JP4847856B2 - FVIIおよびFVIIaの変種 - Google Patents
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Description
本発明は、196位、237位および341位からなる群より選択される位置で少なくとも1つのアミノ酸の改変を含む、新規のFVIIまたはFVIIaの変種に関する。本発明はまた、治療において、特に様々な凝固関連障害の治療のために、そのようなポリペプチド変種を使用することに関する。
血液凝固は、最終的にフィブリン凝血が起こる様々な血液成分(または因子)の複雑な相互作用からなるプロセスである。一般的に、「凝固カスケード」と呼ばれる事象に関与する血液成分は、プロ酵素またはチモーゲン、すなわち、活性化因子の作用によって活性型に変換される酵素的に不活性なタンパク質である。これらの凝固因子の1つは第VII因子(FVII)である。
本発明は、196位、237位および341位からなる群より選択される位置における少なくとも1つのアミノ酸の改変を含む、改善された組換えFVIIまたはFVIIaの変種を提供するものである。これらのアミノ酸の改変により、FVIIaとTFPIとの結合が変更される。上記で示したように、生じた分子は、NovoSeven(登録商標)のような市販のrhFVIIaと比較して、1つまたは複数の改善された特性を有する。
定義
本出願および本発明の文脈において、以下の定義を適用する。
最も広い局面において、本発明は、hFVIIまたはhFVIIa、好ましくはhFVIIaと比較して、196位、237位および341位からなる群より選択される位置で少なくとも1つのアミノ酸の改変を含む、FVIIまたはFVIIaの変種に関する。この変種は、典型的には、これらの位置の1つで改変を含むと考えられるが、これらの位置の2つ、すなわち196+237、196+341もしくは237+341、または3つ全ての位置で改変を含んでもよい。
本発明の1つの態様において、本発明は、hFVIIまたはhFVIIa(配列番号:2)と比較して、196位の位置で少なくとも1つの改変を含む、FVIIまたはFVIIaの変種に関する。
本発明のさらなる態様において、本発明は、hFVIIまたはhFVIIa(配列番号:2)と比較して、237位の位置で少なくとも1つの改変を含む、FVIIまたはFVIIaの変種に関する。
さらなる態様において、本発明は、hFVIIまたはhFVIIa(配列番号:2)と比較して、341位の位置で少なくとも1つの改変を含む、FVIIまたはFVIIaの変種に関する。
開示された変種は、TFPIに対して親和性が変更されていてもよく、これは、本明細書に記載されるBIAcore(登録商標)アッセイ法を用いて評価されてもよい。BIAcore(登録商標)アッセイ法を使用すると、平衡解離定数KD(KD = kd/kaであり、式中、kaは結合速度定数、kdは解離速度定数である)のような、様々な動力学的結合定数を評価することが可能である。より高いKD値が、TFPIに対する親和性の減少に対応することが理解されると思われる。
上記のように、本発明のFVIIまたはFVIIaの変種は、FVIIまたはFVIIaの分子に対してさらに有利な特性を与えることを目的としたさらなる改変(例えば、少なくとも1つのさらなるアミノ酸の置換)を含んでもよい。
本発明の興味深い態様において、少なくとも1つのさらなるアミノ酸の改変は、Glaドメイン、すなわち、FVII分子またはFVIIa分子のN末端から数えて初めの約45個のアミノ酸残基において行われる。6位、7位、14位、16位、19位、20位、25位、26位、29位および35位の残基は改変されないことが好ましい。
他の態様において、FVIIまたはFVIIaの変種は、得られたポリペプチド変種が、増加した機能的なインビボ半減期を有し、および/または増加した血漿半減期を有し、および/または静脈内投与、特にラットで静脈内投与された場合、増加した曲線下面積(AUCiv)を有し、および/または増加した生物学的利用能を有し、および/またはタンパク質分解性に対する減少した感受性を有するように、さらに改変される。本発明のこの局面によるポリペプチド変種を用いた治療は、低用量、および任意でより長時間の注射間隔のような、現在利用可能なrFVIIa化合物に対して多くの利点を提供しうる。関連するアミノ酸置換の多くの例は、国際公開公報第01/58935号において提供される。
本発明の興味深い態様において、非ポリペプチド部分は、糖部分であり、すなわち、本発明のポリペプチド変種は、本明細書の別の箇所に記載される1つまたは複数の改変に加えて、導入されたグリコシル化部位に共有結合する少なくとも1つの糖部分を含む。好ましくは、グリコシル化部位は、インビボグリコシル化部位、特にインビボN-グリコシル化部位であり、これは置換によって導入されている。好ましくは、グリコシル化部位は、Glaドメイン、組織因子結合部位、活性部位領域、および活性部位結合裂の隆起の外部に存在する位置に導入されている。
およびそれらの組み合わせからなる群より選択される置換が含まれる。本発明の好ましい態様において、インビボN-グリコシル化部位は、
およびそれらの組み合わせからなる群より選択される置換を行うことにより、より好ましくは、T106N、A175T、I205T、V253N、T267N+S269Tおよびそれらの組み合わせからなる群より選択される置換、特にI205Tである置換を行うことにより作製される。
が含まれる。
本発明のさらに興味深い態様において、非ポリペプチド部分は結合基としてシステインを有し、すなわち、本発明のポリペプチド変種は、上記の1つまたは複数の改変に加えて、導入されたシステインに共有結合した少なくとも1つの非ポリペプチド部分を含むものである。好ましくは、システイン残基は、置換によって導入される。好ましくは、システイン残基は、TF結合部位、Glaドメイン、活性部位領域、および活性部位結合裂の隆起の外部に存在する位置に導入される。
本発明のさらなる態様において、FVIIまたはFVIIaの変種は、上記の項に記載した改変に加えて、例えば国際公開公報第02/22776号に記載されるような、ポリペプチドの内因性の活性を増加させる既知の変異も含む。
およびそれらの組み合わせ、特にL65Q、F71Y、K62E、S43Qおよびそれらの組み合わせからなる群より選択される置換が含まれる。
上記でさらに示されるように、本発明のポリペプチド変種の非ポリペプチド部分は、好ましくはポリマー分子、親油性化合物、糖部分(インビボグリコシル化を介して)および有機誘導体化物質からなる群より選択される。これらの物質は全て、ポリペプチド変種に所望の特性、特に機能的インビボ半減期の増加および/または血漿半減期の増加を付与する可能性がある。
一般的に、本発明による結合型ポリペプチド変種は、ポリペプチドの発現のために行われる条件下で適切な宿主細胞を培養する工程、およびポリペプチド変種を回収する工程によって生産してもよく、ここで、
a)ポリペプチド変種は少なくとも1つのN-またはO-グリコシル化部位を含み、かつ宿主細胞はインビボグリコシル化を行うことができる真核宿主細胞であり、および/または
b)ポリペプチド変種は、インビトロで非ポリペプチド部分との結合を受ける。
FVIIの結合型変種の調製に関するさらなる情報は、例えば、国際公開公報第01/58935号および国際公開公報第03/093465号を参照されたい。
ポリペプチド変種にカップリングされるポリマー分子は、天然または合成ホモポリマーまたはヘテロポリマーのような任意の適したポリマー分子であってもよく、典型的に分子量約500〜20,000 Daのような、分子量の範囲が約300〜100,000 Da、より好ましくは約500〜15,000 Daの範囲、さらにより好ましくは約3〜10 kDaの範囲のような約2〜12 kDaの範囲の分子である。本明細書において特定の分子量に関連して「約」という用語を用いる場合、「約」という用語は、通常、おおよその平均分子量を示し、所定のポリマー調製物において特定の分子量の分布が存在するという事実を反映する。
本発明のポリペプチド変種のインビボグリコシル化を達成するために、ポリペプチド変種をコードするヌクレオチド配列は、グリコシル化した真核生物発現宿主に挿入されなければならない。発現宿主細胞は、真菌(糸状真菌または酵母)、昆虫もしくは動物細胞から、または形質転換植物細胞から選択され得る。1つの態様において、宿主細胞は、CHO細胞、COS細胞、BHK細胞もしくはHEK細胞(例えばHEK 293細胞)のような哺乳類細胞、またはSF9細胞のような昆虫細胞、またはS.セレビジエもしくはピチア・パストリス(Pichia pastoris)のような酵母細胞、または後に記載される任意の宿主細胞である。FVIIおよびFVIIaのインビボグリコシル化のさらなる情報は、参照として組み入れられる国際公開公報第01/58935号および国際公開公報第03/093465号に見出される。
グリコシル化型であってもよい、本発明のポリペプチド変種は、当技術分野で周知の任意の適した方法によって産生してもよい。そのような方法には、ポリペプチド変種をコードするヌクレオチド配列を構築する段階、および適した形質転換またはトランスフェクトした宿主において配列を発現させる段階が含まれる。好ましくは宿主細胞は、哺乳類細胞のようなγカルボキシル化宿主細胞である。しかし、本発明のポリペプチド変種は、あまり効率的ではないが、化学合成もしくは化学合成の組み合わせ、または化学合成と組み換えDNA技術の組み合わせによって産生してもよい。
さらなる局面において、本発明は、本発明のポリペプチド変種および薬学的に許容される担体または賦形剤を含む組成物、特に薬学的組成物に関する。
薬学的組成物の好ましい例は、非経口投与のためにデザインされた溶液、特に好ましくは水溶液である。多くの場合において、薬学的溶液製剤は、直ちに使用するために適用な液体型で提供されるが、そのような非経口製剤はまた凍結または凍結乾燥型で提供してもよい。前者の場合、組成物は使用前に融解しなければならない。凍結乾燥調製物は一般的にその液体対応物より安定であることが当業者によって認識されていることから、後者の型は、組成物に含まれる活性化合物の安定性を広く多様な保存条件で増強するために用いられる。そのような凍結乾燥調製物は、注射用滅菌水または滅菌生理食塩液のような1つまたは複数の薬学的に許容される希釈剤を加えることによって使用前に溶解する。
活性部位領域
活性部位領域を、触媒三構造(残基H193、D242、S344)における任意の原子から10Å以内に、少なくとも1つの原子を有する任意の残基として定義する。
タンパク質分解は、タンパク質分解が自己タンパク質分解である、米国特許第5,580,560号、実施例5に記載されるアッセイ法を用いて測定することができる。
ポリペプチド変種の分子量は、SDS-PAGE、ゲル濾過、ウェスタンブロット、マトリクス支援レーザー脱離質量分析、または平衡遠心、例えばLaemmli, U.K.、Nature Vol 227(1970)、pp.680〜85によるSDS-PAGEによって決定される。
TFPIによるFVII阻害をChang et al. Biochemistry 1999、38: 10940-10948に記載のアミド溶解アッセイ法においてモニターすることができる。
TFPIに結合する変種の能力を、Dickinson et al. Proc Natl Acad Sci. USA 1996、93: 14379-14384;Roberge et al. Biochemistry 2001、40: 9522-9531;およびRuf et al. Biochemistry 1999、38(7): 1957-1966に記載される3つのBIAcore(登録商標)アッセイ法のうち1つまたは複数の方法を用いて評価する。
本アッセイは、Nelsestuenら、J. Biol. Chem. 2001、276:39285〜39381の39826頁に詳細に記述されている。
FVIIaおよびその変種の凝血活性を一段階アッセイにおいて測定し、凝血時間をトロンボトラックIV凝固計(Medinor)において記録した。第VII因子枯渇ヒト血漿(American Diagnostica)を再構築して、室温で15〜20分平衡化した。次に、血漿50 μlを凝固計のカップに移した。
FVIIaおよびその変種の凝血アッセイを一段階アッセイにおいて測定し、凝血時間をトロンボトラックIV凝固計(Medinor)において記録した。FVIIaまたはその変種100 μlを、10 mMグリシルグリシン、50 mM NaCl、37.5 mM CaCl2、pH 7.35を含む緩衝液において希釈して、反応カップに移した。10%0.13 Mクエン酸ナトリウムを抗凝固剤として含む血液50 μlを加えて凝血反応を開始した。エクセルまたはPRISMソフトウェアを用いてデータを分析した。
変種が小さいペプチド基質を切断できるか否かは、発色基質S-2288(D-Ile-Pro-Arg-p-ニトロアニリド)を用いて測定することができる。FVIIaをアッセイ緩衝液(50 mM Na-Hepes、pH 7.5、150 mM NaCl、5 mM CaCl2、0.1%BSA、1 U/mlヘパリン)において約10〜90 nMに希釈した。さらに、可溶性TF(sTF)をアッセイ緩衝液において50〜450 nMに希釈する。アッセイ緩衝液120 μlをFVIIa試料20 μlおよびsTF 20 μlと混合する。室温で軽く振とうさせながら5分間インキュベートしてから37℃で10分間インキュベートした後、S-2288基質を1 mMとなるように加えて反応を開始させ、405 nmでの吸光度をいくつかの時点で決定する。
FVII/FVIIa(または変種)濃度をELISAによって決定する。マイクロタイタープレートのウェルを、プロテアーゼドメインに対する抗体の2 μg/mlのPBS溶液を用いてコーティングした(100 μl/ウェル)。R.T(室温)で一晩コーティングした後、ウェルをTHT緩衝液(100 mM NaCl、50 mM Tris-塩酸、pH 7.2、0.05% Tween20)によって4回洗浄した。その後、1%カゼイン(100 mM NaCl、50 mM Tris-塩酸、pH 7.2を用いて2.5%保存液を希釈)200 μlをブロッキングのためにウェルに加える。室温で1時間インキュベートした後、ウェルを空にして、試料100 μl(任意で希釈緩衝液(THT+0.1%カゼイン)において希釈)を加える。室温で1時間さらにインキュベーションした後、THT緩衝液でウェルを4回洗浄し、EGF様ドメインに対する100 μlのビオチン標識抗体(1 μg/ml)を添加する。さらに室温で1時間インキュベーションした後、THT緩衝液で4回洗浄し、100 μlのストレプトアビジン-西洋ワサビペルオキシダーゼ(DAKO A/S、Glostrup、Denmark、10000倍希釈)を添加する。さらに室温で1時間インキュベーションした後、THT緩衝液で4回洗浄し、100 μlのTMB(3,3',5,5'-テトラメチルベンジジン、Kem-en-Tech A/S、Denmark)を添加する。暗室で室温で30分間インキュベーションした後、100 μlの1 M H2SO4を添加し、OD450nmを測定する。rhFVIIa(NovoSeven(登録商標))を用いて標準曲線を作製する。
実施例1
Banner et al.、J Mol Biol、1996; 285:2089による可溶性組織因子との複合体におけるhFVIIaのX線構造を、本実施例のために使用する。参考文献における残基の番号付けは、配列に従っていないことに注意されたい。本明細書において本発明者らは、配列番号:2に従う連続番号を用いた。6位、7位、14位、16位、19位、20位、25位、26位、29位および35位の位置でのγ-カルボキシグルタミン酸は、本明細書において全てGlu(三文字略語)またはE(一文字略語)と命名する。残基143〜152位の残基は、構造には存在しない。この実施例の計算に関するさらなる情報は、国際公開公報第01/58935号を参照されたい。
活性部位結合裂領域の隆起を、N173、A175、K199、N200、N203、D289、R290、G291、A292、P321およびT370として、FVIIa構造1FAK.pdbの視覚的検査によって定義した。
哺乳類細胞におけるhFVII発現の発現カセットの設計
hFVIIをコードする完全長cDNAの短い形態を、その天然の短いシグナルペプチド(Hagen et al.、1986. Proc Natl Acad Sci USA 83:2412)と共に含む、配列番号:1に示されるDNA配列を、哺乳類細胞で高レベルの発現を促進するために合成した。第1に、ATG開始コドンコンテクストを、ATG開始コドン上流のコンセンサス配列と完全に一致するように、Kozakコンセンサス配列(Kozak, M. J Mol Biol 1987 Aug 20;196(4):947-50)に従って変更した。第2に、天然cDNAのオープンリーディングフレームを、高レベルで発現するヒト遺伝子で頻繁に使用されるコドンにコドンの使用を偏らせることによって変更した。さらに、有効な翻訳の停止を促進するために、二つの翻訳停止コドンをオープンリーディングフレームの末端に挿入した。完全な合成および発現最適化hFVII遺伝子を、70量体DNAオリゴヌクレオチドから構築し、最終的に、標準的なPCR技術を用いて5'および3'末端でそれぞれ、BamHI部位およびHindIII部位を挿入するエンドプライマーを用いて増幅し、以下の配列(配列番号:3)を得た:
を用いて増幅し、332 bpのPCR断片を得た。この断片をNheIおよびBamHIで切断した後、pCDNA3.1/HygR(Invitrogenから入手)にクローニングして、PF#34を得た。
本発明のポリペプチド変種をコードする発現ベクターの構築
置換されたコドンを有する変種FVIIオープンリーディングフレームを有する構築物を作製するために、配列突出伸長(Sequence overhang extension:SOE)PCRを使用した。SOE-PCRにおいて、初めに、FVIIオープンリーディングフレームのN末端部分とC末端部分の両方を別々に一次PCRで増幅した。
を用いて作製され、XhoIおよびHindIIIの間にディレクショナルクローニングされた。置換変種のためのSOE-PCR反応において使用されるセントラルプライマーは以下のものであった:
挿入変種のための、セントラルプライマーは以下のものであった:
CHO K1細胞におけるFVIIまたはFVII変種の発現
CHO K1細胞系(ATCC # CCL-61)を、MEMα、10% FCS(Gibco/BRL Cat # 10091)、P/Sおよび5 μg/mlのフィロキノンを用いたT-25フラスコ中に50%コンフルエントで播種して、コンフルエントとなるまで増殖させる。コンフルエントな単層細胞に、リポフェクトアミン2000物質(Life Technologies)を製造者の指示に従って使用して、5 μgの上記関連プラスミドをトランスフェクトさせる。トランスフェクションの24時間後、試料を採取して、例えばhFVIIのEGF1ドメインを認識するELISAなどを用いて、この試料を定量する。この時点で、安定したトランスフェクタントのプールを作製する目的で、関連した選択(例えば、ハイグロマイシンB)を細胞に適用してもよい。CHO K1細胞、およびプラスミド上の選択マーカーとしてハイグロマイシンB耐性遺伝子を使用する場合には、通常これは一週間以内に達成される。
ポリペプチド変種を安定して発現するCHO-K1細胞の作製
CHO-K1トランスフェクタントプールのバイアルを融解して、細胞を、25 mlのMEMα、10%FCS、フィロキノン(5 μg/ml)、100 U/mlペニシリン、100 μg/mlストレプトマイシンを含む175 cm2組織フラスコに播種して、24時間増殖させる。細胞を回収して、希釈し、細胞密度1/2個〜1個/ウェルで96ウェルマイクロタイタープレートに播種する。1週間増殖させた後、20〜100個の細胞のコロニーがウェルに存在し、1個のコロニーのみを含むウェルを標識する。さらに2週間後、1個のコロニーのみを含む全てのウェルにおける培地を、200 μlの新鮮な培地に交換する。24時間後、培地試料を採取して、例えばELISAによって分析する。高産生クローンを選択し、これをFVIIまたはその変種を大規模に産生させるために用いる。
ポリペプチド変種の精製および結果として生じた活性化
FVIIおよびFVII変種は以下のように精製する。技法は4℃で行う。大規模産生から回収した培養培地を、Millipore TFFシステムを用いて、30 kDaカットオフペリコンメンブレンを用いて限外濾過する。培地を濃縮した後、クエン酸塩を5 mMとなるように加えて、pHを8.6に調節する。必要であれば、伝導率を10 mS/cm未満に低下させる。その後、試料を、50 mM NaCl、10 mM Tris、pH 8.6によって平衡化したQ-セファロースカラムに適用する。100 mM NaCl、10 mM Tris、pH 8.6によってカラムを洗浄してから150 mM NaCl、10 mM Tris、pH 8.6によって洗浄した後、FVIIを10 mM Tris、25 mM NaCl、35 mM CaCl2、pH 8.6を用いて溶出する。
実験結果
本発明の変種を「全血アッセイ法」に付したところ、変種はrhFVIIaと比較して、凝血活性の有意な増加(凝血時間の減少)を示すことが判明した。実験結果を以下の表1にまとめる。さらに、結果を添付の図1に示す。これは、rhFVIIaに対するG237GAA変種の、凝血時間対濃度を示す。
● rhFVIIa
□ [G237GAA]rhFVIIa
Claims (33)
- アミノ酸配列が1〜15アミノ酸残基において配列番号:2の配列と異なり、かつD196Kの置換を含む、ヒトFVIIまたはFVIIaの単離された変種であって、196位に非ポリペプチド部分が結合しておらず、ヒトFVIIまたはFVIIaと比較して増加した凝血活性を示す、前記変種。
- hFVIIまたはhFVIIa(配列番号:2)と比較して、237位の位置で改変をさらに含む、請求項1記載の変種。
- 改変が置換G237Lである、請求項2記載の変種。
- 改変が挿入である、請求項2記載の変種。
- 挿入が、G237GXX、G237GXXXおよびG237GXXXXからなる群より選択され、Xが任意のアミノ酸残基である、請求項4記載の変種。
- Xが、Ala、Val、Leu、Ile、Gly、SerおよびThrからなる群より選択される、請求項5記載の変種。
- XがAlaである、請求項6記載の変種。
- 挿入G237GAAを含む、請求項5記載の変種。
- hFVIIまたはhFVIIa(配列番号:2)と比較して、341位の位置で改変をさらに含み、かつ該改変が置換K341Qである、請求項1記載の変種。
- 1〜10個のさらなるアミノ酸の改変を含む、請求項1〜9のいずれか一項記載の変種。
- さらなる改変が置換である、請求項10記載の変種。
- Glaドメインに置換をさらに含む、請求項11記載の変種。
- P10、K32、D33およびA34からなる群より選択される位置での少なくとも1つのさらなる置換、ならびに/またはA3とF4の間への挿入を含む、請求項12記載の変種。
- K32の位置で置換を含む、請求項13記載の変種。
- 置換がK32Eである、請求項14記載の変種。
- P10の位置で置換を含む、請求項13〜15のいずれか一項記載の変種。
- 置換がP10Qである、請求項16記載の変種。
- 非ポリペプチド部分への結合基を含む少なくとも1つのアミノ酸残基が導入されている、請求項1〜17のいずれか一項記載の変種。
- 結合基が置換によって導入されたインビボグリコシル化部位である、請求項18記載の変種。
- インビボグリコシル化部位がインビボO-グリコシル化部位である、請求項19記載の変種。
- インビボグリコシル化部位がインビボN-グリコシル化部位である、請求項20記載の変種。
- インビボN-グリコシル化部位が、T106N、A175T、I205T、V253NおよびT267N+S269Tからなる群より選択される少なくとも1つの置換によって導入される、請求項21記載の変種。
- 活性化型である、請求項1〜22のいずれか一項記載の変種。
- 請求項1〜23のいずれか一項記載の変種をコードするヌクレオチド。
- 請求項24記載のヌクレオチドを含む発現ベクター。
- 請求項24記載のヌクレオチド、または請求項25記載の発現ベクターを含む、宿主細胞。
- インビボでグリコシル化を行うことができるγカルボキシル化細胞である、請求項26記載の宿主細胞。
- 請求項1〜23のいずれか一項記載の変種、および少なくとも1つの薬学的に許容される担体または賦形剤を含む、組成物。
- 薬剤として使用するための、請求項1〜23のいずれか一項記載の変種。
- 凝血形成が望ましい疾患または障害の治療用の薬剤を製造するための、請求項1〜23のいずれか一項記載の変種の使用。
- 疾患または障害が、脳出血を含む出血;外傷のような制御できない激しい出血;移植または切除を受ける患者の出血;静脈瘤出血;および血友病からなる群より選択される、請求項30記載の使用。
- 疾患または障害が外傷である、請求項31記載の使用。
- 疾患または障害が血友病である、請求項31記載の使用。
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