JP5439677B2 - 透明帯が菲薄化又は除去された哺乳動物卵又は胚を調製するための方法及び培地、該方法により調製された哺乳動物卵を用いた受精方法 - Google Patents
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Description
さらに、体外受精において、新鮮な卵子の使用が困難な場合には、凍結保存された卵子を用いることが行われているが、凍結融解により、透明帯が固くなり、凍結融解卵子を用いた場合には、新鮮な精子であっても、受精率が低下するという問題がある。
かかる状況下において、現在、受精能が低下した精子を用いた体外受精、或いは凍結保存した卵子を用いた体外受精において、効率的に受精卵を作製するために、以下のような生殖補助技術が利用されている。
一方、凍結融解後、全く運動性が認められない精子に対しては、一個の精子を卵細胞質に機械的に直接注入する卵細胞質内精子注入法(ICSI:Intra Cytoplasmic Sperm Injection)(非特許文献4)が一般に用いられている。
しかしながら、これらの方法は、特別な技術や装置が必要となり、汎用性が低いという問題がある。
しかしながら、発生段階において、発生初期胚(胚盤胞期胚)が透明帯を孵化できないために、子宮への着床が障害される場合がある。かかる障害は、排卵誘発剤を用い卵胞を成熟させた時に得られた卵子の透明帯が固くなったり又は厚くなったりする場合の他、透明帯形成異常を有する卵子を用いた場合、凍結保存した卵子を用いて体外受精した場合、或いは受精卵(胚)を凍結保存したのち融解し子宮へ移植した場合に起こりやすい。
しかしながら、注射針やガラス毛細管の先端を利用する方法やレーザーにより透明帯に穴を空ける方法は、特別な装置と技術が必要となり、汎用性が低いという問題がある。酵素による方法は、胚へのダメージにより発生能が低下するという問題がある。
さらには、遺伝子改変動物の作製工程においては、透明帯を除去した発生初期胚(例えば、2〜8細胞期胚)を作製する必要がある。
また本発明の目的は、哺乳動物卵又は胚(例えば、未受精卵、受精卵又は発生初期胚)の透明帯を菲薄化又は除去する方法、透明帯が菲薄化又は除去された哺乳動物卵及び/又は胚(例えば、未受精卵、受精卵又は発生初期胚)を調製する方法、及び該方法により調製された透明帯が菲薄化又は除去された哺乳動物卵又は胚を提供することである。
本発明の他の目的は、体外受精、受精卵の移植、遺伝子改変動物の作製において利用される発生初期胚の調製、において用いることができる、透明帯が菲薄化又は除去された哺乳動物胚を調製する方法を提供することである。
本発明のさらなる目的は、上記調製方法であって、少なくとも特別な技術や装置を要求することがない方法を提供することであり、好ましくは、細胞毒性がなく又は実験操作性を損なうことがない、汎用性がある方法を提供することである。
本発明は、哺乳動物(ヒト及び非ヒト哺乳動物)卵又は胚を、有効量のSH基を有する還元剤(還元型グルタチオン、DTT、又はジスルフィド還元酵素)を含有する培地で処理することにより、卵又は胚の透明帯が菲薄化又は除去された哺乳動物卵又は胚を調製する方法である。
本発明はまた、SH基を有する還元剤を処理することにより透明帯が菲薄化又は除去された哺乳動物卵と、好ましくはシクロデキスチトリンで前培養された精子を受精する方法である。
本発明の別の態様は、遺伝子改変マウスの作製に用いることができる透明帯が菲薄化又は除去されたマウス発生初期胚を調製する方法である。
本発明の他の態様は、着床率を向上できる透明帯が菲薄化又は除去された哺乳動物受精卵又は胚を調製する方法である。
本発明はより具体的には、以下の通りである。
a.哺乳動物(ヒト又は非ヒト哺乳動物)の精子を、0.1mM以上20mM以下のシクロデキストリン及び0.1mM以上10mM以下のカルシウムを含有する培地で前培養する工程、
b.哺乳動物(ヒト又は非ヒト哺乳動物)の未受精卵の透明帯の菲薄化又は除去のために、該未受精卵を、SH基を有する還元剤をSH当量で0.25mM以上500mM以下の濃度で含有する培地に加え、該還元剤により処理された未受精卵を調製する工程、及び
c.工程aで前培養した該精子と、工程2でSH基を有する還元剤で処理した該未受精卵を共培養して受精を行う工程、
を含む受精方法。
(2)前記未受精卵がマウス未受精卵である前記(1)に記載の受精方法。
(3)前記シクロデキストリンがメチル−β―シクロデキストリンである前記(1)又は(2)に記載の受精方法。
(5)前記SH基を有する還元剤が還元型グルタチオンであり、かつ培地中の該還元型グルタチオン濃度が、15mg/ml以上90mg/ml以下である、前記(1)〜(4)のいずれかに記載の受精方法。
(6)前記SH基を有する還元剤が還元型グルタチオンであり、かつ培地中の該還元型グルタチオン濃度が、0.075mg/ml以上3.0mg/ml以下である、前記(1)〜(4)のいずれかに記載の受精方法。
(7)培地中の前記還元型グルタチオン濃度が、0.15mg/ml以上0.46mg/ml以下である、前記(6)に記載の受精方法。
(8)前記工程cの媒精を、前記工程bと同じ培地中で前記未受精卵と前記精子を数時間共培養することにより行う、前記(6)又は(7)に記載の受精方法。
(9)前記工程cの媒精を、還元型グルタチオンを実質的に含有しない培地で行う、前記(5)に記載の受精方法。
(10)受精に用いる精子が、還元型グルタチオンを含まない培地で前培養されている新鮮精子、凍結精子、冷蔵精子又はそれらの組み合わせである、前記(1)に記載の受精方法。
(11)受精に用いる精子がマウス凍結精子であり、工程aの精子の前培養を少なくとも30分間行う、前記(1)に記載の受精方法。
(13)前記哺乳動物卵又は胚が、マウス未受精卵又はマウス胚である前記(12)に記載の透明帯が菲薄化又は除去された哺乳動物卵又は胚を調製する方法。
(14)前記哺乳動物卵が未受精卵であり、かつ、培地中の前記SH基を有する還元剤(好ましくは、DTT又は還元型グルタチオン)の濃度が、SH当量で0.5mM以上10mM以下(還元型グルタチオンの場合は、0.15mg/ml以上3.0mg/ml以下の濃度)、好ましくは、SH当量で0.5mM以上1.5mM以下(還元型グルタチオンの場合は、0.15mg/ml以上0.46mg/ml以下の濃度)である、前記(12)に記載の透明帯が菲薄化又は除去された哺乳動物卵を調製する方法。
(15)培地中の前記SH基を有する還元剤(好ましくは、DTT又は還元型グルタチオン)の濃度が、SH当量で50mM以上500mM以下(還元型グルタチオンの場合は、15mg/ml以上150mg/ml以下)、好ましくは、SH当量で100mM以上300mM以下(還元型グルタチオンの場合は、30mg/ml以上90mg/ml以下)である、前記(12)に記載の透明帯が菲薄化又は除去された哺乳動物卵又は胚を調製する方法。
(16)前記(12)〜(15)のいずれか一つに記載の方法により調製された透明帯が菲薄化又は除去された哺乳動物卵又は胚。
(18)前記哺乳動物卵又は胚が、マウス未受精卵又はマウス発生初期胚(2細胞期胚〜16細胞期胚)である前記(17)に記載の透明帯が菲薄化又は除去されたマウス未受精卵及び/又はマウス発生初期胚を調製する方法。
(19)前記(18)の方法により調製されたマウス発生初期胚をES細胞株と凝集させる手順を少なくとも含む、キメラ非ヒト哺乳動物の作製方法。
(20)前記(17)に記載の方法により調製された哺乳動物胚を用いることを含む、哺乳動物胚の着床率を高める方法。
(21)前記(17)又は(18)により調製された哺乳動物卵又は胚。
(23)体外受精用の未受精卵を培養するための培地又は受精用培地であり、SH基を有する還元剤(好ましくは、DTT又は還元型グルタチオン)をSH当量で0.25mM以上10mM以下の濃度(還元型グルタチオンの場合は、0.075mg/ml以上3.0mg/ml以下の濃度)、好ましくは、SH当量で0.5mM以上1.5mM以下の濃度(還元型グルタチオンの場合は、0.15mg/ml以上0.46mg/ml以下の濃度)で含有する培地。
(25)前記非ヒト哺乳動物胚が遺伝子改変動物作製用の受容胚又は発生初期胚である前記(24)に記載の培地。
(26)前記遺伝子改変動物が遺伝子改変マウスである前記(25)に記載の培地。
(i)哺乳動物(ヒト又は非ヒト哺乳動物)の精子を前培養するための、0.1mM以上20mM以下のシクロデキストリン及び0.1mM以上10mM以下のカルシウムを含有する精子前培養用培地、及び
(ii))哺乳動物(ヒト又は非ヒト哺乳動物)の卵と精子の受精を行うための、SH当量で0.25mM以上10mM以下のSH基を有する還元剤を含有する受精用培地。
(28)前記受精用培地が、0.15mg/ml以上3.0mg/ml以下の濃度の還元型グルタチオンを含有する、前記(27)に記載の受精用培地キット。
(29)前記精子前培養用培地が、還元型グルタチオンを実質的に含有しない前記(19)又は(20)に記載の受精用培地キット。
(30)前記精子前培養用培地が、TYH培地、HTF培地、KSOM培地、Dulbeccos ’s PBS培地、M2培地、PB1培地、Hanks培地、Hepes-TALP培地、Hoppe&Pitts培地、m−KRB培地、HIS培地、BO培地、mTALP培地、mT培地、MCM培地、CCM培地、K−MCM培地、BWW培地、Whitten培地、BMOC培地、T6培地、HT6培地、Bavister−TALP培地、SOF培地、Menezo−B2培地、Ham’s培地、Medium199培地、MEM培地、mWM培地からなる群より選ばれる培地であり、かつ、前記受精用培地が、HTF培地、TYH培地、mR1ECM培地、BO培地、KSOM培地、Dulbeccos ’s PBS培地、M2培地、PB1培地、Hanks培地、Hepes-TALP培地、Hoppe&Pitts培地、m−KRB培地、HIS培地、mTALP培地、mT培地、MCM培地、CCM培地、K−MCM培地、BWW培地、Whitten培地、BMOC培地、T6培地、HT6培地、Bavister−TALP培地、SOF培地、Menezo−B2培地、Ham’s培地、Medium199培地、MEM培地、mWM培地からなる群より選ばれる培地である、前記(27)〜(29)のいずれか一つに記載の受精用培地キット。
(31)前記非ヒト哺乳動物がマウスである、前記(27)〜(30)のいずれかに記載の受精用培地キット。
(33)哺乳動物(ヒト又は非ヒト哺乳動物)の未受精卵と精子、好ましくはマウス未受精卵とシクロデキストリン含有培地で前培養したマウス精子(新鮮精子、冷蔵精子、又は凍結精子)との受精において、該未受精卵の透明帯を菲薄化又は除去することにより受精率を増加させるためのSH基を有する還元剤(還元型ジスルフィド又はDTT)の使用。
本明細書中では、特に断りがない限りは、「グルタチオン」及び「還元型グルタチオン」は、交換可能な用語として用いる。
本発明に用いられる、「有効量のSH基を有する還元剤を含有する」とは、卵の透明帯を菲薄化又は除去できる量又は濃度のSH基を有する還元剤(例えば、還元型グルタチオンやDTT)を含んでいることを意味する。
本発明に用いられる哺乳動物胚及び/又は(未受精卵、受精卵及び/又は発生初期胚)は、哺乳動物より採取したものを直接使用しても、或いはそれを冷蔵保存して又は凍結保存した後融解して使用しても良い。冷蔵保存、又は凍結保存及び融解は、体外受精の技術分野における定法に従って行なうことができる。
本発明において用いられる「受精卵」なる語は、受精後の卵(胚)及びそれを凍結後融解した卵(胚)のいずれも含む意味であり、特に断りのない限り、両者を含む意味で用いられる。
本発明において用いられる「発生初期胚」なる語は、2細胞期から胚盤胞期までの胚を含む意味である。また、「発生初期胚」なる語は、発生開始初期の胚及びそれを凍結後融解した胚のいずれも含む意味であり、特に断りのない限り、両者を含む意味で用いられる。
本発明で用いられる還元型グルタチオンは、市販の還元型グルタチオンをそのまま用いることができるが、市販の酸化型グルタチオンを還元した後用いても良い。
本発明のSH基を有する還元剤として還元型グルタチオンを用いる場合は、還元型グルタチオンの濃度は、培地中、好ましくは0.075mg/ml以上150mg/ml以下、より好ましくは、0.15mg/ml以上90mg/ml以下、特に好ましくは、0.30mg/ml以上60mg/ml以下であるが、その目的に応じて、濃度は適宜選択でき、目的に応じた好ましい濃度が存在する。
本発明のSH基を有する還元剤としてDTTを用いる場合は、DTTの濃度は、培地中、好ましくは0.125mM以上250mM以下、より好ましくは、0.25mM以上150mM以下、特に好ましくは、0.5mM以上100mMであるが、その目的に応じて、濃度は適宜選択でき、目的に応じた好ましい濃度が存在する。
また、哺乳類動物種の違いによる、未受精卵、受精卵、又は発生初期胚の大きさに応じて、グルタチオン濃度の好ましい範囲は、適宜選択可能であり、マウスの胚に比べて大きな胚(例えば、牛胚)を用いた場合は、マウス胚に比べてより高濃度のグルタチオンを用いることが適当である。また、処理時間を、適宜選択し、より短く又はより長くすることも可能である。
以下、還元型グルタチオンの例を中心に本発明を更に詳細に説明するが、本発明はそれに限定されるものでない。
透明帯を除去するために、高濃度のグルタチオン、例えば、15mg/ml以上の濃度のグルタチオン含有培地で未受精卵を処理した場合は、受精の前にグルタチオンを除いておくことが必要である。
b.哺乳動物(ヒト又は非ヒト哺乳動物)の未受精卵の透明帯の菲薄化又は除去のために、該未受精卵を、SH基を有する還元剤をSH当量で0.25mM以上500mM以下の濃度で含有する培地に添加し、該還元剤により処理された未受精卵を調製する工程、及び
c.工程aで前培養した該精子と、工程2でSH基を有する還元剤で処理した該未受精卵を共培養しての受精を行う工程。
ここで、未受精卵は、特に限定されないが、好ましくはマウス未受精卵である。
ここで、SH基を有する還元剤は、還元型グルタチオン又はDTTであり、還元型グルタチオンが好ましい。また培地中の還元剤の濃度は、SH当量で、0.25mM以上10mM以下、好ましくは0.5mM以上10mM以下であり、還元型グルタチオンの場合は、0.075mg/ml以上3.0mg/ml以下、好ましくは、0.15mg/ml以上3.0mg/ml以下、更に好ましくは0.15mg/ml以上0.46mg/ml以下である。特に、新鮮精子を用いる場合は、0.075mg/ml以上の還元型グルタチオンで顕著な受精率の向上が達成される。
工程cが、工程aにおいてシクロデキストリン存在下で前培養した該精子を、工程2においてSH基を有する還元剤で処理した該未受精卵の存在する培地中に添加し媒精を行うである工程である態様を含む。
グルタチオンで未受精卵の処理を行った後または処理を開始した後、そこに精子を添加する方法により、多くの未受精卵を簡便な方法により同時に受精できる
前記精子を前記未受精卵の存在する培地中に添加した後、数十分〜数時間それらを共培養し、透明帯の菲薄化又は除去を行いながら受精を行うこともできる。共培養の時間は、用いる精子及び卵子の種類や状態、培養条件等に応じて適宜選択出来るが、数十分の共培養でも十分な受精が期待でき、数時間の共培養で受精が完了する。マウスの場合は、数十分の受精で十分な受精が達成でき、3時間程度で受精が完了する。これにより、透明帯の菲薄化の進行と受精を同時に行うことができ、操作が効率よく行える。
ここで、SH基を有する還元剤が還元型グルタチオンである場合は、培地中の該還元型グルタチオン濃度が15mg/ml以上90mg/ml以下であることが好ましい。
本発明の透明帯を菲薄化するための培地は、SH基を有する還元剤として還元型グルタチオン又はDTTをSH当量で0.5mM以上10mM以下の濃度で含有する培地である。
本発明の透明帯を除去するための培地は、SH基を有する還元剤として還元型グルタチオン又はDTTをSH当量で50mM以上300mM以下の濃度で含有する培地である。
(i)哺乳動物(ヒト又は非ヒト哺乳動物)の精子を前培養するための、1.0mM以上10mM以下のカルシウム及び0.1mM以上20mM以下のシクロデキストリンを含有する精子前培養用培地、及び
(ii))哺乳動物(ヒト又は非ヒト哺乳動物)の卵と精子の受精を行うための、SH当量で0.25mM以上10mM以下のSH基を有する還元剤を含有する受精用培地。
1−1)新鮮未受精卵の採取
本発明に係る透明帯が菲薄化又除去された未受精卵の調製方法において、哺乳動物、特にマウスからの新鮮未受精卵の採取に際しては、当該技術分野で実施されている前処理を採用することができる。すなわち、排卵誘発剤の投与により過排卵処理を行なった雌マウスを安楽死させ腹部を切開する。子宮、卵管、卵巣を体外に取り出した後、卵管のみを採取し、卵管膨大部より卵丘細胞に包まれた新鮮未受精卵を取り出す。具体的には、過排卵処理は、排卵誘発剤、例えば、卵胞刺激ホルモン性の性腺刺激ホルモンの卵胞成熟効果と、黄体形成ホルモン性の性腺刺激ホルモンの排卵効果とを組合せたものであり、より具体的には、成熟雌マウス(8〜12週齢)に所定濃度の血清性性腺刺激ホルモン(PMSG)と胎盤性性腺刺激ホルモン(hCG)を、例えば48時間間隔で腹腔内に投与(7.5単位/匹)することにより過排卵処理を施すことができる。過排卵処理を施した雌マウスの卵管膨大部より未受精卵塊(卵丘・卵子複合体:COC)を採取する。
前記工程にて得られた新鮮未受精卵塊をヒアルロニダーゼ処理に供し、卵丘細胞を除去する。具体的には、新鮮未受精卵塊を、ヒアルロニダーゼ(0.1%)を添加した体外受精用培地(HTF培地)に導入し、ヒアルロニダーゼで処理し、洗浄後、卵丘細胞が除去された卵子を得る。
未受精卵を冷蔵保存して使用する場合は、上記1)のようにして得た卵丘細胞付着卵子、或いはさらに2)の操作を加えて卵丘細胞を除去した卵子を、M2培地中に移動し、冷蔵保存(1〜15℃)して使用する。冷蔵保存は、48時間可能である。
新鮮未受精卵は、凍結保存した後使用することもできる。未受精卵の凍結保存は、卵丘細胞を除去した卵子を、20%牛胎仔血清を含むHTF培地で10分間培養した後、凍結することにより行う。
2−1)新鮮精子の調製
マウス成熟雄(8週齢以上)より採取した精巣上体尾部から精子塊を採取し、ディッシュ内の精子培養液(TYH培地)(200μl/2精巣上体尾部)に移し、インキュベーター内(37℃、5%CO2)で60分間前培養し、新鮮精子として受精に用いる。
マウス成熟雄(8週齢以上)より採取した精巣上体尾部を採取し、チューブ内のLifor培地(Lifor(登録商標) ACF Perfusion Media)に移し、冷蔵保存(1〜15℃)し、冷蔵精子として受精に用いる。
マウス成熟雄(12週齢以上)より採取した精巣上体尾部を、ディッシュ内の精子凍結保存液(例えば、FERTIUP(登録商標)、九動株式会社)(120μl/2精巣上体尾部)に移し、精巣の5〜6箇所に切れ込みを入れる。ディッシュを約3分間静置し、精子を保存液中に懸濁した後、精巣上体尾部をディッシュから取り出す。残った精子懸濁液を以下のようにして凍結する。
凍結保存しておいた精子を液体窒素中から取り出し、37℃の温水中に浸漬し、10分間加温した後、融解した精子懸濁液を90μlのTYH培地のドロップに移す。
精子懸濁液を、90μlのTYH培地中で、37℃で30分間、前培養し、実体顕微鏡下で非運動性の精子を避けて運動性を示す精子を回収し、受精に用いる。前培養した精子懸濁液10μlを、予め卵丘・卵母細胞複合体(COCs)を導入しておいた90μlのHTF培地(±グルタチオン)に加え(媒精)、5〜6時間インキュベーター内(37℃、5%CO2)で共培養し、受精を行う。その後、新しいHTFのドロップで卵子を洗浄し、卵子の観察を行う。単為発生卵子と判定されたもの(卵細胞質内に1つの前核のみが認められるもの)を、取り除き、翌日(媒精24時間後)、2細胞期胚のみを選別し、受精率を以下の式により求める。
体外受精率(%)=(2細胞期胚の数)/(2細胞期胚の数+未受精卵の数)×100
通常、卵管へは、前核期受精卵及び2細胞期胚を移植する。但し、それ以外の発生段階にある胚の移植も可能である。
受容雌には、ICR系マウスを用い、移植前日に外陰部を観察して発情前期にあるものを選び、精管結紮雄と同居させる。翌日、膣栓を確認したものを受容雌として用いる(偽妊娠第1日目)。麻酔した受容雌の皮膚及び腹壁を切開し、切開部より、卵巣、卵管及び子宮の一部を体外に露出させ、卵巣に付着した脂肪をクレンメで固定する。200μlの移植用ドロップをディッシュの中央に作製し、移植する胚(20個/匹)を移植用ドロップに移す。次いで、移植用キャピラリーに、少量の培養液とともに10個の胚を吸引する。卵管を、その円周の約1/2〜2/3程度切開し、その切開部から卵管膨大部に向かって胚を含むキャピラリーを挿入し、胚を移植する。反対側の卵管へも、同様の操作手順で胚を移植する。
胚移植後の産子率(着床率)は以下の式により求める。
産子の発生率(%)=(産子数)/(移植胚数)×100
以下に、本発明の方法を適用する、共培養法によるキメラ動物作製の方法を、マウスを例に説明する。特には、本発明の方法は、受容胚の調製のために用いることができる。しかしながら、本発明の方法の適用はマウスに限定されるものではない。
液体窒素タンクから、ES細胞の入ったチューブを取り出し、37℃のウォーターバスで融解する。融解したES細胞を、約5mlのESM(DMSO 450ml、血清 100ml、非必須アミノ酸溶液 5ml、β−メルカプトエタノール 5ml、及びESGRO(450,000units、CHEMICON)に懸濁し、ゼラチンコートしたディッシュに移して、10分間培養する。続いて、ES細胞が浮遊している上清を遠沈管に入れ、共培養に用いるまで、氷上で保存する。
PMSGとhCGによって過排卵処理した雌マウスを、hCG投与後、直ちに成熟雄と交配する。翌日、膣栓の有無を確認する。hCG投与約40〜46時間後に、膣栓を確認したマウスから卵管を採取・灌流することにより、2細胞期胚を採取する。採取した2細胞期胚を、KSOM培地のドロップ中で培養し、8細胞期へ発生したものを受容胚として用いる。
ディッシュ上に作製した10μlの100mMのグルタチオンを含有したHTF培地のドロップに、受容胚を導入し、透明帯を溶解する。透明帯の消失が確認されたら、直ちに1000μlのHTF培地を加えて希釈する。透明帯を除去した受容胚は、3個作製した100μlのKSOM培地中を移動させながら、グルタチオンを完全に取り除く。
(D)キメラ胚の作製
ディッシュ上に、KSOM培地のドロップ(15μl)を作製し、ディッシュの底面にアグリゲーションニードルで窪みを作製した後に、流動パラフィンで被覆する。透明帯を除去した受容胚を1つの窪みに1個ずつ導入し、その上からES細胞をふりかける。翌日まで、37℃、5%CO2のインキュベーター内で培養し、胚盤胞期胚まで発生したキメラ胚を得る。
(E)子宮内胚移植
受容雌には、ICR系マウスを用い、移植前日に外陰部を観察して発情前期にあるものを選び、精管結紮雄と同居させる。翌日、膣栓を確認し、偽妊娠第3日目になった段階で受容雌として用いる。麻酔した受容雌の皮膚及び腹壁を切開し、切開部より、卵巣、卵管及び子宮の一部を体外に露出させ、卵巣に付着した脂肪をクレンメで固定する。100μlの移植用ドロップをディッシュの中央に作製し、移植する胚(20個/匹)を移植用ドロップに移す。次いで、移植用キャピラリーに、少量の培養液とともに10個の胚を吸引する。注射針を用いて子宮の卵管接合部に近い部位を切開し、卵巣側から子宮膣部側に向かって胚を含むキャピラリーを挿入し、胚を移植する。反対側の子宮へも、同様の操作手順で胚を移植する。
精子凍結保存液として、TYH培地ではなくCPA培地を用いた。CPA培地は以下のようにして調製した。
1,800mgのラフィノース5水和物、300mgのスキムミルク(BD Difco)及び146mgのL−グルタミンを10ml蒸留水に60℃にて溶解し、さらに、温浴中にて90分間60℃にて加温した。1.0mlずつマイクロ遠心管に移し、10,000×gで60分間遠心処理した。上清0.7mlを採取し、0.22mmの孔サイズの使い捨てフィルターで濾過し、CPA培地とし、室温で保存し、実験に用いた。
上記記載の定法に従って、C57BL/6Jマウスの新鮮精子、凍結精子及びICRマウスの冷蔵精子(2日間冷蔵)を調製した精子懸濁液を用いて体外受精を行なった。また、上記記載の定法に従って、マウスの新鮮未受精卵を調製し、卵丘・卵母複合体を得た。
実施例1と同様にして、種々の還元型グルタチオン濃度を用いて受精率を検討した。精子は、C57BL/6Jマウスの凍結精子を用い、図1に従って行った。結果を以下の表6に示す。
これらの結果より、グルタチオン濃度依存的に、透明帯の膨化が認められ、特に、2mM以上の濃度においては、透明帯の膨化が顕著に認められた。
精子の前培養における、グルタチオン及びメチル−β−シクロデキストリン(MBCD)の影響を、実施例1と同様にして確認した。精子の前培養に用いたTYH培地は、ウシ血清アルブミンの代わりにポリビニルアルコール(1.0mg/ml、SIGMA社より入手)用い、メチル−β−シクロデキストリン(0.75mM、SIGMA社より入手)を加えた以外は、上記の組成に従って調製した。また、TYH培地中のグルタチオン濃度は1mMとし、実施例1と同様にして調製し、使用直前にTYH培地に添加した。メチル−β−シクロデキストリンを含有するもの、グルタチオンを含有するもの、両者を含有するもの、のそれぞれについて受精率に対する影響を比較した。
一方、精子のプレインキュベーションに関しては、精子を1mMのグルタチオンで前処理しても、受精率の改善は見られないことが示された。しかし、精子をメチル−β−シクロデキストリンで処理したものは受精率が向上し、さらに未受精卵をグルタチオンで処理することと組み合わせた場合は、受精率が大きく向上していることが示された。
上記「1.卵子の調整」に従って準備した卵丘細胞が除去されたマウス新鮮未受精卵子を調製した。グルタチオンを100mM(30.7mg/ml)含有するHTF培地で、90秒間、20℃で処理した。行った操作を、図7を参照して説明する。シャーレの底に10μlのグルタチオン含有HTF培地を滴下し、その中に10個の胚を挿入した。30秒後には、透明帯の薄くなり始め(膨化し)、90秒後には、完全に透明帯が消失した。透明帯の消失を確認後、胚へダメージを避けるために、直ちに、1000μlのグルタチオンを含有しないHTF培地で希釈した。その後、透明帯除去胚を100μlのHTFのドロップ中へ移動し、さらに2回100μlのHTFのドロップ中へ胚を移動し、培養を続けた。
上記の実験を10回繰り返した。結果は、70個の胚を用いて、70個の透明帯除去胚を作製でき、66個の胚が胚盤胞期まで発生したことを確認した。この結果、胚の透明帯除去をすることにより、受精能が低い精子を用いた場合でも、非常に高い頻度で受精が行われ、発生が起こることが確認された。
グルタチオン濃度を50mM(15.4mg/ml)としたHTF培地を用いた以外は、実施例4と同様にして、未受精卵の透明帯の除去を行った。50mMの濃度のグルタチオンを用いた場合にも、透明帯は完全に除去されたが、透明帯が消失するまでに7〜8分かかった。実験を2回繰り返したが、結果は、20個の胚を用いて、20個の透明帯除去胚を作成できた。
定法に従って、8週齢の雌マウスを用いて、マウスの凍結未受精卵を調製した。凍結未受精卵を融解後、実施例4と同様にして、グルタチオンを100mM含有するHTF培地で、90秒間、20℃で処理し、その状態を顕微鏡により確認した。図5aは、グルタチオン処理前の未受精卵である。図5bは、グルタチオン処理後の未受精卵である。図に示されるように、グルタチオン処理の結果、凍結融解未受精卵の透明帯が除去された。
実施例1と同様にして、透明帯を除去した未受精卵を用いて受精を行ったところ、受精率は25%(125/492)であった。また、顕微鏡による観察により、精子の進入が容易になったことが示された(図5c)。本発明の方法が、凍結受精卵にも有効であることが確認された。
グルタチオン濃度及び処理時間が、透明帯の菲薄化及び除去に及ぼす影響を確認した。上記「1.卵母細胞の調整」に従って準備した卵丘細胞が除去されたマウス新鮮未受精卵子を調製した後、シャーレの底に10μlの種々の濃度(5,10,25,50,100,200,及び300mM)のグルタチオンを含有するHTF培地を滴下し、その中に20個の卵子を挿入し、透明帯が除去されるまでの時間を測定した。結果を表8に示す。
実施例1と同様にして、C57BL/6Jマウスのマウス凍結精子を用いて、受精を行なった。次いで、グルタチオンを1mM含有するHTF培地で、受精卵を洗浄し、さらに培養(発生)行った。翌日、受精が確認された胚(2細胞期胚)を回収し、上記の定法に従い、雌マウスに移植し、産子数を確認した。HTF培地中のグルタチオン濃度は1mMとし、グルタチオンを含有しないHTF培地を用いて受精及び培養を行なったものをコントロールとした。
その結果、HTF培地のみで、受精及び培養を行なった場合は、産子発生率は、31/80(38.8%)であるのに対し、グルタチオン含有HTF培地で受精及び培養を行なった場合は、43/80(53.8%)であった。グルタチオンによる透明帯の菲薄化により、産子発生率(着床率)が上昇し、効果的に産子を作製できることが示された。
遺伝子改変マウスの作製に用いるマウス発生初期胚(8細胞期胚)の透明帯の除去を行った。具体的には、調製したマウス発生初期胚(8細胞期胚)を、グルタチオンを100mM含有するHTF培地で、90秒間、20℃で処理し、その状態を顕微鏡により確認した。図6aは、グルタチオン処理前のマウス胚である。図6bは、グルタチオン処理後のマウス胚である。図に示されるように、グルタチオン処理の結果、遺伝子改変マウスの作製に用いる8細胞期胚からの透明帯の除去が容易に行え、ES細胞との共培養に適したマウス胚が調製された。
上記「1.卵母細胞の調整」に従って準備した卵丘細胞が除去されたマウス新鮮未受精卵子を調製した後、シャーレの底に100μlの種々の濃度(0,0.25,0.5,0.75,1.0,1.25,1.5及び2.0mM)のグルタチオンを含有するHTF培地を滴下し、その中に50個の卵子を挿入し、37℃で1時間処理した。その後、チオール反応性蛍光色素(Alexa Fluor 488 C5-maleimide)を用いて、透明帯中のタンパクチオールを検出した。蛍光標識の結果を図8に示す。また、各濃度のグルタチオンで処理した卵子の蛍光強度を図9に示す(コントロールを100%とした)。
実施例2と同様にして、他の還元剤(DTT、アスコルビン酸(VC)、及びエピカテキン(EC))による透明帯の菲薄化及び膨化に及ぼす影響を確認した。それぞれの還元剤の濃度による未受精卵の透明帯の膨化の程度は、顕微鏡下で撮影し、以下の式により求めた。
%Relative area in ZP=(各実験区の透明帯面積/0mMの透明体面積)X100
結果を図10に示す。
図10及び図11の結果より、DTT処理による透明体の菲薄化及び膨化が確認された。しかし一方、SH基を有しない還元剤である、アスコルビン酸又はエピカテキンでは、透明体の菲薄化又は膨化は起こらなかった。
実施例1と同様にして、種々の系統のマウスを用いて、グルタチオンによる受精率の向上を検討した。精子は、MBCDで前培養した新鮮精子及び凍結精子を用いて受精を行った。HTF培地中のグルタチオン濃度は、新鮮精子の場合は0.25mMとし、凍結精子の場合は1mMとした。また、精子は受精前に、実施例3と同様にして、MBCD含有TYH培地(グルタチオンなし)で前培養を行った。前培養時間は、新鮮精子と冷蔵精子の場合は1時間、凍結精子の場合は30分とした。新鮮精子の結果を表9に、凍結精子の結果を表10に示す。
実施例1と同様にして、C57BL/6Jマウスの冷蔵精子を用いて、MBCD及びグルタチオンによる受精率の向上を検討した。精子は、受精前に、実施例3と同様にしてMBCD含有TYH培地(グルタチオンなし)で前培養を行った。前培養時間は1時間とした。結果は、グルタチオンを添加しない場合の受精率が52.4%であるのに対し、グルタチオンを0.5mM添加した場合には、受精率は85.4%に上昇した。
Claims (14)
- 以下の工程:
a.非ヒト哺乳動物の精子を、0.1mM以上20mM以下のシクロデキストリン及び0.1mM以上10mM以下のカルシウムを含有する培地で前培養する工程、
b.非ヒト哺乳動物の未受精卵の透明帯の菲薄化のために、該未受精卵を、還元型グルタチオンを0.25mM以上10mM以下の濃度で含有する培地に添加し、該還元型グルタチオンにより処理された未受精卵を調製する工程、及び
c.工程aで前培養した該精子を、工程bで還元型グルタチオンで処理した該未受精卵の存在する培地中に添加し媒精を行う工程、
を含む受精方法。 - 前記未受精卵がマウス未受精卵である請求項1に記載の受精方法。
- 前記シクロデキストリンがメチル−β―シクロデキストリンである請求項1又は2に記載の受精方法。
- 受精に用いる精子がマウス凍結精子であり、工程aの精子の前培養を少なくとも10分間行う、請求項1〜3のいずれか一つに記載の受精方法。
- 前記還元型グルタチオン濃度が、0.15mg/ml以上3.0mg/ml以下である、請求項1〜4のいずれか一つに記載の受精方法。
- 培地中の前記還元型グルタチオン濃度が、0.15mg/ml以上0.46mg/ml以下である、請求項5に記載の受精方法。
- 前記工程cの媒精を、前記工程bと同じ培地中で前記未受精卵と前記精子を数時間共培養することにより行う、請求項5又は6に記載の受精方法。
- 受精に用いる精子が、還元型グルタチオンを含まない培地で前培養されている新鮮精子、凍結精子、冷蔵精子又はそれらの組み合わせである、請求項1〜7のいずれか一つに記載の受精方法。
- 以下の培地(i)及び(ii)からなる受精用培地キット:
(i)非ヒト哺乳動物の精子を前培養するための、0.1mM以上20mM以下のシクロデキストリン及び0.1mM以上10mM以下のカルシウムを含有する精子前培養用培地、及び
(ii)非ヒト哺乳動物の卵と精子の受精を行うための、0.25mM以上10mM以下の濃度の還元型グルタチオンを含有する受精用培地。 - 前記還元型グルタチオン濃度が、0.15mg/ml以上3.0mg/ml以下である、請求項9に記載の受精用培地キット。
- 前記還元型グルタチオン濃度が、0.15mg/ml以上0.46mg/ml以下である、請求項10に記載の受精用培地キット。
- 前記精子前培養用培地が、還元型グルタチオンを実質的に含有しない請求項9〜11のいずれかひとつに記載の受精用培地キット。
- 前記精子前培養用培地が、TYH培地、HTF培地、mR1ECM培地、BO培地、KSOM培地、Dulbeccos ’s PBS培地、M2培地、PB1培地、Hanks培地、Hepes-TALP培地、Hoppe&Pitts培地、m−KRB培地、HIS培地、mTALP培地、mT培地、MCM培地、CCM培地、K−MCM培地、BWW培地、Whitten培地、BMOC培地、T6培地、HT6培地、Bavister−TALP培地、SOF培地、Menezo−B2培地、Ham’s培地、Medium199培地、MEM培地、mWM培地からなる群より選ばれる培地であり、かつ、前記受精用培地が、HTF培地、TYH培地、mR1ECM培地、BO培地、KSOM培地、Dulbeccos ’s PBS培地、M2培地、PB1培地、Hanks培地、Hepes-TALP培地、Hoppe&Pitts培地、m−KRB培地、HIS培地、mTALP培地、mT培地、MCM培地、CCM培地、K−MCM培地、BWW培地、Whitten培地、BMOC培地、T6培地、HT6培地、Bavister−TALP培地、SOF培地、Menezo−B2培地、Ham’s培地、Medium199培地、MEM培地、mWM培地からなる群より選ばれる培地である、請求項9〜12のいずれか一つに記載の受精用培地キット。
- 前記非ヒト哺乳動物がマウスである、請求項9〜13のいずれか一つに記載の受精用培地キット。
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