JP5521146B2 - 油脂分解菌及び油脂分解剤 - Google Patents

Description

本発明は、油脂分解菌及び油脂分解剤に関する。

微生物を利用した排水処理方法として、一般に、好気性微生物による活性汚泥法（好気性処理法）及び嫌気性微生物によるメタン発酵法（嫌気性処理法）が知られている。好気性処理法では曝気するためのエネルギーを要するのに対し、嫌気性処理法は消費エネルギーが少なく、またメタンなどを主成分とするバイオガスを得ることもできる。このため、嫌気性処理法は、好気性処理法よりもエネルギー効率の点で有利であるといわれている。

溶解性有機物を高濃度に含む高負荷排水をメタン発酵法で処理するための、種々のタイプの上向流式嫌気性処理槽が開発されている。例えば、ＵＡＳＢ（Ｕｐｆｌｏｗ Ａｎａｅｒｏｂｉｃ Ｓｌｕｄｇｅ Ｂｌａｎｋｅｔ）法やこれを改良したＥＧＳＢ（Ｅｘｐａｎｄｅｄ Ｇｌａｎｕｌａｒ Ｓｌｕｄｇｅ Ｂｅｄ）法を利用した処理槽が知られている。これらの上向流式嫌気性処理槽は、グラニュール汚泥と呼ばれる粒状の汚泥を槽内に収容することができ、被処理水がグラニュール汚泥と接触しながら上方に流れることによって、有機物が効率的に分解される。

ところで、製造工程で油脂を扱う食品工場の排水など、油脂を多く含む有機性排水をグラニュール汚泥で処理する場合、油脂がグラニュール汚泥に付着し、これによって排水とグラニュール汚泥との接触効率が低下して有機物の処理が不十分となりやすい。このような問題を解決する手段として、特許文献１には上向流式嫌気性処理槽に被処理水を導入するに先立ち、被処理水から油分を分離し、これをリパーゼ生成菌によって分解する油脂分解槽を備えた嫌気性処理装置が記載されている。

また、油脂分解性を有する微生物、油脂分解菌が開示されている（特許文献２及び特許文献３）。

特開２００５−２７０８６２号公報 特開２００４−１６６５３３号公報 特開平６−１５３９２２号公報

しかしながら、従来知られている油脂分解菌は、その至適油脂分解条件（温度、ｐＨ等）が、油脂分解菌よりも増殖速度の速い溶解性有機物分解菌（以下、ＢＯＤ分解菌という。）の至適生育条件（温度、ｐＨ等）の範囲内に入ってしまう。そのため、ＢＯＤ分解菌が油脂分解槽の汚泥中で優勢となり、油脂の分解効率低下に加えて溶解性有機物（以下、ＢＯＤ成分という。）の分解により大量の余剰汚泥が生じる問題があった。また、ＢＯＤ分解菌が油脂分解槽の汚泥中で優占的となり、油脂分解菌が存在しなくなるという問題もあった。

そこで、本発明は、至適油脂分解条件（温度、ｐＨ等）がＢＯＤ分解菌の至適生育条件（温度、ｐＨ等）の範囲内に入らず、十分な増殖速度及び油脂分解速度を有する油脂分解菌の提供を目的とする。本発明はまた、上記油脂分解菌を含む油脂分解剤の提供も目的とする。

本発明は、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ属に属し、以下の菌学的性質を示す、油脂分解菌を提供する。
細胞形態 球菌
細胞の直径 ０．８〜０．９μｍ
胞子の有無 −
グラム染色性 −
運動性 −
４１℃での生育 ＋
カタラーゼ ＋
オキシダーゼ −
グルコースからの酸／ガス産生 −／−
グルコースの酸化／発酵 ＋／−
なお、「＋」は陽性であること、「−」は陰性であることを示す。

上記油脂分解菌は、以下の菌学的性質を更に示すことが好ましい。
硝酸塩還元活性 −
インドール産生活性 −
ブドウ糖酸性化活性 −
アルギニンジヒドロラーゼ活性 −
ウレアーゼ活性 −
エスクリン加水分解活性 −
ゼラチン加水分解活性 ＋
β−ガラクトシダーゼ活性 −
チトクロームオキシダーゼ活性 −
クエン酸の利用性 ＋
ブドウ糖資化性 −
Ｌ−アラビノース資化性 −
Ｄ−マンノース資化性 −
Ｄ−マンニトール資化性 −
Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミン資化性 −
マルトース資化性 −
グルコン酸カリウム資化性 −
ｎ−カプリン酸資化性 ＋
アジピン酸資化性 ＋
ｄｌ−リンゴ酸資化性 ＋
クエン酸ナトリウム資化性 ＋
酢酸フェニル資化性 ＋
ＤＬ−乳酸ナトリウム資化性 ＋
Ｌ−アスパラギン酸ナトリウム資化性 −
エタノール資化性 −
なお、「＋」は陽性であること、「−」は陰性であることを示す。

上記油脂分解菌は、寒天培地上において、３０℃、２４時間培養で直径１ｍｍの周縁全縁の円形、表面がスムーズ、レンズ状で、不透明な淡黄色コロニーを形成することが好ましい。

また、上記油脂分解菌は、配列番号１で特定される塩基配列に対して９８％以上の相同率を示す１６Ｓ ｒＤＮＡ塩基配列を有することが好ましい。

上記油脂分解菌として、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（郵便番号２９２−０８１８、日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２丁目５番地８号 ＮＩＴＥバイオテクノロジー本部）に受託番号ＮＩＴＥ Ｐ−８４６で２００９年１１月２５日に受託されているＡｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ ｓｐ．ＳＳ−１９２株とすることができる。

本発明はまた、上述の油脂分解菌を含む油脂分解剤を提供する。

上記油脂分解菌は、アルカリ条件及び高温条件下で効率よく増殖及び油脂分解が可能であるため、ＢＯＤ分解菌の増殖を抑制しながら油脂を分解することができる。また、上記油脂分解菌は従来の油脂分解菌と比べて油脂分解速度が速いため、高濃度の油脂を含む排水の処理に好適に利用することができる。

本発明の油脂分解菌は、油脂分解条件を高アルカリ及び高温とすることができるため、ＢＯＤ分解菌の増殖を抑え、油脂分解菌を優勢又は優占的にすることができる。また、本発明の油脂分解菌は、増殖速度及び油脂分解速度が速いため、高濃度の油脂を含む排水の処理が可能である。さらに、油脂分解過程でＢＯＤ成分の分解が生じにくくなるため、高濃度の油脂分解生成物を得ることが可能となり、ＢＯＤ成分濃度を高く維持した油脂分解排水を得ることができる。これは、油脂分解排水を後段で嫌気処理する場合に有利である。

油脂分解生成物のＴＬＣ（薄層クロマトグラフィー）分析結果を示す写真である。図１中、ＴＧ、ＤＧ、ＭＧ、ＦＡは、それぞれ、トリグリセリド、ジグリセリド、モノグリセリド、脂肪酸を表し、ＯＡ、Ｏ、Ｓ、Ｗ、Ｃは、それぞれ、オレイン酸、オリーブ油、混合油脂（サラダ油／ラード／牛脂、質量比１：１：１）、抽出後の水層、抽出後のクロロホルム層を表す。 Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ ｓｐ．ＳＳ−１９２株（ＮＩＴＥ Ｐ−８４６）のコロニー形態を示す写真である。 （ａ）培養液のｐＨ変動又は（ｂ）培養温度の変動に対する油脂分解率を示すグラフである。

以下、本発明を実施形態に基づいて詳細に説明する。

本発明の油脂分解菌は、上述したとおり上記菌学的性質等を有するものである。上記油脂分解菌は、例えば、培養温度が３０〜３７℃、培養液のｐＨが８〜９という高アルカリ及び高温条件下で高い油脂分解活性を発揮することができる。また、増殖速度及び油脂分解速度が速く、サラダ油、ラード、牛脂等の食用油脂を２４時間で７８〜８３．９％分解できる。従来の油脂分解菌によりこの程度の油脂分解率を達成するには４８時間以上要するのが通常であり、本発明の油脂分解菌による油脂分解速度の速さがわかる。

上記油脂分解菌は、配列番号１で特定される塩基配列に対して９８％以上の相同率を示す１６Ｓ ｒＤＮＡ塩基配列を有するものであることが好ましい。さらに、上記相同率は、９９％以上であることが好ましく、９９．５％以上であることがより好ましく、９９．７％以上であることが更に好ましく、９９．９％以上であることが極めて好ましい。

また、本実施形態に係る油脂分解菌としては、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ ｓｐ．ＳＳ−１９２株（ＮＩＴＥ Ｐ−８４６）とすることが好ましい。Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ ｓｐ．ＳＳ−１９２株は上述の菌学的性質等を全て備える油脂分解菌の具体例であり、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ属に属する新種だと考えられる。好アルカリ性菌として知られるＡｌｃａｌｉｇｅｎｅ属、Ａｃｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒ属ではないものの、高アルカリ性条件下で増殖でき、油脂分解速度が速い。

本発明に係る油脂分解菌が分解する対象となる油脂は、主として、動植物由来の油脂であるが、それらに限られるものではなく、種々の合成化学的手法を含む方法で得られた人工油脂、その誘導体をも含むものである。具体的には、排水に含まれる食用油脂、工業用油脂等とすることができ、特に、サラダ油、コーン油、大豆油、乳脂、バター、ラード、牛脂等の食用油脂とすることができる。

本発明に係る油脂分解菌は、様々な環境から採取した細菌群を、油脂を含むアルカリ性の培地中で培養し、油脂分解能を指標としたスクリーニングにより単離することができる。

具体的な方法は、例えば、以下のとおりである。油脂又は混合油脂を含むアルカリ性培地（例えば、ｐＨ８〜１０）を試験管に添加し、さらに様々な環境（例えば、土壌、砂、泥、海水、湖沼など）から採取したサンプルを少量添加する。アルミホイル等で試験管にふたをし、震盪培養器中で適切な条件下（例えば、３７℃、１７０回／分、２４時間）で震盪培養した後、油脂分解が生じているサンプルを選定する。

震盪培養した後に油脂分解が生じているサンプルの分析は、目視により残存油脂分が存在するかどうかの判定によることもできるが、例えば、ＪＩＳ規格に基づくｎ−ヘキサン抽出による残存油脂分の定量又は参考文献（Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，２００７年，１０３（４），３２５−３３０頁）に記載の方法によることもできる。

油脂分解が生じていることを確認したサンプルから、純粋分離により、油脂分解菌を単離することができる。純粋分離は当業者によく知られた方法で実施することが可能であり、例えば、寒天培地上に接種して培養することにより、純粋分離されたコロニーを形成させることができ、そのコロニーをピックアップすることで目的とする油脂分解菌を単離することができる。

また、油脂分解が生じているサンプルを選定した後、そのサンプルの一部を、新鮮な油脂又は混合油脂を含むアルカリ性培地（例えば、ｐＨ８〜１０）を添加した試験管に再度接種して、再度震盪培養を行うこともできる。この震盪培養後に油脂分解を生じているサンプルを選定する。選定したサンプルに対し、上述の純粋分離を行うこともできるし、再びこの震盪培養サイクルを繰り返すこともできる。震盪培養サイクルを増やすことにより、目的とする油脂分解菌を集積させることができる。

上述のようにして環境から採取したサンプルより単離した油脂分解菌の同定、性状及び性質等の解析は、公知の種々の同定試験方法又は市販されている同定キットを用いて行うことができる。また、１６Ｓ ｒＤＮＡ塩基配列をシークエンスし、相同性検索、分子系統解析により、油脂分解菌の同定を行うこともできる。

本発明の油脂分解剤は、本発明の油脂分解菌を製剤化して得ることができる。具体的には、例えば、「応用微生物学改訂版、村尾澤夫、荒井基夫共編、培風館、１９９３年」、「生物工学序論、佐田栄三ら著、講談社、１９９６年」、「産業用酵素、上島孝之著、丸善、１９９５年」などに記載の方法により、固定化製剤、液状化製剤、粉末状製剤とすることができる。

本発明の油脂分解菌及び油脂分解剤は、これに限定されるものではないが製造工程で油脂を扱う食品工場の排水等、油脂を多く含む有機性排水の処理に用いることができる。排水の処理方法については特に制限はされず、従来公知である油脂分解微生物等を用いた排水処理において、油脂分解微生物等に代えて本発明の油脂分解菌又は油脂分解剤を用いることができる。また、本発明の油脂分解菌又は油脂分解剤を用いる場合、処理する排水の温度を３０〜３７℃に設定し、処理する排水のｐＨを８〜９に設定することが好ましい。
これにより、本発明の油脂分解菌が高い油脂分解能を示す条件となるばかりでなく、ＢＯＤ分解菌の増殖を抑えることができるため、汚泥発生量を少なくでき、かつ油脂分解効率を更に上昇させることができる。

また、本発明の油脂分解菌及び油脂分解剤は、溶解性有機物を高濃度に含む高負荷排水をメタン発酵法で処理するための、種々のタイプの上向流式嫌気性処理槽と組合わせて使用することがより好ましい。上向流式嫌気性処理槽としては、例えば、ＵＡＳＢ（Ｕｐｆｌｏｗ Ａｎａｅｒｏｂｉｃ Ｓｌｕｄｇｅ Ｂｌａｎｋｅｔ）法やこれを改良したＥＧＳＢ（Ｅｘｐａｎｄｅｄ Ｇｌａｎｕｌａｒ Ｓｌｕｄｇｅ Ｂｅｄ）法を利用した処理槽とすることができる。油脂を多く含む有機性排水を前処理工程で本発明の油脂分解菌及び油脂分解剤により処理して油脂を除くことにより、上向流式嫌気性処理槽による後処理工程での排水とグラニュール汚泥との接触効率の低下を防ぐことができ、効率よく排水を処理できる。また、前処理工程でＢＯＤ成分の分解が生じにくいため、後処理工程へと供給する排水中には高濃度の油脂分解生成物がＢＯＤ成分として含まれる。したがって、後処理工程で嫌気性処理を行うことによって、高濃度のＢＯＤ成分が高いエネルギーに変換されるうえ、汚泥発生量も少ないため、高い処理効率を達成することができる。

以下、実施例を用いて本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。

［アルカリ耐性油脂分解菌の探索］
神奈川県、福島県、愛媛県で採取した土壌を試料とし、滅菌した生理食塩水に懸濁した後、超音波洗浄器にて５分間超音波処理を行った。処理後５分間ほど静置し、上澄み液を３０００ｐｐｍとなるよう混合油脂（サラダ油／ラード／牛脂、質量比１：１：１）を添加したアルカリ人工下水培地１（表１）又はアルカリ人工下水培地２（表２）各５ｍｌが入った１８φ×１８０ｍｍ試験管に１％（ｖ／ｖ）となるように接種した。

上記試験管にアルミホイルでフタをし、震盪培養器にて３７℃、１７０回／分の条件で震盪培養した。微生物の生育が認められた試料については、３０００ｐｐｍとなるように上記混合油脂を添加した新鮮なアルカリ人工下水培地１又はアルカリ人工下水培地２に、１％（ｖ／ｖ）となるように接種し、同様に震盪培養した。これを繰り返し行うことで目的微生物を集積させた。３回以上繰り返した際に生育しており、かつ油分分解が観察された試料について、フラスコ試験を実施した。

フラスコ試験は、以下の手順に従って行った。５００ｍｌバッフルフラスコに３０００ｐｐｍとなるよう上記混合油脂を添加したアルカリ人工下水培地１又はアルカリ人工下水培地２を１００ｍｌ入れ、試験管培養液を１％（ｖ／ｖ）となるように接種し、３７℃、１２０ｒｐｍで２４時間震盪培養した。これをオートクレーブ（１２１℃、２０分）処理した後、ＪＩＳ Ｋ０１０１に準拠したｎ−ヘキサン抽出法により、残存している油脂を定量し、菌を接種しないコントロールとの差から油脂分解率を算出した。

アルカリ人工下水培地１を用いて２５試料に対して、アルカリ人工下水培地２を用いて４９試料に対してスクリーニングを実施した。アルカリ人工下水培地２を用いたスクリーニングの結果、７８〜８８％／ｄという高い油脂分解率を示した２種類のサンプル（サンプルＮｏ．１９２及びＮｏ．２１９）が得られた。サンプルＮｏ．１９２は住友重機械工業株式会社横須賀製造所内レール付近の土壌から得た試料に由来し、サンプルＮｏ．２１９は愛媛県内焚き火跡土壌（灰）から得た試料に由来するものであった。

これらのサンプル中に含まれる微生物を純粋分離した結果、どちらのサンプルも集積培養によって単一菌の状態になっていた。分離したコロニーからマスタープレート、グリセロール保存を作成した。マスタープレートからピックアップした各菌をアガープレート上で培養し（３０℃、２４時間）、同定分析用プレートを各菌それぞれ１枚ずつ作成した。

［油脂分解性の測定］
サンプルＮｏ．１９２及びＮｏ．２１９から純粋分離した菌株の油脂分解性について、再現性の確認を行った。ｎ−ヘキサン抽出では抽出時に中間層及びエマルション形成により、残存している油脂の抽出精度が低いと考えられたため、クロロホルム／メタノール（３：１）４０ｍｌで抽出し、遠心分離（５，０００ｒｐｍ、３０ｍｉｎ）した後、静かに分液ロートに移し、クロロホルム（下）層を新しい遠心管に入れ、再び遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、１０ｍｉｎ）した。遠心分離後、静かに分液ロートに移し、クロロホルム（下）層をフラスコに取り、無水硫酸マグネシウムにて脱水後、ろ過、エバポレートすることにより残存油分の測定を行った。その結果、両菌株は再現性良く、高い油脂分解性を示すことがわかった（表３）。

［油脂分解過程のＴＬＣ分析］
油脂分解過程を把握するために、上記抽出した残存油分のＴＬＣ分析を行った。その結果を図１に示す。Ｎｏ．１９２株（左パネル）は、左レーンから順に、オレイン酸（ＯＡ）、オリーブ油（トリオレイン；Ｏ）、混合油脂（サラダ油／ラード／牛脂、質量比１：１：１；Ｓ）、抽出後の水層（Ｗ）、抽出した残存油分が含まれるクロロホルム層（Ｃ）をロードした。同様に、Ｎｏ．２１９株（右パネル）は、左レーンから順に、オレイン酸（ＯＡ）、オリーブ油（トリオレイン；Ｏ）、混合油脂（サラダ油／ラード／牛脂、質量比１：１：１；Ｓ）、抽出した残存油分が含まれるクロロホルム層（Ｃ）、抽出後の水層（Ｗ）をロードした。Ｎｏ．１９２株及びＮｏ．２１９株のいずれも水層（Ｗ）からは油脂が検出されず、残存油脂は完全にクロロホルム層（Ｃ）へ抽出されたことがわかった。Ｎｏ．２１９株に比べ、Ｎｏ．１９２株の方がジグリセリド（ＤＧ）、モノグリセリド（ＭＧ）、脂肪酸（ＦＡ）存在量が多いことがわかった。これは、Ｎｏ．１９２株の油脂分解過程ではリパーゼによるトリグリセリド（ＴＧ）の分解と脂肪酸の代謝（β酸化）が律速となっていることを示唆するものである。一方、Ｎｏ．２１９株では抽出油分中にＤＧ、ＭＧがほとんど観察されず、ＦＡ存在量も少ないことから、グリセリドの分解が迅速であると推察される。

以下、サンプルＮｏ．１９２から純粋分離した菌株（Ｎｏ．１９２株）について更に詳細な解析を実施した。

［油脂分解菌の分類学上の同定］
１６Ｓ ｒＤＮＡの塩基配列解析により、Ｎｏ．１９２株の同定を行った。Ｎｏ．１９２株からのＤＮＡ抽出を、ＩｎｓｔａＧｅｎｅ Ｍａｔｒｉｘ（ＢｉｏＲａｄ社製、ＣＡ、ＵＳＡ）を用いて行った。全長１６Ｓ ｒＤＮＡをＰＣＲ反応により増幅した。ＰＣＲ反応には、ＰｒｉｍｅＳＴＡＲ ＨＳ ＤＮＡ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（タカラバイオ社製）を用いた。得られたＰＣＲ産物を鋳型とし、ＢｉｇＤｙｅ Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ ｖ３．１ Ｃｙｃｌｅ Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ Ｋｉｔ（アプライドバイオシステム社製、ＣＡ、ＵＳＡ）を用いてサイクルシークエンスを実施した。ＡＢＩ ＰＲＩＳＭ ３１３０ｘ１ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ａｎａｌｙｚｅｒ Ｓｙｓｔｅｍ（アプライドバイオシステム社製、ＣＡ、ＵＳＡ）によりシークエンスを解析し、ＣｈｒｏｍａｓＰｒｏ１．４（Ｔｅｃｈｎｅｌｙｓｉｕｍ Ｐｔｙ Ｌｔｄ．，Ｔｅｗａｎｔｉｎ，ＡＵＳ）ソフトウェアを用いて塩基配列を決定した。決定したＮｏ．１９２株の１６Ｓ ｒＤＮＡ塩基配列を、アポロン２．０（テクノスルガ・ラボ社製）ソフトウェア及びアポロンＤＢ−ＢＡ ｖｅｒ４．０（テクノスルガ・ラボ社製）データベースによる相同性検索及び簡易分子系統解析に供した。その結果、Ｎｏ．１９２株の１６Ｓ ｒＤＮＡ塩基配列はアポロンＤＢ−ＢＡ ｖｅｒ４．０データベース中のグラム陰性細菌Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｏｒ ｂａｕｍａｎｎｉｉ ＤＳＭ３０００７株、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｏｒ ｊｕｎｉｉ ＤＳＭ６９６４株の１６Ｓ ｒＤＮＡ塩基配列とそれぞれ９７．７％の相同率を示した（表４）。また、国際塩基配列データベース（ＧｅｎＢａｎｋ／ＤＤＢＪ／ＥＭＢＬ）に対しても相同性検索を実施した結果、Ｎｏ．１９２株の１６Ｓ ｒＤＮＡ塩基配列は、グラム陰性細菌Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｏｒ ｃａｌｃｏａｃｅｔｉｃｕｓの１６Ｓ ｒＤＮＡ塩基配列と９８．１％の相同率を示した。

アポロンＤＢ−ＢＡ ｖｅｒ４．０に対する相同性検索の結果、Ｎｏ．１９２株の１６Ｓ ｒＤＮＡ配列と高い相同率を示したＡ．ｂａｕｍａｎｎｉｉやＡ．ｐａｒｖｕｓに分子系統学的に近縁な位置には、それぞれ１つのｇｅｎｏｍｉｃ ｓｐｅｃｉｅｓが存在することが報告されている（Ｎｅｍｅｃ ｅｔ．ａｌ．，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｓｙｓｔ．Ｅｖｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．，２００９年，５９巻，１１８−１２４頁）。そこで、Ｎｏ．１９２株の１６Ｓ ｒＤＮＡ配列と相同性検索上位１８株の１６Ｓ ｒＤＮＡ配列及びこれらｇｅｎｏｍｉｃ ｓｐｅｃｉｅｓの１６Ｓ ｒＤＮＡ配列に対して簡易分子系統解析を実施した（表５）。なお、表５中、系統枝の分岐に位置する数字はブートストラップ値を示す。

簡易分子系統解析の結果、Ｎｏ．１９２株の１６Ｓ ｒＤＮＡはＡ．ｐａｒｖｕｓの１６Ｓ ｒＤＮＡとクラスターを形成したが、異なる分子系統学的位置を示した（表５）。以上の結果から、本菌株はＡｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ属に含まれると考えられる。また、本菌株は危険度レベル１の、病原性を有しない安全な菌株であることがわかった。

［油脂分解菌の菌学的特性の分析］
Ｎｏ．１９２株について、光学顕微鏡（ＢＸ５０Ｆ４、オリンパス社製）による形態観察、Ｂａｒｒｏｗらの方法（Ｃｏｗａｎ ａｎｄ Ｓｔｅｅｌ’ｓ Ｍａｎｕａｌ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｂａｃｔｅｒｉａ． ３ｒｄ ｅｄｉｔｉｏｎ． １９９３年，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ．）に基づいて、カタラーゼ反応、オキシダーゼ反応、グラム染色性、ブドウ糖からの酸／ガス産生、ブドウ糖の酸化／発酵（Ｏ／Ｆ）等の試験を実施した。グラム染色性解析にはフェイバーＧ「ニッスイ」（日水製薬社製）を用いた。結果を表６に示す。また、図２にＮｏ．１９２株のコロニー形態の写真を示した。

さらに、ＡＰＩ２０ＮＥキット（ビオメリュー社製、フランス）を用い、表７に記載した各種性状の試験を行った。判定はキットに添付のマニュアルに従った。加えて、表８に記載した事項についての試験を実施した。

その結果、Ｎｏ．１９２株は、ゼラチンを加水分解し、グルコース、Ｌ−アラビノース等を資化しないことが判明した。また、１６Ｓ ｒＤＮＡ配列の系統解析によって近縁性が示唆されたＡ．ｐａｒｖｕｓの性状とＮｏ．１９２株の性状とには類似性が認められたものの、４１℃で生育すること（表８）、ゼラチンを加水分解すること（表７）、ＤＬ−乳酸ナトリウムを資化すること（表８）、エタノールを資化しないこと（表８）等の点において、明確な相違点が認められた。これらのことから、本菌はＡｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｏｒ属細菌の一種であり、既知種と同一種ではないと考えられた。そこで、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｏｒ ｓｐ．ＳＳ−１９２株と命名した。

［培養液ｐＨと油脂分解率の関係］
Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｏｒ ｓｐ．ＳＳ−１９２株の油脂分解率に対する培養液ｐＨの影響を解析した。培地は、ｐＨ調整剤（１Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ９）以外はアルカリ人工下水培地２と同じ組成のものを用いた。この培地をベースとし、ｐＨ６〜８の培地はｐＨ調整剤として塩酸又は水酸化ナトリウムを用い、ｐＨ９の培地はｐＨ調整剤として１Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ９）を用い、ｐＨ１０の培地はｐＨ調整剤として１Ｍグリシン／水酸化ナトリウム緩衝液（ｐＨ１０）を用いて、それぞれｐＨを調整した。これらの培地に３０００ｐｐｍとなるように混合油脂（サラダ油／ラード／牛脂、質量比１：１：１）を添加したものを５００ｍｌバッフルフラスコに１００ｍｌ入れ、２４時間予備培養した試験管培養液を１％（ｖ／ｖ）となるように接種し、１２０ｒｐｍ、３７℃で２４時間震盪培養した。培養後、オートクレーブ（１２１℃、２０分）処理し、クロロホルム／メタノール（３：１）４０ｍｌで抽出し、遠心分離（５，０００ｒｐｍ、３０ｍｉｎ）した後、静かに分液ロートに移し、クロロホルム（下）層を新しい遠心管に入れ、再び遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、１０ｍｉｎ）した。遠心分離後、静かに分液ロートに移し、クロロホルム（下）層をフラスコに取り、無水硫酸マグネシウムにて脱水後、ろ過、エバポレートすることにより残存油分を定量した。菌を接種しないコントロールとの差から油脂分解率を算出した。

結果を図３（ａ）に示す。培養液のｐＨが６、７、８、９、１０のとき、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｏｒ ｓｐ．ＳＳ−１９２株の２４時間培養後の油脂分解率は、それぞれ、１１、２４、７６、７８、２１％であった。油脂分解の最適培地ｐＨは８〜９であった。

［培養温度と油脂分解率の関係］
Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｏｒ ｓｐ．ＳＳ−１９２株の油脂分解率に対する培養温度の影響を解析した。５００ｍｌバッフルフラスコに、３０００ｐｐｍとなるように混合油脂（サラダ油／ラード／牛脂、質量比１：１：１）を添加したアルカリ人工下水培地２を１００ｍｌ入れ、２４時間予備培養した試験管培養液を１％（ｖ／ｖ）となるように接種した。培養温度を１０、１５、２０、２５、３０、３３．５、３５、３７、４０℃にそれぞれ設定し、１２０ｒｐｍで２４時間震盪培養した。その後、上記と同様にして残存油分を定量し、油脂分解率を算出した。

結果を図３（ｂ）に示す。培養温度が１０、１５、２０、２５、３０、３３．５、３５、３７、４０℃のとき、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｏｒ ｓｐ．ＳＳ−１９２株の２４時間培養後の油脂分解率は、それぞれ、０、１９、６１、５５、８４、７３、７９、７８、６％であった。油脂分解率は３０〜３７℃で高い値を示し、最適温度は３５℃付近であった。

［その他の特徴］
抗生物質含有プレートを用いて、抗生物質感受性試験を行った。その結果、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｏｒ ｓｐ．ＳＳ−１９２株はアンピシリン感受性であることがわかった。

Claims (2)

1. 独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター 受託番号ＮＩＴＥ Ｐ−８４６（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ ｓｐ．ＳＳ−１９２）で特定される油脂分解菌。
2. 請求項１に記載の油脂分解菌を含む油脂分解剤。