JP5876934B2 - 組織再生コンストラクト、及び組織再生コンストラクトの製造方法 - Google Patents
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Description
ここで「コンストラクト」は所定の要素が関連することにより構成される構造体であることを意味する。
このような移植体の適用は一定の効果が認められ、それを背景にこの分野の研究(前臨床動物実験、及び臨床研究)が盛んに行われている。今日では、組織工学、再生医療と呼ばれる領域として対象とする疾患や使用する細胞のバリエーションなどを広げつつ発展している。
また、本発明の組織再生コンストラクトの製造方法によれば、このような組織再生コンストラクトを効率よく製造することができる。
(組織再生コンストラクト10の構造)
図1は1つの形態に係る組織再生コンストラクト10の外観を模式的に示した図である。図1からわかるように組織再生コンストラクト10は、移植体11及び生着層15を有している。
多孔質形状であっても緻密体のものであっても、顆粒径は300μm乃至2000μmのものが好ましい。また、顆粒を適当な容器いっぱいに入れた場合の顆粒間及び顆粒内部の空孔の体積の和の同容器の容積に対する比率(充填時の空孔率)は40%乃至90%であることが好ましい。なお、この充填時の空孔率はX線CT撮影データを用いた3次元形態解析により算出することができる。
これは、分散された細胞は、基材中を自由に遊走可能であり、それにより、生着層15内の細胞が組織再生対象部位、及び移植体11の方向へ増生(アウトグロース)することが可能となることによる。そして、これにより移植体11と組織再生対象部位とが生着し、移植体11と組織再生対象部位とが架橋される。
かかる観点から、より効率のよい生着の促進のために、単一に分散された細胞が多いほうが好ましい。
図2、図3に組織再生コンストラクト10の製造方法例1を説明する概念図を表した。
図2(a)に示したように、顆粒状の支持体12を所定の体積になるように型4の中に入れておく。
次に、組織再生に用いる細胞を基材に分散させた懸濁液(基材懸濁液)を型4の中に注ぐ。その際、図2(b)に示したように、型4内に配置された支持体12の上面よりも懸濁液の上面の方が高くなるように注ぐ。これにより、型4内のうち下部は支持体12と懸濁液の層になり、上部は支持体12が存在しない懸濁液のみの層となる。
支持体12間や支持体12の内部の孔に懸濁液が行き渡るように、よく攪拌(ピペッティング)する。
このようなゲル状化により、図3に示したように上記収縮が起こり、生着層内の細胞密度が上昇する。また、ゲル状化により3次元網目に細胞を閉じ込めるため細胞が保持される。図3に示した破線はゲル状化前の基材懸濁液の水位である。このようにゲル状化により収縮が起こることがわかる。
次に組織再生コンストラクト10の製造方法の他の例(組織再生コンストラクトの製造方法例2)を説明する。
この方法は、生着層15のみを予め組織再生対象部位の表面に設置しておき、そこに移植体11を直接接触させて組織再生対象部位で組織再生コンストラクト10を作製する方法である。
ここで「顆粒状の集合である支持体と細胞の基材懸濁液とを均一に分散混合させ、ゲル状化などの方法により成型しておいたもの」の作製は、例えば組織再生コンストラクトの製造方法例1で説明したように、型に納めた顆粒状の集合である支持体に懸濁液を注ぎ、組織再生コンストラクトの製造方法例1のようにゲル状化することにより形成することができる。その際には顆粒状の集合である支持体の上面と注いだ懸濁液の上面との位置を概ね同じとすれば移植体のみを作製することができる。
また、組織再生コンストラクトの製造方法例1で形成した組織再生コンストラクト10をそのまま使用しても良い。
はじめに、図4(a)に示したように、水に対する接触角が15°乃至90°であるような樹脂板又はガラス板である保持板5上に支持体12を載置する。
次に図4(b)に示したように支持体12に基材懸濁液を例えば滴下や注入などの方法によって導入する。これにより、図5(a)に示したように、懸濁液が支持体12内に浸透するとともに、支持体12が懸濁液により全体が満たされた状態となる。
さらに図5(a)で示した状態から、保持板5が上、懸濁液が含まれた支持体12が下となるように反転させ、図5(b)に示したような姿勢とする。すなわち、重力方向から見て保持板5が支持体12の上側となり、且つ保持板5の重さが支持体12に加わらない状態で気体中で静止させる。この状態で静止を維持し、導入された細胞を支持体12の孔の内壁に接着させて播種が完了する。これにより移植体11を作製することができる。支持体12に細胞を接着させるために気体中で静止させる時間は、支持体12の材質や播種する細胞の種類により異なるが、20分乃至300分である。
また、本例では、組織再生対象部位に直接組織再生コンストラクトを形成する例を説明したが、必ずしも組織再生対象部位に直接である必要はなく、例えば型の中や何らかの板上で同様に組織再生コンストラクトを作製することもできる。
(組織再生コンストラクト20の構造)
図7には、他の形態に係る組織再生コンストラクト20の外観を模式的に示した。
図7からわかるように組織再生コンストラクト20も、移植体21及び生着層25を有している。組織再生コンストラクト20は、移植体21の外表面のうち複数の面に生着層25が設けられている。生着層25が設けられる移植体21の外表面は特に限定されることはなく、全ての面であってもよいし、一部の複数の面であってもよい。
移植体21、生着層25を構成する材料については上記した移植体11、生着層15と同様である。
図8、図9に組織再生コンストラクトの製造方法例3について説明する図を示した。
本方法例3では、予め、顆粒状の集合である支持体と細胞の基材懸濁液とを均一に分散混合させ、ゲル状化などの方法により一体として成型しておいたもの、又は、予め、多孔質ブロック状の支持体の内部孔に細胞を導入しておいたものを準備しておき、これを移植体21とする。移植体21は細胞を導入した状態で培養を経たものでもよい。これら移植体21の作製は、上記した組織再生コンストラクトの製造方法例2で説明した移植体11の製造方法の例と同様に行うことができる。又は、組織再生コンストラクトの製造方法例1で作製した組織再生コンストラクト10をそのまま使用しても良い。
このようなゲル状化により、図9に示したように上記収縮が起こり、生着層内の細胞密度が上昇する。また、ゲル状化により3次元網目に細胞を閉じ込めるため細胞が保持される。図9に示した破線はゲル状化前の基材懸濁液の水位である。このようにゲル状化により収縮が起こることがわかる。
(組織再生コンストラクト30の構造)
図10には、他の形態に係る組織再生コンストラクト30の外観を模式的に示した。図10からわかるように組織再生コンストラクト30も、移植体31及び生着層35を有している。組織再生コンストラクト30は、移植体31の外表面のうち複数の面に生着層35が設けられ、少なくとも1つの面には生着層が設けられていない。生着層35が設けられる移植体31の外表面は特に限定されることはなく、1つの面を除いた全ての面であってもよいし、他にも生着層が設けられていない面があってもよい。
移植体31、生着層35を構成する材料については上記した移植体11、生着層15と同様である。
図11、図12に組織再生コンストラクトの製造方法例4について説明する図を示した。
本方法例4では、予め、顆粒状の集合である支持体と基材懸濁液とを均一に分散混合させ、ゲル状化などの方法により成型しておいたもの、又は、予め、多孔質ブロック状の支持体の内部孔に細胞を導入しておいたものを準備しておき、これを移植体31とする。移植体31は細胞を導入した状態で培養を経たものでもよい。これら移植体31の作製は、上記した組織再生コンストラクトの製造方法例2で説明した移植体11の製造方法の例と同様に行うことができる。又は、組織再生コンストラクトの製造方法例1で作製した組織再生コンストラクト10をそのまま使用しても良い。
このようなゲル状化により、図12に示したように上記収縮が起こり、生着層内の細胞密度が上昇する。また、ゲル状化により3次元網目に細胞を閉じ込めるため細胞が保持される。図12に示した破線はゲル状化前の懸濁液の水位である。このようにゲル状化により収縮が起こることがわかる。
組織再生コンストラクト10、20、30によれば、再生すべき対象となる細胞を保持した支持体を具備した移植体に加え、支持体を有することなく細胞が高い密度で含まれた生着層を備えている。生着層が組織再生対象部位のうち、生着を促進して組織を再生すべき面の少なくとも一部に接して配置されることにより、生着が促進され、組織再生コンストラクトと組織再生対象部位との物理的・生物学的な架橋が速やかに行われるので、再生の促進を図ることができる。
移植体に組織からの分化などの刺激が加わることや早期の血管組織浸潤、栄養や細胞の供給が容易となる。また、産生する液性因子(成長因子などのタンパク質)による組織再生対象部位からの細胞動員の促進、及びそれらに対する活性化刺激を与えることもできると考えらえる。
実施例1は次のような過程を経て組織再生コンストラクトを作製し、その後移植を行った。
(ラット骨髄由来間葉系幹細胞の培養)
4週齢F344ラットの大腿骨、脛骨を採取し、培養液を用いて骨髄を洗い流して(flush out)回収した骨髄細胞(大腿骨2本分、脛骨2本分)を、10%FBS、1%ペニシリンストレプトマイシンを含むαMEM培地30mlを入れた培地に播種した。37℃、5%炭酸ガス雰囲気の条件下で増殖培養した。3日目に培地を交換し非接着細胞を取り除き、以後3日に1回の割合で培地交換をした。最初の培地交換の際から培地にbFGF3ng/mlを添加して培養した。10日前後でほぼ集密(コンフルエント)状態となったことを確認した。その後、培地を除去し、トリプシン(0.05%)+EDTA(0.2mM)で2分間培養(インキュベート)して振動を与えて、可及的速やかに細胞を剥がしてバラバラにし、即座に培地を加えてトリプシン活性を止めた。
細胞数を計測し、5000細胞/cm2で継代して培養した。さらに5日間培養したところで上記と同様に細胞を剥がして分散させて(バラバラにして)以下の実験に用いた。
Nunc社製のラブテックチャンバースライド16ウェル(型として使用、内径7mm、底面積38.5mm2)の1ウェルあたりに高さ3mmとなるように、支持体とするハイドロキシアパタイト多孔質体顆粒(φ0.5mm乃至φ2.0mm)を充填した。ウェルの内径は7mmで容量は115μlである。ウェルへの充填状態での支持体の空孔率は75%であったので、全容量115μl中の86.25μlが隙間として存在することになる。
そこへ、F344ラット由来の血漿120μlに、上記のように作製したラット骨髄由来の間葉系幹細胞を200×104細胞懸濁したものを添加し、細胞が全体に行き渡るように攪拌(ピペッティング)した。ここに、12μlの3.3%塩化カルシウム水溶液を添加して良く行き渡るように攪拌(ピペッティング)した。それを37℃で培養(インキュベート)して、凝固反応である血漿中のフィブリノゲンのポリマー化を促進させフィブリン化した。その結果、ウェル内で血漿内に細胞と支持体が封入された塊が形成された。ウェル内に充填された支持体の上面には、凝固したフィブリンに細胞が封入された支持体が存在しない厚さ約1.2mmの層が乗って重なっている状態である。この層が生着層である。生着層中の細胞数は約69×104細胞であり、面積あたり約1.8×104細胞/mm2であった。
イソフルランを用いた全身麻酔下でラットの頭蓋部の毛を刈り、イソジンにて消毒した後、骨膜まで達するよう1.5cm程度メスを入れ、その切開線から骨膜剥離子を入れて骨膜と上皮を一緒にトンネル状に骨から剥離した。作製した組織再生コンストラクトは直前まで37℃にて維持し、移植直前にチャンバースライドのウェルの壁を外し、組織再生コンストラクトを取り出した。その後、組織再生コンストラクト上部の生着層を頭蓋骨側に向けて剥離したトンネル内に設置した。本実施例1は、頭蓋骨上に組織再生コンストラクトが生着し、組織再生コンストラクトが移植された領域が骨となり、骨が盛り上がったような形状に増生されることを期待するものである。
移植後には切開線を縫合し、ラットをケージに返した。
上記した実施例1と同様に作製した組織再生コンストラクトを用意し、同様にラット頭蓋骨上に設置して移植した。ただし、本比較例1では生着層を頭蓋骨側に向けず、上側の骨膜側に向けて設置した。
すなわち、比較例1は、上記実施例1との対比で投与した細胞数は同じであるが、組織再生対象部位に対して生着層が、組織再生対象部位のうち生着を促進して組織を再生させるべき表面には接しておらず、生着層の介在がない例である。従って本比較例1は実質的に生着層を設けなかった組織再生コンストラクトの例である。
移植後には上記と同様に切開線を縫合糸してラットをケージに返した。
(標本の準備)
実施例1、比較例1における実験動物は8週の治癒期間の後、屠殺して組織を回収し、ホルマリン固定、パラフィン包埋後、移植した組織再生コンストラクトの中央部の薄切標本を5つ作製した。その後、HE染色を施し、組織学的評価を行った。
図13に実施例1の標本のうちの1つを表した。図13(a)は全体像を表した図、図13(b)は図13(a)のうち四角で囲んだ部位の拡大図である。また、図14には比較例1の標本のうちの1つを同様に示した。
その結果、実施例1では、広範囲で頭蓋骨と組織再生コンストラクトが連続した骨形成が見られた。図13(b)からわかるように実施例1では新生骨(「N」で表した。)が多く形成されていることもわかる。また、新生骨領域の表面には活性の高い骨芽細胞が配列しており、更なる骨新生が期待された。
一方、比較例1では、コンストラクト中の支持体の周囲に散発的に骨形成が見られる程度であった。図14(b)からわかるように骨形成が見られなかった領域は、繊維性組織(「F」で表した。)で満たされていた。
(1)上記薄切標本の観察で、支持体を除いた領域における新生骨の面積割合が60%以上である標本は、5つの例のうち、実施例1では5つ(全て)、比較例1では1つのみであった。
(2)上記薄切標本の観察で、組織再生コンストラクトの底面と既存頭蓋骨とが、新生骨により連続して生着し、既存頭蓋骨から組織再生コンストラクト内部の支持体にまで骨架橋を示した界面の長さが50%以上である標本は、5つの例のうち、実施例1では5つ(全て)、比較例1では1つのみであった。
実施例2では次のような過程を経て組織再生コンストラクトを作製し移植を行った。
(ラット骨髄由来間葉系幹細胞の培養)
4週齢F344ラットの大腿骨、脛骨を採取し、培養液を用いて骨髄を洗い流して(flush out)回収した骨髄細胞(大腿骨2本分、脛骨2本分)を、10%FBS、1%ペニシリンストレプトマイシンを含むαMEM培地30mlを入れた培地に播種した。37℃、5%炭酸ガス雰囲気の条件下で増殖培養した。3日目に培地を交換し非接着細胞を取り除き、以後3日に1回の割合で培地交換をした。最初の培地交換の際から培地にbFGF3ng/mlを添加して培養した。10日前後でほぼ集密(コンフルエント)状態となったことを確認した。その後、培地を除去し、トリプシン(0.05%)+EDTA(0.2mM)で2分間インキュベートして、その後振動を与えて、可及的速やかに細胞を剥がしてバラバラにし、即座に培地を加えてトリプシン活性を止めた。
細胞数を計測し、5000細胞/cm2で継代して培養した。さらに5日間培養したところで上記と同様に細胞を剥がして分散させて(バラバラにして)以下の実験に用いた。
ニプロ社製の1mlシリンジ(内径4.5mm)の先端を切断したものを型として用意した。先端を切断したシリンジの端から長さ10mmの部分にピストン先端を合わせ、そこに支持体とするハイドロキシアパタイト多孔質体顆粒(φ0.5mm以上φ2.0mm以下)を充填した。先端を切断したシリンジの端からピストン先端までの体積は159μlとなる。容器充填状態での支持体の空孔率は75%であったので、119μlが隙間として存在することになる。そこへ、F344ラットの血漿107μlに上記のように培養したF344ラット骨髄由来の間葉系幹細胞を200×104細胞懸濁したものを添加した。全体に均一に細胞が行き渡るように、27G注射針をつけたシリンジで攪拌(ピペッティング)した。さらに、12μlの3.3%塩化カルシウム水溶液を添加して良く行き渡るように、攪拌(ピペッティング)した。それを37℃で培養(インキュベート)して、凝固反応である血漿中のフィブリノゲンのポリマー化を促進させた。その結果、1mlシリンジ内に血漿フィブリン内に細胞と支持体が封入された塊(移植体本体部分)が形成された。この場合、この時点で生着層に相当するものは存在しない。
F344ラット大腿部の上皮を切開し、大腿骨周囲の筋膜、筋肉を裂き大腿骨を露出させた。引き続き露出した大腿骨を創外固定器で固定して隙間10mmの骨欠損を作製した。この骨欠損のモデルに対し、上記円柱状の組織再生コンストラクトを骨断面にちょうど円柱状の上下にある生着層が接するように入れ込み移植した。
組織再生コンストラクトは一塊であり、骨断面に挟み込まれることで固定性が良好であった。
以上により、本発明の組織再生コンストラクトを移植することにより、自然治癒が到底不可能な程に大規模なラット大腿骨欠損の治癒が可能であることが確認された。
11、21、31 移植体
12 支持体
15、25、35 生着層
Claims (11)
- 移植再生対象部位へ適用されて組織を再生する部材である組織再生コンストラクトであって、
移植体、及び該移植体の外表面の少なくとも一部に重なって配置される生着層を有し、
前記移植体は、
支持体と、
前記支持体間の空間部分、及び支持体の内側に形成された空孔による空間部分の少なくとも一方に配置された前記組織を再生するための細胞と、を有し、
前記生着層は、
前記組織を再生するための細胞と、
凝固反応により高分子化した血漿フィブリンを含有する前記細胞を保持するための基材と、を含み、
前記生着層の前記基材はゲル状とされているとともに、前記生着層は前記支持体が存在しない層である、組織再生コンストラクト。 - 前記生着層に含まれる前記細胞は細胞間基質が分解されて分散された状態であることを特徴とする請求項1に記載の組織再生コンストラクト。
- 前記移植体に含まれる前記細胞、及び前記生着層に含まれる前記細胞のうち少なくとも一方の細胞が未分化の間葉系幹細胞である請求項1又は2に記載の組織再生コンストラクト。
- 前記移植体に含まれる前記細胞、及び前記生着層に含まれる前記細胞のうち少なくとも一方の細胞が分化細胞である請求項1又は2に記載の組織再生コンストラクト。
- 前記移植体に含まれる前記細胞、及び前記生着層に含まれる前記細胞のうち少なくとも一方の細胞が幹細胞から分化培養した組織前駆細胞である請求項1又は2に記載の組織再生コンストラクト。
- 前記移植体の前記支持体が、ハイドロキシアパタイト、炭酸アパタイト、β−TCP、OCP、及びリン酸カルシウムから選ばれる少なくとも1つを含有して形成されている請求項1乃至5のいずれかに記載の組織再生コンストラクト。
- 前記移植体の前記支持体が、PLGA、PLLA、PLC、及び生体親和性の人工ポリマーから選ばれる少なくとも1つを含有して形成されている請求項1乃至5のいずれかに記載の組織再生コンストラクト。
- 移植再生対象部位へ適用されて組織を再生する組織再生コンストラクトを製造する方法であって、
前記組織再生コンストラクトは、移植体、及び該移植体の外表面の少なくとも一部に重なって配置される生着層を有し、
前記移植体は、
支持体と、
前記支持体間の空間部分、及び支持体の内側に形成された空孔による空間部分の少なくとも一方に配置された前記組織を再生するための細胞と、を有し、
前記生着層は、
前記組織を再生するための細胞と、
前記細胞を保持するための基材と、を含み、
前記生着層の前記基材はゲル状とされているとともに、前記生着層は前記支持体が存在しない層であり、
前記組織再生コンストラクトを製造する際には、
型の中に前記支持体を配置する工程と、
前記支持体を配置した前記型の中に、前記組織を再生する前記細胞及び該細胞を保持する基材を含有した基材懸濁液を前記支持体の上面より水位が上となるように注ぐ工程と、
前記基材をゲル状とする工程と、
を含む、組織再生コンストラクトの製造方法。 - 移植再生対象部位へ適用されて組織を再生する組織再生コンストラクトを製造する方法であって、
前記組織再生コンストラクトは、移植体、及び該移植体の外表面の少なくとも一部に重なって配置される生着層を有し、
前記移植体は、
支持体と、
前記支持体間の空間部分、及び支持体の内側に形成された空孔による空間部分の少なくとも一方に配置された前記組織を再生するための細胞と、を有し、
前記生着層は、
前記組織を再生するための細胞と、
前記細胞を保持するための基材と、を含み、
前記生着層の前記基材はゲル状とされているとともに、前記生着層は前記支持体が存在しない層であり、
前記組織再生コンストラクトを製造する際には、
型の中に、該型の内面の少なくとも1つに前記支持体が接触することなく間隙を有して前記支持体を配置する工程と、
前記支持体を配置した前記型の中に、前記組織を再生する前記細胞及び該細胞を保持する基材を含有した基材懸濁液を注ぐ工程と、
前記基材をゲル状化する工程と、
を含む、組織再生コンストラクトの製造方法。 - 移植再生対象部位へ適用されて組織を再生する組織再生コンストラクトを製造する方法であって、
前記組織再生コンストラクトは、移植体、及び該移植体の外表面の少なくとも一部に重なって配置される生着層を有し、
前記移植体は、
支持体と、
前記支持体間の空間部分、及び支持体の内側に形成された空孔による空間部分の少なくとも一方に配置された前記組織を再生するための細胞と、を有し、
前記生着層は、
前記組織を再生するための細胞と、
前記細胞を保持するための基材と、を含み、
前記生着層の前記基材はゲル状とされているとともに、前記生着層は前記支持体が存在しない層であり、
前記組織再生コンストラクトを製造する際には、
型の中に前記移植体を配置する工程と、
前記移植体を配置した前記型の中に、前記組織を再生する前記細胞及び該細胞を保持する基材を含有した基材懸濁液を前記支持体の上面より水位が上となるように注ぐ工程と、
前記基材をゲル状とする工程と、を含む、
組織再生コンストラクトの製造方法。 - 移植再生対象部位へ適用されて組織を再生する組織再生コンストラクトを製造する方法であって、
前記組織再生コンストラクトは、移植体、及び該移植体の外表面の少なくとも一部に重なって配置される生着層を有し、
前記移植体は、
支持体と、
前記支持体間の空間部分、及び支持体の内側に形成された空孔による空間部分の少なくとも一方に配置された前記組織を再生するための細胞と、を有し、
前記生着層は、
前記組織を再生するための細胞と、
前記細胞を保持するための基材と、を含み、
前記生着層の前記基材はゲル状とされているとともに、前記生着層は前記支持体が存在しない層であり、
前記組織再生コンストラクトを製造する際には、
型の中に、該型の内面の少なくとも1つに前記移植体が接触することなく間隙を有して前記移植体を配置する工程と、
前記移植体を配置した前記型の中に、前記組織を再生する前記細胞及び該細胞を保持する基材を含有した基材懸濁液を注ぐ工程と、
前記基材をゲル状とする工程と、
を含む、組織再生コンストラクトの製造方法。
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