JP5907732B2 - 比に基づく生体マーカーおよびそれを使用する方法 - Google Patents
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Description
この出願は、2009年1月14日に出願された米国仮出願第61/144,501号(この仮出願の全内容は、その全体が援用される)の利益を主張する。
本開示は、被験体における疾患(例えば、癌)の検出、進行、および予後についての、比に基づく(ratio−based)生体マーカーの同定に関する。疾患もしくは症状の病因、または疾患もしくは症状と関係があるリスクの決定のための同様の方法もまた提供される。本開示はまた、被験体について、生存確率および予後を予測する方法、ならびに、患者の治療レジュメを階層化する方法にも関する。
腫瘍は、それらの相当の異質性と組織病理学的多様性を特徴とする。現在、250種を上回る悪性腫瘍と、何千ものサブタイプおよび組織学的変異体が、ヒトについて記載されている。それにもかかわらず、昔からの病理学的基準(例えば、腫瘍の大きさ、悪性度、および転移性播種)が、一般的に、癌の最も関連性のある予後因子である。組織病理学的サブタイプの多様性に加えて、腫瘍の分子的研究は、なおさらに複雑である。悪性腫瘍においては、少なくとも6つの遺伝子変化が、細胞形質転換の主要な機構に影響を及ぼすと考えられる。これには、成長因子および細胞シグナル伝達経路、細胞周期、アポトーシス、ならびに、細胞侵襲性および血管形成に関与している機構が含まれる(非特許文献1)。全体として、350を上回る、腫瘍と関係がある遺伝子が同定されており、これは、ヒトゲノムの1%を上回る割合を占める(非特許文献2)。
本開示の態様は、疾患または症状について予後を決定するための組成物、方法、および装置に関し、これらは、上記疾患または症状を持つ(あるいは、上記疾患もしくは症状を有すると疑われるか、または上記疾患もしくは症状になりやすい)被験体由来の試料中で、その発現(または発現がないこと)が上記疾患または症状と関係がある少なくとも2種類のタンパク質を同定すること;上記試料中の少なくとも2種類の疾患/症状関連タンパク質を定量化すること;個々の関連タンパク質を正規化すること;生体マーカーの指標を得るために、第1の疾患/症状関連タンパク質の正規化した値を、第2の疾患/症状関連タンパク質の正規化した値と比較すること、ならびに;上記生体マーカーの指標を被験体の予後と相関させることによる。この実施形態の1つの特異的な例は、癌(例えば、固形腫瘍、癌腫、または他のクラスの腫瘍)を持つ被験体の癌の予後(例えば、生存確率)を決定するための、組成物、方法、および装置を提供し、これらは、被験体由来の試料中で、少なくとも2種類の癌関連タンパク質を同定すること;試料中の少なくとも2種類の癌関連タンパク質を定量化すること;それぞれの癌関連タンパク質を正規化すること;生体マーカーの指標を得るために、第1の癌関連タンパク質の正規化した値を、第2の癌関連タンパク質の正規化した値と比較すること、ならびに;生体マーカーの指標を、被験体の生存確率と相関させることによる。
本発明の好ましい実施形態では、例えば以下が提供される:
(項目1)
癌を有する被験体について癌の予後を決定する方法であって:
i)前記被験体由来の試料中の少なくとも2種類の癌関連タンパク質を同定する工程;
ii)前記試料中の前記少なくとも2種類の癌関連タンパク質を定量化する工程;
iii)前記試料中の各癌関連タンパク質について正規化した値を得るために、前記試料中の前記少なくとも2種類の癌関連タンパク質を正規化する工程;
iv)生体マーカーの指標を得るために、第1の癌関連タンパク質の正規化した値を第2の癌関連タンパク質の正規化した値と比較する工程;および、
v)前記生体マーカーの指標を、癌を有する前記被験体の予後と相関させる工程
を含む、方法。
(項目2)
前記被験体がヒトである、項目1に記載の方法。
(項目3)
前記被験体がヒト以外の哺乳動物である、項目1に記載の方法。
(項目4)
前記癌が固形腫瘍である、項目1に記載の方法。
(項目5)
前記癌が以下からなる群より選択される、項目1に記載の方法:副腎腫瘍、胆管癌、膀胱癌、骨の癌、脳腫瘍、乳癌、心臓肉腫、子宮頸癌、結腸直腸癌、子宮内膜癌、食道癌、胚細胞癌、婦人科学的な癌、頭頸部癌、肝芽腫、腎臓癌、咽頭癌、白血病、肝臓癌、肺癌、リンパ腫、黒色腫、多発性骨髄腫、神経芽細胞腫、口腔癌、卵巣癌、膵臓癌、副甲状腺癌、下垂体腫瘍、前立腺癌、網膜芽細胞腫、横紋筋肉腫、皮膚癌(非黒色腫)、胃(消化器)癌、精巣癌、甲状腺癌、子宮癌、膣癌、外陰癌、およびウィルムス腫瘍。
(項目6)
前記固形腫瘍が癌腫である、項目4に記載の方法。
(項目7)
前記癌腫が、乳房、肺、前立腺、結腸、肝臓、甲状腺、腎臓、および胆管の癌腫からなる群より選択される、項目6に記載の方法。
(項目8)
前記癌が、白血病、多発性骨髄腫、またはリンパ腫である、項目1に記載の方法。
(項目9)
前記癌腫が肝外胆管癌(EHCC)である、項目6に記載の方法。
(項目10)
前記2種類の癌関連タンパク質のうちの少なくとも1種類が、以下からなる群より選択される腫瘍抗原を含む、項目1に記載の方法:AKT;p−AKT;血液型Tn抗原、CA150;CA19−9;CA50;CAB39L;CD22;CD24;CD63;CD66a+CD66c+CD66d+CD66e;CTAG1B;CTAG2;癌胎児性抗原(CEA);EBAG9;EGFR;FLJ14868;FMNL1;GAGE1;GPA33;ガングリオシドOAcGD3;ヘパラナーゼ1;HER2;HER3;JAKMIP2;LRIG3;肺癌クラスター2;M2A腫瘍胎児抗原、MAGE1;MAGEA10;MAGEA11;MAGEA12;MAGEA2;MAGEA4;MAGEB1;MAGEB2;MAGEB3;MAGEB4;MAGEB6;MAGEC1;MAGEE1;MAGEH1;MAGEL2;MGEA5;MOKプロテインキナーゼ;MAPK;p−MAPK;mTOR;p−mTOR;MUC16;MUC4;黒色腫関連抗原;メソテリン;ムチン5AC;神経芽細胞腫;OCIAD1;OIP5;卵巣癌関連抗原;PAGE4;PCNA;PRAME;プラスチンL;前立腺ムチン抗原(PMA);前立腺特異抗原(PSA);PTEN;RASD2;ROPN1;SART2;SART3;SBEM;SDCCAG10;SDCCAG8;SPANX;SPANXB1;SSX5;STEAP4;STK31;TAG72;TEM1;XAGE2;ウィルムス腫瘍タンパク質、α1−フェトプロテイン;および上皮起源の腫瘍抗原。
(項目11)
前記2種類の癌関連タンパク質のうちの少なくとも1種類が、以下からなる群より選択される腫瘍関連抗原を含む、項目1に記載の方法:5T4;AKT;p−AKT;ACRBP;血液型Tn抗原;CD164;CD20;CTHRC1;ErbB2;FATE1;HER2;HER3;GPNMB;ガレクチン8;HORMAD1;LYK5;MAGEA6;MAGEA8;MAGEA9;MAGEB18;MAGED2;MAPK;p−MAPK;mTOR;p−mTOR;MUC1;MUC2;MelanA;黒色腫gp100;NYS48;PARP9;PATE;プロステイン;PTEN;SDCCAG8;SEPT1;SLC45A2;TBC1D2;TRP1;XAGE1;および上皮由来の腫瘍関連抗原。
(項目12)
前記2種類の癌関連タンパク質のうちの少なくとも1種類が、AKTシグナル伝達経路のタンパク質である、項目1に記載の方法。
(項目13)
少なくとも1種類の前記AKTシグナル伝達経路のタンパク質が、4E−BP1、eIF−4E、AKT、Erk1/2、Hsp27、Hsp90、Tcl1、Grb10、Ft1、Jip1、Posh、mTOR、ペリオスチン、およびPTENからなる群より選択される、項目12に記載の方法。
(項目14)
前記2種類の癌関連タンパク質のうちの少なくとも1種類が、EGFシグナル伝達経路のタンパク質である、項目1に記載の方法。
(項目15)
前記少なくとも1種類のEGFシグナル伝達経路のタンパク質が、以下からなる群より選択される、項目14に記載の方法:EGF、EGFR、HER2、HER3、β−カテニン、グリコプロテイン130、PLCG1、Erbin、MUC1、Grb2、熱ショックタンパク質90kDa α(細胞質性)、メンバーA1、DLG4、PIK3R2、PICK1、およびSHC1。
(項目16)
前記2種類の癌関連タンパク質のうちの少なくとも1種類が、リン酸化されたAKTシグナル伝達経路のタンパク質である、項目12に記載の方法。
(項目17)
少なくとも1種類の前記リン酸化されたAKTシグナル伝達経路のタンパク質が、以下からなる群より選択される、項目16に記載の方法:リン酸化された4e−BP1(p−4E−BP1)、リン酸化されたeIF−4E(p−eIF−4E)、リン酸化されたAKT(pAKT)、およびリン酸化されたmTOR(p−mTOR)。
(項目18)
定量化する工程が:
a)前記癌関連タンパク質を組織切片からメンブレンを積み重ねたものに移動させること;
b)前記メンブレンを積み重ねたものを、前記メンブレン上の個々のエピトープの検出のための一次抗体でプローブすること;
c)蛍光二次抗体を用いて、前記メンブレン上の個々のエピトープに結合した前記一次抗体を検出すること;および、
d)前記蛍光二次抗体の強度を定量化すること
を含む、項目1に記載の方法。
(項目19)
定量化する工程が、免疫組織化学、レーザー・キャプチャー・マイクロダイセクション、「一次元」電気泳動ゲル、「二次元」電気泳動ゲル、質量分析法、組織マイクロアレイ、マルチ組織免疫ブロッティング、またはこれらの2つ以上の組み合わせを含む、項目1に記載の方法。
(項目20)
前記生体マーカーの指標が、前記第2の癌関連タンパク質の正規化した値で割った前記第1の癌関連タンパク質の正規化した値の比を含む、項目1に記載の方法。
(項目21)
前記試料が、血液、血清、尿、または他の流体である生物学的試料を含む、項目1に記載の方法。
(項目22)
前記試料が組織試料である、項目1に記載の方法。
(項目23)
前記組織試料が、保管組織試料、凍結保存された組織試料、新鮮な組織試料、LCM組織試料、または組織マイクロアレイからなる群より選択される、項目22に記載の方法。
(項目24)
少なくとも2種類の癌関連タンパク質を含む生存に基づく癌の生体マーカーの指標であって、ここでは、前記少なくとも2種類の癌関連タンパク質は、前記癌と関係がある細胞のシグナル伝達経路に由来する2種類のタンパク質であり、前記少なくとも2種類の癌関連タンパク質が、前記生存に基づく癌の生体マーカーの指標を得るために、(i)試料中の第1の癌関連タンパク質の含有量を計算すること;(ii)前記試料中の第2の癌関連タンパク質の含有量を計算すること;(iii)前記試料中の全細胞性タンパク質の含有量により、前記第1の癌関連タンパク質の含有量を正規化すること;および(iv)前記生存に基づく癌の生体マーカーの指標を得るために、前記試料中の全細胞性タンパク質の含有量により、前記第2の癌関連タンパク質の含有量を正規化することにより、使用される、生存に基づく癌の生体マーカーの指標。
(項目25)
前記生体マーカーの指標が、癌の相対的生存率を得るために使用される、項目25に記載の生体マーカーの指標。
(項目26)
固形腫瘍を有する被験体について、相対的な癌の予後または相対的生存率を決定する方法であって、:
(a)生体マーカーの指標を得る工程であって、前記生体マーカーの指標は、以下の工程を含む方法により得られる、工程:
(i)前記被験体から前記固形腫瘍試料を得る工程;
(ii)前記固形腫瘍試料から第1の癌関連タンパク質を抽出して、前記第1の癌関連タンパク質を含む画分を得る工程;
(iii)前記画分中の前記第1の癌関連タンパク質の含有量を計算する工程;
(iv)前記試料中の全細胞性タンパク質の含有量に対して、前記第1の癌関連タンパク質の含有量を正規化する工程;
(v)前記固形腫瘍試料から第2の癌関連タンパク質を抽出する工程;
(vi)前記画分中の前記第2の癌関連タンパク質の含有量を計算する工程;
(vii)前記試料中の全細胞性タンパク質の含有量に対して、前記第2の癌関連タンパク質の含有量を正規化する工程;および
(viii)生体マーカーの指標を得るために、正規化した前記第1の癌関連タンパク質の含有量を、正規化した前記第2の癌関連タンパク質の含有量に対して相関させる工程;ならびに、
(b)前記生体マーカーの指標を、予後または相対的生存率と比較し、それにより、前記固形腫瘍を有する前記被験体について予後または癌の相対的生存率を決定する工程、
を含む、方法。
(項目27)
被験体において癌を検出するための方法であって:
(a)前記被験体由来の生物学的試料から第1の癌関連タンパク質および第2の癌関連タンパク質のレベルを決定する工程;
(b)前記生物学的試料由来の全細胞性タンパク質の含有量に対して、前記第1の癌関連タンパク質および前記第2の癌関連タンパク質の含有量を正規化する工程;ならびに、
(c)前記第1の癌関連タンパク質および前記第2の癌関連タンパク質の正規化したレベルを、正常な対照試料中で測定した、細胞、組織、または体液中の前記第1の癌関連タンパク質および前記第2の癌関連タンパク質のレベルと比較する工程であって、ここでは、正常な対照被験体中で測定した前記第1の癌関連タンパク質および前記第2の癌関連タンパク質のレベルに対する、前記被験体中の前記第1の癌関連タンパク質および前記第2の癌関連タンパク質の正規化したレベルの変化が、前記被験体における癌の存在と関係がある、工程
を含む、方法。
(項目28)
被験体において癌の存在を検出するための方法であって:
(a)前記被験体由来の試料中のp−AKTまたはp−mTORの発現のレベルを計算する工程;
(b)前記試料中のp−AKTまたはp−mTORの発現のレベルを、前記試料についての全細胞性タンパク質の含有量に対して正規化する工程;および
(c)対照の非癌性試料中のp−AKTまたはp−mTORの発現の正規化した発現のレベルを比較する工程であって、ここで、正常な非癌性試料と比較した、前記被験体の試料中のp−AKTまたはp−mTORの発現のレベルにおける統計学的に有意な低下が、前記被験体における癌の存在の指標である、工程
を含む、方法。
(項目29)
腫瘍を有する被験体について、癌の相対的生存率を予測するための方法であって:
前記腫瘍中の腫瘍抗原に特異的な抗体の存在を検出する工程であって、ここで、前記腫瘍抗原は、p−AKTまたはpm−TOR、およびPTENを含む、工程;
正常な非癌性試料と比較して、前記腫瘍中の前記腫瘍抗原に対する抗体の発現レベルを正規化する工程、ならびに、
前記非癌性試料と比較した前記腫瘍抗原に対する抗体の低下した発現レベルを、前記腫瘍を有する前記被験体におけるより低い相対的生存率と相関させる工程
を含む、方法。
(項目30)
被験体において癌の存在を検出するための方法であって:
前記被験体由来の生物学的試料中で第1の癌関連タンパク質を検出する工程であって、ここで、前記第1の癌関連タンパク質は、PTEN、p−AKT、p−mTOR、p−MAPK、EGFR、HER2、HER3、またはこれらの2種類以上の組み合わせを含む、工程;
前記第1の癌関連タンパク質についてタンパク質発現レベルを計算する工程;および、
前記生物学的試料中で検出した前記第1の癌関連タンパク質についてのタンパク質発現レベルを、所定の統計学的に有意なカットオフ値に対して比較する工程であって、ここでは、非癌性試料に対して比較した前記生物学的試料中の前記第1の癌関連タンパク質のタンパク質発現レベルの変化が、前記被験体における癌の存在を示す、工程
を含む、方法。
(項目31)
試料中の癌関連タンパク質を検出するためのメンブレンアレイであって、前記アレイは複数のメンブレンを含み、ここでは、前記複数のメンブレンの各々が1種類以上の癌関連タンパク質に対する親和性を有する、メンブレンアレイ;および
前記メンブレンのうちの少なくとも1つの上に捕捉された前記癌関連タンパク質を検出するための検出体分子の容器
を含有するキットであって、ここでは、前記癌関連タンパク質が、固形腫瘍、白血病、多発性骨髄腫、またはリンパ腫からなる癌と関係があるタンパク質の群より選択される、キット。
(項目32)
前記癌関連タンパク質が、副腎腫瘍、胆管癌、膀胱癌、骨の癌、脳腫瘍、乳癌、心臓肉腫、子宮頸癌、結腸直腸癌、子宮内膜癌、食道癌、胚細胞癌、婦人科学的な癌、頭頸部癌、肝芽腫、腎臓癌、咽頭癌、白血病、肝臓癌、肺癌、リンパ腫、黒色腫、多発性骨髄腫、神経芽細胞腫、口腔癌、卵巣癌、膵臓癌、副甲状腺癌、下垂体腫瘍、前立腺癌、網膜芽細胞腫、横紋筋肉腫、皮膚癌(非黒色腫)、胃(消化器)癌、精巣癌、甲状腺癌、子宮癌、膣癌、外陰癌、およびウィルムス腫瘍からなる癌の群より選択される、項目31に記載のキット。
(項目33)
前記固形腫瘍が癌腫である、項目31に記載のキット。
(項目34)
前記癌腫がEHCCである、項目33に記載のキット。
(項目35)
前記癌腫が、乳房、肺、前立腺、結腸、肝臓、胃、甲状腺、腎臓および胆管の癌腫からなる群より選択される、項目33に記載のキット。
(項目36)
前記検出体分子が、前記癌関連タンパク質の検出に特異的な抗体またはプローブを含み、前記抗体またはプローブが、以下からなる群より選択される、項目3に記載のキット:AKT;p−AKT;血液型Tn抗原、CA150;CA19−9;CA50;CAB39L;CD22;CD24;CD63;CD66a+CD66c+CD66d+CD66e;CTAG1B;CTAG2;癌胎児性抗原(CEA);EBAG9;EGFR;FLJ14868;FMNL1;GAGE1;GPA33;ガングリオシドOAcGD3;ヘパラナーゼ1;HER2;HER3;JAKMIP2;LRIG3;肺癌クラスター2;M2A腫瘍胎児抗原、MAGE1;MAGEA10;MAGEA11;MAGEA12;MAGEA2;MAGEA4;MAGEB1;MAGEB2;MAGEB3;MAGEB4;MAGEB6;MAGEC1;MAGEE1;MAGEH1;MAGEL2;MGEA5;MOKプロテインキナーゼ;MAPK;p−MAPK;mTOR;p−mTOR;MUC16;MUC4;黒色腫関連抗原;メソテリン;ムチン5AC;神経芽細胞腫;OCIAD1;OIP5;卵巣癌関連抗原;PAGE4;PCNA;PRAME;プラスチンL;前立腺ムチン抗原(PMA);前立腺特異抗原(PSA);PTEN;RASD2;ROPN1;SART2;SART3;SBEM;SDCCAG10;SDCCAG8;SPANX;SPANXB1;SSX5;STEAP4;STK31;TAG72;TEM1;XAGE2;ウィルムス腫瘍タンパク質、α1−フェトプロテイン、および上皮起源の腫瘍抗原。
(項目37)
前記検出体分子が、前記癌関連タンパク質の検出に特異的な抗体またはプローブを含み、前記抗体またはプローブが、以下からなる群より選択される、項目31に記載のキット:5T4;AKT;p−AKT;ACRBP;血液型Tn抗原;CD164;CD20;CTHRC1;ErbB2;FATE1;HER2;HER3;GPNMB;ガレクチン8;HORMAD1;LYK5;MAGEA6;MAGEA8;MAGEA9;MAGEB18;MAGED2;MAPK;p−MAPK;mTOR;p−mTOR;MUC1;MUC2;MelanA;黒色腫gp100;NYS48;PARP9;PATE;プロステイン;PTEN;SDCCAG8;SEPT1;SLC45A2;TBC1D2;TRP1;XAGE1;および上皮由来の腫瘍関連抗原。
(項目38)
前記検出体分子が、AKTシグナル伝達経路のタンパク質を含む癌関連タンパク質の検出のための抗体またはプローブを含む、項目31に記載のキット。
(項目39)
前記AKTシグナル伝達経路のタンパク質が、4E−BP1、eIF−4E、AKT、Erk1/2、Hsp27、Hsp90、Tcl1、Grb10、Ft1、Jip1、Posh、mTOR、ペリオスチン、およびPTENからなる群より選択される、項目38に記載のキット。
(項目40)
前記AKTシグナル伝達経路のタンパク質が、リン酸化されたAKTシグナル伝達経路のタンパク質を含む、項目38に記載のキット。
(項目41)
前記リン酸化されたAKTシグナル伝達経路のタンパク質が、リン酸化された4E−BP1(p−4E−BP1)、リン酸化されたeIF−4E(p−eIF−4E)、リン酸化されたAKT(pAKT)、およびリン酸化されたmTOR(p−mTOR)からなる群より選択される、項目40に記載のキット。
(項目42)
疾患を有する被験体について、生存確率を決定する方法であって:
i)前記被験体由来の試料中で少なくとも2種類の疾患関連タンパク質を同定する工程;
ii)前記試料中の前記少なくとも2種類の疾患関連タンパク質を定量化する工程;
iii)前記試料中の各癌関連タンパク質について正規化した値を得るために、前記試料中の前記少なくとも2種類の疾患関連タンパク質を正規化する工程;
iv)生体マーカーの指標を得るために、第1の疾患関連タンパク質の正規化した値を、第2の疾患関連タンパク質の正規化した値と比較する工程;および
v)前記生体マーカーの指標を、前記疾患を有する前記被験体の生存確率と相関させる工程
を含む、方法。
(I.省略形)
eIF4E:真核生物翻訳開始因子4E
AKT:プロテインキナーゼB
BIRC5:サバイビン(survivin)タンパク質
CEA:癌胎児性抗原
CK:pan−サイトケラチン
COX2:シクロオキシゲナーゼ−2
EGFR:上皮成長因子受容体
EHCC:肝外胆管癌
FFPE:ホルマリンで固定し、パラフィンに包埋した
HER:ヒト上皮成長因子受容体
HSP:熱ショックタンパク質
IC:免疫組織化学
LCM:レーザー・キャプチャー・マイクロダイセクション
MAPK:分裂促進因子活性化プロテインキナーゼ
MTI:マルチ組織免疫ブロッティング
mTOR:哺乳類ラパマイシン標的
mTORC:哺乳類ラパマイシン標的複合体
p−AKT:リン酸化されたAKT
p−EGFR:リン酸化されたEGFR
PI3K:ホスファチジルイノシトール3キナーゼ
pMAPK:リン酸化された分裂促進因子活性化プロテインキナーゼ
p−mTOR:リン酸化されたmTOR
PSA:前立腺特異抗原
PTEN:第10染色体上欠失ホスファターゼ・テンシン・ホモログ(phosphatase and tensin homolog deleted on chromosome 10)
S6:リボソームプロテインキナーゼS6
TG2:トランスグルタミナーゼ2
TMA:組織マイクロアレイ(単数または複数) 。
特に明記されない限りは、技術用語は、従来の使用法にしたがって使用される。分子生物学における一般的な用語の定義は、Benjamin Lewin,Genes V,Oxford University Press出版,1994(ISBN 0−19−854287−9);Kendrewら(編)、The Encyclopedia of Molecular Biology,Blackwell Science Ltd.出版,1994(ISBN 0−632−02182−9);およびRobert A.Meyers(編)、Molecular Biology and Biotechnology:a Comprehensive Desk Reference,VCH Publishers,Inc.出版,1995(ISBN 1−56081−569−8)の中に見ることができる。
一般的には、本明細書中に開示される方法には、少なくとも1種類の癌関連タンパク質の検出が必要である。他の実施形態においては、本明細書中に開示される方法には、少なくとも2種類、3種類、4種類、5種類、またはそれ以上の癌関連タンパク質の検出が必要である。特定の実施形態においては、癌関連タンパク質には、細胞シグナル伝達経路または成長因子経路のタンパク質、あるいは、別の癌に関連する分子(例えば、サイトケラチン、サイトケラチン(cytoskelatin)に関係があるタンパク質、または別のタンパク質の局在化に関係があるタンパク質(例えば、アダプターなど)が含まれ、これらも同様に、癌において有用性がある。いくつかの実施形態においては、これらの方法には、生物学的試料(例えば、組織切片または生検)中の少なくとも1種類の癌関連タンパク質の存在を検出する工程が含まれる。いくつかの実施形態においては、試料中の少なくとも1種類の癌関連タンパク質の存在の同定が、特定の治療レジュメが癌を有する被験体の相対的生存率を高める(およびより一般的には、予後を改善する)ための手段として優れているかどうかを決定する。
癌関連タンパク質が、癌と関係していることが知られているタンパク質であるか、あるいは癌の特定のタイプもしくは形態と関係があることを(当該分野で知られているかまたは日常的に行われている方法により)決定することができるタンパク質であることが、本開示において意図される。例えば、卵巣組織試料中でのCA 125の高い発現レベル(アップレギュレーション)は、通常は、卵巣癌を発症する増大したリスクと関係がある。「癌特異的マーカー」または「組織特異的マーカー」は、多くの場合、癌の特定の形態、または癌の位置と関係があり、したがって、本明細書中で定義されるような癌関連タンパク質と見なされることは、当業者に明らかであろう。さらに、用語「腫瘍抗原」は、当該分野で公知であるように、正常な非癌性の細胞によっては通常は産生されない(したがって、関係がない)、腫瘍細胞により産生される物質(例えば、タンパク質)をいう。より離れた「関連」タンパク質もまた考慮され、これには、例えば、サイトケラチン、他の構造タンパク質、それと相互作用するタンパク質などが含まれる。本明細書中で説明されるような、比に基づくマーカーの成功は、通常発現されるタンパク質の異常な発現の検出である。
本開示の一般的な実施形態においては、本明細書中に開示される方法において使用されるプローブは、癌関連タンパク質の検出に特異的である。特定の実施形態においては、プローブは、癌関連タンパク質に対して親和性を持つ抗体である。さらなる実施形態においては、抗体は、固形腫瘍(例えば、癌腫)由来の癌関連タンパク質の検出に特異的である。
1つの実施形態においては、癌関連タンパク質は、(癌)関連タンパク質に対して特異性を持つプローブを使用して、試料中で検出される。さらなる実施形態においては、癌関連タンパク質を検出するために使用されるプローブは、抗体であり得る。癌関連タンパク質の機能的活性を検出する特定の実施形態においては、上記抗体は、リン酸化された(活性化された)癌関連タンパク質に対して特異性を持つリン酸化部位特異的抗体であり得る。例えば、抗体を使用して検出することができる他のタンパク質修飾も検討される。そのような修飾としては、メチル化、アセチル化、およびユビキチン化が挙げられる。例えば、(薬物に対する反応についての)アセチル化の有用性が理解されている(例えば、Chenら、Anal Chem.80(16):6390−6306,2008)。
(BM1/BM2)+(BM3/BM4)=予後についての生体マーカー 。
1つの実施形態においては、本開示は、被験体における癌の存在を検出するために開示される方法(例えば、組織マイクロアレイ(TMA)またはマルチ組織免疫ブロッティング(MTI)アレイ)を実行するためのプラットフォームを作製し、これを使用する方法に関する。特定の実施形態は、固定され、(例えば、パラフィンの中に)包埋された(FFPE)保管組織試料(archival tissue sample)との組み合わせにおいて特に有用である。
遊離させることができる生物学的分子を含む任意の二次元試料材料を、提供される移動プロセスにおいて生物学的分子の供給源として使用することができる。「二次元」によっては、この物質が実質的に平坦であり、比較的薄いか、またはそのように考案することができることが意味される。実質的に二次元の試料の代表的な例としては、組織試料(例えば、薄い切片スライス(例えば、保管されたかまたは凍結させられた組織試料)、組織アレイ、cDNAまたは他の核酸マイクロアレイ、タンパク質マイクロアレイ、1−Dタンパク質ゲル、1−D核酸ゲル、2−Dタンパク質ゲルなどが挙げられる。
検出および/または定量化のためのメンブレン(またはメンブレンのセット)への生物学的分子(例えば、タンパク質)の二次元移動に関して、多数のタイプのメンブレンが、所望される方法とともに使用されることが想定される。
特定の実施形態においては、タンパク質がメンブレンを積み重ねたもの全体に移動させられた後、個々のメンブレンの層が分離され、それぞれが、別々の抗体(または他の検出体分子)カクテルの中でインキュベートされる。多数のレプリカブロットを作製することについての重要な利点は、多くのさらなる検出体分子(例えば、抗体)を、全ての検出体を1つのブロットの上に混雑した状態にする場合よりも、有効に利用することができることである。
(a)乳癌
乳癌は、女性の癌の最も一般的な形態であり、米国においては生存している女性における癌に関連する死の第2位の原因である。毎年、この疾患により40,000人を超える女性が死亡している。乳癌特異的分子標的の同定には、乳癌疾患の検出、処置、および予後を良くする大きな可能性がある。加えて、形質転換のプロセスにおける乳癌特異的分子標的の役割を理解することにより、同じあるいは関連する細胞シグナル伝達経路または成長因子経路において他の乳癌特異的(例えば、癌関連タンパク質)を治療標的とする、さらなる機会が明らかになり得る。結果として、本開示は、乳癌特異的癌関連タンパク質の検出に特異的であるプローブを組み込んだTMAを含む、試料中の乳癌特異的癌関連タンパク質を検出するため;試料中の乳癌特異的癌関連タンパク質を同定するため;そしてそれにより、乳癌特異的癌関連タンパク質の存在を、乳癌を発症するリスクの存在または増大したリスクと相互に関連づけるための方法を考える。本明細書中に開示される方法は、腫瘍の同定のため、およびそのような腫瘍の相対的生存率の決定のための、単純な分子サインを同定する。例えば、進行した疾患の乳癌試料が、疾患状態の組織中で発現されることが知られているタンパク質に対して特異的に惹起させられた抗体を使用してプローブされ得る。1つの例においては、上皮成長因子受容体(EGFR)、HER2/neu、ならびに、下流の活性化因子、細胞外シグナル調節キナーゼ1/2(ERK1/2)、AKT、開始因子4E結合タンパク質1(4E−BP1)、リン酸化されたリボソームタンパク質S6キナーゼ1(p70S6K1)、およびリボソームタンパク質S6(S6)(全て、乳癌のシグナル伝達経路の要素である)を含有する抗体カクテルが、TMAの1枚以上のメンブレンにアプライされ得る。続いて、免疫検出および二次蛍光抗体が、TMAのメンブレン(単数または複数)にアプライされ得、癌関連タンパク質のシグナル強度が、分子走査デンシトメトリー(molecular scanning densitometry)ソフトウェアにより定量化され得る。さらなる実施形態においては、癌関連タンパク質の強度が、生体マーカーの指標を得るために、試料の全細胞含有量に対して比較され得る。さらなる実施形態においては、生体マーカーの指標が、癌についての相対的生存率と相互に関連付けられ得る。1つの実施形態においては、試料は、活性化された(リン酸化された)乳癌特異的癌関連タンパク質の検出のためのリン酸化部位特異的抗体(phosphorylation−specific antibody)を使用して、免疫組織化学により研究される。試料中の乳癌特異的癌関連タンパク質の同定は、乳癌の存在、または乳癌を発症する増大したリスク、または乳癌を有する被験体についての全体的な生存率の低下と相互に関連し得る。
前立腺癌の患者の管理における中心的なジレンマの1つは、処置しないまま放置しておいても、ごく一部の割合の症例しか癌による死に至らないが、前立腺癌の罹患率は極めて高いために、男性におけるその死亡率が肺癌に次いで第2位であることである。結果として、適切な処置の選択肢を考慮できるように、前立腺癌の患者において疾患の進行のリスクを正確に評価することが、公衆衛生上の大きな要件である。疾患の進行をモニタリングするための信頼できる方法が同定されれば、多くの前立腺の患者が、根治的全前立腺摘除術を受けるのではなく、「経過観察」プロトコールによる恩恵を受けることができるであろう。本明細書中に開示される方法を使用する、前立腺癌に特異的な候補の癌関連タンパク質としては、ヘプシン、pim−1キナーゼ、AMACR、AIPC、e−カドヘリン(ECAD)、α−メチルが挙げられるが、これらに限定されない。アシル−コエンザイムAラセマーゼ、およびEZH2が、前立腺癌の進行を検出またはモニターするための方法での使用について評価され得る。
原発性の肺癌について最初に行われる治療は、通常は、外科手術である。この後、放射線治療および/または化学療法が続いて行われる。原発性腫瘍の切除後、切除術を受けた患者のうちの有意な割合が、検出不可能な転移性疾患の徴候を現し、低い生存率を示す。本明細書中に開示される方法を使用して、使用者は、試料(例えば、ホルマリンで固定した保管肺癌組織切片)から直接、転移性肺癌の癌関連タンパク質を発見する能力を評価することができると考えられる。特に目的とするものは、肺癌特異的癌関連タンパク質(例えば、癌胎児性抗原(CEA)、CYFRA21−1、血漿カリクレインB1(KLKB1)、アネキシンA3、CK、Prx I、II、III、脂肪酸結合タンパク質、および神経特異的エノラーゼ(NSE))についてのタンパク質発現プロファイルである。
本開示のさらなる実施形態においては、試料中の膵臓癌関連タンパク質の同定、検出、および/または定量化での使用のための癌関連タンパク質のパネルが開発され得ることが意図される。例えば、LCN2、REG1A、REG3、TIMP1、およびIGFBP4を含有する5種類の膵臓癌関連タンパク質のパネルが、前癌状態の増殖(膵上皮内腫瘍性新生組織形成)(これは、癌患者または健康な対照被験体においては観察されない)を同定するために使用され得る。1つの実施形態においては、上記5種類の癌関連タンパク質のパネルが、上記5種類のタンパク質のいずれかまたは全ての存在を検出するために、被験体に由来する血液試料に対してスクリーニングされる。このタンパク質パネル中での5種類のタンパク質全てのポジティブ検出は、被験体における前癌状態の病変の指標となるが、低濃度での上記タンパク質パネルからの1種類または2種類のタンパク質の検出は、現在のところは膵臓癌についてローリスクである被験体と解釈され得る。したがって、上記5種類のタンパク質のパネルは、膵臓癌の検出におそらく有用であり、疾患の進行期にある被験体のコホートを同定する際にも有用であり得る。さらに、特異的癌関連タンパク質または多タイプの癌に関連するタンパク質のパネル(例えば、膵臓癌に関して上記で議論した例示的な5種類のタンパク質のパネル)の開発が、例えば、前癌状態の病変から疾患の進行期への、被験体における疾患の進行をモニターするために使用され得る。特定のタイプの癌(例えば、乳房、肺、膵臓、卵巣)と関係がある癌関連タンパク質を含有するタンパク質パネルの開発が本開示の1つの目的であり、本出願によりここで意図されることが、当業者に明らかであろう。さらに、複数のタイプの癌と関係がある癌関連タンパク質(例えば、複数のタイプの癌(例えば、乳癌、肺癌、膵臓癌、または卵巣癌)に由来する少なくとも1種類の癌関連タンパク質)を含有するタンパク質パネルの開発が本開示の1つの目的であり、本出願によりここで意図されることが、当業者に容易に明らかであろう。
American Cancer Societyは、毎年、卵巣癌により15,000人の女性が死亡すると推定する。ほとんどの患者は、原発性腫瘍部位から拡がった進行期疾患を呈する。卵巣癌における組織型トランスグルタミナーゼ(TG2)の過剰発現は、腫瘍細胞の増殖の増大、化学療法に対する耐性、および低い全体的生存率と関係がある(Hwangら、Cancer Res.15:5849−5858,2008)。したがって、本明細書中に開示される方法は、試料中の卵巣癌の存在を検出するための方法を意図する。この方法は、試料中の少なくとも1種類の卵巣癌特異的癌関連タンパク質(例えば、TG2)の含有量を計算する工程、少なくとも1種類の卵巣癌特異的癌関連タンパク質の含有量を正規化する工程、正常な非癌性試料についての正規化した値に対して、少なくとも1種類の癌関連タンパク質の正規化した値を比較する工程、および試料中の卵巣癌の存在を検出するために、非癌性試料に対する上記試料中の癌関連タンパク質の正規化した値の変化を相関させる工程による。したがって、本明細書中で定義されるように、TG2は、本明細書中に開示される方法を使用して、試料中の卵巣癌を検出または同定する能力を持つ癌関連タンパク質である。TG2はまた、卵巣癌の処置のための可能性のある治療標的でもあり、具体的には、本明細書中に開示される方法を使用して、疾患の進行または治療に対する被験体の反応性(特に、化学療法に耐性がある腫瘍)をモニターするために使用され得る。
肝外胆管癌(EHCC)は、肝門から遠位の胆管にまでに生じる、胆管上皮の悪性新生物であり、全ての胆管癌のおよそ80%〜90%を占める(Malhi and Gores,J.Hepatol 2006;45:856−67)。EHCCは、米国では比較的一般的ではない新生物であるが、韓国を含むアジアにおいてはより高頻度で見られる(Hongら、Cancer 2005;104:802−10)。現在、外科的切除が処置の中心であるが、限られた数の患者(主に、進行期疾患を持たない患者)にしか治癒をもたらさない(Seyama and Makuuchi,World J.Gastroenterol 2007;13:1505−15)。外科的切除を受けた患者について、5年生存率はおよそ20%である(Nathanら、J.Gastrointest Surg.2007;11:1488−96)。いくつかのネオアジュバント療法(化学療法、放射線治療、および光線力学的療法を含む)が研究されているが、いずれについても生存に関する有意な利点は示されていない(Thomas,Crit.Rev.Oncol.Hematol.2007;61:44−51)。したがって、EHCCの早期の検出のための新規の標的の同定、および/または生物学的機構のさらなる理解に基づくEHCCについての新規の治療レジュメの開発が、EHCC患者の死亡率を低下させるために重要である。
(患者の選択および腫瘍試料の収集)
University of Ulsan College of MedicineのAsan Medical Center(韓国、ソウル市)で外科的切除を受けた221人のEHCC患者を調べた。肝外胆管に中心がある癌腫が含まれていたが、ファーター膨大部癌または膵臓癌、およびファーター膨大部または膵臓に明らかに前癌状態である上皮変化を持つ患者は除外した。胆嚢に発生した癌腫、または肝外胆管に伸びる肝内胆管に発生した癌腫もまた、本研究から除外した。患者の年齢および性別、外科的処置、生存期間、および生存状態を含むデータを得るために、診療記録を精査した。腫瘍の位置、大きさ、および増殖パターンを含むデータを、病理学報告を精査することにより得た。術後の放射線治療および/または化学療法についての情報と、患者の一般状態は分析に利用できなかった。材料は、Institutional Review Board of the Asan Medical CenterおよびNIHのOffice of Human Subjects Researchから、適正な人権保護の承認とともに得た。
組織マイクロアレイ(TMA)を、上記EHCCの被験体のそれぞれに由来する、保管したホルマリンで固定し、パラフィンに包埋した組織ブロックから構築した。各腫瘍について、代表的な腫瘍の領域を、当該分野で公知の方法を使用して、ドナーの組織ブロックのヘマトキシリンとエオシンで染色した切片から注意深く選択した(例えば、Hidalagoら、J.Clin.Pathol.56:144−146,2003、およびHongら、Mod.Pathol.20:562−569,2007を参照のこと)。20の正常な胆管上皮、67の胆管異形成症、および221のEHCCの症例を研究した。各被験体は、各ドナーの組織ブロックに由来する1.5mmの直径の2つのコアを用いて説明した。
統計分析は、SAS(バージョン9.13)およびR(.rproject.orgで、ワールドワイドウェブ上で利用できる)を使用して行った。正常な胆管上皮細胞、異形成症、およびEHCCの症例の間でのp−AKT、p−mTOR、および全PTENのディファレンシャルな発現を、発現の正規化後に、ANOVAおよびダンカンの検定により比較した。カテゴリー変数間の関係を、ピアソンのカイ二乗検定およびフィッシャーの正確検定を使用して試験した。ログランク統計試験と組み合わせた再帰分布技術を利用して、タンパク質発現に基づいて患者の結果を判断する、カットオフ点を同定した(実施例8を参照のこと)。生存曲線をカプラン・マイヤー法により計算し、統計学的有意性を、ログランク試験とコックス比例ハザード回帰モデルにより試験した。0.05未満のp値を統計学的に有意と見なした。
(マルチ組織免疫ブロッティングによるプロテオミクス発現プロファイリング)
マルチ組織免疫ブロッティング(MTI)を、当該分野で知られているように行った(例えば、Chungら、Proteomics.6:676−74,2006、およびChungら、Cancer Epidemiol.Biomarkers.Prev.15:1403−08,2006)。簡単に説明すると、TMAスライドを脱パラフィンし、酵素カクテル溶液[0.001%のトリプシン、および0.002%プロテイナーゼK、10%のグリセロール、50mMのNH4HCO3、pH8.2(Fisher Scientific,Hampton,NH)]で、37℃で30分間処理した。続いて、スライドを、Probuffer完全プロテアーゼ阻害剤溶液(Probuffer complete protease inhibitor solution)[50mlのPBS(pH 7.2)中の、0.5mlのホスファターゼ阻害剤I(Sigma,St.Louis,MO)、0.5mlのホスファターゼ阻害剤II(Sigma)、1つのプロテアーゼ阻害剤の錠剤(Roche Diagnostics,Indianapolis,IN)]とともに、室温(RT)で20分間インキュベートした。処理したスライドのタンパク質を、P−FILMの5枚のメンブレンを積み重ねたもの(セット)(20/20 GeneSystems,Rockville,MD)に、Tris−グリシン移動緩衝液(50mMのTris、380mMのグリシン)を使用して、55℃で1時間、65℃で0.5時間、そして80℃で2時間の段階的条件下で移動させた。タンパク質の移動後、メンブレンを、Tween 20を含むTBSTで洗浄した。
(免疫組織化学)
組織切片を、それぞれ、キシレンおよび段階的なアルコール溶液中で脱パラフィンし、水和した。内因性のペルオキシダーゼを、3%のH2O2中で10分間インキュベーションすることによりブロックした。抗原回復を、予め温めておいた抗原回復緩衝液(pH 10)(Dako,Glostrup,Denmark)を用いて、圧力調理器(steam pressure cooker)中で、95℃で10分間行った。非特異的染色を最小限にするために、切片をタンパク質ブロック(Dako)とともに15分間インキュベートした。一次抗体を4℃で一晩インキュベートした。抗原−抗体反応を、DAKO LSAB+ペルオキシダーゼキットとDABを用いて検出した。抗p−AKT、抗p−mTOR、およびPTEN抗体(Cell Signaling)を、1:200の希釈率で使用した。免疫染色した切片をヘマトキシリンで軽く対比染色し、エタノール中で脱水し、キシレン中で洗浄した。
(p−AKTおよびp−mTORの発現)
実施例2に記載するように行ったマルチ組織免疫ブロッティング(MTI)アッセイにより検出したp−AKTおよびp−mTORタンパク質の発現パターンを、221人のEHCC患者から分析した。16の症例についてのp−AKT、p−mTOR、および全PTENの代表的な発現シグナルを図1Aに示す。最大から最小までの図1Aのシグナル強度を、順に白から灰色から黒色として示す。p−AKTおよびp−mTORについてより高い強度を持つ症例は、全PTENについてより低い強度を示した。
(PTENの発現)
T1 TNM期の症例が、他の分類(T2、8.92;T3、7.18;T4、3.98;p<0.05、hoc Duncan試験後、図3A)を有する症例よりも有意に高い相対的なPTENの発現(平均、16.08;相対的発現強度)を有することが明らかになった。膵臓への浸潤を持つ患者が、膵臓への浸潤を持たない患者(平均、9.95;p<0.05、hoc Duncan試験後)よりも有意に低いPTENの発現(平均、5.94)を有することを観察した。十二指腸への浸潤を持つ症例は、十二指腸への浸潤を持たない症例(平均、9.04;p<0.05、hoc Duncan試験後、図3B)よりも統計学的に低いPTENの発現(平均、3.98)を有していた。疾患をより高く病期グループ分けされた患者(IIBおよびIII)は、より低い病期を持つ患者(IAおよびIIA(それぞれ、17.23および8.14;p<0.05、hoc Duncan試験後、図3C))よりも有意に低いPTENの発現(それぞれ、6.45および3.98)を有していた。患者の生存性に関する指標に関する最近の見解を参照して(Hongら、Mod.Pathol.20:562−569,2007)、患者の生存性の指標としての、膜の底から腫瘍の最も深い部分までの腫瘍の浸潤の深さの測定もまた評価した(図3D)。腫瘍細胞の浸潤の程度が低い患者(<0.5cmの浸潤の深さ)が、より深い腫瘍細胞の浸潤を持つ症例(>1.2cmの浸潤、平均PTEN 1.61;(p<0.05、hoc Duncan試験後))よりも統計学的に大きいPTENの発現(平均PTEN、3.41)を有することを観察した。中程度の腫瘍細胞の浸潤(0.5〜1.2cmの浸潤)が2.94の平均PTENを持つことを観察した。これは、統計学的有意性には到達しなかった。
(生存性の分析)
生存性の分析のために、患者を、目的のマーカーの発現の中央値に基づいて、p−AKT、PTEN、またはp−mTORの「高い」または「低い」発現体のいずれかとしてカテゴリー分類した。高いp−AKT発現を持つ患者は、低いp−AKT発現を持つ患者(それぞれ、83.3%、83.3%、および83.3%)よりも短い、1年、3年、および5年生存率(それぞれ、79.7%、46.1%、および36.3%)を有していたが、差異は統計学的には有意ではなかった(p=0.06)。
(PTEN/p−AKT比またはPTEN/p−mTOR比の発現プロファイルによる生存性の分析)
PTENの発現とp−AKT発現の互いの組み合わせ、またはPTENの発現とp−mTORの発現の互いの組み合わせが、EHCC患者の生存確率の決定について、優れた予測となる可能性があるかどうかを決定するために、PTEN/p−AKTの発現の比、またはPTEN/p−mTORの発現の比を評価した。ログランク試験と組み合わせた再帰分布により、PTEN/p−AKT比に基づいて患者の生存性を判断するための最良のカットオフ点が0.77であることを観察した。図5Aは、PTEN/p−AKTの発現にしたがうEHCCのカプラン・マイヤー生存分析を示す。低いPTEN/p−AKT発現を持つ患者(0.77未満または0.77と同等のPTEN/p−AKT比;生存性の中央値 18か月;n=42)は、高いPTEN/p−AKT発現を持つ患者(0.77より大きい;生存性の中央値 45か月;n=91;ログランク試験、P=0.003)よりも有意に悪い患者の生存性を有していた。低いPTEN/p−AKT発現を持つ患者についての1年、3年、および5年生存率は、それぞれ、72.6%、30.0%、および23.4%であり、一方、高いPTEN/p−AKT発現を持つ患者についての1年、3年、および5年生存率は、それぞれ、84.1%、56.4%、および46.2%であった(図5A)。
(患者の臨床病理学的特徴)
試験した症例の臨床病理学的特徴を表1にまとめる。患者の年齢は、30歳〜84歳の範囲であった(平均61歳)。134人の患者が男性であり、87人が女性であった。腫瘍の大きさは、0.4cm〜6cmの範囲であった(平均2.6cm)。
他の臨床病理学的変数を、生存性との関係について分析した。これらのうち、T分類(P=0.0002)、リンパ節転移(P=0.0001)、分化(P<0.0001)、膵臓への浸潤(P=0.01)、十二指腸への浸潤(P=0.003)、肝臓への浸潤(P=0.005)、および血管への浸潤(P=0.04)は全て、生存性と有意な関係があった。対照的に、生存性は、神経周囲への浸潤および切除術の周囲の状態(marginal status)とは関係はなかった。
臨床病理学的要因の多変量解析
PTEN/p−AKT比、ならびに他の臨床病理学的パラメーターの独自の予後についての有意性を、Cox比例ハザードモデルを使用して決定した。この多変量解析を使用した場合には、リンパ節転移(P=0.008)および分化(P=0.0002)だけが依然有意であった(表2)。PTEN/p−AKTはこの分析においては統計学的有意性が得られなかった(P=0.09)。同様の結果が、PTEN/pm−TORの多変量解析によっても得られた(未公開データ)。
(Phospho−AKT、Phospho−mTOR、Phospho−MAPK、およびEGFRの組み合わせが非小細胞性肺癌における生存性を予測する)
多数の経路の活性化が、非小細胞性肺癌(NSCLC)において実証されている。これは、予後に関して意義があり、さらには、治療的介入のための標的となり得る。これらの経路の間には有意なクロストークが存在する。上皮成長因子受容体(EGFR)は、NSCLCにおける重要な標的として浮上している。分裂促進因子活性化プロテインキナーゼ(MAPK)およびAKTシグナル伝達経路の2つの主要な構成要素は、EGFRの下流に存在し、肺癌を含む多くのヒトの癌において遺伝的機構および後成的機構を通じて脱調節される。本発明者らは、非小細胞性肺癌において、MAPK経路およびAKT/mTOR経路の上流と下流との間での関係を明らかにしようと使用と考えた。
肺癌は、世界中で、男性および女性のいずれにおいても癌による死の最も一般的な原因である。処置(例えば、化学療法および化学放射線療法の併用)が進歩しているにも関わらず、生存性は、過去数十年間でごくわずかしか改善していない(Schiller,Oncology 61 Suppl 1:3−13,2001)。
(臨床試料)
全部で231の肺癌の症例を、診断とパラフィンブロック上の利用できる組織の質に基づいて、富山大学付属病院(Toyama University Hospital)病理学的症例の保管物から選択した。これらの患者には、ネオアジュバント療法を行わなかった。腫瘍を、癌のTNM分類に照らしてInternational Unionにしたがって病期分類し、組織学的に分け、2004年のWHOによりガイドライン(Fukuokaら、Clin Cancer Res 10:4314−24,2004)にしたがって悪性度を決定した。
TMAを、TMA arrayer(Pathology Devices,Westminster,MD)を以前に記載されたように使用して構築した(Kononenら、Nat Med 4:844−7,1998)。各症例について、最も典型的な組織学を持つ領域を、ヘマトキシリン−エオシン(H&E)で染色したスライドを観察することにより選択した。円柱状の組織試料(0.6mm)を、ドナーのブロック中の上記領域から芯を抜き、レシピエントアレイに押し出した。5μm厚の複数の切片をミクロトームを用いて切り、TMAスライドのH&E染色を、腫瘍細胞の存在について切片50枚ごとに試験した。
統計分析を、JMP Statistical Discovery Software、バージョン7.0.1(SAS Institute,Cary,NC)を使用して行った。
(患者の特徴と画像分析)
最後の分析のために最終的に抽出した症例の数を、それらの臨床的データとともに表3に列挙する。生存期間と結果は、231の症例のうちの204例に限られた。TMAを、p−AKT、p−mTOR、EGFR、およびp−MAPKについて染色した。スライドを、染色の質について手動で精査し(図6)、20×の倍率でAperio Scanscope CS(Vista,CA)を用いて画像化した。続いて、TMAを、Spectrum Plusにおいて脱整列させ(dearray)、腫瘍特性を、画像分析のために各TMAコアについて手作業で注釈を付けた。不適切な腫瘍を含むコアは除外した。ポジティブピクセルとメンブレン画像分析アルゴリズムの同調(tuning)の後、TMAについて画像分析を行った。値(重量スコア)を各腫瘍について計算した。
本分析は、下流のAKT/mTOR経路のp−mTORとp−AKTに、そして下流のMAPK経路のp−MAPKとEGFRに焦点を当てた。個々の分析によっては、生存性を予測することはできなかった(図8A)。対照的に、p−mTOR/p−AKT(p=0.043、ログランク試験)およびp−MAPK/EGFR(p=0.031)について、これらの経路内で生体マーカーの比を試験した場合には、有意な相互関係が見られた(図8B)。
これらの2つの比に基づく生体マーカーは、個別に、統計学的に有意な生存性についての区別を提供し、これは、単独のマーカーの分析によっては提供されなかった。区別を改善するために、ならびに、すでに記載したクロストークを示すための努力において、両方のレシオメトリックアプローチからなる組み合わせた生体マーカーを開発した。2つの比の和が優れたアプローチであることが明らかになった。この「二重の比」生体マーカーは統計学的により有意であり、個々の比に基づく生体マーカーのいずれかを用いて観察されたよりも、生体マーカーについてポジティブおよびネガティブであるそのような患者の間でより大きな広がりを示す。3つのグループ(両方ポジティブ、不一致、または両方ネガティブ)への2つの簡単な比の生体マーカーの分析は、それぞれ、78%、70%、および46%の5年生存率の中央値を生じた(p=0.016)(図8C)。これをさらに洗練するために、2つの比を足し算し、ポジティブクラスおよびネガティブクラスの分類のために新しいカット点を使用すると、二重の比はさらに有意な差異を提供する。5年生存率は、代数的生体マーカーがポジティブである患者については74%、ネガティブである患者については48%であった(図8D)。「二重の比」生体マーカーの結果を、カプラン・マイヤー分析において生体マーカーを組み合わせる従来の方法と比較した場合には、「二重の比」は明らかに優れており、+/−または−/+と解釈された不一致である中間のグループ(図8Cにおいて(+/−)と示したグループ)を除外し、「二重の比」生体マーカーの識別機能にネガティブな影響を与えることはない。図8Cにおいては、中心線は、従来のアプローチに基づくと正確に割り当てることができないが、本明細書中で開発した「二重の比」マーカーを用いると、一人残らず割り当てることができる患者であり、さらに、得られる曲線は、図8Cの2つのパネルにおいては、(+/+)および(−/−)と比較して明らかに別れたままである。機能的には、図8Cは、記載した「生体マーカー代数(biomarker algebra)」が、優れた方法で多数の生体マーカーの性状をモデル化していることを証明している。カプラン・マイヤー分析のログランク検定を強化した(p=0.007)。代数的生体マーカーは、性別(p<0.01)、T状態(p<0.01)、癌のタイプ(p<0.01)、および分化(p<0.01)と関係があったが、病期(p=0.94)およびリンパ節転移(p=0.35)とは関係がなかった。代数的生体マーカーのポジティブは、男性の被験体のうちの64%と比較して、女性の被験体の85%において観察され、pT2〜4の被験体の61%と比較してpT1の被験体の82%、非腺癌の52%と比較して腺癌の82%、そして中程度またはほとんど分化していない癌腫の61%と比較して十分に分化した癌腫の80%において観察された。性別、年齢、癌のタイプ、および病期を用いた、コックス比例ハザード回帰モデルによる調整後も、代数的生体マーカーは依然、有意であった(p=0.038)(表4)。
全部で231の肺癌を、WSに基づいて階層的クラスター分析によって分析した。このクラスター分析に基づいて、4つのグループを定義した(図7)。カテゴリー1の全ての症例は、p−MAPKについてポジティブであり、ほとんどの症例のWSが、カテゴリー3および4においては低かった。p−AKTはカテゴリー3においてはp−mTORと関係があった(p=0.02、カイ二乗検定)。カテゴリー2においては、p−AKTはEGFRと関係があり(p=0.0015)、そしてp−mTORはp−MAPKと関係があった(p=0.0069)。カテゴリー1においては全ての比が高く、一方、カテゴリー4においては全ての比が低い(表5)。カテゴリー2のp−MAPK/EGFR比はカテゴリー3と同じであるが、カテゴリー2のp−mTOR/p−AKT比は、カテゴリー3の比よりも高い。カテゴリー2の5年生存率は74%であり、カテゴリー4の5年生存率は45%であるが、病期とリンパ節転移の割合はほぼ同じである。
本研究において、本発明者は、p−AKT、EGFR、p−mTOR、およびp−MAPKの組み合わせが予後についてのマーカーの候補であること、そして並行するシグナル伝達経路の多数の抗体を組み合わせることが重要であることを見出した。MAPKおよびAKT/mTOR経路は、腫瘍形成において極めて重要な役割を担っており、これらの抗体は良く知られているが、従来の免疫組織化学的アッセイの適用は、定性的であり、ダイナミックレンジが限られている手動スコアリングアプローチにより再現不可能である。定量分析は、通常、分布の評価のための目盛および/または強度の評価のための目盛を使用することにより決定されてきた(Vergisら、Lancet Oncol 9:342−51,2008;Howardら、Lung Cancer 46:313−23,2004;Yanoら、Cancer Res 68:9479−87,2008)。
(胃癌についての予測マーカーの同定)
上記アプローチをまとめて、さらに、胃(消化器)癌を、詳細な臨床病理学的データを利用することができる946人の患者の極めて大きなコホートにおいて試験した。ムチン遺伝子、p53、e−カドヘリン、β−カテニンなどを含む多数のマーカーを検索した。Her2とHer3を、病理学者による「手動」での解釈を使用して試験し、これにより、不連続なデータ(定性的データ)を得たが、これは、バイナリーではなく値の範囲を有していた。ハザード比を用いた多変量解析においては、HER2の発現はネガティブな予後因子であり(HR 1.37)、HER3はポジティブな予後因子であった(HR 0.94)。比に基づくメトリックを適用し、0.61のHRを明らかにした。全てのHRが統計学的に有意であったが、1.0からの偏差が大きければ大きいほど、有意であった。
Claims (16)
- 癌を有する被験体から得た試料中の少なくとも2種類の癌関連タンパク質を癌の予後の指標とする方法であって:
i)前記被験体由来の前記試料中の少なくとも2種類の癌関連タンパク質を同定する工程であって、ここで、前記少なくとも2種類の癌関連タンパク質が、PTENとp−AKT、PTENとp−mTOR、p−mTORとp−AKT、または、p−MAPKとEGFRを包含する、工程;
ii)前記試料中の前記少なくとも2種類の癌関連タンパク質を定量化する工程;
iii)前記試料中の各癌関連タンパク質について正規化した値を得るために、前記試料中の前記少なくとも2種類の癌関連タンパク質を正規化する工程;および
iv)生体マーカーの指標を得るために、第1の癌関連タンパク質の正規化した値を第2の癌関連タンパク質の正規化した値と比較する工程であって、前記生体マーカーの指標は、癌を有する前記被験体の予後を示す、工程
を含み、ここで、前記生体マーカーの指標が、前記第2の癌関連タンパク質の正規化した値に対する前記第1の癌関連タンパク質の正規化した値の比を含む、方法。 - 前記被験体がヒトである、請求項1に記載の方法。
- 前記被験体がヒト以外の哺乳動物である、請求項1に記載の方法。
- 前記癌が固形腫瘍である、請求項1に記載の方法。
- 前記癌が以下からなる群より選択される、請求項1に記載の方法:副腎腫瘍、胆管癌、膀胱癌、骨の癌、脳腫瘍、乳癌、心臓肉腫、子宮頸癌、結腸直腸癌、子宮内膜癌、食道癌、胚細胞癌、婦人科学的な癌、頭頸部癌、肝芽腫、腎臓癌、咽頭癌、白血病、肝臓癌、肺癌、リンパ腫、黒色腫、多発性骨髄腫、神経芽細胞腫、口腔癌、卵巣癌、膵臓癌、副甲状腺癌、下垂体腫瘍、前立腺癌、網膜芽細胞腫、横紋筋肉腫、皮膚癌(非黒色腫)、胃(消化器)癌、精巣癌、甲状腺癌、子宮癌、膣癌、外陰癌、およびウィルムス腫瘍。
- 前記固形腫瘍が癌腫であり、そして、前記少なくとも2種類の癌関連タンパク質がさらに、5T4;AKT;p−AKT;ACRBP;血液型Tn抗原;CD164;CD20;CTHRC1;FATE1;HER2;HER3;GPNMB;ガレクチン8;HORMAD1;LYK5;MAGEA6;MAGEA8;MAGEA9;MAGEB18;MAGED2;MAPK;p−MAPK;mTOR;p−mTOR;MUC1;MUC2;MelanA;黒色腫gp100;NYS48;PARP9;PATE;プロステイン(prostein);PTEN;SDCCAG8;SEPT1;SLC45A2;TBC1D2;TRP1;XAGE1;および上皮由来の腫瘍関連抗原からなる群より選択される腫瘍関連抗原を含む、請求項4に記載の方法。
- 前記生体マーカーの指標が、前記試料中のp−mTor対p−AKTの比およびp−MAPK対EGFRの比を含む、請求項1〜6のいずれか1項に記載の方法。
- 定量化する工程が:
a)前記癌関連タンパク質を組織切片からメンブレンを積み重ねたものに移動させること;
b)前記メンブレンを積み重ねたものを、前記メンブレン上の個々のエピトープの検出のための一次抗体でプローブすること;
c)蛍光二次抗体を用いて、前記メンブレン上の個々のエピトープに結合した前記一次抗体を検出すること;および、
d)前記蛍光二次抗体の強度を定量化すること
を含む、請求項1に記載の方法。 - 定量化する工程が、免疫組織化学、レーザー・キャプチャー・マイクロダイセクション、「一次元」電気泳動ゲル、「二次元」電気泳動ゲル、質量分析法、組織マイクロアレイ、マルチ組織免疫ブロッティング、またはこれらの2つ以上の組み合わせを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記試料が組織試料である、請求項1に記載の方法。
- 前記組織試料が、保管組織試料、凍結保存された組織試料、新鮮な組織試料、LCM組織試料、または組織マイクロアレイからなる群より選択される、請求項10に記載の方法。
- 被験体由来の固形腫瘍試料から得た生体マーカーの指標を、固形腫瘍を有する前記被験体についての、相対的な癌の予後または相対的生存率の指標とする方法であって:
生体マーカーの指標を得る工程であって、前記生体マーカーの指標は、以下の工程:
(i)前記固形腫瘍試料から第1の癌関連タンパク質を抽出して、前記第1の癌関連タンパク質を含む画分を得る工程;
(ii)前記画分中の前記第1の癌関連タンパク質の含有量を計算する工程;
(iii)前記試料中の全細胞性タンパク質の含有量に対して、前記第1の癌関連タンパク質の含有量を正規化する工程;
(iv)前記固形腫瘍試料から第2の癌関連タンパク質を抽出する工程;
(v)前記画分中の前記第2の癌関連タンパク質の含有量を計算する工程;
(vi)前記試料中の全細胞性タンパク質の含有量に対して、前記第2の癌関連タンパク質の含有量を正規化する工程;および
(vii)生体マーカーの指標を得るために、正規化した前記第1の癌関連タンパク質の含有量を、正規化した前記第2の癌関連タンパク質の含有量に対して相関させる工程を含む方法により得られる、工程であって、ここで、前記生体マーカーの指標が、前記第2の癌関連タンパク質の正規化した値に対する前記第1の癌関連タンパク質の正規化した値の比を含む、工程
を含み、ここで、前記生体マーカーの指標が、前記固形腫瘍を有する前記被験体について予後または癌の相対的生存率を示し、そして、前記第1および第2の癌関連タンパク質が、PTENとp−AKT、PTENとp−mTOR、p−mTORとp−AKT、または、p−MAPKとEGFRである、方法。 - 2種類の癌関連タンパク質を被験体における癌の指標とするための方法であって:
(a)前記被験体由来の生物学的試料から第1の癌関連タンパク質および第2の癌関連タンパク質のレベルを決定する工程であって、ここで、前記2種類の癌関連タンパク質がPTENとp−AKT、PTENとp−mTOR、p−mTORとp−AKT、または、p−MAPKとEGFRを含む、工程;
(b)前記生物学的試料由来の全細胞性タンパク質の含有量に対して、前記第1の癌関連タンパク質および前記第2の癌関連タンパク質の含有量を正規化する工程;ならびに、
(c)前記第1の癌関連タンパク質および前記第2の癌関連タンパク質の正規化したレベルを、正常な対照試料中で測定した、細胞、組織、または体液中の前記第1の癌関連タンパク質および前記第2の癌関連タンパク質のレベルと比較する工程であって、ここでは、正常な対照被験体中で測定した前記第1の癌関連タンパク質および前記第2の癌関連タンパク質のレベルに対する、前記被験体中の前記第1の癌関連タンパク質および前記第2の癌関連タンパク質の正規化したレベルの変化が、前記被験体における癌の存在を示す、工程
を含む、方法。 - p−AKTおよびp−mTORを、被験体における癌の存在の指標とするための方法であって:
(a)前記被験体由来の試料中のp−AKTおよびp−mTORの発現のレベルを計算する工程;
(b)前記試料中のp−AKTおよびp−mTORの発現のレベルを、前記試料についての全細胞性タンパク質の含有量に対して正規化する工程;および
(c)対照の非癌性試料中のp−AKTおよびp−mTORの発現の正規化した発現のレベルを比較する工程であって、ここで、正常な非癌性試料における比率と比較した、前記被験体の試料中のp−mTORの発現レベルに対するp−AKTの発現レベルの比率における統計学的に有意な低下が、前記被験体における癌の存在の指標である、工程
を含む、方法。 - 被験体由来の腫瘍試料中の腫瘍抗原に特異的な抗体を、腫瘍を有する被験体についての、癌の相対的生存率の指標とするための方法であって:
前記腫瘍中の第1の腫瘍抗原に特異的な抗体および第2の腫瘍抗原に特異的な抗体の存在を検出する工程であって、ここで、前記第1および第2の腫瘍抗原は、PTENとp−AKT、PTENとp−mTOR、p−mTORとp−AKT、または、p−MAPKとEGFRである、工程;
正常な非癌性試料と比較して、前記腫瘍中の前記第1および第2の腫瘍抗原に対する抗体の発現レベルを正規化する工程、
を含み、ここで、
前記非癌性試料由来の前記第2の腫瘍抗原についての抗体発現レベルに対する前記第1の腫瘍抗原についての抗体発現レベルの比率と比較した、前記第2の腫瘍抗原についての抗体発現レベルに対する前記第1の腫瘍抗原についての抗体発現レベルの比率の低下が、前記腫瘍を有する前記被験体におけるより低い相対的生存率を示す、方法。 - 少なくとも2つの癌関連タンパク質を、被験体における癌の存在の指標とするための方法であって:
前記被験体由来の生物学的試料中で少なくとも2つの癌関連タンパク質を検出する工程であって、ここで、第1および第2の前記癌関連タンパク質は、PTENとp−AKT、PTENとp−mTOR、p−mTORとp−AKT、または、p−MAPKとEGFRである、工程;
前記第1および第2の癌関連タンパク質についてタンパク質発現レベルを計算する工程;および、
前記生物学的試料中で検出した前記第2の癌関連タンパク質についてのタンパク質発現レベルと前記第1の癌関連タンパク質についてのタンパク質発現レベルとの比を、所定の統計学的に有意なカットオフ値に対して比較する工程であって、ここでは、前記カットオフ値に対して比較した前記生物学的試料中の前記第2の癌関連タンパク質のタンパク質発現に対する前記第1の癌関連タンパク質のタンパク質発現の比率の減少が、前記被験体における前記癌の存在を示す、工程
を含む、方法。
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