JP5209636B2 - 糖尿病治療剤 - Google Patents
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Description
1.ヒト成熟型ケマリンを有効成分として含有してなる,糖尿病治療剤。
2.該糖尿病が1型糖尿病又は2型糖尿病である,上記1の糖尿病治療剤。
3.該糖尿病が2型糖尿病である,上記1の糖尿病治療剤。
4.血糖降下剤である,上記1ないし3の何れかの糖尿病治療剤。
5.インスリン作用増強剤である,上記1ないし4の何れかの糖尿病治療剤。
6.ヒトインスリンの投与を併せて受ける患者用の糖尿病治療剤である,上記1ないし5の何れかの糖尿病治療剤。
7.注射剤の形態である,上記1ないし5の何れかの糖尿病治療剤。
8.該注射剤が,ヒト成熟型ケマリンを含有してなる水性液剤である,上記7の糖尿病治療剤。
9.該注射剤が,ヒト成熟型ケマリンを含有してなる凍結乾燥物である,上記7の糖尿病治療剤。
10.該ヒト成熟型ケマリンが,配列番号5のアミノ酸配列を含んでなるものである,上記1ないし9の何れかの糖尿病治療剤。
11.患者の糖尿病の治療方法であって,該患者にヒト成熟型ケマリンの有効量を投与することを含むものである,方法。
12.該糖尿病が1型糖尿病又は2型糖尿病である,上記11の方法。
13.糖尿病治療用であるヒト成熟型ケマリン。
14.該糖尿病が1型糖尿病又は2型糖尿病である,上記13のヒト成熟型ケマリン。
マウス前脂肪細胞である3T3−L1細胞は,インビトロで前脂肪細胞から脂肪細胞への分化を研究する際に最も一般的に使用されている細胞である(Cell 5:19-27 (1975))。3T3−L1細胞〔American Type Culture Collection(ATCC)より入手〕は10%FCSを含むダルベッコ改変イーグル培地(DMEM培地)で継代培養した。3T3−L1細胞の脂肪細胞への分化誘導は既報に従い下記の手順で行った(Life Sci, 68: 2917-23(2001))。すなわち,250nmol/Lのデキサメサゾン,0.5nmol/Lの1−メチル3−イソブチルキサンチン,及び10μg/mLのインスリンを添加した10%FCSを含むDMEM培地で48時間培養した後,10μg/mLのインスリンを添加した10%FCSを含むDMEM培地に交換して更に48時間培養した。
分化前及び分化後の3T3−L1細胞(各々5×107個)から,QuickPrep mRNA Purification Kit (GEヘルスケアバイオサイエンス社)を用いてmRNAを抽出した。0.5μgのmRNAからReverTra AceTM(東洋紡)を用いてcDNA溶液を作成した。すなわち,0.5μLのcDNA溶液に,2μM dNTPs,5μCiの[33P]dATP(3000 Ci/mmol, New England Nuclear),AmpliTaq(Perkin-Elmer社),1μM anchor primer(T12MN,Clontech社)及び0.5μM arbitrary primer(10mer,GC比率=40〜60%,Clontech社)を含む4.5μLのPCR溶液を加えた。PCR反応は,[94℃:3分,40℃:3分,72℃:5分]で1サイクル,[94℃:30秒,40℃:2分,72℃:30秒]で35サイクル行い,最後に72℃で5分間反応させることにより行った。PCR反応により33PでラベルされたDNA断片を6%のポリアクリルアミドゲル電気泳動により展開させた後,X線フィルムをゲルに重ね合わせてフィルムを感光させた。X線フィルムを現像し,分化前及び分化後各々の細胞のcDNAからPCR反応により得られたDNA断片の電気泳動パターンをX線フィルム上で比較した。分化前と比較して分化後にX線フィルム上で濃さが変化したバンドを,脂肪細胞の分化により発現が誘導された遺伝子の断片と見なして,当該バンドに相当する部分のゲルを切り出し,再度,これをテンプレートして上記と同様の条件にてPCR反応を行った。ここで得られたPCR産物をpGEM-T Easy Vector(プロメガ社)へサブクローニングした。
ディフェレンシャルディスプレイ法で得られたマウスケマリン遺伝子の塩基配列について,GENEBANKを用いてホモロジーサーチを行い,ヒトプロケマリンをコードするDNAの塩基配列を得た(配列番号1)。ヒト脂肪組織cDNA(Clontech社)をテンプレートとし,プライマーf1(5’-GGATCCTGAGCTCACGGAAGCCCA-3’:配列番号6)とプライマーr1(5’-CTCGAGTTAGCTGCGGGGCAGGGCCTT-3’:配列番号7)をプライマーとして,ReverTra AceTM(東洋紡社)を用いてPCR反応を行い,ヒトプロケマリンをコードするcDNAを増幅させた。PCR反応は,[94℃:1分,55℃:1分,72℃:2分]で35サイクル行い,最後に72℃で5分間反応させた。増幅させたヒトプロケマリンcDNAをpCR2.1ベクター(Novagen社)に挿入した。このプラスミドをpCR2.1-chemerinとした。
pCR2.1-chemerinをNdeIとXhoIで消化し,ヒトプロケマリンcDNAを切り出した。切り出したcDNAをRediprime II Random Prime Labelling System (Amersham Biosciences社)を用いて[32P]dCTP(10mCi/mL, Amersham Biosciences社)で放射ラベルしこれをプローブとした。ノーザブロッティング用に心臓,脳,胎盤,肺,肝臓,骨格筋,腎臓及び膵臓由来のRNAをナイロン膜に転写したHuman 8-lane Multiple Tissue Northern Blot (BD Bioscience社)に,上記の放射ラベルしたプローブを常法に従いハイブリダイゼーションさせノーザンブロッティングを行った。その結果,ヒトケマリン遺伝子の発現は,主に肝臓と膵臓で検出できた(図1)。
pCR2.1-chemerinを鋳型とし,プライマーf2(5’-CATATGGAGCTCACGGAAGCCCA-3’:配列番号8)とプライマーr2(5’-GGATCCTTAGCTGCGGGGCAGGGCCTT-3’:配列番号9)をプライマーとしてヒトプロケマリンcDNAを増幅させた。PCR反応は,[94℃:1分,55℃:1分,72℃:2分]で35サイクル行い,最後に72℃で5分間反応させることにより行なった。増幅させたヒトプロケマリンcDNAをpT7BlueTベクター(Novagen社)に挿入した。このプラスミドをpT7Blue-chemerinとした。pT7Blue-chemerinをNdeIとBamHIで消化してヒトプロケマリンcDNAを切り出し,これをNdeIとBamHIで消化したpET14-bベクター(Novagen社)に挿入した。このプラスミドをpET-chemerinとした。pET-chemerinの作成方法の概略を図2及び図3に示す。pET-chemerinを用いて得られるヒトプロケマリンはN末端にヒスチジンタグが付加されるが,これをヒスタグ−ヒトプロケマリンとした。
pFastBac-1(GIBCO BRL)をBamHIにて消化後,BamHIの突出末端をクレノウフラグメント(東洋紡社)を用いて平滑末端化し,これをライゲーションキットVer.2(TAKARA)を用いてセルフライゲーションさせ,pFastBac-1のBamHIサイトを潰した。このプラスミドをpFastBac1[-BamHI]とした。
10%のFCSを含むグレース昆虫細胞培養培地(Invitrogen社)で懸濁したSf9細胞を6ウェルプレートに1ウェルあたり1.5×106個/2mLで播いた後,27℃で1.5時間静置してプレートに固着させた。プレートから培地を除き,細胞を1ウェルあたり2mLのグレース昆虫細胞培養培地・サプリメント不含(Invitrogen社)で洗浄した後,グレース昆虫細胞培養培地・サプリメント不含を1ウェルあたり2mL加え27℃で10分間静置した。5μLのCellfection(Invitrogen社)を100μLのグレース昆虫細胞培養培地・サプリメント不含と混和させ,これに5μLのヒト成熟型ケマリン発現用バキュロウイルスベクター溶液と100μLのグレース昆虫細胞培養培地・サプリメント不含を混和させたものを加えて更に混和させ,27℃で30分間静置した。静置後これに800μLのグレース昆虫細胞培養培地・サプリメント不含を加え,Bacmid-Cellfection混合液とした。プレートから培地を除き,1ウェルあたり1mLのBacmid-Cellfection混合液を加え,27℃で5時間静置した。静置後1ウェルあたり2mLの10%のFCSを含むグレース昆虫細胞培養培地で洗浄し,同培地を1ウェルあたり2mL加えて27℃で3日間培養した。培養後,培養上清を回収し,遠心分離(3000rpm,5分)により細胞残渣を除去したものをヒト成熟型ケマリン発現用種ウイルス液(発現用種ウイルス液)とした。発現用種ウイルス液は使用するまで4℃で保存した。
10%のFCSを含むグレース昆虫細胞培養培地で0.8×106個/mLの濃度でSf9細胞を懸濁させ,この懸濁液10mLを75cm2培養フラスコに播いた。27℃で1時間静置して細胞をフラスコに固着させた。培養液を除去し,4mLの上記培地と1mLの発現用種ウイルス液とを混和させた液を加え,室温で1時間ゆっくりと振とうさせてウイルスを感染させた。上清を除き,1フラスコあたり10mLの上記培地を加えて27℃で3日間培養した。培養後,培養上清を回収し,遠心分離(3000rpm,5分)により細胞残渣を除去したものをヒト成熟型ケマリン発現用ウイルス液とした。ヒト成熟型ケマリン発現用ウイルス液は使用するまで4℃で保存した。
High−FiveTM細胞を2.5×106個/mLの濃度に10%のFCSを含むグレース昆虫細胞培養培地で懸濁させ,この懸濁液20mLを150cm2培養フラスコ(15枚)に播いた。27℃で1時間静置して細胞をフラスコに固着させた。培養上清を除いた後,フラスコに9.5mLの上記培地と0.5mLのケマリン発現用ウイルス液を混和したものを加え,室温で1時間ゆっくりと振とうさせてウイルスを感染させた。上清を除き,1フラスコあたり20mLのEx-CELL405培地(JRH Biosciences社)を加えて27℃で3日間培養した。培養上清を回収し,遠心分離(3000rpm,5分)により細胞残渣を除去し培養上清を回収し,これを0.22μmフィルターでろ過した。
回収した上記培養上清を100mM HEPES緩衝液(pH7.0)で透析をした。これを予め50mM HEPES緩衝液(pH7.0)で平衡化したSP Sepharose(HiTrap SP XL,GE Healthcare Bio-Sciences社,カラムサイズ5mL)に通しヒト成熟型ケマリンを樹脂に吸着させた。5倍容の50mM HEPES緩衝液(pH7.0)で樹脂を洗浄後,塩化ナトリウムの濃度勾配で樹脂に吸着したヒト成熟型ケマリンを溶出させた。約400mMの塩化ナトリウム濃度に現れた主ピークを回収した。回収した溶出液をPBSで平衡化したTricorn Superdex 75(100/300)に通し,主ピークをヒトケマリンとして回収した。
回収したヒト成熟型ケマリンを10−20%グラジエントゲル(PAGミニ「第一」10/20,第一化学薬品)を用いてアクリルアミドゲル電気泳動した後,セミドライブロッティング法によりゲルからPVDF膜にタンパク質を転写させた。PVDF膜をポンソー3Rで染色し,染色タンパク質のスポットを切り出し,20%メタノールで脱色後,プロテインシークエンサーProcise492HT(アプライドバイオシステムズ社)を用いてN末端アミノ酸配列の解析を行った。その結果,N末端から9個のアミノ酸の配列が解読された(Asp-Pro-Glu-Leu-Thr-Glu-Ala-Gln-Arg:配列番号16)。N末端から2個のアミノ酸残基(すなわち,Asp-Pro-)はメリチンのシグナル配列由来のものであり,それ以降の7個のアミノ酸配列は,予想されたヒト成熟型ケマリンのアミノ酸配列と完全に一致した。すなわち,ここで精製されたヒト成熟型ケマリンは,天然のヒト成熟型ケマリンのN末端側に,メリチンのシグナル配列由来の2個のアミノ酸(Asp-Pro-)が付加したものである。
3T3−L1細胞へのグルコース取り込み量に対するヒト成熟型ケマリンの影響を既報に従って検討した(Biochem J. 1990; 271: 201-207)。すなわち,脂肪細胞に分化させた3T3−L1細胞である3T3−L1脂肪細胞を100ng/mLのヒト成熟型ケマリン存在下で12時間培養し(ケマリン添加群),更にヒトインスリンを10-8M及び10-7Mの濃度で添加し15分間培養した。ヒト成熟型ケマリンを添加しないものをケマリン不添加群とし,これについてもヒトインスリンを10-8M及び10-7Mの濃度で添加し15分間培養した。次に,何れの群の培養液にも0.5μCiの[1,2−3H]2−デオキシ−Dグルコース(NEN Life Science Products社)を添加し,更に15分間培養した。培養後,細胞をPBSで3回洗浄した。細胞を0.2MのNaOHを加えて溶解させ,液体シンチレーションカウンターを用いて放射活性を測定し,細胞に取り込まれたグルコース量を求めた。グルコース量は単位タンパク量(mg)当りの量として算出した。実験は3回繰り返し,t検定によりケマリン添加群とケマリン不添加群の群間比較を行い,p値<0.05の場合に統計学的有意差があるとした。
雄性C57BL/6Jマウスを,12時間の照明切換え調節および一定室温の下,餌と水は自由摂取として飼育し,8週齢に達したマウスを実験に供した。実験の前日からマウスを絶食させ,絶食開始18時間後に,200μLのPBSに溶解した40μgのヒト成熟型ケマリンを腹腔内に投与した(ケマリン投与群)。ヒト成熟型ケマリン溶液の代わりに200μLのPBSを投与したマウスをコントロール群とした。各群のマウスの個体数は9匹とした。ヒト成熟型ケマリン投与45分後に,両群の動物に0.009単位のヒトインスリン(和光純薬工業)を投与した。経時的に眼窩静脈叢より約5μLの血液を採取し,血中のグルコース濃度を血糖値測定器(グルコカードアルファGT−1660,アークレイ社)を用いて測定した。t検定によりケマリン投与群とコントロール群の群間比較を行い,p値<0.05の場合に統計学的有意差があるとした。
次に,レプチン受容体を欠損させた2型糖尿病のモデルマウスであるC57BL+S/J-m+/+Leprdbマウス(db/dbマウス,クレア社)を用いて,ヒト成熟型ケマリンのヒトインスリン感受性増強効果を検討した。雄性db/dbマウスを,12時間の照明切換え調節及び一定室温の下,餌と水は自由摂取として飼育し,7週齢に達したマウスを実験に供した。実験の前日からマウスを絶食させ,絶食開始20時間後に,250μLのPBSに溶解した100μgのヒト成熟型ケマリンを腹腔内投与した(ケマリン投与群)。ヒト成熟型ケマリン溶液の代わりに250μLのPBSを腹腔内投与したマウスをコントロール群とした。各群のマウスの個体数は9匹とした。ヒト成熟型ケマリン投与1.5時間後に,0.06単位のヒトインスリン(和光純薬)を投与した。経時的に眼窩静脈叢より約5μLの血液を採取し,血中のグルコース濃度を血糖値測定器(グルコカードアルファGT−1660,アークレイ社)を用いて測定した。t検定によりケマリン投与群とコントロール群の群間比較を行い,p値<0.05の場合に統計学的有意差があるとした。
ヒト成熟型ケマリン・・・・・50mg
塩化ナトリウム・・・・・・・・9mg
注射用水・・・・・・・・・全量1mL
上記成分比率でヒト成熟型ケマリンと塩化ナトリウムを注射用水に溶解させて水性注射剤とする。
ヒト成熟型ケマリン・・・・200mg
塩化ナトリウム・・・・・・・18mg
注射用水・・・・・・・・・全量2mL
上記成分比率でヒト成熟型ケマリンと塩化ナトリウムを注射用水に溶解させて水性注射剤とする。
ヒト成熟型ケマリン・・・・・100mg
アルブミン・・・・・・・・・100mg
塩化ナトリウム・・・・・・・・16mg
注射用水・・・・・・・・・・全量2mL
上記成分比率でヒト成熟型ケマリン,アルブミン,及び塩化ナトリウムを注射用水に溶解させ,凍結乾燥して凍結乾燥型水性注射剤とする。使用時に2mLの注射用水で溶解することにより,水性注射剤として復元する。
Claims (10)
- ヒト成熟型ケマリンを有効成分として含有してなる,糖尿病治療剤。
- 該糖尿病が1型糖尿病又は2型糖尿病である、請求項1の糖尿病治療剤。
- 該糖尿病が2型糖尿病である,請求項1の糖尿病治療剤。
- 血糖降下剤である,請求項1ないし3の何れかの糖尿病治療剤。
- インスリン作用増強剤である,請求項1ないし4の何れかの糖尿病治療剤。
- ヒトインスリンの投与を併せて受ける患者用の糖尿病治療剤である,請求項1ないし5の何れかの糖尿病治療剤。
- 注射剤の形態である,請求項1ないし5の何れかの糖尿病治療剤。
- 該注射剤が、ヒト成熟型ケマリンを含有してなる水性液剤である、請求項7の糖尿病治療剤。
- 該注射剤が、ヒト成熟型ケマリンを含有してなる凍結乾燥物である、請求項7の糖尿病治療剤。
- 該ヒト成熟型ケマリンが,配列番号5のアミノ酸配列を含んでなるものである,請求項1ないし9の何れかの糖尿病治療剤。
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