JP4809347B2 - ポリペプチド製造用シグナルペプチド - Google Patents
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Description
本発明は、ポリペプチドに対して外来であるシグナルペプチドを使用するポリペプチドを製造する方法、前記シグナルペプチドおよびポリペプチドをコードする第1および第2 ヌクレオチド配列を含んでなる核酸構築物、および前記ヌクレオチド配列を含んでなる発現ベクターおよび宿主細胞に関する。
真菌宿主細胞、特に糸状真菌細胞、例えば、アスペルギルス (Aspergillus) または酵母細胞、例えば、サッカロマイセス (Saccharomyces) における異種タンパク質の組換え産生は、商業的に関係する品質でタンパク質を産生するいっそう望ましいベヒクルを提供することができる。
本発明の目的は、シグナルペプチド配列を使用して真菌宿主細胞中でポリペプチドを産生する改良された方法を提供することである。
本発明は、下記の段階を含んでなる、分泌されたポリペプチドを製造する方法を提供する:
(a) ポリペプチドの産生を促す培地中で真菌宿主細胞を培養し、ここで宿主細胞はポリペプチドをコードする第2 ヌクレオチド配列に作用可能に連結されたシグナルペプチドをコードする第1ヌクレオチド配列を含んでなる核酸構築物を含んでなり、そして第1ヌクレオチド配列は第2 ヌクレオチド配列に対して外来であり、第1ヌクレオチド配列の3’末端は第2 ヌクレオチド配列から直ぐ上流に存在し、そして第1ヌクレオチド配列は下記から成る群から選択され:
(i) 配列番号1に対して少なくとも70%の同一性を有するアミノ酸配列を有するシグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列;
(ii) 配列番号2に対して少なくとも70%の同一性を有するヌクレオチド配列; および
(iii) ストリンジェント条件下に配列番号2のヌクレオチドまたはその相補的鎖とハイブリダイズするヌクレオチド配列、ここでストリンジェンシイ条件は0.9 M NaCl、0.09 M Tris-HCl、pH 7.6、6 mM EDTA、0.5% NP-40、1×デンハルト溶液、1 mM ピロリン酸ナトリウム、1 mM 一塩基性リン酸ナトリウム、0.1 mM ATPおよび0.2 mg 酵母RNA/ml中の計算したTmよりも5〜10℃低い温度におけるプレハイブリダイゼーション、ハイブリダイゼーションおよびハイブリダイゼーション後の洗浄、および計算したTmよりも5〜10℃低い温度において6×SSC + 0.1% SDSを使用する15分間の1回の洗浄および各回6×SSCを使用する15分間の2回の洗浄として定義される;
(b) 分泌されたポリペプチドを培地から単離する。
(i) 配列番号1に対して少なくとも70%の同一性を有するアミノ酸配列を有するシグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列;
(ii) 配列番号2に対して少なくとも70%の同一性を有するヌクレオチド配列; および
(iii)ストリンジェント条件下に配列番号2のヌクレオチドまたはその相補的鎖とハイブリダイズするヌクレオチド配列、ここでストリンジェンシイ条件は0.9 M NaCl、0.09 M Tris-HCl、pH 7.6、6 mM EDTA、0.5% NP-40、1×デンハルト溶液、1 mM ピロリン酸ナトリウム、1 mM 一塩基性リン酸ナトリウム、0.1 mM ATPおよび0.2 mg 酵母RNA/ml中の計算したTmよりも5〜10℃低い温度におけるプレハイブリダイゼーション、ハイブリダイゼーションおよびハイブリダイゼーション後の洗浄、および計算したTmよりも5〜10℃低い温度において6×SSC + 0.1% SDSを使用する15分間の1回の洗浄および各回6×SSCを使用する15分間の2回の洗浄として定義される。
定義
用語 「変異型」 は、他のポリペプチドまたはヌクレオチド配列を参照して使用するとき、本発明の関係において、他のポリペプチド (すなわち、それと比較してポリペプチド/ヌクレオチド配列の変異型である) に比較して1または2以上のアミノ酸またはヌクレオチドの置換、欠失および/または挿入を含んでなるポリペプチドまたはヌクレオチド配列として理解すべきである。特に、変化は小さい特質、例えば、保存的アミノ酸置換、またはヌクレオチド配列について、ポリペプチドの活性に有意に影響を与えない保存的アミノ酸置換; または小さい欠失、典型的には変化がなされるポリペプチドの大きさに依存して1〜20アミノ酸の欠失であることができる。
本発明は、下記の段階を含んでなる、分泌されたポリペプチドを製造する方法に関する: (a) ポリペプチドの産生を促す培地中で真菌宿主細胞を培養し、ここで宿主細胞はポリペプチドをコードする第2 ヌクレオチド配列に作用可能に連結されたシグナルペプチドをコードする第1ヌクレオチド配列を含んでなる核酸構築物を含んでなり、そして第1ヌクレオチド配列は第2 ヌクレオチド配列に対して外来であり、第1ヌクレオチド配列の3’末端は第2 ヌクレオチド配列から直ぐ上流に存在し、そして第1ヌクレオチド配列は下記から成る群から選択され: (i) 配列番号1に対して少なくとも70%の同一性を有するアミノ酸配列を有するシグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列; (ii) 配列番号2に対して少なくとも70%の同一性を有するヌクレオチド配列; および (iii) ストリンジェント条件下に配列番号2のヌクレオチドまたはその相補的鎖とハイブリダイゼーションするヌクレオチド配列、ここでストリンジェンシイ条件は0.9 M NaCl、0.09 M Tris-HCl、pH 7.6、6 mM EDTA、0.5% NP-40、1×デンハルト溶液、1 mM ピロリン酸ナトリウム、1 mM 一塩基性リン酸ナトリウム、0.1 mM ATPおよび0.2 mg 酵母RNA/ml中の計算したTmよりも5〜10℃低い温度におけるプレハイブリダイゼーション、ハイブリダイゼーションおよびハイブリダイゼーション後の洗浄、および計算したTmよりも5〜10℃低い温度において6×SSC + 0.1% SDSを使用する15分間の1回の洗浄および各回6×SSCを使用する15分間の2回の洗浄として定義される; そして (b) 分泌されたポリペプチドを培地から単離する。
本発明の第1ヌクレオチド配列は本発明のシグナルペプチドをコードする。用語 「シグナルペプチド」 または 「シグナルペプチド配列」 は、細胞膜 (原核生物において原形質膜および真核生物において小胞体膜) を横切ってまたはその中にポリペプチドを向ける、新しく合成された分泌または膜ポリペプチドのN-末端に通常存在するペプチド配列として本明細書において定義される。通常、それは引き続いて除去される。特に、前記シグナルペプチドはポリペプチドを細胞の分泌経路中に向けることができる。
第4の面において、第1ヌクレオチド配列は1または2以上のアミノ酸の置換、欠失、および/または挿入を含んでなる配列番号1のアミノ酸配列を有するシグナルペプチドの変異型をコードすることができる。
本発明の第2 ヌクレオチド配列は、本発明のコード化ポリペプチドをコードする。前記ポリペプチドはそれが産生される真菌宿主細胞に対して自然であるか、あるいは異種であることができる。
本発明は、また、本発明のポリペプチドをコードする第2 ヌクレオチド配列に作用可能に連結された本発明の第1ヌクレオチド配列のシグナルペプチドを含んでなる核酸構築物に関する。
糸状真菌宿主細胞に適当なリーダーは、アスペルギルス・オリゼ (Aspergillus oryzae) TAKAアミラーゼおよびアスペルギルス・ニヅランス (Aspergillus nidulans) トリオースリン酸イソメラーゼの遺伝子から得られるものを包含するが、これらに限定されない。
酵母宿主細胞に有効なポリアデニル化配列は下記の文献に記載されている: GuoおよびSherman、1995、Molecular Cellular Biology 15: 5983-5990。
本発明は、また、本発明のヌクレオチド構築物を含んでなる組換え発現ベクターに関する。本発明のそれぞれシグナルペプチドおよびポリペプチドをコードする第1ヌクレオチド配列および第2 ヌクレオチド配列を含んでなるほかに、前記発現ベクターは特に転写停止シグナルおよび翻訳停止シグナルを含んでなることができる。前述の種々のヌクレオチド配列および制御配列を一緒に結合させて、1または2以上の好都合な制限部位を包含することができる組換え発現ベクターを製造し、このような部位におけるプロモーターおよび/またはポリペプチドをコードするヌクレオチド配列の挿入または置換を可能とすることができる。
本発明は、ポリペプチドを真菌宿主細胞中で製造する方法、および本発明の核酸構築物を含んでなる組換え宿主細胞に関する。
ポリペプチドをコードする第2 ヌクレオチド配列に作用可能に連結された本発明のシグナルペプチドをコードする第1ヌクレオチド配列を含んでなるベクターが、前述したように染色体組込み体としてまたは自己複製性染色体外ベクターとして維持されるように、前記ベクターを真菌宿主細胞の中に導入する。用語 「宿主細胞」 は、複製間に起こる突然変異のために親細胞と同一ではない親細胞の子孫を包含する。宿主細胞の選択は、大きい程度にポリペプチドをコードする遺伝子およびその源に依存するであろう。
株およびプラスミド
株
大腸菌 (E. coli) DH12S (Gibco BRL から入手可能である) を酵母プラスミドレスキュウーのために使用する。
サッカロマイセス・セレビシエ (Saccharomyces cerevisiae) YNG318: MATa Dpep4[cir+] ura3-52、key2-d2、his 4-539は下記の文献に記載されている: J. Biol. Chem. 272 (15) 、9720-9727、1997。
すべての発現ベクターは、WO 01/10038に記載されているpJC039から構築された、TPIプロモーターの制御下のサッカロマイセス・セレビシエ (S. cerevisiae) および大腸菌 (E. coli) シャトルベクターである。
ダーマトファゴイデス・プテロニッシヌス (Dermatophagoides pteronyssinus) NCBI受け入れ番号: P08176からのDer p 1、アミノ酸配列は配列番号3に示されている。
トリフォリウム・レペンス (Trifolium repens) (シロクロー バー) からのシステインプロテアーゼ遺伝子は、EMBL: AY192363として受託された配列である。
α-因子 (酵母交配に必要なフェロモン) 遺伝子は、インビトロゲン (Invitrogen) から商業的に入手可能であるpPICZαAベクター中の配列である。
ペニオホラ・リシイ (Peniophora lycii) 株CBS 686.96からのフィターゼ遺伝子は、EMBL: PLY310696として受託され、それに対するcDNA配列が配列番号8に示されている配列である。
ムコル・シシネリデス (Mucor cicinellides) からのセルラーゼの発現のため
cDNAクローニングのため:
MCE-BC1 F (44マー)
5’-CAACTGGTGATCACCACCATGAAGTTCACCGTTGCTATTACTTC-3’
MCE-Nru R (39マー):
5’-TCTCGAGCTCGCGATTACTTTCTTTCGCAACCTGAGCGAG-3’
酵母ベクター構築のため:
M61 F (50マー):
5’-CCAGCTTCCGCAAACAAAGTCGCCAACATGAAGTTCACCGTTGCTATTAC-3’
M61Cutisig f (50マー):
5’-CGCCAGCCTTGTTGCTGCTCTCCCCGCCGCTTCTTGCAGCTCTGTCTATG-3’
C-term R61 R (49マー):
5’-TAATTACATGATGCGGCCCTCTAGATTACTTTCTTTCGCAACCTGAGCG-3’
α-シグナル-MunI (49マー):
5’-ATAAACGACGGGACCCGGGGATCCAATTGATGAGATTCCCATCAATTTT-3’
α-シグナル-CysPro R (42マー):
5’-GCCCACGATGGAGAAATCGCGAGCTTCAGCTTCTCTTTTCTC-3’
α-シグナル-CysPro F (42マー):
5’-GAAAAAAGAGAAGCTGAAGCTCGCGATTTCTCCATCGTGGGC-3’
Spe-CysPro R (50マー):
5’-ACTAATTACATGATGCGGCCCACTAGTTCATTTCTTCTTAGTAGGATAAG-3’
Cuti-Sig-CysPro (50マー):
5’-GCACCGCCAGCCTTGTTGCTGCTCTCCCCCGCGATTTCTCCATCGTGGGC-3’
CysPro C-term (50マー):
5’-TAATTACATGATGCGGCCCGCGGCCGCTCATTTCTTCTTAGTAGGATAAG-3’
酵母-F (43マー):
5’-ACGACGGTACCCGGGGATCAAGCTTATGGTCAAGTTCGCTTCC-3’
酵母-R (43マー):
5’-AACTAATTACATGATGCGGCCCTCTAGATTAAGCATAGGTGTC-3’
cuti-pre (45マー):
5’-CGTTCCTGAACTTGTTGCCCGGGTTGGTGGCACTTCTGCCAGCGC-3’
TP2-Kex F (32マー):
5’-GTTCCTGAACTTGTTCGGCGGGTTGGTGGCAC-3’
TP2-Kex R (32マー):
5’-GTGCCACCAACCCGCCGAACAAGTTCAGGAAC-3’
Cuti-pre F (29マー):
5’-GTTGCTGCTCTCCCCGTTGGTGGCACTTC-3’
Cuti-pre R (29マー):
5’-GAAGTGCCACCAACGGGGAGAGCAGCAAC-3’
CUTIpre-TPpro F (42マー):
5’-TCCTCAGGAGATCCCCAACATTGTTGGTGGCACTTCTGCCAG-3’
CUTIpre-TPpro R (40マー):
5’-GTTGGGGATCTCCTGAGGAGCGGGGAGAGCAGCAACAAGG-3’
PP 1F (50マー):
5’-AAACGACGGTACCCGGGGATCAAGCTTATGGTTTCTTCGGCATTCGCACC-3’
PP R (50マー):
5’-ACTAATTACATGATGCGGCCCTCTAGACTATTCCGACGGAACAAAGCCGC-3’
PP 2F (50マー):
5’-CCGCCAGCCTTGTTGCTGCTCTCCCCCAGCTACCTATCCCCGCACAAAAC-3’
RS-25: 40 g/l 大豆粉末、40 g/l グルコース、10 g/l KH2PO4、0.25 g/l MgSO4、0.01 g/l FeSO4、2.5 g/l NH4NO3; pH 6。
YPD: 20 g/l グルコース、20 g/l ペプトンおよび10 g/l 酵母エキス。
10×基本溶液: 66.8 g/l 酵母窒素塩基w/oアミノ酸 (DIFCO) 、100 g/l スクシネートおよび60 g/l NaOH。
PEG/LiAc溶液: 50 ml 40% PEG 4000 (オートクレーブ処理により滅菌した) および1 ml 5M 酢酸リチウム (オートクレーブ処理により滅菌した) 。
酵母の形質転換
この方法を実施例2〜5において使用した。
酵母を形質転換するために、in vivo組換え機構を利用し、これにより酵母はベクター配列およびPCRフラグメントをin vivo組換えして発現ベクターをつくることができ、ここでベクター配列およびPCRフラグメントの両方は同一フランキング領域を有する。
0.5μlのベクター (EcoRI-NotI消化した) および1μlのPCRフラグメントを混合することによって、DNA混合物を調製した。サッカロマイセス・セレビシエ (S. cerevisiae) YNG318コンピテント細胞を氷上で融解した。
特記しない限り、PCR反応は下記の条件下に実施した:
PCR反応は38.9μlのH2O、5μlの10×反応緩衝液、1μlのKlen Taq LA (Clontech) 、4μlの10 mM 各dNTP、0.3μlの2×200 pmol/μlのプライマーおよび0.5μlのテンプレートDNAを含有し、下記の条件下に実施した: 30サイクルの98℃における10秒および68℃における90秒、および最後に68℃における10分。
イムノプレート (Nunc Mxisorb; Nunc-Nalgene) を、4℃において適当な投与量のポリクローナルウサギ抗Der p 1抗体で一夜被覆した。次いで0.05% Tween 20 (PBST) を含有する0.15 M リン酸塩緩衝液 (PBS) でプレートを十分に洗浄し、残りの部位をPBSおよび2%のスキムミルク粉末で室温において1時間ブロックした。試料は精製することができ、半精製した組換えグループ1ダニポリペプチド変異型アレルゲンまたは問題のタンパク質を含有する粗製ブロスを適当な投与量または投与量範囲で添加した。次いでプレートを0.15 M PBSTで十分に洗浄した後、室温においてビオチニル化モノクローナル抗Der p 1抗体 (INDOOR) と1時間インキュベートすることによって、アレルゲンを検出した。
酵母プラスミドをレスキュウーする大腸菌 (E. coli) の形質転換は、エレクトロポレーション (Bio-Rad Gene Pulser) により実施した。
Qiagen(商標) プラスミドキットを使用して、DNAプラスミドを調製した。Qiagenゲル抽出キットにより、DNAフラグメントをアガロースゲルから回収した。
PTC-200 DNAエンジンにより、PCRを実施した。
すべてのDNA配列の決定に、ABI PRISMTM 310 遺伝学的アナライザーを使用した。
下記の文献に記載されているRobzykおよびKassirの方法により、酵母全DNAを抽出した: Nucleic Acids Research Vol. 20、No. 14 (1992) 3790。
システインプロテアーゼアッセイ
96ウェルのマイクロタイタープレートのアッセイ:
下記の成分を各ウェルに添加した: 10μlの0.5 M 酢酸ナトリウム緩衝液 (pH 5) 、10μlのM NaCl (700μlのメルカプトエタノール/100 mlを含んでなる) 、45μlのD. W. (蒸留水) および10μlの酵素試料。次いでプレートを室温において5〜10分間インキュベート (ペプチダーゼの成熟のため) した後、25μlの40μM Z-Phe-Arg-MCA (0.1% DMSO) を添加した。最後に、460 nmにおけるMCA (4-メチル-クマリル-7-アミド) の発光をフルオロメーターにより測定した。
基質:
50 gのNα-ベンゾイル-DL-アルギニン-p-ニトロアニリド (BAPNA、Sigma B-4875) を1 mlのDMSO中に溶解し、-20℃に保持した。この溶液をアッセイにおいて使用直前に100×に希釈した。
アッセイ緩衝液:
50 mM ホウ酸塩-NaOH (pH 10.5) + 2 mM CaCl2
方法:
20μlの試料および200μMのアッセイ緩衝液を96ウェルのマイクロタイタートレー中で混合し、δOD/分を405 nmにおいて5分間測定した。
10μlの希釈した酵素試料 (0.1 M 酢酸ナトリウム、0.01% Tween 20、pH 5.5中で希釈した) を0.1 M 酢酸ナトリウム、0.01% Tween 20、pH 5.5中の250μlの5 mM フィチン酸ナトリウム (Sigma) (pHはフィチン酸ナトリウムの溶解後に調節した; 基質を予熱した) 中に添加し、37℃において30分間インキュベートした。250μlの10% TCAの添加により反応を停止させ、100 mlのモリブデート試薬 (8 mlのH2SO4中の2.5 gの (NH4)6Mo7O24・4H2O、250 mlに希釈した) 中の500μlの7.3 g FeSO4の添加により、遊離リン酸塩を測定した。96ウェルのマイクロタイタープレート中で200μlの試料について、760 nmにおける吸収を測定した。基質および酵素のブランクを含めた。また、リン酸塩の標準曲線を含めた (0〜2 mM リン酸塩) 。1 Uは所定の条件下に1μMのリン酸塩/分を放出する酵素の量に等しい。
ダーマトファゴイデス・プテロニッシヌス (Dermatophagoides pteronyssinus) からのDer p 1システインプロテアーゼ (配列番号3に示すアミノ酸配列) をコードする遺伝子は、酵母発現ベクターpYES 2.0に由来するベクターpSteD212中に位置した (Invtrogen、Kofod 他、1994、J. Biol. Chem. 269: 29182-29189およびChristgau 他、1994、Biochem. Mol. Biol. Int. 33: 917-925) 。
組換えDer p 1はDer p 1プロペプチドを使用して発現され、そして成熟配列内のN-グルコシル化モチーフのみを崩壊する突然変異S54NまたはN52Qを有した。
他の実験において、4.5リットルのpre-pro Der p 1 (N52Q) およびcuti-pro Der p 1 (S54N) の培養ブロスを4日間発酵させ、発酵間の各日に試料を採取し、Der p 1の量を前述のサンドイッチELISAにより測定して発現レベルを追跡した。cuti-pro Der p 1およびpre-pro Der p 1の発現収量間の比を下に示す。
RS-25 + 0.5%ラッカーゼ培地を含有する震蘯フラスコ中で、ムコル・シシネリデ(Mucor cicinellides) IFO4554を30℃において1日間培養した。菌糸体を収集し、mRNAの調製に使用し、これを引き続いてcDNAに逆転写した。MCE-BC1 FおよびMCE-Nru Rプライマー対および下記のPCR条件を使用することによって、cDNAからのPCRにより、ほぼ1 kbのフラグメントを増幅した: 94℃において2分; 35サイクルの94℃において1分、45℃において1,分および72℃において2.5分; および最後に、72℃において8分。増幅されたフラグメントをT-ベクター (Novagene) 中にクローニングした。
生ずるPCRフラグメントを、それぞれHindIIIおよびXbaI、およびPvuIIおよびXbaIで消化したpJC039と一緒にサッカロマイセス・セレビシエ (S. cerevisiae) YNG318中に導入することによって、酵母を形質転換した。
α-因子からのシグナルペプチドおよびトリフォリウム・レペンス (Trifolium repens) Lからのシステインプロテアーゼを含んでなる発現ベクターを構築するために、プライマー対、α-シグナル-MunIおよびα-シグナル-CysProRを使用して、α-因子シグナルペプチドをコードするDNAフラグメントを再増幅した。テンプレートとしてEMBL:AY192363配列を使用して、プライマー対、α-シグナル-CysPro FおよびSpe-Cys ProRで、トリフォリウム・レペンス (Trifolium repens) Lからのシステインプロテアーゼのpro-成熟領域をコードする遺伝子を再増幅した。これらの2つのPCRフラグメントをHindIIIおよびXbaIで消化したpJC039と一緒に混合することによって、酵母を形質転換し、サッカロマイセス・セレビシエ (S. cerevisiae) YNG318の中に導入した。
テンプレートとしてEMBL: S63827配列、すなわち、配列番号6に示すcDNA配列を使用して、プライマー対、酵母-Fおよび酵母-R、およびcuti-preおよび酵母-Fで、フザリウム (Fusarium) からのトリプシン遺伝子を再増幅した。
pTM-TP1: フザリウム (Fusarium) トリプシンシグナル + フザリウム (Fusarium) トリプシンPro + 成熟トリプシン
pTM-TP2: フミコラ・インソレンス (H. insolens) クチナーゼシグナル + フミコラ・インソレンス (H. insolens) クチナーゼPro + 成熟トリプシン
pTM-TP2-Kex: フミコラ・インソレンス (H. insolens) クチナーゼシグナルペプチド + フミコラ・インソレンス (H. insolens) クチナーゼpro-領域 + KexII部位 + 成熟フザリウム (Fusarium) トリプシン
pTM-TP2w/o pro: フミコラ・インソレンス (H. insolens) クチナーゼシグナルペプチド + 成熟フザリウム (Fusarium) トリプシン
pTM-TP2 TPpro: フミコラ・インソレンス (H. insolens) クチナーゼシグナルペプチド + フザリウム (Fusarium) トリプシンpro-領域 + フザリウム (Fusarium) 成熟トリプシン
YPD培地を含有する24ウェルプレート中で、得られた形質転換体を30℃、180 rpmにおいて3日間培養した。
テンプレートとしてEMBL: PLY3106966配列、すなわち、配列番号8に示すcDNA配列を使用して、プライマー対 (PP1 FおよびPP R、およびPP2 FおよびPP R) で、ペニオホラ (Peniophora) フィターゼ遺伝子を増幅した。
pTMPP1構築物はペニオホラ (Peniophora) フィターゼからのシグナルペプチド配列を含んでなるが、pTMPP2構築物はフミコラ・インソレンス (H. insolens) クチナーゼシグナルペプチドを含んでいた。方法の節において前述したように、24ウェルプレートまたは震蘯フラスコ中で培養したpTMPP1またはpTMPP2構築物を含んでなる形質転換体の培養上清中で、フィターゼ活性を測定した。結果を下に示す。
実施例5に記載するそれ自体のシグナルペプチドをもつフィターゼ遺伝子およびフミコラ・インソレンス (H. insolens) クチナーゼシグナルペプチドをもつフィターゼ遺伝子を含んでなる構築物を下記の文献に記載されているように使用して、アスペルギルス (Aspergillus) の発現ベクターを構築し、アスペルギルス (Aspergillus) の中に形質転換した: Lassen 他 (2001) Applied and Environmental Microbiology 67: 4701-4707。
Claims (18)
- 下記の段階:
(a)ポリペプチドの産生を促す培地中で真菌宿主細胞を培養し、ここで宿主細胞はポリペプチドをコードする第2ヌクレオチド配列に作用可能に連結されたシグナルペプチドをコードする第1ヌクレオチド配列を含んでなる核酸構築物を含んでなり、そして第1ヌクレオチド配列は第2ヌクレオチド配列に対して外来であり、第1ヌクレオチド配列の3'末端は第2ヌクレオチド配列から直ぐ上流に存在し、そして第1ヌクレオチド配列は下記から成る群から選択され:
(i)配列番号1に対して少なくとも90%の同一性を有するアミノ酸配列から成るシグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列;及び
(ii)配列番号2に対して少なくとも90%の同一性を有するヌクレオチド配列;
(b)分泌されたポリペプチドを培地から単離する;
を含んでなる、分泌されたポリペプチドを製造する方法。 - 第1ヌクレオチド配列が配列番号1のアミノ酸配列から成るシグナルペプチドをコードする、請求項1に記載の方法。
- 第1ヌクレオチド配列が配列番号2から成る、請求項1に記載の方法。
- 第2ヌクレオチド配列が真菌宿主細胞に対して内在性であるポリペプチドをコードする、請求項1〜3のいずれか一項に記載の方法。
- 第2ヌクレオチド配列が真菌宿主細胞に対して外来性であるポリペプチドをコードする、請求項1〜3のいずれかに記載の方法。
- 真菌宿主細胞が第2ヌクレオチド配列の1または2以上のコピーを含有する、請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法。
- 第2ヌクレオチド配列が、ホルモンまたはホルモン変異型、酵素、レセプターまたはその一部分、抗体またはその一部分、アレルゲンまたはリポーターをコードする、請求項1〜6のいずれか一項に記載の方法。
- 酵素が、オキシドレダクターゼ、トランスフェラーゼ、ヒドロラーゼ、リアーゼ、イソメラーゼまたはリガーゼである、請求項7に記載の方法。
- 酵素が、アミノペプチダーゼ、アミラーゼ、カルボヒドラーゼ、カルボキシペプチダーゼ、カタラーゼ、セルラーゼ、セロビオヒドロラーゼ、キチナーゼ、クチナーゼ、シクロデキストリングリコシルトランスフェラーゼ、デオキシリボヌクレアーゼ、エンドグルカナーゼ、エステラーゼ、α-ガラクトシダーゼ、β-ガラクトシダーゼ、グルコアミラーゼ、α-グルコシダーゼ、β-グルコシダーゼ、インベルターゼ、ラッカーゼ、リパーゼ、マンノシダーゼ、ムタナーゼ、オキシダーゼ、ペクチン分解酵素、ペルオキシダーゼ、ホスホリパーゼ、フィターゼ、ポリフェノールオキシダーゼ、タンパク質分解酵素、リボヌクレアーゼ、トランスグルタミナーゼ、キシラナーゼまたはβ-キシラナーゼである、請求項8に記載の方法。
- 第2ヌクレオチド配列がアレルゲン、例えば、ダーマトファゴイデス・プテロニッシヌス (Dermatophagoides pteronyssinus) からのDer p 1、特に配列番号3のアミノ酸19〜320またはその変異型をコードする、請求項7に記載の方法。
- 真菌宿主細胞が、フィラメント状真菌宿主細胞、例えば、アスペルギルス (Aspergillus) 細胞、例えば、アスペルギルス・オリゼ (Aspergillus oryzae) である、請求項1〜10のいずれか一項に記載の方法。
- 真菌宿主細胞が、酵母細胞、例えば、サッカロマイセス (Saccharomyces) 細胞、例えば、サッカロマイセス・セレビシエ (S. cerevisiae) である、請求項1〜10のいずれかに記載の方法。
- ポリペプチドをコードする第2ヌクレオチド配列に作用可能に連結されたシグナルペプチドをコードする第1ヌクレオチド配列を含んでなる核酸構築物、ここで第1ヌクレオチド配列は第2ヌクレオチド配列に対して外来であり、そして第1ヌクレオチド配列の3'末端は第2ヌクレオチド配列から直ぐ上流に存在し、そして第1ヌクレオチド配列は下記から成る群から選択される:
(i)配列番号1に対して少なくとも90%の同一性を有するアミノ酸配列から成るシグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列;及び
(ii)配列番号2に対して少なくとも90%の同一性を有するヌクレオチド配列。 - 第1ヌクレオチド配列が配列番号1のアミノ酸配列から成るシグナルペプチドをコードする、請求項13に記載の核酸構築物。
- 第1ヌクレオチド配列が配列番号2から成る、請求項13に記載の核酸構築物。
- 請求項13〜15のいずれかに記載の核酸構築物を含んでなる組換え発現ベクター。
- 請求項13〜15のいずれかに記載の核酸構築物または請求項16に記載の発現ベクターを含んでなる組換え宿主細胞。
- ポリペプチドを製造するためのシグナルペプチドの使用、ここで前記シグナルペプチドは第1ヌクレオチド配列によりコードされ、前記ポリペプチドは第1ヌクレオチド配列に対して外来である第2ヌクレオチド配列により発現され、そして第1ヌクレオチド配列の3'末端は第2ヌクレオチド配列から直ぐ上流に存在し、そして第1ヌクレオチド配列は下記から成る群から選択される:
(i)配列番号1に対して少なくとも90%の同一性を有するアミノ酸配列から成るシグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列;及び
(ii)配列番号2に対して少なくとも90%の同一性を有するヌクレオチド配列。
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