JP5132780B2 - 水産用サブユニットワクチン - Google Patents
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Description
IPNVの主な感染対象は、飼育はじめのサケ、マス類の稚魚で、飼育はじめの数週間及びその後の淡水時期にもIPNV感染疫病発生の危険性がある。
ところが、1980年代中期に既に海水への適応が完了したサケの稚魚(post-smolt)もIPNVに感染し、疫病が発生した事情がある、チリー、アメリカ及びノルウェイなど主な大西洋サケ(Atlantic salmon)養殖国でも、伝染性膵臓壊死症(IPN)の形跡が見られる。
ノルウェイのサケ養殖場では、伝染性膵臓壊死症(IPN)は最もひどい伝染疾患の一つであり、淡水時期のサケがIPNVに感染して死亡する死亡率は100%に達し、一方海水時期のサケがIPNVに感染して死亡する死亡率は10〜20%から70%まで上昇することがある。
そのため、IPNVのサケ養殖に対する影響は甚大で、少しでも注意が足りないと、重大な経済的損失を招く。
死毒ワクチン製品の研究開発には、その他のウィルス感染のない細胞株を取得しなければならないが、現在魚の細胞株はまだ普及しておらず、且つ選択機会が少ない、そのため死毒ワクチン製品の発展は容易でなく、コストも高くつく。
一方、サブユニットワクチンは、遺伝子工学技術によって操作できる、よく見掛けるサブユニットワクチンは、大腸菌を利用して発現されるVP2タンパク質、或いは昆虫桿状ウィルス(Insect Baculovirus)によってIPNVの構造タンパク質を発現することによって、サケ体内特定の抗体反応を誘導させたものである。
しかし、これらワクチンによる保護効果は養殖業で必要とする標準に達することが出来ない。
(1)ワクチン中の抗原は免疫反応を誘導するキーポイント細胞に適当に対応していない。
(2)ワクチン中の抗原は外来ルート(exogenous route)によって捕捉されて、免疫反応を誘導するキーポイント細胞の細胞質の中に入り込んで小胞体と結合することが出来ない。
(3)従って、ワクチン中の抗原はエフェクタセル(effector cell)へ正確に現れることが出来ない。
緑膿菌が嚢胞性線維症患者に感染すると、患者に慢性呼吸道感染が現れ、慢性肺炎に変化し、若し感染免疫力が欠如するガン患者或いはひどく焼けどした患者の場合は、急性肺炎或いは菌毒素血症が出現し易い。
感染者が病気に至る主な原因は、緑膿菌によって生じる緑膿菌外毒素A(exotoxin A)である。
このほかに、本発明者は、小胞体保留シグナル(ER retention signal,即ちKDELタンパク質シグナルペプチド(signal peptide)(タンパク質のC端末にKDELタンパク質シグナルペプチドを有するものは、小胞体へ保留される)を使用して、魚類疾病抗原タンパク質が間違いなく正確に小胞体へ送られることを確保した。
好ましい実施例において、前記発現ベクターはpET24aである;前記発現宿り主は大腸菌(Escherichia coli)を含み、ただしこれに限らない、好ましい実施例において、前記発現宿り主は大腸菌(E. coli) BL21である。
好ましい実施例において、前記補佐剤はオイル状補佐剤である。
(1)本発明に係る水産用サブユニットワクチンは、遺伝子組み換え技術を利用して、抗原性タンパク質とPEタンパク質(即ち緑膿菌外毒素Aのトランスロケーション・ドメインのタンパク質)及びKDELタンパク質シグナルペプチドに対して組み替え融合を行うことによって、抗原の細胞中における表現を促進し、より好ましい免疫効果を得られ、魚類が比較的高い免疫力を獲得できる。
(2)本発明に係る水産用サブユニットワクチンは、遺伝子組み換え技術を利用して研究開発したサブユニットワクチンであり、生産工程が簡単で、コストが安く、純度の高い、安全性が優れているなどの長所が有る。
本実施例では、伝染性膵臓壊死症ウィルス(IPNV)のVP2ウイルスタンパ質の断片を水産用サブユニットワクチンの抗原とし、且つ前記VP2タンパク質断片のN端末上に緑膿菌外毒素Aの受容体結合区及びトランスロケーションドメインのタンパク質(即ち:PEタンパク質)を加え、前記VP2タンパク質断片のC端末上にKDELタンパク質シグナルペプチドを加えて、抗原融合タンパク質(PE-VP2-KDEL)を形成した。
先ず、KDELタンパク質シグナルペプチドのコード化された遺伝子配列を取って、pET24a質体の中へクローニングし、pET24a-KDEL質体を形成した(図1(a)、(b)に示すように)。
それから、IPNV VP2タンパク質第173個から第431個までコード化されたアミノ酸遺伝子配列を取り、前記pET24a-KDEL質体の中へクローニングして、pET24a-VP2-KDEL質体を形成した(図1(b)、(c)に示すように)。
最後に、PEタンパクの遺伝子配列を前記pET24a-VP2-KDEL質体の中へクローニングして、pET24a-PE-VP2-KDEL質体を形成した(図1(c)、(d)に示すように)。
KDELタンパク質シグナルペプチド (SEQ ID No: 10)の コード化された遺伝子配列はSEQ ID No: 9に示すように、ポリメラーゼ連鎖反応(polymerase chain reaction, PCR)によって増幅(amplification)されたものである、KDEL特異性プライマー(KDEL specificity primers)の配列は下記の通りである。
正方向プライマー(Hind III制限酵素の切断部位を含有):
5’-CCCAAGCTTCTCAAAAAAGACGAACTGAGAGATGAACTGAAAGA-3’ (SEQ ID No: 15)
Hind III
逆方向プライマー(Xho I制限酵素の切断部位を含有):
5’-GTGCTCGAGTCATTACAGTTCGTCTTTCAGTTCATCT-3’ (SEQ ID No: 16)
Xho I
PCR反応条件は、94℃で3分間反応後、95℃で 1分間、55℃で 1分間、72℃で 20秒,合計五回の循環で、最後に72℃で1分間伸長反応(elongation)を行った;それぞれPCR産物とpET24aベクターでダブル制限酵素切断(Hind III及びXho I二種類の制限酵素で酵素切断反応を行った)を行い、更に酵素切断後のPCR産物とpET24aベクターで純化及び接合(ligation)作用を行って、PCR産物をpET24aベクターへクローンしてpET24a-KDEL質体を形成し、且つpET24a-KDEL質体をクローニング作用(transformation)によって宿り主細胞大腸菌(E. coli) RR1の中へ送り込み、大量増殖を行うと共に、配列決定を行い、増殖したPCR産物の配列に間違いがないことを確認した。
本実施例において使用したIPNV VP2タンパク質は二種類の配列を有し、それぞれVP2-015タンパク質及びVP2-016タンパク質である、そのタンパク質の全長配列はSEQ ID No: 1及びSEQ ID No: 4に示す通りで、両者の差異は、VP2-015タンパク質において、第217、221、247番目のアミノ酸配列はそれぞれTATで有る;一方、VP2-016タンパク質において、第217、221、247番目のアミノ酸配列はそれぞれPTAである。
正方向プライマー(EcoR I制限酵素の切断部位を含有):
5’-CGGAATTCCCATACGTCCGCCTAGAGGAC-3’ (SEQ ID No: 17)
EcoR I
逆方向プライマー(Hind III制限酵素の切断部位を含有):
5’-CCCAAGCTTCGTGATTTCGTTGAAGA-3’ (SEQ ID No: 18)
Hind III
PCR反応条件は、94℃で5分間反応後、94℃で 1分間、55℃で 1分間、72℃で 1分間、合計30回の循環で、最後に72℃で7分間反応して伸長反応を行った;PCR産物と前記pET24a-KDEL質体をそれぞれダブル制限酵素切断を行い、(EcoR I及びHind IIIの二種類の制限酵素によって酵素切断反応を行った、)更に酵素切断後のPCR産物とpET24a-KDEL質体によって純化及び接合作用を行い、PCR産物をpET24a-KDEL質体へクローンしてpET24a-VP2-015-KDEL質体及びpET24a-VP2-016-KDEL質体を形成すると共に、前記二種類のpET24a-VP2-KDEL質体をクローニング作用(transformation)によって宿り主細胞大腸菌(E. coli) RR1の中へ送り込み、大量増殖を行うと共に、配列決定を行い、増殖したPCR産物の配列に間違いがないことを確認した。
PEタンパク質(SEQ ID No: 8)をコード化した遺伝子配列はSEQ ID No: 7に示す通りで、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によって増幅を行ったものである、PE特異性プライマー(PE specificity primers)の配列は下記の通りである、
正方向プライマー(BamH I制限酵素切断部位を含有):
5’-CGGGATCCGCCGAAGAAGCTTTCGACCTCTGGAACGAATGC-3’ (SEQ ID No: 19)
BamH I
逆方向プライマー(EcoR I制限酵素切断部位を含有):
5’-CGGAATTCGCAGGTCAGGCTCACCAC-3’ (SEQ ID No: 20)
EcoR I
PCR反応条件は、94℃で5分間反応後、95℃で 1分間、55℃で 1分間、72℃で 1.5分間、合計30回の循環で、最後に72℃で7分間反応して伸長反応を行った;PCR産物と前記pET24a-VP2-015-KDEL質体或いはpET24a-VP2-016-KDEL質体をそれぞれダブル制限酵素切断を行い(BamH I及びEcoR Iの二種類の制限酵素で酵素切断反応を行った),更に酵素切断後のPCR産物とpET24a-VP2-015-KDEL質体或いはpET24a-VP2-016-KDEL質体を純化及び接合作用を行って、PCR産物をpET24a-VP2-015-KDEL質体或いはpET24a-VP2-016-KDEL質体へクローニングして、pET24a-PE-VP2-015-KDEL質体(その上にはPE-VP2-015-KDEL抗原融合タンパク質の遺伝子配列がある、SEQ ID No: 11に示すように)を形成し、或いはpET24a-PE-VP2-016-KDEL質体(その上にはPE-VP2-016-KDEL抗原融合タンパク質の遺伝子配列がある、SEQ ID No: 13に示すように)、且つpET24a-PE-VP2-015-KDEL質体或いはpET24a-PE-VP2-016-KDEL質体をクローニング作用(transformation)によって宿り主大腸菌(E. coli BL21)の中へ送り込むと共に、配列決定を行って増殖したPCR産物の配列に間違いがないことを確認した。
IPNVのVP2抗原性タンパク質断片(PEタンパク質及びKDELタンパク質シグナルペプチドを含まない)を対照として、それぞれVP2-015タンパク質及びVP2-016タンパク質第173から431番目のアミノ酸配列を抗原とした;VP2-015タンパク質第173から431番目のアミノ酸(そのアミノ酸配列はSEQ ID No: 3に示す通り)をコード化した遺伝子配列はSEQ ID No: 2に示す通り、VP2-016タンパク質第173から431番目のアミノ酸(そのアミノ酸配列はSEQ ID No: 6に示す通り)をコード化した遺伝子配列はSEQ ID No: 5に示す通りで、それぞれポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によって増幅した、VP2特異性プライマー(VP2 specificity primers)の配列は下記の通り:
正方向プライマー(EcoR I制限酵素切断部位を含有):
5’-CGGAATTCCCATACGTCCGCCTAGAGGAC-3’ (SEQ ID No: 17)
EcoR I
逆方向プライマー(Hind III制限酵素切断部位を含有):
5’-CCCAAGCTTCGTGATTTCGTTGAAGA-3’ (SEQ ID No: 18)
Hind III
PCR反応条件は、94℃で5分間反応後、94℃で 1分間、55℃で 1分間、72℃で 1分間、合計30回循環を行い、最後に72℃で7分間反応して伸長反応を行った;それぞれPCR産物とpET24aベクターをダブル制限酵素切断(EcoR I及びHind III2種類の制限酵素で酵素切断反応を行った)を行い、更に酵素切断後のPCR産物とpET24aベクターに対して純化及び接合作用を行い、PCR産物をpET24aベクターへクローニングしてpET24a-VP2-015質体及びpET24a-VP2-016質体を形成し、且つ前記2種類のpET24a-VP2質体をそれぞれクローニング作用によって発現宿り主大腸菌(E. coli BL21)の中へ送り込むと共に、配列決定を行って増殖したPCR産物の配列が間違いないことを確認した。
1.抗原融合タンパク質の発現
前記クローニング作用を経てpET24a-PE-VP2-015-KDEL質体或いはpET24a-PE-VP2-016-KDEL質体を含有する大腸菌BL21、及びpET24a-VP2-015質体或いはpET24a-VP2-016質体を含有する大腸菌BL21を、それぞれ50 μg/mlの kanamycinを含有するLB液体培養基を37℃で宵越し培養した後、10 mlの培養液に990 mlの50 μg/ml kanamycinを含有するLB液体培養基内に加え、37℃で3時間250 rpmで振動培養した後、更に1 ml 1M IPTG (最終濃度は1 mM)を加えて抗原融合タンパク質(即ちPE-VP2-015-KDEL抗原融合タンパク、そのアミノ酸配列はSEQ ID No: 12に示す通り;或いはPE-VP2-016-KDEL抗原融合タンパク質、そのアミノ酸配列はSEQ ID No: 14に示す通り)の発現を誘導した、IPTGを加えて引き続き3時間培養した;続いて、4℃で30分間6,500 xg遠心分離した後、上清液を除去、遠心分離済みの細胞団塊を回収し、且つ細胞団塊を-70℃下において使用に備えた。
前記細胞団塊を200 mlリン酸塩緩衝溶液(PBS)で新たに懸濁し、均一に混合した後、4℃で15分間6,500 xg遠心分離し、且つ上清液を除去、遠心分離済みの細胞団塊を回収した;前記ステプを少なくとも2回繰り返した後、100 ml 1x IBの洗浄緩衝液(20 mM Tris-HCl, pH 7.5, 10 mM EDTA, 1% Triton X-100)によって細胞団塊を新たに懸濁し、且つ細胞懸濁液を氷の上に置き、細胞が破裂したとき高温が発生するのを防いだ;続いて、100 μg/mlのリゾチーム(lysozyme)を、30℃下で30分間おいて細胞を溶解し、且つ超音波振動(sonication)或いは高速均質乳化機(polytron)で細胞溶液を、前記溶液の粘り気がなくなるまで処理した;その後、10分間以上10,000 xg遠心分離を行い、上清液を除去後、100 ml 1x IB洗浄緩衝液で徹底的に改めて該沈殿物を懸濁した;前記遠心分離及び懸濁のステップを、沈殿物が白色になるまで繰り返した;続いて、更に100 ml 1x IB洗浄緩衝液で新たに該沈殿物を懸濁し、且つ懸濁液を重量が分かっている遠心分離管の中に移し、10分間以上10,000 xg遠心分離を行って、タンパク質内封入体(inclusion bodies)を収集し、徹底的に上清液を除去した後、前記タンパク質内封入体の重量を計った。
抗原融合タンパク質PE-VP2-015-KDEL (SEQ ID No: 12)、抗原融合タンパク質PE-VP2-016-KDEL (SEQ ID No: 14)、VP2-015抗原性タンパク質(SEQ ID No: 3)、及びVP2-016抗原性タンパク質(SEQ ID No: 6)をそれぞれ一価ワクチンとして調製した:各抗原融合タンパク質或いは抗原性タンパク質を含有するタンパク質内封入体を、直接リン酸緩衝液(PBS)で分散して定量化を行い、1mlのワクチン中に10ミクロングラム(μg)の抗原融合タンパク質或いはVP2抗原性タンパク質を含有させ、且つ油中水型乳化剤(water-in-oil emulsion)で埋封し、4℃下に置いて使用に備えた。
試験に使われたサケの基本データは下記の通り:
サケの銀毛化(smoltification)期間の養殖環境は下記の通り:
サケ抗ウィルス試験は試験組4組と対照組1組に分け、どの組も30匹のサケを含み、ワクチンを腹腔注射(intraperitoneal injection, i.p.)法によってサケ体内へ接種、サケ一匹のワクチン注射量は0.1 ml、即ちサケ一匹に付き1ミクロングラム(μg)の抗原融合タンパク質或いはVP2抗原性タンパク質を注射;抗ウィルス試験の設計は下記の通り:
試験組と対照組の試験は2回繰り返し、ワクチン接種後900℃日して(温度に日数を掛け、若し温度が20℃なら45日要し;若し温度が10℃なら90日要す)、試験組サケを塩水環境下に移す:
全てのサケは皆標準手順に従って飼育、未感染(naive)サケに1.0x105 TCID50/ml伝染性膵臓壊死症ウィルス(IPNV)を感染した強毒株血清型Sp 遺伝子型TAT (serotype Sp and genotype TAT)を腹腔注射(i.p.)して、感染帯菌者(challenge carrier)として同居感染させた;試験用サケを塩水環境へ移して1日後、どの組にも皆6匹(被試験魚数の20%)の感染帯菌者を入れ、対照組と試験組の死亡状況を観察且つ記録した、観察期間中対照組の死亡が60%以上になった時初めて統計分析を行い、免疫保護率(relative percent survival, R.P.S.)を計算し、且つカイ二乗検定(chi-square test)で統計分析した、免疫保護率(R.P.S.)の計算方式は下記の通り:
免疫保護率(R.P.S.) = [1- (試験組死亡率/対照組死亡率)] x 100%
続いて、試験サケを犠牲にして血液及び前腎(head kidney)を採取、血漿を収集且つ冷凍して、酵素免疫分析法(ELISA)で分析を行った、前腎はウィルス培養試験用として死亡魚の死亡が確実にIPNVによることを確保した。
各組の免疫保護率(R.P.S.)は図3に示す通り、試験組1 (抗原性タンパク質VP2-015を含有するワクチンを接種)の免疫保護率(R.P.S.)は6%、対照組(ワクチン未接種)と顕著な差異はなかった(対照組は図3に表示せず、免疫保護率の計算方式によれば、対照組の免疫保護率は0%);試験組2 (抗原融合タンパク質PE-VP2-015-KDELを含有するワクチンを接種)は23%の免疫保護率があった、且つ試験組1と比べると、両者には顕著な差異(p<0.01)があった;そして試験組3 (抗原性タンパク質VP2-016を含有するワクチンを接種)の免疫保護率は12%で、対照組に比べ(ワクチン未接種)保護効果があり、且つ両者には顕著な差異 (p<0.05) があった;試験組4 (抗原融合タンパク質PE-VP2-016-KDELを含有するワクチンを接種)の免疫保護率は39%で、且つ試験組3と比較すると、両者には顕著な差異(p<0.01)があった。
Claims (24)
- 水産用サブユニットワクチンであって、
抗原融合タンパク質及び適当なベクター或いは補佐剤を含み、
前記抗原融合タンパク質は、アミノ酸端末(amino terminal)からカーボキシル端末(carboxyl terminal)まで順次:
緑膿菌(Pseudomonas aeruginosa)外毒素A (exotoxin A)の受容体結合区及びトランスロケーションドメイン(translocation domain)タンパク質と;
魚類疾病を引き起こすウィルス抗原性タンパク質と;
タンパク質シグナルペプチド(signal peptide)を含むことを特徴とする、
水産用サブユニットワクチン - 前記緑膿菌外毒素Aの受容体結合区及びトランスロケーションドメインタンパク質はSEQ ID No: 8の配列を有することを特徴とする請求項1に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記タンパク質シグナルペプチドは、SEQ ID No: 10の配列を有することを特徴とする請求項1に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記魚類疾病を引き起こすウィルス抗原性タンパク質は、SEQ ID NO: 22タンパク質配列の伝染性造血器壊死症ウィルス(Infectious Hematopoietic Necrosis Virus, IHNV) のGタンパク質或いはその断片を有することを特徴とする請求項1に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記魚類疾病を引き起こすウィルス抗原性タンパク質は、SEQ ID NO: 24タンパク質配列の伝染性造血器壊死症ウィルス( IHNV)のNタンパク質或いはその断片を有することを特徴とする請求項1に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記魚類疾病を引き起こすウィルス抗原性タンパク質は、SEQ ID NO: 26タンパク質配列の神経壊死症原因ウィルス(Nervous Necrosis Virus, NNV) RNA2タンパク質或いはその断片を有することを特徴とする請求項1に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記魚類疾病を引き起こすウィルス抗原性タンパク質は、SEQ ID NO: 28タンパク質配列のハタ イリドウィルス(Grouper Iridovirus, GIV)の外皮タンパク(Major Capsid protein, MCP)或いはその断片を有することを特徴とする請求項1に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記魚類疾病を引き起こすウィルス抗原性タンパク質は、SEQ ID NO: 30タンパク質配列のハタ イリドウィルス(GIV)の錐体膜タンパク質(myristylated membrane protein, MMP)或いはその断片を有することを特徴とする請求項1に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記魚類疾病を引き起こすウィルス抗原性タンパク質は、SEQ ID NO: 32タンパク質配列のコイ春ウィルス血症ウィルス(Spring Viremia of Carp Virus, SVCV) のGタンパク質或いはその断片を有することを特徴とする請求項1に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記魚類疾病を引き起こすウィルス抗原性タンパク質は、SEQ ID NO: 34タンパク質配列のコイ春ウィルス血症ウィルス(SVCV) のNタンパク質或いはその断片を有することを特徴とする請求項1に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記魚類疾病を引き起こすウィルス抗原性タンパク質は、SEQ ID NO: 36タンパク質配列のウィルス性出血性敗血症(Viral Hemorrhagic Septicemia Virus, VHSV) のGタンパク質或いはその断片を有することを特徴とする請求項1に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記魚類疾病を引き起こすウィルス抗原性タンパク質は、SEQ ID NO: 38タンパク質配列のウィルス性出血性敗血症(VHSV) のNタンパク質或いはその断片を有することを特徴とする請求項1に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記魚類疾病を引き起こすウィルス抗原性タンパク質は、SEQ ID NO: 1或いはSEQ ID NO: 4タンパク質配列の伝染性膵臓壊死症ウィルス(Infectious Pancreatic Necrosis Virus, IPNV)のウィルスタンパク質VP2或いはその断片を有することを特徴とする請求項1に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記補佐剤は、水酸化アルミニウムゲル、明礬、フロイント不完全アジュバント、オイル状補佐剤、水溶性補佐剤、或いは水中油中水型補佐剤(water-in-oil-in-water W/O/W )であることを特徴とする請求項1に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 抗伝染性膵臓壊死症(Infectious Pancreatic Necrosis, IPN)の水産用サブユニットワクチンであって、抗原融合タンパク質及び薬学的に受容可能なベクターを含み、前記抗原融合タンパク質は、アミノ酸端末からカルボキシル基端末まで順次:
緑膿菌外毒素Aの受容体結合区及びトランスロケーションドメインタンパク質と;
抗伝染性膵臓壊死症のウィルス抗原性タンパク質と;
タンパク質シグナルペプチド(signal peptide)と、を含むことを特徴とする。 - 前記緑膿菌外毒素Aの受容体結合区及びトランスロケーションドメインタンパク質は、SEQ ID No: 8の配列を有することを特徴とする請求項15に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記抗伝染性膵臓壊死症のウィルス抗原性タンパク質は、抗伝染性膵臓壊死症ウィルス(Infectious Pancreatic Necrosis Virus, IPNV)のウィルスタンパク質VP2であり、SEQ ID No: 1の配列を有することを特徴とする請求項15に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記抗伝染性膵臓壊死症のウィルス抗原性タンパク質は抗伝染性膵臓壊死症ウィルス(IPNV)のウィルスタンパク質VP2第173から第431番目のアミノ酸配列であり、SEQ ID No: 3の配列を有することを特徴とする請求項15に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記抗伝染性膵臓壊死症のウィルス抗原性タンパク質は、抗伝染性膵臓壊死症ウィルス(IPNV)のウィルスタンパク質VP2であり、SEQ ID No: 4の配列を有することを特徴とする請求項15に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記抗伝染性膵臓壊死症のウィルス抗原性タンパク質は抗伝染性膵臓壊死症ウィルス(IPNV)のウィルスタンパク質VP2第173から第431番目のアミノ酸配列であり、SEQ ID No: 6の配列を有することを特徴とする請求項15に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記タンパク質シグナルペプチドは、SEQ ID No: 10の配列を有することを特徴とする請求項15に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記抗原融合タンパク質は、SEQ ID No: 12の配列を有することを特徴とする請求項15に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記抗原融合タンパク質は、SEQ ID No: 14の配列を有することを特徴とする請求項15に記載の水産用サブユニットワクチン。
- 前記補佐剤は、水酸化アルミニウムゲル、明礬、フロイント不完全アジュバント、オイル状補佐剤、水溶性補佐剤、或いは水中油中水型補佐剤(W/O/W )であることを特徴とする請求項15に記載の水産用サブユニットワクチン。
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