JP5117928B2 - イムノクロマトグラフデバイス - Google Patents

Description

本発明は、分析対象物を含む試料を、高感度に定性及び定量を行うことができるイムノクロマトグラフデバイスに関する。

天然物、毒素、ホルモン、又は農薬等の生理活性物質又は環境汚染物質の中には、極微量で作用するものが非常に多い。従って、これらの物質の定性的及び定量的測定には、従来、高感度分析が可能な機器分析法が広く用いられてきた。しかし、機器分析法は、特異性が低く、試料の前処理工程を含め、分析に時間を要する上、操作が煩雑なため、近年要求されている迅速簡便測定目的には不都合である。一方、免疫学的測定法は、特異性も高く、操作も機器分析よりはるかに簡便であることから、生理活性物質又は環境汚染物質の測定分野に徐々に普及してきた。しかし、９６穴プレ−トを用いた酵素免疫測定法やラテックス凝集法のような従来の免疫学的測定法は、必ずしも測定の迅速簡便性又は検出感度を満たすものではなかった。

また他のニーズとしては、現在スワブ液や血液と言った比較的侵襲的な検体を用いている検査においても、高感度化が達成されることで、鼻水やうがい液、尿、といった比較的低侵襲的な検体中にごく少量含まれる被検試料を検出することができるようになることで、患者の負担の少ない検査方法が可能となることも期待できる。

近年、特に迅速な診断が求められる感染症の検査に、イムノクロマトグラフ法を用いた検査キット（以後の説明において、イムノクロマトグラフキットと記す。）が多く使用されるようになってきている。これらキットの普及により、患者の感染を迅速・簡便な方法で特定することができ、その後の診断、治療を素早く的確に行うことが可能となってきている。例えば、サンドイッチ法を利用したイムノクロマトグラフ法では、分析対象物（例えば、抗原）に特異的に結合する第一の結合物質としての第１抗体を特定の領域に固定した不溶性薄膜状支持体（例えば、ガラス繊維膜、ナイロン膜、又はセルロ−ス膜など）中に、分析対象物と特異的に結合する標識化された第二の結合物質としての第２抗体と、分析対象物を含む可能性のある検体溶液とを展開し、不溶性薄膜状支持体の第１抗体を固定した領域上で、分析対象物との免疫複合体を形成させ、標識の着色又は発色などの信号を検出し、分析対象物を測定することができる。なお、前記標識としては、例えば、酵素を含むタンパク質、着色ラテックス粒子、金属コロイド、又は炭素粒子を使用することができる。

イムノクロマトグラフ法は、その判定・測定に重厚な設備・機器を必要とせず、操作が簡便であり、分析対象物を含む可能性のある検体溶液を滴下した後、約５分〜１０分間静置するだけで測定結果が得られるように迅速であるので、簡便・迅速・特異性の高い判定・測定手法として、多くの場面、例えば病院における臨床検査、研究室における検定試験等に広く使われている。

また、天然物、毒素、ホルモン、又は農薬等の生理活性物質又は環境汚染物質は、従来の一般的イムノクロマトグラフ法では検出できない極微量で作用する物質が多く、それらの迅速、簡便、且つ高感度なイムノクロマトグラフ法の開発が求められている。

シグナル増幅を行い、高感度化するイムノクロマト法としては、酵素による増幅法（特許文献１）、銀増幅による方法（特許文献２）などが知られている。酵素による増幅法を用いたイムノクロマト法の製品は既に市販されている。特許文献１では、洗浄後の増幅を行っているが、これらは従来の金属標識や着色ラテックス粒子によるイムノクロマト法よりも高感度なアッセイが達成できるものの、酵素増幅による反応時間が必要であるために従来の標識物質に比べ測定に時間がかかってしまうという欠点があった。

銀増幅法による増幅イムノクロマトにおいては、金属標識粒子のバックグランドを下げないとシグナル／ノイズ（Ｓ／Ｎ）比が取れないために、最終的な検出感度を上げるためには洗浄が必要である。最初から洗浄用のメンブレンが装着される系では、抗原液を展開する際に、その抗原液が第二の不溶性担体や第三の不溶性担体方向に流れてしまうため、標識化抗原を損失してしまうために感度の低下が起こる。また、第二の不溶性担体方向に流れた標識物質の影響で、バックグランドが上がってしまい、最終的に検出部とバックグランドとのＳ／Ｎ比が小さくなり、検出感度の低下が起こってしまう。

特許３３０９９７７号公報 特開２００２−２０２３０７号公報

本発明は、被験物質と、該被験物質に対する第１の結合可能な物質で修飾した金属を含む標識物質とをこれらの複合体を形成させた状態で第１の不溶性担体上において展開し、該被験物質に対する第２の結合可能な物質を有する不溶性担体上の反応部位において該被験物質と該標識物質を捕捉して該被験物質を検出することを含むイムノクロマトグラフを行うためのイムノクロマトグラフデバイスにおいて、被験物質（抗原液）を展開する際に、その抗原液が、洗浄液を展開するための第２の不溶性担体、及び洗浄液を吸収するための第３の不溶性担体に流れてしまうという問題を解消したイムノクロマトグラフデバイスを提供することを解決すべき課題とした。

本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討した結果、被験物質と、該被験物質に対する第１の結合可能な物質で修飾した金属を含む標識物質とをこれらの複合体を形成させた状態で展開し、該被験物質に対する第２の結合可能な物質を有する反応部位において該被験物質と該標識物質を捕捉するための第１の不溶性担体に対して、洗浄液を展開するための第２の不溶性担体、及び洗浄液を吸収するための第３の不溶性担体を、被験物質（抗原液）を展開した後に装着させることができるデバイスを構築することによって、抗原液が、洗浄液を展開するための第２の不溶性担体、及び洗浄液を吸収するための第３の不溶性担体に流れてしまうという問題を解消できることを見出し、本発明を完成するに至った。

即ち、本発明によれば、（ａ）被験物質と、該被験物質に対する第１の結合可能な物質で修飾した金属を含む標識物質とをこれらの複合体を形成させた状態で展開し、該被験物質に対する第２の結合可能な物質を有する反応部位において該被験物質と該標識物質を捕捉するための第１の不溶性担体を保持する第１のデバイス部品と、（ｂ）液体を展開するための第２の不溶性担体、及び液体を吸収するための第３の不溶性担体を保持する第２のデバイス部品とが、該第１の不溶性担体と、該第２の不溶性担体及び該第３の不溶性担体とが接触しない状態で収容されていることを特徴とする、イムノクロマトグラフデバイスが提供される。

好ましくは、本発明のイムノクロマトグラフデバイスは、第１のデバイス部品と第２のデバイス部品とを、該第１の不溶性担体と、該第２の不溶性担体及び該第３の不溶性担体とが接触しないような位置及び接触する位置にそれぞれ位置決めすることが可能な位置決め機構をさらに有する。

好ましくは、該第２のデバイス部品は、被験物質を点着するための孔を有している。
好ましくは、該第1のデバイス部品が、洗浄液を貯蔵するための液体貯蔵ポッドを有している。
好ましくは、該第１のデバイス部品及び該第２のデバイス部品が、該第１の不溶性担体と、該第２の不溶性担体及び該第３の不溶性担体とが接触する位置に位置決めされたとき、該第２の不溶性担体の一端が該液体貯蔵ポッドに浸漬する構造を有している。
好ましくは、該液体貯蔵ポッドに予め液体が充填されている。

好ましくは、該第1のデバイス部品が、２個の液体貯蔵ポッドを有し、該第２の不溶性担体の一端が二股に分かれており、そして、該第１のデバイス部品及び該第２のデバイス部品が、該第１の不溶性担体と、該第２の不溶性担体及び該第３の不溶性担体とが接触する位置に位置決めされたとき、上記二股の両端の各々が、２個の液体貯蔵ポッドの各々に浸漬する構造を有している。

好ましくは、該第１のデバイス部品に第１の液体貯蔵ポッドを有し、
該第２のデバイス部品に、該第１の液体ポッドと対向する位置に２つの第２の液体貯蔵ポッドを有し、
該２つの第２の液体貯蔵ポッドに予め銀を含む化合物及び銀イオンのための還元剤がそれぞれ別々に充填されていることを特徴とする。この態様の一例を図３に示す。

好ましくは、該第１のデバイス部品に第１の液体貯蔵ポッドを有し、
該第２のデバイス部品に、該第１の液体ポッドと対向する位置に２つの第２の液体貯蔵ポッドを有し、
該第１の液体貯蔵ポッド内に該第２の液体貯蔵ポッドに対向する向きにY字またはV字型の突出ピンを有し、該第１及び第２のデバイス部品が、該第１の不溶性担体と、該第２の不溶性担体及び該第３の不溶性担体とが接触する位置に位置決めされたとき、該突出ピンにより該第２の液体貯蔵ポッドの外壁を破り、該突出ピンをつたって該２つの第２の液体貯蔵ポッド内の液が該第１の液体貯蔵ポッドに移動し混合する。この態様の一例を図４に示す。

好ましくは、該第１の不溶性担体が多孔性担体である。

本発明の別の側面によれば、被験物質と、該被験物質に対する結合可能な物質で修飾した金属を含む標識物質とをこれらの複合体を形成させた状態で第１の不溶性担体上において展開し、該被験物質に対する結合可能な物質を有する不溶性担体上の反応部位において該被験物質と該標識物質を捕捉して該被験物質を検出することを含むイムノクロマトグラフ方法において、以下の工程（１）から（４）を順番に行うことを特徴とする方法が提供される。
（１）該被験物質を展開する；
（２）洗浄液を展開するための第２の不溶性担体、及び展開液を吸収するための第３の不溶性担体を第１の不溶性担体に付着させる；
（３）洗浄液を送液することによって、第１の不溶性担体上の反応部位に特異的な結合で捕捉した標識物質以外を洗浄する；及び
（４）銀を含む化合物及び銀イオンのための還元剤を含む増幅液を用いて増感する：

好ましくは、該標識物質が金属コロイドである。
好ましくは、該金属コロイドが金コロイドである。
好ましくは、増幅液が2価の鉄イオンを含む。

本発明のイムノクロマトグラフデバイスは、被験物質（抗原液）を展開した後に、洗浄液を展開するための第２の不溶性担体、及び洗浄液を吸収するための第３の不溶性担体をイムノクロマトストリップに装着させることができるデバイスである。このような構成を採用することにより、本発明イムノクロマトグラフデバイスでは、被験物質（抗原液）を展開する際に、その抗原液が第２の不溶性担体や第３の不溶性担体の方向に流れてしまうことがないため、抗原の損失によるシグナルの低下、及び標識物が第２の不溶性担体方向に流れてしまうことによるバックグランドノイズの上昇を防ぐことができ、最終的に高感度な検出を行うことができる。

１．イムノクロマト
一般に、イムノクロマトグラフ方法とは以下のような手法で被験物質を簡便・迅速・特異的に判定・測定する手法である。すなわち、被験物質と結合可能な固定化試薬（抗体、抗原等）を含む少なくとも１つの反応部位を有するクロマトグラフ担体を固定相として用いる。このクロマトグラフ担体上で、被験物質結合可能な試薬によって修飾された検出用標識物が分散されてなる分散液を移動層として前記クロマトグラフ担体中をクロマトグラフ的に移動させると共に、前記被験物質と検出用標識物とが特異的に結合しながら、前記反応部位まで到達する。前記反応部位において、前記被験物質と検出用標識物の複合体が前記固定化試薬に特異的結合することにより、被分析液中に被験物質が存在する場合にのみ、前記固定化試薬部に検出用標識物が濃縮されることを利用し、それらを目視または適当な機器を用いて被分析液中に被験物質が存在することを定性および定量的に分析する手法である。

本発明におけるイムノクロマトグラフデバイスは、銀を含む化合物及び銀イオンのための還元剤を内蔵していてもよく、前記固定化試薬に結合した前記被験物質と検出用標識物の複合体を核として増幅反応によって、シグナルを増幅し、結果として高感度化を達成することができる。本発明によれば、迅速な高感度イムノクロマトグラフを行うことができる。

２．被検試料
本発明のイムノクロマトグラフ方法で分析することのできる被検試料としては、被験物質を含む可能性のある試料である限り、特に限定されるものではなく、例えば、生物学的試料、特には動物（特にヒト）の体液（例えば、血液、血清、血漿、髄液、涙液、汗、尿、膿、鼻水、又は喀痰）若しくは排泄物（例えば、糞便）、臓器、組織、粘膜や皮膚、それらを含むと考えられる搾過検体（スワブ）、うがい液、又は動植物それ自体若しくはそれらの乾燥体を挙げることができる。

３．被検試料の前処理
本発明のイムノクロマトグラフ方法では、前記被検試料をそのままで、あるいは、前記被検試料を適当な抽出用溶媒を用いて抽出して得られる抽出液の形で、更には、前記抽出液を適当な希釈剤で希釈して得られる希釈液の形、若しくは前記抽出液を適当な方法で濃縮した形で、用いることができる。前記抽出用溶媒としては、通常の免疫学的分析法で用いられる溶媒（例えば、水、生理食塩液、又は緩衝液等）、あるいは、前記溶媒で希釈することにより直接特異的な結合反応（例えば、抗原抗体反応）を実施することができる水混和性有機溶媒を用いることもできる。

４．構成
本発明のイムノクロマトグラフデバイスにおける「被験物質と、該被験物質に対する結合可能な物質（例えば、第１の抗体）で修飾した金属を含む標識物質とをこれらの複合体を形成させた状態で展開し、該被験物質に対する第２の抗体を有する反応部位において該被験物質と該標識物質を捕捉するための第１の不溶性担体」としては、通常のイムノクロマトグラフ法に用いることができるイムノクロマトグラフ用ストリップである限り、特に限定されるものではない。

本発明のムノクロマトグラフ用ストリップは、展開方向の上流から下流に向かって、試料添加パッド、標識化物質保持パッド（例えば金コロイド抗体保持パッド）、クロマトグラフ担体（例えば抗体固定化メンブレン）、及び吸収パッドがこの順に、粘着シート上に配置されている。

前記クロマトグラフ担体は、捕捉部位を有し、分析対象物と特異的に結合する抗体又は抗原を固定化した領域である検出ゾーン（検出部と記載することもある）を有し、所望により、コントロール用抗体又は抗原を固定化した領域であるコントロールゾーン（コントロール部と記載することもある）を更に有する。

前記標識化物質保持パッドは、標識化物質を含む懸濁液を調製し、その懸濁液を適当な吸収パッド（例えば、グラスファイバーパット）に塗布した後、それを乾燥することにより調製することができる。
前記試料添加パッドとしては、例えばグラスファイバーパットを用いることができる。

４−１．検出用標識物
標識化物質を作成するための検出用標識物としては、一般的なイムノクロマトグラフ法で用いられるような金属微粒子、着色ラテックス粒子、酵素など、有色で視認できる、または、反応により検出できるようになる標識物であればなんでも良い。
本発明においては、検出用標識物として金属コロイド又は金属硫化物、その他金属合金、また金属を含むポリマ−粒子標識を用いることができる。担体粒子（又はコロイド）の平均粒径は、０．０２〜１０μｍの範囲が好ましい。例えば、金コロイド、銀コロイド、白金コロイド、鉄コロイド、水酸化アルミニウムコロイド、およびこれらの複合コロイドなどが挙げられ、好ましくは、金コロイド、銀コロイド、白金コロイド、およびこれらの複合コロイドである。特に、金コロイドと銀コロイドが適当な粒径において、金コロイドは赤色、銀コロイドは黄色を示し視認度が高い点で好ましい。金属コロイドの平均粒径としては、約１ｎｍ〜５００ｎｍが好ましく、１〜５０ｎｍがさらに好ましい。

金属コロイドと第一の結合可能な物質（例えば、第一の抗体）との結合は、従来公知の方法（例えばＴｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｃｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｖｏｌ．３０，Ｎｏ．７，ｐｐ６９１−６９６，（１９８２））に従い、行うことができる。すなわち、金属コロイドと第一の結合可能な物質を適当な緩衝液中で室温下５分以上混合する。反応後、遠心分離により得た沈殿を、ポリエチレングリコ−ル等の分散剤を含む溶液中に分散させることにより、目的の金属コロイド標識物質を得ることができる。金属コロイドとして金コロイド粒子を用いる場合には、市販のものを用いてもよい。あるいは、常法、例えば塩化金酸をクエン酸ナトリウムで還元する方法（Ｎａｔｕｒｅ Ｐｈｙｓ． Ｓｃｉ．，ｖｏｌ．２４１，２０，（１９７３）等）により金コロイド粒子を調製することができる。

本発明によれば、検出用標識物として金属コロイド標識又は金属硫化物標識、その他金属合金標識、また金属を含むポリマ−粒子標識を用いるイムノクロマトグラフにおいて、前記金属系標識の信号を増幅させることができる。具体的には、前記被験物質と検出用標識物の複合体の形成後に、無機銀塩、有機銀塩などの銀を含む化合物から供給される銀イオンおよび銀イオンのために還元剤を接触させ、還元剤によって銀イオンを還元して銀粒子を生成させると、その銀粒子が前記金属系標識を核として前記金属系標識上に沈着するので、前記金属系標識が増幅され、被験物質の分析を高感度に実施することができる。従って、本発明のイムノクロマトグラフ方法においては、還元剤による銀イオンの還元作用により生じた銀粒子を用いて、免疫複合体の標識に沈着させる反応を実施し、こうして増幅された信号を分析することを除けば、それ以外の点では従来公知のイムノクロマトグラフ法をそのまま適用することができる。

４−２．第一の結合物質
本発明において、第一の結合物質としては、被検物質に対して親和性を持つものならば何でも良く、一例として抗体を挙げることができる。本発明のイムノクロマトグラフ方法においては、被験物質に対して特異性を有する抗体として、特に限定されるものではないが、例えば、その被験物質によって免疫された動物の血清から調製する抗血清、抗血清から精製された免疫グロブリン画分、その被験物質によって免疫された動物の脾臓細胞を用いる細胞融合によって得られるモノクローナル抗体、あるいは、それらの断片［例えば、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、又はＦｖ］を用いることができる。これらの抗体の調製は、常法により行なうことができる。

４−３．第１の不溶性担体
第１の不溶性担体とは、被験物質と結合可能な第２の結合物質（例えば第二の抗体）を含む少なくとも１つの反応部位を有するクロマトグラフ担体のことで、このクロマトグラフ担体としては、多孔性担体が好ましい。特に、ニトロセルロース膜、セルロース膜、アセチルセルロース膜、ポリスルホン膜、ポリエーテルスルホン膜、ナイロン膜、ガラス繊維、不織布、布、または糸等が好ましい。

通常クロマトグラフ担体の一部に第２の結合物質（例えば第二の抗体）を固定化させて検出ゾーンを作製する。第二の結合物質は、第２の結合物質をクロマトグラフ担体の一部に物理的または化学的結合により直接固定化させてもいいし、第２の結合物質をラテックス粒子などの微粒子に物理的または化学的に結合させ、この微粒子をクロマトグラフ担体の一部にトラップさせて固定化させてもいい。なお、クロマトグラフ担体は、第２の結合物質を固定化後、不活性蛋白による処理等により非特異的吸着防止処理をして用いるのが好ましい。

試料添加パッドの材質は、セルロース濾紙、ガラス繊維、ポリウレタン、ポリアセテート、酢酸セルロース、ナイロン、及び綿布等の均一な特性を有するものが挙げられるが、これらに限定されるものではない。試料添加部は、添加された被験物質を含む試料を受入れるだけでなく、試料中の不溶物粒子等を濾過する機能をも兼ねる。また、分析の際、試料中の被験物質が試料添加部の材質に非特異的に吸着し、分析の精度を低下させることを防止するため、試料添加部を構成する材質は、予め非特異的吸着防止処理して用いることもある。
標識化物質保持パッドの素材としては、例えば、セルロース濾紙、グラスファイバー、及び不織布等が挙げられ、前述のように調製した検出用標識物を一定量含浸し、乾燥させて作製する。

吸収パッドは、添加された試料がクロマト移動により物理的に吸収されると共に、クロマトグラフ担体の検出部に不溶化されない未反応標識化物質等を吸収除去する部位であり、セルロ−ス濾紙、不織布、布、セルロースアセテート等吸水性材料が用いられる。添加された試料のクロマト先端部が吸収部に届いてからのクロマトの速度は、吸収材の材質、大きさなどにより異なるので、その選定により被験物質の測定に合った速度を設定することができる。

４−４．洗浄液を展開するための第２の不溶性担体、
本発明で用いる「洗浄液を展開するための第２の不溶性担体」は、洗浄液を添加できればなんでもよく、グラスファイバーパッドやセルロースメンブレン、ニトロセルロースメンブレンなどを用いることができる。

４．５．洗浄液を吸収するための第３の不溶性担体（吸水パッド）
本発明で用いる「洗浄液を吸収するための第３の不溶性担体（吸水パッド）」は、吸水することができる物質ならばなんでもよく、セルロース、ニトロセルロース、グラスファイバー、それらの混合体などを用いることができる。

５．免疫検査の方法
以下、本発明におけるクロマトグラフ方法について、その具体的な実施態様であるサンドイッチ法について説明する。サンドイッチ法では、特に限定されるものではないが、例えば、以下の手順により被験物質の分析を実施することができる。まず、被験物質（抗原）に対して特異性を有する第１抗体及び第２抗体を、先に述べた方法により予め調製しておく。また、第1抗体を、予め標識化しておく。第2抗体を、適当な第一の不溶性担体（例えば、ニトロセルロ−ス膜、ガラス繊維膜、ナイロン膜、又はセルロ−ス膜等）上に固定し、被験物質（抗原）を含む可能性のある被検試料（又はその抽出液）と接触させると、その被検試料中に被験物質が存在する場合には、抗原抗体反応が起きる。この抗原抗体反応は、通常の抗原抗体反応と同様に行なうことができる。前記抗原抗体反応と同時又は反応後に、過剰量の標識化第1抗体を更に接触させると、被検試料中に被験物質が存在する場合には、固定化第2抗体と被験物質（抗原）と標識化第1抗体とからなる免疫複合体が形成される。

サンドイッチ法では、固定化第2抗体と被験物質（抗原）と第1抗体との反応が終了した後、前記免疫複合体を形成しなかった標識化第1抗体を除去し、続いて、例えば、第一の不溶性担体における固定化第2抗体を固定した領域に、金属イオン及び還元剤を供給することにより、前記免疫複合体を形成した標識化第1抗体の標識からの信号を増幅する。あるいは、標識化第1抗体に金属イオン及び還元剤を添加し、同時に薄膜状支持体に添加することにより、前記免疫複合体を形成した標識化第1抗体の標識からの信号を増幅する。

６．洗浄
6-1.洗浄液
本発明では、洗浄液として1％BSA入りのPBSバッファーを用いているが、洗浄液は特異的な結合反応以外でメンブレン内に残存している、つまり非特異的に残存している標識化物質を洗浄するための液体であれば何でも良い。洗浄効果を上げる為にそのpHを調整したり、界面活性剤成分やBSAなどのタンパク質、ポリエチレングリコールなどの高分子化合物を加えた洗浄液を用いても良い。

洗浄液は展開途中に非特異的に残存した標識化物質を洗浄しながら展開するので標識化物質を含みながら展開されることになるが、展開される前の洗浄液は洗浄効果を高めるために、標識化物質を含んでいない液を用いる。

6-2.洗浄液の展開、その方向
洗浄液は、検体液を展開した後に、イムノクロマトグラフ用ストリップに添加しイムノクロマトグラフ用ストリップに残存する特異的な結合反応で結合した以外の標識物を洗浄する。洗浄液の送液方法としては、検体液を展開した後にそのまま試料滴下部に添加する方法や、予めストリップに洗浄液送液の為の洗浄液添加パット、吸水パットを付着させておき、その洗浄液添加パットに添加し吸水パット方向へ送液する方法、予めストリップに洗浄液の添加部位を備えておき、検体液の展開後にその洗浄液の添加部位に洗浄液を添加する方法、または、検体液をストリップに展開した後に洗浄液送液の為の洗浄液添加パット、吸水パットをストリップに付着させても良い。

本明細書中では、該被験物質の液の展開方向とは、試料添加パッドと吸収パッドとを結ぶ方向と定義し、洗浄液の展開方向とは、洗浄液送液の為の洗浄液添加パットと吸水パットとを結ぶ方向と定義する。

被験物質の液の展開方向と洗浄液の展開方向との成す角は特に限定されず、０度から１８０度で行うことができる。

７．増幅液
本発明において、使用することのできる増幅液とは、写真化学の分野での一般書物（例えば、「改訂写真工学の基礎-銀塩写真編-」（日本写真学会編、コロナ社）、「写真の化学」（笹井明、写真工業出版社）、「最新処方ハンドブック」（菊池真一他、アミコ出版社））に記載されているような、いわゆる現像液のことである。
本発明では、液中に銀イオンを含み、液中の銀イオンが現像の核となるような金属コロイド等を中心に還元される、いわゆる物理現像液であれば、どんなものでも増幅液として用いることができる。

８．銀を含む化合物
本発明で用いる銀含有化合物としては、有機銀塩、無機銀塩、もしくは銀錯体を用いることができる。
本発明に用いられる有機銀塩は、還元可能な銀イオンを含む有機化合物である。本発明で用いられる、還元可能な銀イオンを含む化合物としては、有機銀塩、無機銀塩、もしくは銀錯体など何でも良い。例えば、硝酸銀、酢酸銀、乳酸銀、酪酸銀などが知られている。
また還元剤の存在下で５０℃以上まで加熱されると、光に比較的に安定な金属銀を形成する銀塩または配位化合物であってもよい。

本発明に用いられる有機銀塩は、アゾ−ル化合物の銀塩およびメルカプト化合物の銀塩より選ばれる化合物であってもよい。好ましくは、アゾ−ル化合物としては含窒素ヘテロ環化合物であり、より好ましくはトリアゾ−ル化合物およびテトラゾ−ル化合物である。メルカプト化合物は、メルカプト基またはチオン基を分子内に少なくとも１つ有する化合物である。
本発明における窒素含有ヘテロ環化合物の銀塩は、好ましくはイミノ基を有する化合物の銀塩である。代表的な化合物としては次にあげるものであるが、これらの化合物に限定されることはない。１，２，４−トリアゾ−ルの銀塩、又はベンゾトリアゾ−ルおよびその誘導体の銀塩（例えば、メチルベンゾトリアゾ−ル銀塩又は５−クロロベンゾトリアゾ−ル銀塩）、米国特許第４，２２０，７０９に記載されているフェニルメルカプトテトラゾ−ルのような１Ｈ−テトラゾ−ル化合物、米国特許第４，２６０，６７７に記載のイミダゾ−ルおよびイミダゾ−ル誘導体。この種の銀塩のうち、特に好ましい化合物はベンゾトリアゾ−ル誘導体の銀塩、又はこれらの２つ以上の混合物である。
本発明に用いられる窒素含有ヘテロ環化合物の銀塩として最も好ましくは、ベンゾトリアゾ−ル誘導体の銀塩である。

本発明におけるメルカプト基またはチオン基を持つ化合物は、好ましくは５つまたは６つの原子を含むヘテロ環化合物である。この場合に環中の原子の少なくとも１つは窒素原子であり、その他の原子は炭素、酸素、硫黄原子である。このようなヘテロ環化合物としてはトリアゾ−ル類オキサゾ−ル類、チアゾ−ル類、チアゾリン類、イミダゾ−ル類、ジアゾ−ル類、ピリジン類、およびトリアジン類が挙げられるが、これらに限定されるわけではない。

メルカプト基またはチオン基を持つ化合物の銀塩のうち代表的な化合物を以下に挙げるが、これらに限定されるわけではない。
３−メルカプト−４−フェニル−１，２，４−トリアゾ−ルの銀塩、２−メルカプト−ベンズイミダゾ−ルの銀塩、２−メルカプト−５−アミノチアゾ−ルの銀塩、メルカプトトリアジンの銀塩、２−メルカプトベンゾオキサゾ−ルの銀塩、および米国特許第４，１２３，２７４記載の化合物の銀塩。

本発明におけるメルカプト基またはチオン基を持つ化合物としては、ヘテロ環を含まない化合物を用いることも出来る。ヘテロ環を含まないメルカプトまたはチオン誘導体としては、総炭素数が１０以上の脂肪族または芳香族炭化水素化合物が好ましい。
ヘテロ環を含まないメルカプトまたはチオン誘導体のうち有用な化合物としては以下に挙げるものがあるが、これらに制限されるわけではない。
チオグリコ−ル酸銀塩（例えば炭素原子数１２から２２までのアルキル基を持つＳ−アルキルチオグリコ−ル酸の銀塩）、ジチオカルボン酸の銀塩（たとえばジチオ酢酸の銀塩又はチオアミドの銀塩）

カルボン酸の銀塩を持つ有機化合物もまた好ましく用いられる。例えば、直鎖のカルボン酸である。具体的には、Ｃ数６〜２２のカルボン酸が好ましく用いられる。加えて芳香族カルボン酸の銀塩である。芳香族カルボン酸とその他のカルボン酸の例として、以下の化合物が挙げられるが、これらに限定されることはない。
置換または無置換の安息香酸銀（例えば３，５−ジヒドロキシ安息香酸銀、ｏ−メチル安息香酸銀、ｍ−メチル安息香酸銀、ｐ−メチル安息香酸銀、２，４−ジクロロ安息香酸銀、アセタミド安息香酸銀、およびｐ−フェニル安息香酸銀）、タンニン酸銀、フタル酸銀、テレフタル酸銀、サリチル酸銀、フェニル酢酸銀、又はピロメリット酸銀。

本発明においては米国特許第３，３３０，６６３に記載されたようなチオエ−テル基を含む脂肪酸銀もまた好ましく用いられる。エ−テルまたはチオエ−テル結合を含む炭化水素鎖を有するか、α−位（炭化水素基の上）またはオルト位（芳香族基の上）に立体的に遮蔽された置換基を有する可溶性のカルボン酸銀も用いることができる。これらは、塗布溶媒中で溶解性が向上し、光散乱が少ない塗布物になる。
そのような銀のカルボン酸塩は、米国特許第５，４９１，０５９に記載されている。ここで記載されている銀塩の混合物はどれでも、本発明においては必要に応じて使うことができる。
米国特許第４，５０４，５７５に記載のスルホン酸塩の銀塩もまた、本発明の態様においては使用することが出来る。

さらに、本発明においては例えば米国特許第４，７６１，３６１と米国特許第４，７７５，６１３に記載のアセチレンの銀塩も使用することが出来る。米国特許第６，３５５，４０８に記載のコア−シェル型銀塩として提供されることもできる。これらの銀塩は、一つ以上の銀塩から成るコアと一つ以上の異なる銀塩からなるシェルで構成される。

本発明中において、非感光性銀源としてもう一つ有用なものは米国特許６４７２１３１に記載の２つの異なった銀塩から構成される銀の二量体合成物である。そのような非感光性の銀の二量体合成物は２つの異なる銀塩から成る。前記二種の銀塩が直鎖の飽和炭化水素基を銀の配位子として含む場合にはそれら配位子の炭素原子数の差が６以上である。
有機銀塩は、銀として一般に０．００１モル／ｍ²〜０．２モル／ｍ²、好ましくは０．００１モル／ｍ²〜０．０５モル／ｍ²含有される。

本発明に用いられる無機銀塩、もしくは銀錯体は、還元可能な銀イオンを含む化合物である。好ましくは、還元剤の存在下で５０℃以上まで加熱されると、光に比較的に安定な金属銀を形成する無機銀塩、もしくは銀錯体である。
本発明に用いられる無機銀塩は、例えば、ハロゲン化銀（塩化銀、臭化銀、塩臭化銀、ヨウ化銀、塩ヨウ化銀、塩ヨウ臭化銀、およびヨウ臭化銀等）、チオ硫酸塩（例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、又はアンモニウム塩等）の銀塩、チオシアン酸塩（例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、又はアンモニウム塩等）の銀塩、および亜硫酸塩（例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、又はアンモニウム塩等）の銀塩等が挙げられる。

本発明に用いられる無機銀塩は、好ましくはハロゲン化銀である。
本発明に用いられるハロゲン化銀の粒子形成方法は、写真業界でよく知られており、例えば、リサーチディスクロージャー１９７８年６月の第１７０２９号、及び米国特許第３，７００，４５８号に記載されている方法を用いることができるが、具体的にはゼラチンあるいは他のポリマー溶液中に銀供給化合物（例えば、硝酸銀）及びハロゲン供給化合物を添加することにより調製される。

ハロゲン化銀の粒子サイズは、検査ノイズを小さくする上で微細であることが好ましく、具体的には０．２０μｍ以下、より好ましくは０．１０μｍ以下、更に好ましくはナノ粒子の範囲がよい。ここでいう粒子サイズとは、ハロゲン化銀粒子の投影面積（平板粒子の場合は主平面の投影面積）と同面積の円像に換算したときの直径をいう。

チオ硫酸銀、チオシアン酸銀、および亜硫酸銀等もハロゲン化銀と同様の粒子形成方法により銀供給化合物（例えば、硝酸銀）及びチオ硫酸塩（例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、又はアンモニウム塩等）の銀塩、チオシアン酸塩（例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、又はアンモニウム塩等）の銀塩、および亜硫酸塩（例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、又はアンモニウム塩等）を混合することにより調製される。

また、一般に増幅液中の銀イオン濃度が高すぎると、増幅液中で銀イオンが還元されてしまうので、それを防ぐ為に錯化剤を用いて銀イオンが錯体を形成するようにしてもよい。このような錯化剤としては、グリシン、ヒスチジンのようなアミノ酸及び複素環式塩基や、イミダゾール、ベンズイミダゾール、ピラゾール、プリン、ピリジン、アミノピリジン、ニコチンアミド、キノリン、その他類似の芳香族複素環式系が知られており、例えばヨーロッパ特許第0293947号中に記載されている。また、錯塩形成剤としては、チオ硫酸塩やチオシアン酸塩なども用いることができる。本発明に用いられる銀錯体の具体例としては、例えば、チオ硫酸塩と銀イオンの錯体、チオシアン酸塩と銀イオンの錯体、またはこれらの複合銀錯体、および、シュガーチオン誘導体と銀イオンの錯体、環状イミド化合物（例えば、ウラシル、ウラゾール、５−メチルウラシル、バルビツール酸など）と銀イオンの錯体、１，１−ビススルホニルアルカン類と銀イオンの錯体である。本発明に用いられる好ましい銀錯体は、環状イミド化合物（例えば、ウラシル、ウラゾール、５−メチルウラシル、バルビツール酸など）と銀イオンの錯体である。

本発明に用いられる銀錯体は、通常知られている塩形成反応により調製することができる。例えば、水もしくは水混和性溶媒中で水溶性銀供給体（例えば、硝酸銀）と銀錯体に対応する配位子化合物とを混合することにより調製される。調製された銀錯体は、透析法もしくは限外濾過法などの公知の脱塩方法により副成する塩類を除去して用いることが出来る。

無機銀塩、もしくは銀錯体は、銀として一般に０．００１モル／ｍ²〜０．２モル／ｍ²、好ましくは０．０１モル／ｍ²〜０．０５モル／ｍ²含有される。

また、無機銀塩または銀錯体を使用する場合は、無機銀塩もしくは銀錯体の溶剤を含有することが好ましい。本発明に用いられる溶剤としては、上記の銀錯体の項で説明した銀錯体を形成する配位子として用いられる化合物が好ましく用いられる。例えば、チオ硫酸塩、チオシアン酸塩、シュガーチオン誘導体、環状イミド化合物、および１，１−ビススルホニルアルカン類糖である。本発明に用いられる溶剤として、より好ましくは、ウラシル、ウラゾール、５−メチルウラシル、バルビツール酸などの環状イミド化合物である。本発明に用いられる溶剤は、銀イオンに対してモル比で０．１モル〜１０モルの範囲で好ましく用いられる。

９．銀のための還元剤
銀イオンのための還元剤は、銀（Ｉ）イオンを銀に還元することができる無機・有機のいかなる材料、またはその混合物でも用いることができる。
無機還元剤としては、Fe²⁺、V²⁺、Ti³⁺、などの金属イオンで原子価の変化し得る還元
性金属塩、還元性金属錯塩が知られており、本発明に用いることができる。無機還元剤を用いる際には、酸化されたイオンを錯形成するか還元して、除去するか無害化する必要がある。例えば、Fe⁺²を還元剤として用いる系では、クエン酸やEDTAを用いて酸化物であるFe³⁺の錯体を形成し、無害化することができる。
本系ではこのような無機還元剤を用いることが好ましく、より好ましくはFe²⁺の金属塩が好ましい。

また、湿式のハロゲン化銀写真感光材料に用いられる現像主薬（例えばメチル没食子酸塩、ヒドロキノン、置換ヒドロキノン、３−ピラゾリドン類、ｐ−アミノフェノール類、ｐ−フェニレンジアミン類、ヒンダードフェノール類、アミドキシム類、アジン類、カテコール類、ピロガロール類、アスコルビン酸（またはその誘導体）、およびロイコ色素類）、および本分野での技術に熟練しているものにとって明らかなその他の材料は、たとえば米国特許第６，０２０，１１７号（バウアーほか）で記述されるように、本発明において用いることができる。

「アスコルビン酸還元剤」はアスコルビン酸、その誘導体との複合体を意味する。アスコルビン酸還元剤は下記のように多くの文献において記載されており、例えば米国特許第５，２３６，８１６号（Ｐｕｒｏｌほか）とその中で引用されている文献が挙げられる。

本発明における還元剤として、アスコルビン酸還元剤が好ましい。有用なアスコルビン酸還元剤は、アスコルビン酸と類似物、異性体とその誘導体を含む。そのような化合物は含む以下にあげるものであるが、これらに限定されるわけではない。
Ｄ−またはＬ−アスコルビン酸とその糖誘導体（例えばγ−ラクトアスコルビン酸、グルコアスコルビン酸、フコアスコルビン酸、グルコヘプトアスコルビン酸、マルトアスコルビン酸）、アスコルビン酸のナトリウム塩、アスコルビン酸のカリウム塩、イソアスコルビン酸（またはＬ−エリスロアスコルビン酸）、その塩（例えばアルカリ金属塩、アンモニウム塩または当技術分野において知られている塩）、エンジオールタイプのアスコルビン酸、エナミノールタイプのアスコルビン酸、チオエノ−ルタイプのアスコルビン酸）、たとえば米国特許第５，４９８，５１１、ＥＰ−Ａ−０５８５，７９２、ＥＰ−Ａ−０５７３７００、ＥＰ−Ａ−０５８８４０８、米国特許第５，０８９，８１９、米国特許第５，２７８，０３５、米国特許第５，３８４，２３２、米国特許第５，３７６，５１０、ＪＰ７−５６２８６、米国特許第２，６８８，５４９、およびＲｅｓｅａｃｈ Ｄｉｓｃｌｏｓｕｒｅ３７１５２（１９９５年３月）に記載されているような化合物。

これらの化合物のうち、好ましくは、Ｄ、ＬまたはＤ，Ｌ−アスコルビン酸（そして、そのアルカリ金属塩）若しくはイソアスコルビン酸（またはそのアルカリ金属塩）であり、ナトリウム塩が好ましい塩である。必要に応じてこれらの還元剤の混合物を用いることができる。

ヒンダードフェノール類も単独で、または一つ以上の硬調化還元剤とコントラスト強化剤と組み合わせて好ましく用いられる。
ヒンダードフェノールは、ベンゼン環上に一つだけの水酸基を有し、少なくとも一つの置換基を水酸基に対してオルト位に有する化合物である。ヒンダードフェノール還元剤は複数の水酸基を別々のベンゼン環に持っていれば、複数の水酸基を有していて構わない。
ヒンダードフェノール還元剤は、たとえば、ビナフトール類（すなわちジヒドロキシビナフトール類）、ビフェノール類（すなわちジヒドロキシビフェノール類）、ビス（ヒドロキシナフチル）メタン類、ビス（ヒドロキシフェニル）メタン類（すなわちビスフェノール類）、ヒンダ−ドフェノール類、およびヒンダードナフトール類が挙げられ、これらは置換されていて構わない。

代表的なビナフトール類は以下に挙げられる化合物であるが、これらに制限されることはない。
１，１’−ビ−２−ナフトール、１，１’−ビ−４−メチル−２−ナフトール、および米国特許第３，０９４，４１７号と米国特許第５，２６２，２９５号に記載されている化合物。

代表的なビフェノール類は以下に挙げられる化合物であるが、これらに制限されることはない。
２−（２−ヒドロキシ−３−ｔ−ブチル−５−メチルフェニル）−４−メチル−６−ｎ−ヘキシルフェノール、４，４’−ジヒドロキシ−３，３’，５，５’−テトラ−ｔ−ブチルビフェニル、４，４’−ジヒドロキシ−３，３’，５，５’−テトラメチルビフェニル、および米国特許第５，２６２，２９５号に記載の化合物。

代表的なビス（ヒドロキシナフチル）メタン類は以下に挙げられる化合物であるが、これらに制限されることはない。
４，４’−メチレンビス（２−メチル−１−ナフト−ル）、米国特許第５，２６２，２９５号に記載の化合物。

代表的なビス（ヒドロキシフェニル）メタン類は以下に挙げられる化合物であるが、これらに制限されることはない。
ビス（２−ヒドロキシ−３−ｔ−ブチル−５−メチルフェニル）メタン（ＣＡＯ−５）、１，１’−ビス（２−ヒドロキシ−３，５−ジメチルフェニル）−３，５，５−トリメチルヘキサン（ＮＯＮＯＸまたはＰＥＲＭＡＮＡＸ ＷＳＯ）、１，１’−ビス（３，５−ｄｉ−ｔ−ブチル−４−ヒドロキシフェニル）メタン、２，２’−ビス（４−ヒドロキシ−３−メチルフェニル）プロパン、４，４’−エチリデン−ビス（２−ｔ−ブチル−６−メチルフェノ−ル）、２，２’−イソブチリデン−ビス（４，６−ジメチルフェノ−ル）（ＬＯＷＩＮＯＸ ２２１Ｂ４６）、２，２’−ビス（３，５−ジメチル−４−ヒドロキシフェニル）プロパン、および米国特許第５，２６２，２９５号に記載の化合物。

代表的なヒンダードフェノールは以下に挙げられる化合物であるが、これらに制限されることはない。
２，６−ジ−ｔ−ブチルフェノール、２，６−ジ−ｔ−ブチル−４−メチルフェノール、２，４−ジ−ｔ−ブチルフェノール、２，６−ジクロロフェノール、２，６−ジメチルフェノール、および２−ｔ−ブチル−６−メチルフェノール。

代表的なヒンダードナフトールは以下に挙げられる化合物であるが、これらに制限されることはない。
１−ナフトール、４−メチル−１−ナフトール、４−メトキシ−１−ナフトール、４−クロロ−１−ナフトール、２−メチル−１−ナフトール、および米国特許第５，２６２，２９５号に記載の化合物。

その他、下記の化合物の還元剤として開示されている。
アミドキシム類（例えばフェニルアミドキシム）、２−チエニルアミドキシム、ｐ−フェノキシフェニルアミドキシム、脂肪族カルボン酸アリルヒドラジドとアスコルビン酸の組み合わせ（例えば２，２’−ビス（ヒドロキシメチル）−プロピオニル−β−フェニルヒドラジドとアスコルビン酸の組み合わせ）、ポリヒドロキシベンゼンとヒドロキシルアミン、レダクトンおよびヒドラジンの少なくとも一方の組み合わせ（たとえばヒドロキノンとビス（エトキシエチル）ヒドロキシルアミンの組み合わせ）、ピペリジ−４−メチルフェニルヒドラジン、ヒドロキサム酸（例えばフェニルヒドロキサム酸、ｐ−ヒドロキシフェニルヒドロキサム酸、およびｏ−アラニンヒドロキサム酸）、アジンとスルホンアミドフェノール類の組合せ（たとえばフェノチアジンと２，６−ジクロロ−４−ベンゼンスルホンアミドフェノール）、α−シアノフェニル酢酸誘導体（例えばエチル−α−シアノ−２−メチルフェニル酢酸、エチル−α−シアノフェニル酢酸）、ビス−ｏ−ナフトール（例えば２，２’−ジヒドロキシ−１−ビナフチル、６，６’−ジブロモ−２，２’−ジヒドロキシ−１，１’−ビナフチル、ビス（２−ヒドロキシ−１−ナフチル）メタン）、

ビス−ナフト−ルと１，３−ジヒドロキシベンゼン誘導体の組み合わせ（例えば２，４−ジヒドロキシベンゾフェノン、２，４−ジヒドロキシアセトフェノン）、５−ピラゾロン（例えば３−メチル−１−フェニル−５−ピラゾロン）、レダクトン類（例えばジメチルアミノヘキソ−スレダクトン、アンヒドロジヒドロ−アミノヘキソ−スレダクトン、またはアンヒドロジヒドロ−ピペリドン−ヘキソースレダクトン）、インダン−１，３−ジオン類（例えば２−フェニルインダン−１，３−ジオン）、クロマン類（例えば２，２−ジメチル−７−ｔ−ブチル−６−ヒドロキシクロマン）、１，４−ジヒドロキシピリジン類（例えば２，６−ジメトキシ−３，５−ジカルベトキシ−１，４−ジヒドロピリジン）、アスコルビン酸誘導体（１−アスコルビン酸パルミテ−ト、アスコルビン酸ステアレ−ト）、不飽和アルデヒド（ケトン）、３−ピラゾリドン類。

本発明に用いることのできる還元剤として、米国特許第５，４６４，７３８に記載されるようなスルホニルヒドラジンを含む置換ヒドラジンがある。この他の有用な還元剤は、例えば、米国特許第３，０７４，８０９、米国特許第３，０９４，４１７、米国特許第３，０８０，２５４および米国特許第３，８８７，４１７に記載されている。米国特許第５，９８１，１５１に記載の補助還元剤もまた有用である。

還元剤として、ヒンダードフェノール還元剤とその他以下に挙げるような様々な補助還元剤から選ばれる化合物と組み合わせて用いられる場合もある。さらにコントラスト強化剤を加えた３成分の還元剤の混合物もまた有用である。補助還元剤としては米国特許第５，４９６，６９５に記載のトリチルヒドラジド、ホルミル−フェニルヒドラジドを用いることができる。

コントラスト強化剤を還元剤とともに用いることができる。コントラスト強化剤としては例えば、下記の化合物が有用であるが、これらに限定されるわけではない。
ヒドロキシルアミン（ヒドロキシルアミンとアルキルとアリ−ル置換誘導体を含む）、米国特許第５，５４５，５０５に記載のアルカノールアミンとフタル酸アンモニウム、米国特許第５，５４５，５０７に記載のヒドロキサム酸化合物、米国特許第５，５５８，９８３に記載のＮ−アシルヒドラジン化合物、米国特許第５，６３７，４４９に記載の水素原子ドナー化合物。

全ての還元剤と有機銀塩の組み合わせが等しく効果があるわけではない。好ましい組合せの一つは、有機銀塩としてベントリアゾ−ルの銀塩又はその置換化合物、又はその混合物と、還元剤としてアスコルビン酸型還元剤である。

本発明における還元剤は、有機銀中の銀に対して１質量％〜１０質量％（乾燥質量）含まれる。多層構造において、還元剤が有機銀塩を含む層以外の層に加えられるならば、わずかに割合は高く、およそ２質量％〜１５質量％がより望ましい。補助還元剤は、およそ０．００１質量％〜１．５質量％（乾燥重）含まれる。

１０．その他の助剤
増幅液のその他の助剤としては、緩衝剤、防腐剤、例えば酸化防止剤または有機安定剤、速度調節剤を含む場合がある。緩衝剤としては、例えば、酢酸、クエン酸、水酸化ナトリウムまたはこれらのどれかの塩、またはトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタンを用いた緩衝剤、その他一般的化学実験に用いられる緩衝剤を用いることができる。これら緩衝剤を適宜用いて、その増幅液に最適なｐＨに調整することができる。

以下の実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。

（１）インフルエンザA型B型検出イムノクロマトキットの作成
（1-1）抗インフルエンザA型B型抗体修飾金コロイドの作成
（1-1-1）抗インフルエンザA型抗体修飾金コロイドの作成
直径50 nm金コロイド溶液（EM.GC50、BBI社）9 mLに50 mM KH₂PO₄バッファー（pH 7.5）1mLを加えることでpHを調整した金コロイド溶液に、90μg/mLの抗インフルエンザA型モノクローナル抗体（Anti-Influenza A SPTN-5 7307、Medix Biochemica社）溶液1 mLを加え攪拌した。10分間静置した後、1%ポリエチレングリコール（PEG Mw.20000、品番168-11285、和光純薬）水溶液を550 μL加え攪拌し、続いて10 %牛血清アルブミン（BSA FractionV、品番A-7906、SIGMA）水溶液を1.1 mL加え攪拌した。この溶液を8000×ｇ、４ ℃、30分遠心（himacCF16RX、日立）した後、1 mL程度を残して上清を取り除き、超音波洗浄機により金コロイドを再分散した。この後、20 mLの金コロイド保存液（20 mM Tris-HClバッファー(pH 8.2), 0.05 % PEG（Mw.20000）, 150 mM NaCl, 1 % BSA, 0.1 %NaN₃）に分散し、再び8000×ｇ、４℃、30分間遠心した後、1 mL程度を残して上清を取り除き、超音波洗浄機により金コロイドを再分散し、抗体修飾金コロイド（50 nm）溶液を得た。

（1-1-2）抗インフルエンザB型抗体修飾金コロイドの作成
直径50 nm金コロイド溶液（EM.GC50、BBI社）9 mLに50 mM KH₂PO₄バッファー（pH 8.0 ）1mLを加えることでpHを調整した金コロイド溶液に、80μg/mLの抗インフルエンザB型モノクローナル抗体（MONOTOPE aby Influenza B Virus (nuclear) Purified 1131、ViroStat, Inc.）溶液1 mLを加え攪拌した。10分間静置した後、1%ポリエチレングリコール（PEG Mw.20000、品番168-11285、和光純薬）水溶液を550 μL加え攪拌し、続いて10 %牛血清アルブミン（BSA FractionV、品番A-7906、SIGMA）水溶液を1.1 mL加え攪拌した。この溶液を8000×ｇ、４ ℃、30分遠心（himacCF16RX、日立）した後、1 mL程度を残して上清を取り除き、超音波洗浄機により金コロイドを再分散した。この後、20 mLの金コロイド保存液（20 mM Tris-HClバッファー(pH 8.2), 0.05 % PEG（Mw.20000）, 150 mM NaCl, 1 % BSA, 0.1 % NaN3）に分散し、再び8000×ｇ、４℃、30分間遠心した後、1 mL程度を残して上清を取り除き、超音波洗浄機により金コロイドを再分散し、抗体修飾金コロイド（50 nm）溶液を得た。

（1-2）金コロイド抗体保持パットの作成
（1-1）で作成したインフルエンザA型、B型抗体修飾金コロイドを、1:1で混合し、金コロイド塗布液（20 mM Tris-Hclバッファー(pH 8.2), 0.05 % PEG（Mw.20000）, 5 % スクロース）及び水により希釈し、520 nmのODが3.0となるように希釈した。この溶液を、8 mm×150 mmに切ったグラスファイバーパッド（Glass Fiber Conjugate Pad、ミリポア社）1枚あたり0.8 mLずつ均一に塗布し、一晩減圧乾燥し、金コロイド抗体保持パッドを得た。

（1-3）抗体固定化メンブレン（クロマトグラフ担体）の作成
（1-3-1）抗体固定化メンブレン（クロマトグラフ担体）の作成（ライン塗布）25 mm×200 mmに切断したニトロセルロースメンブレン（プラスチックの裏打ちあり、HiFlow Plus HF120、ミリポア社）に関し以下のような方法により抗体を固定し抗体固定化メンブレンを作成した。メンブレンの長辺を下にし、下から７ mmの位置に、1.5 mg / mLとなるように調製した固定化用抗インフルエンザA型モノクローナル抗体（Anti-Influenza A SPTN-5 7307、Medix Biochemica社）溶液をインクジェット方式の塗布機（BioDot社）を用いて幅0.7mm程度のライン状に塗布した。同様に、下から10 mmの位置に、1.5 mg / mLとなるように調製した固定化用抗インフルエンザB型モノクローナル抗体（MONOTOPE aby Influenza B Virus (nuclear) Purified 1131、ViroStat, Inc.）溶液を幅0.7mm程度のライン状に塗布した。さらに同様に、下から13 mmの位置に、0.5 mg / mLとなるように調製したコントロール用抗マウスIgG抗体（抗マウスIgG(H+L),ウサギF(ab')2, 品番566-70621、和光純薬）溶液をライン状に塗布した。塗布したメンブレンは、温風式乾燥機で50℃、30分間乾燥した。ブロッキング液（0.5 w%カゼイン（乳由来、品番030-01505、和光純薬）含有50 mMホウ酸バッファー(pH 8.5)）500 mLをバットに入れ、そのまま30分間静置した。その後、同様のバットに入れた洗浄・安定化液（0.5 w%スクロースおよび0.05 w%コール酸ナトリウムを含む50 mM Tris-HCl（pH 7.5）バッファー）500 mLに移して浸し、そのまま30分間静置した。メンブレンを液から取り出し、室温で一晩乾燥し、抗体固定化メンブレンとした。

（1-3-2）抗体固定化メンブレン（クロマトグラフ担体）の作成 （ドット塗布）
25 mm×200 mmに切断したニトロセルロースメンブレン（プラスチックの裏打ちあり、HiFlow Plus HF120、ミリポア社）に関し以下のような方法により抗体を固定し抗体固定化メンブレンを作成した。メンブレンの長辺を下にし、下から７ mmの位置に、1.5 mg / mLとなるように調製した固定化用抗インフルエンザA型モノクローナル抗体（Anti-Influenza A SPTN-5 7307、Medix Biochemica社）溶液をマイクロピペットにより0.2μLずつ、15ｍｍ間隔でドット塗布した。同様に、下から10 mmの位置に、1.5 mg / mLとなるように調製した固定化用抗インフルエンザB型モノクローナル抗体（MONOTOPE aby Influenza B Virus (nuclear) Purified 1131、ViroStat, Inc.）溶液をマイクロピペットにより0.2μLずつ、15ｍｍ間隔でドット塗布した。さらに同様に、下から13 mmの位置に、0.5 mg / mLとなるように調製したコントロール用抗マウスIgG抗体（抗マウスIgG(H+L),ウサギF(ab')2, 品番566-70621、和光純薬）溶液をマイクロピペットにより0.2μLずつ、15ｍｍ間隔でト゛ット塗布した。

塗布したメンブレンは、温風式乾燥機で50℃、30分間乾燥した。ブロッキング液（0.5 w%カゼイン（乳由来、品番030-01505、和光純薬）含有50 mMホウ酸バッファー(pH 8.5)）500 mLをバットに入れ、そのまま30分間静置した。その後、同様のバットに入れた洗浄・安定化液（0.5 w%スクロースおよび0.05 w%コール酸ナトリウムを含む50 mM Tris-HCl（pH 7.5）バッファー）500 mLに移して浸し、そのまま30分間静置した。メンブレンを液から取り出し、室温で一晩乾燥し、抗体固定化メンブレン（ドット塗布）とした。

（1-4）イムノクロマトグラフストリップの作製
バック粘着シート（ARcare9020、ニップンテクノクラスタ社）に、（1-3）で作成した抗体固定化メンブレンを貼り付けた。その際メンブレン長辺側のうち、抗インフルエンザA型抗体ライン側を下側とする。抗体固定化メンブレンの下側に約2 mm重なるように2で作成した金コロイド抗体保持パッドを貼り付け、約4 mm重なるようにして金コロイド抗体保持パッド下側に試料添加パッド（18 mm×150 mmに切ったグラスファイバーパッド（Glass Fiber Conjugate Pad、ミリポア社））を重ねて貼り付けた。さらに、抗体固定化メンブレンの上側には約5 mm重なるように吸収パッド（80 mm×150 mmに切ったセルロース・グラス膜（CF6、ワットマン社））を重ねて貼り付けた。

これら重ね張り合わせた部材（イムノクロマト本体部材）を、部材の長辺側を15 mm幅になるように短辺に平行にギロチン式カッター（CM4000、ニップンテクノクラスタ社）切断していくことで、15 mm×55 mmのイムノクロマト用ストリップを作成した。これらを試験用イムノクロマトキットとした。

（1-3-2）で作成したドット塗布メンブレンを用いてイムノクロマトストリップを作成する際には、抗体をスポットした位置が作成した試験用イムノクロマトキットの中央に来るように切断する位置を調整した。

（1-5）横から液を展開させるためのパットが予め装着されているイムノクロマトキットの作製（比較例1で使用）
（1-4）で作成した試験用イムノクロマトグラフキットの2本の捕捉部位（TL）の間のエリアのうちストリップの両端から真ん中になる点を、増幅液添加用パットと吸水用パットとを結ぶ直線が通るようにし、この増幅液展開方向と検体液展開方向とのなす角が45、60、90、135、150,170度となるようにして、増幅液展開の上流端となる端に増幅液添加用パット（18 mm×8mmに切ったグラスファイバーパッド（Glass Fiber Conjugate Pad、ミリポア社）に13mm×8mmのバック粘着シート（ARcare9020、ニップンテクノクラスタ社）を貼ったもの）をテーフ゜で貼り付け、下流端となる端に吸水用パット（100mm×8mmに切ったセルロースメンブレン（CF6、ワットマン社）に95mm×8mmに切ったバック粘着シート（ARcare9020、ニップンテクノクラスタ社）を貼ったもの）を貼り付けた。

（1-6）洗浄液
ＰＢＳバッファー（和光純薬）に1重量％のBSA（シグマ社）を溶解した1％BSA入りPBSバッファーを洗浄液とした。

（1-7）銀増幅液の作成
（1-7-1）増幅液Ａの作成
（1-7-1-1)増幅液A-1の作成
水325gに、硝酸鉄（III）九水和物（和光純薬、095-00995）を水に溶解して作成した1mol/Lの硝酸鉄水溶液40mL、クエン酸（和光純薬、038-06925）10.5g、ドデシルアミン（和光純薬、123-00246）0.1g、界面活性剤Ｃ₉Ｈ₁₉-Ｃ₆Ｈ₄-Ｏ-（ＣＨ₂ＣＨ₂Ｏ）₅₀Ｈ 0.44gを溶解させる。全て溶解したら、スターラーで攪拌しながら硝酸（10重量%,）を40mL加える。この溶液80mLを測りとり、硫酸アンモニウム鉄（II）六水和物（和光純薬、091-00855）を11.76g加えこれを増幅液A-1とした。

（1-7-1-2）増幅液A-2の作成
硝酸銀溶液10ｍＬ（10ｇの硝酸銀を含む）に水を加えて全体量が100gとなるようにし、増幅液A-2（10重量%硝酸銀水溶液）を作成した。

（1-7-1-3）増幅液Ａの作成
増幅液A-1 40mLを測りとり、増幅液A-2を4.25mL加え攪拌し、増幅液Ａとした。

（２）評価
＜比較例１＞
（2-0）デバイスのセッティング
（1-4）で作成したイムノクロマトグラフストリップ（第1の不溶性担体）に洗浄液添加用パット（第二の不溶性担体）（18 mm×8mmに切ったグラスファイバーパッド（Glass Fiber Conjugate Pad、ミリポア社）に13mm×8mmのバック粘着シート（ARcare9020、ニップンテクノクラスタ社）を貼ったもの）をテープで貼り付け、下流端となる端に吸水用パット（25mm×8mmに切ったセルロースメンブレン（CF6、ワットマン社）に20mm×8mmに切ったバック粘着シート（ARcare9020、ニップンテクノクラスタ社）を貼ったもの）を貼り付けた。

液体貯蔵ポッドに（1-6）で作成した洗浄液500μLを入れた。この洗浄液に触れないように、先ほど作成したイムノクロマトグラフストリップに洗浄液添加用パッドと吸水パッドを貼り付けたものを置き、上蓋をしめた。

（2-1）抗原液の点着・展開
検体液として、クイックS-インフルA・B「生研」陰性/陽性コントロール（品番322968、デンカ生研）を使用した。１質量％ＢＳＡを含むＰＢＳバッファーでこの陽性コントロール液を希釈した際の、市販イムノクロマト検出キット「キャピリアFluA・B」（アルフレッサファーマ）による検出限界はA型B型とも1/40であった。今回は１質量％ＢＳＡを含むＰＢＳバッファーで、この陽性コントロールを希釈し、1/200に希釈し、これを検体液として用いた。

（1-4）で作成した試験用イムノクロマトグラフキットの被験物質点着孔5に、検体液を300μＬ均一になるように滴下し、１０分静置した。この際、今回の濃度では検出限界濃度（本キットの場合も同液1/40希釈液）以下であり、目視で検出ラインを確認することはできない。

（2-2）洗浄、増幅液によるシグナル増幅
抗原液10分間展開後、棒でつつくことで洗浄液添加用パッドの端を液体貯蔵ポッドの洗浄液に浸し、洗浄液をストリップに展開させ5分間洗浄した。
残った洗浄液を液体貯蔵ポッドから取り除き、（1-7）で作成した増幅液Ａを500μL入れた。棒でつつくことで洗浄液添加用パッドの端を液体貯蔵ポッドの増幅液に浸け展開させた。2分後にメンブレンを取り出し、３分間水洗浄した。

（2-3）感度の評価
増幅後の検出ラインの反射吸収を、ICA-1000(浜松ホトニクス社)を用いて測定し、バックグランドとライン部との吸光度の差（ΔOD）を求め評価した。（このΔODの値が高いほど目視しやすいことを示し、5mABS以上で大方の人がラインを目視で認識できる。）実験は２回行い、その平均値を示した。結果を表１に示す。

＜実施例１＞
（2-4）デバイスのセッティング
図１に示したデバイスを用いて実験を行った。
図１の第２のデバイス部品６に洗浄液添加用パット（第２の不溶性担体）３（18 mm×8mmに切ったグラスファイバーパッド（Glass Fiber Conjugate Pad、ミリポア社）に13mm×8mmのバック粘着シート（ARcare9020、ニップンテクノクラスタ社）を貼ったもの）、及び吸水パット（第３の不溶性担体）４（25mm×8mmに切ったセルロースメンブレン（CF6、ワットマン社）に20mm×8mmに切ったバック粘着シート（ARcare9020、ニップンテクノクラスタ社）を貼ったもの）を取り付けた。
（1-4）で作成したイムノクロマトグラフストリップ（第１の不溶性担体）１を第1のデバイス部品５に取り付けた。

（2-5）抗原液の点着・展開
（2-1）同様に行った。

（2-6）洗浄、増幅液によるシグナル増幅
抗原液を10分間展開後、図１に示したデバイスの液体貯蔵ポッド２に（1-6）で作成した洗浄液500μLを入れた。第２のデバイス部品６を第1のデバイス部品５に閉じることで洗浄液添加用パッドの端を液体貯蔵ポッドの洗浄液に浸し、かつ、洗浄液添加用パット（第２の不溶性担体）３、及び吸水パット（第３の不溶性担体）４がイムノクロマトグラフストリップに横から装着された。こうして洗浄液をストリップに展開させ5分間洗浄した。

残った洗浄液を液体貯蔵ポッド２から取り除き、（1-7）で作成した増幅液Ａを500μL入れた。棒でつつくことで洗浄液添加用パッド２の端を液体貯蔵ポッドの増幅液に浸け展開させた。2分後にメンブレンを取り出し、３分間水洗浄した。
（2-7）バックグランド、感度の評価
（2-3）と同様に行った。結果を表１に示す。

＜実施例２＞
実施例１において、イムノクロマトグラフストリップとして（1-3-2）で抗体をドット塗布したメンブレンを用いて行なった。
バックグランド測定位置は、2点の捕捉部位の中点、を測定した。
感度の評価結果を表１に示す。

＜実施例３＞
（2-8）デバイスのセッティング
図２に示すように、液体貯蔵ポッド２が2室（液体貯蔵ポッドA,B）に分かれているものを用いた。第２の不溶性担体3として、図２に示すような二股に分かれたグラスファイバーパット３（Glass Fiber Conjugate Pad、ミリポア社）を用いた。図２に示すようにグラスファイバーパット３の一部に5%BSA溶液を塗っておいたものを用いた。
それ以外は実施例1と同様にセッティングを行った。

（2-9）抗原液の点着・展開
（2-1）同様に行った。

（2-10）洗浄、増幅液によるシグナル増幅
抗原液を10分間展開後、図２に示したデバイスの液体貯蔵ポッドAに（1-6-1-1)で作成した増幅液A-1液500μL、液体貯蔵ポッドBに（1-6-1-2)で作成した増幅液A-2液500μLを入れた。第２のデバイス部品６を第1のデバイス部品５に閉じることで二股メンブレンの一方の端を液体貯蔵ポッドAに、二股メンブレンの他方の端を体貯蔵ポッドBに浸け、かつ、二又メンブレン（第２の不溶性担体）３、及び吸水パット（第３の不溶性担体）４がイムノクロマトグラフストリップに横から装着された。こうして、先に、二股メンブレンの一方の端からの増幅液A-1液が、後から二股メンブレンの他方の端からの増幅液A-2液が添加された。こうして、洗浄、および増幅を行い、5分後にメンブレンを取り出し、３分間水洗浄した。
感度の評価結果を表１に示す。

＜実施例４＞
実施例３において、液体貯蔵ポッドA及びBに、予め液体貯蔵ポッドAに（1-6-1-1)で作成した増幅液A-1液500μL、液体貯蔵ポッドBに（1-6-1-2)で作成した増幅液A-2液500μLを入れておき、アルミで封をしてテープで止めておき、液を入れたまま持ち運べる形とした。
第2のデバイス部品６を第1のデバイス部品５に閉じる際に、このアルミが破られ、送液が開始された。
それ以外は実施例3と同様に実験を行なった。
感度の評価結果を表１に示す。

本発明のイムノクロマトグラフデバイスの一例を示す。 本発明のイムノクロマトグラフデバイスの別の例を示す。 本発明のイムノクロマトグラフデバイスの別の例を示す。 本発明のイムノクロマトグラフデバイスの別の例を示す。

符号の説明

１ 第１の不溶性担体（イムノクロマトグラフ用ストリップ）
２ 液体貯蔵ポッド
３ 第２の不溶性担体
４ 第３の不溶性担体
５ 第１のデバイス部品
６ 第２のデバイス部品
７ 位置決め機構
８ 第２の液体貯蔵ポッド
９ Ｙ字型突出ピン

Claims (10)

1. （ａ）被験物質と、該被験物質に対する第１の結合可能な物質で修飾した金属を含む標識物質とをこれらの複合体を形成させた状態で展開し、該被験物質に対する第２の結合可能な物質を有する反応部位において該被験物質と該標識物質を捕捉するための第１の不溶性担体を保持する第１のデバイス部品と、（ｂ）液体を展開するための第２の不溶性担体、及び液体を吸収するための第３の不溶性担体を保持する第２のデバイス部品とが、該第１の不溶性担体と、該第２の不溶性担体及び該第３の不溶性担体とが接触しない状態で収容されていて、該第１のデバイス部品が、液体貯蔵ポッドを有していて、該第１のデバイス部品及び該第２のデバイス部品が、該第１の不溶性担体と、該第２の不溶性担体及び該第３の不溶性担体とが接触する位置に位置決めされたとき、該第２の不溶性担体の一端が該液体貯蔵ポッドに浸漬する構造を有していることを特徴とする、イムノクロマトグラフデバイス。
2. 第１のデバイス部品と第２のデバイス部品とを、該第１の不溶性担体と、該第２の不溶性担体及び該第３の不溶性担体とが接触しないような位置及び接触する位置にそれぞれ位置決めすることが可能な位置決め機構をさらに有する、請求項１に記載のイムノクロマトグラフデバイス。
3. 該第２のデバイス部品が、被験物質を点着するための孔を有している、請求項１又は２に記載のイムノクロマトグラフデバイス。
4. 該液体貯蔵ポッドに予め液体が充填されていることを特徴とする、請求項１から３の何れかに記載のイムノクロマトグラフデバイス。
5. （ａ）被験物質と、該被験物質に対する第１の結合可能な物質で修飾した金属を含む標識物質とをこれらの複合体を形成させた状態で展開し、該被験物質に対する第２の結合可能な物質を有する反応部位において該被験物質と該標識物質を捕捉するための第１の不溶性担体を保持する第１のデバイス部品と、（ｂ）液体を展開するための第２の不溶性担体、及び液体を吸収するための第３の不溶性担体を保持する第２のデバイス部品とが、該第１の不溶性担体と、該第２の不溶性担体及び該第３の不溶性担体とが接触しない状態で収容されていて、該第1のデバイス部品が、２個の液体貯蔵ポッドを有し、該第２の不溶性担体の一端が二股に分かれており、そして、該第１のデバイス部品及び該第２のデバイス部品が、該第１の不溶性担体と、該第２の不溶性担体及び該第３の不溶性担体とが接触する位置に位置決めされたとき、上記二股の両端の各々が、２個の液体貯蔵ポッドの各々に浸漬する構造を有していることを特徴とする、イムノクロマトグラフデバイス。
6. 第１のデバイス部品と第２のデバイス部品とを、該第１の不溶性担体と、該第２の不溶性担体及び該第３の不溶性担体とが接触しないような位置及び接触する位置にそれぞれ位置決めすることが可能な位置決め機構をさらに有する、請求項５に記載のイムノクロマトグラフデバイス。
7. 該第２のデバイス部品が、被験物質を点着するための孔を有している、請求項５又は６に記載のイムノクロマトグラフデバイス。
8. 該第１のデバイス部品に第１の液体貯蔵ポッドを有し、
   該第２のデバイス部品に、該第１の液体ポッドと対向する位置に２つの第２の液体貯蔵ポッドを有し、
   該２つの第２の液体貯蔵ポッドに予め銀を含む化合物及び銀イオンのための還元剤がそれぞれ別々に充填されていることを特徴とする、請求項１から４の何れかに記載のイムノクロマトグラフデバイス。
9. 該第１のデバイス部品に第１の液体貯蔵ポッドを有し、
   該第２のデバイス部品に、該第１の液体ポッドと対向する位置に２つの第２の液体貯蔵ポッドを有し、
   該第１の液体貯蔵ポッド内に該第２の液体貯蔵ポッドに対向する向きにY字またはV字型の突出ピンを有し、該第１及び第２のデバイス部品が、該第１の不溶性担体と、該第２の不溶性担体及び該第３の不溶性担体とが接触する位置に位置決めされたとき、該突出ピンにより該第２の液体貯蔵ポッドの外壁を破り、該突出ピンをつたって該２つの第２の液体貯蔵ポッド内の液が該第１の液体貯蔵ポッドに移動し混合することを特徴とする、請求項１から４の何れかに記載のイムノクロマトグラフデバイス。
10. 該第１の不溶性担体が多孔性担体である、請求項１から９の何れかに記載のイムノクロマトグラフデバイス。

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