PL244267B1 - Sposób wytwarzania folii kefiranowej oraz folia kefiranowa - Google Patents

Sposób wytwarzania folii kefiranowej oraz folia kefiranowa Download PDF

Info

Publication number
PL244267B1
PL244267B1 PL443104A PL44310422A PL244267B1 PL 244267 B1 PL244267 B1 PL 244267B1 PL 443104 A PL443104 A PL 443104A PL 44310422 A PL44310422 A PL 44310422A PL 244267 B1 PL244267 B1 PL 244267B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
kefiran
amount
mixture
violacein
per
Prior art date
Application number
PL443104A
Other languages
English (en)
Other versions
PL443104A1 (pl
Inventor
Dorota Chełminiak-Dudkiewicz
Marta Ziegler-Borowska
Original Assignee
Univ Mikolaja Kopernika W Toruniu
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Mikolaja Kopernika W Toruniu filed Critical Univ Mikolaja Kopernika W Toruniu
Priority to PL443104A priority Critical patent/PL244267B1/pl
Publication of PL443104A1 publication Critical patent/PL443104A1/pl
Priority to EP23020544.5A priority patent/EP4397326A1/en
Publication of PL244267B1 publication Critical patent/PL244267B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L15/00Chemical aspects of, or use of materials for, bandages, dressings or absorbent pads
    • A61L15/16Bandages, dressings or absorbent pads for physiological fluids such as urine or blood, e.g. sanitary towels, tampons
    • A61L15/22Bandages, dressings or absorbent pads for physiological fluids such as urine or blood, e.g. sanitary towels, tampons containing macromolecular materials
    • A61L15/28Polysaccharides or their derivatives
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L15/00Chemical aspects of, or use of materials for, bandages, dressings or absorbent pads
    • A61L15/16Bandages, dressings or absorbent pads for physiological fluids such as urine or blood, e.g. sanitary towels, tampons
    • A61L15/42Use of materials characterised by their function or physical properties
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L15/00Chemical aspects of, or use of materials for, bandages, dressings or absorbent pads
    • A61L15/16Bandages, dressings or absorbent pads for physiological fluids such as urine or blood, e.g. sanitary towels, tampons
    • A61L15/42Use of materials characterised by their function or physical properties
    • A61L15/46Deodorants or malodour counteractants, e.g. to inhibit the formation of ammonia or bacteria
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L26/00Chemical aspects of, or use of materials for, wound dressings or bandages in liquid, gel or powder form
    • A61L26/0009Chemical aspects of, or use of materials for, wound dressings or bandages in liquid, gel or powder form containing macromolecular materials
    • A61L26/0023Polysaccharides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L26/00Chemical aspects of, or use of materials for, wound dressings or bandages in liquid, gel or powder form
    • A61L26/0061Use of materials characterised by their function or physical properties
    • A61L26/0066Medicaments; Biocides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L26/00Chemical aspects of, or use of materials for, wound dressings or bandages in liquid, gel or powder form
    • A61L26/0061Use of materials characterised by their function or physical properties
    • A61L26/0071Plasticisers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08JWORKING-UP; GENERAL PROCESSES OF COMPOUNDING; AFTER-TREATMENT NOT COVERED BY SUBCLASSES C08B, C08C, C08F, C08G or C08H
    • C08J5/00Manufacture of articles or shaped materials containing macromolecular substances
    • C08J5/18Manufacture of films or sheets
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2300/00Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
    • A61L2300/20Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices containing or releasing organic materials
    • A61L2300/30Compounds of undetermined constitution extracted from natural sources, e.g. Aloe Vera
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2300/00Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
    • A61L2300/40Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices characterised by a specific therapeutic activity or mode of action
    • A61L2300/404Biocides, antimicrobial agents, antiseptic agents

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Manufacturing & Machinery (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • General Preparation And Processing Of Foods (AREA)
  • Seasonings (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)

Abstract

Przedmiotem zgłoszenia jest sposób wytwarzania folii kefiranowej charakteryzujacy się tym, że kefiran rozpuszcza się w wodzie dejonizowanej o temperaturze od 90 do 100°C w ilości od 0,1 g do 10 g, korzystnie 0,2 g kefiranu na 10 mL wody dejonizowanej, miesza mieszadłem, korzystnie magnetycznym, studzi, dodaje wiolaceinę w ilości od 0,05 mg do 0,2 mg, korzystnie 0,1 mg wiolaceiny na 1 mL mieszaniny, miesza mieszadłem, korzystnie magnetycznym, odgazowuje w suszarce próżniowej, dodaje olejek konopny w ilości od 0,05 mg do 0,2 mg, korzystnie 0,1 mg olejku konopnego na 1 mL mieszaniny, dodaje glicerynę roślinną w ilości od 0,01 g do 0,05 g, korzystnie 0,03 g gliceryny na 1 mL mieszaniny, miesza, i tak otrzymaną jednorodną mieszaninę wylewa na szalkę Petriego i zostawia aż do uformowania folii. Przedmiotem zgłoszenia jest także folia kefiranowa otrzymana powyższym sposobem.

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania folii kefiranowej z dodatkiem wiolaceiny oraz folia kefiranowa.
Kefiran jest egzopolisacharydem, otrzymywanym z mikroorganizmów obecnych w ziarnach kefiru. Wytwarzany jest przez kilka gatunków Lactobacillus, takich jak: L. kefiranofaciens, L. kefirgranum, L. parakefir, L. kefir, L. delbrueckii subsp. Bulgaricus. Ze względu na dobre właściwości mechaniczne i barierowe kefiranu, znajduje on zastosowanie w produkcji folii opakowaniowych, a także może być stosowany jako dodatek do żywności. Co więcej, unikalne cechy kefiranu, takie jak właściwości przeciwbakteryjne, przeciwzapalne, przeciwutleniające i biobójcze, czynią go ponadto dobrym kandydatem na matrycę opatrunkową.
Znane są z publikacji „Synthesis and characterization of biocompatible methacrylated kefiran hydrogels: Towards tissue engineering applications” Radhouani et ah, 2021, gdzie wskazano, że możliwości aplikacji hydrożeli są nadal ograniczone, głównie ze względu na ich niską wytrzymałość mechaniczną i kruchy charakter. Dlatego przeprowadza się kilka fizycznych i chemicznych modyfikacji sieciowania stosowane w celu poprawy ich właściwości. W tych badaniach metakrylowany kefiran został zsyntetyzowany w reakcji Kefiran z bezwodnikiem metakrylowym (MA). Opracowany MA-Kefiran scharakteryzowano fizykochemicznie, i jego właściwości biologiczne oceniane różnymi technikami. Modyfikację chemiczną MA-Kefiran potwierdzono za pomocą 1H-NMR i FTIR, a GPC-SEC wykazało średnią Mw 793 kDa (PDI 1.3). Uzyskane dane mechaniczne wykazały, że MA-Kefiran jest płynem pseudoplastycznym z wytłoczeniem siła 11,21 2,87 N. Ponadto pomyślnie opracowano kriożele MA-Kefiran 3D i w pełni scharakteryzowane. Dzięki mikro-CT i SEM rusztowania wykazały wysoką porowatość (85,53 ± 0,15%) i wielkość porów (33,67 ± 3,13 m), grube ściany porów (11,92 ± 0,44 m) i jednorodną strukturę. MA-Kefiran okazał się biokompatybilny, ponieważ nie wykazuje aktywności hemolitycznej i jest wyższa funkcja komórkowa komórek L929 obserwowana w teście AlamarBlue®. Poprzez włączenie grup metakrylanowych w łańcuchu polisacharydowym kefiranu, opracowano produkt MA-Kefiran w postaci hydrożelu mającego zastosowanie w inżynierii tkankowej i medycynie regeneracyjnej.
Każda rana, od momentu powstania, narażona jest na zakażenie drobnoustrojami, dlatego też do matrycy kefiranowej dodano przeciwbakteryjną wiolaceinę, będącą naturalnym barwnikiem produkowanym przez bakterię Chromobacterium violaceum, nadającym jej charakterystyczne fioletowo-purpurowe zabarwienie. Znane jest wykorzystanie wiolaceiny jako środka owadobójczego (opis patentowy EP 2632272) oraz chroniącego przed infestacją szkodników (opis patentowy EP 2770836). Nie ujawniono jednak ich zastosowania jako folii.
Celem wynalazku jest opracowanie takiego sposobu otrzymywania materiałów kefiranowych, które pozwolą na zastosowanie ich jako materiały opatrunkowe i biomateriały, a zatem zastosowanie kefiranu jako podłoża i matrycy polimerowej w materiałach opatrunkowych i biomateriałach, a także zastosowanie wiolaceiny jako substancji aktywnej w materiałach opatrunkowych i biomateriałach.
Istotą wynalazku jest sposób wytwarzania folii kefiranowej charakteryzujący się tym, że kefiran rozpuszcza się w wodzie dejonizowanej o temperaturze od 90 do 100°C w ilości od 0,1 g do 10 g korzystnie 0,2 g kefiranu na 10 mL wody dejonizowanej, miesza mieszadłem korzystnie magnetycznym, studzi, dodaje wiolaceinę w ilości od 0,05 mg do 0,2 mg korzystnie 0,1 mg wiolaceiny na 1 mL mieszaniny, miesza mieszadłem korzystnie magnetycznym, odgazowuje w suszarce próżniowej, dodaje olejek konopny w ilości od 0,05 mg do 0,2 mg korzystnie 0,1 mg olejku konopnego na 1 mL mieszaniny, dodaje glicerynę roślinną w ilości od 0,01 g do 0,05 g korzystnie 0,03 g gliceryny na 1 mL mieszaniny, miesza, i tak otrzymaną jednorodną mieszaninę wylewa na szalkę Petriego i zostawia aż do uformowania folii. Korzystnie kefiran jest kefiranem świeżo wyizolowanym. Korzystnie kefiran wyizolowano z grzybka tybetańskiego, najkorzystniej sposobem Rodriguesa. Korzystnie kefiran z wodą dejonizowaną miesza się mieszadłem korzystnie magnetycznym korzystnie z prędkością od 400 do 800 rpm do najkorzystniej 600 rpm, w temperaturze od 90°C do 100°C korzystnie 100°C w czasie od 0,2 do 1,5 h korzystnie 1 h. Korzystnie studzenie prowadzi się aż do osiągnięcia temperatury od 18°C do 25°C mieszaniny, korzystnie 22°C. Korzystnie mieszaninę z wiolaceiną miesza się mieszadłem korzystnie magnetycznym korzystnie z prędkością od 300 do 800 rpm najkorzystniej 600 rpm, w temperaturze od 18°C do 25°C mieszaniny, korzystnie 22°C czasie od 0,2 do 1,5 h korzystnie 30 min. Korzystnie odgazowanie prowadzi się w suszarce próżniowej w temperaturze od 40 do 60°C korzystnie 40°C w czasie od 0,2 do 1,5 h korzystnie 1 h. Korzystnie mieszaninę z gliceryną miesza się mieszadłem korzystnie magnetycznym korzystnie z prędkością od 300 do 800 rpm najkorzystniej 600 rpm, w temperaturze od 18°C do 25°C mieszaniny, korzystnie 22°C w czasie od 0,2 do 1,5 h korzystnie 30 min. Korzystnie stosuje się szalkę Petriego z tworzywa sztucznego lub szklaną, korzystnie o średnicy od 30 do 60 mm najkorzystniej 45 mm. Korzystnie formowanie folii prowadzi się w suchym miejscu bez dostępu światła, korzystnie w czasie od 24 do 64h najkorzystniej przez 48 h.
Istotą wynalazku jest także folia kefiranowa charakteryzująca się tym, że zawiera kefiran w ilości od 30 do 40%, wiolaceinę w ilości od 3 do 4%, olejek konopny w ilości od 3 do 4%, glicerynę w ilości od 1 do 4%, resztę stanowi woda dejonizowana.
Zaletą wynalazku jest wykorzystanie wyłącznie naturalnych produktów do produkcji opatrunku, czyniąc go materiałem bezpiecznym i ekologicznym. Wykorzystane zostały naturalne substancje aktywne, zapewniające szereg właściwości, wspomagających gojenie ran (w tym: przeciwbakteryjne, przeciwbólowe, przeciwzapalne, regeneracyjne), nie powodując przy tym skutków ubocznych, co często ma miejsce w przypadku stosowania antybiotyków syntetycznych. Ważną cechą jest również łatwość uzyskania materiału oraz stosunkowo niskie koszty produkcji.
Przedmiot wynalazku został ukazany w poniższych przykładach wykonania.
Przykład I
W przykładzie wykonania wykorzystano kefiran, który samodzielnie wyizolowano z grzybka tybetańskiego, zgodnie z procedurą opisaną przez Rodrigues i współautorów (Kamila Leite Rodrigues, Luc'elia Rita Gaudino Caputo, Jose Carlos Tavares Carvalho, Jo~ao Evangelista, Jose Maur'ico Schneedorf. Antimicrobial and healing activity of kefir and kefiran extract. International Journal of Antimicrobial Agents 25 (2005) 404-408.). Poza kefiranem, zastosowano również wiolaceinę.
W celu przygotowania folii kefiranowej z dodatkiem wiolaceiny, świeżo wyizolowany kefiran rozpuszczono w gorącej wodzie dejonizowanej (C=2% w/w) o temperaturze 90° w ilości 0,2 g na 10 mL wody mieszając za pomocą mieszadła magnetycznego z prędkością 600 rpm w temperaturze 100°C przez 1 h.
Następnie, roztwór ostudzono do temperatury pokojowej 22°C, po czym dodano wiolaceiny (C=1%, 1 mL) w ilości 0,1 mg na 1 mL roztworu. Całość mieszano w temperaturze pokojowej 22°C przez 30 min za pomocą mieszadła magnetycznego 600 rpm. Roztwór odgazowano w suszarce próżniowej w temperaturze 40°C przez 1 h. Następnie dodano olejek konopny w ilości 0,1 mg olejku konopnego na 1 mL roztworu oraz glicerynę roślinną w ilości 0,03 g na 1 mL roztworu jako pełniącą funkcję plastyfikatora, i kontynuowano mieszanie przez 30 min z prędkością 600 rpm w temperaturze pokojowej 22°C. Tak otrzymaną jednorodną mieszaninę wylano na plastikową szalkę Petriego o średnicy 45 mm i pozostawiono do odparowania rozpuszczalnika aż do uformowania folii w suchym i zaciemnionym miejscu na 48 h.
W wyniku przykładu otrzymano folię kefiranową o dobrych właściwościach fizykochemicznych oraz przeciwbakteryjnych o następującym składzie:
- kefiran w ilości 35%
- wiolaceina w ilości 3,5%
- olejek konopny w ilości 4%
- gliceryna roślinna w ilości 2,5%
- resztę stanowi woda dejonizowana
Analiza ATR-IR:
Pasmo przy 2921 cm-1 wskazują na obecność drgań C-H w łańcuchu cukrowym kefiranu, co można przypisać grupom metylowym i metylenowym. Pasmo przy 1408 cm-1 związane jest z obecnością grup CH2 i OH. Pasma w obszarze 1000-1200 cm-1 wskazują na obecność wiązań C-O-C i C-O, pochodzących od grup alkoholowych kefiranu. W widmie pojawiają się także pasma, potwierdzające obecność wiolaceiny w otrzymanym filmie. Szerokie pasmo przy 3341 cm-1 związane jest z obecnością grup NH rdzenia indolowego, natomiast pasmo przy 1651 cm-1 odpowiada grupie kabonylowej obecnej w cząsteczce wiolaceiny.
W innych przykładach wykonania można wykorzystać kefiran wyizolowany z irańskich lub włoskich ziaren kefiru.
Przykład II
W przykładzie wykonania wykorzystano kefiran, który samodzielnie wyizolowano z grzybka tybetańskiego, zgodnie z procedurą opisaną przez Rodrigues i współautorów (Kamila Leite Rodrigues,
Luc'elia Rita Gaudino Caputo, Jose Carlos Tavares Carvalho, Jo~ao Evangelista, Jose Maur'cio Schneedorf. Antimicrobial and healing activity of kefir and kefiran extract. International Journal of Antimicrobial Agents 25 (2005) 404-408.). Poza kefiranem, zastosowano również wiolaceinę.
W celu przygotowania folii kefiranowej z dodatkiem wiolaceiny, świeżo wyizolowany kefiran rozpuszczono w gorącej wodzie dejonizowanej (C=2% w/w) o temperaturze 95° w ilości 5 g na 10 mL wody mieszając za pomocą mieszadła magnetycznego z prędkością 400 rpm w temperaturze 95°C przez 0,02 h.
Następnie, roztwór ostudzono do temperatury pokojowej 18°C, po czym dodano wiolaceiny (C=1%, 1 mL) w ilości 0,05 mg na 1 mL roztworu. Całość mieszano w temperaturze pokojowej 18°C przez 0,2 h za pomocą mieszadła magnetycznego 400 rpm w temperaturze pokojowej. Roztwór odgazowano w suszarce próżniowej w temperaturze 50°C przez 0,2 h. Następnie dodano olejek konopny w ilości 0,05 mg olejku konopnego na 1 mL roztworu oraz glicerynę roślinną w ilości 0,01 g na 1 mL roztworu jako pełniącą funkcję plastyfikatora, i kontynuowano mieszanie przez 0,2 h z prędkością 300 rpm w temperaturze pokojowej 18°C. Tak otrzymaną jednorodną mieszaninę wylano na plastikową szalkę Petriego o średnicy 30 mm i pozostawiono do odparowania rozpuszczalnika aż do uformowania folii w suchym i zaciemnionym miejscu na 64 h.
W wyniku przykładu otrzymano folię kefiranową o dobrych właściwościach fizykochemicznych oraz przeciwbakteryjnych o następującym składzie:
- kefiran w ilości 30%
- wiolaceina w ilości 3%
- olejek konopny w ilości 3,5%
- gliceryna roślinna w ilości 1%
- resztę stanowi woda dejonizowana
W innych przykładach wykonania można wykorzystać kefiran wyizolowany z irańskich lub włoskich ziaren kefiranu.
Przykład III
W przykładzie wykonania wykorzystano kefiran, który samodzielnie wyizolowano z grzybka tybetańskiego, zgodnie z procedurą opisaną przez Rodrigues i współautorów (Kamila Leite Rodrigues, Luc'elia Rita Gaudino Caputo, Jose Carlos Tavares Carvalho, Jo~ao Evangelista, Jose Maur'icio Schneedorf. Antimicrobial and healing activity of kefir and kefiran extract. International Journal of Antimicrobial Agents 25 (2005) 404-408.). Poza kefiranem, zastosowano również wiolaceinę, zakupioną z firmy Immuno-Life.
W celu przygotowania folii kefiranowej z dodatkiem wiolaceiny, świeżo wyizolowany kefiran rozpuszczono w gorącej wodzie dejonizowanej (C=2% w/w) o temperaturze 100° w ilości 10 g na 10 mL wody mieszając za pomocą mieszadła magnetycznego z prędkością 800 rpm w temperaturze 90°C przez 1,5 h.
Następnie, roztwór ostudzono do temperatury pokojowej 25°C, po czym dodano wiolaceiny (C=1%, 1 mL) w ilości 0.2 mg na 1 mL roztworu. Całość mieszano w temperaturze pokojowej 25°C przez 1,5 h za pomocą mieszadła magnetycznego 800 rpm w temperaturze pokojowej. Roztwór odgazowano w suszarce próżniowej w temperaturze 60°C przez 1,5 h. Następnie dodano olejek konopny w ilości 0,2 mg olejku konopnego na 1 mL roztworu oraz glicerynę roślinną w ilości 0 ,05 g na 1 mL roztworu jako pełniącą funkcję plastyfikatora, i kontynuowano mieszanie przez 1,5 h z prędkością 800 rpm w temperaturze pokojowej 25°C. Tak otrzymaną jednorodną mieszaninę wylano na plastikową szalkę Petriego o średnicy 60 mm i pozostawiono do odparowania rozpuszczalnika aż do uformowania folii w suchym i zaciemnionym miejscu na 24 h.
W wyniku przykładu otrzymano folię kefiranową o dobrych właściwościach fizykochemicznych oraz przeciwbakteryjnych o następującym składzie:
- kefiran w ilości 40%
- wiolaceina w ilości 4%
- olejek konopny w ilości 3%
- gliceryna roślinna w ilości 4%
- resztę stanowi woda dejonizowana.
W innych przykładach wykonania można wykorzystać kefiran wyizolowany z irańskich lub włoskich ziaren kefiru.

Claims (11)

1. Sposób wytwarzania folii kefiranowej znamienny tym, że kefiran rozpuszcza się w wodzie dejonizowanej o temperaturze od 90 do 100°C w ilości od 0,1 g do 10 g korzystnie 0,2 g kefiranu na 10 mL wody dejonizowanej, miesza mieszadłem korzystnie magnetycznym, studzi, dodaje wiolaceinę w ilości od 0,05 mg do 0,2 mg korzystnie 0,1 mg wiolaceiny na 1 mL mieszaniny, miesza mieszadłem korzystnie magnetycznym, odgazowuje w suszarce próżniowej, dodaje olejek konopny w ilości od 0,05 mg do 0,2 mg korzystnie 0,1 mg olejku konopnego na 1 mL mieszaniny, dodaje glicerynę roślinną w ilości od 0,01 g do 0,05 g korzystnie 0,03 g gliceryny na 1 mL mieszaniny, miesza, i tak otrzymaną jednorodną mieszaninę wylewa na szalkę Petriego i zostawia aż do uformowania folii.
2. Sposób według zastrz. 1 znamienny tym, że kefiran jest kefiranem świeżo wyizolowanym.
3. Sposób według zastrz. 1 lub 2 znamienny tym, że kefiran wyizolowano z grzybka tybetańskiego, korzystnie sposobem Rodriguesa.
4. Sposób według zastrz. 1, 2 lub 3 znamienny tym, że kefiran z wodą dejonizowaną miesza się mieszadłem korzystnie magnetycznym korzystnie z prędkością od 400 do 800 rpm do najkorzystniej 600 rpm, w temperaturze od 90°C do 100°C korzystnie 100°C w czasie od 0,2 do 1,5 h korzystnie 1 h.
5. Sposób według zastrz. 1, 2, 3 lub 4 znamienny tym, że studzenie prowadzi się aż do osiągnięcia temperatury od 18°C do 25°C mieszaniny, korzystnie 22°C.
6. Sposób według zastrz. 1,2, 3, 4 lub 5 znamienny tym, że mieszaninę z wiolaceiną miesza się mieszadłem korzystnie magnetycznym korzystnie z prędkością od 300 do 800 rpm najkorzystniej 600 rpm, w temperaturze od 18°C do 25°C mieszaniny, korzystnie 22°C czasie od 0,2 do 1,5 h korzystnie 30 min.
7. Sposób według zastrz. 1,2, 3, 4, 5 lub 6 znamienny tym, że odgazowanie prowadzi się w suszarce próżniowej w temperaturze od 40 do 60°C korzystnie 40°C w czasie od 0,2 do 1,5 h korzystnie 1 h.
8. Sposób według zastrz. 1,2, 3, 4, 5, 6 lub 7 znamienny tym, że mieszaninę z gliceryną miesza się mieszadłem korzystnie magnetycznym korzystnie z prędkością od 300 do 800 rpm najkorzystniej 600 rpm, w temperaturze od 18°C do 25°C mieszaniny, korzystnie 22°C w czasie od 0,2 do 1,5 h korzystnie 30 min.
9. Sposób według zastrz. 1,2, 3, 4, 5, 6, 7 lub 8 znamienny tym, że stosuje się szalkę Petriego z tworzywa sztucznego lub szklaną, korzystnie o średnicy od 30 do 60 mm najkorzystniej 45 mm.
10. Sposób według zastrz. 1,2, 3, 4, 5, 6, 7, 8 lub 9 znamienny tym, że formowanie folii prowadzi się w suchym miejscu bez dostępu światła, korzystnie w czasie od 24 do 64 h najkorzystniej przez 48 h.
11. Folia kefiranowa znamienna tym, że zawiera kefiran w ilości od 30 do 40%, wiolaceinę w ilości od 3 do 4%, olejek konopny w ilości od 3 do 4%, glicerynę w ilości od 1 do 4%, resztę stanowi woda dejonizowana.
PL443104A 2022-12-09 2022-12-09 Sposób wytwarzania folii kefiranowej oraz folia kefiranowa PL244267B1 (pl)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL443104A PL244267B1 (pl) 2022-12-09 2022-12-09 Sposób wytwarzania folii kefiranowej oraz folia kefiranowa
EP23020544.5A EP4397326A1 (en) 2022-12-09 2023-12-08 Method of preparing kefiran foil and kefiran foil

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL443104A PL244267B1 (pl) 2022-12-09 2022-12-09 Sposób wytwarzania folii kefiranowej oraz folia kefiranowa

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL443104A1 PL443104A1 (pl) 2023-05-15
PL244267B1 true PL244267B1 (pl) 2023-12-27

Family

ID=86325399

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL443104A PL244267B1 (pl) 2022-12-09 2022-12-09 Sposób wytwarzania folii kefiranowej oraz folia kefiranowa

Country Status (2)

Country Link
EP (1) EP4397326A1 (pl)
PL (1) PL244267B1 (pl)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RO133952A2 (ro) * 2018-08-29 2020-03-30 Universitatea Tehnică " Gheorghe Asachi " Din Iaşi Procedeu pentru obţi- nerea matricelor colagen-polizaharidice microporoase, cu conţinut de violaceină, destinate aplicaţiilor biomedicale şi dermato-cosmetice

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
TW201225844A (en) 2010-10-25 2012-07-01 Marrone Bio Innovations Inc Chromobacterium bioactive compositions and metabolites
AU2012327216B2 (en) 2011-10-25 2015-02-12 Marrone Bio Innovations, Inc. Chromobacterium formulations, compositions, metabolites and their uses
KR20220097428A (ko) * 2019-11-01 2022-07-07 에스더블유엠 룩셈부르크 의약, 코스메틱 또는 피부과 용도의 섬유상 프로덕트

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RO133952A2 (ro) * 2018-08-29 2020-03-30 Universitatea Tehnică " Gheorghe Asachi " Din Iaşi Procedeu pentru obţi- nerea matricelor colagen-polizaharidice microporoase, cu conţinut de violaceină, destinate aplicaţiilor biomedicale şi dermato-cosmetice

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MDPI; https://www.mdpi.com/2673-6209/2/3/21; Stylianos Exarhopoulos et al, Biodegradable Films from Kefiran-Based Cryogel Systems, Macromol 2022, 2(3), 324-345, *
MDPI; Susana Correia et al, Impact of Kefiran Exopolysaccharide Extraction on Its Applicability for Tissue Engineering and Regenerative Medicine, August 2022 Pharmaceutics 14(8):1713 *
ResearchGate; Hajer Radhouani et al Synthesis and Characterization of Biocompatible Methacrylated Kefiran Hydrogels: Towards Tissue Engineering Applications, April 2021Polymers 13(8):1342 *
ScienceDirect; Mehran Ghasemlou et al "Development and characterisation of a new biodegradable edible film made from kefiran, an exopolysaccharide obtained from kefir grains, Volume 127, Issue 4, 15 August 2011, Pages 1496-1502, abstract, *

Also Published As

Publication number Publication date
PL443104A1 (pl) 2023-05-15
EP4397326A1 (en) 2024-07-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Xu et al. Chemically and physically crosslinked lignin hydrogels with antifouling and antimicrobial properties
Guo et al. Click chemistry improved wet adhesion strength of mussel-inspired citrate-based antimicrobial bioadhesives
He et al. Tannic acid-reinforced methacrylated chitosan/methacrylated silk fibroin hydrogels with multifunctionality for accelerating wound healing
Hu et al. Dual-responsive injectable hydrogels encapsulating drug-loaded micelles for on-demand antimicrobial activity and accelerated wound healing
Deng et al. Bacterial cellulose reinforced chitosan-based hydrogel with highly efficient self-healing and enhanced antibacterial activity for wound healing
Shokrollahi et al. Multilayer nanofibrous patch comprising chamomile loaded carboxyethyl chitosan/poly (vinyl alcohol) and polycaprolactone as a potential wound dressing
Sagnella et al. Chitosan based surfactant polymers designed to improve blood compatibility on biomaterials
Wu et al. Development of a biocompatible and biodegradable hybrid hydrogel platform for sustained release of ionic drugs
Wang et al. Enzymatically crosslinked epsilon-poly-L-lysine hydrogels with inherent antibacterial properties for wound infection prevention
Doan et al. Multifunctional injectable pluronic-cystamine-alginate-based hydrogel as a novel cellular delivery system towards tissue regeneration
Dong et al. A rapid crosslinking injectable hydrogel for stem cell delivery, from multifunctional hyperbranched polymers via RAFT homopolymerization of PEGDA
Li et al. Preparation and characterization of pullulan derivative antibacterial composite films
Thankam et al. Alginate based hybrid copolymer hydrogels—Influence of pore morphology on cell–material interaction
Jaiswal et al. Polycaprolactone diacrylate crosslinked biodegradable semi-interpenetrating networks of polyacrylamide and gelatin for controlled drug delivery
Li et al. Injectable, rapid self-healing, antioxidant and antibacterial nanocellulose-tannin hydrogels formed via metal-ligand coordination for drug delivery and wound dressing
Nezhad-Mokhtari et al. Matricaria chamomilla essential oil-loaded hybrid electrospun nanofibers based on polycaprolactone/sulfonated chitosan/ZIF-8 nanoparticles for wound healing acceleration
Huang et al. Preparation of novel stable microbicidal hydrogel films as potential wound dressing
Senthil et al. Cellulose based biopolymer nanoscaffold: a possible biomedical applications
Kang et al. pH-triggered unimer/vesicle-transformable and biodegradable polymersomes based on PEG-b-PCL–grafted poly (β-amino ester) for anti-cancer drug delivery
Abdelwahab et al. Evaluation of antibacterial and anticancer properties of poly (3-hydroxybutyrate) functionalized with different amino compounds
Sahu et al. Benzoxazine-grafted-chitosan biopolymer films with inherent disulfide linkage: Antimicrobial properties
Islam et al. Preparation of gelatin based porous biocomposite for bone tissue engineering and evaluation of gamma irradiation effect on its properties
Ye et al. In situ formation of adhesive hydrogels based on PL with laterally grafted catechol groups and their bonding efficacy to wet organic substrates
Shi et al. A biguanide chitosan-based hydrogel adhesive accelerates the healing of bacterial-infected wounds
Majd et al. Biomedical Efficacy of Garlic‐Extract‐Loaded Core‐Sheath Plasters for Natural Antimicrobial Wound Care