JP6075519B1 - 抽出方法、分析方法、抽出装置および分析装置 - Google Patents
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Abstract
本発明は、流体中に存在する核酸と前記核酸を包含する被覆構造体とを含む生物学的試料を金属メッシュにより捕集する第1工程と、前記生物学的試料が捕集された前記金属メッシュを核酸抽出液に浸漬する第2工程と、前記核酸抽出液を回収する第3工程と、をこの順で備え、前記核酸抽出液は、前記核酸を溶解可能であり、前記被覆構造体を溶解しない、前記核酸の抽出方法である。
Description
本発明は、抽出方法、分析方法、抽出装置および分析装置に関する。より詳しくは、気体や液体中物質から核酸を抽出するための抽出方法、それを用いた分析方法、抽出装置、および、それを用いた分析装置に関する。
近年、環境改善等の目的で、環境中に存在する微生物等に由来するDNAを直接解析する手法が注目されている。特に、土壌に含まれる微生物由来のDNAを解析する手法について種々の研究が進められている(例えば、星野ら,「土壌からのDNA抽出方法」,環境バイオテクノロジー学会誌,2005年,Vol.5,No.1,p.43-53(非特許文献1)参照)。
しかし、このような土壌に含まれる微生物からDNAを抽出するためには、遠心分離等の煩雑な操作が必要である。
一方、院内感染予防、パンデミック対策、途上国における衛生環境改善等を目的として、空気中や液体中の細菌、ウィルス等の核酸を含有する生物学的試料を捕集し、捕集された生物学的試料中の核酸を遺伝子解析等の生物学的手法で分析する(核酸の同定、定量などを行う)ことにより、細菌、ウィルス等の存在を確認する方法が検討されている。ただし、大気中の核酸を含有する生物学的試料を捕集し、核酸を分析するための具体的な方法は、現状では確立されていない。
星野ら,「土壌からのDNA抽出方法」,環境バイオテクノロジー学会誌,2005年,Vol.5,No.1,p.43-53
特に大気中の微量な生物学的試料は、土壌中のそれとは異なり、遠心分離等によって十分な量を回収することが困難である。したがって、フィルタを用いてある程度多量の大気を濾過し、捕集された生物学的試料がフィルタ上で濃縮されるようにする必要があると考えられる。
しかしながら、フィルタとして、例えば従来から一般的に用いられているメンブレンフィルタやゼラチンフィルタを用いた場合、以下のような問題がある。メンブレンフィルタを用いた場合は、メンブレンフィルタの複雑な細孔の内部に入り込んだ生物学的試料は回収が難しいという問題があった。
また、ゼラチンフィルタを用いた場合は、ゼラチンが大気中の水分と接触することにより変質してしまうという問題があった。
また、液体中の極微量な生物学的試料を回収する際も、遠心分離などの煩雑な作業が必要であるという問題があった。
本発明は上記の事情に鑑み、気体中や液体中の生物学的試料を濾過により捕集し、捕集された生物学的試料から核酸のみを効率的に抽出することのできる抽出方法および抽出装置を提供することを目的とする。
本発明は、流体中に存在する核酸と核酸を包含する被覆構造体とを含む生物学的試料を金属メッシュにより捕集する第1工程と、
生物学的試料が捕集された金属メッシュを核酸抽出液に浸漬する第2工程と、
核酸抽出液を回収する第3工程と、をこの順で備え、
核酸抽出液は、核酸を溶解可能であり、被覆構造体を溶解しない、核酸の抽出方法である。
生物学的試料が捕集された金属メッシュを核酸抽出液に浸漬する第2工程と、
核酸抽出液を回収する第3工程と、をこの順で備え、
核酸抽出液は、核酸を溶解可能であり、被覆構造体を溶解しない、核酸の抽出方法である。
金属メッシュの孔径は、生物学的試料より小さく、核酸より大きいことが好ましい。また、金属メッシュは核酸抽出液によって溶解されないことが好ましい。
核酸抽出液はフェノールを含有することが好ましい。
第1工程において、金属メッシュに生物学的試料を捕集する前に、流体中に含まれる生物学的試料以外の夾雑物をプレフィルタにより除去することが好ましい。
第1工程において、金属メッシュに生物学的試料を捕集する前に、流体中に含まれる生物学的試料以外の夾雑物をプレフィルタにより除去することが好ましい。
流体は、異なる粒径を有する複数種の生物学的試料を含有し、
第1工程において、複数種の生物学的試料の各々を孔径の異なる複数の金属メッシュの各々で捕集し、
第2工程において、複数種の生物学的試料の各々が捕集された複数の金属メッシュの各々を複数の核酸抽出液の各々に浸漬することが好ましい。
第1工程において、複数種の生物学的試料の各々を孔径の異なる複数の金属メッシュの各々で捕集し、
第2工程において、複数種の生物学的試料の各々が捕集された複数の金属メッシュの各々を複数の核酸抽出液の各々に浸漬することが好ましい。
また、本発明は、上記の抽出方法によって抽出された核酸を分析する第4工程を備える、生物学的試料の分析方法にも関する。
また、本発明は、流体を流すための流路を有する捕集部材と、
捕集部材の流路内に設けられた、流体中に存在する核酸と核酸を包含する被覆構造体とを含む生物学的試料を捕集するための金属メッシュと、
生物学的試料が捕集された金属メッシュを浸漬するための核酸抽出液を収容する容器と、を備え、
核酸抽出液は、核酸を溶解可能であり、被覆構造体を溶解しない、核酸の抽出装置にも関する。
捕集部材の流路内に設けられた、流体中に存在する核酸と核酸を包含する被覆構造体とを含む生物学的試料を捕集するための金属メッシュと、
生物学的試料が捕集された金属メッシュを浸漬するための核酸抽出液を収容する容器と、を備え、
核酸抽出液は、核酸を溶解可能であり、被覆構造体を溶解しない、核酸の抽出装置にも関する。
金属メッシュの孔径は、生物学的試料より小さく、核酸より大きいことが好ましい。また、金属メッシュは核酸抽出液によって溶解されないことが好ましい。
核酸抽出液はフェノールを含有することが好ましい。
捕集部材の流路内の金属メッシュより上流側に設けられた、流体中に含まれる生物学的試料以外の夾雑物を除去するためのプレフィルタをさらに備えることが好ましい。
捕集部材の流路内の金属メッシュより上流側に設けられた、流体中に含まれる生物学的試料以外の夾雑物を除去するためのプレフィルタをさらに備えることが好ましい。
流体は、異なる粒径を有する複数種の生物学的試料を含有し、
捕集部材の流路内に設けられた、複数種の生物学的試料の各々を捕集するための孔径の異なる複数の金属メッシュと、
複数種の生物学的試料の各々が捕集された複数の金属メッシュの各々を浸漬するための複数の核酸抽出液の各々を収容する複数の容器と、を備えることが好ましい。
捕集部材の流路内に設けられた、複数種の生物学的試料の各々を捕集するための孔径の異なる複数の金属メッシュと、
複数種の生物学的試料の各々が捕集された複数の金属メッシュの各々を浸漬するための複数の核酸抽出液の各々を収容する複数の容器と、を備えることが好ましい。
あるいは、本発明は上記生物学的試料が非生物学的物質に付着した形態であることを特徴とする場合にも関する。
捕集部材はシリンジバレルであり、
シリンジバレル内で液密状態で摺動可能なガスケットと、ガスケットに装着されたプランジャーと、をさらに備えることが好ましい。
シリンジバレル内で液密状態で摺動可能なガスケットと、ガスケットに装着されたプランジャーと、をさらに備えることが好ましい。
また、本発明は、上記の抽出装置を備え、
抽出装置によって抽出された核酸を分析するための分析機器をさらに備える、生物学的試料の分析装置にも関する。
抽出装置によって抽出された核酸を分析するための分析機器をさらに備える、生物学的試料の分析装置にも関する。
本発明によれば、流体中の生物学的試料を濾過により捕集し、捕集された生物学的試料から核酸のみを効率的に抽出することのできる抽出方法および抽出装置を提供することができる。
以下、本発明の実施形態について説明する。なお、図面において、同一の参照符号は、同一部分または相当部分を表す。なお、各実施形態は例示であり、異なる実施形態で示した構成の部分的な置換または組み合わせが可能であることは言うまでもない。
[実施形態1]
(第1工程)
本工程では、流体中に存在する「生物学的試料」(例えば、気体、液体などの流体中に分散粒子として含まれる生物学的試料)を金属メッシュにより捕集する。
(第1工程)
本工程では、流体中に存在する「生物学的試料」(例えば、気体、液体などの流体中に分散粒子として含まれる生物学的試料)を金属メッシュにより捕集する。
生物学的試料は、核酸を包含する被覆構造体」とを含んでいる。生物学的試料としては、DNA、RNA等の核酸を含有するものであれば特に限定されないが、微生物、核酸を含有する構造体、細胞などが挙げられる。微生物としては、細菌、菌類(真菌)などが挙げられる。核酸を含有する構造体としては、ウィルスなどが挙げられる。なお、生物学的試料が微生物または細胞である場合、「核酸を包含する被覆構造体」には、細胞膜、核膜などが含まれる。また、生物学的試料がウィルスである場合、「核酸を包含する被覆構造体」には、カプシド、エンベロープなどが含まれる。
また、生物学的試料は、上記の微生物、核酸を含有する構造体、細胞などと他の無機物、有機物等との複合物であってもよい。このような複合物としては、例えば、呼気中水蒸気を含む水蒸気や無機物からなる粉塵に付着したウィルスが挙げられる。粉塵としては、例えば、大気中のPM2.5、SPM、PM10、砂粒、石、などが挙げられる。このように、本発明は、生物学的試料が非生物学的物質に付着した形態である場合にも適用可能である。
図1を参照して、本実施形態で用いられる抽出装置は、気体(大気、エアロゾル等)を流すための流路を有するシリンジバレル(捕集部材)12と、シリンジバレル12の流路内に設けられた、大気中の生物学的試料31を捕集するための金属メッシュ10とを備えている。吸引装置(図示せず)などにより、大気をシリンジバレル12の流路内に図中の矢印の方向に流すことで、金属メッシュ10で大気中の生物学的試料31を捕集することができる。
金属メッシュ10の孔径は、生物学的試料より小さいことが好ましい。この場合、金属メッシュ10によって、より確実に生物学的試料を捕集することができる。また、金属メッシュ10の孔径は、核酸より大きいことが好ましい。この場合、金属メッシュ10に捕集された生物学的試料から核酸を抽出する際に、核酸が金属メッシュにトラップされてしまうことを防止できる。
また、金属メッシュは核酸抽出液によって溶解されないことが好ましい。この場合、核酸抽出液が汚染されて、後段の分析時に分析精度が低下することを防止できる。なお、金属メッシュ10の構成の詳細については、後述する。
また、本実施形態においては、シリンジバレル(捕集部材)12の流路内の金属メッシュ10より上流側であるシリンジバレル12の流入口に、プレフィルタ20が固定部材21によって固定されている。これにより、生物学的試料31以外の(生物学的試料より粒径が大きい)夾雑物32を除去することができる。プレフィルタ20の孔径は、夾雑物32が通過できない大きさであり、生物学的試料31が通過できる大きさである。
このように、第1工程においては、金属メッシュに、上述の複合物を含む生物学的試料を捕集する前に、気体(エアロゾル)中に含まれる生物学的試料以外の夾雑物をプレフィルタにより除去することが好ましい。この場合、金属メッシュに生物学的試料以外の夾雑物が捕集されることを抑制でき、生物学的試料の分析精度を向上させることができる。
例えば、細菌のサイズは1μm程度、ウィルスのサイズは0.1μm程度であるが、大気中では、それらが単独で存在するよりも気体中の他の分散粒子(粒径0.1μm以上100μm以下程度)に付着している場合が多いと言われている。これらを考慮すると、プレフィルタ20の孔径をD1とし、金属メッシュ10の孔径をD2とすると、例えば、D1およびD2は、共に50nm以上500μm以下であり、D1>D2の関係となっている。例えば、形状が概球形であり、大きさが約100nmのロタウィルスが付着した大きさ約50μmの砂粒を捕集する場合、該砂粒を捕集するために、該砂粒よりも大きな粒子を排除する目的で、D1を500μmとし、D2を40μmとする。D2を40μmとすることで、該砂粒よりも小さな異物が金属メッシュ10に捕集されないようにすることができる。
(第2工程)
本工程では、生物学的試料31が捕集された金属メッシュ10を核酸抽出液に浸漬する。
本工程では、生物学的試料31が捕集された金属メッシュ10を核酸抽出液に浸漬する。
具体的には、図2を参照して、(a)に示すように、ガスケット41に装着されたプランジャー42を押し込むことで、ガスケット41をシリンジバレル12内に挿入する。
次に、図2の(b)に示されるように、容器5に収容されたDNA抽出液(核酸抽出液)6にシリンジバレル12の先端部を浸け、プランジャー42を引き上げることで、ガスケット41をシリンジバレル12内で液密状態で摺動させ、DNA抽出液6をシリンジバレル12内に吸引する。これにより、生物学的試料31が捕集された金属メッシュ10をDNA抽出液6に浸漬することができる。必要に応じて、そのままの状態で加熱等のDNA抽出作業を行う。これにより、DNA(核酸)が生物学的試料31からDNA抽出液6へ抽出される。なお、具体的な抽出方法としては、種々公知の手法を適用可能である。また、核酸抽出液としては、核酸の種類に応じて種々の抽出液が知られており、市販のキット等として入手することが可能である。
核酸抽出液は、生物学的試料中の核酸を溶解可能であり、被覆構造体を溶解しない。これにより、核酸抽出液を用いて、生物学的試料中から核酸を選択的に抽出することができる。
核酸抽出液は、有機溶媒(フェノール、クロロホルムなど)を含有することが好ましい。この場合、従来のメンブレンフィルタ、ゼラチンフィルタ等は、核酸抽出液の成分である有機溶媒によって溶解されてしまうが、本実施形態の金属メッシュは、有機溶媒によって溶解されないという利点を有している。
核酸抽出液は、DNAを効率的に抽出できる点で、フェノールを含有することが特に好ましい。なお、RNAを抽出する際にもフェノールによって共存するDNAを除去できるため、RNA抽出液もフェノールを含有することが好ましい。なお、「核酸抽出液がフェノールを含有する」とは、生物学的試料が捕集された金属メッシュが浸漬される液中にフェノールが含まれていればよく、抽出液のキットなどにおいて全ての液にフェノールが含まれている必要はない。
核酸抽出液は、さらにクロロホルムを含むことが好ましい。フェノールはDNAを効率的に抽出できるが、液液分離の際に水層と完全に分離せず、一部が水層に溶解するため、その分回収効率が下がってしまう。そこで、水層との分離性の高いクロロホルムを添加することで、フェノールを有機層側へ移行させ、DNA等の核酸の回収率を上げることができる。
(第3工程)
本工程では、核酸抽出液(少なくとも一部)を回収することにより、核酸を抽出する。
本工程では、核酸抽出液(少なくとも一部)を回収することにより、核酸を抽出する。
具体的には、図2の(c)に示されるように、DNA(核酸)が生物学的試料31からDNA抽出液6へ抽出された後、プランジャー42を押し下げて、ガスケット41をシリンジバレル12内で液密状態で摺動させ、DNAを含有するDNA抽出液を容器内に吐出する。なお、生物学的試料31は、金属メッシュ10上に捕集されるため、DNAと分離される。
次に、図2の(d)に示されるように、シリンジバレル12等を金属メッシュ10と共に取り除き、DNA抽出済みのDNA抽出溶液を得る。このようにして、気体中の生物学的試料から核酸を抽出することができる。
なお、上記の抽出方法によって抽出されたDNA(核酸)は、例えば、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)により増幅された後に、遺伝子解析等の種々公知の生物学的手法を用いた分析(第4工程)に供される。
なお、生物学的試料が細菌等の微生物である場合は、核酸を抽出する前に捕集された微生物を培養して増殖させ、抽出される核酸の量を増やす処理を行ってもよい。
この場合、本実施形態では、金属メッシュ上に微生物が捕集されているため、例えば、微生物が捕集された金属メッシュの表面を寒天培地等に押し付けて、微生物を培地に転写することで、微生物を容易に培地上に植菌するができる。なお、従来のメンブレンフィルタで微生物を捕集した場合、同様の方法では、フィルタの細孔内に入り込んで捕集された微生物を培地に転写することは難しく、十分な量の微生物を培地に植菌することは困難である。
次に、本実施形態の変形例について説明する。図3を参照して、気体が、異なる粒径を有する複数種の生物学的試料31a,31bを含有している場合、第1工程において、複数種の生物学的試料31a,31bの各々を孔径の異なる複数の金属メッシュ101,102の各々で捕集することが好ましい。また、第2工程において、複数種の生物学的試料31a,31bの各々が捕集された複数の金属メッシュ101,102の各々を複数の核酸抽出液の各々に浸漬することが好ましい。これにより、異なる種類の生物学的試料を分級し、各々の生物学的試料から核酸を別々に抽出することができ、異なる種類の生物学的試料の各々の分析精度を向上させることができる。
次に、図4を参照して、本発明の実施形態に用いられる金属メッシュ10の一例の構成を説明する。本実施形態の金属メッシュ10は、気体や液体中の生物学的試料を濾過するために用いられる膜状の金属メッシュであって、生物学的試料が通過できない大きさの複数の貫通孔11を有している。
金属メッシュは、金属または半導体で構成されている。金属としては、特に限定されないが、ニッケル、金、銀、銅、鉄、クロム、ステンレス鋼、白金、チタンなどが挙げられる。好ましくはニッケル、金、銀、銅、白金、チタンおよびクロムであり、さらに好ましくはニッケル、金、白金、およびチタンである。
金属メッシュ10は、第1主面10aと、第1主面10aと対向する第2主面10bとを有している。貫通孔11は第1主面10aから第2主面10bに向かって貫通している。すなわち、貫通孔は、金属メッシュの厚み方向に貫通している。
本実施形態の金属メッシュにおいては、例えば、複数の貫通孔11が、金属メッシュの主面上の少なくとも一方向に周期的に配置されている。これにより、濾過特性が安定した金属メッシュを得ることができる。
例えば、貫通孔11は、図4に示すようなマトリックス状(格子状)に一定の間隔で配置されていることが好ましい。具体的には、図4(b)に示されるように、第1主面10a側からみて正方形の貫通孔11が、該正方形の各辺と平行な2つの配列方向(図中の縦方向と横方向)に等しい間隔で設けられていることが好ましい。
ただし、貫通孔11は、濾過特性が不安定にならない範囲で、一部の貫通孔が周期的に配置され、他の貫通孔11が非周期的に配置されていてもよい。
なお、金属メッシュは、貫通孔11の周囲に外周部(図示せず)を有していてもよい。なお、外周部は、例えば、濾過の際に金属メッシュを固定するために固定部材によって挟持される部分となる。
金属メッシュの孔径(貫通孔11の孔径)は、生物学的試料を捕集できる大きさであれば特に限定されないが、例えば、物理的に生物学的試料が通過できないか、または通過し難い大きさであることが好ましい。具体的には、金属メッシュの孔径は、生物学的試料より小さいことが好ましい。
ここで、貫通孔11の孔径(金属メッシュの孔径)とは、例えば、貫通孔11に内接する円の直径である。例えば、貫通孔11の形状が図4(b)に示されるような正方形である場合、貫通孔11に内接する円の直径は、図4(b)にDで示される貫通孔11の配列方向の長さであり、これが貫通孔11の孔径(金属メッシュの粒径)である。
なお、「金属メッシュの孔径が生物学的試料より小さい」とは、例えば、上記金属メッシュの孔径が、生物学的試料の数平均粒子径よりも小さいことを意味する。ただし、数平均分子量に限らず、生物学的試料の大きさの他の指標(体積平均分子量など)と比較して、金属メッシュの孔径が小さい場合も本発明の範疇に含まれる。生物学的試料の大きさの指標は、生物学的試料を金属メッシュで捕集できるかどうかを基準として、最適なものを選択すればよい。
また、金属メッシュの孔径は、核酸より大きいことが好ましい。ここで、「金属メッシュの孔径が核酸より大きい」とは、例えば、上記金属メッシュの孔径が、核酸の数平均粒子径よりも大きいことを意味する。ただし、数平均分子量に限らず、核酸の大きさの他の指標(体積平均分子量など)と比較して、金属メッシュの孔径が大きい場合も本発明の範疇に含まれる。核酸の大きさの指標は、核酸を金属メッシュを通過できるかどうか(核酸が金属メッシュにトラップされるかどうか)を基準として、最適なものを選択すればよい。なお、金属メッシュの孔径は、当然、流体(気体、液体など)の媒質が通過できる大きさである。
例えば、金属メッシュが、貫通孔11が図4に示すように縦横に規則的に配置された金属メッシュである場合において、貫通孔11の孔サイズ(図4(b)に示されるD)は、例えば、生物学的試料の表面上の2点間を結ぶ直線のうち最長のものの長さ以下であることが好ましい。
また、金属メッシュ10の桟部の幅A(図4(b)参照)は、例えば、0.5μm以上100μm以下であることが好ましい。
なお、貫通孔11を含む金属メッシュの主面の面積に対する貫通孔の開口面積の比率(以後、開口率と表記することがある)は、金属メッシュを通過する流体(気体)の流速を高める観点から3%以上であることが好ましく、10%以上であることがより好ましい。また、金属メッシュの強度保証の観点から、90%以下であることが好ましく、80%以下であることがより好ましい。なお、開口率は、例えば、図4(b)にDで示される貫通孔(主に貫通孔11)の孔サイズとPで示される貫通孔の格子間隔(ピッチ)を制御することによって調整することができる。
金属メッシュの厚みは、必要な機械的強度を維持できる範囲で、薄い方が好ましい。金属メッシュの厚みが厚くなると、一般に流体を通過させた際の圧力損失が大きくなる。金属メッシュの圧力損失が大きくなると、流速が遅くなったり、流体を流すことが困難になったりするため、処理効率が低下するといった問題があるからである。
具体的に、金属メッシュの平均厚みは、好ましくは0.2μm以上40μm以下であり、より好ましくは0.5μm以上5μm以下である。
なお、従来のメンブレンフィルタやゼラチンフィルタは比較的軟質であるため、高精度でろ過のための孔を形成することが困難である。また、仮に高精度な孔を形成することができたとしても、保存期間や使用中において孔の精度を維持することが困難である。さらに、開口率が低いため、処理に長い時間を要した。このため、従来は、所望の生物学的試料を選択的に精度良く短時間に捕集することができず、核酸を効率的に抽出することが難しかった。
これに対して、金属メッシュは、上述のような所望の孔を高精度で高開口率で形成することが可能であり、保存期間や使用中において孔の精度を維持することができる。したがって、本実施形態においては、金属メッシュを用いることで、所望の生物学的試料を選択的に精度良く捕集することができ、核酸を効率的に抽出することが可能である。
[実施形態2]
本実施形態は、実施形態1と同様であるが、流体に液体を用いている点で、実施形態1と異なっている。
本実施形態は、実施形態1と同様であるが、流体に液体を用いている点で、実施形態1と異なっている。
液体中に含まれる生物学的試料として、大腸菌がある。大腸菌には様々な形状のものがあるが、最も短い軸方向で0.4μm程度である。例えば、水道水や工業用水などにおける水中の大腸菌を捕集する目的において、D2=200nmとすることで、高い効率で大腸菌を捕集することができる。
[実施形態3]
本実施形態は、第2工程および第3工程が実施形態1と異なり、第1工程は実施形態1と同様である。
本実施形態は、第2工程および第3工程が実施形態1と異なり、第1工程は実施形態1と同様である。
本実施形態における第2工程および第3工程は、主に(A)サンプル回収、細胞破砕、(B)除蛋白、(C)DNA沈殿、および(D)DNA精製の手順で実施される。
本実施形態においては、生物学的試料を金属メッシュ上に捕集するため、従来のメンブレンフィルタを使用した場合と比べて、第2工程および第3工程に用いる核酸抽出のための方法の選択肢を増やすことができる。生物学的試料(細菌、ウイルスなど)に対して、核酸以外のタンパク質(疎水性高分子)等を破砕し(変性させ)、核酸を抽出するための種々の生物学的試料の処理方法について、金属メッシュとメンブレンフィルタとの適性(耐性)を対比して表1に示す。
表1に示されるように、金属メッシュを用いた実施形態においては、メンブレンフィルタを用いる比較形態よりも、幅広い処理条件を選択することができる。このため、処理効率(抽出速度)を向上させたり、また、抽出できる細胞のバリエーションを増やしたりすることができる。
例えば、フェノールおよびクロロホルムに対して耐性のないメンブレンフィルタを用いる場合、フェノールおよびクロロホルムを用いた核酸抽出をメンブレンフィルタに捕集された生物学的試料に対して直接行うことはできない。このため、核酸抽出の前に、生物学的試料をメンブレンフィルタと分離する処理が必要になる。あるいは、フィルターが溶解してしまうと、後工程で核酸に関する情報を読み取る上で、感度低下を招いてしまう。これに対して、金属メッシュを用いる場合、フェノールおよびクロロホルムを用いた核酸抽出を、生物学的試料が金属メッシュに捕集された状態のままで行うことができるため、事前に生物学的試料をメンブレンフィルタと分離する処理を省略することができ、処理効率を向上させることができる。
以下、本実施形態における第2工程および第3工程の具体例について、メンブレンフィルタを用いる比較形態と対比して説明する。
(1)微生物からのDNA抽出の場合
生物学的試料が微生物を含有する分散粒子であり、核酸がDNAである場合について、第2工程および第3工程の概要を表2に示す。なお、表2および後述の表3における各処理は、上から下へ順に実施される。
生物学的試料が微生物を含有する分散粒子であり、核酸がDNAである場合について、第2工程および第3工程の概要を表2に示す。なお、表2および後述の表3における各処理は、上から下へ順に実施される。
なお、比較形態で用いるメンブレンフィルタとしては、例えば、ポリエーテルスルホン製メンブレンフィルタが挙げられる。該メンブレンフィルタは、例えば、「Sterivex」(商品名:メルクミリポア社製、ポアサイズ0.22μm)として市販されているものである。
表2に示されるように、本実施形態は比較形態に対して、上記のSDS/アルカリ処理を用いることができる点で有利である。これに対して、比較形態では、メンブレンフィルタがアルカリに対して耐性が低いため、アルカリを用いないSDS(緩衝液)処理を行っている。
SDS/アルカリ処理は、界面活性剤であるSDS(ドデシル硫酸ナトリウム)とアルカリを含む水溶液に、生物学的試料が捕集された金属メッシュを浸漬する処理であり、フェノール等を用いたDNA抽出処理の前に、微生物を構成するタンパク質を変性させて破壊するための処理である。比較形態のSDS溶液(緩衝液)による処理も同様の処理であるが、SDS/アルカリ処理の方が、アルカリによってタンパク質を迅速に変性させることができる。
したがって、本実施形態では、比較形態に対して、全体の処理工程に要する時間を短縮することができ、処理効率を向上させることができる。
なお、上記のフェノール:クロロホルム抽出およびクロロホルム抽出において、フェノールまたはクロロホルムを、金属メッシュを含む水溶液中に添加する工程が、本実施形態の第2工程に相当する。また、フェノール:クロロホルム抽出およびクロロホルム抽出において、DNAが溶解した有機層を回収する工程が、本実施形態の第3工程に相当する。
(2)ウィルスからのRNA抽出の場合
生物学的試料がウィルスを含有する分散粒子であり、核酸がDNAである場合について、第2工程および第3工程の概要を表3に示す。
生物学的試料がウィルスを含有する分散粒子であり、核酸がDNAである場合について、第2工程および第3工程の概要を表3に示す。
表3に示されるように、メンブレンフィルタを用いる比較形態では、メンブレンフィルタがフェノールとチオシアン酸グアニジンに対して耐性がないため、まず、界面活性剤であるSDSの緩衝液に、生物学的試料が捕集されたメンブレンフィルタを浸漬するSDS(緩衝液)処理により、生物学的試料をメンブレンフィルタから液中に抽出した後に、フェノールとチオシアン酸グアニジンの溶液による処理を行い、生物学的試料から核酸を抽出する必要がある。なお、比較形態において、SDS(緩衝液)処理を行わずに、フェノールとチオシアン酸グアニジンの溶液による処理を直接行った場合、核酸が抽出される前に、メンブレンフィルタの細孔の閉塞等が生じて、生物学的試料からの核酸の抽出が困難になってしまうと考えられる。
これに対して、金属メッシュを用いる本実施形態では、生物学的試料が捕集された金属メッシュに、直接、フェノールとチオシアン酸グアニジンによる処理を施すことによって、金属メッシュから生物学的試料を分離すると共に、生物学的試料から核酸を分離することができる。
したがって、本実施形態では、比較形態よりも処理工程を減らすことができるため、比較形態に対して、全体の処理工程に要する時間を短縮することができ、処理効率を向上させることができる。
なお、上記のフェノールとチオシアン酸グアニジンの溶液による処理、および、クロロホルム添加の工程が、本実施形態の第2工程に相当する。また、クロロホルム添加後に水層を回収する工程が、本実施形態の第3工程に相当する。
以下、実施例を挙げて本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
[実施例1]
本実施例では、空気中の塵埃を3層の金属メッシュを備える抽出装置を用いて捕集し、捕集された塵埃に含まれるロタウィルスの抽出および検出を行った。
本実施例では、空気中の塵埃を3層の金属メッシュを備える抽出装置を用いて捕集し、捕集された塵埃に含まれるロタウィルスの抽出および検出を行った。
(第1工程:ロタウィルスの捕集)
図5は、実施例1で用いた抽出装置の構成を示す図である。(a)は斜視図、(b)は分解斜視図、(c)は断面模式図、(d)は(c)の部分拡大図である。
図5は、実施例1で用いた抽出装置の構成を示す図である。(a)は斜視図、(b)は分解斜視図、(c)は断面模式図、(d)は(c)の部分拡大図である。
主に図5(c)、(b)を参照して、抽出装置2(金属メッシュを用いた塵埃の捕集装置)では、第2積層部2c(上段)の金属メッシュ101(開口サイズ:4.0μm)、第1積層部2b(中段)の金属メッシュ102(開口サイズ:1.8μm)、および、本体2d(下段)の金属メッシュ103(開口サイズ:1.1μm)の3種類の金属メッシュが、直列に積み重ねて設置されている。
なお、カバー部2dは、第1積層部2bおよび第2積層部2cを収容可能な下方に開口した空間を有しており、本体2aに第1積層部2b、第2積層部2cおよびカバー部2dを積み重ねることで、吸気口22から排気口23に通じる流路が形成され、図5(a)、(c)に示されるような抽出装置2が構成される。
図5(c)、(d)を参照して、吸引スイッチ24を操作し、本体2aに内蔵されたポンプを作動させることで、空気を吸気口22から吸引し、排気口23から排出することができる。本実施例では、この吸気口22と排気口23の間に、2時間で55Lの空気を通過させ、空気中の塵埃を金属メッシュに捕集した。
(第2工程および第3工程:核酸抽出液の回収)
次に、捕集された塵埃から核酸(RNA)抽出液を回収した。
次に、捕集された塵埃から核酸(RNA)抽出液を回収した。
まず、金属メッシュ102または金属メッシュ103を試験管に入れ、フェノールとチオシアン酸グアニジンを含むRNA抽出用試薬(「ISOGEN-LS」、Code No. 311-02621、(株)ニッポンジーン)を0.75mL加えた。5分間室温で静置した後、試験管にさらにクロロホルムを0.2mL加え、15秒間攪拌した後、3分間室温で静置した。その後、金属メッシュを試験管内から取り除いた。
高速遠心分離機により12000g(「g」は重力加速度である)、15分間の遠心分離を行い、試験管内で水と有機溶媒を2液相に分離させた。試験管から取り出した水相に、0.5mLのイソプロパノールを加えて、RNAを沈殿させた。液体を取り除いたのち、70%エタノールで同様に処理して、沈殿物を洗浄した。この沈殿物(塵埃にRNAが含まれていれば、RNAを含む)を50μLの水に溶解し、腐食酸(フミン酸)などのPCR阻害物質を除去するために、核酸精製キット(One Step PCR Inhibitor Removal Kit:ザイモ・リサーチ社)で精製し、最終的に50μLの水に溶出して、「RNA抽出液」を回収した。
(第4工程:核酸の分析)
さらに、以下の方法によって、「RNA抽出液」中に含まれるRNA(ウィルス由来のRNA)を逆転写酵素処理によりDNAへ変換した。
さらに、以下の方法によって、「RNA抽出液」中に含まれるRNA(ウィルス由来のRNA)を逆転写酵素処理によりDNAへ変換した。
具体的には、逆転写反応キット(「ReverTra Ace(登録商標) qPCR RT Kit」、Code No. FSQ-101、東洋紡(株))を用いて逆転写酵素反応を実施し、RNA(ロタウイルスのVP4遺伝子など)からcDNAを調製した。なお、以下に記載される試薬の多くは、上記キットに含まれる試薬である。
まず、9μLのRNAaseフリー水(「RNase-free Water」、タカラバイオ(株))、3μLのDMSO(ジメチルスルホキシド)、1μLのプライマー(ロタウィルスのVP4遺伝子を増幅させる5’−TGGCTTCGTTCATTTATAGACA−3’および5’−CTAAATTGCTTTTGAATCATCCCA−3’の配列を有する合成オリゴヌクレオチド)、および、2μLの上記「RNA試料液」を混合した。得られた混合液を、97℃で2分間加熱した後、2分間氷上に静置して冷却した。
上記混合液15μLを、7.5μLの「RNase-free Water」、6μLの「5x RT Buffer」(反応バッファー、MgCl2、dNTPsなどを含む5倍濃度の逆転写反応バッファー。東洋紡(株))、および、1.5μLの「Enzyme Mix」(「ReverTra Ace」(登録商標)と「RNase inhibitor」を混合した酵素液、東洋紡(株))と混合した。得られた混合液を、42℃下に30分間、97℃下に5分間、および、4℃下に5分間の順に、加熱および冷却して、逆転写反応を進行させた。
次に、PCR用酵素液(「KOD-Plus-Ver.2」、Code No. KOD-211、東洋紡(株))を使用して、PCRによるロタウィルス遺伝子の検出を行った。
まず、14μLの「RNase-free Water」、2.5μLの「10x Buffer for KOD -Plus- Ver.2」(Code No: KOD-3B、東洋紡(株))、2.5μLのdNTPs水溶液(2mM)を、1.5μLのMgSO4水溶液(25mM)、1μLのDMSO、0.5μLの「KOD-plus-Ver.2」、および、1μLのプライマー(ロタウィルスのVP4遺伝子を増幅させる5’−TGGCTTCGTTCATTTATAGACA−3’および5’−CTAAATTGCTTTTGAATCATCCCA−3’の配列を有する合成オリゴヌクレオチド)を混合した。
得られた混合液に対して、最初に95℃下で2分加熱した後、94℃下で30秒、48℃下で30秒、および、72℃下で1分を1サイクルとするPCRを35サイクル実施した。最後に、72℃下で7分、および、4℃下で10分の加熱および冷却を行い、DNA試料液を得た。得られたDNA試料液をアガロースゲル電気泳動で分析した結果(電気泳動写真)を図6に示す。
図6において、レーン1には分子量マーカー(100bp DNA Ladder H3 RTU、GeneDireX社)を流した。レーン3および4と、レーン5および6と、レーン7および8と、レーン9および10とには、それぞれ相異なる場所で捕集した空気中の塵埃から得たDNA試料液を流した。なお、これらの奇数レーン(レーン3、5、7および9)には、金属メッシュ102(開口サイズ:1.8μm)から得たDNA試料液を流し、偶数レーン(レーン4、6、8および10)には、金属メッシュ103(開口サイズ:1.1μm)から得たDNA試料液を流した。なお、レーン2には、ポジティブコントロールとして、培養したロタウイルスから得た上記と同様のDNA試料液を流した。
図6のレーン6〜8において、ロタウイルスから得たDNA(レーン2)と同様の位置にバンドが認められた。この結果から、レーン6〜8に流されたDNA試料液中に、ロタウィルス由来のDNAが含まれていたことが分かる。したがって、レーン6〜8のサンプルに対応する場所の空気中にロタウィルスが含まれていたと考えられる。
(実施例2)
実施例1と同様の方法を用いて、空気中から塵埃を捕集した。
実施例1と同様の方法を用いて、空気中から塵埃を捕集した。
次に、金属メッシュ101を入れた試験管、金属メッシュ102を入れた試験管、および金属メッシュ103を入れた試験管を準備し、核酸抽出キット(「NucleoSpin(登録商標) Soil」、Code No. U0780A(代理店:タカラバイオ(株))、マッハライ・ナーゲル社)に上記キットに添付のSL1バッファー(SDS溶解液)を700μL加え、さらにキットに添付の「Enhancer SX」溶液を150μL加え、混合液を室温で5分間激しく攪拌した。
次に、11000gで2分間の遠心分離を行った後、150μLのSL3バッファー(「Lysis Buffer SL3」、タカラバイオ(株))を加えて攪拌し、その後、4℃で5分間静置した。11000gで1分間遠心した後、上清液(サンプル)を採取した。上清液にSBバッファー(「Binding Buffer SB」、タカラバイオ(株))を加えて、平衡化したミニスピンカラム(「NucleoSpin Inhibitor Removal Column」、タカラバイオ(株))に通過させ、該サンプル中の抽出DNAを吸着させた。
次に、上記カラムに、500μLのSBバッファー、550μLのSW1バッファー(「Wash Buffer SW1」、タカラバイオ(株))、および、700μLのSW2バッファー(「Wash Buffer SW2」、タカラバイオ(株))をこの順に流して、カラムを洗浄した後、30μLのSEバッファー(「Elution Buffer SE」、タカラバイオ(株))を流して、DNAをカラムから溶出させて、DNA抽出液を得た。
次に、「Bacterial 16S rDNA Clone Library Construction Kit」(タカラバイオ(株))を用いて、16S rDNA配列を増幅した。
まず、5μLの上記DNA抽出液、25μLの「2×Gflex PCR buffer」(タカラバイオ(株))、1μLのプライマー混合液〔「16S-FA PCR primer」(5’-TTTTAAAGAGTTTGATC(A/C)TGGCTCAG-3’)と「16S-R3 PCR primer」(5’-TTAATACGG(C/T)TACCTTGTTACGACTT-3’)の混合液〕、1μLの「Tks Gflex DNA polymerase」(タカラバイオ(株))、および、18μLの「DNA free water」(タカラバイオ(株))を混合した。
得られた混合液に対して、最初に94℃下で1分加熱した後、98℃下で10秒、55℃下で15秒、および、68℃下で45秒を1サイクルとするPCRを35サイクル実施した。最後に、4℃下で10分の冷却を行い、DNA試料液(PCR増幅物含有液)を得た。得られたDNA試料液をアガロースゲル(1.2%)電気泳動で分析した結果(電気泳動写真)を図7に示す。
図7において、レーンMには、2μLの分子量マーカー(「1kb DNA ladder」、タカラバイオ(株))を流した。レーン1には、金属メッシュ101(開口サイズ:4.0μm)から得たDNA試料液を10μL流した。レーン2には、金属メッシュ102(開口サイズ:1.8μm)から得たDNA試料液を10μL流した。レーン3には、金属メッシュ103(開口サイズ:1.1μm)から得たDNA試料液を10μL流した。レーン4には、ネガティブコントロールを10μL流した。
図7のレーン1〜3において、1.5kb程度の分子量を有するDNAのバンドが認められた。この結果から、本実施例で得られたDNA試料液中に、16S rDNAに由来する1.5kb程度の分子量を有するPCR増幅物が含まれていたことが確認された。したがって、塵埃に含まれる微生物から、その後の解析に足る量の遺伝子を抽出できたことがわかった。
(実施例3)
本実施例では、実施例2でレーンMおよびレーン1〜4の各々に流したDNA試料液(PCR産物)について、環境中の細菌の群集構造解析用ライブラリー作製用のキット(「Bacterial 16S rDNA Clone Library Construction Kit」(タカラバイオ(株))を用いた分析を実施した。すなわち、DNA試料液中に含まれるDNAをプラスミドベクターに挿入し、大腸菌のプラスミドクローンを分離した。得られた100クローンの挿入部のDNA配列を解析した。以下に詳細を説明する。
本実施例では、実施例2でレーンMおよびレーン1〜4の各々に流したDNA試料液(PCR産物)について、環境中の細菌の群集構造解析用ライブラリー作製用のキット(「Bacterial 16S rDNA Clone Library Construction Kit」(タカラバイオ(株))を用いた分析を実施した。すなわち、DNA試料液中に含まれるDNAをプラスミドベクターに挿入し、大腸菌のプラスミドクローンを分離した。得られた100クローンの挿入部のDNA配列を解析した。以下に詳細を説明する。
まず、1μLのDNA試料液(16S rDNA PCR産物)と、上記キットに添付された1μLのプラスミドベクター含有液「pBackZero-alpha linear vector」(50ng/μL)、5μLの「DNA Ligation Kit <Mighty Mix>」、および、5μLの「DNA free water」と、を混合した。その後、16℃下で30分間反応を進行させて、DNAをプラスミドベクターに挿入した。得られたプラスミドベクターを大腸菌(「E.coli HST08 Premium Competent Cell」、タカラバイオ(株))に導入した。
大腸菌を単クローン化して培養した後、「PureYield Plasmid Miniprep System」(プロメガ社)を使用して、大腸菌からプラスミドを抽出精製した。このプラスミドを「ABI PRISM(R) 3100 ジェネティックアナライザー」により定法に従って配列解析した。解析配列のBLASTサーチにより同定された微生物(細菌)を下表に示す。
図8は、本実施例において同定された上記細菌の属分布を示すグラフである。なお、図8では、菌種はすべて「属」レベルでまとめている。なお、図8において、表4の「uncultured bacterium」と記したクローンは、最も配列の相同性の高い(相同性:95%以上)属に含めている。また、「not identified bacteria」は、相同性の高い既知の属が見当たらないことを示す。また、「other」は、「門」までの情報しかなく、「属」の情報がないことを示す。
表4〜表6および図8に示される結果から、空気中の塵埃に含まれる微生物のおおよその組成がわかる。すなわち、検出微生物のコロニー数(重複数)から相対的な存在量がわかる。検出された微生物について、病原菌(Serratia属、Nocardia属など)、食品劣化に関わる菌(Enterobacter科など)、水質の劣化に関わる菌(Methylobacteriumなど)などが同定できた。したがって、この方法を利用することで、病院や食品工場など微生物の管理が必要な場所で環境のモニタリングができる。また、本発明の抽出方法(抽出装置)を用いた分析方法によって、流体(空気)中の微生物を検出可能であることが分かる。
今回開示された実施の形態および実施例はすべての点で例示であって制限的なものではないと考えられるべきである。本発明の範囲は上記した説明ではなくて請求の範囲によって示され、請求の範囲と均等の意味および範囲内でのすべての変更が含まれることが意図される。
本発明は、医療分野や環境衛生分野において利用することができる。例えば、空気中に存在する細菌、ウィルス等の分析(同定、定量など)を行うことにより、その分析結果を基に、細菌やウィルスによって生じる健康被害の予防に役立てることができる。
10,101,102,103 金属メッシュ、12 シリンジバレル、2 抽出装置、2a 本体、2b 第1積層部、2c 第2積層部、2d カバー部、20 プレフィルタ、21 保持部材、22 吸気口、23 排気口、24 吸引スイッチ、31 生物学的試料、32 夾雑物、41 ガスケット、42 プランジャー、5 容器、6 DNA抽出液。
Claims (14)
- 流体中に存在する核酸と前記核酸を包含する被覆構造体とを含む生物学的試料を金属メッシュにより捕集する第1工程と、
前記生物学的試料が捕集された前記金属メッシュを核酸抽出液に浸漬する第2工程と、
前記核酸抽出液を回収する第3工程と、をこの順で備え、
前記金属メッシュの孔径は、前記生物学的試料より小さく、前記核酸より大きく、
前記核酸抽出液は、前記核酸を溶解可能であり、前記被覆構造体を溶解しない、前記核酸の抽出方法。 - 前記金属メッシュは、主面上の少なくとも一方向に周期的に配置された複数の貫通孔を有する、請求項1に記載の抽出方法。
- 前記金属メッシュは前記核酸抽出液によって溶解されない、請求項1または2に記載の抽出方法。
- 前記核酸抽出液はフェノールを含有する、請求項1〜3のいずれか1項に記載の抽出方法。
- 前記第1工程において、前記金属メッシュに前記生物学的試料を捕集する前に、前記流体中に含まれる前記生物学的試料以外の夾雑物をプレフィルタにより除去する、請求項1〜4のいずれか1項に記載の抽出方法。
- 前記流体は、異なる粒径を有する複数種の生物学的試料を含有し、
前記第1工程において、前記複数種の生物学的試料の各々を孔径の異なる複数の金属メッシュの各々で捕集し、
前記第2工程において、前記複数種の生物学的試料の各々が捕集された前記複数の金属メッシュの各々を複数の核酸抽出液の各々に浸漬する、請求項1〜4のいずれか1項に記載の抽出方法。 - 請求項1〜6のいずれか1項に記載の抽出方法によって抽出された前記核酸を分析する第4工程を備える、前記生物学的試料の分析方法。
- 流体を流すための流路を有する捕集部材と、
前記捕集部材の前記流路内に設けられた、前記流体中に存在する核酸と前記核酸を包含する被覆構造体とを含む生物学的試料を捕集するための金属メッシュと、
前記生物学的試料が捕集された前記金属メッシュを浸漬するための核酸抽出液を収容する容器と、を備え、
前記金属メッシュの孔径は、前記生物学的試料より小さく、前記核酸より大きく、
前記核酸抽出液は、前記核酸を溶解可能であり、前記被覆構造体を溶解しない、前記核酸の抽出装置。 - 前記金属メッシュは前記核酸抽出液によって溶解されない、請求項8に記載の抽出装置。
- 前記核酸抽出液はフェノールを含有する、請求項8または9に記載の抽出装置。
- 前記捕集部材の前記流路内の前記金属メッシュより上流側に設けられた、前記流体中に含まれる前記生物学的試料以外の夾雑物を除去するためのプレフィルタをさらに備える、請求項8〜10のいずれか1項に記載の抽出装置。
- 前記流体は、異なる粒径を有する複数種の生物学的試料を含有し、
前記捕集部材の前記流路内に設けられた、前記複数種の生物学的試料の各々を捕集するための孔径の異なる複数の金属メッシュと、
前記複数種の生物学的試料の各々が捕集された前記複数の金属メッシュの各々を浸漬するための複数の核酸抽出液の各々を収容する複数の容器と、を備える、請求項8〜11のいずれか1項に記載の抽出装置。 - 前記捕集部材はシリンジバレルであり、
前記シリンジバレル内で液密状態で摺動可能なガスケットと、前記ガスケットに装着されたプランジャーと、をさらに備える、請求項8〜12のいずれか1項に記載の抽出装置。 - 請求項8〜13のいずれか1項に記載の抽出装置を備え、
前記抽出装置によって抽出された前記核酸を分析するための分析機器をさらに備える、前記生物学的試料の分析装置。
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