JP5919193B2

JP5919193B2 - 炎症を抑制する組成物

Info

Publication number: JP5919193B2
Application number: JP2012533018A
Authority: JP
Inventors: 秀二池上; 聖也牧野; 孝之利光; 伊藤　裕之; 裕之伊藤; 篤人中尾
Original assignee: Meiji Co Ltd
Current assignee: Meiji Co Ltd
Priority date: 2010-09-09
Filing date: 2011-09-08
Publication date: 2016-05-18
Anticipated expiration: 2031-09-08
Also published as: US9095604B2; TW201215398A; CN103261399B; EP2615163A4; SG188425A1; JPWO2012033151A1; US20130302844A1; EP2615163A1; HK1184816A1; WO2012033151A1; TWI572354B; CN103261399A; EP2615163B1; CA2810698A1

Description

本発明は、芳香族炭化水素レセプター（ＡｈＲ）を活性化することで、腸内において炎症抑制性作用を発揮するプロバイオティクスおよび新規菌株、前記プロバイオティクスおよび菌株を含む経口摂取用組成物ならびに前記プロバイオティクスおよび菌株のスクリーニング方法に関する。

今日の医学の発展にとって、抗生物質（アンチバイオティクス）の発見と使用は重要であった。しかし近年、抗生物質の副作用や、突然変異による多剤耐性菌の出現などの問題が話題となっている。そこで「アンチバイオティクス」に対して「プロバイオティクス」という考え方が昨今世間に広く認知されてきた。プロバイオティクスとは、「消化管内の細菌叢を改善し、宿主に有益な作用をもたらしうる有用な微生物と、それらの増殖促進物質」のことであり、これらプロバイオティクスを用いて消化管内（口腔内や腸内）のフローラ（細菌叢）に作用し、フローラの健常化をはかりながら、疾病の予防、改善を行う、という考え方が生まれてきている。

芳香族炭化水素レセプター（Aryl hydrocarbon receptor：ＡｈＲ）は、ほとんどの細胞、組織に発現が見られる、ｂＨＬＨ−ＰＡＳファミリーに属する転写因子であり、リガンドの結合によって様々な遺伝子の転写活性化を引き起こすことが知られている。ＡｈＲのリガンドとしては、ダイオキシンやポリ塩化ビフェニルなどの化合物が知られているが、内因性のリガンドは不明なレセプターである。

リガンドと結合していない状態のＡｈＲは不活性であり、Ｈｓｐ９０などの分子シャペロンと会合した状態で細胞質内に存在する。不活性型のＡｈＲがリガンドと結合すると、分子シャペロンが解離し、活性化したＡｈＲは核内へと移行する。核内へ移行したＡｈＲは、ＡＲＮＴ（AhR Nuclear Translocator）と呼ばれる分子と結合してヘテロ二量体を形成し、ＤＮＡ上の異物応答配列（Xenopic responsive element：ＸＲＥ）と呼ばれるエンハンサー配列と相互作用することにより、下流の遺伝子の転写を活性化する。

最近、ＡｈＲ経路の活性化により、プロスタグランジンＥ２（ＰＧＥ２）の産生促進が起こること（非特許文献１）、ＰＧＥ２が消化管傷害の保護に作用することがわかってきた（非特許文献２）。そこで、ＡｈＲを活性化することでＰＧＥ２の産生促進を促し、消化管傷害から保護できるのではないかという試みが始まってきた。

上記試みの一つとして、ＡｈＲリガンドの一つとして知られる２，３，７，８−テトラクロロジベンゾ−ｐ−ダイオキシン（ＴＣＤＤ）が、デキストラン硫酸ナトリウム（ＤＳＳ）によって誘導された潰瘍性大腸炎の炎症反応を抑制するという報告がなされた（非特許文献３）。この報告には、ＴＣＤＤを投与したＤＳＳ処置マウスにおいて、ＴＣＤＤ未投与のＤＳＳ処置マウスと比較して有意に体重減少、腸管短縮、炎症スコア、炎症性サイトカイン産生を抑制したことが開示されている。

Stenson, W.F., Curr Opin Gastroenterol., 2007 Mar, 23(2):107-10 Martey, C.A. et al., Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 289: L391-L399, 2005 Takamura, T. et al., Immunology and Cell Biology (2010) 88, 685-689

本発明の目的は、ＡｈＲを活性化することで消化管における炎症性傷害を抑制することができるプロバイオティクスを提供することにある。

本発明者らは、消化管における炎症性疾患の治療について研究する中で、ステロイドや非ステロイド系抗炎症剤などの投与による対症療法では、根本的な治療が行えないことや、長期にわたる治療においては副作用などの問題が懸念されることに鑑み、新たな治療方法について模索を続ける中、ＡｈＲ活性化による消化管傷害の保護が新たな治療方法となる可能性に着目した。

しかしながら現在報告されているＡｈＲのリガンドは、いずれも毒性の強いものが多く、抗炎症剤としては不適切であるため、ＡｈＲを活性化することにより抗炎症作用を発揮することができ、なおかつ安全に摂取することができる新規な抗炎症剤を模索するという新たな課題に直面した。そこで、鋭意研究を続ける中で、消化管内のフローラに作用して腸内環境を改善することで症状を緩和、および緩解期を延長することができるプロバイオティクスに着目したが、現在ＡｈＲを活性化する能力を有するプロバイオティクスについては何ら報告されておらず、存在すら確認されていないというさらなる課題に直面した。

そこで、さらに研究を続けるうち、ＡｈＲを活性化する能力を有する菌株をスクリーニングする方法を新たに見出し、該方法によりＡｈＲを活性化する能力を有するプロバイオティクスを単離することに成功し、本発明を完成させるに至った。上記のように、ＡｈＲ活性化能を有するプロバイオティクスは今まで全く知られておらず、かかるプロバイオティクスが存在することは驚くべき知見である。

すなわち本発明は、以下に関する。
（１）芳香族炭化水素レセプター（ＡｈＲ）活性化能を有する、プロバイオティクス。
（２）プロバイオティクスが、乳酸菌、ビフィズス菌およびプロピオン酸菌からなる群から選択される、（１）に記載のプロバイオティクス。
（３）プロバイオティクスが、乳酸菌である、（１）または（２）に記載のプロバイオティクス。
（４）Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus ＯＬＬ１１８１菌株（受託番号：ＦＥＲＭＢＰ−１１２６９）。

（５）ＡｈＲ活性化能を有するプロバイオティクスを含む、抗炎症剤。
（６）ＡｈＲ活性化能を有するプロバイオティクスが、乳酸菌、ビフィズス菌およびプロピオン酸菌からなる群から選択される、（５）に記載の抗炎症剤。
（７）ＡｈＲ活性化能を有するプロバイオティクスが、乳酸菌である、（５）または（６）に記載の抗炎症剤。
（８）ＡｈＲ活性化能を有するプロバイオティクスが、Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus ＯＬＬ１１８１菌株である、（５）〜（７）のいずれかに記載の抗炎症剤。

（９）（５）〜（８）のいずれかに記載の抗炎症剤を含む、経口摂取用組成物。
（１０）経口摂取用組成物が、飲料品組成物、食品組成物、飼料組成物および医薬組成物からなる群から選択される、（９）に記載の経口摂取用組成物。

（１１）異物応答配列（ＸＲＥ）およびその下流のレポーター遺伝子領域を含む発現ユニットを有するＡｈＲ発現細胞を、候補プロバイオティクスおよび／またはその培養上清で刺激する工程を含む、ＡｈＲ活性化能を有するプロバイオティクスをスクリーニングする方法。

本発明により、経口により安全に摂取可能であり、ＡｈＲを活性化することにより、少ない副作用で、消化管内で抗炎症的に作用し得る抗炎症剤を製造することができる。さらに本発明のプロバイオティクスは、ＡｈＲに作用することで抗炎症作用を誘導し得るという明確な作用点を有することにより、非常に高い効果を期待することができ、本発明のスクリーニング方法により選抜されるプロバイオティクスは、ＡｈＲ活性化を介した抗炎症作用という点においていずれも高い能力を有することが期待できる。

さらに、本発明のプロバイオティクスの抗炎症作用を適用することにより、従来の抗炎症剤が有する副作用などの観点から困難であった炎症性腸疾患など難治性の疾患における長期の治療にも対応することができるだけでなく、従来は炎症部位における炎症作用を薬剤によって抑制するという対症療法しか行えなかった炎症性消化管疾患の治療において、生体のホメオスタシスを活用し、体質改善により根本治療が可能であるという新たな可能性を示すものである。

図１は、本発明のスクリーニング方法による各種乳酸菌のスクリーニング結果を表す。図中、No treatはネガティブコントロール、Posiconはポジティブコントロールを表す。図２は、本発明の菌株ＯＬＬ１１８１菌株で刺激したＨｅＸＳ３４細胞の培養上清におけるＳＥＡＰ活性の結果を表す。図３は、本発明のＯＬＬ１１８１菌株で刺激したＣａｃｏ２細胞における、ＣＹＰ１Ａ１の相対発現量を表す。比較として、ＭＥＰ２２２７０１菌株およびαＮＦのみで刺激した場合の相対発現量を一緒に表している。

図４は、マウスに本発明の菌株ＯＬＬ１１８１菌株を投与した際の、in vivo大腸でのＣＹＰ１Ａ１の相対発現量を表す。図５は、本発明の菌株ＯＬＬ１１８１菌株で刺激した際の、Ａ：ヒトＣａｃｏ２細胞におけるＣＯＸ−２の相対発現量、Ｂ：マウス大腸におけるin vivoでのＣＯＸ−２の相対発現量、Ｃ：ヒトＣａｃｏ２細胞の培養上清におけるＰＧＥ２の分泌量を表す。

図６は、ＤＳＳ誘導性腸炎に対する、本発明の菌株ＯＬＬ１１８１菌株の効果を検証した実験結果を表す。それぞれ、Ａ：各試験群の生存率、Ｂ：各試験群の体重の変化、Ｃ：１１日目における各試験群の大腸の長さ、Ｄ：１１日目における、各試験群の大腸でのＴＮＦ−αおよびＭＰＯの相対発現量を表す。

本発明は、芳香族炭化水素レセプター（ＡｈＲ）活性化能を有するプロバイオティクスに関する。
本発明において、「ＡｈＲ活性化能」とは、ＡｈＲ活性化によって開始されるシグナル伝達経路を活性化することができる能力のことをいい、活性化するメカニズムは何であってもよい。したがって、必ずしも菌体そのものがＡｈＲのリガンドである必要はなく、例えば菌が産生する分泌物質がＡｈＲ活性化能を有していてもよいし、死菌体またはその破砕物などによってＡｈＲが活性化されてもよい。したがって、本発明において「微生物」、「細菌」という場合または特定の菌についていう場合、生菌そのものだけでなく、死菌体またはその破砕物、該菌の培養物または分泌物も含まれる。しかし、好ましくは生菌、死菌体またはその破砕物などの菌体そのものであり、消化管内で細菌叢を形成することができるという観点から、より好ましくは生菌である。

本発明において、「プロバイオティクス」とは、上述のとおり「消化管内の細菌叢を改善し、宿主に有益な作用をもたらしうる有用な微生物と、それらの増殖促進物質」のことをいう。したがって、本発明のプロバイオティクスには、細菌叢を形成する細菌のみならず、かかる細菌の増殖を促進する物質もまた包含される。また、本発明において「プロバイオティクス」とは、宿主に有益な作用をもたらしうる有用な微生物及びこれらの微生物が産生した物質（微生物の培養物）を包含する。ＡｈＲ活性化能を有する増殖促進物質には、物質そのものがＡｈＲ活性化能を有している場合も、物質そのものはＡｈＲ活性化能を有さないが、ＡｈＲ活性化能を有する細菌の増殖を促進する場合も含まれる。好適な腸内環境を形成し得ること、作用が腸内環境の個体差に依存しないことなどから、プロバイオティクスが生菌であることが好ましいが、一時的なＡｈＲの活性化が所望される場合には、死菌体、菌分泌物などが好ましい。

本発明のプロバイオティクスに含まれる菌としては、これに限定するものではないが、例えば乳酸菌、ビフィズス菌、プロピオン酸菌、バクテロイデス、ユウバクテリウム、嫌気性レンサ球菌、腸球菌、大腸菌などが挙げられる。しかし、安全性などの観点から、乳酸菌、ビフィズス菌およびプロピオン酸菌が好ましく、乳酸菌およびビフィズス菌がより好ましい。その中でも、菌体そのものがＡｈＲ活性化能を有し、生菌だけでなく死菌体もＡｈＲを活性化し得るものが存在するという観点から、さらに好ましくは乳酸菌である。乳酸菌の中でも、ヨーグルトの製造に用いられ、食品としての応用が容易であるなどの観点から、特に好ましくはLactobacillus bulgaricus、Streptococcus thermophilusなどである。

近年、リポ多糖（ＬＰＳ）の刺激によってＡｈＲがＳｔａｔ１と結合してＮＦ−κＢの転写活性を抑制するという報告がなされた（Kimura, A. et al., J Exp Med. 2009 Aug 31;206(9):2027-35）。しかしながら、細胞膜構造にＬＰＳを有さない乳酸菌、ビフィズス菌およびプロピオン酸菌などのグラム陽性菌においてＡｈＲ活性化能を有するものが見出されたことは、新しい発見である。

本発明者らの研究により、ＡｈＲ活性化能を有する新規なプロバイオティクスとして、Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus ＯＬＬ１１８１菌株（受託番号：ＦＥＲＭＢＰ−１１２６９）が単離された。したがって、本発明の一態様において、本発明のプロバイオティクスは、Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus ＯＬＬ１１８１菌株を含む。

本発明のＯＬＬ１１８１菌株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（〒３０５−８５６６日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６）に、２０１０年７月１６日付、受託番号：ＦＥＲＭＢＰ−１１２６９として寄託されており、以下の特徴を有する新規Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus菌である。
（ａ）形態的性質
桿菌
（ｂ）培養的性質
培地名：Lactobacilli MRS Broth (Difco, Ref. No. 288130)
ｐＨ：無調整
培養温度：３７℃
培養時間：１８時間
（１）形状：円形
（２）直径：１〜２ｍｍ
（３）色調：白色
（４）隆起状態：半球状
（５）周縁：全縁
（６）表面形状：スムーズ
（７）透明度：不透明
（８）粘稠度：バター様
（ｃ）生理学的性質
（１）グラム染色性：陽性
（２）乳酸発酵形式：ホモ乳酸発酵
（３）酸素要求性：通性嫌気
（４）発育温度：１５℃＋、４５℃−

ＯＬＬ１１８１菌株は、ＡｈＲを活性化し、そのシグナル伝達経路の下流でＰＧＥ２の産生を増大させ、その結果消化管内で抗炎症作用を発揮することができる。ＯＬＬ１１８１菌株は、生菌および死菌体双方でＡｈＲ活性化能を有することが、本発明者らの研究により分かった。ＬＰＳを有さないグラム陽性菌であるＯＬＬ１１８１菌株の菌体が、ＡｈＲ活性化能を有していることは、驚くべき発見である。また、ＯＬＬ１１８１菌株はLactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus菌であり、生体毒性を有さない安全な菌であるため、食品組成物、飲料組成物などの経口摂取用組成物を含む様々な用途に用いることができるという点で、プロバイオティクスとして非常に有用である。また、ＯＬＬ１１８１菌株は、菌体そのものがＡｈＲを活性化できるため、組成物中に含まれる菌の生死に関係なく、ＡｈＲ活性化能を発揮することができる。したがって様々な組成物中に含ませ得るという点においてもまた非常に有用である。

本発明のプロバイオティクスはＡｈＲ活性化能を有し、ＡｈＲを活性化することによりＰＧＥ２の産生を促進し、その結果抗炎症性の効果を発揮することができる。したがって、本発明のプロバイオティクスを抗炎症剤の有効成分として用いることができる。本発明のプロバイオティクスを抗炎症剤の有効成分として用いる場合、生菌、死菌、培養物、その加工物およびそれらの組み合わせを用いることが可能である。前記培養物とは、本発明のプロバイオティクスの培養終了後の培養上清や培地成分をそのまま用いるものであり、前記加工物は、培養物に由来すればとくに限定されないが、例えば、培養物の濃縮、ペースト化、噴霧乾燥、凍結乾燥、真空乾燥、ドラム乾燥、液状化、希釈、破砕などの加工により得られる物が挙げられる。これらの加工には、公知の方法を適宜用いることができる。前記培養物中または前記加工物中において、菌体および／またはその破砕物が含まれてもよく、菌体として含まれる場合は、生菌であっても死菌であってもよい。摂取によって腸内有害菌の増殖を抑制して腸内環境を改善する、という観点から、好ましくは生菌として組成物中に含まれる。また、上記抗炎症剤には、本発明のプロバイオティクスに加えて、これに限定するものではないが、例えば薬学的に許容可能な担体、賦形剤、添加剤、希釈剤などの任意の成分をさらに含んでよい。

また本発明のプロバイオティクス、その培養物、またはその加工物には、適宜、例えば、培地成分、経口経管摂取に適した添加物および水などの溶媒、糖質、タンパク質、脂質、ビタミン類、生体必須微量金属、香料、薬学的に許容し得る担体、食品添加物などの任意成分を添加し、医薬組成物や食品組成物などとすることができる。

本発明の抗炎症剤は、ＰＧＥ２の産生促進に起因して抗炎症性効果を発揮し得るものであり、したがって本発明の抗炎症剤は、炎症性疾患の治療、改善および／または予防用に用いることができる。かかる炎症性疾患はいかなる炎症性疾患であってもよいが、有効成分であるプロバイオティクスの効果を最大限に発揮できること、すなわち炎症局所への作用とその他増悪因子の改善効果などから、好ましくは、これに限定するものではないが例えば炎症性腸疾患などの消化管の炎症に用いられる。

本発明の抗炎症剤に含まれ得るプロバイオティクスとしては、経口摂取の容易さ、消化管内の細菌叢への作用効果の大きさなどの観点から、好ましくは乳酸菌、ビフィズス菌およびプロピオン酸菌であり、より好ましくは乳酸菌およびビフィズス菌である。菌体そのものが有するＡｈＲ活性化の作用効果の観点から、さらに好ましくは乳酸菌であり、最も好ましくはLactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus ＯＬＬ１１８１菌株である。

本発明の抗炎症剤は、消化管内の細胞に作用することで消化管、特に腸における炎症に対して対症療法的に効果を発揮し、さらに消化管内の細菌叢へ作用することで、根本治療的に効果を発揮することができる剤であるため、経口摂取されることが好ましい。したがって、本発明の抗炎症剤を含む経口摂取用組成物もまた、本発明に包含される。

本発明のプロバイオティクス、抗炎症剤、または経口摂取用組成物の一日当たりの摂取量は、とくに限定されないが、年齢、症状、体重、用途などに応じて適宜調整することができる。典型的には、プロバイオティクスとして０．０１〜１００×１０^１１個／ｂｏｄｙ、好ましくは０．１〜１０×１０^１１個／ｂｏｄｙ、より好ましくは０．３〜５×１０^１１個／ｂｏｄｙの一日当たりの摂取量を例示することができる。また、プロバイオティクスとして０．０１〜１００×１０^１１個／６０ｋｇ体重、好ましくは０．１〜１０×１０^１１個／６０ｋｇ体重、より好ましくは０．３〜５×１０^１１個／６０ｋｇ体重の一日当たりの摂取量を例示することもできる。
しかしながら、本発明のプロバイオティクス、抗炎症剤、または経口摂取用組成物の摂取量は、上記に挙げた値に限定されるものではない。

本発明の抗炎症剤または経口摂取用組成物に含まれるプロバイオティクスの含量は、その使用形態によって適宜決めることができる。典型的には、プロバイオティクス乾燥菌体として５〜５０ｗ／ｗ％、好ましくは１〜７５ｗ／ｗ％、より好ましくは０．１〜１００ｗ／ｗ％および１〜１００ｗ／ｗ％を例示することができる。
しかしながら、本発明の抗炎症剤または経口摂取用組成物に含まれるプロバイオティクスの含量は、上記に挙げた値に限定されるものではない。

本明細書において、「経口摂取用組成物」とは、経口摂取可能な全ての組成物を意味する。したがって、経口摂取用組成物には、これに限定するものではないが、例えば飲料品組成物、食品組成物、飼料組成物、医薬組成物、などが含まれる。

本発明の飲料品組成物は、典型的には、ＡｈＲ活性化能を有するプロバイオティクス、その培養物およびその加工品から選択される１または２以上を含む。本発明の飲料品組成物にはさらに、プロバイオティクスの生育を妨げない限り、糖質、タンパク質、脂質、ビタミン類、生体必須微量金属（硫酸マンガン、硫酸亜鉛、塩化マグネシウム、炭酸カリウムなど）、香料やその他の配合物を含むことができる。かかる飲料品組成物は、摂取個体の腸内環境を改善し、炎症性疾患の改善および／または予防効果を奏する。

本発明の食品組成物は、典型的には、ＡｈＲ活性化能を有するプロバイオティクス、その培養物およびその加工品から選択される１または２以上を含む。本発明の食品組成物にはさらに、プロバイオティクスの生育を妨げない限り、糖質、タンパク質、脂質、ビタミン類、生体必須微量金属（硫酸マンガン、硫酸亜鉛、塩化マグネシウム、炭酸カリウムなど）、香料やその他の配合物を含むことができる。かかる食品組成物は、摂取個体の腸内環境を改善し、炎症性疾患の改善および／または予防効果を奏する。

糖質としては、糖類、加工澱粉（デキストリンのほか、可溶性澱粉、ブリティッシュスターチ、酸化澱粉、澱粉エステル、澱粉エーテルなど）、食物繊維などが挙げられる。
タンパク質としては、例えば全脂粉乳、脱脂粉乳、部分脱脂粉乳、カゼイン、ホエイ粉、ホエイタンパク質、ホエイタンパク質濃縮物、ホエイタンパク質分離物、α−カゼイン、β−カゼイン、κ−カゼイン、β−ラクトグロブリン、α−ラクトアルブミン、ラクトフェリン、大豆タンパク質、鶏卵タンパク質、肉タンパク質などの動植物性タンパク質、これら加水分解物；バター、乳性ミネラル、クリーム、ホエイ、非タンパク態窒素、シアル酸、リン脂質、乳糖などの各種乳由来成分などが挙げられる。

脂質としては、例えば、ラード、魚油など、これらの分別油、水素添加油、エステル交換油などの動物性油脂；パーム油、サフラワー油、コーン油、ナタネ油、ヤシ油、これらの分別油、水素添加油、エステル交換油などの植物性油脂などが挙げられる。
ビタミン類としては、例えば、ビタミンＡ、カロチン類、ビタミンＢ群、ビタミンＣ、ビタミンＤ群、ビタミンＥ、ビタミンＫ群、ビタミンＰ、ビタミンＱ、ナイアシン、ニコチン酸、パントテン酸、ビオチン、イノシトール、コリン、葉酸などが挙げられ、ミネラル類としては、例えば、カルシウム、カリウム、マグネシウム、ナトリウム、銅、鉄、マンガン、亜鉛、セレンなどが挙げられる。

本発明の飲料品組成物および食品組成物のカテゴリーや種類に制限はなく、機能性食品、特定保健用食品、特定用途食品、栄養機能食品、健康食品、介護用食品でもよく、また、菓子、乳酸菌飲料、チーズやヨーグルトなどの乳製品、調味料などであってもよい。飲食品の形状についても制限はなく、固形、液状、流動食状、ゼリー状、タブレット状、顆粒状、カプセル状など、通常流通し得るあらゆる飲食品形状をとることができ、各種食品（牛乳、清涼飲料、発酵乳、ヨーグルト、チーズ、パン、ビスケット、クラッカー、ピッツァクラスト、調製粉乳、流動食、病者用食品、栄養食品、冷凍食品、加工食品その他の市販食品など）に添加してもよい。上記飲食品の製造は、当業者の常法によって行うことができる。

本発明のプロバイオティクス、その培養物、またはその加工物は、上記のとおり、乳製品・発酵乳を含む一般飲食品に加工できる他、ヨーグルトやチーズなどの乳製品・発酵乳の製造用スターターとして利用することも可能である。スターターとする場合は、本発明のプロバイオティクスの生存および増殖に支障がない限り、また、乳製品製造に支障がない限り、他の微生物が混合されていてもよい。例えば、ヨーグルト用乳酸菌として主要な菌種であるLactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus、Streptococcus thermophilus、Lactobacillus acidophilusなどと混合してもよく、その他、一般にヨーグルト用やチーズ用として用いられる菌種と混合してスターターとすることができる。上記スターターによる乳製品、発酵乳の製造は、常法に従って行うことができる。例えば、加温・混合・均質化・殺菌処理後に冷却した乳または乳製品に、上記スターターを混合し、発酵・冷却することにより、プレーンヨーグルトを製造することができる。

本発明の飼料組成物は、典型的には、ＡｈＲ活性化能を有するプロバイオティクス、その培養物およびその加工品から選択される１または２以上を含む。本発明の飼料組成物にはさらに、プロバイオティクスの生育を妨げない限り、糖質、タンパク質、脂質、ビタミン類、生体必須微量金属（硫酸マンガン、硫酸亜鉛、塩化マグネシウム、炭酸カリウムなど）、香料やその他の配合物を含むことができる。かかる飼料組成物は、摂取個体の腸内環境を改善し、炎症性疾患の改善および／または予防効果を奏する。

本発明の医薬組成物は、典型的には、ＡｈＲ活性化能を有するプロバイオティクス、その培養物およびその加工物から選択される１種または２種以上を含む。かかる医薬組成物は、摂取個体の腸内環境を改善し、炎症性疾患に対して治療、改善および／または予防効果を奏する。また、かかる医薬組成物は、投与経路はとくに限定されないが、経口的または非経口的に投与することが含まれ、例えば、経口投与、経管投与、経腸投与を例示できる。簡便かつ安全性の観点から、経口投与が好ましい。また剤型は、とくに限定されないが、投与経路に応じて適宜選択することができ、例えば、エアゾール剤、液剤、エキス剤、エリキシル剤、カプセル剤、顆粒剤、丸剤、眼軟膏剤、経皮吸収型製剤、懸濁剤、乳剤、坐剤、散剤、酒精剤、錠剤、シロップ剤、浸剤、煎剤、注射剤、貼付剤、チンキ剤、点眼剤、トローチ剤、軟膏剤、パップ剤、芳香水剤、リニメント剤、リモナーデ剤、流エキス剤、ローション剤が挙げられる。

経口投与製剤としては、周知の各種剤型とすることができ、例えば、顆粒剤、散剤、錠剤、丸剤、カプセル剤、液剤、シロップ剤、乳剤、懸濁剤、トローチ剤などの剤型とすることができる。また、腸溶性製剤とすることにより、胃酸の効果を受けることなく、より効率的に腸まで運ぶことも可能である。
非経口的な投与としては、注射剤などの形での投与を挙げることができる。また、本発明のプロバイオティクス、その培養物またはその加工物を、処置を施したい領域に局所的に投与することもできる。例えば、手術中の局所注入、カテーテルの使用により投与することも可能である。

本発明の医薬組成物に用い得る担体としては、界面活性剤、賦形剤、着色料、着香料、保存料、安定剤、緩衝剤、懸濁剤、等張化剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、流動性促進剤、矯味剤などが医薬上許容される担体として挙げられるが、その他常用の担体を適宜使用することができる。具体的には、軽質無水ケイ酸、乳糖、結晶セルロース、マンニトール、デンプン、カルメロースカルシウム、カルメロースナトリウム、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリビニルアセタールジエチルアミノアセテート、ポリビニルピロリドン、ゼラチン、中鎖脂肪酸トリグリセライド、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油６０、白糖、カルボキシメチルセルロース、コーンスターチ、無機塩類などを挙げることができる。

本発明は、ＡｈＲを活性化することができるプロバイオティクスが存在するという新たな知見に基づいて完成されたものであり、したがってＡｈＲを活性化する能力を有するプロバイオティクスをスクリーニングする方法および該スクリーニングされたプロバイオティクスを対象に投与することを含む、ＡｈＲを活性化する方法、ならびに炎症性疾患の予防および／または治療方法も本発明に包含される。特に、ＡｈＲ活性化能に基づいて、摂取個体に有益な作用をもたらすプロバイオティクスをスクリーニングできることは、従前全く知られていなかったことである。本発明において、炎症性疾患は全身性、局所性のいずれであってもよく、炎症部位も皮膚、粘膜、消化器、呼吸器、肝臓、血管、子宮、等のいずれであってもよい。炎症性疾患の好適な例として、炎症性腸疾患を挙げることができるが、この例に限定されない。

ＡｈＲは、上述のとおり、活性化されると核内に移行し、ＤＮＡ上の異物応答配列（ＸＲＥ、ダイオキシン応答配列：Dioxin Responsive Element、ＤＲＥとも呼ばれる）に結合することで、例えばシトクロームＰ４５０酵素（ＣＹＰ１Ａ１）など、その下流の遺伝子発現を引き起こす。したがって、少なくとも１のＸＲＥ配列およびその下流のレポーター遺伝子領域を含む発現ユニットを有するＡｈＲ発現細胞を候補プロバイオティクスおよび／またはその培養上清によって刺激し、レポーター遺伝子の発現を観察することで、候補プロバイオティクスがＡｈＲ活性化能を有するかどうかを試験することができる。

例えばダイオキシン類やＰＣＢ類などの化学物質を用いた、ＡｈＲ活性化化合物のスクリーニングを含むin vitroバイオアッセイ方法は公知である。本発明に用いられるＡｈＲ発現細胞は、前記バイオアッセイに用いられ得る細胞であればいかなる細胞も用いることができる。入手および培養の容易性、検出方法の簡便さなどの観点から、好ましくはＨｅＸＳ３４細胞、Ｃａｃｏ−２細胞などが挙げられる。かかるＡｈＲ発現細胞が有するＸＲＥおよびその下流のレポーター遺伝子を含む発現ユニットは、内因性のものであっても、形質転換などによって外部から導入されたものであってもよい。アッセイに特化している、検出ノイズが少ない、などの観点から、好ましくは外部から導入された発現ユニットを有する。

本発明に用いられるレポーター遺伝子としては、遺伝子の転写産物であるｍＲＮＡおよび／またはタンパク質の発現量を定量的に計測可能な遺伝子であれば、いかなる遺伝子を用いてもよい。例えば上述のＣＹＰ１Ａ１の発現量を、例えば定量的リアルタイムＰＣＲなどを用いて定量的に検出することで、ＡｈＲ活性化能を検出することも可能である。その例として、後述の実験例例３等に記載されている、Ｃａｃｏ２細胞を用いた試験系を挙げることができる。もちろん、バイオアッセイ用として当業者に知られたあらゆるレポーター遺伝子を用いることも可能であり、定量の容易性、発現の安定性などの観点から、これに限定するものではないが、例えば分泌型アルカリホスファターゼ（ＳＥＡＰ）、分泌型ルシフェラーゼ、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）などが用いられる。その例として、後述の実験例例１等に記載されている、ＨｅＸＳ３４細胞を用いた試験系を挙げることができる。
本発明において、前記発現ユニットを外部から細胞に導入するために使用するプラスミドが、少なくとも１のＸＲＥ配列およびその下流のレポーター遺伝子を含むプラスミドである場合、これを異物応答性プラスミドという。また、前記異物応答性プラスミドのレポーター遺伝子がＳＥＡＰである場合、異物応答性プラスミドをｐＸＲＥ−ＳＥＡＰと表すことができる。異物応答性プラスミドの作製および細胞への導入は、例えばＷＯ２００５／１１３７６７、ＷＯ２００７／００４３６１、Kasaiらの論文（Kasai et al., Toxicol Appl Pharmacol. 2006; 211(1):11-19）に準じて行うことができる。

本発明のスクリーニング方法では、候補プロバイオティクスおよび／またはその培養上清によってＡｈＲ発現細胞を刺激し、ＸＲＥ配列の下流に存在するレポーター遺伝子の発現量を定量することで、ＡｈＲ活性化能を測定することができる。レポーター遺伝子の発現量が高ければ、ＡｈＲ活性化能が強いことが示唆される。したがって、スクリーニング方法としては、候補プロバイオティクスとＡｈＲ発現細胞とを共培養した後、レポーター遺伝子の発現量を計測し、同様に計測されたネガティブコントロールにおけるレポーター遺伝子の発現量と比較して有意に高い場合、ＡｈＲ活性化能を有すると判断することができる。

本明細書において、ＡｈＲ発現細胞を「刺激する」とは、典型的にはＡｈＲ発現細胞を候補プロバイオティクスおよび／またはその培養上清の存在下で一定時間インキュベートすることをいう。したがって候補プロバイオティクスが生菌である場合にＡｈＲ発現細胞と候補プロバイオティクスとを共培養する態様や、死菌体、分泌物、破砕物および／または培養上清などの存在下で一定時間インキュベートする態様を包含する。インキュベートする時間は候補プロバイオティクスや試験する細胞、ＡｈＲの発現量、レポーター遺伝子の種類などによって好ましい時間を適宜選択してよい。

以下に、本発明を実施例に基づいてさらに説明するが、かかる実施例は、本発明の例示であり、本発明を限定するものではない。

本実施例おいて、得られた値は全て平均値±標準偏差を表している。また、統計学的分析は、すべてunpaired Student's t検定を用いて行い、ｐ＜０．０５の場合を有意差ありと判断した。

例１．ＡｈＲ活性化能を有する乳酸菌のスクリーニング
（１）ＨｅＸＳ３４細胞の調製
ＨｅＸＳ３４細胞の調製は、既報（Kasai et al., Toxicol Appl Pharmacol. 2006; 211(1):11-19）に従って行った。簡潔には、２コピーのＸＲＥコンセンサス配列（tctcacgcaactccg）の下流にＳＥＡＰ遺伝子を導入した異物応答性プラスミドｐＸＲＥ−ＳＥＡＰを、Ｈｅｐａ−１ｃ１ｃ７細胞（ネズミヘパトーマ細胞株、American Type Culture Collection (Manassas,VA, USA)）に安定的に形質転換することにより、ＨｅＸＳ３４細胞を調製した。

（２）熱殺菌した乳酸菌による刺激
ＭＥＭα培地（Invitrogen, Carlsbad, CA）に１０％のウシ胎児血清（ＦＢＳ）を添加した培地で維持した、（１）で調製したＨｅＸＳ３４細胞を、９６ウェルプレートに、ウェル毎に５０００個／９０μｌで播種し、凍結乾燥した熱殺菌済み乳酸菌株１０μｌ（５×１０^９個／ｍｌ）の存在下および非存在下で２４時間培養した。ポジティブコントロールとして、５０ｐＭの２，３，７，８−テトラクロロジベンゾダイオキシン（ＴＣＤＤ）を用いた。また、ネガティブコントロールとして、乳酸菌またはＴＣＤＤを添加しないウェルを設けた。培養上清を、続くＳＥＡＰアッセイに供した。

（３）ＳＥＡＰアッセイ
（２）で得られた培養上清にGreat EscAPe SEAP Chemiluminescence kit（Clontech）を用いて、化学発光法によりＳＥＡＰを定量した。アッセイは３度行い、得られた発光強度（ＬＵ）をＳＥＡＰ活性とし、その平均値を求めた。

結果を図１に示す。Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus ＯＬＬ１１８１菌株を含む４７菌株において、ネガティブコントロールと比較して高いＳＥＡＰ活性が観察された。
なお、菌株名にＭＥＰと記載された菌株は株式会社明治保有菌株である。また、菌種名は下記の表の通りである。

例２．αＮＦによるＳＥＡＰ活性阻害
例１のスクリーニングによって、ＡｈＲ活性化能を有する候補菌株としてＯＬＬ１１８１菌株、ＡｈＲ活性化能を有さないネガティブコントロールとしてＭＥＰ２２２７０１菌株を選択し、さらなる実験に供した。例１と同様に、熱殺菌済みの前記２種の乳酸菌株懸濁液（５×１０^９個／ｍｌ溶液をそれぞれ５％ｖ／ｖおよび１０％ｖ／ｖで添加したのもの）で２４時間刺激し、培養上清をＳＥＡＰアッセイに供した。またＸＲＥ領域の活性化にＡｈＲが作用していることを明確に示すため、乳酸菌による刺激の前に、１０μＭのα−ナフトフラボン（αＮＦ、ＡｈＲのアンタゴニスト）で３０分間プレインキュベートしたＨｅＸＳ３４細胞とプレインキュベートしなかったＨｅｘＳ３４細胞を用いて、それぞれ１０％ｖ／ｖの熱殺菌済みＯＬＬ１１８１菌株懸濁液で２４時間刺激後、培養上清を例１．（３）と同様にＳＥＡＰアッセイに供した。

結果を図２に示す。Ａは、ＯＬＬ１１８１菌株とＭＥＰ２２２７０１菌株のＳＥＡＰ活性を比較したグラフであるが、ＯＬＬ１１８１菌株は、未処理区と比較して、乳酸菌株懸濁液の添加量が５％ｖ／ｖ（２．５×１０^８個／ｍｌｗｅｌｌ）、１０％ｖ／ｖ（５×１０^８個／ｍｌｗｅｌｌ）いずれも有意にＳＥＡＰ活性が上昇した。Ｂは、乳酸菌株懸濁液の添加量を１０％ｖ／ｖ（５×１０^８個／ｍｌｗｅｌｌ）とし、αＮＦでプレインキュベートしたものとしていないものを比較したグラフであるが、αＮＦでプレインキュベートしたものは、していないものと比較して、有意にＯＬＬ１１８１菌株刺激によるＳＥＡＰ活性の上昇を阻害した。この結果から、ＯＬＬ１１８１菌株刺激によるＳＥＡＰ活性の上昇は、ＡｈＲ活性化によってＸＲＥ配列が活性化されたことによるものと考えられた。

例３．Ｃａｃｏ２細胞を用いたＡｈＲ活性化能の検証
（１）Ｃａｃｏ２細胞の刺激
ヒト結腸癌由来の細胞であるＣａｃｏ２細胞を用いて、ＡｈＲ活性化能の検証を行った。ヒトＣａｃｏ２細胞を、１０％ＦＢＳおよび抗生物質を添加したＤＭＥＭ培地（Invitrogen/Gibco, arlsbad, CA）で培養し、一部を５μＭのαＮＦで３０分間プレインキュベートしたのち、プレインキュベートしたものとしていないもの両方について、１０％ｖ／ｖの熱殺菌済みＯＬＬ１１８１菌株懸濁液で４時間刺激した。

（２）定量的リアルタイムＰＣＲ
（１）で得られたＣａｃｏ２細胞を定量的リアルタイムＰＣＲに供した。定量的リアルタイムＰＣＲは、ABI 7300 real-time PCRシステム（Applied Biosystems, Foster City, CA）を用いて、取扱説明書に基づいて行った。プライマーおよびプローブは、ヒトのＣＹＰ１Ａ１用（Assay ID：Hs02382618_s1）およびグリセルアルデヒド−３−リン酸脱水素酵素（ＧＡＰＤＨ）用（Assay ID：Hs99999905_m1）のもの（Applied Biosystems）を用いた。ＧＡＰＤＨ遺伝子の発現量に対するＣＹＰ１Ａ１遺伝子の発現量を計算し、ＣＹＰ１Ａ１遺伝子の相対発現量として示した。

結果を図３に示す。ＯＬＬ１１８１菌株による刺激により、ＣＹＰ１Ａ１の発現が有意に増大し、かかる発現増大はαＮＦによって有意に抑制された。したがって、ヒト結腸細胞においてもＯＬＬ１１８１菌株によるＡｈＲ活性化が起こったことがわかる。

例４．in vivoにおけるＡｈＲ活性化
４〜６週齢のＣ５７ＢＬ／６マウス（雌、体重１４〜１８ｇ、日本ＳＬＣ社から購入）に、それぞれ２００μｌの熱殺菌済みＯＬＬ１１８１菌株懸濁液、熱殺菌済みＭＥＰ２２２７０１菌株懸濁液（５×１０^９個／ｍｌ）およびＰＢＳを胃ゾンデにより経口投与した。各菌株の投与用量は、１×１０^９個／ｂｏｄｙに相当する。投与４時間後に大腸を切除し、例３．（２）と同様に、マウスのＣＹＰ１Ａ１用（Assay ID：Mm00487218_m1）およびＧＡＰＤＨ用（Assay ID：Mm99999915_g1）プライマーおよびプローブを用いて、定量的リアルタイムＰＣＲでＣＹＰ１Ａ１の相対発現量を定量した。

結果を図４に示す。ＯＬＬ１１８１菌株の懸濁液を投与した群では、ＰＢＳ投与群と比較して、有意にＣＹＰ１Ａ１の発現量が増大していたが、ＭＥＰ２２２７０１菌株投与群では、ＰＢＳ投与群との有意な差は見られなかった。このことから、ＯＬＬ１１８１菌株の経口投与により、大腸においてＡｈＲ活性化がin vivoでも起こることが示された。

例５．in vitroおよびin vivoにおけるＣＯＸ２の発現誘導およびプロスタグランジンＥ２の産生誘導
（１）ＣＯＸ−２の発現誘導検証
ＯＬＬ１１８１菌株刺激によるＡｈＲ活性化によって、ＣＯＸ−２の発現が誘導され、それによってアラキドン酸からプロスタグランジンＥ２の産生が亢進することを検証するため、定量的リアルタイムＰＣＲのプライマーおよびプローブとして、ヒトおよびマウスのＣＯＸ−２（ヒト用Assay ID：Hs01573469_m1、マウス用Assay ID：Mm01307334_g1）およびＧＡＰＤＨ用のものを用いた以外は例３および例４と同様の方法で、ＣＯＸ−２のin vitroおよびin vivoでの発現を確認した。ＧＡＰＤＨ遺伝子の発現量に対するＣＯＸ−２遺伝子の発現量を計算し、ＣＯＸ−２遺伝子の相対発現量をとして示した。

（２）プロスタグランジンＥ２（ＰＧＥ２）ＥＬＩＳＡ
刺激用の乳酸菌として、ＯＬＬ１１８１およびＭＥＰ２２２７０１に加えて、例１のスクリーニングで高いＡｈＲ活性を示したＭＥＰ２２２７６１も用い、刺激時間を２４時間とした以外は例３（１）と同様にヒトＣａｃｏ２細胞を刺激し、培養上清中に分泌されたＰＧＥ２の量を、PGE2 Competitive ELISA kit（Thermo Scientific inc., Watham, MA）を用いて、取扱説明書にしたがって定量した。

結果を図５に示す。ＡはヒトＣａｃｏ２細胞におけるin vitroでのＣＯＸ−２の相対発現量を、Ｂはマウス大腸におけるin vivoでのＣＯＸ−２の相対発現量を、ＣはヒトＣａｃｏ２細胞におけるＰＧＥ２産生量をそれぞれ表す。ヒトin vitroにおいてもマウスin vivoにおいても、ＯＬＬ１１８１菌株刺激によって、ネガティブコントロールと比較して有意にＣＯＸ−２の発現が増大していることが確認された。さらにヒトＣａｃｏ２細胞においては、ＯＬＬ１１８１菌株刺激によってＰＧＥ２の産生が確認された。かかるＰＧＥ２産生はαＮＦによって阻害されたことから、ＡｈＲ活性化に由来したＰＧＥ２産生であることが確認された。

例６．ＯＬＬ１１８１菌株によるＡｈＲ活性化は、ＤＳＳ誘導腸炎を緩和する
腸炎の誘導のため、４〜６週齢のＣ５７ＢＬ／６マウス（雌、体重１４〜１８ｇ、日本ＳＬＣ社から購入）に７日間、飲用蒸留水に溶解した３％デキストラン硫酸ナトリウム（ＤＳＳ、分子量５０００、和光純薬工業株式会社より購入）を毎日自由摂取させ、その後ＤＳＳの入っていない蒸留水を３日間自由摂取させた。菌株による緩和効果を検証するため、熱殺菌したＯＬＬ１１８１菌株、ＭＥＰ２２２７０１菌株およびＭＥＰ２２２７６１菌株を７日間毎日２００μｌ（５×１０^９個／ｍｌ）、胃ゾンデにより経口投与した。各菌株の投与用量は、１×１０^９個／ｂｏｄｙに相当する。コントロールとして、菌液に代えてＰＢＳを２００μｌ、７日間毎日経口投与した。また、ＤＳＳを投与しない大腸炎非誘発群にもＰＢＳを２００μｌ、７日間毎日経口投与した。実験は各群ｎ＝１０〜１２で行い、ＤＳＳの投与開始から１１日目に大腸を切除し、大腸の長さを計測し、例３．（２）と同様に、マウスＴＮＦ−α用（Assay ID：Mm00443258_m1）およびマウスミエロペルオキシダーゼ（ＭＰＯ）（Assay ID：Mm00447886_m1）用のプライマーおよびプローブを用いて、ＴＮＦ−αおよびＭＰＯの発現量を定量的リアルタイムＰＣＲで定量した。

結果を図６に示す。Ａは１１日目までの各群の生存率を表したグラフである。ＤＳＳで大腸炎を誘導した群の中で、ＰＢＳを投与したコントロール群（ＤＳＳ）およびＭＥＰ２２２７０１菌株投与群（ＭＥＰ２２２７０１）では、１１日目の生存率は２０％程度であったが、ＭＥＰ２２２７６１菌株投与群（ＭＥＰ２２２７６１）では約４０％の生存率であり（データは示さない）、ＯＬＬ１１８１菌株投与群（ＯＬＬ１１８１）では約８０％の生存率であった。ＤＳＳを投与せずＰＢＳを投与した大腸炎非誘発群（ＰＢＳ）では、死亡したマウスはいなかった。

ＢはＤＳＳ大腸炎誘発群（ＤＳＳ）、ＤＳＳ大腸炎非誘発群（ＰＢＳ）およびＤＳＳ大腸炎誘発＋ＯＬＬ１１８１菌株投与群（ＯＬＬ１１８１）の体重の変化を表す。ＤＳＳ大腸炎誘発群（ＤＳＳ）は体重が減少する傾向にあったが、ＯＬＬ１１８１菌株投与群では、８日目から大腸炎誘発群（ＤＳＳ）と比較して平均体重が上回り、１０日目以降には若干の体重増加が確認された。
Ｃは１１日目におけるＤＳＳ大腸炎誘発群（ＤＳＳ）、ＤＳＳ大腸炎非誘発群（ＰＢＳ）およびＤＳＳ大腸炎誘発＋ＯＬＬ１１８１菌株投与群（ＯＬＬ１１８１）の大腸の長さを表す。ＤＳＳ大腸炎誘発群（ＤＳＳ）と比較して、ＯＬＬ１１８１菌株投与群は有意に大腸が長かった。

Ｄは１１日目におけるＤＳＳ大腸炎誘発群（ＤＳＳ）、ＤＳＳ大腸炎非誘発群（ＰＢＳ）およびＤＳＳ大腸炎誘発＋ＯＬＬ１１８１菌株投与群（ＤＳＳ＋ＯＬＬ１１８１）の、大腸でのＴＮＦ−αおよびＭＰＯの発現量を表す。ＴＮＦ−αはＰＧＥ２によって発現抑制されることが知られており、ＭＰＯは炎症マーカーとして知られている。どちらの発現も、ＤＳＳ大腸炎誘発群（ＤＳＳ）と比較して、ＯＬＬ１１８１菌株投与群（ＤＳＳ＋ＯＬＬ１１８１）において有意に抑制されていた。

例７．発酵乳製品（プレーンヨーグルト）の製造
牛乳と乳製品と水を最終製品の無脂乳固形分が９．５％、乳脂肪分が３．０％となるように混合して、ヨーグルトベースミックスを調製した。次に、調製したヨーグルトベースミックスを均質化後、９５℃、５分間加熱殺菌し、その後、約４０℃まで冷却した。
前述のヨーグルトベースミックスに、「明治ブルガリアヨーグルト」より単離したラクトバチルス・ブルガリカス（Lactobacillus bulgaricus ＯＬＬ２０３８）とストレプトコッカス・サーモフィルス（Streptococcus thermophilus ＯＬＬ１１３１）の混合スターターを接種して、発酵させヨーグルトを製造した（対照品Ａ）。また、混合スターターのLactobacillus bulgaricus ＯＬＬ２０３８の代わりにLactobacillus bulgaricus ＯＬＬ１１８１菌株を使用すること以外は、対照品と同様の方法でヨーグルトを製造した（発明品Ａ）。

後述のとおりに物性値を測定した結果、ＯＬＬ１１８１菌株にて製造して得られたヨーグルト（発明品Ａ）は、対照品のヨーグルト（対照品Ａ）に比べて、同等以上の好ましい風味と物性を持っていることが示された。

例８．発酵乳製品（ドリンクヨーグルト）の製造
牛乳と乳製品と水を最終製品の無脂乳固形分が８．０％、乳脂肪分が０．５％となるように混合して、ドリンクヨーグルト用ベースミックスを調製し、均質化後、これを９５℃、１０分間で加熱殺菌した後に約４０℃に冷却した。このドリンクヨーグルト用ベースミックスに例８と同様のヨーグルトスターター（「明治ブルガリアヨーグルト」より単離したラクトバチルス・ブルガリカス（Lactobacillus bulgaricus ＯＬＬ２０３８）とストレプトコッカス・サーモフィルス（Streptococcus thermophilus ＯＬＬ１１３１）の混合スターター）を接種し、発酵させ、ドリンクヨーグルト用発酵乳を調製した。この得られたドリンクヨーグルト用発酵乳について、均質化して、ドリンクヨーグルト用液状発酵乳を得た。このドリンクヨーグルト用液状発酵乳と殺菌した糖液を質量比で６：４にて混合して、ドリンクヨーグルトを製造した（対照品Ｂ）。また、混合スターターのLactobacillus bulgaricus ＯＬＬ２０３８の代わりにLactobacillus bulgaricus ＯＬＬ１１８１菌株を使用すること以外は、対照品と同様の方法でドリンクヨーグルトを製造した（発明品Ｂ）。

後述のとおりに物性値を測定した結果、ＯＬＬ１１８１菌株にて製造して得られたドリンクヨーグルト（発明品Ｂ）は、対照のドリンクヨーグルト（対照品Ｂ）に比べて、同等以上の好ましい風味と物性を持っていることが示された。

物性の測定方法
ｐＨは、５℃にてガラス電極のｐＨメーター（ＨＭ３０−Ｒ，ＤＫＫ−ＴＯＡ製）を用いて測定した。
乳酸酸度は、０．１規定ＮａＯＨを用い、フェノールフタレインを指示薬として滴定し、算出した。
ヨーグルトのカードテンションは、カードメーターＭＡＸＭＥ５００（飛鳥機器）を使用し、試料にスプリングを介して１００ｇの重りによる定速荷重を加え、変形により生ずる歪みをロードセルを用いて計測し、破断に至るまでの弾力性を硬度（ｇ）とした。
粘度は品温５℃にてモデルＲＢ２００、コントローラーＲＣ−１００（東機産業）を使用し、Ｎｏ．１ローターを用い６０ｒｐｍ、３０秒間の条件で測定した。
風味は、５名の専門パネラーにより、良好、適、不良の３段階で判定した。

本発明のプロバイオティクスによれば、腸内環境に作用して、炎症性の消化管疾患を緩和することが可能となり、今まで難治性であり、薬剤による対症療法しかできなかった炎症性消化管疾患を根本的に治療可能となる。さらに、本発明のプロバイオティクスは生体毒性を有さないため、医薬組成物や食品組成物に含有させることによって、簡便にかつ効果的に摂取することが可能となる。

Claims

芳香族炭化水素レセプター（ＡｈＲ）活性化能を有する菌であって、前記菌がLactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus、Lactococcus lactis subsp. lactis、Streptococcus thermophilus、Lactococcus lactis subsp. cremorisからなる群から選択される、前記菌。
Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus ＯＬＬ１１８１菌株（受託番号：ＦＥＲＭＢＰ−１１２６９）。
請求項１または２に記載の菌を含む、経口摂取用組成物。
飲食品、飼料および医薬からなる群から選択される、請求項３に記載の経口摂取用組成物。
医薬が、抗炎症剤である、請求項４に記載の経口摂取用組成物。
候補菌を培養する工程と、異物応答配列（ＸＲＥ）およびその下流のレポーター遺伝子領域を含む発現ユニットを有するＡｈＲ発現細胞を、候補菌および／またはその培養上清で刺激する工程とを含む、候補菌が乳酸菌、ビフィズス菌、プロピオン酸菌、バクテロイデス、ユウバクテリウム、嫌気性レンサ球菌、腸球菌および大腸菌からなる群から選択される、ＡｈＲ活性化能を有する菌をスクリーニングする方法。
微生物を培養する工程と、異物応答配列（ＸＲＥ）およびその下流のレポーター遺伝子領域を含む発現ユニットを有するＡｈＲ発現細胞を、微生物および／またはその培養上清で刺激する工程とを含む、微生物のＡｈＲ活性化能を測定する方法。