JP5157382B2 - Rna配列の検出方法 - Google Patents
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Adessi,Celine et al. "Solid Phase DNA amplification:Characterisation of primer attachment and amplification mechanisms" ,Nucleic Acids Research,2000,Vol.20,No.20,e87 Fixe , F. et al . "Functionalization of poly ( methyl- 5 -methacrylate )( PMMA) as a substrate for DNA microarrays" , NucleicAcids Research,2004,January 12,Vol.32 No.1 ,e9
(1)複数のRNA配列の検出方法であって、同一の連続する反応空間、RNAを捕捉するためのRNA捕捉用オリゴヌクレオチドを固定化した第1の領域、および検出対象となるRNA配列と相同する配列を有する2種類以上のRNA配列検出用オリゴヌクレオチドを各々固定化した第2の領域を有し、第1の領域と第2の領域が明確に区別され、第2の領域のRNA配列検出用オリゴヌクレオチドがスポット固定化する担体を用いて、
(a)検出対象のRNAを含む溶液を反応空間に供給し、前記RNAと固定化されたRNA捕捉用オリゴヌクレオチドとをハイブリダイズし前記RNAを捕捉する工程、
(b)捕捉されたRNAを鋳型にして固定化されたRNA捕捉用オリゴヌクレオチドを伸長してcDNA鎖を合成する工程、
(c)(b)で合成されたcDNA鎖を鋳型にして、DNA鎖を増幅する工程、
(d)増幅したDNA鎖と固定されたRNA配列検出用オリゴヌクレオチドとのハイブリダイズの状況を検出する工程、
を含むRNA配列の検出方法。
(2)前記RNA捕捉用オリゴヌクレオチドがdT配列である(1)記載のRNA配列の
検出方法。
(3)工程(a)で捕捉されるRNAがmRNAである(1)又は(2)記載のRNA配
列の検出方法。
(4)工程(c)のDNA鎖の増幅が、PCR、LCR、SDA、RCA、TMA、ICA、NASBA、TRCの何れかである(1)〜(3)いずれか記載のRNA配列の検出方法。
(5)工程(d)のハイブリダイズの状況の検出が蛍光インターカレーターによる蛍光検出である(1)〜(4)いずれか記載のRNA配列の検出方法。
(6)工程(c)のDNA鎖の増幅がPCRであり、増幅されるDNA鎖に標識が導入され、工程(d)において導入された標識を検出する(1)〜(4)いずれか記載のRNA配列の検出方法。
(7)工程(c)において、PCR反応系に標識されたモノヌクレオチドを添加する(6)記載のRNA配列の検出方法。
(8)前記担体の形状が、スライドガラス形状、フィルム形状、マイクロタイタープレー
ト形状、PCR用チューブ形状、及びPCR用マルチウェル形状の中から選択される1つである(1)〜(7)いずれか記載のRNA配列の検出方法。
(9)前記反応空間形状が、平面、ウェル、容器、及び微細流路の中から選択される1つである(1)〜(8)いずれか記載のRNA配列の検出方法。
(10)前記担体において第1の領域と第2の領域が流路中に順に形成されている(1)〜(9)いずれか記載のRNA配列の検出方法。
(11)前記担体表面にリン脂質の親水部を構成するリン脂質エステルより誘導される基を有する(1)記載のRNA配列の検出方法。
2−メタクリロイルオキシエトキシエチルホスホリルコリン基および10−メタクリロイルオキシエトキシノニルホスホリルコリン基等の(メタ)アクリロイルオキシアルコキシアルキルホスホリルコリン基;
アリルホスホリルコリン基、ブテニルホスホリルコリン基、ヘキセニルホスホリルコリン基、オクテニルホスホリルコリン基、およびデセニルホスホリルコリン基等のアルケニルホスホリルコリン基;
等の基を有し、ホスホリルコリン基がこれらの基中に含まれている構成とすることができる。
例えば、(i)担体上の高分子物質に含まれる複数の活性エステル基のうち、少なくとも一部の活性エステル基とプライマーとを反応させて共有結合を形成させることにより、担体表面でプライマーを固定化し、続いて(ii)プライマーを固定化した以外の担体表面の活性エステル基を不活性化する、すなわち残りの活性エステル基を不活性化することにより、プライマーを担体の表面に固定することができる。以下、それぞれの工程について説明する。
(第一の実施態様)
図1は、上記担体から得られる反応空間の一例を示す。同一反応空間内にRNA捕捉するためのオリゴヌクレオチド部分(RNA捕捉部)と検出するためのオリゴヌクレオチド部分(検出部)からなる。図2は、実施態様としてのRNA検出方法の手順を示すフローチャートである。図3および図4は、図2のフローチャートにしたがって担体の反応空間で行われる反応を模式的に示す図である。
プラスチック板を切削によって、図1のような反応空間を作製した。この反応空間を2−メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリンーブチルメタクリレートーp−ニトロフェニルオキシカルボニルポリエチレングリコールメタクリレート共重合体(poly(MPC−co−BMA−co―NPMA)(PMBN)、各基は、モル%で25:74:1)の0.5重量%エタノール溶液に浸漬することにより、表面にホスホリルコリン基と活性エステル基とを有する高分子物質を導入して、PMBNをコ−トした担体を得た。以下PMBNコート担体と称す。
プライマーとして、表1に示す5’末端がアミノ基で修飾されたオリゴDNAを各々0.25M炭酸バッファ(pH9.0)を用いて溶解し、10μMのオリゴDNA溶液を調製した。捕捉用プライマーのオリゴDNA溶液を上記PMBNコート担体に図1のように固定化した。また、検出用プライマーのオリゴDNA溶液を同様に図1のようにスポット形状に点着し、担体を80℃で1時間放置することで、担体に固定化した。超純水により洗浄を行った後、ブロッキング処理をおこなった。
正常ラットおよび高血圧肥満ラットの脂肪細胞を用意し、各細胞にグアニジンを含む細胞溶解液を加え、ピペッティング等によりよく攪拌し、ラット脂肪細胞の細胞溶解液を得た。これら溶液を希釈したものを別々のPMBNコート担体に50μlを分注し、室温で15分静置した。静置後、界面活性剤を含む緩衝液を200μl分注、吸引を繰り返し2回洗浄した。担体表面上のdTプライマーによりポリAを有するmRNAが捕捉されており、細胞溶解液に含まれるmRNA以外の生体由来物質を除去することができる。
反応液として、Reverse Transcriptase M-MLV (RNAse H-)、5×Reverse Transcriptase M-MLV Buffer 、RNAse Inhibitor(Super)、20mMdTTP、20mMdATP、20mMdGTP、20mMdCTP、DEPC処理水(treated water)を加えて調製した。この溶液を各担体に50μlを分注し、42℃で15分以上インキュベートした。インキュベート後、溶液の除去を行った。
反応液として、ExTaq HS(タカラバイオ製)、10×ExTaq Buffer、10μM PCR Forwardプライマー、10μM PCR Reverseプライマー、20mMビオチン化dUTP、20mMdATP、20mMdGTP、20mMdCTP、DEPC処理水(treated water)を加えて調製したものを担体に50μlを分注し、PCRを行った。このとき、増幅されたPCR産物と検出用の固定化プライマーの伸長反応が起こり、ラベル化される。なお、Forwardプライマー、Reverseプライマーはラット由来β Actinおよびadrenergic receptor β3を選択した。プライマーの配列について表2に示す。
上記伸長反応の後、DNA伸長用反応液の除去および洗浄を行い、ストレプトアビジンを標識したアルカリフォスファターゼ溶液を基板表面に供給し、37℃で30分放置後、アルカリフォスファターゼ溶液を除去後、基板の洗浄を行い、続いてNBT/BICP溶液を供給し、37℃で30分静置し、酵素反応を行った。基板を洗浄した後、PNBMコート担体表面において明確にスポット状に点着部分への着色が観察できた。基板のプライマー点着部分の着色像をCCDカメラにより取り込み、取り込んだデジタルデータを画像処理ソフト(NIHイメージ)により処理し、着色度合いを数値化した。結果を表3に示す。
14 RNA捕捉用オリゴヌクレオチド
15 RNA配列検出用オリゴヌクレオチド
16 RNA鎖
18 cDNA鎖
20 反応空間
21 ラベル化DNA鎖
22 細胞溶解物を含む試料
Claims (11)
- 複数のRNA配列の検出方法であって、同一の連続する反応空間、RNAを捕捉するためのRNA捕捉用オリゴヌクレオチドを固定化した第1の領域、および検出対象となるRNA配列と相同する配列を有する2種類以上のRNA配列検出用オリゴヌクレオチドを各々固定化した第2の領域を有し、第1の領域と第2の領域が明確に区別され、第2の領域のRNA配列検出用オリゴヌクレオチドがスポット固定化する担体であって、
該担体表面が親水性である担体を用いて、
(a)検出対象のRNAを含む溶液を反応空間に供給し、前記RNAと固定化されたRNA捕捉用オリゴヌクレオチドとをハイブリダイズし前記RNAを捕捉する工程、
(b)捕捉されたRNAを鋳型にして固定化されたRNA捕捉用オリゴヌクレオチドを伸長してcDNA鎖を合成する工程、
(c)(b)で合成されたcDNA鎖を鋳型にして、DNA鎖を増幅する工程、
(d)増幅したDNA鎖と固定されたRNA配列検出用オリゴヌクレオチドとのハイブリダイズの状況を検出する工程、
を含むRNA配列の検出方法。 - 前記RNA捕捉用オリゴヌクレオチドがdT配列である請求項1記載のRNA配列の検出
方法。 - 工程(a)で捕捉されるRNAがmRNAである請求項1又は2記載のRNA配列の検出
方法。 - 工程(c)のDNA鎖の増幅が、PCR、LCR、SDA、RCA、TMA、ICA、NASBA、TRCの何れかである請求項1〜3いずれか記載のRNA配列の検出方法。
- 工程(d)のハイブリダイズの状況の検出が蛍光インターカレーターによる蛍光検出である請求項1〜4いずれか記載のRNA配列の検出方法。
- 工程(c)のDNA鎖の増幅がPCRであり、増幅されるDNA鎖に標識が導入され、工程(d)において導入された標識を検出する請求項1〜4いずれか記載のRNA配列の検出方法。
- 工程(c)において、PCR反応系に標識されたモノヌクレオチドを添加する請求項6記載のRNA配列の検出方法。
- 前記担体の形状が、スライドガラス形状、フィルム形状、マイクロタイタープレート形状、PCR用チューブ形状、及びPCR用マルチウェル形状の中から選択される1つである請求項1〜7いずれか記載のRNA配列の検出方法。
- 前記反応空間形状が、平面、ウェル、容器、及び微細流路の中から選択される1つである請求項1〜8いずれか記載のRNA配列の検出方法。
- 前記担体において第1の領域と第2の領域が流路中に順に形成されている請求項1〜9いずれか記載のRNA配列の検出方法。
- 前記担体表面にリン脂質の親水部を構成するリン脂質エステルより誘導される基を有する請求項1いずれか記載のRNA配列の検出方法。
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