％、２％、および４％ｖ／ｖ希釈の配合ＭＢＩ−２０３を噴霧した。施用後９日で死亡率を評価した。結果は表２中に示す。

イチゴにおける２スポットハダニに対するＭＢＩ−２０３のスクリーニング
５つの従来化合物およびＭＢＩ−２０３成分の効力を、Ｆｌｏｒｉｄａ Ｇｕｌｆ Ｃｏａｓｔ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ａｎｄ Ｅｄｕｃａｔｉｏｎ Ｃｅｎｔｅｒで野生イチゴ苗におけるＴＳＳＭ防除に関して評価した。苗木は原野に移した（０日目）。各々の１２．５−ｆｔ．プロットは２０植物からなっていた。５５日目から７１日目まで、植物当たり１０〜２０匹の運動性ＴＳＳＭを４回プロットに外寄生させた。様々な割合の１７の処理、および幾つかはアジュバントと組合せたダニ殺傷剤の施用スケジュール、および未処理調査をＲＣＢ設計で４回繰り返した。４５度コアおよびナンバーフォーディスクを含有するノズルを備える、スプレー棒を有する手動噴霧器を使用して、処理を施した。噴霧器は４０ｐｓｉまでＣＯ_２により加圧し、較正して１００ｇａｌ／エーカーを送達した。初回噴霧前の９０日目から処理剤の最後の施用後２週（１５４日目）まで、週１回サンプルを回収した。サンプルはプロット当たり１０個のランダムに選択した小葉からなっており、植物の中央３分の１の層から回収した。運動性ＴＳＳＭおよびＴＳＳＭの卵を、小葉から回転接着ディスクに払い落とし計数した。植物毒性は観察されなかった。結果は表３および４中に示す。

イエバエに対するクロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）（ＭＢＩ−２０３）の効果
イエバエ（成虫）に対する直接接触効率に関して試験物質をスクリーニングする。各化合物：１．５％、３％および６％濃度に関する３つの処理群、ならびに未処理対照が存在する。各々の群は、各々昆虫約１０匹で５回の反復を含有する。飲み口蓋を有する１６ｏｚのドリンクカップ内で「完全遮蔽状態」に達するまで、手動噴霧器で節足動物を処理する。４時間で、１０％スクロース溶液を含む綿塊を、蓋中の穴にそれを挿入することによりハエに与える。データは５、１５、３０、４５、６０分、ならびに２、４、および２４時間で、または終点まで得る。ノックダウンおよび死亡率は、好ましくない傾向がある昆虫の相対数を数えることにより決定した。瀕死状態の昆虫は死亡率の合計に含めなかった。結果は以下の表５中に示す。

リタービートルに対するクロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）（ＭＢＩ−２０３）の効果
３つの処理群を、各化合物：１．５％、３％および６％濃度、ならびに未処理対照に関して試験した。各々の群は、各々昆虫約１０匹で５回の反復を含有した。穴付きの蓋、および任意の過剰な物質を吸収する濾過紙を底部に有する８または１６ｏｚのデリスクワットカップ内で「完全遮蔽状態」に達するまで、手動噴霧器で節足動物を処理する。ノックダウンおよび死亡率は、処理後５、１５、３０、４５、６０分、ならびに２、４、２４、４８、および７２時間で観察した。ノックダウンおよび死亡率は、好ましくない傾向がある昆虫の相対数を数えることにより決定した。瀕死状態の昆虫は死亡率の合計に含めなかった。結果は以下の表６中に示す。

ジャガイモシストセンチュウ、バクテリセラコッケレリ（Bactericera cockerelli）の産卵能力に対するＭＢＩ−２０３の効果
方法
ＭＢＩ−２０３処理済みのコショウの葉に曝したジャガイモシストセンチュウのメスの産卵能力を決定した。コショウの葉は葉柄で切除し、１分間の浸漬によりＭＢＩ−２０３で処理した。実験中の処理は、以下のようにｄＨ_２Ｏ中に１０％ｖ／ｖでＭＢＩ−２０３、陰性対照としてｄＨ_２Ｏ、および陽性対照として１０％ｖ／ｖのＡｖｉｄであった。処理した葉は、縁が十分深く、遮断して処理済み葉を露出させる中心径でクラフトフォーム裏打ち構造のプラスチック製ペトリ皿中に保持した。

４匹の、１日齢のメスを皿の中心に置き、そこで処理した葉を露出させ（クラフトフォームの遮断部分）、ペトリ皿カバーで覆い、２バインダークリップで配置を固定した。メスの成虫に産卵させ、卵の計数は露出後３〜１０日で行った。

ＭＢＩ−２０３処理および未処理葉に関するフォローアップ式リーフディスクバイオアッセイを実施して、ジャガイモシストセンチュウのメスの産卵能力に対するＭＢＩ−２０３の効果を検証した。水中３％ｖ／ｖでのＭＢＩ−２０３、および未処理対照、ｄＨ_２Ｏ単独（陰性対照）の処理をアッセイ中で使用した。（３〜４週齢のコショウ植物由来の）ペッパーリーフディスクを、２３ｍｍクッキーカッターを使用して円形に切断し、葉の平坦部分を選択し、化合物を用いた処理後寒天プレート上に、ディスクを均一に平坦に置くことができることを確実にした。プレートの底部は３０μＬの１％寒天溶液で覆い、リーフディスクを支え水分を維持するほど十分にプレートの底部を覆った。室温で冷却することにより寒天を凝固させた。リーフディスクの処理は、ガラス製ペトリ皿に処理溶液を注ぐことにより実施した。皿中の溶液によって、皿を浸漬、軽く攪拌してリーフディスクを完全に浸漬およびコーティングすることにより、リーフディスクを処理した。処理は１分間実施し、処理したリーフディスクは次いでヒュームフード内で１０〜１５分、または溶液が完全に乾燥蒸発するまで乾燥させた。各々の凝固寒天プレートにおいて、２０〜３０μＬのｄＨ_２Ｏを寒天に注いだ。各々の処理したリーフディスクは個々に寒天プレート上に置き、湿潤寒天上では軸から離してリーフディスクを置き、軽くプレスして寒天上にディスクを完全に打ち延ばした。処理したリーフディスクを含む各々のプレート（処理）において、４匹のジャガイモシストセンチュウのメスを導入した。妊娠状態のメスを含むペトリプレートを次いでペトリプレートカバーで覆い、通気用の小さな穴を開け凝縮を妨げた。皿はパラフィンで密閉し室温に保った。産まれた卵の数は、メスの導入後１日目から始めて、１日１回数えた。実験は３連で行い、２回繰り返した。

結果
ＭＢＩ−２０３処理に曝したメスによる有意な産卵の低下を観察した。産卵の若干の遅れが、ＭＢＩ−２０３で処理したリーフディスクにおけるメスにおいて明らかであった。ＭＢＩ−２０３処理したリーフディスクに曝したジャガイモシストセンチュウのメスは露出後３日で産卵し始めた（図４）。メスが産んだ卵の数は７日目にピークに達し、１０日目に減少した。１０日目に、メスが産んだ卵が孵化し始めたので、平均卵数は減少した。陽性対照処理（Ａｖｉｄ１０％ｖ／ｖ）に曝したメスは３日目に全て死に至り、ａｖｉｄ処理リーフディスクにおいて卵は産まれなかった。

リーフディスク検証バイオアッセイによって、３％ｖ／ｖでのＭＢＩ−２０３処理リーフディスクにおけるメスによる有意な産卵の低下と一致する結果を確認した（図５）。未処理リーフディスク（ｄＨ_２Ｏ単独）に曝したメスと比較して、６５％の産卵の低下がＭＢＩ−２０３処理リーフディスクに曝したメスによって示された。これらのバイオアッセイの結果は、ＭＢＩ−２０３がジャガイモシストセンチュウのメスの生理機能に影響を与え、それらの産卵能力に影響を与えることを示す。

ジムシおよびコガネムシに対するＭＢＩ−２０３の効果
ターフグラスにおけるジムシの防除
Ｎｏｒｔｈ Ｂｅｎｄ、ＮｅｂｒａｓｋａのＮｏｒｔｈ Ｂｅｎｄゴルフコースでケンタッキーブルーグラス（ポアプラテンシスエル（Poa pratensis L.））およびペレニアルライグラス（ホソムギ（Lolium perenne L.））におけるジムシ（ミナミメンガタカメムシ、シクロセファラルリダブランド（Cyclocephala lurida Bland））の防除に関して殺虫剤を評価した。５反復でランダムコンプリートブロック（ＲＣＢ）設計において配置した５×５ｆｔプロットに、殺虫剤を施した。液体製品は４０ｐｓｉでＣＯ_２噴霧器を使用して施し、１７４ｇｐａの最終噴霧を施した。施用後２４時間以内に、全ての処理剤を０．２５ｉｎの水で洗浄した。各プロットから３インチの深さまで３つの８インチ径芝生土壌コアを除去し（１．０５ｆｔ^２全表面積）、生存状態および瀕死状態のジムシの数を数えることにより、（ＤＡＴ）処理後２４日と４８日で配合物を評価した。植物毒性に関してプロットを定期的に評価した。結果は表７および８中に示す。

ＭＢＩ−２０３ＤＦ１処理剤に関する施用率と防除率％の間には、相関関係があるようである。全ての処理剤が、ＭＢＩ−２０３ＤＦ１（２ｆｌ ｏｚ／１００ｆｔ２）を除いて、トリクロルフォン６％（Ｂａｙｅｒ ＣｒｏｐＳｃｉｅｎｃｅ、ＩｎｃによりＤＹＬＯＸ（登録商標）４２０ＳＬとして販売、（６．９ｆｌ．ｏｚ／１０００ｆｔ^２）、ジムシ防除用の標準的な工業用殺虫剤）より性能が優れていた。興味深いことに、ＭＢＩ−２０３ＡＦ１およびＭＢＩ−２０３ＤＦ１の全ての処理において瀕死状態の個体が見られた。（括弧内の）これらの数字は統計解析において使用しなかったが、比較目的で含めた。植物毒性は観察しなかった。ＡＦ１は水性流動性であり、ＤＦ１はクロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）の湿潤性粉末配合物である。

他の根部捕食性ジムシに対するＭＢＩ−２０３の効果の捕食性試験
非滅菌Ｇｒｏｔｏｎ土壌、４．２５ｐＨ、１４％有機体にジムシ、セマダラコガネの幼虫アノマラオリエンタリス（Anomala orientalis）を外寄生させ、死亡した幼虫の数を見積もった。土壌にＭＢＩ−２０３の水性流動性配合物を施し、死亡率を計算した。

同様の試験を、５ｇ土壌中に１．５ｍｌおよび１ｍｌ製品を使用して、ジムシ、リゾトログスマジャリス（Rhizotrogus majalis）、（コフキコガネ）幼虫で設定した。１００／１００の幼虫が７ＤＡＴで殺傷され、対照中では一匹も殺傷されなかった。

ポッティング培地（食料源含まず）、ニンジンおよびイチイの根を用いてキンケクチブトゾウムシ幼虫、オティオリンクスサルカタス（Otiorhynchus sulcatus）（シギゾウムシ科）でも試験を行った。結果は表１０、１１、１２および１３中に示す。

ＭＢＩ−２０３は、特に処理済食料源を捕食したとき、根部捕食性ジムシおよびキンケクチブトゾウムシに対して非常に活性があるようである。

キャベツ根蛆虫に対するＭＢＩ−２０３の効果
この試験は、ケージ付き温室内試験でのブロッコリー植物におけるキャベツ根蛆虫、デリアラジカム（Delia radicum）の防除に関する、ＭＢＩ−２０３配合物の効力を決定するために実施した。２ｏｚ／１０００ｆｔ^２および８ｏｚ／１０００ｆｔ^２の割合でのＭＢＩ−２０３ＤＦ−１（ＭＢＩ−２０３の湿潤性粉末配合物）、２ｏｚ／１０００ｆｔ^２および８ｏｚ／１０００ｆｔ^２の割合でのＭＢＩ−２０３ＤＦ−２（ＭＢＩ−２０３の第２の湿潤性粉末配合物）の実験処理。実験処理は、１ｌｂ／ｇａｌの割合で、市販の標準、ＲＡＤＩＡＮＴ（登録商標）（ＤｏｗＡｇｒｏ Ｓｃｉｅｎｃｅｓによって販売、活性成分としてスピネフォラム（spineforam）を含有）と比較した。

生存状態の成虫の数を第３施用（１４ＤＡ−Ｃ）後１４日まで週１回記録し、生存状態の幼虫の数は２１ＤＡ−Ｃまで週一回記録した。結果は、ＭＢＩ２０３ＤＦ−１では最終評価日までに有意に少ない成虫出現数があり、ＲＡＤＩＡＮＴ（登録商標）に匹敵したことを示した。ＭＢＩ２０３ＤＦ−１では、最終評価日までにＵＴＣより有意に少ない成虫出現数があり、対照においてＲＡＤＩＡＮＴに匹敵した。

温室内のイチゴにおける、キイロショウジョウバエスズキ（Drosophila suzukii）、（スポットウイングキイロショウジョウバエ（ＳＷＤ））の防除に関するＭＢＩ−２０３ＤＦ１およびＭＢＩ−２０３ＤＦ２の効力
この試験は、温室内のイチゴ作物におけるスポットウイングキイロショウジョウバエ（ＳＷＤ）の防除に関する、ＭＢＩ−２０３ＤＦ１およびＭＢＩ−２０３ＤＦ２の効力を決定するために実施した。ＭＢＩ−２０３ＤＦ１およびＭＢＩ−２０３ＤＦ２の実験処理は、反復プロットに１ｌｂ／ａおよび４ｌｂ／ａの割合で施した。処理は１．５ｏｚ／ａの割合で市販の標準、Ｅｎｔｒｕｓｔ（登録商標）と比較した。全ての処理剤は０．０５％ｖ／ｖの割合で界面活性剤ＳＩＬＷＥＴ（登録商標）Ｌ７７（Ｃｈｅｍｔｕｒａ ＡｇｒｏＳｏｌｕｔｉｏｎｓ、Ｉｎｃ）と組合せた。１種のイチゴ科植物を含有する各反復プロットをケージに入れて、昆虫集団の移動を妨げた。

第３世代の研究室で飼育したＳＷＤ羽根付き成虫を、各々のケージ付きイチゴ苗木においてリリースした。施用前（事前数）、（ＤＡＡ）、７ＤＡＡ、および１１ＤＡＡの施用後４日に、成虫ＳＷＤの数を記録した。イチゴ当たりのＳＷＤ幼虫の数は１４ＤＡＡ、２１ＤＡＡ、２８ＤＡＡ、および３５ＤＡＡで記録した。ＬＳＤ試験およびα＝０．０５でＡＮＯＶＡ平均比較を使用して、統計値を解析した。

初回施用後、ＭＢＩ−２０３処理はスポットウイングキイロショウジョウバエ成虫の累進的減少を示し、ＤＦ１製品とＤＦ２製品の両方に関して一定の応答を観察した。活性成分としてスピノサドを含有するＥＮＴＲＵＳＴ（登録商標）、（Ｄｏｗ ＡｇｒｏＢｉｏＳｃｉｅｎｃｅｓ）と有意に比較可能ではないが、４ｌｂ／ａでのＭＢＩ−２０３ＤＦ２は、（ＤＡＡ）の初回施用後７日でのＵＴＣと比較して、成虫集団を２５％有意に減少させた。１１ＤＡＡにより、ＵＴＣと統計上異ならないが、４ｌｂ／ａでＤＦ１とＤＦ２の両方が成虫数を４４％減少させた。両方のＭＢＩ−２０３製品が、ＳＷＤ幼虫数の減少に関して有意な結果を示した。全ての評価において、４ｌｂ／ａでのＤＦ２は、活性成分としてスピノサドを含有するＥＮＴＲＵＳＴ（登録商標）、（Ｄｏｗ ＡｇｒｏＢｉｏＳｃｉｅｎｃｅｓ）、７８％と比較して、イチゴ当たりの幼虫数を７１％有意に減少させ、さらに２１ＤＡＡにより、幼虫数は全てのＭＢＩ−２０３処理によって７２％まで防除され、いずれもＥＮＴＲＵＳＴ（登録商標）、（Ｄｏｗ ＡｇｒｏＢｉｏＳｃｉｅｎｃｅｓ）に匹敵した。幼虫数に対して、ＭＢＩ−２０３ＤＦ１とＤＦ２の両方に関して一定の応答を観察した。
結果

発見は以下のように要約することができる：
●ＳＷＤ成虫および幼虫数の減少に関して、ＭＢＩ−２０３ＤＦ１とＤＦ２の一定の応答を観察した。
●４ｌｂ／ａでのＭＢＩ−２０３ＤＦ２は、７ＤＡＡで成虫集団を２５％有意に減少させた。
●試験を通じて、４ｌｂ／ａでのＤＦ２はイチゴ当たりの幼虫数を有意に減少させ、ＥＮＴＲＵＳＴに匹敵した。

両製品の施用は成虫集団に対して大きな効果を示さなかったが、それは次世代の幼虫集団を有意に減少させた。

アブラムシに対するＭＢＩ−２０３の忌避効果
モモアカアブラムシに関する、様々な濃度のＭＢＩ−２０３の忌避効果の評価を実施した。具体的には、３つのＭＢＩ−２０３水中処理濃度（１％ｖ／ｖ、３％ｖ／ｖおよび１０％ｖ／ｖ）を評価した。１０％ｖ／ｖ濃度のＭＢＩ−２０３を陽性対照として、およびｄＨ_２Ｏ単独処理を陰性対照として使用した。各々の処理溶液は０．０１％ＴＷＥＥＮ２０と共に加えた。

前述のように各ＭＢＩ−２０３濃度でペッパーリーフディスクを処理することにより、バイオアッセイを実施した。（３〜４週齢のコショウ植物由来の）ペッパーリーフディスクを、２３ｍｍクッキーカッターを使用して円形に切断し、葉の平坦部分を選択し、化合物を用いた処理後寒天プレート上に、リーフディスクを均一に平坦に置くことができることを確実にした。１％寒天溶液を加熱によって溶かし、１４５ｍｍ×２０ｍｍペトリプレートに注ぎ、リーフディスクを支え湿度を維持するほど十分にプレートの底部表面を覆った。室温で冷却することにより寒天を凝固させた。

リーフディスクの処理は、ガラス製ペトリ皿に処理溶液を注ぐことにより実施した。皿中の溶液によって、皿を浸漬、軽く攪拌してリーフディスクを完全に浸漬およびコーティングすることにより、リーフディスクを処理した。浸漬によるリーフディスクの処理は１分間実施した。次いで処理したリーフディスクは、ピンセットを使用して溶液からそれらを取り出し、ヒュームフード内で１０〜１５分、または葉表面中の溶液が完全に乾燥蒸発するまでそれらを放置することによって乾燥させた。リーフディスクが乾燥した後、リーフディスクを置いた寒天上に４０μＬの水を注いだ。処理したリーフディスクは次いで互いに等距離に置き、湿潤寒天上では軸から離して各々のディスクを置いた。各々のディスクは軽くプレスして寒天上に完全に打ち延ばし、２０匹の３〜４日齢ＧＰＡ成虫を、ファインペイントブラシを使用して皿の中心に導入した。次いでプレートをカバーしパラフィンで密閉した。ペトリプレートカバーには通気用の小さな穴を開け凝縮を妨げた。

試験は３連で実施した。成虫および若虫の忌避データは、処理したリーフディスクにプレート内の成虫を曝した後２４時間で決定した。各リーフ中に存在したアブラムシ（成虫および若虫）の数を数え、データを記録し分析した。

結果
ＭＢＩ−２０３はＧＰＡ成虫および若虫に対して忌避性があり、異なるＭＢＩ−２０３濃度で９７〜９９％の忌避率である（表１８）。図６は、処理濃度間の統計差異を示す。３％および１％ｖ／ｖ濃度でのＭＢＩ−２０３には、それぞれ９７％および９９％忌避率の計算上の平均忌避率があった。

ＭＢＩ−２０３の施用によってアブラムシの子孫が減少する
３％ｖ／ｖ濃度でのＭＢＩ−２０３を試験して、モモアカアブラムシ（ＧＰＡ）成虫の子孫生成に対する化合物の効果を決定した。３％ｖ／ｖのＭＢＩ−２０３でペッパーリーフディスクを処理することにより、バイオアッセイを実施した。（３〜４週齢のコショウ植物由来の）ペッパーリーフディスクを、２３ｍｍクッキーカッターを使用して円形に切断し、葉の平坦部分を選択し、寒天プレート上に、ディスクを均一に平坦に置くことができることを確実にした。１％寒天溶液を加熱によって溶かし、３０μＬを各ペトリプレート（１６ｍｍ×３５ｍｍ通気孔あり、ポリスチレン製ペトリプレート）に注ぎ、リーフディスクを支え湿度を維持するほど十分にプレートの底部表面を覆った。室温で冷却することにより寒天を凝固させた。リーフディスクの処理は、ガラス製ペトリ皿に処理溶液を注ぐことにより実施した。皿中の溶液によって、皿を浸漬、軽く攪拌してリーフディスクを完全に浸漬およびコーティングすることにより、リーフディスクを処理した。浸漬によるリーフディスクの処理は１分間実施した。処理したリーフディスクは、ヒュームフード内で１０〜１５分、または葉表面中の溶液が完全に乾燥蒸発するまで乾燥させた。処理した各々のリーフディスクは個別に寒天プレート上に置き、湿潤寒天上では軸から離してリーフディスクを置き、軽くプレスして寒天上にディスクを完全に打ち延ばした。処理したリーフディスク（処理）を含む各プレート中に、６匹のＧＰＡ成虫（３〜４日齢）を導入した。次いで成虫アブラムシを含むプレートをパラフィンでカバーした。パラフィンカバーには通気用の小さな穴を開け凝縮を妨げた。プレートは室温でインキュベートした。処理したリーフディスクに成虫を曝した後３日で、子孫（初期若虫段階）を計数した。実験は３連で行い、全実験を５回繰り返した。

図７は、処理したリーフディスクへの露出後３日で、ＭＢＩ−２０３がＧＰＡ成虫の子孫生成に有意に影響を与えたことを示す。図５中のグラフは実施した５回の試験の結果であり、ＧＰＡ成虫の子孫の減少は陰性対照（水のみで処理）と比較して５０％を超えたことを観察し、その性能は陽性対照（１０％Ａｖｉｄ）に匹敵し、子孫生成においては統計上同じであることを示した。配合製品ＤＦ２と比較して子孫生成の数を試験したとき、ＭＢＩ−２０３標準と３％ｖ／ｖ濃度のＤＦ２の間に統計差異はなかった（図８）。９０％を超える子孫（若虫）の減少が、陰性対照と比較してＭＢＩ−２０３およびＤＦ２処理において示され、１０％ｖ／ｖ濃度のＡｖｉｄ（陽性対照）より有意に優れていたことを示した。

クロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）からのビオラセインおよびオリゴ−（β−ヒドロキシ酪酸）の抽出
クロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）の培養物から抽出した化合物を精製するため、以下の手順を使用した：

Ｌ−ブロス中２０−Ｌ発酵クロモバクテリウムサブスチュガエ（C.substugae）由来の全細胞ブロス（ＷＣＢ）を、酢酸エチルを使用した液液抽出法により抽出した。酢酸エチル層を分離し、ロータリー式エバポレーターを使用し真空下で乾燥させて粗製抽出物を得た。次いで粗製抽出物を、ジクロロメタン（ＤＣＭ）、酢酸エチル（ＥＡ）、メタノール（ＭｅＯＨ）などの異なる溶媒を使用し、溶媒の混合物で洗浄すること（洗浄）により分画化した。次いでこれらの画分を、ロータリー式エバポレーターを使用して乾燥状態まで濃縮し、生成した乾燥残渣は異なる有害生物（昆虫、線虫）を使用して生物活性に関してスクリーニングする。次いで活性画分をＳｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ２０サイズ排除クロマトグラフィー（ＣＨ_２Ｃｌ_２／ＣＨ_３ＯＨ；５０／５０）に施して１０画分を得た（図９）。次いでこれらの画分を、ロータリー式エバポレーターを使用して乾燥状態まで濃縮し、モモアカアブラムシ、モモアカアブラムシ（ＧＰＡ）の子孫生成による昆虫忌避性アッセイ、および抗線虫バイオアッセイ（エムインコグニタ（M.incognita）および／またはエムハプラ（M.hapla）を使用して、生成した乾燥残渣（画分）を生物活性に関してスクリーニングした。次いで活性画分を、逆相ＨＰＬＣ（Ｓｐｅｃｔｒａ Ｓｙｓｔｅｍ Ｐ４０００（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）に施し純化合物を得て、次いでそれを前述のバイオアッセイでスクリーニングして活性化合物を位置特定／同定した。化合物の同一性を確認するため、ＬＣ／ＭＳおよびＮＭＲなどの追加的質量分析データを記録した。

強力な殺虫忌避性化合物を画分Ｆ８、Ｆ９およびＦ１０から単離し、ビオラセイン（２）として同定した。主要ＤＣＭ画分からの抗線虫活性化合物はオリゴ−（β−ヒドロキシ酪酸（４）として同定した。

質量分析による化合物の分析
質量分析による活性ピークの分析を、ＬＣＱ ＤＥＣＡ ＸＰ^ｐｌｕｓ質量分析計（Ｔｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ Ｃｏｒｐ．，Ｓａｎ Ｊｏｓｅ，ＣＡ）においてフルスキャンモード（ｍ／ｚ １００〜１５００Ｄａ）でポジティブとネガティブイオン化モードの両方を使用して、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｎｎｉｇａｎ ＬＣＱ Ｄｅｃａ ＸＰ Ｐｌｕｓエレクトロスプレー（ＥＳＩ）装置で実施する。Ｔｈｅｒｍｏ高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）装置は、Ｆｉｎｎｉｇａｎ Ｓｕｒｖｅｙｏｒ ＰＤＡおよび検出器、オートサンプラーおよび、ＭＳポンプおよび４．６ｍｍ×１００ｍｍのＬｕｎａ Ｃ１８ ５μ１００Ａカラム（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ）を備えていた。溶媒系は水（溶媒Ａ）とアセトニトリル（溶媒Ｂ）からなっていた。移動相は１０％溶媒Ｂで始まり、２０分かけて１００％溶媒Ｂまで直線的に増大し、次いで４分間保ち、最後に３分かけて１０％溶媒Ｂに戻し、３分間保つ。流量は０．５ｍＬ／分である。注射体積は１０μＬであり、サンプルはオートサンプラーにおいて室温で保つ。ＬＣおよび逆相クロマトグラフィーを利用して、ＬＣ−ＭＳによって化合物を分析する。質量分析による本発明の化合物の分析を以下の条件下で行う。窒素ガスの流量は、それぞれシースおよび補助／スイープガスの流量に関して３０および１５ａｒｂで固定した。エレクトロスプレーイオン化は、５０００Ｖに設定したスプレー電圧および３５．０Ｖのキャピラリー電圧で実施した。キャピラリー温度は４００℃に設定した。データはＸｃａｌｉｂｕｒソフトウェアで分析した。オリゴ−（β−ヒドロキシ酪酸）（１）の分析は、ＵＣ Ｄａｖｉｓ質量分析施設でＬＴＱ Ｏｒｂｉｔｒａｐ ＸＬハイブリッド型フーリエ変換質量分析計を使用して実施した。

ＮＭＲ質量分析による化合物の分析
ＮＭＲ−ＮＭＲスペクトルをＢｒｕｋｅｒ６００ＭＨｚ勾配磁場型質量分析計で測定した。参照は内部標準物質テトラメチルシランに設定する（ＴＭＳ、０．００ｐｐｍ）。

化合物の精製
ジクロロメタン（ＤＣＭ）画分をメタノールで粉砕し、得られた白い固体を濾過してオリゴ−（β−ヒドロキシ酪酸）（１）を得た。

化合物の同定
オリゴ−（β−ヒドロキシ酪酸）（１）
化合物４の^１ＨＮＭＲスペクトルは、各１プロトンの相対強度においてδ５．２２（ｓｅｘｔ）、２．６２（ｄｄ）および２．５３（ｄｄ）でシグナルを示した。これらに加えて、ダブレットとしてδ１．３１でのメチルシグナルも観察した。^１３ＣＮＭＲスペクトルは、δ１６９．２、６７．６、４０．９および１９．８でわずか４個の炭素シグナルを示した。詳細な１Ｄおよび２ＤＮＭＲ分析によって、８６の断片質量を有する−（−Ｏ−ＣＨＣＨ_３−ＣＨ_２−ＣＯ−）−の部分構造を得る結果となった。この化合物のＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＥＳＩ ＭＳ（図２）は、［（ｎ×８６）＋Ｎａ］の分子質量を有するオリゴマーの混合物に関して典型的なシグナルパターンを示し、生成物がｎ＝１０〜２５でオリゴ−（β−ヒドロキシ酪酸）１の混合物であったことに対応した。この化合物は、数種の細菌から単離されたことが報告されている（Singh et al.,2011;Maskey et al.,2002;Hahn et al.,1995）。ＤＣＭ画分から得たこの化合物の効能は、７５％固定を示しエムハプラ（M.hapla）を使用したｉｎ ｖｉｔｒｏアッセイにおいて確認した（図１０）。

クロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）の画分および純化合物のｉｎ ｖｉｔｒｏ試験
画分および純化合物をジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）に溶かし、ｉｎ ｖｉｔｒｏ９６ウエルプラスチック製細胞培養プレートバイオアッセイにおいて試験した。５０μｌ水溶液中の約１５〜２０匹の線虫を、２５℃で２４時間、４ｍｇ／ｍｌのサンプル１００μｌに曝した。インキュベーション時間が終了した後、サンプルで処理した各ウエル中の目視による若年性線虫（Ｊ２）の固定段階に基づいて結果を記録し、各処理剤はウエル中４回の反復で試験した。クロモバクテリウムサブスチュガエ（C.substugae）画分および化合物４の２つの異なる９６ウエルプレートバイオアッセイの結果を示す図５中に結果を示した。３個の対照、１個の陽性（１％Ａｖｉｄ）と２個の陰性（ＤＭＳＯおよび水）を各試験中に含めた。両試験（Ｔ１）と（Ｔ２）はエムハプラ（M.hapla）線虫を使用して実施した。

忌避性を担う化合物の単離および同定
ＤＣＭ、ＥＡ、ＭｅＯＨおよびＷＡＳＨなどの主な画分を、以下で詳細に記載するようにモモアカアブラムシ（ＧＰＡ）バイオアッセイを使用して忌避活性に関して試験した。ＥＡおよびＭＥＯＨ画分に関して最も強力な忌避性を観察した。これらの画分のＬＣＭＳ分析は類似した化学的プロファイルを示し、さらにＭｅＯＨ画分の収率はＥＡ画分より高かったので、詳細な化学的作業はＭｅＯＨ画分を使用して実施した。Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ２０サイズ排除クロマトグラフィー（ＣＨ_２Ｃｌ_２／ＣＨ_３ＯＨ；５０／５０）を使用しＭｅＯＨ画分をさらに分画化し１０画分を得た（図９）。最も強力な活性を画分Ｆ９およびＦ１０において観察した。ＨＰＬＣとＳｅｐｈａｄｅｘＬＨ２０の組合せによる、これらの画分のバイオアッセイ支援型精製は、忌避活性を担う化合物としてビオラセインを与えた。ビオラセインはアブラムシ子孫の試験においても試験した。

モモアカアブラムシに対するＭＢＩ−２０３画分の忌避効果
方法
モモアカアブラムシ（ＧＰＡ）に関する選択バイオアッセイを、ＭＢＩ−２０３画分および純化合物を使用して行った。クロモバクテリウムサブスチュガエ（C.substugae）（ＭＢＩ−２０３）の細胞ペーストの抽出から得た画分および純化合物（ビオラセイン）を、忌避性バイオアッセイにより殺虫効率に関して試験した。（３〜４週齢のコショウ植物由来の）ペッパーリーフディスクを、２３ｍｍクッキーカッターを使用して円形に切断し、葉の平坦部分を選択し、化合物を用いた処理後寒天プレート上に、リーフディスクを均一に平坦に置くことができることを確実にした。水中に１パーセント（％）寒天を調製した。１％寒天溶液を加熱によって溶かし、１４５ｍｍ×２０ｍｍペトリプレートに注ぎ、リーフディスクを支え湿度を維持するほど十分にプレートの底部表面を覆った。室温で冷却することにより寒天を凝固させた。

リーフディスクの処理は、１００μＬのＭＢＩ−２０３抽出液をリーフディスクの下側にピペットで軽く注入することにより行った。ラベルした１２ウエルプレートカバーにディスクを平坦に置くことにより、処理したリーフディスクを次いで乾燥させた。リーフディスクが乾燥した後、リーフディスクを置いた寒天上に４０μＬの水をピペットで注いだ。処理したリーフディスクは次いで互いに等距離に置き、湿潤寒天上では軸から離し、処理した表面を上にして各々のディスクを置いた。各々のディスクは軽くプレスして寒天上に完全に打ち延ばした。処理したリーフディスクを置いた後、２０匹の３〜４日齢ＧＰＡ成虫を、ファインペイントブラシを使用して皿の中心に導入した。次いでプレートをカバーしパラフィンで密閉した。ペトリプレートカバーには通気用の小さな穴を開け凝縮を妨げた。

全ての試験は３回の反復で行った。試験用の溶媒を選択するため、粗製抽出物の初期試験を、溶媒としてメタノールとアセトンを使用して行った。この試験は、アセトンが溶媒として優れていたことを示した。画分および純化合物（ビオラセイン）を含む連続サンプル試験を、溶媒としてアセトンを使用して実施した。成虫および若虫の忌避性に関するデータは、処理したリーフディスクに成虫を曝した後２４時間で決定した。アブラムシ（成虫および若虫）の数を数え、データを記録し分析した。忌避率は以下のように計算した：
忌避率％＝１００−｛処理したリーフディスク上の（［Ｎ＋Ａ］）／ペトリ皿上の［Ｎ＋Ａ］×Ｘ１００｝、
ここで、Ａは成虫を表し、Ｎは若虫を表す。

結果
ＭＢＩ−２０３画分に関する忌避率試験は粗製抽出物で始めた。メタノールおよびアセトン溶媒中の粗製抽出物を試験し、結果の分析は、図１１中に示すように有意な差を示した。メタノール溶媒とアセトン溶媒の両方中のＭＢＩ−２０３の粗製抽出物で処理したリーフディスクは、陰性対象のそれらより、モモアカアブラムシ若虫と成虫の定着応答の統計上有意な差をもたらした。図１１ＡおよびＢは、アブラムシに対するＭＢＩ−２０３の忌避効果を示した。メタノール溶媒はアブラムシに対する忌避効果を示したが（図１１Ａ）、ＭＢＩ−２０３抽出物および陽性対照（ａｖｉｄ１０％）との統計差は示されなかった。溶媒アセトンは画分において使用するのに優れた溶媒であることが示された。それはＧＰＡ若虫および成虫に対する忌避性を示さず、陰性対照と統計上同じ、リーフディスクに定着した平均数の若虫および成虫を有していたからである（図１１Ｂ）。

ＭＢＩ−２０３の画分はＧＰＡ若虫および成虫に対する強い忌避率を示した。処理平均間の統計差を観察した（図１２ＡおよびＢ）。画分物質ＥＡおよびＭｅＯＨは若虫および成虫に対して１００％の忌避率を引き起こし、一方で洗浄物質は９４％の忌避率を引き起こし、これは陽性対照（ＭＢＩ−２０３ １０％ｖ／ｖ）と統計上互いに異ならない（表１９）。

さらに、ＭｅＯＨ画分から得た１０画分を溶媒としてアセトンを使用して試験し、純ビオラセイン化合物を含むサンプル（Ｆ９、Ｆ１０）は、モモアカアブラムシの成虫および若虫に対して高い忌避効果を示した（表２０）。わずか２つの非ビオラセイン画分が高い忌避効果を示した（Ｆ２とＦ３）。画分Ｆ９とＦ１０はさらに精製し、それによって１００％の忌避率を有するビオラセインを得た。データはビオラセインが、未熟な昆虫に対する忌避性を引き起こす原因の化合物であることを明らかにした。画分物質Ｆ６〜Ｆ１０はビオラセインを含有し、Ｆ９とＦ１０は純ビオラセイン化合物を含有していたようである。

ビオラセインはアブラムシの子孫を減少させる
アセトン中に２つの濃度、０．５μｇ／ｍＬと１．０μｇ／ｍＬの純ビオラセイン化合物を試験中で使用して、モモアカアブラムシ（ＧＰＡ）成虫の子孫生成に対する化合物の効果を決定した。アセトン中に異なるビオラセイン濃度でペッパーリーフディスクを処理することにより、バイオアッセイを実施した。（３〜４週齢のコショウ植物由来の）ペッパーリーフディスクを２３ｍｍ径ディスクに切断し、葉の平坦部分を選択し、化合物を用いた処理後寒天プレート上にディスクを均一に平坦に置くことができることを確実にした。１％寒天溶液を調製し加熱によって溶かし、３０μＬをペトリ皿（１６ｍｍ×３５ｍｍ通気孔あり、ポリスチレン製ペトリプレート）に注ぎ、リーフディスクを支え湿度を維持するほど十分にプレートの底部表面を覆った。室温で冷却することにより寒天を凝固させた。ビオラセインによる処理は、２００μＬピペットマンを使用しリーフディスクに１００μＬサンプル溶液を軽く拡散することにより行った。処理は３連で設定した。処理したリーフディスクはフード内で５〜１０分間乾燥させた。陽性対照は１０％ｖ／ｖＡｖｉｄ、陰性対照はｄＨ_２Ｏであり、アセトンはブランクとして使用した。各々の凝固寒天プレートにおいて、２０〜３０μＬのｄＨ_２Ｏを寒天にピペットで注ぎ湿度を維持した。処理した各々のリーフディスクは個別に寒天プレート上に置き、湿潤寒天上では軸から離してリーフディスクを置き、軽くプレスして寒天上にディスクを完全に打ち延ばした。処理したリーフディスク（処理）を含む各プレート中に、６匹のＧＰＡ成虫（３〜４日齢）を導入した。次いで成虫アブラムシを含むプレートをパラフィンでカバーした。パラフィンカバーには通気用の小さな穴を開け凝縮を妨げ、室温に保った。処理したリーフディスクに成虫を曝した後３日で、子孫（初期若虫段階）を計数した。実験は３連で行い、全実験を２回繰り返した。

図１３中に示したように、１．０μｇ／ｍＬでのビオラセインは成虫アブラムシの子孫生成を有意に減少させた。陰性対照（水のみで処理）と比較して約５０％の減少を観察した。露出状態の成虫の大部分は露出後３日で死んだので、陽性対照（１０％Ａｖｉｄ）は最小数の子孫を有していた。この実験では２回の試験を実施し、各々の処理は３回繰り返した。２回の試験は、ビオラセインが子孫に有意に影響を与えたのと一致する結果をもたらした。

他のビオラセイン産生株がアブラムシに対する忌避性を示す
モモアカアブラムシに対する他のクロモバクテリウム（Chromobacterium）種の忌避効果も評価した。評価したクロモバクテリウム（Chromobacterium）種は、クロモバクテリウムピスシンエア（Chromobacterium piscinae）ＤＳＭ２３２７８、クロモバクテリウムシュードビオラセム（C.pseudoviolaceum）ＤＳＭ２３２７９、クロモバクテリウムヘモリチカム（C.haemolyticum）ＤＳＭ１９８０８およびクロモバクテリウムアクアチカム（C.aquaticum）ＤＳＭ１９８５２である。２種がビオラセイン産生種であり（クロモバクテリウムピスシンエア（C.piscinae）およびクロモバクテリウムシュードビオラセム（C.pseudoviol））、一方他の２種はビオラセインを産生しないことが文書化されている。微生物はＬＢブロスにおいて２６℃、および１００ｒｐｍで５日間増殖させた。発酵の最後に、ブロスを採取しバイオアッセイ用に等分した。水中５％ｖ／ｖでの処理濃度をＧＰＡ成虫に対して試験した。ＭＢＩ−２０３、１０％ｖ／ｖ濃度を陽性対象として、ｄＨ２Ｏ単独処理を陰性対照として使用した。各々の処理溶液は０．０１％ＴＷＥＥＮ２０と共に加えた。

バイオアッセイは、前に記載したようにペッパーリーフディスクを処理することにより実施した。各々の処理したディスクは軽くプレスして寒天上に完全に打ち延ばした。処理したリーフディスクを置いた後、２０匹の３〜４日齢ＧＰＡ成虫を、ファインペイントブラシを使用して皿の中心に導入した。次いでプレートをカバーしパラフィンで密閉した。ペトリプレートカバーには通気用の小さな穴を開け凝縮を妨げた。

試験は３回の反復で行った。成虫および若虫の忌避性に関するデータは、プレートおよび処理したリーフディスクに成虫を曝した後２４時間で決定した。各々のリーフディスク上に定着したアブラムシ（成虫および若虫）の数を数え、データを記録し分析した。忌避率は以下のように計算した：

ここで、Ｎ＝若虫の数、およびＡ＝成虫アブラムシの数

結果は表２１と２２ならびに図１４と１５中に示す。幾つかのビオラセイン産生クロモバクテリウム（Chromobacterium）種はＧＰＡ成虫および若虫に対する忌避性を示し、処理手段間で統計差があった。ビオラセインを産生したクロモバクテリウム（Chromobacterium）種には７５％（クロモバクテリウムピスシンエア（C.piscinae）、８６％（クロモバクテリウムシュードビオラセム（C.pseudoviolaceum）の平均忌避率％があり、一方で非ビオラセイン産生株（クロモバクテリウムアクアチカム（C.aquaticum）とクロモバクテリウムヘモリチカム（C.haemolyticum）は未処理対照（水）と統計上異ならなかった。非ビオラセイン産生株に関して、わずかな忌避傾向を観察した。

安息香酸ナトリウム有りおよび無しでのクロモバクテリウム（Chromobacterium）配合物の安定性の比較
配合物１は、クロモバクテリウム（Chromobacterium）細胞濃縮採取物３２部、クロモバクテリウム（Chromobacterium）発酵ブロス上清６２．５部、ｎ−ヘキサノール１部、アルギン酸ナトリウム０．５部、ソルビタンエステルエトキシレート２部、およびｄ−リモネン２部を含有する。これらの配合物成分は、均一で安定した混合物を確実にするそれらの機能性に関して選択し、ＵＳＥＰＡリスト４上のそれらの列挙によりさらに好ましい。ＥＰＡリスト４上の成分の列挙は、環境および毒性に対する効果の点でそれは最小限の問題であるとみなす。配合物２は、クロモバクテリウム（Chromobacterium）細胞濃縮採取物３２部、クロモバクテリウム（Chromobacterium）発酵ブロス上清５４．５部、ｎ−ヘキサノール１部、アルギン酸ナトリウム０．５部、ソルビタンエステルエトキシレート２部、および安息香酸ナトリウム１０部を含有する。

表２３は、長期の時間にわたる配合物１および２の保存の結果を例示する。

配合物２は配合物１より安定性がある。水溶性の安息香酸塩は、太陽光への露出が原因の物理的分離および活性消失に対して生物殺有害生物剤組成物を安定化するようである。安息香酸イオンは、生物学的基質が均一に残るような溶解および電解質平衡性を与え、これが殺有害生物剤組成物に関する長期の貯蔵寿命をもたらす。安息香酸イオンは、それを野外作物に施した後、製品に関する紫外線吸収をさらにもたらす。ＵＶ防御によって、殺虫活性が少なくともさらに数日間延びる。

有害生物死亡率に対する安息香酸ナトリウムの効果
クロモバクテリウムサブスチュガエ（Chromobacterium substugae）、ｄ−リモネン、ヘキサノール、プロピレングリコールを含有する最終製品ＭＢＩ−２０３、および炭酸カルシウム、安息香酸ナトリウム、または酸化チタンと組合せたパラベン配合物（ＭＢＩ−２０３ＥＰ）をプラスチック製ペトリ皿に置き、パラフィンで密閉した。プレートは太陽光の下、７時間屋外に置いた。太陽光に曝した後、物質は屋内に持ち込み、オートクレーブ処理Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ水で１．５％および３％ｖ／ｖの濃度に希釈した。次いで物質を人工飼料上に置き、乾燥させ、新生キャベツシャクトリムシ、トリコプルシアニ（Trichoplusia ni）に与えた。死亡率は飼料外寄生後３日と４日で記録した。結果は表２４および図１６中に示す。

ブロッコリーの試験
４〜５週齢のパックマンブロッコリーに、安息香酸ナトリウム有りおよび無しでの３％ｖ／ｖ希釈のＭＢＩ−２０３最終製品（ｄ−リモネン配合物）（ＭＢＩ−２０３ＥＰ）を噴霧した。９ｉｎ^２ポット中の各々の植物に５００ｕＬの処理剤を与えた。Ｔｗｅｅｎ−２０を０．０１％の最終濃度で、全サンプル中に含めた。五匹の成虫キャベツアブラムシ、ブレビコリネブラシカエ（Brevicoryne brassicae）を各々の植物に配置した。植物と昆虫は成長光下でインキュベートした（７５〜８５°Ｆ、１６時間明／８時間暗）。生存状態のアブラムシは外寄生後３、５、および７日で記録した。安息香酸ナトリウム配合物は、最終製品単独より良い防除をもたらしたようであった（図１７）。

レッドキャベツの試験
安息香酸ナトリウム有りおよび無しでの１０％ｖ／ｖ希釈のＭＢＩ−２０３最終製品（ｄ−リモネン配合物）（ＭＢＩ−２０３ＥＰ）を、約３０ｇａｌ／エーカーの処理率でレッドキャベツに噴霧した。１０％ｖ／ｖでの配合物対照（ロット２４０３−８３−３）もアッセイ中に含めた。植物が乾燥した後、それらに１０匹のキャベツアブラムシを外寄生させた。アッセイは３、６、および８日目に記録した。防除率％はヘンダーソン−ティルトンの補正を施すことにより決定した。結果は図１８中に示す。最終製品＋安息香酸ナトリウムの配合物には、最終製品単独または配合物対照単独より、良いアブラムシの防除があった。

安息香酸ナトリウムと炭酸カルシウムの比較
安息香酸ナトリウムまたは炭酸カルシウムの濃度が様々な非希釈ＭＢＩ−２０３最終製品（ＭＢＩ−２０３ＥＰ）を、密閉プラスチック製ペトリ皿において１日太陽光に曝した。露光および非露光物質を次いで３％ｖ／ｖ希釈物に希釈し、人工飼料に施した。新生キャベツシャクトリムシに飼料を施し、死亡率は飼料外寄生後４日で記録した。結果は図１９中に示す。１０％および１５％濃度での安息香酸ナトリウムが、最も経済的な価格で最小の活性劣化となるようである。

リグニンスルホン酸塩の効果
非希釈噴霧乾燥細胞および様々な添加剤をプラスチックバイアルに注ぎ、４０〜６５°Ｆ、日照、数日散水ありの環境に４日間曝した。光および非露光サンプルを６％ｖ／ｖに希釈し、パックマンブロッコリー植物に噴霧した。乾燥植物には５匹の未熟なキャベツアブラムシを外寄生させた。アブラムシは外寄生後３日と６日で記録した。防除はヘンダーソン−ティルトンの補正を施すことにより決定した。アッセイを６日目まで続けると、噴霧乾燥細胞および安息香酸ナトリウムは、３日目で最も高い殺傷率の１つを有し防除を維持した（図２０参照）。

ＭＢＩ−２０３最終製品（ｄ−リモネン配合物）（ＭＢＩ−２０３ＥＰ）を、様々な濃度の安息香酸ナトリウムおよびリグニンスルホン酸塩と混合した。処理剤は１０％ｖ／ｖ濃度に希釈し、プラスチック製ペトリ皿にピペットで注ぎ、４日連続で太陽光に曝した。次いでサンプルは、人工飼料の処理によりキャベツシャクトリムシ活性に関して試験した。リグニンスルホン酸塩処理は、人工飼料の表面に外皮を形成する傾向があった。安息香酸ナトリウムのみを含んだ最終製品には、露光前後で最も有望な殺傷能力があったようである（図２１および２２参照）。

別の試験では、１０％安息香酸ナトリウムおよび様々な濃度のリグニンスルホン酸塩を含む１０％ｖ／ｖ希釈のＭＢＩ−２０３最終製品（ｄ−リモネン配合物）を、密閉プラスチック製ペトリ皿において４日連続で太陽光に曝した。露光後、４週齢のパックマンブロッコリーに、約３０ｇａｌ／エーカーの処理率で処理剤を噴霧した。３秒後、幼虫段階のキャベツシャクトリムシを各々の処理植物に置き、アッセイの３日目および４日目に死亡率を記録した。太陽光下の植物の中では、安息香酸ナトリウムのみのサンプルに最も高い防除があった（図２３参照）。

具体的な実施形態を参照しながら本発明を記載してきたが、様々な均等物、変形および変更形態を使用することができ、それらは依然本発明の範囲内にあることは明らかなので、その詳細は限定的なものとして解釈すべきではない。

様々な参考文献を本明細書全体で引用し、その各々は参照としてその全容を本明細書中に組み込む。
（参考文献）

Claims (5)

1. ２スポットハダニ（two spotted spider mite）、イエバエ（Musca domestica）、スポットウイングキイロショウジョウバエ（spotted wing Drosophila）、キャベツ根蛆虫（cabbage root maggots）、モモアカアブラムシ（green peach aphid）、ジャガイモシストセンチュウ（Potato cyst nematode）、リタービートル（Litter beetle）、セマダラコガネ幼虫（Oriental beetle）、リゾトログスマジャリス（Rhizotrogus majalis）、およびコフキコガネ幼虫（cockchafer）から選択される有害生物の外寄生（infestation）を調節する方法であって、
   調節が望まれる場所において、クロモバクテリウムサブスチュガエＮｏｖ（Chromobacterium substugae Nov）(NRRL B-30655)発酵から回収された全細胞ブロス、濾過物、又は抽出物を前記外寄生を調節するのに効果的な量施用することを含む、方法。
2. 前記調節が望まれる場所が植物上、植物種子または土壌中である、請求項１に記載の方法。
3. （ａ）単離したクロモバクテリウムサブスチュガエＮｏｖ（Chromobacterium Subtsugae Nov）（NRRL B-30655）若しくは全細胞ブロス、濾過物、上清、抽出物、又はこれらに由来する殺有害生物活性を有する殺有害生物活性物質、および
   （ｂ）リグニン塩及び安息香酸塩である太陽光防御物質
   を含む、有害生物の外寄生を調節するための安定状態の生物学的殺有害生物剤組成物であって、
   前記有害生物が、２スポットハダニ（two spotted spider mite）、イエバエ（Musca domestica）、スポットウイングキイロショウジョウバエ（spotted wing Drosophila）、キャベツ根蛆虫（cabbage root maggots）、モモアカアブラムシ（green peach aphid）、ジャガイモシストセンチュウ（Potato cyst nematode）、リタ-ビートル（Litter beetle）、セマダラコガネ幼虫（Oriental beetlw）、リゾトログスマジャリス（Rhizotrogus majalis）、およびコフキコガネ幼虫（cockchafer）から選択される、組成物。
4. 前記安息香酸塩が、ナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、およびそれらの組合せから選択され、前記リグニン塩が、ナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、およびそれらの組合せの中和イオン由来のリグニンスルホン酸塩から選択される、請求項３に記載の組成物。
5. 前記クロモバクテリウムサブスチュガエＮｏｖ（NRRL B-30655）が少なくとも５％の量で存在し、前記太陽光防御物質が少なくとも５％の量で存在する、請求項３に記載の組成物。

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