JP5705743B2 - Chk1を阻害するために有用な化合物 - Google Patents
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Description
TR−FRETアッセイを用いて、Chk1の生化学的な活性に対する化合物の効果を測定することができる。このアッセイでは、テルビウムを標識した抗体を用いて、キナーゼと蛍光標識の基質とATPとの反応から形成されるリン酸化された生成物を検出する。抗体はリン酸化された基質に結合し、その結果、受容体シグナル(フルオレセイン)対供与体シグナル(テルビウム)の比として算出されるTR−FRET値が上昇する。
TR−FRETアッセイを用いてChk2の生化学的活性に対する化合物の効果を測定することができる。このアッセイでは、テルビウムを標識した抗体を用いて、キナーゼと蛍光標識の基質とATPとの反応から形成されるリン酸化された生成物を検出する。抗体はリン酸化された基質に結合し、その結果、受容体シグナル(フルオレセイン)対供与体シグナル(テルビウム)の比として算出されるTR−FRET値が上昇する。
Chk1の阻害剤は、DNA損傷反応が活性化されている細胞にてタンパク質のキナーゼ活性が基質をリン酸化するのを妨げる。Chk1の容易に検出可能な基質は、Chk1自体の自己リン酸化部位、セリン296である。以下の免疫ブロットアッセイを用いてChk1におけるセリン296のリン酸化の量を測定し、Chk1タンパク質キナーゼの活性レベルを間接的に測定することができる。10%(v/v)熱非働化FBS(ギブコ(商標))、1×MEM非必須アミノ酸(ギブコ(商標))、1×ピルビン酸(ギブコ(商標))、及び24穴培養プレートのウエル当たり600μLのMEM培養培地(上記)に入れた1×105個の細胞で補完された、Earle’s塩(インビトロゲン)とL−グルタミン(ギブコ(商標))を伴ったMEMにてHeLa細胞(ATCCから購入)を培養する。37℃、5%CO2及び95%〜100%の湿度にて細胞を24時間インキュベートする。培養培地中の4μMのドキソルビシン(シグマ)のストック16μLを各適当なウエルに加え、100nMの最終濃度のドキソルビシンを作製する。Chk1阻害剤化合物を添加する前にさらに24時間、プレートをインキュベータに戻す。化合物を100%DMSOにて10mMで可溶化し、次いで40%(v/v)のDMSOで2mMに希釈し、次いで4%(v/v)のDMSOを加えた培養培地で100μMに希釈する。その後、100μM〜0.005μMの範囲にわたって化合物の連続希釈(1:3)を調製する。66μLの化合物ストックをプレートの適当なウエルに加えて0.4%(v/v)の最終DMSO濃度と1μM〜0.0005μMの間の最終化合物濃度の範囲を生じる。さらに2時間プレートをインキュベータに戻し、次いで細胞の溶解と処理のために取り出す。次いでプレートから培地を取り除き、0.5mLの氷冷DPBS(ギブコ(商標))で各ウエルを1回洗浄し、液体をすべて取り除き、残りの手順のためにプレートを氷上に置く。ホスファターゼ阻害剤(シグマ)とプロテアーゼ阻害剤(ロシュダイアグノスティクス)を含有する細胞抽出緩衝液(インビトロゲン)から成る氷冷溶解緩衝液75μLを各ウエルに加える。10分後、各ウエルを擦り、溶解物を氷上の1.5mLのポリプロピレン微量遠心管に移す。各溶解物をプレートカップホルンソニケータ(ミソニックス)によって45秒間超音波処理するが、水/氷槽にて懸濁する。4×ラムリ試料緩衝液(240mMのトリス−HCl、pH6.8、40%のグリセロール、0.05%のブロモフェノールブルー、8%w/vのSDS及び20%(v/v)のβ−メルカプトエタノール)25μLを含有する0.5mLのポリプロピレン微量遠心管に50μLの各試料を移し、95℃で5分間加熱し、−80℃にて凍結保存する。残りの溶解物は、タンパク質濃度を決定する(BCA(商標)プロテインアッセイキット、サーモサイエンティフィック)のに用いる。試料緩衝液中の各細胞溶解物5μgをE−Pageウエルゲル(インビトロゲン)に適用し、製造元の指示書に従って電気泳動に供する。当該技術でよく理解されている手順に従ってタンパク質をゲルからイモビロン−P膜(ミリポア)に電気的に移す[Towbinら、1979]。10mMのトリス/HCl、pH8.0、150mMのNaCl及び0.05%(v/v)のツイーン20(TBST)で手短に膜をすすぎ、TBST/5%(v/v)の再構成されたCarnation(登録商標)即席ミルク中にて25℃で1時間浸す。TBSTにて5分間、膜を4回洗浄し、次いで適当な希釈のウサギ抗ホスフォChk1(セリン296)(セルシグナリング)を伴ったTBST/5%(w/v)BSAにて4℃で24時間、膜を浸す。25℃にてTBSTで5分間、膜を4回洗浄し、次いで、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP;アマシャム)を結合したロバ抗ウサギIgGの適当な希釈物を含有するTBST/5%ミルクにて25℃で2時間、膜を浸し、自己リン酸化したChk1タンパク質を検出する。25℃にてTBSTで5分間、膜を4回、再び洗浄する。化学発光撮影装置(富士フィルム)を用いて、製造元によって推奨されるように、Super Signal Western Femoto HRP−検出試薬(ピアース)によって膜に固定化された抗原−抗体−リポーター抱合体が検出される。「Total Lab」ソフトウエア(ノンリニアダイナミックス)を用いてホスフォ−Chk1(Ser296)バンドの強度を算出する。ドキソルビシン誘導のChk1自己リン酸化のパーセント阻害は、以下の式:%阻害=(試料のホスフォChk1バンドの強度−ドキソルビシンなしの陰性対照のホスフォChk1バンドの強度)/(ドキソルビシン陽性対照のホスフォChk1バンドの強度−ドキソルビシンなしの陰性対照のホスフォChk1バンドの強度)×100を用いて算出する。実施例2の化合物はこのアッセイで0.0005μM未満のEC50を有することが測定される。このことは、本発明の化合物がChk1の強力な阻害剤であることを明らかにしている。
Chk1の阻害剤は、トポイソメラーゼII阻害剤であるドキソルビシンによって処理されたp53マイナス腫瘍細胞におけるG2MのDNA損傷チェックポイントを無効にする。G2Mのチェックポイントの破棄の測定は、細胞がG2Mチェックポイントを越えて有糸分裂に入った後生じるセリン10におけるヒストンH3のリン酸化である。以下の高含量の画像化アッセイを用いて細胞におけるヒストンH3のリン酸化を測定することができる。ポリD−リジンを被覆した透明な底の黒色プレート(BDバイオコート、カタログ番号3504640)にて、ウエル当たり100μL体積で、10%(v/v)のFBSを補完し、ウエル当たり2000個の細胞を入れたMEM培地(ギブコ(商標))においてHeLa細胞(ATCCから購入した)を培養する。次いで細胞培養インキュベータにて18〜24時間、プレートをインキュベートする(37℃、5%CO2及び95%相対湿度)。最初のインキュベートに続いて、625nMのドキソルビシンを含有するギブコ(商標)MEM培地10%FBS20μLをプレートの適当なウエルに加え、125nMの最終濃度を生じる。細胞をG2Mチェックポイントで停止させるのに十分な24時間、プレートをインキュベータに戻す。翌日、細胞を実施例2の化合物で処理する。実施例2の化合物は、100%DMSOに10mMにて可溶化し、次いで4%(v/v)のDMSO−MEMにて50μMから出発して10×ストックに希釈する。その後、50μM〜0.39μMにわたって化合物の連続希釈(1:2)を調製する。13μLの化合物ストックをプレートの適当なウエルに加え、0.4%のDMSO最終濃度と5μM〜0.039μMの間の範囲の化合物の最終濃度を生じる。プレートをさらに7時間インキュベータに戻し、次いで固定のために取り出す。各ウエルから液体を慎重に取り除き、100μLのPREFER(商標)固定液(アナテック社、カタログ番号414)を加える。プレートを室温にて20分間保持し、固定液を除き、次いで100μL/ウエルのDPBS(ギブコ(商標)、カタログ番号14040)中の0.1%(v/v)Triton(登録商標)X−100(ピアース、カタログ番号28314)を10分間添加することによって細胞を透過処理する。溶液を取り除き、ウエル当たり100μLのDPBSで2回プレートを洗浄し、次いで室温にて1時間、50μg/mLのRNAase(リボヌクレアーゼA、シグマ、カタログ番号R−6513)を含有する100μLのDPBSを加える。RNAase溶液を取り除き、1:500希釈のウサギ抗pHH3(ser10)(UBI、カタログ番号06−570)と1%(w/v)のBSA(ギブコ(商標)、カタログ番号15260)を含有するRNAase溶液50μLを各ウエルに加えることによってセリン10にてリン酸化されたヒストンH3(pHH3)の存在について細胞を染色する。プレートを密封し、一晩4℃に保つ。ウエル当たり100μLのDPBSによって各プレートを2回洗浄することによって一次抗体を取り除き、DPBSと1%(w/v)BSA中のAlexa染料488(インビトロゲン、カタログ番号A11008)に結合したヤギ抗ウサギIgGの1:750希釈50μLで置き換える。アルミニウムホイルで覆って光から保護して室温にてプレートを1時間保持する。ウエル当たり100μLのDPBSによって再び2回プレートを洗浄し、15nMのヨウ化プロピジウム100μL(元々の溶液からのPBSによる1:100希釈、モレキュラープローブ、カタログ番号P3566)によって置き換える。黒色シールでプレートを密封し、光からプレートを保護する。プレートを30分間インキュベートして核を染色する。488nmの励起(TTPラボテック社)を用いたACUMEN EXPLORER(商標)レーザー走査蛍光マイクロプレートサイトメータによってプレートを走査し、pHH3と2N及び4Nを含むDNA含量とを測定する。Alexa488からの519nmでの平均強度によってpHH3陽性細胞を特定する。ヨウ化プロピジウム/DNAからの655〜705nmでの総強度を用いて細胞周期(2N細胞、4N細胞)における個々の細胞及び細胞の亜集団を特定する。%pHH3、%2N及び%4Nの最終アッセイ出力を生じる総細胞の%を正規化することによって各集団についての最終的な読み取りを決定する。次いで、100nMでの阻害剤対照化合物の最大濃度で細胞を処理することによって100%活性を決定して、各化合物の最終的な%活性を決定する。0%の活性は、化合物で処理しないことに基づく。相対的なEC50は、ACTIVITY BASE(商標)、エクセルフィット、4つのパラメータの対数適合を用いた曲線の適合、方程式205を用いて100%の最大対照に対する%pHH3を決定することによって決定される。実施例2の化合物は、このアッセイで0.0105μMのEC50を有することが測定される。このことは、本発明の化合物がG2MのDNA損傷チェックポイントを無効にすることを明らかにしている。
Chk1の阻害剤は、S期内のチェックポイントの破棄を介してゲムシタビン(又はそのほかの細胞毒性剤)の抗増殖活性を増強することができ、結果的に持続し、高められたDNA損傷を生じる。DNA損傷後、継続して増殖する腫瘍細胞の能力は、そのDNAを複製する細胞の能力を測定することによって分析することができる。このアッセイは、細胞がDNA損傷を修復する機会を有した後、そのDNAを複製する細胞の能力を評価する。このアッセイでは、細胞をゲムシタビン、次いで実施例2の化合物で処理する。回復期に続いて、S期の間、DNAに放射性チミジンを取り込む能力について細胞をアッセイする。ECtfsパラメータは、ゲムシタビンのGI90濃度を半減するのに必要とされるChk1阻害剤の濃度の測定値であり、Chk1阻害の非存在下でこのアッセイにて測定される。10%(v/v)の熱非働化FBSを加えたRPMI1640(ギブコ(商標))にてHT−29細胞(ATCCから入手した)を増殖させる。コーニングコースター96穴組織培養プレートにウエル当たり1.3×103個にてこれらの細胞を入れる。細胞を入れた後、37℃に戻す前に組織培養プレートを室温にて45分間保持する。ゲムシタビンを加える前にプレートを24時間インキュベートする。ゲムシタビン添加の前に、すべてのウエルから培地を取り除き、ウエル当たり150μLの新鮮なRPMI培地に置き換える。リン酸緩衝生理食塩水にて10mMでのゲムシタビンのストックを調製する。RPMI培地中で4×濃度でゲムシタビンの希釈を調製し、ウエル当たり50μLをウエルに加えた。使用したゲムシタビンの最高最終濃度は80μMであり、4倍段階で希釈を進める。2時間後、ゲムシタビン含有の培地をウエルから取り除き、ウエル当たり150μLの新鮮なRPMI培地で置き換える。実施例2の化合物(DMSO中10mM)を先ず、DMSOにて2000×の最終濃度に希釈し、次いでRPMI培地で1:500に希釈してウエルへの添加用に4×ストックを生成する。添加の体積は50μLである。化合物の希釈は、5000nMから出発して2倍希釈によって開始する。実施例2の化合物の添加後24時間で、阻害剤を含有する培地を吸引によって取り除き、ウエル当たり200μLの新鮮なRPMI培地で置き換える。実施例2の化合物を取り除いた72時間後、トリチウム化したチミジン標識を開始する。3H−チミジン(NET027X001、パーキンエルマー、比活性20Ci/ミリモル)を完全RPMIにて1:20に希釈して0.05mCi/mLの濃度を得る。この溶液20μLを各ウエルに添加して1μCi/ウエルの3H−チミジンを得る。細胞を22時間標識する。3H−チミジンを含有する培地をウエルから十分に取り除く。次いで−20℃にてプレートを数時間凍結する。取り込まれた3H−チミジンを含有するDNAを回収するために、プレートを数分で融解し、ウエル当たり120μLの0.1NのNaOHを各ウエルに添加する。次いで、回転装置にてゆっくり混合しながら、各プレートを10分間37℃にてインキュベートする。Filtermate196ハーベスタ(パーキンエルマー)によってDNAを回収し、96穴UnifilterGF/Cプレート(パーキンエルマー、No.6005174)に集める。細胞が標識された組織培養プレートのウエルを水で5回洗浄する。ウエル当たり追加の4.5mL(3×1.0mL及び最終的に1.5mLの洗浄)によってUnifilterプレート膜を洗浄する。次いで37℃にて少なくとも6時間、Unifilterプレートを乾燥する。各フィルタープレートの底をBackseal粘着シート(パーキンエルマー)で封止し、50μL/ウエルのMicroScint−20(パーキンエルマー)を添加する。次いでTopseal透明粘着シート(パーキンエルマー)によって各プレートを封止する。Topcountシンチレーションカウンター(パーキンエルマー)にてウエル当たり1分、プレートを計数する。解析とプロットのために3H−チミジンの1分当たりのカウント(cpm)をPrism(GraphPad)に転送する。実施例2の化合物の各濃度についてゲムシタビンの用量反応を決定する。これを行うために、ゲムシタビンの非存在下での実施例2の化合物の濃度についての平均cpmとして100%取り込みを設定し、取り込みなし(100%阻害)をcpm=0(1分当たりのカウントなし)として設定してcpmを正規化する。Prismにおけるデータのプロットについては、ゲムシタビンの濃度を対数値に変換し、非線形回帰によって用量反応曲線を適合させる。最上の適合も最下の適合も拘束されない。ECtfs値は0.3nMである。さらに、HT29結腸癌細胞にて3nMの実施例2の化合物は、ゲムシタビンのEC50を37nMから5nMに7倍低下させる。実施例2の化合物の作用はまた、増殖阻害の比率をゲムシタビンの52から併用の73に上昇させる。単独では、3nMの実施例2の化合物がHT29細胞の増殖にほとんど効果を有さない。
増殖培地(10%(v/v)熱非働化FBS(ギブコ(商標))、1×MEM非必須アミノ酸(ギブコ(商標))、1×ピルビン酸(ギブコ(商標))によって補完した、L−グルタミン(ギブコ(商標))を伴い、Earle’s塩(インビトロゲン)を伴ったMEM)でCalu−6細胞(ATCC)を培養し、増殖させる。細胞を回収し、リン酸緩衝生理食塩水で2回洗浄し、増殖培地(血清なし)中の1×106個の細胞を、等量のBDMatrigel(商標)マトリクス(BDバイオサイエンス、ニュージャージー州、フランクリン)と混合し、次いで事前に放射線照射した(4.5Gy)ヌードマウス(インディアナ州、インディアナポリスのHarlanからの無胸腺ヌード)の横腹に皮下注射する。移植後15日目に(腫瘍サイズ=150〜200mm3)、腹腔内経路にて150mg/kg用量にて生理食塩水で新鮮に調製したゲムシタビン(イリノイ州、レイクフォレストのHospira)を動物に毎日投与する。6時間後、モル比にてメタンスルホン酸/20%Captisol(カンザス州、オーバーランドパークのCYDEX)で調製された実施例2の化合物を静脈内経路にて用量を15mg/kg以下で変化させて動物に投与する。Chk1阻害剤投与の2時間後、動物を屠殺し、腫瘍を回収し、直ちに、ホスファターゼ阻害剤(シグマ)とプロテアーゼ阻害剤(ロシュダイアグノスティクス)を含有する氷冷した細胞抽出緩衝液(インビトロゲン、カタログ番号FNN0011)にて処理する。15秒間、高に設定されたモーター付きの組織ホモゲナイザー(Powergen700)を用いて、氷冷15mLポリプロピレン円錐管にて1.5〜2.0mLの溶解緩衝液中で腫瘍を処理する。試料を氷上の保持しながら、25ゲージの針を付けた1mLの注射筒を介して溶解物を4回引き出す。次に、0.15mLの4×ラムリ試料緩衝液(240mMのトリス−HCl、pH6.8、40%のグリセロール、0.05%のブロモフェノールブルー、8%w/vのSDS及び20%(v/v)のβ−メルカプトエタノール)を含有する1.5mLのポリプロピレン微量遠心管に0.35mLの腫瘍溶解物を移す。次いで、試料を混合し、95℃にて5分間加熱し、高出力Misonix3000プレートホルンソニケーターを用いて1分間超音波処理する。次いで、ウエスタンブロットによる標的阻害評価のために、試料を氷上で保存する、又は−80℃で保存する。残りの溶解物は、タンパク質濃度を決定する(BCA(商標)プロテインアッセイキット、サーモサイエンティフィック)のに用いる。試料緩衝液中の各腫瘍溶解物5μgをE−Page96ウエルゲル(インビトロゲン)に適用し、製造元の指示書に従って電気泳動に供する。当該技術でよく理解されている手順に従ってタンパク質をニトロセルロースProtranBA83膜(ワットマン)に移す[Towbinら,1979]。次いで膜を処理して、セリン296にて自己リン酸化されたChk1タンパク質を測定する。水、次いで10mMのトリス/HCl、pH8.0、150mMのNaCl及び0.05%(v/v)のツイーン20(TBST)で手短に膜をすすぎ、TBST/5%(v/v)の再構成されたCarnation(登録商標)即席ミルク中にて25℃で1時間浸す。次いでTBSTにて5分間、膜を4回洗浄する。次いで適当な希釈のウサギ抗ホスフォChk1(セリン296)(セルシグナリング)を伴ったTBST/5%(v/v)BSAにて4℃で16時間、膜を浸す。次に25℃にてTBSTで5分間、膜を4回洗浄し、次いで、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP;アマシャム)を結合したロバ抗ウサギIgGの適当な希釈物を含有するTBST/5%ミルクにて25℃で2時間、膜を浸し、ホスフォChk1(ser296)を検出する。25℃にてTBSTで5分間、膜を4回、再び洗浄する。製造元によって推奨されるように、Super Signal Western Femoto HRP−検出試薬(ピアース)によって、膜に固定化された抗原−抗体−リポーター抱合体が検出される。
Calu−6肺腫瘍及びHT29結腸腫瘍の異種移植有効性モデルを用いて、腫瘍の殺傷を達成するChk1阻害剤の能力を生体内で測定することができる。Calu−6肺癌細胞(ATCC)は、増殖培地(10%(v/v)熱非働化FBS(ギブコ(商標))、1×MEM非必須アミノ酸(ギブコ(商標))、1×ピルビン酸ナトリウム(ギブコ(商標))によって補完した、L−グルタミン(ギブコ(商標))を伴い、Earle’s塩(インビトロゲン)を伴ったMEM)で培養し、HT29結腸癌細胞(ATCC)は、増殖培地(10%FBS(ギブコ(商標))を補完したMcCoyの5A培地(ギブコ(商標))で培養し、増殖させる。細胞を回収し、リン酸緩衝生理食塩水で2回洗浄し、増殖培地(血清なし)中の5×106個の細胞(HT−29)又は1×106個の細胞(Calu−6)を等量のBDMatrigel(商標)マトリクス(BDバイオサイエンス、ニュージャージー州、フランクリン)と混合し、次いでヌードマウス(マサチューセッツ州、ウィルミントンのチャールズリバーラボからのCD−1nu/nu)の横腹に皮下注射する。移植(150〜200mm3)のおよそ16日後、ゲムシタビンを生理食塩水中で新鮮に調製し、腹腔内の経路にて60mg/kg用量で動物に毎日投与する。24時間後、モル比にてメタンスルホン酸/20%Captisol(カンザス州、オーバーランドパークのCYDEX)で調製された実施例2の化合物を静脈内経路にて動物に投与する。1日休んだ後、投与をさらに3サイクル(Chk1阻害剤の相殺によりQ3D×4+24時間)繰り返す。各投与群は9匹の動物から成る。治療の経過中、週に2回行う腫瘍体積の測定によって腫瘍の応答を判定する。腫瘍増殖の阻害(TGI)は、ビヒクル処理の対照群の平均腫瘍サイズからの化合物処理群の平均腫瘍サイズの%減少として算出される。単独で投与された及びゲムシタビンとの併用での実施例2の化合物は、HT−29及びCalu−6の腫瘍異種移植モデルの双方にて優れた用量依存性の抗腫瘍活性を示し、ゲムシタビン単独よりも6倍まで高い腫瘍増殖阻害を示す。
Calu−6肺異種移植有効性モデルを用いて、腫瘍の殺傷を達成するChk1阻害剤の能力を生体内で判定することができる。Calu−6肺癌細胞(ATCC)は上述のように培養する。細胞を回収し、リン酸緩衝生理食塩水で2回洗浄し、増殖培地(血清なし)中の1×106個の細胞(Calu−6)を等量のBDMatrigel(商標)マトリクス(BDバイオサイエンス、ニュージャージー州、フランクリン)と混合し、次いでヌードマウス(マサチューセッツ州、ウィルミントンのチャールズリバーラボからのCD−1nu/nu)の横腹に皮下注射する。移植(150〜200mm3)のおよそ16日後、実施例2の化合物を15mg/kg(皮下に(SC)1日2回(BID×5で2日休み)にて3サイクル投与する。治療の経過中、週に2回行う腫瘍体積の測定によって腫瘍の応答を判定する。5日間のBIDスケジュール(15mg/kg)で投与された実施例2の化合物は、前述のゲムシタビンに加えた実施例2の化合物の併用スケジュールよりも優れた増殖阻害を提供する。完全な腫瘍の退行は迅速であり、永続的である。
Chk1阻害剤の効能の手段の1つは、制御されない複製開始点の活性化による培養における癌細胞の増殖を阻害する能力である(Contiら,Cell Cycle 6:2760−2767,2007)。幅広い範囲の腫瘍種に由来する細胞株におけるChk1阻害剤の抗増殖活性の判定は、どの腫瘍種がChk1阻害剤による化学療法に臨床的に反応性であってもよいかを示している。以下に記載される細胞増殖アッセイはドイツ、Oncotest社で行われている。30の固形腫瘍細胞株は、13の異なった腫瘍の組織種に由来し、それぞれ1〜6の異なった細胞株によって表される(Oncotest社)。それらは、膀胱癌、脳腫瘍、結腸癌、胃癌、肝臓癌、肺癌、乳癌、卵巣癌、膵臓癌、腎臓癌及び子宮体癌、並びに黒色腫及び胸膜中皮種から樹立されている。細胞株はすべて、患者に由来する腫瘍異種移植からOncotestにて樹立されている(Rothら,1999)。供与者異種移植の起源はFiebigらによって記載されている(Fiebergら,1992および1999)。細胞株は慣例的に週1回又は2回継代し、20継代まで培養で維持される。細胞はすべて、10%(v/v)のウシ胎児血清(ドイツ、PAA、Colbe)と0.1mg/mLのゲンタマイシン(ドイツ、PAA、Colbe)で補完したRPMI1640培地(ドイツ、PAA、Colbe)にて5%CO2を伴った湿った雰囲気中37℃で増殖させる。改変されたヨウ化プロピジウムアッセイを用いてこれらの細胞株に対する化合物の細胞傷害性活性を評価する。手短には、トリプシン処理によって指数相培養から付着性細胞を回収し、計数し、細胞株に依存する細胞密度(4,000〜20,000細胞/ウエル)にて96穴平底マイクロタイタープレートに入れる。細胞が付着し、指数増殖を再開するのを可能にする24時間の回復期間の後、10μLの培養培地(6つの対照ウエル/プレート)又は実施例2の化合物を含有する培養培地を加える。DMSOにて1mMの濃度で実施例2の化合物のストック溶液を調製する。以下のように完全RPMI1640培養培地によってその後の希釈を行う:DMSOストック溶液を先ず1:22に希釈する(4.5%(v/v)のDMSOを含有する)。この溶液を用いて、細胞培養培地における連続希釈(1/2対数又は2倍)を作製する。最終の希釈工程(1:15)については、ウエル当たり10μLの各最終化合物溶液をウエル当たり140μLの培養培地に直接加える。最終的なDMSOの濃度は≦0.3%(v/v)である。実施例2の化合物を10ポイント濃度曲線での3つ組に適用し、処理を4日間継続する。4日間の処理の後、培養培地を取り除き、7μg/mLのPI水溶液200μLによって置き換える。生細胞の数を測定するには、凍結によって細胞に透過処理を行い、化合物による処理後、ウエルに付着したままだった細胞すべての死を生じる。最終的に、Cytofluor4000マイクロプレートリーダー(励起λ=530nm、放射λ=620nm)を用いてPIの蛍光を測定して全生細胞の数を決定する。増殖阻害は、試験/対照×100(%T/C)の値として表現される。T/C値に基づいて、反応(%T/C)に対する非線形回帰(log[阻害剤の濃度])を用いて相対的IC50値を決定する。実施例2の化合物は、20nMを下回るEC50にてこれら腫瘍細胞株の大半の増殖を阻害するということは、単剤として広い抗癌活性の可能性を示唆している。
調製1
5−イソチオシアナトピラジン−2−カルボニトリル
(tert−ブチル3−(2−アセチル−3−メトキシフェノキシ)プロピルカルバメート
5−(5−(2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリルギ酸塩
調製3
1−[2−メトキシ−6−(4−メトキシベンジルオキシ)フェニル]エタノン
1−(2−メトキシ−6−(4−メトキシベンジルオキシ)フェニル)−3,3−ビス(メチルチオ)プロパ−2−エン−1−オン
5−ブロモ−N−(5−(2−メトキシ−6−(4−メトキシベンジルオキシ)フェニル)−1H−ピラゾール−3−イル)ピラジン−2−アミン
2−(3−(5−ブロモピラジン−2−イルアミノ)−1H−ピラゾール−5−イル)−3−メトキシフェノール
tert−ブチル3−(2−(3−(5−ブロモピラジン−2−イルアミノ)−1H−ピラゾール−5−イル)−3−メトキシフェノキシ)プロピルカルバメート
tert−ブチル3−(2−(3−(5−シアノピラジン−2−イルアミノ)−1H−ピラゾール−5−イル)−3−メトキシフェノキシ)プロピルカルバメート
調製9
(E)−5−(3−(2−メトキシ−6−(4−メトキシベンジルオキシ)フェニル)−1−(メチルチオ)−3−オキソプロパ−1−エニルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリル
5−(5−(2−メトキシ−6−(4−メトキシベンジルオキシ)フェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリル
5−(5−(2−ヒドロキシ−6−メトキシフェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリル
tert−ブチル3−(2−(3−(5−シアノピラジン−2−イルアミノ)−1H−ピラゾール−5−イル)−3−メトキシフェノキシ)プロピルカルバメート
5−(5−(2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリル二塩化水素塩
5−(5−(2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリル
5−(5−(2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリルメタンスルホン酸塩
調製13
1−[2−メトキシ−6−(4−メトキシベンジルオキシ)フェニル]エタノン
1−(2−メトキシ−6−(4−メトキシベンジルオキシ)フェニル)−3,3−ビス(メチルチオ)プロパ−2−エン−1−オン
(E)−5−(3−(2−メトキシ−6−(4−メトキシベンジルオキシ)フェニル)−1−(メチルチオ)−3−オキソプロパ−1−エニルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリル
5−(5−(2−メトキシ−6−(4−メトキシベンジルオキシ)フェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリル
5−(5−(2−ヒドロキシ−6−メトキシフェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリル二塩化水素塩
tert−ブチル3−(2−(3−(5−シアノピラジン−2−イルアミノ)−1H−ピラゾール−5−イル)−3−メトキシフェノキシ)プロピルカルバメート
2−ピラジンカルボニトリル、5−[[5−[2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル]−1H−ピラゾール−3−イル]アミノ]モノメシレート一水和物(化学物質情報命名法)
2−ピラジンカルボニトリル、5−[[5−[2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル]−1H−ピラゾール−3−イル]アミノ]モノメシレート一水和物(化学物質情報命名法)
以下の手順を用いて、粗精製の2−ピラジンカルボニトリル、5−[[5−[2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル]−1H−ピラゾール−3−イル]アミノ]モノメシレート一水和物を精製する。1:1のアセトン/水の溶媒混合物(14.7L)にて技術等級の2−ピラジンカルボニトリル、5−[[5−[2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル]−1H−ピラゾール−3−イル]アミノ]モノメシレート一水和物(1221g、2.55モル)をスラリーにする。混合物を50〜55℃に温めることによって固形物を溶解する。溶液を50〜55℃にて0.22μのカートリッジフィルターを介して艶出濾過する。溶液をゆっくりと約42〜45℃の播種温度に冷却し、播種する。緩慢な冷却をさらに30〜60分間継続し、核生成を確認する。薄いスラリーを3時間かけて38℃から15℃に冷却する。真空蒸留を設定し、110〜90mmで20〜30℃にてアセトンを取り除く。混合物を30℃から15℃に14時間かけて冷却し、15℃で2時間保持し、次いで濾過する。再結晶化した物質を19:1の水/アセトン(2L)、次いで水(6L)ですすぎ、40℃の真空オーブンにて一定の重量まで乾燥させて1024g(83.9%)の標題の化合物を得る。mp222.6℃;ES/MS m/z 366.2[M+1]+。
特徴的なピーク位置と相対的な強度:
Claims (10)
- 5−(5−(2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリル、又は薬学的に許容可能なその塩若しくはその塩の溶媒和物である化合物。
- 5−(5−(2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリル、又は薬学的に許容可能なその塩である請求項1記載の化合物。
- 5−(5−(2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリルである請求項1記載の化合物。
- 5−(5−(2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリルギ酸塩又は5−(5−(2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリル二塩化水素塩である請求項1記載の化合物。
- 5−(5−(2−(3−アミノプロポキシ)−6−メトキシフェニル)−1H−ピラゾール−3−イルアミノ)ピラジン−2−カルボニトリルメタンスルホン酸塩である請求項1記載の化合物。
- 2θ±0.02=12.64、21.25及び26.15にてピークを有するX線粉末回折パターンを特徴とする結晶形態における請求項6記載の化合物。
- 請求項1〜7のいずれか1項の化合物又は塩を、薬学的に許容可能な担体、希釈剤又は賦形剤と組み合わせて含む医薬組成物。
- 請求項1〜7のいずれか1項の化合物又は塩を含む、癌を治療するための医薬組成物。
- 前記癌が、膀胱癌、結腸癌、胃癌、肝臓癌、肺癌、乳癌、黒色腫、卵巣癌、膵臓癌、中皮腫、腎臓癌及び子宮癌から成る群から選択される請求項9記載の医薬組成物。
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