JP5597904B2 - 多能性幹細胞からの血液細胞分化に関する培養方法 - Google Patents
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Description
最近では、ドナーからの提供に依存せずに、ES細胞やiPS細胞などの多能性幹細胞から、生体外において、各血液細胞を調製する試みもさかんに行われるようになり、その実用化に注目が集まっている。例えば、Takayamaらは、ヒトES細胞から血小板を産生することに成功したことを報告している(特許文献1及び非特許文献1)。また、同様にiPS細胞からも血小板の調製が可能なことも開示されている(特許文献2)。
そこで、本発明は、上記事情に鑑み、より大量かつ安定的なインビトロにおける血液細胞の調製法の確立を目指し、血液前駆細胞への新規な分化誘導方法の提供、並びに、該方法で製造される血液前駆細胞及び該血液前駆細胞から分化誘導される各種血液細胞の提供を目的とする。
すなわち、本発明は以下の(1)〜(16)に関する。
(1)血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞へ分化し得る細胞を酸素分圧が上昇する環境において細胞培養する工程を含む、血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
(2)前記酸素分圧が上昇する環境が、低酸素分圧下において細胞培養する工程を含む環境である、上記(1)に記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
(3)前記低酸素分圧が0.1〜10%である上記(2)に記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
(4)前記低酸素分圧が、該分圧下で培養を行った場合、他の分圧下での培養と比較して低酸素応答性の遺伝子が発現する酸素分圧であることを特徴とする、上記(2)又は(3)に記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
(5)前記低酸素分圧において細胞培養開始から一定期間細胞培養を行った後、より高い酸素分圧下でさらに細胞培養を行う上記(2)乃至(4)のいずれかに記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
(6)前記一定期間が、4〜10日間である上記(5)に記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
(7)前期一定期間が、KDR陽性、CD34陽性、CD43陽性を示す細胞が出現するまでである上記(5)又は(6)に記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
(8)前記より高い酸素分圧下に変える時期が、中内胚葉誘導の指標となる遺伝子が発現する時期、血液前駆細胞誘導の指標となる遺伝子の発現が開始される時期、分化増殖性サイトカインの指標となる遺伝子の発現が開始される時期、又は、血液細胞誘導の指標となる遺伝子の発現が開始される時期であることを特徴とする上記(5)乃至(7)のいずれかに記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
(9)前記より高い酸素分圧が、酸素分圧11〜30%である上記(5)乃至(8)のいずれかに記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
(10)前記血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞へ分化し得る細胞が、多能性幹細胞である上記(1)乃至(9)のいずれかに記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
(11)前記血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞がネット様構造又は胚様体から取得されることを特徴とする上記(1)乃至(10)のいずれかに記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
(12)前記細胞培養を行う培地中にVEGFを添加しないことを特徴とする上記(1)乃至(11)のいずれかに記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
(13)上記(1)乃至(12)のいずれかに記載の方法で製造される血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞。
(14)上記(13)に記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞をさらに培養して製造される血液細胞。
(15)上記(14)に記載の血液細胞を含む医薬製剤。
(16)上記(1)に記載の製造方法を使用することを特徴とする血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞への分化を促進又は阻害する物質のスクリーニング方法。
また、本発明の他の実施形態は、血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞へ分化し得る細胞を低酸素分圧下において細胞培養する工程を含む、血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞への分化方法、あるいは、血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞へ分化し得る細胞を低酸素分圧下において細胞培養する工程を含む、血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法である。
ここで、「血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞へ分化し得る細胞」とは、特に限定するものではなく、例えば、多能性幹細胞(ES細胞、iPS細胞など)、あるいは、多能性幹細胞と血液前駆細胞の間の分化段階にある細胞であればいずれの細胞であってもよく、好ましくは、ES細胞又はiPS細胞である。
ES細胞又はiPS細胞からネット様構造物が形成される培養条件とは、用いるES細胞又はiPS細胞によって異なるが、例えば、培地としては、最終濃度15%のFBSを添加したIMDMを用い、その他無血清の場合においても適宜増殖因子およびサプリメント等を加えたものを使用することができる。なお、従来法では、ネット様構造物を効率的に形成させるために、VEGF(0〜100ng/ml、より好ましくは、20ng/ml程度)を加えて培養を行っているが、本発明で開示されるように低酸素環境下での培養を行う場合には、VEGFを添加しなくても、VEGFを添加した場合と同等の効果を得ることができる。酸素分圧以外の培養の環境としては、用いるES細胞又はiPS細胞の種類によって異なるが、例えば、5% CO2、36〜38℃、好ましくは37℃の条件を用いることができる。ネット様構造物が形成されるまでの培養期間は、ES細胞又はiPS細胞の種類によって異なるが、フィーダー細胞上に播いてから、14〜16日間程度である。形成されたネット様構造物は、濾胞状構造になっており、内部には、血液前駆細胞及び赤血球前駆細胞が濃縮された状態で存在している。ネット様構造物の内部に存在する血液前駆細胞及び赤血球前駆細胞は、物理的な手段、例えば、滅菌済みの篩状器具(例えば、セルストレイナーなど)に通すことにより、分離することができる。このようにして得られる血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞は、さらに培養して、各種血液細胞へ分化させることができる。
本発明における「低酸素分圧」とは、例えば、酸素分圧0.1%〜10%、好ましくは、1%〜5%、より好ましくは5%程度のことである。あるいは、低酸素応答性の遺伝子が発現する酸素分圧を「低酸素分圧」として選択してもよい。ここで、低酸素応答性遺伝子とは、例えば、HIF2α、HIF1α、HIF3α、HIF1β、GLUT−1、p21、p57、FoxO、Notch1、VEGF、ABCG2/Bcrp−1、CXCR4、PDK−1、c−Kitなどが挙げられる。
前述の中内胚葉誘導の指標となる遺伝子とは、T、SOX−17、GATA−4、HNF−3β、GSC、Cer1、Nodal、FGF8、Mixl1、FGF4 CD48、DKK4、FGF17、GATA−6、CXCR4、c−Kit、CD99、OTX2、Nodalなどが挙げられる。前述の血液前駆細胞誘導の指標となる遺伝子とは、TAL−1、KDR、CD34、CXCR4、c−Kit、RUNX−1、GATA−1、GATA−2、CD43、ETV−2、Tie−2、CD31、CLOUDIN5、Sca−1などが挙げられる。前述の分化増殖性サイトカインの指標となる遺伝子とは、VEGF、EPOR、EPO、TPO、BMP4、FGF−2、FLT−1、Ang−1、SDF−1、SCFなどが挙げられる。前述の血液細胞誘導の指標となる遺伝子とは、CD41、Glycophorin−A、c−MPL、Rh抗原、α4インテグリン、KLF−1、BCL−11A、CD45、β−Globin、α−Globin、ε−Globin、γ−Globinなどが挙げられる。
血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞から様々な血液細胞を分化誘導する方法は、当該技術分野において、多くの方法が公知になっており(例えば、Miharadaら,Nat Biotechnol 2006,24:1255−1256;Qiuら,Blood 2008,111:2400−2408;Maら,PNAS 2008,105:13087−13092;Luら,Blood 2008,112:4475−4484;Baekら,Transfusion 2009,11:2285―2295;Lapillonneら,haematologica 2010,doi:10.3324)、当業者であれば容易に選択し、実施することができる。
例えば、本発明の方法により製造された血液前駆細胞から、成熟巨核球細胞、さらに、血小板を製造する場合、その培養条件として、TPO、IL−1α、IL−3、IL−4、IL−5、IL−6、IL−9、IL−11、EPO、GM−CSF、SCF、G−CSF、Flt3リガンド、Heparinなどのいずれか又はこれらのうちの2つ以上を組合せて添加した条件を挙げることができる。より具体的に、成熟巨核球細胞及び血小板を分化誘導する条件として、例えば、TPO(10〜200ng/mL、好ましくは100ng/mL程度)の存在下で、あるいは、TPO(10〜200ng/mL、好ましくは100ng/mL程度)、SCF(10〜200ng/mL、好ましくは50ng/mL程度)及びHeparin(10〜100U/mL、好ましくは25U/ml程度)の存在下で、7〜15日間程度培養する条件を例示することができる。培養環境としては、インビトロで血球系細胞の分化誘導を行うにあたり適した環境であればよいが、例えば、5% CO2、36〜38℃、好ましくは37℃の条件下で培養を実施してもよい。
ACD−A液:FFP(fresh frozen plasma;献血で得られた全血液から調整したもの、アルブミン、凝固因子など血液成分以外のものをすべて含む)を1:10の比率で調整し、15−50Gyの放射線照射後に20−24℃にて振とうしながら保存する。ACD−A液;クエン酸ナトリウム22g/クエン酸8g/ブドウ糖22gを注射用水で全体を1Lとするように調整する。
以上の方法を使用する場合、血小板の濃度としては、例えば、1×109血小板/mL程度が望ましい。
また、GM6001(a broad−range hydroxamic acid−based metalloprotease inhibitor)(Calbiochem社、La Jolla,CA,USA)を添加しておくと、冷凍保存および室温保存中に起きる血小板機能分子GPIb−V−IXやGPVIの切断に伴う不活化を予防できる。本発明者らは、この方法により、マウスES細胞由来血小板に関し不活性化の予防が可能であることを確認している。なお、ヒト血小板を使用したこの血小板不活性化に関する機序の参考論文として、Bergmeier,W et al.,Cir Res 95:677−683,2004及び Gardiner,EE et al.,J Thrombosis and Haemostasis,5:1530−1537,2007を参照のこと。
なお、血小板を含む製剤を収納する容器は、ガラスのように血小板を活性化する材質のものを避けるのが好ましい。
培養上清を遠心後濃縮した濃厚赤血球液にMAP液(組成は以下参照)を加えて調製し、15−50Gyの放射線照射後に2〜6℃で保存する。
以上の方法を使用する場合、赤血球の濃度としては、例えば、1×1010赤血球/mL程度が望ましい。取得した赤血球は、赤血球保存用添加液 (MAP液)として、例えば、D−マンニトール(14.57g)、アデニン(0.14g)、結晶リン酸二水素ナトリウム(0.94g)、クエン酸ナトリム(1.50g)、クエン酸(0.20g)、ブドウ糖(7.21g)、塩化ナトリム(4.97g)を、注射用水を加えて溶かし、全量を1000mlとしたものを使用することができる。
その他、赤血球の製剤化に適当と思われる公知の方法を適宜選択することは、当業者において容易なことである。
1.細胞と試薬
ヒトiPS細胞は、山中4因子(OCT3/4、KLF4、SOX2、c−MYC)の導入によって樹立したTkCB7−2、TkCB7−4、TkCB8−3を用いた。iPS細胞の維持培養は、Dulbecco modified Eagle medium and Ham F−12 medium(SIGMA)に、0.1mM 非必須アミノ酸(Invitrogen)、2mM L−グルタミン(Invitrogen)、20% knockout serum replacement(Invitrogen)、0.1mM 2−メルカプトエタノール(SIGMA)、及び5ng/mL 塩基性線維芽細胞増殖因子(bFGF;Upstate)を加えた培地を使用した。iPS細胞は、放射線照射(50Gy)したマウス胎児線維芽細胞(MEF)上にて培養し、3日おきに継代して未分化状態を維持した。また、フィーダー細胞として使用したマウスC3H10T1/2細胞は、Eagle basal medium (Invitrogen)に、10% ウシ胎児血清(FBS)、2mM L−グルタミンを加えて培養した。
分化培地は、Iscove modified Dulbecco medium(SIGMA)に、10μg/mL ヒトインスリン、5.5μg/mL ヒトトランスフェリン、5ng/mL 亜セレン酸ナトリウム(SIGMA)、2mM L−グルタミン、0.45mM α−モノチオグリセロール(SIGMA)、50μg/mL アスコルビン酸(SIGMA)、及び15% highly filtered FBS (Cellect Gold; ICN Biomedicals)を加えて使用し、これに、ヒト血管内皮細胞増殖因子(R&D Systems)を添加、又は、未添加で行った。
以上の培養はCO2インキュベーターHERA CELL 150i(Thermo SCIENTIFIC)を用いて37℃、5% CO2下で実施した。
また、ES細胞については、KhES3株を用い、iPS細胞と同じ条件で、維持培養及び分化等を行った。
本実施例において行ったネット様構造物を調製するための培養工程について以下に説明する(詳細は、TAKAYAMAら,BLOOD 2008,111:5298−5306を参照のこと)。
事前に、50Gyの放射線照射を行ったC3H10T1/2を100−mmディッシュに用意し、ヒトiPS細胞又はES細胞を1×105ずつ分化培地にて播種した。窒素ガスを注入して酸素濃度を大気酸素(21% O2)と低酸素(5%又は1% O2)としたCO2インキュベーター内で、1〜14日の間で適宜期間を設定し培養を行った。低酸素で培養した細胞は、その後大気酸素条件へ移すか、そのまま培養を続け、計14日間の培養を行い、iPS−Sac又はES−Sacを作製した。
iPS−Sac又はES−Sacをディッシュから剥がして破砕し、3% FBSを含むPBSに懸濁した後、40μmセルストレイナー(BD)を通過させた。通過した溶液を440×g、10分間遠心分離して血液細胞を回収し、細胞数をカウントした。
細胞表面抗原の発現は、フローサイトメトリー(MoFlo,Beckman Coulter)で解析した。細胞は、phycoerythrin(PE)結合−抗CD34抗体、phycoerythrin(PE)結合−抗CD42b抗体、Alexa405結合−抗CD45抗体、allophycocyanin(APC)結合−抗glycophorin(グリコフォリン)A抗体、allophycocyanin(APC)結合−抗CD41a抗体(BD Biosciences)を用いて染色した。
iPS−Sac又はES−Sacから回収したHPC、5−10×103を50ng/ml トロンボポイエチン(R&D systems)を添加したMetho Cult GF H4434(Stem Cell Technologies)に懸濁した後、35mmディッシュへ播種した。CO2インキュベーター内で13−14日間培養し、生じたコロニーをピックアップした。コロニーは、シャンドン サイトスピン 4(Thermo SCIENTIFIC)にて800rpm、1分間遠心し、Hemacolor Rapid staining of blood smear (MERCK)によって染色して観察した。
iPS−Sac又はES−Sacから回収したHPCを成熟赤血球へと分化させ、シャンドン サイトスピン4にて遠心してスライドグラスへ貼り付けた。これを4%パラホルムアルデヒドで固定後、0.1% TritonX−100で透過処理してから、スキムミルクでブロッキングを行った。一次抗体として、抗ヒトヘモグロビン抗体(Bethyl Laboratories)、抗ヒトβグロビン抗体(Santa Cruz Biotechnology)と赤血球を反応させ、二次抗体として、Alexa488結合−抗ヤギ抗体及びAlexa546結合−抗マウス抗体(Invitrogen)で染色した。VECTASHIELD Mounting Medium with DAPI(Vector Laboratories)で封入して、共焦点顕微鏡FV1000(オリンパス)で観察した。βグロビン鎖陽性細胞率は、(βグロビン鎖陽性細胞数/ヘモグロビン陽性細胞数)×100で算出した。
iPS−Sac又はES−SacをRNeasy Mini Kit(QIAGEN)を用いて処理し、Total RNAを精製した。RNAを逆転写してcDNAを合成し、Roche Universal Probe(Roche Applied Science)を用いて7900HT Fast Real−Time PCR System(Applied Biosystems)で解析した。内部標準遺伝子として、glyceraldehyde−3−phosphate dehydrogenase(GAPDH)を使用した。
T、TAL−1、KDR、CD34、VEGF、EPOR、CD41a、Glycophorin−A、HIF2α、GAPDHの各遺伝子のプライマー配列は、下記の通りである。
T:forward; gctgtgacaggtacccaacc(配列番号1)
T:reverse; catgcaggtgagttgtcagaa(配列番号2)
TAL-1:forward; ctatgagatggagattactgatggtc(配列番号3)
TAL-1:reverse; gtgtggggatcagcttgc(配列番号4)
KDR:forward; gaacatttgggaaatctcttgc(配列番号5)
KDR:reverse; cggaagaacaatgtagtctttgc(配列番号6)
CD34:forward; gtgaaattgactcagggcatc(配列番号7)
CD34:reverse; cccctgtccttcttaaactcc(配列番号8)
VEGF:forward; ccttgctgctctacctccac(配列番号9)
VEGF:reverse; ccacttcgtgatgattctgc(配列番号10)
EPOR:forward; ttggaggacttggtgtgtttc(配列番号11)
EPOR:reverse; agcttccatggctcatcct(配列番号12)
CD41a:forward; gagacacccatgtgcagga(配列番号13)
CD41a:reverse; agctggggcacacatacg(配列番号14)
Glycophorin-A:forward; gacacatatgcagccactcct(配列番号15)
Glycophorin-A:reverse; atgatgggcaagttgtaccc(配列番号16)
HIF2α:forward; gacatgaagttcacctactgtgatg(配列番号17)
HIF2α:reverse; gcgcatggtagaattcatagg(配列番号18)
GAPDH: forward; aacagcctcaagatcatcagc(配列番号19)
GAPDH: reverse; ttggcaggtttttctagacgg(配列番号20)
1.血液細胞への分化に対する低酸素培養の効果
iPS細胞(TkCB7−4)を分化培地に播種した後、14日間大気酸素分圧下(21%)で培養した場合(図1(1))、7日間低酸素分圧下(5%)で培養後、7日間大気酸素分圧下(21%)で培養した場合(図1(2))、14日間低酸素分圧下(5%)で培養した場合(図1(3))の各々について、iPS−Sac内に生じた血液細胞の数をカウントした。その結果、7日間の低酸素分圧下での培養を行った後、7日間の大気酸素分圧下で培養した場合に、生じた血液細胞の数が最も多かった(図1(2))。この結果から、iPS細胞を低酸素分圧下で培養を開始し、一定期間低酸素分圧下で培養することで、形成される血球数を増加できることが分かった。
HPCへの分化に対する低酸素培養の効果について検討を行った。ヒトiPS細胞を、大気酸素分圧下(21%)で14日間(図2(1))、低酸素分圧下(5%)で7日間培養後、大気酸素分圧下(21%)で7日間(図2(2))、低酸素分圧下(5%)で14日間培養(図2(3))し、各々、iPS−Sac内に生じた細胞について、血液前駆細胞のマーカーであるCD34及びCD45が共に陽性の細胞の比率をフローサイトメトリーにより測定した。その結果、血液前駆細胞の比率は、一定期間低酸素分圧下での培養することで、向上することが分かった(図2(2))(図2(3))。
iPS細胞(TkCB7−2)により形成されたiPS−Sacより回収した血液細胞を、1×104播種し、培養後に生じたコロニー数をカウントし、各コロニー中に存在する血液細胞の種類(n(好中球)、m(マクロファージ)、E(赤芽球)、M(巨核球)、blast(幼若血球))を観察した。その結果、低酸素分圧下(5%)で7日間培養後、大気酸素分圧下(21%)で7日間(図3(2))培養した場合、大気酸素分圧下(21%)で14日間(図2(1))培養した場合に比べて、形成されるコロニー数が増加していた。さらに、4種類の血液細胞の全てが含まれるミックスコロニー(mix)は、造血幹細胞/血液前駆細胞を含むことの指標となるものであるが、このミックスコロニーも低酸素分圧下での培養を行った場合の方が多く形成された(図3;大気酸素分圧下での培養では18個であったのに対し、低酸素分圧下での培養を行うと34個であった。)。
以上のことから、iPS細胞又はES細胞などの多能性幹細胞から血液前駆細胞を分化させる場合、低酸素分圧下における培養過程を含めることで、生じる血液前駆細胞の数を増加できることが明かとなった。
赤血球前駆細胞への分化に対する低酸素培養の効果について検討を行った。ヒトiPS細胞を、大気酸素分圧下(21%)で14日間(図5(1))、低酸素分圧下(5%)で7日間培養後、大気酸素分圧下(21%)で7日間(図5(2))、低酸素分圧下(5%)で14日間培養(図5(3))し、各々、iPS−Sac内に生じた細胞について、赤血球前駆細胞のマーカーであるGPA陽性かつCD45陰性の細胞の比率をフローサイトメトリーにより測定した。その結果、赤血球前駆細胞の比率は、7日間の低酸素分圧下での培養を行った後、7日間の大気酸素分圧下で培養した場合に、最も大きくなることが分かった(図5(2))。
このように、多能性幹細胞から赤血球系細胞の分化させる場合においても、低酸素分圧下における培養が効果的であることが示された。
酸素分圧を5%(7日間培養)から21%(7日間培養)へ切り替えて作製したHPCを成熟赤血球、巨核球、血小板へと分化させ、培養酸素分圧の最適化による末梢血液細胞の増幅効果を確認した。
その結果、1×105 ES細胞(KhES−3)あたり得られる成熟赤血球数は、21%酸素分圧を用いて作製した場合と比べて約2.2倍となり(図6A)、iPS細胞(TkCB7−2)では約5倍となった(図6B)。さらに巨核球/血小板分化では、1×105 iPS細胞あたり得られる巨核球数は約4.4倍であり(図6C)、血小板数は2.8倍に増加した(図6D)。以上のことから、本技術は、各種血液細胞を多能性幹細胞から作製する際に有効であることが示された。
酸素分圧を5%(7日間培養)から21%(7日間培養)へ切り替えて作製したHPCを成熟赤血球へと分化させ、赤血球成熟度の指標となるβグロビン鎖陽性細胞率を測定した。
その結果、ES細胞(KhES−3)では、21%酸素分圧を用いて作製したHPCを分化させて得られた赤血球のβグロビン鎖陽性細胞率は19.5%であるが(図7A(1))、5%酸素分圧から21%酸素分圧への切り替えを用いて作製したHPCを分化させて得た赤血球のβグロビン鎖陽性細胞率は37.3%であり(図7A(2))、赤血球成熟度が向上していた。同様にiPS細胞(TkCB7−2)では、21%酸素分圧を用いて作製したHPCを分化させて得られた赤血球のβグロビン鎖陽性細胞率は31.3%であるが(図7B(1))、5%酸素分圧から21%酸素分圧への切り替えを用いて作製したHPCを分化させて得た赤血球のβグロビン鎖陽性細胞率は51.2%であった(図7B(2))。
以上のことから、本技術を用いることで、成熟度の高い末梢血液細胞を作製することが可能であると分かった。
多能性幹細胞からネット様構造体を経て、血液細胞を効率よく分化させるには、VEGFを添加することが望ましい。そこで、血液細胞を効率よく分化させVEGFの効果を、低酸素培養により代替することができるか検討を行った。
iPS細胞(TkCB7−4)を、VEGF存在下で14日間大気酸素分圧下(21%)にて培養した場合(図8A(1))、VEGF非存在下で、7日間低酸素分圧下(5%)で培養後、7日間大気酸素分圧下(21%)で培養した場合(図8A(2))について、iPS−Sac内に生じた血液細胞の数をカウントした。その結果、VEGFを添加せずに低酸素分圧下において培養した場合の方が、若干多く血液細胞が生じていた。
次に、iPS−Sac内に生じた細胞について、血液前駆細胞のマーカーであるCD34及びCD45が共に陽性の細胞の比率をフローサイトメトリーにより測定した結果、血液前駆細胞の比率は、VEGFを添加せずに低酸素分圧下において培養した場合の方がやや大きかった(図8B)。
さらに、低酸素培養のVEGF代替性について、コロニーアッセイにより検討を行った。iPS細胞(TkCB7−4(図9A)及びTkCB8−3(図9B))より回収した血液細胞を、5×103(TkCB7−4(図9A))又は1×104(TkCB8−3(図9B))播種し、コロニーアッセイを行った。その結果、VEGF非存在下にて低酸素分圧下(5%)で7日間培養後、大気酸素分圧下(21%)で7日間培養した場合(図9A(2)及びB(2))の方が、VEGF存在下において大気酸素分圧下(21%)で培養した場合(図9A(1)及びB(1))よりも、形成されるコロニー数が増加し、また、ミックスコロニーの数も増加していた。
さらに、VEGF存在下において、ES細胞を酸素分圧を5%から21%へ切り替えて得られた血液細胞は、VEGF非存在下の場合と比べて、形成されるコロニー数が多くなる傾向が認められた(図9C)。
以上のことから、低酸素培養は、VEGFの効果を代替するとともに、さらにVEGFとの組み合わせによっても血液前駆細胞数を増加させ、血液分化能力の高い血液前駆細胞を生み出す事が示された。
VEGF非存在下において、低酸素分圧下(5%)で7日間培養後、大気酸素分圧下(21%)で7日間培養した場合(図10(1))と、より低い低酸素分圧下(1%)で7日間培養後、大気酸素分圧下(21%)で7日間培養した場合(図10(2))において、同数のES細胞から形成される血球コロニー数を比較した。その結果、5%酸素分圧下で培養した場合の方が、血球コロニー数は多く形成され、血液前駆細胞が多数得ることができた。
そこで、次に、1%低酸素分圧下において生じる血液前駆細胞の血液細胞への分化能力について、生じるミックスコロニーの数を指標に検討した。VEGF存在下において大気酸素分圧下(21%)で14日間培養した場合(図11(1))、VEGF非存在下において低酸素分圧下(5%)で7日間培養後、大気酸素分圧下(21%)で7日間培養した場合(図11(2))、さらに、VEGF非存在下において低酸素分圧下(1%)で7日間培養後、大気酸素分圧下(21%)で7日間培養した場合(図11(3))において、CD34+細胞を各々から同数回収し、コロニーアッセイを行った。その結果、1%酸素分圧下で培養を開始した場合に、コロニー数が最も多く得られ、ミックスコロニーの数も一番多く出現していた(全期間の大気酸素分圧下で培養した場合の約5倍、5%酸素分圧下で培養を開始した場合の約2.6倍)。この結果から、より低い酸素分圧下(例えば、1%程度)で細胞培養を開始すると、血液細胞への分化能のより高い血液前駆細胞を作製することができる。
ES細胞(KhES3株)を、低酸素分圧下(5%(図12A)又は1%(図12B))で4日間、7日間、10日間培養後、残りの期間を大気酸素分圧下で培養したもの、全期間(14日間)を低酸素分圧下で培養したもの、全期間(14日間)を大気酸素分圧下で培養したもの、各々について培養後に生じた血球数をカウントした。その結果、低酸素分圧下における培養期間が7日間の場合に生じる血球数は最も多く、さらに低酸素分圧下における培養期間を長くすると、血球の形成効率は低下することが分かった(図12A及びBのL7)。従って、低酸素分圧下での培養7日目頃に大気酸素分圧下での培養に切り替えると最も効率よく血液細胞を分化させることができ、長くても、低酸素分圧下の培養10日間程度で、大気酸素分圧下での培養に切り替えることが望ましいといえる。
ES細胞(KhES−3)を14日間低酸素分圧下(5%)で培養した場合(5%L14)と、7日間低酸素分圧下(5%)で培養後、大気酸素分圧下(21%)で培養した場合(5%L7)の遺伝子発現変化をリアルタイムPCRにて分析した。
5%L14と比べて、5%L7は、培養8日目に中内胚葉誘導の指標となる遺伝子(例えば、T)(図13)の発現が増加していた。その後T遺伝子の発現は、酸素分圧にかかわらず培養8日目以降徐々に低下していた。
また、培養8日目以降には血液前駆細胞誘導の指標となる遺伝子(例えば、TAL−1(図14A)、KDR(図14B)、CD34(図14C))、サイトカインの指標となる遺伝子(例えば、VEGF(図15A)、EPOR(図15B))、及び血液細胞誘導の指標となる遺伝子(例えば、CD41a(図16A)、Glycophorin−A(図16B))の発現が増加していた。これら遺伝子の発現は、その後培養14日目まで増加を続け、一貫して5%L7が高い発現傾向を示していた。
また、酸素分圧を変化させる前の培養7日目において、大気酸素(21%N)と低酸素(5%L7)を比較した結果、低酸素応答性の遺伝子(例えば、HIF2α)の発現が上昇していた(図17)。
以上の結果より、これらの遺伝子の発現は酸素分圧に伴って変化し、酸素分圧の切り替え時期や、使用する酸素分圧を決める際の指標とすることができると分かった。
Claims (8)
- 血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞へ分化し得る細胞を、酸素分圧が0.1%〜10%である環境においてKDR陽性を示す細胞が出現するまで培養を行った後、より高い酸素分圧下でさらに培養を行う工程を含む、血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
- 血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞へ分化し得る細胞を、該細胞の培養を行う培地中にVEGFを添加しない条件下で、酸素分圧が0.1%〜10%である環境において4〜10日間培養を行った後、より高い酸素分圧下でさらに培養を行う工程を含む、血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
- 血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞へ分化し得る細胞を、該細胞の培養を行う培地中にVEGFを添加しない条件下で、酸素分圧が0.1%〜10%である環境において、KDR陽性、CD34陽性又はCD43陽性を示す細胞が出現するまで培養を行った後、より高い酸素分圧下でさらに培養を行う工程を含む、血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
- 血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞へ分化し得る細胞を、該細胞の培養を行う培地中にVEGFを添加しない条件下で、酸素分圧が0.1%〜10%である環境において、中内胚葉誘導の指標となる遺伝子が発現する時期、血液前駆細胞誘導の指標となる遺伝子の発現が開始される時期、分化増殖性サイトカインの指標となる遺伝子の発現が開始される時期、又は、血液細胞誘導の指標となる遺伝子の発現が開始される時期まで培養を行った後、より高い酸素分圧下でさらに培養を行う工程を含む、血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
- 前記より高い酸素分圧が、酸素分圧11〜30%である請求項1乃至4のいずれかに記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
- 前記血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞へ分化し得る細胞が、多能性幹細胞である請求項1乃至5のいずれかに記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
- 前記血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞がネット様構造又は胚様体から取得されることを特徴とする請求項1乃至6のいずれかに記載の血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞の製造方法。
- 請求項1乃至7のいずれかに記載の製造方法を使用することを特徴とする血液前駆細胞又は赤血球前駆細胞への分化を促進又は阻害する物質のスクリーニング方法。
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