JP5702092B2 - チョウザメ由来の新規な株化細胞 - Google Patents
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Description
ウィルス感染症の診断を行うためには、ウィルスが感染する魚類の当該ウィルスに感受性を有する株化細胞が必要不可欠である。魚類由来の株化細胞は、ニジマス卵巣由来の線維芽性株化細胞であるRTG−2細胞が樹立されて以来、数多くの株化細胞が報告されている。しかしながら、その多くはサケ科魚類やコイ科魚類などの限られた魚類から分離培養して樹立された線維芽性のものであり、また、上皮性のものは少ない。従って、種々の魚類において、そのウィルス感染症の診断やウィルス自体の分離などが必ずしも円滑に行えているとはいえないのが現状である。
ところで、チョウザメ(sturgeon)は、およそ3億年前から生存していた古代種であるが、その卵はキャビアとして珍重されているほか、その肉も食用として利用価値が高いことから、今後の養殖対象魚類として期待されている。このような状況下においては、チョウザメのウィルス感染症の診断を行うための株化細胞の樹立が必要となる。
本発明者らは、これらの事情のもとにこれまで精力的に研究を行い、その結果として、チョウザメの種類の1つであるベステルの眼球の虹彩色素上皮細胞から2種類の株化細胞、STIP−1細胞(FERM BP−8421)およびSTIP−3細胞(FERM BP−8422)の樹立に成功し、特許文献1において報告している。しかしながら、さらなる新規な株化細胞の探索と樹立は、チョウザメの養殖技術の確立のために大変意義深いことである。
(1)ベステル眼球からの虹彩色素上皮細胞の分離
体長約15cmのベステル30尾から眼球を摘出して70%エタノール中で殺菌処理した後、殺菌処理した眼球をペニシリンとストレプトマイシンを添加したPBS(−)中でよく洗浄した。その後、眼球から角膜とレンズを取り除いて虹彩を切り出した。こうして得られた虹彩を0.05%EDTAで約40分間処理し、虹彩色素上皮細胞と、虹彩のストローマや強膜などの結合組織との分離を容易にした後、これらの結合組織を取り除き、分離したシート状の虹彩色素上皮細胞を0.125%トリプシンで酵素処理してシングルセル状態の細胞(初代細胞)を得た。
上記のようにして得られた初代細胞を、直径3.5cmプラスチックディシュ(培養皿)に加えた、Leibovit’s L15培地(Gibco社製)に10%FBS(Gibco社製の牛胎児血清)とペニシリン(10unit/ml)とストレプトマイシン(50μg/ml)を添加した培地を用い、20℃のCO2インキュベータ内(但し大気雰囲気)で培養した。初代細胞の中から増殖性の優れた細胞を選択し、継代培養を繰り返した。
培養皿が細胞で集密的(confluent)な状態になったら、0.05%EDTAと0.125%トリプシンを含有する溶液で細胞を培養皿から剥離し遠心分離により細胞を回収し、別の培養皿に移し、上記の初代培養の培養条件で培養を継続した。これを繰り返すことによって、長期間培養可能な株化細胞としてSTIP−2細胞を得た。このSTIP−2細胞は、継代培養の際、コラーゲンなどの細胞外基質を培養皿底面にコーティングするといったような添加をしなくても培養皿に着定した。なお、このSTIP−2細胞は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに2010年8月9日に寄託されている(FERM BP−11274)。この特許出願の時点において、STIP−2細胞の継代培養回数は300回を超えている。
(1)細胞の形態
STIP−2細胞は典型的な敷石状の上皮性の細胞である(図1参照:培養開始後16日目の顕微鏡写真。スケールバーは50μm)。
図2に示したように、STIP−2細胞は15℃〜25℃で良好な増殖性を示したが、25℃を超えるとその増殖性は阻害された。20℃での培養開始後19日目における細胞の倍化時間(指数関数的に細胞が増殖する時間)は約80時間であり、培養皿への細胞の定着効率(培養皿に定着した細胞数を細胞皿に添加した全細胞数で割った値を百分率で表したもの)は約88%であった。
図3に示したように、STIP−2細胞を増殖せしめるために必要なL15培地に添加されるFBSの濃度は4%で足りた(FBS濃度以外は上記の初代培養の培養条件と同じ)。よって、STIP−2細胞を増殖せしめるために必要なFBSは少量であることから、STIP−2細胞の大量培養は経済的に有利であることがわかった。
STIP−2細胞の染色体数を、継代培養200回以上の細胞について、培養6日目の対数増殖期の細胞にコルヒチン処理を行う常法にて調べた。具体的には、細胞に最終濃度が0.20μg/mlになるようにコルヒチンを加え、18時間培養した後に培地を取り除いてから細胞をPBS(−)で洗浄した。次に、0.05%EDTAと0.125%トリプシンを含有する溶液で細胞を培養皿から剥離し遠心分離により細胞を回収した。こうして回収した細胞に0.075MのKClを添加して室温にて20分間静置して低張処理を行った。低張処理した細胞懸濁液はカルノア液を用いて20分間氷中で固定した後、フレームドライ法によって染色体標本とした。これをギムザ染色し、顕微鏡(倍率1000倍)で染色体を計数した。その結果、STIP−2細胞の染色体数は196.5±1.7本でモードは199本であった。この染色体数はベステルの染色体数である117本の約1.7倍であり、株化細胞の特徴を示すものであった(図4参照)。染色体の核型分析によれば、マイクロクロモゾームが最も多く、全体の約53%を占めていた。
上記の初代培養の培養条件と同じ培養条件でSTIP−2細胞の培養を行い、培養皿が細胞で集密的な状態になってからもさらに培養を行うと、培養上清に高い粘度を有する透明の物質の蓄積が観察された。この現象は、先に樹立したSTIP−1細胞およびSTIP−3細胞では見られない、STIP−2細胞に特異的なものであった。そこでこの物質の分析を以下の方法で行った。
STIP−2細胞を培養皿が細胞で集密的な状態になってからさらに3〜4日培養した後の培養上清1mlをスポイトで吸い取り、3mlのエタノールを添加して4℃で2時間静置した後、10000xgで5分間遠心分離し、得られた沈殿を回収した。この沈殿を1mlの2M尿素/0.1Mトリス塩酸緩衝液(pH8.6)に溶解し、100μgのトリプシンを添加して37℃で一晩反応させ、タンパク質の分解処理を行った後、分子量が100kDa未満の画分をカットオフするフィルターで分子量が100kDa以上の画分を50μlまで濃縮した。得られた濃縮液を還元アルキル化処理した後、分子マトリックス電気泳動法(SMME:必要であればY.Matsuno,et al.,Anal.Chem.,2009,81(10),pp3816−3823を参照のこと)を用いて分析した。結果を図5に示す(Alcian blue染色による)。図5左の電気泳動写真から、STIP−2細胞の培養上清には培地には含まれない分子量が100kDa以上の物質が含まれていることがわかった。そこで10μlの上記の濃縮液に1μlの0.2M酢酸緩衝液(pH6.0)を添加し、さらに、ヒアルロニダーゼの1mg/ml水溶液(Streptmyces hyalurolyticus由来)を1μl添加し、60℃で一晩反応させた後、反応液を分子マトリックス電気泳動法を用いて分析したところ、図5右の電気泳動写真から明らかなように、ヒアルロニダーゼ処理を行う前に存在したスポット(Control)がヒアルロニダーゼ処理によって消失した。以上の結果から、STIP−2細胞の培養上清に含まれる高い粘度を有する透明の物質は、100kDa以上の分子量を有するヒアルロン酸であること、STIP−2細胞はヒアルロン酸産生能を有し、培養上清にヒアルロン酸を分泌することがわかった。
Claims (1)
- チョウザメの種類の1つであるベステルの眼球の虹彩色素上皮細胞由来の株化細胞であって、培養することで細胞が集密的な状態になってからもさらに培養することで培養上清にヒアルロン酸を分泌するSTIP−2細胞(FERM BP−11274)。
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