JP4841266B2 - 被検出物質の検出方法 - Google Patents
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Description
本発明は、試料に含まれる被検出物質を検出する方法に関する。
従来、試料中の被検出物質を検出する方法としては、特許文献１記載の方法が知られている。特許文献１には、試料中のサイクリン依存性キナーゼ（ＣＤＫ）によってリン酸化された基質（被検出物質）を定量することによりＣＤＫの活性を算出することが開示されている。特許文献１の方法例３によると、具体的には、先ずＣＤＫ及びアデノシン５’−Ｏ−（３−チオトリホスフェート）（ＡＴＰγＳ）によってＣＤＫの基質にチオリン酸基を導入する。次に、チオリン酸基が導入された基質に蛍光物質を結合させ、これを固相担体に固定化する。この固相担体に励起光を照射して基質に結合した蛍光物質から生じる蛍光を検出し、この検出結果に基づいてリン酸化された基質が定量される。
蛍光の検出を行う際には、非特異的に固相担体に吸着した蛍光物質から発せられる蛍光がバックグラウンドとして検出される。そのため、上記方法では、蛍光標識後に界面活性剤を含む緩衝液で固相担体を洗浄することにより、非特異的に吸着した蛍光物質を除去し、蛍光バックグラウンドを低減させている。これによって、固相担体に固定化された基質を正確に定量することができ、さらにこの定量結果に基づいてＣＤＫの活性を正確に測定することができる。
しかしながら、界面活性剤を用いて洗浄を行うと、非特異的に吸着した蛍光物質だけでなく、固相担体に固定化した基質までも固相担体から分離する可能性がある。従って、固相担体から基質が分離しないようにするため、界面活性剤濃度や洗浄時間などの洗浄条件を厳格に設定する必要があった。
本発明の目的は、固相上に、蛍光物質のようなシグナル発生物質と被検出物質との複合体を形成後、界面活性剤を用いた洗浄操作を行わずにバックグラウンドを低減させることができ、被検出物質を正確に検出することができる被検出物質の検出方法を提供することである。
本発明は、シグナル発生物質と試料中の被検出物質との複合体が固定化された固相担体を調製する工程と、この固相担体にさらにブロッキング剤を固定化する工程と、固相担体に固定化した複合体のシグナル発生物質から発するシグナルを検出することにより、被検出物質を検出する工程とを含む被検出物質の検出方法を提供する。
本発明によると、固相上に、蛍光物質のようなシグナル発生物質と被検出物質との複合体を形成後、界面活性剤を用いた洗浄操作を行わずにバックグラウンドを低減させることができ、被検出物質を正確に検出することができる方法が提供される。
本発明の一実施形態である、試料中の被検出物質の検出方法は、被検出物質とシグナル発生物質との複合体（以下、単に複合体ともいう）が固定化された固相担体を調製する工程、この固相担体にさらにブロッキング剤を固定化する工程と、この固相担体に固定化した複合体のシグナル発生物質から発するシグナルを検出することにより、前記被検出物質を検出する工程とを含む。なお、本明細書において、「被検出物質を検出する」とは、試料中の被検出物質の存否を判定するだけでなく、定量することをも含む。
複合体が固定化された固相担体を作製する方法としては特に限定されないが、好ましくは、被検出物質を含む試料にシグナル物質を添加し、シグナル発生物質と被検出物質とを結合させることによって複合体を生成し、この複合体を固相担体に固定化する。また、被検出物質及びシグナル発生物質の何れか一方を固相担体に先に固定化しておき、他方をさらに固定化することによって、固相担体上でシグナル発生物質と被検出物質との結合反応を行ってもよい。即ち、シグナル発生物質と被検出物質との結合反応は、試料中で行われてもよいし、固相担体上で行われてもよい。
被検出物質としては特に限定されず、タンパク質、核酸、ホルモン、毒物などが例示されるが、タンパク質であることが好ましい。タンパク質の固相担体への固定化の方法としては、公知のブロッティング方法を用いることができ、固相担体としては市販のブロッティング用メンブレンを用いることができる。メンブレンの材質としては、例えばポリビニリデンフロライド（ＰＶＤＦ）、ニトロセルロース、ナイロン（例えば、カルボキシル基やアルキル基を置換基として有してもよいアミノ基が導入された修飾ナイロン）、セルロースアセテートなどが挙げられる。
シグナル発生物質としては、特に限定されないが特定の波長を有する光（励起光）を照射することにより蛍光を発する物質（以下、蛍光物質とする）を有することが好ましい。
被検出物質は、シグナル発生物質に特異的に結合可能な官能基を有していることが好ましい。例えば、被検出物質がチオール基を有するタンパク質の場合は、このチオール基に結合可能なシグナル発生物質を用いることができる。このようなシグナル発生物質としては、具体的には、５−ヨードアセトアミドフルオレセイン（５ＩＡＦ）、オレゴングリーンヨードアセトアミド（ＯＧＩ）、ヨードアセチル−フルオレセインイソチオシアネート、５−（ブロモメチル）フルオレセイン、フルオレセイン−５−マレイミド、６−ヨードアセトアミドフルオレセイン、４−ブロモメチル−７−メトキシクマリン、エオシン−５−ヨードアセトアミド、エオシン−５−マレイミド、エオシン−５−ヨードアセトアミド、Ｎ−（１，１０−フェナントロリン−５−イル）ブロモアセトアミド、１−ピレンブチリルクロリド、Ｎ−（１−ピレンエチル）ヨードアセトアミド、Ｎ−（１−ピレンメチル）ヨードアセトアミド、（１−ピレンメチル）ヨードアセテート、ローダミンレッドＣ２マレイミドなどが例示される。
被検出物質がこのような官能基を有さない場合は、被検出物質に官能基を導入することにより、シグナル発生物質と被検出物質との結合が可能となる。例えば、被検出物質がチオール基を有さないタンパク質である場合、このタンパク質を基質とするキナーゼとアデノシン５’−Ｏ−（３−チオトリホスフェート）（以下、ＡＴＰγＳとする）とを用いてこのタンパク質にチオリン酸基を導入し、ここに上述のようなシグナル発生物質を結合させることができる。
複合体が固定化された固相担体には、さらにブロッキング処理が行われる。ブロッキング処理とは、固相担体にブロッキング剤を固定化する処理のことである。このブロッキング処理の前に、被検出物質とシグナル発生物質との結合反応を停止させることが好ましい。結合反応の停止には、チオール基を有する還元剤を用いることができる。被検出物質とシグナル発生物質との結合反応時にチオール基を有する還元剤を反応停止剤として共存させることにより、この結合反応は停止される。チオール基を有する還元剤としては、２−メルカプトエタノール、Ｄ型システイン、Ｌ型システイン、アセチルシステイン、２−メルカプトプロピオン酸、メルカプト酢酸、２−アミノエタンチオール、ジチオスレイトール、グルタチオン、ドデカンチオールなどが例示され、これらを単独又は混合して用いることができる。
ブロッキング処理に用いられるブロッキング剤としては、アルブミン、カゼイン、グロブリン、ゼラチンなどが例示され、これらを単独又は混合して用いることができる。アルブミンを用いる場合、その由来とする動物は特に限定されず、例えばウシ、ヤギ、ウサギ、ヒトなどを由来とするアルブミンを用いることができる。アルブミンとしては、ＢＳＡを用いることが好ましい。ブロッキング処理は１回でもよいし、複数回に分けて行ってもよい。
ブロッキング剤を固相担体に固定化する際は、ブロッキング剤を溶解したブロッキング溶液を用いることが好ましい。ブロッキング溶液は、ブロッキング剤の他に緩衝剤を含有させてもよい。緩衝剤としては、例えばトリス−塩酸緩衝剤、イミダゾール−酢酸緩衝剤、リン酸緩衝剤、クエン酸緩衝剤、リンゴ酸緩衝剤、シュウ酸緩衝剤、フタル酸緩衝剤、グリシン緩衝剤、酢酸緩衝剤、コハク酸緩衝剤、ホウ酸緩衝剤、炭酸緩衝剤、グッド緩衝剤などを用いることができる。
固相担体にブロッキング剤を固定化した後、シグナルが検出される。シグナルの検出方法は、シグナル発生物質の種類によって決定される。例えば、シグナル発生物質が蛍光物質を有する場合、固相担体に励起光を照射して蛍光を励起させ、蛍光画像解析装置などで検出することができる。被検出物質を定量する場合、検出されたシグナルの強度に基づいて被検出物質の量を算出することができる。被検出物質の定量に際しては、検量線を用いることが好ましい。検量線は、シグナル発生物質を結合させた既知量のタンパク質を上記と同様に固相担体に固定化し、さらにこの固相担体にブロッキング処理を施した後、このシグナル強度を測定することによって作成される。検量線に用いられるタンパク質は、例えば、グロブリン、アクチンなどを用いることができる。
ブロッキング剤を固定化せずにシグナルを検出する方法、固相担体に複合体を固定化する前にブロッキング剤を固定化してシグナルを検出する方法などに比べて、本実施形態のように複合体が固定化された固相担体にさらにブロッキング剤を固定化することにより、シグナル検出の際のバックグラウンドを低減することができる。この方法によると、固相担体に非特異的に吸着したシグナル発生物質からのシグナルの発生を効果的に抑制し、複合体からのシグナルは実質的に抑制されないため、複合体が発するシグナルと、固相担体に非特異的に吸着したシグナル発生物質に基づくバックグラウンドとの比（Ｓ／Ｎ比）を向上させることができる。従って、正確に試料中の被検出物質を検出することができる。
検量線を作成する際は、複合体を固定化した担体にさらにブロッキング剤を固定化することによって、従来の方法に比べて検量線の傾きを大きくすることができ、被検出物質の検出の際の測定値の分解能が向上する。即ち、本実施形態の方法を用いて作成された検量線を用いると、より正確に被検出物質の定量を行うことができる。
被検出物質が酵素反応によって生成された物質である場合は、上記の方法によって被検出物質を検出することにより、酵素の活性を測定することが可能である。以下、被検出物質の検出に基づく酵素活性測定方法について説明する。活性測定の対象となる酵素は特に限定されず、キナーゼ、ペプチダーゼ、ポリメラーゼなどが挙げられる。例えば、キナーゼの活性を測定する場合、先ず、アデノシントリホスフェート（ＡＴＰ）、アデノシンジホスフェート（ＡＤＰ）、アデノシンモノホスフェート（ＡＭＰ）、又はこれらの類縁体（例えば、ＡＴＰγＳなど）と、キナーゼと、基質とを反応させて基質にリン酸基を導入し、リン酸化された基質（以下、リン酸化基質とする）に結合可能なシグナル発生物質を結合させて複合体を形成させる。この複合体を固相担体に固定化し、上述の方法によってシグナルを検出する。検出されるシグナルの強度によってリン酸化基質を定量することができ、この定量結果に基づいてキナーゼの活性が測定される。この場合、リン酸化基質が上述の被検出物質に相当する。
活性測定の対象となり得るキナーゼとしては、具体的には、カルシウム／カルモジュリン依存性プロテインキナーゼ（例えば、ミオシンＬ鎖キナーゼ、ｅＥＦ２−キナーゼ、ホスホリラーゼキナーゼなど）、サイクリックヌクレオチドレギュレイテッドキナーゼ、ＣＤＫ（例えば、ＣＤＫ１，ＣＤＫ２，ＣＤＫ３，ＣＤＫ４，ＣＤＫ５，ＣＤＫ６，ＣＤＫ７、ＣＤＫ８など）等が例示される。
酵素活性を測定する場合、被検出物質を含む試料は、酵素を含む試料（以下、酵素試料とする）とこの酵素に対応する基質とを混合し、酵素反応を行うことにより調製される。酵素によっては、酵素反応に他の物質が必要となることがあり、その物質も適宜添加することができる。例えば、キナーゼの活性を測定する場合は、ＡＴＰ、ＡＤＰ、ＡＭＰ、これらの類縁体等を添加する必要がある。
酵素試料としては、活性測定の対象となる酵素を含む試料であれば特に限定されない。例えば、細胞塊、血液、尿、精液などの生体試料を用いることができる。測定対象の酵素が細胞の内部に含まれている場合、細胞膜を破壊し、試料中に遊離状態で存在させることが好ましい。また、核の内部に含まれる酵素を測定対象とする場合は、核膜をも破壊することが好ましい。そのため、試料中の酵素と基質との反応を行う前に、生体試料に対して可溶化処理を行うことが好ましい。可溶化処理とは、試料に含まれる細胞の細胞膜や核膜などを物理的及び／又は化学的に破壊することにより、膜内部に存在する分子を溶液中に遊離させることをいう。
可溶化処理は、生体試料に可溶化処理用の緩衝液（以下、溶解緩衝液とする）を添加して行うことが好ましい。溶解緩衝液には、酵素の変性を阻害する物質、細胞膜又は核膜を破壊する物質などを含有させることができる。
例えば、緩衝材を含む溶解緩衝液を試料に添加し、ワーリングブレンダー又はシリンジによる吸引排出や超音波処理を行うことにより、生体試料に対して可溶化処理を施すことができる。溶解緩衝液には、界面活性剤やプロテアーゼインヒビターなどを含有させてもよい。また、活性測定の対象がキナーゼである場合は、脱リン酸化酵素阻害剤を溶解緩衝液に含有させてもよい。
界面活性剤は、細胞膜や核膜を破壊する作用を有する。このような作用を持つものであれば界面活性剤の種類は特に限定されないが、測定対象の酵素を失活させない程度の界面活性作用を有するものが用いられる。例えば、ノニデットＰ−４０（ＮＰ−４０）、トリトンＸ−１００（Union Carbide Chemicals and Plastics Co.の登録商標）、デオキシコール酸、ＣＨＡＰＳなどが挙げられる。溶解緩衝液にはこれらの界面活性剤を単独又は混合して用いることができる。溶解緩衝液中の界面活性剤の濃度は１ｗ／ｖ％以下が好ましい。
プロテアーゼインヒビターは、細胞に含まれるプロテアーゼが測定対象の酵素を分解することを防ぐ目的で用いられる。プロテアーゼインヒビターとしては、例えば、ＥＤＴＡ，ＥＧＴＡなどのようなメタロプロテアーゼインヒビター、ＰＭＳＦ、トリプシンインヒビター、キモトリプシンなどのようなセリンプロテアーゼインヒビター、ヨードアセトアミド、Ｅ−６４などのようなシステインプロテアーゼインヒビターなどが挙げられる。また、プロテアーゼインヒビターカクテル（シグマ社）のような市販のものを例示することもできる。溶解緩衝液にはこれらのプロテアーゼインヒビターを単独又は混合して用いることができる。
脱リン酸化酵素阻害剤は、細胞に含まれる脱リン酸化酵素が測定対象の酵素の活性を低下させることを防ぐ目的で用いられる。脱リン酸化酵素阻害剤としては、セリン／スレオニン脱リン酸化酵素阻害剤（フッ化ナトリウムなど）、チロシン脱リン酸化酵素阻害剤（オルトバナジン酸ナトリウムなど）などを例示することができる。溶解緩衝液にはこれらの脱リン酸化酵素阻害剤を単独又は混合して用いることができる。
活性測定の対象となる酵素がＣＤＫ１又はＣＤＫ２である場合、基質としては、ヒストンＨ１又は網膜芽細胞腫タンパク質（Retinoblastoma Protein：以下、Ｒｂとする）を用いることが好ましい。また、酵素がＣＤＫ４又はＣＤＫ６である場合は、基質としてＲｂを用いることが好ましい。この基質は、硫黄原子を含まないアミノ酸（システイン及びメチオニン以外のアミノ酸）から構成されるタンパク質が好ましい。Ｒｂのようなシステイン残基を含むタンパク質は、システイン残基をアラニンなどの硫黄原子を含まないアミノ酸に置換して用いることが好ましい。基質中のシステインやメチオニンを、硫黄原子を含まないアミノ酸に置換する方法としては、ＰＣＲ法や部分点突然変異法などの公知の方法を用いて行うことができる。
測定対象酵素がキナーゼである場合、上述したように酵素と基質との反応にはＡＴＰ、ＡＤＰ、ＡＭＰ又はこれらの類縁体が必要である。本実施形態では、ＡＴＰに硫黄原子が結合したアデノシン５’−Ｏ−（３−チオトリホスフェート）（以下、ＡＴＰγＳとする）を用いることが好ましい。この場合、上述のようにキナーゼの作用により、基質にＡＴＰγＳのチオリン酸基が導入され、このチオリン酸基にシグナル発生物質が結合する。
測定対象酵素が分解酵素である場合は、例えば、酵素反応前の基質には結合せず、酵素反応後の分解産物に特異的に結合する抗体と上述の蛍光物質とを有するシグナル発生物質を用いることができる。
なお、本実施形態の被検出物質の検出方法及び酵素活性測定方法の各工程は、手動で実行されてもよいし、装置等を用いて自動的に実行されてもよい。
（実施例１）
１ｍｌの溶解緩衝液（０．１ｗ／ｖ％ ノニデットＰ４０（ＮＰ４０、カルビオケム）、５０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．４）、５ｍＭ ＥＤＴＡ、５０ｍＭ フッ化ナトリウム、１ｍＭ オルトバナジン酸ナトリウム及び２μｌ／ｍｌ プロテアーゼインヒビターカクテル（シグマ）を含む）に２×１０７細胞のＫ５６２（白血病由来の培養細胞）を添加して細胞懸濁液を調製した。
１ｍｌの溶解緩衝液（０．１ｗ／ｖ％ ノニデットＰ４０（ＮＰ４０、カルビオケム）、５０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．４）、５ｍＭ ＥＤＴＡ、５０ｍＭ フッ化ナトリウム、１ｍＭ オルトバナジン酸ナトリウム及び２μｌ／ｍｌ プロテアーゼインヒビターカクテル（シグマ）を含む）に２×１０７細胞のＫ５６２（白血病由来の培養細胞）を添加して細胞懸濁液を調製した。
電動ホモジナイザを用いて、この細胞懸濁液中の細胞をホモジナイズし、得られたホモジネートを４℃、１５０００ｒｐｍ、５分間遠心分離して上清を測定用試料とした。
１．５ｍｌエッペンドルフチューブに免疫沈降用緩衝液（０．１ｗ／ｖ％ ＮＰ４０及び５０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．４）を含む）を５００μｌ収容し、ここに抗ＣＤＫ２抗体（サンタクルズ社）２μｇとプロテインＡとをコートしたセファロースビーズ（バイオラッド社）２０μｌを加えた。
次に、チューブ内の全タンパク質の濃度がそれぞれ２５，５０，７５及び１００μｇ／５００μｌとなるように調節して測定用試料をチューブに添加した。また、測定用試料を添加せず、全タンパク質量が０μｇであるチューブも作製した。
これらのチューブを４℃で一時間震蕩してＣＤＫ２と抗ＣＤＫ２抗体とを反応させた。
反応後、チューブ内のビーズをビーズ洗浄液Ａ（１ｗ／ｖ％ ＮＰ−４０及び５０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．０）を含む）で二回洗浄し、ビーズ洗浄液Ｂ（３００ｍＭ ＮａＣｌ及び５０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．４）を含む）で一回洗浄し、ビーズ洗浄液Ｃ（５０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．４）を含む）で一回洗浄した。
次に、ＣＤＫの基質溶液（１０μｇ ヒストンＨ１（アップステイトバイオテクノロジー社）、２ｍＭ ＡＴＰ−γＳ（シグマ社）、４０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．４）、２０ｍＭ ＭｇＣｌ２及び０．１％ ＴｒｉｔｏｎＸ−１００を含む）を添加した。基質溶液は、チューブに収容した混合液の総量が５０μｌとなるように調節して添加された。これを３７℃で３０分間震蕩してキナーゼ反応を行ない、ヒストンＨ１にチオリン酸基を導入した。
キナーゼ反応後、２０００ｒｐｍで２０秒間遠心分離してビーズを沈殿させ、上清１８μｌを採取した。
この上清に、結合緩衝液（１５０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．４）及び５ｍＭのＥＤＴＡを含む）１５μｌと、５ＩＡＦ溶液（２．５８ｍＭ ５ＩＡＦ、１５０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．５）及び５ｍＭ ＥＤＴＡを含む）とを添加して２０分間、室温、暗所で静置することにより、チオリン酸基を導入された基質（チオリン酸化基質）の硫黄原子に５ＩＡＦを結合させた。
５ＩＡＦとチオリン酸基との反応の停止は、反応停止剤である２−メルカプトエタノールの添加により行なった。
５ＩＡＦが結合したチオリン酸化基質０．３５μｇを含む試料を、スロットブロッターを用いてＰＶＤＦメンブレン上にブロットした。
このＰＶＤＦメンブレンを２００μｌのメンブレン洗浄液（２５ｍＭのトリス塩酸（ｐＨ７．４）及び１５０ｍＭのＮａＣｌを含む）で六回洗浄した。
洗浄後、ＰＶＤＦメンブレンにバックグラウンド低減用のブロッキング溶液（４ｗ／ｖ％のＢＳＡ、２５ｍＭのトリス塩酸（ｐＨ７．４）及び１５０ｍＭのＮａＣｌを含む）をさらにブロッティングした。
その後、蛍光イメージアナライザMolecular Imager FX（バイオラッド社）を用いてＰＶＤＦメンブレンの蛍光分析を行ない、蛍光強度を測定した。蛍光強度は蛍光カウント値（単位＝ＣＮＴ）として表される。
次に、チューブ内の全タンパク質の濃度がそれぞれ２５，５０，７５及び１００μｇ／５００μｌとなるように調節して測定用試料をチューブに添加した。また、測定用試料を添加せず、全タンパク質量が０μｇであるチューブも作製した。
これらのチューブを４℃で一時間震蕩してＣＤＫ２と抗ＣＤＫ２抗体とを反応させた。
反応後、チューブ内のビーズをビーズ洗浄液Ａ（１ｗ／ｖ％ ＮＰ−４０及び５０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．０）を含む）で二回洗浄し、ビーズ洗浄液Ｂ（３００ｍＭ ＮａＣｌ及び５０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．４）を含む）で一回洗浄し、ビーズ洗浄液Ｃ（５０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．４）を含む）で一回洗浄した。
次に、ＣＤＫの基質溶液（１０μｇ ヒストンＨ１（アップステイトバイオテクノロジー社）、２ｍＭ ＡＴＰ−γＳ（シグマ社）、４０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．４）、２０ｍＭ ＭｇＣｌ２及び０．１％ ＴｒｉｔｏｎＸ−１００を含む）を添加した。基質溶液は、チューブに収容した混合液の総量が５０μｌとなるように調節して添加された。これを３７℃で３０分間震蕩してキナーゼ反応を行ない、ヒストンＨ１にチオリン酸基を導入した。
キナーゼ反応後、２０００ｒｐｍで２０秒間遠心分離してビーズを沈殿させ、上清１８μｌを採取した。
この上清に、結合緩衝液（１５０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．４）及び５ｍＭのＥＤＴＡを含む）１５μｌと、５ＩＡＦ溶液（２．５８ｍＭ ５ＩＡＦ、１５０ｍＭ トリス塩酸（ｐＨ７．５）及び５ｍＭ ＥＤＴＡを含む）とを添加して２０分間、室温、暗所で静置することにより、チオリン酸基を導入された基質（チオリン酸化基質）の硫黄原子に５ＩＡＦを結合させた。
５ＩＡＦとチオリン酸基との反応の停止は、反応停止剤である２−メルカプトエタノールの添加により行なった。
５ＩＡＦが結合したチオリン酸化基質０．３５μｇを含む試料を、スロットブロッターを用いてＰＶＤＦメンブレン上にブロットした。
このＰＶＤＦメンブレンを２００μｌのメンブレン洗浄液（２５ｍＭのトリス塩酸（ｐＨ７．４）及び１５０ｍＭのＮａＣｌを含む）で六回洗浄した。
洗浄後、ＰＶＤＦメンブレンにバックグラウンド低減用のブロッキング溶液（４ｗ／ｖ％のＢＳＡ、２５ｍＭのトリス塩酸（ｐＨ７．４）及び１５０ｍＭのＮａＣｌを含む）をさらにブロッティングした。
その後、蛍光イメージアナライザMolecular Imager FX（バイオラッド社）を用いてＰＶＤＦメンブレンの蛍光分析を行ない、蛍光強度を測定した。蛍光強度は蛍光カウント値（単位＝ＣＮＴ）として表される。
（比較例１〜３）
比較例１では、抗ＣＤＫ２抗体がコートされたセファロースビーズではなく、抗ＣＤＫ２抗体がコートされていないセファロースビーズを用いること以外は実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例２では、ブロッキング溶液を用いないこと以外は実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例３では、ブロッキング溶液を用いないこと以外は比較例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例１では、抗ＣＤＫ２抗体がコートされたセファロースビーズではなく、抗ＣＤＫ２抗体がコートされていないセファロースビーズを用いること以外は実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例２では、ブロッキング溶液を用いないこと以外は実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例３では、ブロッキング溶液を用いないこと以外は比較例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
（結果）
実施例１及び比較例１〜３のＰＶＤＦメンブレンの写真を図１に示す。また、実施例１及び比較例１〜３において測定された蛍光強度のグラフを図２に示す。なお、蛍光強度は、蛍光カウント値（ＣＮＴ）として表した。
実施例１及び比較例１〜３のＰＶＤＦメンブレンの写真を図１に示す。また、実施例１及び比較例１〜３において測定された蛍光強度のグラフを図２に示す。なお、蛍光強度は、蛍光カウント値（ＣＮＴ）として表した。
図１より、チオリン酸化基質（被検出物質）と５ＩＡＦ（シグナル発生物質）との複合体を固定化した後にブロッキング処理を行うと（実施例１及び比較例１）、ブロッキング処理を行わなかった場合（比較例２及び比較例３）に比べてバックグラウンドを低減することができた。また、図２より、ブロッキング処理を行うと、ブロッキング処理を行わなかった場合に比べてシグナル（実施例１からバックグラウンド値を差し引いた値）とバックグラウンド値との比（Ｓ／Ｎ比）が向上した。また、実施例１のグラフのみタンパク質濃度依存的に蛍光カウント値が上昇し、さらに良好な直線性を示した。以上より、実施例１の方法により正確にチオリン酸化されたヒストンＨ１を定量できたことが確認された。
ＣＤＫ２の活性を算出するための検量線は以下のようにして作成することができる。先ず、５ＩＡＦ標識した既知濃度のタンパク質（例えば、グロブリンなど）を含む溶液をＰＶＤＦメンブレンにブロットする。さらにここにブロッキング剤をブロッティングする。そして、このＰＶＤＦメンブレンにブロッティングされたタンパク質の蛍光強度を蛍光イメージアナライザで測定し、検量線を作成する。この検量線に実施例１で測定される蛍光カウント値をあてはめることによって試料に含まれるＣＤＫ２の活性を算出することができる。
（実施例２）
実施例２では、シグナル発生物質として５ＩＡＦではなくＯＧＩを用いること、及び反応停止剤として２−メルカプトエタノールではなく、Ｌ型システインを用いること以外は、実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
実施例２では、シグナル発生物質として５ＩＡＦではなくＯＧＩを用いること、及び反応停止剤として２−メルカプトエタノールではなく、Ｌ型システインを用いること以外は、実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
（比較例４〜６）
比較例４では、シグナル発生物質として、５ＩＡＦではなくＯＧＩを用いること、及び反応停止剤として２−メルカプトエタノールではなく、Ｌ型システインを用いること以外は、比較例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例５では、シグナル発生物質として、５ＩＡＦではなくＯＧＩを用いること以外は、比較例２と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例６では、シグナル発生物質として、５ＩＡＦではなくＯＧＩを用いること以外は、比較例３と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例４では、シグナル発生物質として、５ＩＡＦではなくＯＧＩを用いること、及び反応停止剤として２−メルカプトエタノールではなく、Ｌ型システインを用いること以外は、比較例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例５では、シグナル発生物質として、５ＩＡＦではなくＯＧＩを用いること以外は、比較例２と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例６では、シグナル発生物質として、５ＩＡＦではなくＯＧＩを用いること以外は、比較例３と同様にして蛍光強度の測定を行った。
（結果）
実施例２及び比較例４〜６のＰＶＤＦメンブレンの写真を図３に示す。また、実施例２及び比較例４〜６において測定された蛍光強度のグラフを図４に示す。
実施例２及び比較例４〜６のＰＶＤＦメンブレンの写真を図３に示す。また、実施例２及び比較例４〜６において測定された蛍光強度のグラフを図４に示す。
図３より、チオリン酸化基質（被検出物質）とＯＧＩ（シグナル発生物質）との複合体を固定化した後にブロッキング処理を行うと（実施例２及び比較例４）、ブロッキング処理を行わなかった場合（比較例５及び比較例６）に比べてバックグラウンドを低減することができた。また、図４より、ブロッキング処理を行うと、ブロッキング処理を行わなかった場合に比べてシグナル（実施例１からバックグラウンド値を差し引いた値）とバックグラウンド値との比（Ｓ／Ｎ比）が向上した。また、実施例２のグラフのみタンパク質濃度依存的に蛍光カウント値が上昇し、さらに良好な直線性を示した。以上より、実施例２の方法により正確にチオリン酸化されたヒストンＨ１を定量できたことが確認された。
酵素の活性は、５ＩＡＦ標識したタンパク質ではなくＯＧＩ標識したタンパク質を用いること以外は、上述と同様にして検量線を作成し、この検量線に実施例２で測定される蛍光カウント値をあてはめることによって算出することができる。
（実施例３）
実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
（比較例７〜９）
比較例７では、比較例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例８では、シグナル発生物質として、５ＩＡＦではなく、ストレプトアビジン−ＦＩＴＣ（ベクター社）を用いること、複合体をブロッティングした後にブロッキング剤をブロッティングするのではなく、ヒストンＨ１にヨードアセチルビオチンを結合させ、これをブロッティングした後、ブロッキング剤をブロッティングすること、ブロッキング剤のブロッティングの後にストレプトアビジン−ＦＩＴＣをブロッティングして基質の蛍光標識を行うこと以外は、実施例１と同様にしてＦＩＴＣ標識ヒストンＨ１の蛍光強度を測定した。
比較例９では、抗ＣＤＫ２抗体を用いないこと以外は比較例８と同様にして蛍光強度を測定した。
比較例７では、比較例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例８では、シグナル発生物質として、５ＩＡＦではなく、ストレプトアビジン−ＦＩＴＣ（ベクター社）を用いること、複合体をブロッティングした後にブロッキング剤をブロッティングするのではなく、ヒストンＨ１にヨードアセチルビオチンを結合させ、これをブロッティングした後、ブロッキング剤をブロッティングすること、ブロッキング剤のブロッティングの後にストレプトアビジン−ＦＩＴＣをブロッティングして基質の蛍光標識を行うこと以外は、実施例１と同様にしてＦＩＴＣ標識ヒストンＨ１の蛍光強度を測定した。
比較例９では、抗ＣＤＫ２抗体を用いないこと以外は比較例８と同様にして蛍光強度を測定した。
（結果）
実施例３で測定した蛍光カウント値から比較例７で測定した蛍光カウント値を差し引いた値を示すグラフ（Ａ）と、比較例８で測定した蛍光カウント値から比較例９で測定した蛍光カウント値を差し引いた値を示すグラフ（Ｂ）とを図５に示す。グラフ（Ａ）の及び値グラフ（Ｂ）の縦軸は、実施例３及び比較例８のシグナルの値を示しており、ＮｅｔＣＮＴで表した。
実施例３で測定した蛍光カウント値から比較例７で測定した蛍光カウント値を差し引いた値を示すグラフ（Ａ）と、比較例８で測定した蛍光カウント値から比較例９で測定した蛍光カウント値を差し引いた値を示すグラフ（Ｂ）とを図５に示す。グラフ（Ａ）の及び値グラフ（Ｂ）の縦軸は、実施例３及び比較例８のシグナルの値を示しており、ＮｅｔＣＮＴで表した。
図５より、グラフ（Ａ）及びグラフ（Ｂ）は、タンパク質濃度依存的に良好な直線性を示しているが、グラフ（Ｂ）よりもグラフ（Ａ）の方が、傾きが大きい。従って、酵素活性を測定する際の検量線を実施例３と同様の方法を用いて作成することにより、従来よりも大きな傾きを有する検量線を作成することができる。このような大きな傾きを有する検量線を用いると、測定値の分解能が向上する。即ち、本実施例の方法により作成された検量線に基づいて酵素活性を測定すると従来よりも正確に活性を算出することができる。
（実施例４）
１．５ｍｌエッペンドルフチューブに免疫沈降用緩衝液を５００μｌ収容するのではなく、１５０μｌ収容すること、チューブ内のタンパク質濃度が２５、５０，７５及び１００μｇ／５００μｌではなく、１０μｇ／１５０μｌ及び２５μｇ／１５０μｌとなるように調節して測定用試料をチューブに添加すること及び抗ＣＤＫ２抗体２μｇをコートしたセファロースビーズではなく、抗ＣＤＫ１抗体（サンタクルズ社）４μｇをコートしたセファロースビーズを用いること以外は、実施例１と同様にして蛍光強度を測定した。
１．５ｍｌエッペンドルフチューブに免疫沈降用緩衝液を５００μｌ収容するのではなく、１５０μｌ収容すること、チューブ内のタンパク質濃度が２５、５０，７５及び１００μｇ／５００μｌではなく、１０μｇ／１５０μｌ及び２５μｇ／１５０μｌとなるように調節して測定用試料をチューブに添加すること及び抗ＣＤＫ２抗体２μｇをコートしたセファロースビーズではなく、抗ＣＤＫ１抗体（サンタクルズ社）４μｇをコートしたセファロースビーズを用いること以外は、実施例１と同様にして蛍光強度を測定した。
（比較例１０〜１２）
比較例１０では、抗ＣＤＫ１抗体を用いないこと以外は実施例４と同様にして蛍光強度を測定した。
比較例１１では、シグナル発生物質として、５ＩＡＦではなく、ストレプトアビジン−ＦＩＴＣ（ベクター社）を用いること、標識ヒストンＨ１をブロッティングした後にブロッキング剤をブロッティングするのではなく、ヒストンＨ１にヨードアセチルビオチンを結合させ、これをブロッティングした後、ブロッキング剤をブロッティングすること、ブロッキング剤のブロッティングの後にストレプトアビジン−ＦＩＴＣをブロッティングして基質の蛍光標識を行うこと以外は、実施例４と同様にしてＦＩＴＣ標識ヒストンＨ１の蛍光強度を測定した。
比較例１２では、抗ＣＤＫ１抗体を用いないこと以外は比較例１１と同様にして蛍光強度を測定した。
比較例１０では、抗ＣＤＫ１抗体を用いないこと以外は実施例４と同様にして蛍光強度を測定した。
比較例１１では、シグナル発生物質として、５ＩＡＦではなく、ストレプトアビジン−ＦＩＴＣ（ベクター社）を用いること、標識ヒストンＨ１をブロッティングした後にブロッキング剤をブロッティングするのではなく、ヒストンＨ１にヨードアセチルビオチンを結合させ、これをブロッティングした後、ブロッキング剤をブロッティングすること、ブロッキング剤のブロッティングの後にストレプトアビジン−ＦＩＴＣをブロッティングして基質の蛍光標識を行うこと以外は、実施例４と同様にしてＦＩＴＣ標識ヒストンＨ１の蛍光強度を測定した。
比較例１２では、抗ＣＤＫ１抗体を用いないこと以外は比較例１１と同様にして蛍光強度を測定した。
（結果）
実施例４で測定した蛍光カウント値から比較例１０で測定した蛍光カウント値を差し引いた値を示すグラフ（Ｃ）と、比較例１１で測定した蛍光カウント値から比較例１２で測定した蛍光カウント値を差し引いた値を示すグラフ（Ｄ）とを図６に示す。グラフ（Ｃ）及びグラフ（Ｄ）の縦軸は、実施例４及び比較例１１のシグナルの値であり、ＮｅｔＣＮＴで表した。
実施例４で測定した蛍光カウント値から比較例１０で測定した蛍光カウント値を差し引いた値を示すグラフ（Ｃ）と、比較例１１で測定した蛍光カウント値から比較例１２で測定した蛍光カウント値を差し引いた値を示すグラフ（Ｄ）とを図６に示す。グラフ（Ｃ）及びグラフ（Ｄ）の縦軸は、実施例４及び比較例１１のシグナルの値であり、ＮｅｔＣＮＴで表した。
図６より、グラフ（Ｃ）及びグラフ（Ｄ）は、タンパク質濃度依存的に良好な直線性を示しているが、グラフ（Ｄ）よりもグラフ（Ｃ）の方が、傾きが大きい。従って酵素活性を測定する際の検量線を実施例３と同様の方法を用いて作成することにより、従来よりも大きな傾きを有する検量線を作成することができる。このような大きな傾きを有する検量線を用いると、測定値の分解能が向上する。即ち、本実施例の方法により作成された検量線に基づいて酵素活性を測定すると従来よりも正確に活性を算出することができる。
（実施例５）
１．５ｍｌエッペンドルフチューブに免疫沈降用緩衝液を５００μｌ収容するのではなく、１０００μｌ収容すること、チューブ内の全タンパク質の濃度が２５，５０，７５及び１００μｇ／５００μｌではなく、２５，５０，及び７５μｇ／１０００μｌとなるように調節して測定用試料をチューブに添加すること、及び４ｗ／ｖ％のＢＳＡではなく、１ｗ／ｖ％のカゼインを含むブロッキング溶液を用いること以外は、実施例１と同様にして蛍光強度を測定した。
１．５ｍｌエッペンドルフチューブに免疫沈降用緩衝液を５００μｌ収容するのではなく、１０００μｌ収容すること、チューブ内の全タンパク質の濃度が２５，５０，７５及び１００μｇ／５００μｌではなく、２５，５０，及び７５μｇ／１０００μｌとなるように調節して測定用試料をチューブに添加すること、及び４ｗ／ｖ％のＢＳＡではなく、１ｗ／ｖ％のカゼインを含むブロッキング溶液を用いること以外は、実施例１と同様にして蛍光強度を測定した。
（比較例１３）
比較例１３では、抗ＣＤＫ２抗体がコートされていないセファロースビーズを用いること以外は実施例５と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例１３では、抗ＣＤＫ２抗体がコートされていないセファロースビーズを用いること以外は実施例５と同様にして蛍光強度の測定を行った。
（結果）
実施例５及び比較例１３において測定された蛍光強度のグラフを図７に示す。
実施例５及び比較例１３において測定された蛍光強度のグラフを図７に示す。
図７より、実施例５のグラフはタンパク質濃度依存的に蛍光カウント値が上昇し、さらに良好な直線性を示した。従って、ブロッキング剤としてＢＳＡだけでなく、カゼインを用いることができることが確認された。
（実施例６）
１０μｇのヒストンＨ１を含む基質溶液ではなく、１０μｇのＲｂを用いること、チューブ内の全タンパク質の濃度が２５，５０，７５及び１００μｇ／５００μｌではなく、３７．５及び７５μｇ／５００μｌとなるように調節して測定用試料をチューブに添加すること以外は、実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
１０μｇのヒストンＨ１を含む基質溶液ではなく、１０μｇのＲｂを用いること、チューブ内の全タンパク質の濃度が２５，５０，７５及び１００μｇ／５００μｌではなく、３７．５及び７５μｇ／５００μｌとなるように調節して測定用試料をチューブに添加すること以外は、実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
（比較例１４）
比較例１４では、抗ＣＤＫ２抗体がコートされていないセファロースビーズを用いること以外は実施例６と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例１４では、抗ＣＤＫ２抗体がコートされていないセファロースビーズを用いること以外は実施例６と同様にして蛍光強度の測定を行った。
（結果）
実施例６及び比較例１４において測定された蛍光強度のグラフを図８に示す。
実施例６及び比較例１４において測定された蛍光強度のグラフを図８に示す。
図８より、実施例６のグラフはタンパク質濃度依存的に蛍光カウント値が上昇し、さらに良好な直線性を示した。従って、基質としてヒストンＨ１だけでなく、Ｒｂを用いることができることが確認された。
（実施例７）
反応停止剤として２−メルカプトエタノールではなく、Ｌ型システインを用いること以外は実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
反応停止剤として２−メルカプトエタノールではなく、Ｌ型システインを用いること以外は実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
（比較例１５〜１７）
比較例１５〜１７では、反応停止剤として２−メルカプトエタノールではなく、Ｌ型システインを用いること以外は、それぞれ比較例１〜３と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例１５〜１７では、反応停止剤として２−メルカプトエタノールではなく、Ｌ型システインを用いること以外は、それぞれ比較例１〜３と同様にして蛍光強度の測定を行った。
（結果）
実施例７及び比較例１５〜１７のＰＶＤＦメンブレンの写真を図９に示す。また、実施例７及び比較例１５〜１７において測定された蛍光強度のグラフを図１０に示す。なお、蛍光強度は、蛍光カウント値（ＣＮＴ）として表した。
実施例７及び比較例１５〜１７のＰＶＤＦメンブレンの写真を図９に示す。また、実施例７及び比較例１５〜１７において測定された蛍光強度のグラフを図１０に示す。なお、蛍光強度は、蛍光カウント値（ＣＮＴ）として表した。
図９及び図１０より、実施例７では反応停止剤としてＬ型システインを用いているが、実施例１と同様に正確にヒストンＨ１を定量できたことが確認された。
酵素の活性は、上述と同様にして検量線を作成し、この検量線に実施例７で測定される蛍光カウント値をあてはめることによって算出することができる。
（実施例８）
実施例８では、反応停止剤としてＬ型システインではなく、２−アミノエタンチオールを用いること以外は、実施例２と同様にして蛍光強度の測定を行った。
実施例８では、反応停止剤としてＬ型システインではなく、２−アミノエタンチオールを用いること以外は、実施例２と同様にして蛍光強度の測定を行った。
（比較例１８〜２０）
比較例１８〜２０では、反応停止剤としてＬ型システインではなく、２−アミノエタンチオールを用いること以外は、それぞれ比較例４〜６と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例１８〜２０では、反応停止剤としてＬ型システインではなく、２−アミノエタンチオールを用いること以外は、それぞれ比較例４〜６と同様にして蛍光強度の測定を行った。
（結果）
実施例８及び比較例１８〜２０のＰＶＤＦメンブレンの写真を図１１に示す。また、実施例８及び比較例１８〜２０において測定された蛍光強度のグラフを図１２に示す。
実施例８及び比較例１８〜２０のＰＶＤＦメンブレンの写真を図１１に示す。また、実施例８及び比較例１８〜２０において測定された蛍光強度のグラフを図１２に示す。
図９及び図１０より、実施例８では反応停止剤として２−アミノエタンチオールを用いているが、実施例２と同様に正確にヒストンＨ１を定量できたことが確認された。
酵素の活性は、上述と同様にして検量線を作成し、この検量線に実施例２で測定される蛍光カウント値をあてはめることによって算出することができる。
（実施例９及び１０）
実施例９では、反応停止剤として２−メルカプトエタノールではなく、アセチルシステインを用いること以外は、実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
実施例１０では、実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
実施例９では、反応停止剤として２−メルカプトエタノールではなく、アセチルシステインを用いること以外は、実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
実施例１０では、実施例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
（比較例２１及び２２）
比較例２１では、反応停止剤として２−メルカプトエタノールではなく、アセチルシステインを用いること以外は、比較例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例２２では、比較例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例２１では、反応停止剤として２−メルカプトエタノールではなく、アセチルシステインを用いること以外は、比較例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
比較例２２では、比較例１と同様にして蛍光強度の測定を行った。
（結果）
実施例９、１０、比較例２１及び比較例２２において測定された蛍光強度のグラフを図１３に示す。
図１３より、反応停止剤としてアセチルシステインを用いた実施例９のグラフは、実施例１０と同様にタンパク質濃度依存的に蛍光カウント値が上昇し、さらに良好な直線性を示した。従って、反応停止剤として、アセチルシステインを用いることができることが確認された。
実施例９、１０、比較例２１及び比較例２２において測定された蛍光強度のグラフを図１３に示す。
図１３より、反応停止剤としてアセチルシステインを用いた実施例９のグラフは、実施例１０と同様にタンパク質濃度依存的に蛍光カウント値が上昇し、さらに良好な直線性を示した。従って、反応停止剤として、アセチルシステインを用いることができることが確認された。
Claims (19)
- シグナル発生物質を用いて試料中の被検出物質を検出する方法であって、
前記シグナル発生物質と前記被検出物質との複合体が固定化された固相担体を調製する工程、
前記固相担体にさらにブロッキング剤を固定化する工程、及び
前記固相担体に固定化した複合体のシグナル発生物質から発するシグナルを検出することにより、前記被検出物質を検出する工程、
を含む被検出物質の検出方法。 - 前記ブロッキング剤を固定化する前に、前記シグナル発生物質と前記被検出物質とを結合させることにより前記複合体を形成させ、この複合体を固相担体に固定化する、請求項１記載の方法。
- 前記被検出物質がタンパク質である請求項１又は２記載の方法。
- 前記シグナル発生物質が、蛍光物質を有する請求項１〜３の何れかに記載の方法。
- 前記蛍光物質が、フルオレセインイソチオシアネート、フルオレセイン、オレゴングリーン、クマリン、エオシン、フェナントロリン、ピレン及びローダミンからなる群より選択される少なくとも１つである請求項４記載の方法。
- 前記ブロッキング剤が、アルブミン、カゼイン、グロブリン及びゼラチンからなる群より選択される少なくとも一つを含む請求項１〜５の何れかに記載の方法。
- 前記固相担体が、ポリビニリデンフロライド、ニトロセルロース、セルロースアセテート及びナイロンからなる群より選択される少なくとも１つの材質により構成されている請求項１〜６の何れかに記載の方法。
- 前記複合体を固相担体に固定化する前に、前記被検出物質と前記シグナル発生物質との結合反応を停止させる、請求項２記載の方法。
- 前記停止工程において、チオール基を有する還元剤を用いて前記結合反応を停止させる請求項８記載の方法。
- 前記チオール基を有する還元剤が、２−メルカプトエタノール、Ｄ型システイン、Ｌ型システイン、アセチルシステイン、２−メルカプトプロピオン酸、メルカプト酢酸、２−アミノエタンチオール、ジチオスレイトール、グルタチオン及びドデカンチオールからなる群より選択される少なくとも１つの反応停止剤を用いて前記結合反応を停止させる請求項９記載の方法。
- 前記検出工程において、前記シグナルを定量することにより、前記被検出物質を定量する請求項１〜１０記載の何れかに記載の方法。
- 前記被検出物質が、所定の酵素と前記酵素に対応する基質との酵素反応によって生成した産物である請求項１〜１１の何れかに記載の方法。
- 請求項１２に記載の方法によって検出された前記被検出物質の検出結果に基づいて、前記酵素の活性を測定する酵素活性の測定方法。
- 前記酵素が、キナーゼである請求項１３記載の方法。
- 前記基質がヒストンＨ１及び網膜芽細胞腫タンパク質（Ｒｂ）からなる群より選択される少なくとも１つのタンパク質である請求項１３又は１４記載の方法。
- 前記Ｒｂのシステイン残基が硫黄原子を有さないアミノ酸に置換されている請求項１５記載の方法。
- 前記酵素反応が、アデノシン５’−Ｏ−（３−チオトリホスフェート）を用いて前記基質にチオリン酸基を導入する反応である請求項１３〜１６の何れかに記載の方法。
- 前記シグナル発生物質が、前記基質に導入されたチオリン酸基に結合する請求項１７記載の方法。
- 前記酵素の活性値が、予め作成された検量線を用いて算出される請求項１３〜１８の何れかに記載の方法。
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