JP4791043B2 - 同一固体支持体上で、２以上のオリゴヌクレオチドをタンデムに合成するための方法および組成物 - Google Patents

Description

発明の詳細な説明

発明の分野
本発明は、ヌクレオチド化学反応の分野に関する。より具体的には、本発明はオリゴヌクレオチド合成に関する。さらにより具体的には、本発明は、１回の合成実行における、同一固体支持体上での２以上の異なるオリゴヌクレオチドの連続合成に関する。

発明の背景
合成オリゴヌクレオチドに対する要求は、ＤＮＡ技術の進歩に刺激されて非常に増加し、最近、全ゲノム、特にヒトゲノムの配列決定および解読に進歩があったことによって、さらに増加してきている。分子生物学およびＤＮＡに基づく診断学に使用される、核酸を増幅し、検出し、解析し、そして定量化する方法の多くは、化学的に合成されたオリゴヌクレオチドに依存する。例えば、部位特異的突然変異誘発などの技術に用いられる、組換え宿主ベクター系において、化学的に合成されたオリゴヌクレオチドが使用される。核酸の温度周期酵素増幅においてオリゴヌクレオチドプライマーを使用するＰＣＲ法でもまた、これらが用いられる。プライマーはまた、酵素伸長およびランダム終結を特徴とする最新配列決定技術にも必要である。別の迅速に成長しつつある分野はハイブリダイゼーションアッセイにおけるオリゴヌクレオチドの適用であり、これは、相補配列を有する核酸解析物の領域に対する、オリゴヌクレオチドプローブの特異的アニーリングに基づく。この分野の最近の発展には、完全にマッチするハイブリダイゼーションの際、蛍光シグナルを生じる色素が共有結合的にコンジュゲート化されたプローブがある。アレル区別またはＳＮＰ検出などの、特定のゲノムエピトープに関して試験する対応法は、ハイブリダイゼーションプローブを使用し、そして容易に多重化可能である。したがって、ＤＮＡチップなど、ハイブリダイゼーションプローブの小型化アレイを用いて、非常に多数の解析物を同時にスクリーニングすることが可能な自動化高処理設定が、遺伝子型決定および発現プロファイリングのような適用に使用される。これらの方法および関連する方法は、とりわけ、薬剤開発および健康管理の領域に非常に大きな影響を有する可能性があるであろう。

オリゴヌクレオチド供給が迅速に増加することを要求する別の分野はアンチセンス技術である。合成アンチセンスオリゴヌクレオチドは、ＲＮＡまたはＤＮＡ標的配列に相補的であり、そして転写、翻訳またはスプライシングなどの生物学的事象を停止するよう設計されている。これらは、療法剤のまったく新しいクラスに相当し、ウイルスＤＮＡまたはタンパク質合成を阻害することによって抗ウイルス活性を示し、そしてさらに、ｍＲＮＡを特異的に認識し、そしてｍＲＮＡに結合することを介して、遺伝子発現を阻害することによって、特定の疾患を治療することも可能でありうる。アンチセンスオリゴヌクレオチドの最近の生成は、２’−ＯＭｅ−ＲＮＡ、ホスホロチオエート、モルホリノ核酸、ＬＮＡ、またはこれらの組み合わせなどの、主鎖修飾ＤＮＡまたはＲＮＡ誘導体で構成される。この方式では、相補的ｍＲＮＡの分解を遮断するかまたは促進するのに非常に重要な、ヌクレアーゼ耐性、ＲＮアーゼＨ感受性および結合親和性などの、アンチセンス化合物の特性を調節し、そして最適化することも可能である。

転写後の配列特異的遺伝子サイレンシングの別のプロセスは、現在、熱心に研究されている、ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）である。ＲＮＡｉは、２０〜２３塩基対を有する二本鎖ＲＮＡオリゴマーである小干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）によって細胞内部で開始される。ＲＮＡｉプロセスは、哺乳動物遺伝子の機能解析に利用されてきており、そしてまた、療法適用を可能にする可能性もある。

自動化オリゴヌクレオチド合成を行う現在の最新技術は、ホスホロアミダイト化学反応を用いた固相アプローチであり、これは、Ｃａｒｕｔｈｅｒｓら（例えばＭｃＢｒｉｄｅおよびＣａｒｕｔｈｅｒｓ（１９８３）Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔｅｒｓ ２４：２４５−２４８；Ｃａｒｕｔｈｅｒｓら、米国特許第４，４１５，７３２号および第４，４５８，０６６号を参照されたい）およびＳｉｎｈａら（（１９８３）Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔｅｒｓ ２４：５８４３−５８４６）の開発に基づき、そして水素−ホスホン酸化学反応などの関連法とともに、ＢｅａｕｃａｇｅおよびＩｙｅｒ（１９９２）Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ ４８：２２２３−２３１１に広範囲に概説されている。これらの参考文献は各々、完全に本明細書に特に援用される。

ホスホロアミダイトが仲介する化学的オリゴヌクレオチド合成の間、鎖伸長の方向に応じて、ＣＰＧまたはポリスチレン樹脂などの固相に連結された、成長する鎖の５’官能基または３’官能基のいずれかに、あらかじめ決定された順序で、一連のヌクレオチド・シントンを連続して付着させる。各シントンの付着は、一般的に、以下の工程を含む：１）成長する鎖の官能基、一般的には５’−ヒドロキシル基を脱保護し；２）ヌクレオシド・シントンおよび活性化因子を添加することによってカップリングし；３）不活性保護基を導入することによって、未反応末端官能基にキャッピングして、反応に失敗した配列へのさらなるカップリングを防止し；そして４）新たに形成されたヌクレオシド間リン結合を、天然に存在する五価状態に酸化する。ホスホロアミダイト化学反応を適用した、この合成スキームは、周期あたり、平均９９％までの、ルーチンの段階的カップリング効率を特徴とする、高レベルの最適化に到達している。望ましい配列のアセンブリが完了した後、最後にオリゴヌクレオチドを遊離させ、そして塩基性条件を使用して、通常一工程で、核酸塩基を脱保護する。

オリゴヌクレオチドに対する要求が迅速に増加しているのに対処するため、現在利用可能な合成法の改善が非常に望ましく、特に、１日あたり、および合成装置あたりに産生されるオリゴヌクレオチドの数を増加させることが望ましい。産生されるオリゴヌクレオチドの処理率を増進させる見込みがあるアプローチは、固体支持体の単一バッチ上での１回の合成実行で、１つではなく２以上のオリゴヌクレオチドを合成するのを可能にする方法である。この方式では、必要な支持体の量が減少し、そして取り扱い、プロセシングし、そして保存しなければならない試料の数が減少するため、オリゴヌクレオチドあたりの時間および費用が非常に減少する。この戦略は、１回の合成実行で産生されるオリゴヌクレオチドをすべて同時に、最終適用に添加することが可能であるか、または添加することが必要でさえある場合に、特に好ましい。これは、ＰＣＲまたは配列決定に用いられるようなプライマー対に、そして二本鎖ＤＮＡまたはＲＮＡプローブに、特に当てはまる。これらの組み合わせたオリゴヌクレオチド調製もまた、最終適用のために保存し、そして取り扱う試料の数の減少につながる。

現在まで、同一支持体上でオリゴヌクレオチドを組み合わせて合成する戦略を適用する先行技術の方法は、すべて、同一アンカー部分での連続アセンブリに基づく。したがって、オリゴヌクレオチドは切断可能なリンカーによって相互連結され、そしてしたがって、最終切断／脱保護工程で、すべて同時に遊離される。例えば、各々、完全に本明細書に特に援用される、Ｈａｒｄｙら（１９９４）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２２：２９９８−３００４、並びにＭｃＬｅａｎら、米国特許第５，３９３，８７７号および第５，５５２，５３５号は、ホスホロアミダイト部分およびＤＭＴ基を特徴とするリンカーに基づく、「ＴＯＰＳ」（合成あたり２オリゴヌクレオチド）方法論を紹介した。ホスホロアミダイト単量体をカップリングする、修飾可能な標準法を用いた自動化アセンブリの経過において、オリゴマー鎖に、該鎖を望ましいオリゴヌクレオチド単位に分配するリンカーを組み込むことも可能である。ＴＯＰＳ法の１つの主要な欠点は、リンカーから産物を切断するのに必要な条件が厳しく、そして反応時間が長いことである（濃アンモニア、８０℃、一晩；あるいは：濃アンモニア／４０％水性メチルアミン（１：１、ｖ／ｖ）、６０℃、８時間）。

この技術の修飾法がＰｏｎら（ＷＯ ０２／２０５４１）およびＨｏｌｌａｎｄら（ＷＯ ９２／０６１０３）に記載される。これらの参考文献は各々、完全に本明細書に特に援用される。別個のカップリング周期で付着する、前述の別個のリンカーアミダイト単量体の代わりに、この方法では、リンカー単位は、修飾ヌクレオシドホスホロアミダイトの一部として導入される。この方法で産生されるオリゴヌクレオチドの１つは、必然的に５’末端リン酸基を所持し、そしてしたがっていくつかの生化学的適用には有用でない。

オリゴヌクレオチドをタンデムに合成するための上述の方法は各々、特殊アミダイトのカップリングを含み、これは通常、それほど効率的でなく、そして長いカップリング時間またはカップリングの反復さえ必要とする。両方法の別の欠点は、特殊アミダイトを調製する必要があることである。こうしたリンカーまたは修飾ヌクレオシドアミダイトの合成は、一般的に、冗長で、そして時間がかかる。さらに、合成プロセスに特殊アミダイトを導入するには、自動化核酸合成装置上に、スペアの合成装置ポートが必要である。また、両方法は、オリゴマー鎖の長さが増加するに連れて、一部切除（ｔｒｕｎｃａｔｅｄ）配列数の増加およびカップリング効率の減少を生じる。したがって、鎖末端近くに位置するオリゴヌクレオチド単位は、品質が劣化し、そして濃度が減少する。したがって、オリゴヌクレオチドをタンデムに合成する改善法の必要性が依然としてある。

発明の概要
本発明は、１回の合成実行において、同一固体支持体上で、２以上の異なるオリゴヌクレオチドを組み合わせて連続合成する新規方法を含み、この方法は、これ以降、「タンデム合成」と称される。簡潔には、本発明の方法は：ａ）固体支持体を提供し、ここで前記固体支持体は２以上のオルソゴナル（ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ）保護基によって保護されたアンカー基で構成される；ｂ）前記オルソゴナル保護基の１つをアンカー基から除去し；ｃ）脱保護したアンカー基上でオリゴヌクレオチドを合成し；ｄ）合成したオリゴヌクレオチドにキャッピングし；ｅ）すべてのオルソゴナル保護基が脱保護されるまで、工程ｂ）〜ｄ）を反復し、ここで最後のオルソゴナル保護基に関しては工程ｄ）を省略する；そしてｆ）合成したオリゴヌクレオチドをすべて固体支持体から切断して、そしてオリゴヌクレオチドを脱保護するのに適した条件に、該オリゴヌクレオチドを供する工程を含む。本発明の方法を用いると、優れたカップリング率および収量が得られる。

図１および２に概略するように、本発明の方法は、本発明の固体支持体上に配置された、オルソゴナル保護アンカー基に基づき、これらは各々、望ましい配列の１つを合成するために、連続して用いられる。第一の各保護基の選択的除去に続いて、オリゴヌクレオチドの固相合成の標準法にしたがって、脱ブロッキングしたアンカー基上で、第一のオリゴヌクレオチドをアセンブリする。好ましい態様において、ホスホロアミダイト化学反応を使用して、オリゴヌクレオチドを合成する。前記の第一のオリゴヌクレオチドのキャッピングに続いて、第二の種類の保護基でブロッキングされたアンカー基を選択的に自由にして、これを次いで、第二のオリゴヌクレオチドのアセンブリの出発点として利用し、そして以下同様である。固体支持体上ですべての合成が完了した後、合成したオリゴヌクレオチドを、遊離工程および脱保護工程中、混合物としてさらにプロセシングする。本発明の方法を用いて得られる調製物は、２以上のオリゴヌクレオチドの混合物を含有する。これらは、限定されるわけではないが、ＰＣＲ、配列決定、多重化遺伝子型決定、クローニングおよびＲＮＡ干渉を含む、オリゴヌクレオチドプライマー対を必要とするか、いくつかのプローブを同時に必要とするか、二重鎖核酸断片を必要とする適用などに特に有用である。

本発明の１つの態様において、アンカー基の１つが保護されていないことも可能である。この態様において、本発明の方法は：ａ）固体支持体を提供し、ここで前記固体支持体は、部分的に保護されていないアンカー基で構成され、残りのアンカー基は１以上の保護基によって保護され、１より多い保護基を使用する場合、保護基は互いにオルソゴナルである；ｂ）保護されていないアンカー基上でオリゴヌクレオチドを合成し；ｃ）合成したオリゴヌクレオチドにキャッピングし；ｄ）１つの保護基をアンカー基から除去し；ｅ）脱保護したアンカー基上でオリゴヌクレオチドを合成し；ｆ）すべてのオルソゴナル保護基が脱保護されるまで、工程ｃ）〜ｅ）を反復し；そしてｇ）合成したオリゴヌクレオチドをすべて支持体から切断する工程を含む。

本明細書に開示する方法は、成長するオリゴヌクレオチド鎖が３’から５’方向に構築される固相オリゴヌクレオチド合成スキームとともに、成長するオリゴヌクレオチド鎖が５’から３’方向に構築される固相オリゴヌクレオチド合成スキームにも適用可能である。本明細書に開示する方法は、最後にアセンブリされたオリゴヌクレオチドの合成後に、最終末端保護基を除去することを伴い、または伴わずに適用されることも可能である。前者の場合、合成されるオリゴヌクレオチドはすべて、すべての作成（ｗｏｒｋ−ｕｐ）工程を通じて、一緒にプロセシングされ、そして組み合わせて最終適用に移される。後者の場合、最終保護基をハンドルとして利用することによって、すなわち単純な逆相カートリッジに基づく精製工程において、一般的に用いられる末端ジメトキシトリチル基をハンドルとして使用することによって、最後に合成されたオリゴヌクレオチドを分離することも可能である。

本発明の方法は、限定されるわけではないが、ホスホロアミダイト化学反応、Ｈ−ホスホン酸化学反応、ホスホトリエステル化学反応、または固体支持体上でオリゴヌクレオチドを調製するのに利用される他の合成化学反応いずれも含む、オリゴヌクレオチドを固相合成する既知の方法いずれにも適用可能である。さらに、本発明の方法は、汎用（ｕｎｉｖｅｒｓａｌ）リンカー系とともに、合成しようとするオリゴヌクレオチドの第一のヌクレオシドをあらかじめ装填されたものにも適応可能である。

本発明に含まれるのは、本発明の方法を適用するのに有用な新規固体支持体調製物とともに、その調製法である。本発明の方法は、各合成実行間の設定を再初期化する、特に固体支持体容器を交換し、そして合成装置を再プログラミングする必要なしに、同一支持体上で、オリゴヌクレオチドのタンデム合成を可能にする、２種類以上のオルソゴナル保護アンカー基で構成される固体支持体調製物を使用する。さらに、本発明の方法で、同一支持体上で合成されたオリゴヌクレオチドを、切断、精製、脱塩および濃縮を含む、連合作成工程に供することも可能である。最後に、これらの３’−および５’−ヒドロキシル基が修飾されていないため、特にリン酸基を所持しないため、適切な最終適用の大部分に、これらを直接使用することも可能である。

本発明の１つの態様において、固体支持体は、オルソゴナル保護アンカー基の均質な分布で構成され、望ましいオリゴヌクレオチドの数が、必要な異なるオルソゴナルアンカー基の数を決定する。本発明の別の態様において、固体支持体は、２以上の固体支持体構成要素の混合物で構成される。この態様において、各構成要素は、オルソゴナル保護基を１つしか所持せず、そして合成しようとする望ましいオリゴヌクレオチドの数に応じて、２以上の構成要素を混合することによって、複数のオルソゴナル保護アンカー基が確立される。

本発明の新規方法および支持体調製物は、重要な利点を有し、そして先行技術の方法に固有の限界に苦しまない。本明細書に記載する固体支持体は、広い範囲の適用に有用な一貫した品質の２以上のオリゴヌクレオチドの単純、円滑で、そして効率的な合成を提供する。本発明の方法は、２以上のプライマー、プローブ、二重鎖核酸断片等を使用する適用のためのオリゴヌクレオチドの費用効率的な産生を特に標的とする。本発明の方法は、ホスホロチオエート、ＲＮＡ誘導体およびロック化核酸（ＬＮＡ）、並びに例えばリンカー単位を介して１またはいくつかの色素にコンジュゲート化されたオリゴヌクレオチドなどの修飾オリゴヌクレオチドの合成に容易に採用可能である。本発明に記載する合成法は単純でそして一般的に適用可能であるため、該方法および支持体調製物は、自動化設定に非常に適している。

本発明の方法は、オリゴヌクレオチドを調製可能である率を増加させ、そして取り扱いおよびプロセシングとともに消耗品および固体支持体に要する出費がより少ないため、かかる費用も減少させる。オリゴヌクレオチド・アセンブリのプロセス自体は、もっぱら、非常に最適化された、当該技術分野で確立された方法に基づき、そして特殊アミダイトなどの修飾を必要としないため、本発明の方法は、産物品質の損失にはつながらない。

発明の詳細な説明
本発明は、１回の合成実行において、同一固体支持体上で、２以上の異なるオリゴヌクレオチドを組み合わせて連続合成する新規方法を含み、この方法は、これ以降、「タンデム合成」と称される。図１および２に概略するように、本発明の方法は、本発明の固体支持体上に配置された、オルソゴナル保護アンカー基に基づき、これらは各々、望ましい配列の１つを合成するために、連続して用いられる。第一の各保護基の選択的除去に続いて、オリゴヌクレオチドの固相合成の標準法にしたがって、脱ブロッキングしたアンカー基上で、第一のオリゴヌクレオチドをアセンブリする。好ましい態様において、ホスホロアミダイト化学反応を使用して、オリゴヌクレオチドを合成する。前記の第一のオリゴヌクレオチドのキャッピングに続いて、第二の種類の保護基でブロッキングされたアンカー基を選択的に自由にして、これを次いで、第二のオリゴヌクレオチドのアセンブリの出発点として利用し、そして以下同様である。固体支持体上ですべての望ましい合成が完了した後、合成したオリゴヌクレオチドを、遊離工程および脱保護工程中、混合物としてさらにプロセシングする。本発明の方法を用いて得られる調製物は、一般的に、２以上のオリゴヌクレオチドの混合物を含有する。

本明細書に開示する方法は、成長するオリゴヌクレオチド鎖が３’から５’方向に構築される固相オリゴヌクレオチド合成スキームとともに、成長するオリゴヌクレオチド鎖が５’から３’方向に構築される固相オリゴヌクレオチド合成スキームにも適用可能である。本発明の方法は、オリゴヌクレオチドを固相合成する既知の方法いずれにも適用可能である。さらに、本発明の方法は、汎用リンカー系とともに、合成しようとするオリゴヌクレオチドの第一のヌクレオシドをあらかじめ装填されたものにも適応可能である。

本発明に含まれるのは、本発明の方法を適用するのに有用な新規固体支持体調製物とともに、その調製法である。本発明の１つの態様において、固体支持体は、オルソゴナル保護アンカー基の均質な分布で構成され、望ましいオリゴヌクレオチドの数が、必要な異なるオルソゴナルアンカー基の数を決定する。本発明の別の態様において、固体支持体は、２以上の固体支持体構成要素の混合物で構成される。この態様において、各構成要素は、オルソゴナル保護基を１つしか所持せず、そして合成しようとする望ましいオリゴヌクレオチドの数に応じて、２以上の構成要素を混合することによって、複数のオルソゴナル保護アンカー基が確立される。

本発明の新規方法および支持体調製物は、重要な利点を有し、そして先行技術の方法に固有の限界に苦しまない。本明細書に記載する固体支持体は、広い範囲の適用に有用な一貫した品質の２以上のオリゴヌクレオチドの単純、円滑で、そして効率的な合成を提供する。本発明の方法は、ホスホロチオエート、ＲＮＡ誘導体およびロック化核酸（ＬＮＡ）、並びに例えばリンカー単位を介して１またはいくつかの色素にコンジュゲート化されたオリゴヌクレオチドの合成に容易に拡張可能である。本発明に記載する合成法は単純でそして一般的に適用可能であるため、該方法および支持体調製物は、自動化設定に非常に適している。

本発明の側面に言及するため、本明細書において、多様な用語が用いられる。本発明の構成要素の説明を明確にするのを補助するため、以下の説明を提供する。
用語「単数の（ａまたはａｎ）」実体は、１以上のその実体を指すことに注目すべきであり；例えば（単数の）オリゴヌクレオチドは、１以上のオリゴヌクレオチドを指す。こうしたものとして、用語「単数の（ａまたはａｎ）」、「１以上の」および「少なくとも１つの」は、本明細書において、交換可能に用いられる。

用語「オリゴヌクレオチド合成」は、本明細書において、当業者に知られる方法いずれかを用いた固相オリゴヌクレオチド合成（ＳＰＯＳ）を指す。好ましくは、ＳＰＯＳは、各々、完全に本明細書に特に援用される、Ｇａｉｔ監修（１９８４）Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｕｎｔｈｅｓｉｓ：Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ中， ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ， 英国オックスフォード；Ｅｃｋｓｔｅｉｎ監修（１９９１）Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ ａｎｄ Ａｎａｌｏｇｓ：Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ中， ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ， 英国オックスフォード；ＢｅａｕｃａｇｅおよびＩｙｅｒ（１９９２）Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ ４８：２２２３−２３１１；ＭｃＢｒｉｄｅおよびＣａｒｕｔｈｅｒｓ（１９８３）Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔｅｒｓ ２４：２４５−２４８、並びにＳｉｎｈａら（１９８３）Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔｅｒｓ ２４：５８４３−５８４６に記載されるような、限定されるわけではないが、当業者に知られるホスホロアミダイト、ホスホトリエステルおよび／またはホスホン酸水素ヌクレオシド化学反応を含む方法論を用いて行われる。本発明の方法は、しかし、固相オリゴヌクレオチド合成に用いられる他のいかなる化学反応にも拡張可能である。典型的には、オリゴヌクレオチド合成は、合成全体を通じて、周期的に反復される方式で行われるいくつかの化学反応工程を伴い、各周期は、成長するオリゴヌクレオチド鎖に１つのヌクレオチド・シントンを付加する。周期に含まれる標準的化学反応工程には、さらなる鎖伸長のため、官能基を自由にする脱保護工程、合成しようとするオリゴヌクレオチドにヌクレオチド・シントンを取り込むカップリング工程、およびオリゴヌクレオチド合成に用いられる特定の化学反応に必要とされる他の工程、例えばホスホロアミダイト化学反応に必要な酸化工程などが含まれる。場合によって、カップリング工程で伸長されなかった官能基をブロッキングするキャッピング工程が周期に挿入される。

オリゴヌクレオチド合成経過中のオリゴヌクレオチド鎖の伸長は、典型的には、適切な保護基、例えば広く使用されるＤＭＴ基（ＤＭＴ＝ジメトキシトリチル＝ビス（４−メトキシフェニル）フェニルメチル）を５’位に、そして適切な活性化可能基、例えばホスホロアミダイト基を３’位に所持するヌクレオチド・シントンを付加して、成長する鎖の５’位への連結を形成することによって、３’から５’方向で行われる。あるいは、カップリング反応において、適切な保護基、例えばＤＭＴ基を３’位に、そして適切な活性化可能基、例えばホスホロアミダイト基を５’位に所持するヌクレオチド・シントンを付加して、成長する鎖の３’位への連結を形成することによって、オリゴヌクレオチド鎖の伸長を５’から３’方向で遂行することも可能である。このアプローチは、例えば、完全に本明細書に援用されるＲｏｂｌｅｓら（１９９５）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２３：４１５１−６１に記載されるような３’−ＤＭＴ保護デオキシヌクレオシド５’−ホスホロアミダイトを用いたオリゴデスオキシヌクレオチドの合成、または例えば、完全に本明細書に援用されるＧｒｙａｚｎｏｖら（１９９５）Ｐｒｏｃ． Ｎａｔ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ９２：５７９８−５８０２に記載されるようなＮ３’−トリチル保護ヌクレオシド５’−ホスホロアミダイトを用いたＮ３’−Ｐ５’ホスホロアミダイトオリゴヌクレオチドの合成に例示される。

オリゴヌクレオチド合成周期のカップリング工程で用いられるヌクレオチド・シントンは、典型的には、一ヌクレオチド・シントン、例えば商業的に入手可能な５’−ＤＭＴ保護デオキシヌクレオシド３’−ホスホロアミダイトである。ヌクレオシド・シントンにはまた、限定されるわけではないが、完全に本明細書に援用されるＫｕｍａｒおよびＰｏｏｎｉａｎ（１９８４）Ｊ． Ｏｒｇ． Ｃｈｅｍ． ４９：４９０５−１２に記載されるような二ヌクレオチド・シントン、完全に本明細書に援用されるＯｎｏら（１９９５）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２３：４６７７−８２に記載されるような三ヌクレオチド・シントン、または３より多いヌクレオチド単位からなるシントンも含まれる。

本明細書において、用語「オリゴヌクレオチド」は、デオキシリボヌクレオチドまたはリボヌクレオチド、あるいはその化学的修飾物、例えばロック化核酸（ＬＮＡ）の構成ヌクレオチドである、糖部分にＯ２’−Ｃ４’−メチレン架橋を持つヌクレオチドいずれかの一本鎖を指す。修飾には、限定されるわけではないが、さらなる電荷、分極率、水素結合、静電相互作用、および官能性を、個々のヌクレオチドまたはその対応する塩基あるいはオリゴヌクレオチド全体に取り込む、他の化学基を提供するものが含まれる。こうした修飾には、限定されるわけではないが、２’位糖修飾、例えば２’−Ｏ−メチルまたは２’−フルオロ修飾、５位ピリミジン修飾、８位プリン修飾、シトシン環外アミンでの修飾、５−ブロモ−ウラシルの取り込み；主鎖修飾、メチル化、異常な塩基対形成の組み合わせの一部となりうる塩基、例えばイソ塩基、イソシチジンおよびイソグアニン等の修飾塩基が含まれる。修飾には、さらに、当業者に知られる、付着した標識およびレポーター分子、例えば蛍光色素、ビオチン、副溝結合剤等が含まれる。さらに、修飾には、オリゴヌクレオチドの修飾主鎖が含まれ、例えば当業者に知られ、そして完全に本明細書に援用されるＭｉｃｋｌｅｆｉｅｌｄ（２００１）Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ８：１１５７−１１７９に概説される、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、ホスホロチオエートＤＮＡ、メチルホスホネートＤＮＡ、および他の修飾が含まれる。本発明で言及するオリゴヌクレオチドは、上述のヌクレオチドおよび修飾物の組み合わせいずれかで構成され、そして、鎖に取り込まれた、いくつかの、例えば２０までの、または多くの、例えば２０〜数百またはそれより多いヌクレオチドを有することも可能であり、ヌクレオチドの総数は、本発明の背景において、「ｎ」で示される。１つの態様において、本発明のオリゴヌクレオチドは、約２０〜約１０００ヌクレオチドで構成される。

用語「固相」は、本明細書において、オリゴヌクレオチドを合成するかまたは精製するために行われる特定の反応または単位操作に使用される媒体に不溶性であるポリマーを指す。固相は、限定されるわけではないが、シリカ、アルミナ、ゼオライトおよび調節孔ガラス（ＣＰＧ）などの無機オキシドを含む無機ポリマー、有機コーティングで修飾されたシリカまたはＣＰＧ、例えばアミノプロピル−シラン誘導体化シリカまたはアミノプロピル−シラン誘導体化ＣＰＧなどの修飾無機ポリマー、あるいは、限定されるわけではないが、ポリスチレン、ポリアクリルアミド、ポリメタクリレート、ポリビニルアルコール、または他の合成ポリマー、セルロースおよびデンプンなどの炭水化物もしくは他のポリマー性炭水化物、または他の有機ポリマーおよびコポリマーいずれかを含む有機ポリマー、混成物質あるいは上記無機または有機物質の組み合わせであることも可能である。本明細書に定義するような固相は、保護されていてもまたいなくてもよい、当業者に知られるヒドロキシル基またはアミノ基または他の官能基などの官能基を含むことも可能である。

用語「固体支持体」は、本明細書において、オリゴヌクレオチド合成のカップリング反応に関与するのに適した官能基を含むように誘導体化された固相を指す。本明細書に定義するような固相は、保護されていてもまたいなくてもよい、当業者に知られるヒドロキシル基またはアミノ基または他の官能基などの官能基を含むことも可能である。官能基には、限定されるわけではないが、保護されていない、例えば未結合（ｆｒｅｅ）ヒドロキシル基、またはカップリング反応前に脱保護される必要がある、保護されたヒドロキシル基いずれかが含まれる。適切な保護基には、限定されるわけではないが、ジメトキシトリチル（ＤＭＴ）、メトキシエチリデン、レブリニルおよび９−フルオレニルメトキシカルボニル（Ｆｍｏｃ）が含まれる。限定されるわけではないが、脱保護反応周期、限定されるわけではないがホスホロアミダイト・シントンを含むヌクレオチド・シントンとのカップリング反応、および用語「オリゴヌクレオチド合成」以下に記載し、そしてそこに引用する参考文献に記載されるような、固相表面上にオリゴヌクレオチドを構築する段階的方式の他の化学反応を含む、上に論じるようなＳＰＯＳが含む反応周期すべてに、固体支持体を供する。

用語「固体支持体構成要素」は、本明細書において、固体支持体混合物に取り込まれる固体支持体を指す。物理的に混合されて新規固体支持体を生成する、２以上の固体支持体は各々、新規固体支持体の固体支持体構成要素を構成する。

用語「あらかじめ装填された固体支持体」は、本明細書において、共有結合したヌクレオシドまたはオリゴヌクレオチドを含む固体支持体を指す。あらかじめ装填された支持体のヌクレオシドまたはオリゴヌクレオチドは官能基を提供し、これがオリゴヌクレオチド合成の経過中に伸長される。共有結合したヌクレオシドまたはオリゴヌクレオチドは、合成しようとするオリゴヌクレオチドの末端の塩基組成、すなわち末端位でのオリゴヌクレオチドの配列を決定する。例えば、３’から５’方向のオリゴヌクレオチド合成に使用されるあらかじめ装填された固体支持体に共有結合したヌクレオシドは、オリゴヌクレオチドの３’末端ヌクレオシドを決定する。特定のあらかじめ装填された固体支持体が、商業的に入手可能であり、例えばＰｒｏｌｉｇｏ ＬＬＣ、米国コロラド州ボールダーの製品カタログに記載されるようなヌクレオシド装填ＣＰＧがある。これらの商業的に入手可能なあらかじめ装填された支持体において、ヌクレオシドは、５’位でＤＭＴ基などの標準的保護基で保護され、そしてオリゴヌクレオチド合成は、３’から５’方向に、支持体上で行われる。あらかじめ装填された固体支持体は、あらかじめ決定された末端配列を持つオリゴヌクレオチドを合成するためにのみ使用可能であるため、一般的に、その使用が限定される。例えば、共有結合したチミジンヌクレオシドを含む、商業的に入手可能なあらかじめ装填された固体支持体は、３’端にチミジンヌクレオシドを含有するオリゴヌクレオチドを合成するためにのみ使用可能である。

用語「汎用固体支持体」は、本明細書において、共有結合したヌクレオシドまたはオリゴヌクレオチドを含有しない固体支持体を指す。あらかじめ装填された支持体と対照的に、汎用支持体は、オリゴヌクレオチドの末端のいかなる配列制限も伴わず、いかなるオリゴヌクレオチド配列を合成するのにも使用可能である。汎用固体支持体を用いると、オリゴヌクレオチド合成の第一のカップリング反応に適用されるヌクレオチド・シントンが、合成されるオリゴヌクレオチドの末端配列を決定する。例えば、３’から５’方向のオリゴヌクレオチド合成に使用される、第一の５’−ＤＭＴ保護ヌクレオシド３’−ホスホロアミダイトが、オリゴヌクレオチドの３’−ヌクレオシド単位を決定する。

本明細書において、用語「リンカー」は、オリゴヌクレオチド合成で合成しようとするオリゴヌクレオチドの第一のヌクレオシドと固体支持体の固相を共有結合的に連結する、二官能性化学部分を指す。リンカーは、適切な切断条件下で、合成したオリゴヌクレオチドを固体支持体から切断するのを可能にする切断部位を導入する。リンカーの例には、限定されるわけではないが、以下の式（１）に例示される構造が含まれる。式（１）は、ＢｅａｕｃａｇｅおよびＩｙｅｒ（１９９２）Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ ４８：２２２３−２３１１に記載されるような、あらかじめ装填された固体支持体を示す。式（１）において、リンカーは、スクシニル部分、−Ｃ（＝Ｏ）−ＣＨ_２−ＣＨ_２−Ｃ（＝Ｏ）−で構成され、これが固相ＬＣＡＡ ＣＰＧとヌクレオシドの３’−ヒドロキシル基を共有結合的に連結する。ＬＣＡＡ ＣＰＧは、一級アミノ基で構成される有機コーティングを伴う調節孔ガラスである。スクシニルリンカーは、エステル基−Ｃ（＝Ｏ）−Ｏ−によってヌクレオシドに連結され、これが切断部位に相当する。オリゴヌクレオチドを合成した後、限定されるわけではないが、例えば濃アンモニアを含む標準法を用いて、エステル基の加水分解を介して、固体支持体から切断する。

用語「汎用リンカー」は、本明細書において、汎用固体支持体のリンカーを指す。汎用リンカーは、オリゴヌクレオチド合成の経過中、支持体にカップリングされる第一のヌクレオチド・シントンと汎用固体支持体の固相を共有結合的に連結する。汎用リンカーの例には、限定されるわけではないが、以下の式（２）に例示される構造が含まれる。式（２）は、完全に本明細書に援用されるＫｕｍａｒｅｖら、ＷＯ ０１／９６３５７に記載される汎用固体支持体を示す。式（２）に例示されるリンカーは、２’／３’−モノアセチル化イノシンヌクレオシドの５’−ヒドロキシル基に共有結合するオキサリル部分で構成される。汎用リンカーは、オリゴヌクレオチド合成の経過中、汎用固体支持体にカップリングされる第一のヌクレオチド・シントンの３’−リン酸基と固相アミノプロピルシランＣＰＧを共有結合的に連結する。式（２）のリンカーは、合成されるオリゴヌクレオチドの３’末端リン酸基に切断部位を導入する。標準的塩基性脱保護条件下で、イノシンヌクレオシドの２’／３’−アセチル基を脱保護し、そして自由にされたヒドロキシル基が、隣接するリン酸基との分子内反応に関与して、環状ホスホトリエステル中間体を形成し、これがさらに塩基性条件下で切断されて、２’，３’−ホスホジエステルおよび遊離した３’−ＯＨオリゴヌクレオチドが産生される。

用語「アンカー基」は、本明細書において、オリゴヌクレオチド合成の経過中に第一のヌクレオチド・シントンが付着する官能基を指す。アンカー基には、限定されるわけではないが、保護されていてもまたいなくてもよい、当業者に知られるヒドロキシル基またはアミノ基または他の官能基いずれかなどの官能基が含まれる。好ましい態様において、アンカー基は、あらかじめ装填された固体支持体のヌクレオシドのヒドロキシル基、例えば５’−または３’−ヒドロキシル基、あるいは上述のような汎用固体支持体のヒドロキシル基である。

用語「オルソゴナル保護基」は、互いに関して選択的に除去可能である、すなわちオルソゴナル保護基各々の除去が、存在する他のいかなるオルソゴナル保護基も切断することなく行われることも可能である、２以上の保護基を指す。オルソゴナル保護基は、上に定義するようなアンカー基を保護する。本明細書において、「サブセット」は、アンカー基のすべてまたは全セットに比較して、特定のオルソゴナル保護基に保護されたアンカー基の部分を指す。１つの態様において、オルソゴナル保護基は、限定されるわけではないが、ジメトキシトリチル（ＤＭＴ）、メトキシエチリデン、レブリニルおよび９−フルオレニルメトキシカルボニル（Ｆｍｏｃ）を含む群より選択される。

オルソゴナル保護基の代表的な例には、ヒドロキシル基を保護するＤＭＴおよびレブリニル保護基の組み合わせが含まれる。ＤＭＴ保護基は、穏やかな酸性条件下で、例えばジクロロメタン中の３％トリクロロ酢酸を室温でおよそ２時間用いて、切断される。一方、レブリニル保護基は、Ｋｕｍａｒら（１９８４）Ｊ． Ｏｒｇ． Ｃｈｅｍ． ４９：４９０５−４９１２に例示されるように、穏やかな酸性条件下では実質的に安定である。レブリニル保護基は、中性有機緩衝液中のヒドラジンの溶液、例えばピリジンおよび酢酸３／２、ｖ／ｖの混合物中１モルの水酸化ヒドラジニウムを室温で５分間用いて、切断される。ＤＭＴ保護基は、これらの脱保護条件下で実質的に安定である。Ｋｕｍａｒら（１９８４）Ｊ． Ｏｒｇ． Ｃｈｅｍ． ４９：４９０５−４９１２を参照されたい。ヒドロキシ官能上のＤＭＴおよびレブリニル保護基は各々、他方の基の存在下で選択的に除去可能であるため、ＤＭＴおよびレブリニル基は、本明細書に定義するようなオルソゴナル保護基である。当業者に知られるオルソゴナル保護基の多くの他の例がある。保護基に関する包括的な概説が、ＷｕｔｓおよびＧｒｅｅｎｅ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ Ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ中， Ｗｉｌｅｙ−Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ， ＩＳＢＮ ０４７１１６０１９９（１９９９， 第三版）に提供される。

本発明の方法は、１回の合成実行において、同一固体支持体上で、２以上の異なるオリゴヌクレオチドを連続合成する新規方法を提供し、この方法はまた、本明細書において、「タンデム合成」とも称される。簡潔には、本発明の方法は：ａ）固体支持体を提供し、ここで前記固体支持体は２以上のオルソゴナル保護基によって保護されたアンカー基で構成される；ｂ）前記オルソゴナル保護基の１つをアンカー基から除去し；ｃ）脱保護したアンカー基上でオリゴヌクレオチドを合成し；ｄ）合成したオリゴヌクレオチドにキャッピングし；ｅ）すべてのオルソゴナル保護基が脱保護されるまで、工程ｂ）〜ｄ）を反復し、ここで最後のオルソゴナル保護基に関しては工程ｄ）を省略する；そしてｆ）合成したオリゴヌクレオチドをすべて固体支持体から切断して、そしてオリゴヌクレオチドを脱保護するのに適した条件に、該オリゴヌクレオチドを供する工程を含む。本発明の方法を用いると、優れたカップリング率および収量が得られる。

図１および２に概略するように、本発明の方法は、本発明の固体支持体上に配置された、オルソゴナル保護アンカー基に基づき、これらは各々、望ましい配列の１つを合成するために、連続して用いられる。上述のように、用語「オルソゴナル保護基」は、互いに関して選択的に除去可能である、すなわちオルソゴナル保護基各々の除去が、存在する他のいかなるオルソゴナル保護基も切断することなく行われることも可能である、保護基を指す。オルソゴナル保護基は、限定されるわけではないが、ＤＭＴ、メトキシエチリデン、レブリニルおよびＦｍｏｃを含む群より選択されることも可能である。オルソゴナル保護基の代表的な例には、限定されるわけではないが、ヒドロキシル基を保護するＤＭＴおよびレブリニル保護基の組み合わせが含まれる。保護基に関する包括的な概説が、ＷｕｔｓおよびＧｒｅｅｎｅ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ Ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ中， Ｗｉｌｅｙ−Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ， ＩＳＢＮ ０４７１１６０１９９（１９９９， 第三版）に提供される。他の保護基の存在下で選択的に除去可能ないかなる保護基も本発明の方法において使用可能である。

第一の各オルソゴナル保護基の選択的除去に続いて、オリゴヌクレオチドの固相合成の標準法にしたがって、脱ブロッキングしたアンカー基上で、第一のオリゴヌクレオチドをアセンブリする。本発明の方法は、限定されるわけではないが、ホスホロアミダイト化学反応、Ｈ−ホスホン酸化学反応、ホスホトリエステル化学反応、または固体支持体上でオリゴヌクレオチドを調製するのに利用される他の合成化学反応いずれも含む、オリゴヌクレオチドを固相合成する既知の方法いずれにも適用可能である。さらに、本発明の方法は、汎用リンカー系とともに、合成しようとするオリゴヌクレオチドの第一のヌクレオシドをあらかじめ装填されたものにも適応可能である。好ましい態様において、ホスホロアミダイト化学反応を使用して、オリゴヌクレオチドを合成する。前記の第一のオリゴヌクレオチドのキャッピングに続いて、第二の種類の保護基でブロッキングされたアンカー基を選択的に自由にして、これを次いで、第二のオリゴヌクレオチドのアセンブリの出発点として利用し、そして以下同様である。固体支持体上ですべての合成が完了した後、合成したオリゴヌクレオチドを、遊離工程および脱保護工程中、混合物としてさらにプロセシングする。本発明の方法を用いて得られる調製物は、一般的に、２以上のオリゴヌクレオチドの混合物を含有する。これらは、限定されるわけではないが、ＰＣＲ、配列決定、多重化遺伝子型決定、クローニングおよびＲＮＡ干渉を含む、オリゴヌクレオチドプライマー対を必要とするか、いくつかのプローブを同時に必要とするか、二重鎖核酸断片を必要とする適用などに特に有用である。

固体支持体の固相は、限定されるわけではないが、シリカ、アルミナ、ゼオライトおよび調節孔ガラス（ＣＰＧ）などの無機オキシドを含む無機ポリマー、有機コーティングを伴うシリカまたはＣＰＧ、例えばアミノプロピル−シラン誘導体化シリカまたはアミノプロピル−シラン誘導体化ＣＰＧなどの修飾無機ポリマー、あるいは、限定されるわけではないが、ポリスチレン、ポリアクリルアミド、ポリメタクリレート、ポリビニルアルコール、または他の合成ポリマー、限定されるわけではないがセルロースおよびデンプンを含む炭水化物もしくは他のポリマー性炭水化物、または他の有機ポリマーおよびコポリマーいずれかを含む有機ポリマー、混成物質あるいは上記無機または有機物質の組み合わせであることも可能である。本明細書に定義するような固相は、保護されていてもまたいなくてもよい、当業者に知られるヒドロキシル基またはアミノ基または他の官能基などの官能基を含むことも可能である。

本明細書に開示する方法は、成長するオリゴヌクレオチド鎖が３’から５’方向にアセンブリされる固相オリゴヌクレオチド合成スキームとともに、成長するオリゴヌクレオチド鎖が５’から３’方向にアセンブリされる固相オリゴヌクレオチド合成スキームにも適用可能である。本明細書に開示する方法は、最後にアセンブリされたオリゴヌクレオチドの合成後に、最終末端保護基を除去することを伴い、または伴わずに適用されることも可能である。前者の場合、合成されるオリゴヌクレオチドはすべて、すべての作成工程を通じて、一緒にプロセシングされ、そして組み合わせて最終適用に移される。後者の場合、最終保護基をハンドルとして利用することによって、すなわち単純な逆相カートリッジに基づく精製工程において、一般的に用いられる末端ジメトキシトリチル基をハンドルとして使用することによって、最後に合成されたオリゴヌクレオチドを分離することも可能である。

本発明に含まれるのは、２以上のオルソゴナル保護基の組み合わせで構成される新規固体支持体とともに、その調製法および前記タンデムオリゴヌクレオチド合成におけるその適用である。本明細書に開示する固体支持体は、各合成実行間の設定を再初期化する、特に固体支持体容器を交換し、そして合成装置を再プログラミングする必要なしに、同一支持体上で、オリゴヌクレオチドのタンデム合成を可能にする。さらに、大部分の場合、本発明の方法で、同一支持体上で合成されたオリゴヌクレオチドを、切断、精製、脱塩および濃縮を含む、連合作成工程に供することも可能である。最後に、これらの３’−および５’−ヒドロキシル基が修飾されていないため、特にリン酸基を所持しないため、適切な最終適用の大部分に、これらを直接使用することも可能である。

本発明の新規固体支持体は、以下の式（３）および（４）に示すように、合成しようとするオリゴヌクレオチドの第一のヌクレオシドを含み、または含まずに誘導体化することも可能である。

式中
Ｑは本明細書に定義するような固相であり；
Ｌは本明細書に定義するようなリンカーであり；
Ｕは本明細書に定義するような汎用リンカーであり；
Ｎは合成しようとするオリゴヌクレオチドの末端ヌクレオシドを確立するヌクレオシド部分である。１つの態様において、Ｎは、限定されるわけではないが、以下の式（５）および（６）に例示する化合物を含む群から選択される。

式中
Ｒ_１は、限定されるわけではないが、−Ｈ、−ＯＨ、−Ｆ、限定されるわけではないが基−ＯＣＨ_３、−ＯＣＨ_２ＣＨ＝ＣＨ_２または−ＯＣＨ_２ＯＣＨ_２ＣＨ_２ＯＣＨ_３を含む、１〜４の炭素原子を有する、場合によって置換されたアルコキシルまたはアルケノキシル基、保護アミノ基、あるいはＯＲ_２を含む群から選択され、ここでＲ_２は、限定されるわけではないが、ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル基、または当業者に知られるリボヌクレオシドの２’−ＯＨ官能の保護に有用な他の保護基いずれかを含む、オリゴリボヌクレオチド合成に有用な保護基に相当する；
Ｂは、限定されるわけではないが、アデニン、シトシン、グアニン、チミンおよびウラシル、またはその化学的に修飾された誘導体を含む群より選択される核酸塩基であり、核酸塩基の環外アミノ基は、限定されるわけではないが、アデニンおよびシトシンではベンゾイル保護基、グアニンではイソブチリル保護基、アデニン、シトシンおよびグアニンではｔｅｒｔ−ブチルフェノキシアセチル（ＴＡＣ）保護基、並びに当業者に知られる核酸塩基の他の保護基いずれかを含む保護基に例示されるような、オリゴヌクレオチド合成に有用な保護基を所持することも可能であり；
ＸおよびＹは独立に、−Ｏまたは−ＮＨから選択され、Ｘは固体支持体のアンカー基に相当し、そしてＹは固相上のリンカーへの付着部位に相当し；そして
ＰＧはＨまたは保護基から選択される。

１つの態様において、上記一般式（４）にしたがった汎用リンカーを含む固体支持体は、式（７）：

式中
Ｑは本明細書に定義するような固相であり；
Ｓは、示したフラン環の５’−ヒドロキシル基と固相を共有結合的に連結する、二官能性スペーサー部分であり；Ｓの例には、限定されるわけではないが、−Ｃ（＝Ｏ）−、限定されるわけではないがオキサリル、マロニル、スクシニル、グルタリル等を含む群から選択されるジアシル部分、限定されるわけではないがメチリデン、エチリデン、プロピリデン等を含むアルキリデン部分、限定されるわけではないが−Ｃ（＝Ｏ）−ＣＨ_２−、−ＣＨ_２−Ｃ（＝Ｏ）−、−Ｃ（＝Ｏ）−ＣＨ_２−ＣＨ_２−、−ＣＨ_２−ＣＨ_２−Ｃ（＝Ｏ）−等を含むアルキルアシル部分、限定されるわけではないが−Ｐ（＝Ｏ）（ＯＨ）−を含むリン酸部分、および限定されるわけではないが−Ｐ（＝Ｏ）（ＯＲ_５）−（式中、Ｒ_５は限定されるわけではないが２−シアノエチルを含む、当業者に知られるリン酸保護基からなる群より選択される）を含む保護リン酸部分が含まれ；
Ｚは、限定されるわけではないが、アデニン、シトシン、グアニン、チミンまたはウラシル、あるいはその化学的に修飾された誘導体を含む群から選択される核酸塩基であり、核酸塩基の環外アミノ基は、限定されるわけではないが、アデニンおよびシトシンではベンゾイル保護基、グアニンではイソブチリル保護基、アデニン、シトシンおよびグアニンではｔｅｒｔ−ブチルフェノキシアセチル（ＴＡＣ）保護基、並びに当業者に知られる核酸塩基の他の保護基いずれかを含む保護基に例示されるような、オリゴヌクレオチド合成に有用な保護基を所持することも可能であるし、あるいはＺは、Ｈ、−ＯＭｅ、ヒポキサンチン、または上に定義するような汎用リンカーの官能性、およびＳＰＯＳが含む工程すべての両方と適合する他の部分いずれかであり；
Ｒ_３およびＲ_４は、それぞれ、示したフラン環の２−および３−ヒドロキシル基をブロッキングする保護基であり；前記２−または３−ヒドロキシル基のいずれかが上述のようなアンカー基として機能し；Ｒ_３およびＲ_４は、限定されるわけではないが、以下の置換基の組み合わせを含む群から選択される：Ｒ_３がＨであり、そしてＲ_４が限定されるわけではないが−ＣＯＣＨ_３を含む標準的キャッピング基であるか、またはその逆である；あるいはＲ_３が標準的保護基であり、そしてＲ_４が限定されるわけではないが−ＣＯＣＨ_３を含むキャッピング基であるか、またはその逆である；あるいはＲ_３およびＲ_４が一緒になって、フラン環の２位および３位の酸素を架橋するメトキシエチリデン部分に相当する。

一般式（３）に示すように誘導体化された固体支持体を使用するには、オリゴヌクレオチド配列の第一のヌクレオシドがすでに固体支持体に付着していることを反映するように、タンデム合成で用いる装置をプログラミングする必要がある。一般式（４）に示すように固体支持体を誘導体化するには、オリゴヌクレオチド配列の第一のヌクレオシドが、第一のカップリング工程で導入されることを反映するように、装置をプログラミングする必要がある。

本発明の固体支持体は、同一支持体上に２以上のオルソゴナル保護基を持つアンカー基で構成される。各オリゴヌクレオチド合成に必要なオルソゴナル保護基の数は、タンデムに合成しようとするオリゴヌクレオチドの数によって決定される。一般的に、１回の合成実行で、ｍのオリゴヌクレオチドを調製しようとする場合、ｍのオルソゴナル保護基が必要である。場合によって、アンカー基の１つが保護されていないことも可能である。この場合、保護されていないアンカー基は、タンデム合成で合成しようとする第一のオリゴヌクレオチドの出発点として働き、そしてｍオリゴヌクレオチドのタンデム調製には、ｍ−１のオルソゴナル保護基があれば十分である。この態様において、本発明の方法は：ａ）固体支持体を提供し、ここで前記固体支持体は、部分的に保護されていないアンカー基で構成され、残りのアンカー基は１以上の保護基によって保護され、１より多い保護基を使用する場合、保護基は互いにオルソゴナルである；ｂ）保護されていないアンカー基上でオリゴヌクレオチドを合成し；ｃ）合成したオリゴヌクレオチドにキャッピングし；ｄ）１つの保護基をアンカー基から除去し；ｅ）脱保護したアンカー基上でオリゴヌクレオチドを合成し；ｆ）すべてのオルソゴナル保護基が脱保護されるまで、工程ｃ）〜ｅ）を反復し；そしてｇ）合成したオリゴヌクレオチドをすべて支持体から切断する工程を含む。

本発明の方法にしたがって、固体支持体の異なる種類の誘導体化を任意に組み合わせて、意図されるタンデム合成を行うことも可能である。例えば、２以上の異なるオルソゴナル保護基を含む、式（３）に示すような２以上の誘導体化を適用可能である。あるいは、２以上の異なるオルソゴナル保護基を含む、式（４）に示すような２以上の誘導体化を適用可能である。さらに、式（３）および式（４）に示す種類の誘導体化が、異なるオルソゴナル保護基を含むならば、これらの誘導体化を１つのタンデム合成中で混合することもまた可能である。

本発明の１つの態様において、固体支持体は、２以上のオルソゴナル保護基で均質に誘導体化され、本明細書において「均質固体支持体」と称される。使用するオルソゴナル保護基の数に応じて、２以上の異なるオリゴヌクレオチドを、この種類の支持体上で合成可能である。図１は、２つのオリゴヌクレオチド（オリゴ１およびオリゴ２）のタンデム合成中の、２つのオルソゴナル保護基（ＰＧ^１およびＰＧ^２）で誘導体化された均質固体支持体の使用を例示する。図１を参照すると、合成の第一の工程において、保護基ＰＧ^１が選択的に除去され、支持体上で、保護されていないアンカー基、すなわち未結合ヒドロキシル基、および保護された（ＰＧ^２）アンカー基の均質な分布が生じる。続く工程において、第一のオリゴヌクレオチド（オリゴ１）を、慣用的な固相オリゴヌクレオチド合成、例えばホスホロアミダイト合成を介して、支持体上でアセンブリする。オリゴ１のアセンブリ後、慣用的なキャッピング試薬で支持体にキャッピングし、タンデム合成中にすべてのオリゴ１配列がさらに伸長されるのを防ぐ。次の工程において、保護基ＰＧ^２を選択的に除去し、支持体上で、保護されていないアンカー基、すなわち未結合ヒドロキシル基、およびキャッピングされたオリゴ１の均質な分布を生じる。続く工程において、第二のオリゴヌクレオチド（オリゴ２）を、慣用的な固相オリゴヌクレオチド合成、例えばホスホロアミダイト合成を介して、支持体上でアセンブリする。オリゴ２のアセンブリ後、オリゴ１およびオリゴ２両方を支持体から切断し、そして脱保護して２つのオリゴヌクレオチドの混合物を提供する。オリゴヌクレオチドの意図される適用にしたがって、例えば脱塩によって、またはクロマトグラフィー精製などによって、オリゴヌクレオチド混合物をさらにプロセシングする。

いくつかの方法を用いて、均質固体支持体を調製可能である。１つの態様において、保護されていないアンカー基を含む固相から出発して、段階的方式で、均質固体支持体を調製する。適切な量で（例えば、アンカー基の１／２の保護が望ましい場合、１：２の試薬：アンカー基の比で）、保護基を導入する各試薬を添加することによって、保護されていないアンカー基を、望ましい度合いまで、第一のオルソゴナル保護基（例えばＰＧ^１）と反応させる。第一のオルソゴナル保護基で最初に誘導体化した後、第二のオルソゴナル保護基を導入する第二の試薬を用いて、対応する方式で、残った未結合アンカー基を第二のオルソゴナル保護基（例えばＰＧ^２）と反応させる。実質的にすべてのアンカー基が保護され、そしてすべての望ましいオルソゴナル保護基が導入されるまで、さらなるオルソゴナル保護基を付加して、この反応スキームを反復することも可能である。この方法は、２種類のオルソゴナル保護アンカー基が望ましいか、または１種類の保護アンカー基と保護されていないアンカー基を組み合わせることが望ましい場合、特に有用である。後者の場合、およそ５０％のアンカー基の１回の誘導体化のみを行う。適切な試薬を過剰に適用して、第二の保護基を導入することによって、残った未反応のアンカー基をオルソゴナル保護アンカー基に変換することもまたはしないことも可能である。

別の態様において、オルソゴナル保護基を導入する、２以上の試薬を同時に適用することによって、タンデム合成のための均質固体支持体を調製する。例えば、アミノ官能化固相上の装填反応において、Ｏ３’−スクシネート−（４−ニトロフェニル）エステルヌクレオシドと、異なるオルソゴナルＯ５’保護基の混合物を使用して、あらかじめ装填された均質支持体を生成することも可能である。

本発明の別の１つの態様において、各固体支持体構成要素のアンカー基がユニークなオルソゴナル保護基によって均質に保護されている、２以上の固体支持体構成要素を混合することによって固体支持体を生成する。２以上の固体支持体構成要素から生成される固体支持体は、本明細書において、「混成（composite）固体支持体」と称される。図２は、２つのオリゴヌクレオチド（オリゴ１およびオリゴ２）のタンデム合成中、２つのオルソゴナル保護基（ＰＧ^１およびＰＧ^２）で誘導体化された混成固体支持体の使用を例示する。図２を参照すると、合成の第一の工程において、保護基ＰＧ^１が選択的に除去され、支持体上で、保護されていないアンカー基、すなわち未結合ヒドロキシル基を含む固体支持体構成要素、および保護された（ＰＧ^２）アンカー基を含む固体支持体構成要素からなる、混成支持体が生じる。続く工程において、第一のオリゴヌクレオチド（オリゴ１）を、慣用的な固相オリゴヌクレオチド合成、例えばホスホロアミダイト合成を介して、アセンブリする。オリゴ１のアセンブリ後、慣用的なキャッピング試薬で混成支持体にキャッピングし、タンデム合成中にすべてのオリゴ１配列がさらに伸長されるのを防ぐ。次の工程において、保護基ＰＧ^２を選択的に除去し、保護されていないアンカー基、すなわち未結合ヒドロキシル基を含む固体支持体構成要素、およびキャッピングされたオリゴ１が付着した固体支持体構成要素からなる、混成固体支持体を生じる。続く工程において、第二のオリゴヌクレオチド（オリゴ２）を、慣用的な固相オリゴヌクレオチド合成、例えばホスホロアミダイト合成を介して、アセンブリする。オリゴ２のアセンブリ後、オリゴ１およびオリゴ２両方を混成支持体から切断し、そして脱保護して両オリゴヌクレオチドの混合物を提供する。オリゴヌクレオチドの意図される適用にしたがって、例えば脱塩によって、またはクロマトグラフィー精製などによって、オリゴヌクレオチド混合物をさらにプロセシングする。他のオルソゴナル保護基を含有する固体支持体構成要素の数に応じて、構成要素固体支持体上で、２以上の異なるオリゴヌクレオチドを合成することも可能である。

混成固体支持体の各固体支持体構成要素を、当該技術分野に周知の方法を通じて、別個の反応中で容易に調製する。こうした固体支持体構成要素を調製するための１つの方法は、オルソゴナル保護基を、保護されていないアンカー基上に導入することからなる。例えば、完全に本明細書に援用されるＲｅｄｄｙら（１９８７）Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔｅｒｓ ２８：２３−２６に記載されるように、トリチル化反応において、ジメトキシトリチル保護基を固体支持体構成要素のヒドロキシル基に導入することも可能である。別の例において、シリル化反応において、固体支持体構成要素のヒドロキシル基とｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル保護基を反応させる。固体支持体構成要素を調製する別の方法は、保護されたアンカー基を既に含有する装填試薬の使用に基づく。例えば、ジメトキシトリチルで保護されたヌクレオシド装填試薬、例えばＣａｒｕｔｈｅｒｓら（１９８２）Ｃｈｅｍｉｃａｌ ａｎｄ Ｅｎｚｙｍａｔｉｃ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ Ｇｅｎｅ Ｆｒａｇｍｅｎｔｓ， Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ中， Ｖｅｒｌａｇ Ｃｈｅｍｉｅ， ＧａｓｓｅｎおよびＬａｎｄ監修 ＩＳＢＮ ３−５２７−２６０６３−３に記載されるような、ヌクレオシドのＯ５’−ジメトキシトリチル−Ｏ３’―スクシネート−（４−ニトロフェニル）エステルを使用して、アミノ官能化固相から、ジメトキシトリチル保護アンカー基を伴う、あらかじめ装填された固体支持体構成要素を調製することも可能である。同様に、レブリニル保護ヌクレオシド装填試薬、例えばヌクレオシドのＯ５’−レブリニル−Ｏ３’−スクシネート−（４−ニトロフェニル）エステルを使用して、アミノ官能化固相から、レブリニル保護アンカー基を伴う、あらかじめ装填された固体支持体構成要素を調製することも可能である。

タンデム合成において、調製しようとするオリゴヌクレオチドの意図される比を反映する比の装填にしたがって、構成要素支持体を混合する。タンデム合成実行中に、構成要素の保護基の部分的な損失が予期される場合、支持体構成要素を過剰に適用することが好適である可能性もある。例えば、オルソゴナル保護基の１つとして９−フルオレニルメチルオキシカルボニル（Ｆｍｏｃ）を用いる場合、タンデム合成の経過中のＦｍｏｃ基の部分的損失を補填するため、対応するＦｍｏｃ固体支持体構成要素を２０〜４０％過剰に適用することが好適である。Ｆｍｏｃ保護の損失の度合いとともに、前記過剰の最適な量は、主に、Ｆｍｏｃ保護アンカー基の脱ブロッキング前に合成されるオリゴヌクレオチドのサイズおよび数に応じるであろう。

上述のように、均質支持体上のオルソゴナル保護基の数を増加させることによって、または混成固体支持体に、他のオルソゴナル保護基を含有するさらなる固体支持体構成要素を添加することによって、図１および２に示す例を、２より多いオリゴヌクレオチドの合成に拡張することも可能である。図１または２にしたがって付加されるオリゴヌクレオチドの連続合成に対応するため、この場合、さらなるキャッピング工程、合成工程および脱保護工程を含むように、一連の合成工程を拡張する。

タンデムオリゴヌクレオチド合成に好ましいオルソゴナル保護基は、ジメトキシトリチル（ＤＭＴ）基であり、この基は、ホスホロアミダイトが仲介するオリゴヌクレオチド合成の標準的合成周期中に除去され、そしてしたがって、タンデムオリゴヌクレオチド合成中に除去される固体支持体上のオルソゴナル保護基の最初のものであろう。ＤＭＴ基は単純なトリチル化法を用いて導入され、そして上述のように、自動化ＳＰＯＳの第一の工程の経過中に除去され、ＶＩＳ分光法を介して、脱トリチル化の進行が監視され、そしてＤＭＴ保護されたアンカー基の装填が測定されるのを同時に可能にする。上述のような、汎用リンカーのリボヌクレオシド部分の２’／３’−ジオール官能上のメトキシエチリデン保護基もまた、オルソゴナル保護基として好ましい。ホスホロアミダイトが仲介する合成の最初の酸性反応工程中に、メトキシエチリデン保護基が切断されて、１つの未結合ヒドロキシル基を持つ２’／３’−モノアセテートが生じる。あるいは、保護されていないアンカー基を、１以上のオルソゴナル保護基と組み合わせて用いることも可能である。例えば、未結合ヒドロキシル基を、１以上のオルソゴナル保護基とともに使用することも可能である。この場合、未結合ヒドロキシル基は、タンデムオリゴヌクレオチド合成の出発点に相当する。

ＤＭＴ基に、または上述のような汎用リンカーの２’／３’−シス・ジオール官能上のメトキシエチリデン基に、または保護されていないアンカー基にオルソゴナルである保護基の例には、限定されるわけではないが、穏やかな塩基性条件下で除去可能な９−フルオレニルメチルオキシカルボニル（Ｆｍｏｃ）保護基、ピリジン／酢酸緩衝液中の水酸化ヒドラジンの溶液を用いた中性条件下で除去可能な４−オキソペンタノイル（レブリニル）保護基、およびフッ化物イオンを含有する脱保護溶液を用いて除去可能なトリアルキルシリル保護基が含まれる。本明細書に記載するようなタンデムオリゴヌクレオチド合成に使用可能なオルソゴナル保護基の選択は、上に言及する例には限定されない。本明細書に定義するようなオルソゴナル保護基である他の保護基のいずれも、本発明の方法に使用可能である。しかし、同一の合成に使用するオルソゴナル保護基はすべて、オリゴヌクレオチド・アセンブリ化学反応の条件下で安定でなければならない。

記載する均質固体支持体のさらなる適用が本発明の範囲内に含まれる。例えば、合成したオリゴヌクレオチドの脱保護条件下で安定なリンカーを用いて、すべてのビーズに均質に束縛された２以上の異なるオリゴヌクレオチドを伴うビーズ調製物を、記載するように調製することも可能である。こうしたビーズ調製物は、ハイブリダイゼーションアッセイに有用である。こうした目的に用いるリンカーは、合成されたオリゴヌクレオチドの脱保護条件下で切断可能であるリンカーに比較して、より単純である可能性がある。

図３は、ホスホロアミダイト化学反応の標準的プロトコルを用いた、２つのオリゴヌクレオチドのタンデム合成における、汎用リンカーで誘導体化された均質固体支持体の使用を例示する。図３を参照すると、固体支持体上のヒドロキシルアンカー基の等しい占有率が、２’／３’−Ｏ／Ｏ−メトキシエチリデン基（ＯＣＨ_３）またはレブリニル基（Ｏｌｅｖ）いずれかで保護される。鎖伸長周期の第一の工程中に、２’／３’−Ｏ／Ｏ−メトキシエチリデン保護基を一方の側に選択的に開いて、アセチル化基および未結合ヒドロキシル基を生じ、全体として、支持体上に、未結合およびレブリニル保護ヒドロキシル基の均質な１：１分布を生じる。続く工程において、第一のオリゴヌクレオチド（オリゴ１）を、慣用的な固相オリゴヌクレオチド合成を介して、支持体上でアセンブリする。次の二工程は、標準的プロトコルとは異なり、第一に工程の順序が異なり、そして第二に、用いる試薬が異なるが、なお自動化合成装置上で実行可能である。これらの二工程の第一の工程では、標準的なＳＰＯＳのキャッピング工程で用いられるような慣用的なキャッピング試薬に支持体を供することによって、アセチル基でオリゴ１にキャッピングし、さらなる伸長を防ぐ。これらの二工程の第二の工程では、ピリジン／酢酸緩衝液中のヒドラジンの溶液で簡単に処理することによって、レブリニル基を選択的に除去し、支持体上で、未結合ヒドロキシル基およびキャッピングされたオリゴ１の均質な分布を生じる。続く工程において、自由になったヒドロキシル基上で、第二のオリゴヌクレオチド（オリゴ２）を慣用的にアセンブリする。オリゴ２の合成後、例えば脱塩工程によって、標準的脱保護／切断条件に支持体をさらして、作成された両オリゴヌクレオチドの混合物を提供する。

図４は、ホスホロアミダイト化学反応の標準的プロトコルを用いて、２つのオリゴヌクレオチドのタンデム合成における、汎用リンカーで誘導体化された混成固体支持体の使用を例示する。図４を参照すると、混成支持体は、２’／３’−Ｏ／Ｏ−メトキシエチリデン基（ＯＣＨ_３）またはレブリニル基（Ｏｌｅｖ）で保護されたヒドロキシルアンカー基の同一装填量を有する、等量の２つの固体支持体構成要素からなる。鎖伸長周期の第一の工程中に、２’／３’−Ｏ／Ｏ−メトキシエチリデン保護基を一方の側に選択的に開いて、アセチル化基および未結合ヒドロキシル基を生じる。こうして、全体として、未結合ヒドロキシル基を伴う１つの固体支持体構成要素およびレブリニル保護ヒドロキシル基を伴う第二の固体支持体構成要素からなる混成固体支持体を得る。続く工程において、第一のオリゴヌクレオチド（オリゴ１）を、慣用的な固相オリゴヌクレオチド合成を介して、支持体上でアセンブリする。続く二工程は、図３に例示する例に関して上述したのと同じ様式で、標準的プロトコルとは異なる。これらの二工程の第一の工程では、標準的なプロトコルのキャッピング工程で用いられるような慣用的なキャッピング試薬に支持体を供することによって、アセチル基でオリゴ１にキャッピングし、さらなる伸長を防ぐ。これらの二工程の第二の工程では、ピリジン／酢酸緩衝液中のヒドラジンの溶液で簡単に処理することによって、レブリニル基を選択的に除去し、未結合ヒドロキシル基を伴う固体支持体構成要素およびキャッピングされたオリゴ１を所持する固体支持体構成要素からなる固体支持体を生じる。続く工程において、自由になったヒドロキシル基上で、第二のオリゴヌクレオチド（オリゴ２）を慣用的にアセンブリする。オリゴ２の合成後、例えば脱塩工程によって、標準的脱保護／切断条件に支持体をさらして、最終的に、作成された両オリゴヌクレオチドの混合物を提供する。図３に例示する例に関して上述するように、本発明に記載する合成プロセスは、単純で、そして一般的に適用可能であるため、これらのすべての工程は、自動化合成装置上で実行可能である。

本発明の１つの態様において、最後にアセンブリされるオリゴヌクレオチドの合成中、最後の末端保護基を除去し、すなわちＤＭＴ−オフモードで合成を行い、切断／除去工程に続いて、完全に脱保護されたオリゴヌクレオチドの混合物を生じる。この未精製産物をこのまま用いることも可能であるし、またはさらなる工程、好ましくは収集作成工程、例えば、完全に本明細書に特に援用される、Ｆｉｓｃｈｅｒら（１９９０）ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ９：３００−３０１およびＰｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ ＮＡＰＴＭ−２５ Ｃｏｌｕｍｎ Ｉｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎｓに記載されるように、減圧下の脱塩および／または濃縮に供することも可能である。したがって、最終適用に直接許容されうるプライマー対などのオリゴヌクレオチドの混合物を生成するには、例えば、単一の限外ろ過実行または沈殿工程で十分である。場合によって、当該技術分野に知られるようなさらなる精製工程、例えばゲル電気泳動、ＲＰ−またはＩＥ−ＨＰＬＣを行って、精製されたオリゴヌクレオチドの個々の調製物または組み合わせた調製物を生じることも可能である。

本発明のさらに別の態様にしたがって、前記の最後の末端保護基が保持され、すなわち合成がＤＭＴ−オンモードで行われ、切断／除去工程に続いて、１以上が完全に脱保護され、そして１つが末端保護基、通常はジメトキシトリチル基になお結合しているオリゴヌクレオチド混合物が生じる。次いで、疎水性静止相上でのさらなる精製工程において、この末端保護基をハンドルとして利用して、例えば逆相カートリッジを通過させることによって、最後に合成されたオリゴヌクレオチドを残りのものから簡単に分離するのを可能にすることも可能である。最後に、各々、完全に本明細書に特に援用される、Ｊｏｈｎｓｏｎら（１９９０）ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ８：４２４−４２８およびＭｃＢｒｉｄｅら（１９８８）ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ６：３６２−３６７に記載されるように、さらなる精製工程中または工程後に、前記の末端保護基を除去する。この方式で、２つの別個のオリゴヌクレオチド調製物を単一のＳＰＯＳ実行から得ることも可能であり、例えば２つのオリゴヌクレオチドの１回のタンデム合成によって、各々１つのオリゴヌクレオチドを含有する２つの分画がアクセス可能であるか；または３メンバーのタンデム合成から１つのオリゴヌクレオチドを選び出し、プライマー対などの２つのオリゴヌクレオチドの組成物を残すことも可能である。

本発明の新規方法および支持体調製物は、重要な利点を有し、そして先行技術の方法に固有の限界に苦しまない。本明細書に記載する固体支持体は、広い範囲の適用に有用な一貫した品質の２以上のオリゴヌクレオチドの単純、円滑で、そして効率的な合成を提供する。本発明の方法は、２以上のプライマー、プローブ、二重鎖核酸断片等を使用する適用のためのオリゴヌクレオチドの費用効率的な産生を特に標的とする。本発明の方法は、ホスホロチオエート、ＲＮＡ誘導体およびロック化核酸（ＬＮＡ）、並びに例えばリンカー単位を介して１またはいくつかの色素にコンジュゲート化されたオリゴヌクレオチドの合成に容易に採用可能である。

実施例１は、汎用固体支持体８の合成を記載する。保護アンカー基を所持する、ＣＰＧに基づく汎用固体支持体８を、Ｋｕｍａｒｅｖら、ＷＯ ０１／９６３５７に記載される方法を用いて調製する。以下のスキーム１に例示するように、例えばジクロロエタン中の１％トリフルオロ酢酸で、室温で１分間、簡単に酸性処理して、８のＯ２’／Ｏ３’−メトキシエチリデン部分を、２’−ヒドロキシル／３’−アセテートまたは２’−アセテート／３’−ヒドロキシル誘導体９いずれかに変換する（ｔｒａｎｓｆｅｒ）。固体支持体９は、タンデム合成の経過中、第一のオリゴヌクレオチドのアセンブリの固体支持体構成要素としてよく適している。ＤＭＴ保護アンカー基を所持するＣＰＧ誘導体１０にも同じことが当てはまる。実施例２に記載するように、単純なトリチル化法によって、化合物９から化合物１０が得られる。

オリゴヌクレオチド合成周期に含まれる条件下で安定であるため、タンデムオリゴヌクレオチド合成の背景において、Ｆｍｏｃ基およびレブリニル保護基は、オルソゴナル保護基として有用である。対応するＣＰＧ支持体（１１）および（１２）の合成をスキーム２に概略し、そして実施例３および４に記載する。固体支持体（１１）および（１２）は、タンデムオリゴヌクレオチド合成において、固体支持体構成要素としてよく適している。例として、これらを、適切な比で固体支持体（９）と組み合わせて、固体支持体構成要素（９）上の第一のオリゴヌクレオチドの合成および固体支持体構成要素（１１）または（１２）上の第二のオリゴヌクレオチドの合成を可能にする混成固体支持体を提供することも可能である。

本発明の好ましい態様において、２つのオリゴヌクレオチドの合成のため、固体支持体構成要素（１１）または（１２）を、固体支持体構成要素（８）または（１０）との混合物中に適用して、それぞれ、固体支持体構成要素（８）または（１０）および（１１）または（１２）で構成される混成支持体を提供する。第二のオリゴヌクレオチドのアセンブリ前にＦｍｏｃまたはレブリニル基の除去工程を含む、こうしたタンデムオリゴヌクレオチド合成の一般的な方法を、実施例５に提供する。実施例５に提供する一般的な方法を用いた、オリゴヌクレオチドのタンデム合成のより具体的な例を、実施例６〜９、１１および１２に記載する。

実施例６は、固体支持体構成要素（８）および（１２）に由来する混成固体支持体を用い、実施例５に記載する一般法にしたがった、８〜１５塩基の長さを有する３つのオリゴヌクレオチドプライマー対のタンデム合成を例示する。ＲＰ−ＨＰＬＣおよびゲル電気泳動によって、すべてのオリゴヌクレオチド産物を性質決定した。ゲル電気泳動の結果を図５に示す。レーン１、２および３は、それぞれ、プライマー対１、２および３に相当する。

実施例７は、固体支持体構成要素（８）および（１２）に由来する混成固体支持体を用い、実施例５に記載する一般法にしたがった、２３量体および２５量体オリゴデオキシヌクレオチドからなる配列決定プライマー対の合成を記載する。これらのＨＰＬＣ保持時間を、標準的手段を用いて個々に調製した、対応するオリゴヌクレオチドのものと比較することによって、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ質量分光分析によって、合成した産物を解析し、そしてその同一性を検証した。電気泳動解析の結果を図６に示す。レーン４および５は、２つのタンデムに合成されたオリゴヌクレオチドの分離を示す。レーン１および２は、それぞれ、慣用的手段によって個々に合成した２３量体および２５量体に相当し、そしてレーン３は、その混合物の分離に相当する。また、均質固体支持体を用いたタンデム合成に基づく、実施例１０に特定する方法にしたがって、同じ配列決定プライマー対を得た。

実施例８は、実施例５に記載する方法で合成したプライマー対を用いたＰＣＲ実験を記載する。構成要素固体支持体（８）および（１２）を使用して、２つのプライマー対を調製した。参考オリゴヌクレオチドプライマーを個々に合成した。３つの異なる条件セット下で、すべてのＰＣＲ実験を行った。非変性条件下での電気泳動によって、生じたＰＣＲ産物を解析した。結果を図７に示す。図７を参照すると、上部ゲルセットは、３つの異なるＰＣＲ条件、Ｃ、ＤおよびＥを適用した、プライマー対＃１に関する結果を示す：レーン１〜４は、タンデムオリゴヌクレオチド合成を介して得られたプライマー対に相当し、レーン５は、各プライマーの別個の合成において、慣用的ＳＰＯＳプロトコルを通じて得られるようなプライマー対に相当し、そしてレーンＭはサイズマーカー（５０ｂｐラダー）を含有する。下部ゲルセットは、相応して、プライマー対＃２に関する結果を示す。図７に示すように、タンデムプライマーから得られるＰＣＲ産物は、すべての場合で、参考プライマーで生成したものと同一であり、そして匹敵する品質であった。

実施例９は、支持体構成要素として、メトキシエチリデン修飾汎用ＣＰＧ（１０）、Ｆｍｏｃ保護汎用ＣＰＧ（１１）、およびレブリニル保護汎用ＣＰＧ（１２）を含む三つ組混成固体支持体の調製を記載する。さらに、およそ１：１：１の比の３つのオリゴヌクレオチドｄ（Ｔ）_９、ｄ（Ｔ）_１２およびｄ（Ｔ）_１５のタンデム合成のためのこの混成支持体の使用を記載する。図８に示すように、陰イオン交換ＨＰＬＣによって、未精製産物混合物のこれらの３つの構成要素を同定し、そして性質決定した。

本発明の別の好ましい態様において、Ｆｍｏｃ保護ＣＰＧ支持体（１１）またはレブリニル保護ＣＰＧ支持体（１２）の装填を、利用可能なヒドロキシ基のおよそ５０％に調整する。生じた支持体は、実施例１０に記載するように、タンデムオリゴヌクレオチド合成に有用な均質な固体支持体である。該支持体は、タンデムオリゴヌクレオチド合成の第一のオリゴヌクレオチド合成に使用可能な、およそ５０％の保護されていないヒドロキシル基、およびタンデムオリゴヌクレオチド合成における、同一支持体上の第二のオリゴヌクレオチドの合成に使用可能な、およそ５０％のＦｍｏｃまたはレブリニル保護ヒドロキシル基を含有する。この態様において、Ｆｍｏｃまたはレブリニル保護基を導入するために適用する試薬の化学量論を通じて、Ｆｍｏｃまたはレブリニル保護された基および保護されていないヒドロキシル基の比を調整することも可能である。合成しようとする２つのオリゴヌクレオチドが異なる量で必要である場合、保護されていないヒドロキシル基に対する保護された基の比を調整する必要がある。例えば、およそ３３％の保護されたヒドロキシル基およびおよそ６６％の保護されていないヒドロキシル基の比を使用して、およそ１：２のモル比で２つのオリゴヌクレオチドを生成することも可能である。調製のためのプロトコルとともに、こうした均質固体支持体のタンデム合成における使用を実施例１０に記載する。この実施例は、およそ１：１の比の、保護されていないヒドロキシル基およびレブリニル基に保護された基で構成される、均質支持体の調製を例示する。

一工程で、タンデムに合成されたオリゴヌクレオチドプライマー対を一緒に精製する際の分取用ゲル電気泳動の有用性を実施例１１に立証する。結果を図９に示す。クロマトグラムは、精製前（図９Ａ）および精製後（図９Ｂ）の解析に相当する。図９に示す、対応するＨＰＬＣクロマトグラムからわかるように、未精製混合物は、ほぼ等しい量および高純度で両オリゴヌクレオチドを含有するプライマー対の調製物に変換される。

実施例１２は、２つのオリゴヌクレオチド対のタンデム合成を記載し、これらは各々、互いにハイブリダイズすることによって、二重鎖オリゴヌクレオチドを形成することが可能な、２つの一本鎖相補オリゴヌクレオチドで構成される。図１０に示すように、非変性ゲル電気泳動によって、二本鎖種が実際に存在し、そして一本鎖構成要素が完全に変換されたことを証明した。レーン１および２は、４０量体オリゴヌクレオチドマーカーに相当する。レーン３〜５および６〜８は、それぞれ、オリゴヌクレオチド対１および２に形成される二重鎖を例示する。

以下の実施例は、例示目的のみのために提供され、そして本発明の範囲を限定することを意図しない。

（実施例１）
汎用固体支持体（８）の調製
乾燥させた長鎖アルキル−アミノ（ＬＣＡＡ）誘導体化アミノプロピルＣＰＧ（３００ｇ、多孔度５００または１０００Å、アミン分画の装填値：１００μｍｏｌ／ｇ、＋／−２０％）を、減圧下、高速で、回転蒸発装置中、室温で２０分間、１０００ｍｌ塩化オキサリルに懸濁した。次いで、温度を１００℃に上昇させ、そして蒸留によって過剰な塩化オキサリルを除去するのに約３時間必要であった。過剰な塩化オキサリルを除去した後、新たに調製した、無水ピリジン（１２００ｍｌ）およびＮ−メチルイミダゾール（１０％、ｖ／ｖ）中のＯ２’，Ｏ３’−メトキシエチリデンイノシン（６２ｍｍｏｌ、２等量）の溶液を活性化ＣＰＧに添加して、そして蒸発が起こるように、減圧下、高速回転で２０分間、室温で反応させた。次いで、激しく攪拌しながら室温で５分間に渡って無水酢酸（１２０ｍｌ）を反応混合物に添加して、ＣＰＧ調製物（８）を提供した。この最終キャッピング工程に続いて、ガラス融解じょうご上に産物を収集し、ピリジンで数回、その後アセトニトリルで洗浄し、真空で乾燥させ、そして４℃で保存した。

試験試料中でイノシン部分を切断し（水性ＬｉＯＨ（１Ｍ）、室温で１０分間攪拌）、そして２５４ｎｍで光度定量化することによって、ＣＰＧ調製物（８）が４９μｍｏｌ／ｇの装填値を有することを計算した。

（実施例２）
２’／３’−ＤＭＴ保護汎用固体支持体（１０）の調製
実施例１に記載するように調製した誘導体化ＣＰＧ（８）を、ガラス融解じょうごに移し、そして１，２−ジクロロエタン中のＴＦＡ（１％、ｖ／ｖ）の溶液で１回、そして続いて、１、２−ジクロロエタンおよびアセトニトリル（各々３回）で洗浄して、ＣＰＧ調製物（９）を得て、これを真空で１時間乾燥させた。３４μｍｏｌの総イノシンを装填した（９）の部分に無水ピリジン（１０ｍｌ）中の塩化ジメトキシトリチル（２．５ｍｍｏｌ．７４等量）、ＤＭＡＰ（０．３１ｍｍｏｌ）およびトリエチルアミン（２．９２ｍｍｏｌ）の溶液を添加した。反応混合物を室温で２時間攪拌した。生じたＣＰＧをガラス融解じょうご上に収集し、ピリジン（４回）、アセトニトリル（３回）およびジエチルエーテル（１回）で連続して洗浄し、そして最後に真空で乾燥させて、トリチル化支持体（１０）を生じた。

（１０）に関して、試験試料中でＤＭＴ部分を切断し（１，２−ジクロロエタン中のＴＦＡ（１％、ｖ／ｖ））、次いでこれを４９８ｎｍで定量化することによって、装填値が５３μｍｏｌ／ｇであることを測定した。

（実施例３）
２’／３’−Ｆｍｏｃ保護汎用固体支持体（１１）の調製
総イノシン装填が０．３１ｍｍｏｌの誘導体化ＣＰＧ支持体（９）の一部分に、ＤＭＡＰ（１．０８ｍｍｏｌ）、９−フルオレニルメチルクロロホルメート（Ｆｍｏｃ−Ｃｌ、１８．５８ｍｍｏｌ）および無水ピリジン（１１０ｍｌ）を添加した。反応混合物を室温で２時間攪拌した。生じたＣＰＧをガラス融解じょうご上で収集し、ピリジン、メタノール（２回）およびアセトニトリル（３回）で連続して洗浄した。変換されていないヒドロキシル基にキャッピングするため、次いで、反応産物を、融解じょうご上で、等体積の無水酢酸中のＮ−メチルイミダゾール（１０％、ｖ／ｖ）および無水ピリジンの混合物と反応させた。次いで、産物、化合物（１１）を、ピリジン（２回）およびアセトニトリル（３回）で連続して洗浄し、そして真空で乾燥させた。

試験試料中でＦｍｏｃ基を切断し（ＤＭＦ中のピペリジン（２０％、ｖ／ｖ）、室温で１５分間）、次いでこれを３０１ｎｍで光度的に定量化することによって、ＣＰＧ調製物（１１）の装填値が５６μｍｏｌ／ｇであることを決定した。

（実施例４）
２’／３’−Ｌｅｖ保護汎用固体支持体（１２）の調製
総イノシン装填が５．５ｍｍｏｌの誘導体化ＣＰＧ支持体（９）の部分を、ジオキサン（７００ｍｌ）中のＤＭＡＰ（１７．８５ｍｍｏｌ）の溶液に懸濁した。ジイソプロピルカルボジイミド（５２６ｍｍｏｌ）およびレブリン酸（４２０ｍｍｏｌ）を添加し、そして反応混合物を室温で２時間攪拌した。生じたＣＰＧをガラス融解じょうご上で収集し、ジオキサン（３回）、メタノール（２回）およびアセトニトリル（３回）で連続して洗浄した。変換されていないヒドロキシル基にキャッピングするため、最後に、融解じょうご上で、等体積の無水酢酸中のＮ−メチルイミダゾール（１０％、ｖ／ｖ）および無水ピリジンの混合物と反応させた。産物、化合物（１２）を、ピリジン（２回）およびアセトニトリル（３回）で連続して洗浄し、そして真空で乾燥させた。試験試料中でイノシン部分を切断し（水性ＬｉＯＨ（１Ｍ）、室温で１０分間攪拌）、そして続いて２５４ｎｍで光度的に定量化することによって、化合物１２の装填値が６５μｍｏｌ／ｇであることを決定した。

（実施例５）
オリゴヌクレオチドのタンデム合成の一般法
以下の実施例は、オリゴヌクレオチドのタンデム合成の一般法を提供する。例示の目的のため、この実施例は、本発明の方法を用いた、一般的な固体支持体上の２つの異なるオリゴヌクレオチドの合成を記載するが、該方法は、限定されない数の異なるオリゴヌクレオチドの合成に拡張することも可能である。

自動化オリゴヌクレオチド合成の前に、固体支持体混合物を以下のように調製する：
１．ＤＭＴあるいはメトキシエチリデン修飾汎用ＣＰＧ（１０）または（８）およびレブリニル保護汎用ＣＰＧ（１２）の混合物：２つのオリゴヌクレオチドの１：１混合物（ｍｏｌ／ｍｏｌ）の合成のため、それぞれの装填値に関して、２つのＣＰＧ種の５０：５０混合物を用いた。低速、室温で、蒸発装置上の回転蒸発装置フラスコ中で、構成要素固体支持体の混合を行った。

２．ＤＭＴあるいはメトキシエチリデン修飾汎用ＣＰＧ（１０）または（８）およびＦｍｏｃ保護汎用ＣＰＧ（１１）の混合物：２つのオリゴヌクレオチドの１：１混合物（ｍｏｌ／ｍｏｌ）の合成のため、それぞれの装填値に関して、２つのＣＰＧ種の６０〜７０：４０〜３０混合物を用いた。低速、室温で、蒸発装置上の回転蒸発装置フラスコ中で、構成要素固体支持体の混合を行った。オリゴヌクレオチド合成中のＦｍｏｃ保護の部分的損失を補填するため、過剰な構成要素固体支持体（１１）を適用した。したがって、添加する（１１）の最適量は、タンデムオリゴヌクレオチド合成で最初に合成しようとする、意図されるオリゴヌクレオチドのサイズに応じる。

上述のように調製した固体支持体混合物を、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓモデル３９４合成装置の反応カラムに充填した。合成装置を１μｍｏｌ規模で用いた。第一のオリゴヌクレオチド合成後のキャッピング工程、およびそれに続くＦｍｏｃまたはレブリニル保護基いずれかの除去を例外として、装置製造者に供給される合成プロトコルにしたがい、これらの工程を、以下のように行った：
１．トリチル・オフモードでの第一のオリゴヌクレオチドの合成；
２．無水酢酸中のＮ−メチルイミダゾール（１０％、ｖ／ｖ）および無水ピリジン（６００μｌ）の混合物（１：１、ｖ／ｖ）を室温で１分間用いたオリゴヌクレオチドのキャッピング；
３．アセトニトリルでの固体支持体の洗浄；
４．固体支持体上のＦｍｏｃまたはレブリニル保護基の除去：
Ｆｍｏｃ基：ＤＭＦ（３００μｌ）中のピペリジン（２０％、ｖ／ｖ）で、室温で１分間処理
レブリニル基：ピペリジンおよび氷酢酸（３００μｌ）の混合物（３：２、ｖ／ｖ）中の水酸化ヒドラジニウムの０．５Ｍ溶液で、室温で１分間処理；
５．アセトニトリルでの固体支持体の洗浄；
６．トリチル・オフモードでの第二のオリゴヌクレオチドの合成；
７．水性ＭｅＮＨ_２（４０％、ｖ／ｖ）および水性ＮａＯＡｃ（３Ｍ）の混合物（１：１、ｖ／ｖ）で、７５℃で１時間処理することによる、固体支持体からのオリゴヌクレオチドの切断および脱保護；並びに
８．標準法にしたがったエタノール沈殿による精製。

（実施例６）
８量体〜１５量体のオリゴデオキシヌクレオチドからなるプライマー対の合成
実施例５に記載する一般法にしたがって、固体支持体構成要素（８）および（１２）由来の混成固体支持体を用い、以下のプライマー対を合成した。

１．配列：ｄ（ＧＧＧＴＧＴＴＧＴＣ）（配列番号１）およびｄ（ＧＣＴＴＡＣＡＴＴＴＴＡＧ）（配列番号２）の１０量体および１３量体プライマー対；
２．配列：ｄ（ＴＣＴＴＴＡＣＡＣＴＴＣ）（配列番号３）およびｄ（ＴＣＴＡＡＣＡＧＧＧＴＧＴＴＧ）（配列番号４）の１２量体および１５量体プライマー対；並びに
３．配列：ｄ（ＴＡＡＡＧＧＧＡ）およびｄ（ＴＴＣＴＡＧＴＴＡＴＣＧ）（配列番号５）の８量体および１２量体プライマー対。

オリゴヌクレオチドの３対すべてを、図５に示すようにゲル電気泳動（１５％アクリルアミド、２５０ワットの定電力）によって、そしてＲＰ−ＨＰＬＣ（ＶＷＲ「Ｃｈｒｏｍｏｌｉｔｈ」カラム、ＴＥＡＡ（０．０５Ｍ）／アセトニトリル勾配、２６０ｎｍで検出）によって、性質決定した。

（実施例７）
２３量体および２５量体オリゴヌクレオチド配列決定プライマー対の合成
実施例５に記載する一般法にしたがって、固体支持体構成要素（８）および（１２）由来の混成固体支持体を用い、配列決定のための以下のプライマー対を調製した：
プライマー１：ｄ（ＣＡＴＣＴＧＴＡＧＴＣＴＴＴＣＡＣＣＴＧＴＴＴ）（配列番号６）；
プライマー２：ｄ（ＡＣＣＴＣＡＣＡＡＧＡＴＧＴＴＣＡＡＡＡＧＣＣＡＴ）（配列番号７）。

ＲＰ−ＨＰＬＣおよびゲル電気泳動（どちらの分析法も、実施例６に記載するように適用した）、並びにＡＸ−ＨＰＬＣ（「Ｍｉｎｉ−Ｑ」カラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）、勾配：３０分間で２０％〜６０％の溶媒Ｂ；溶媒Ａ：アセトニトリル（２０％、ｖ／ｖ）を含む水性ＮａＯＨ（１０ｍＭ）、溶媒Ｂ：ＮａＣｌ（１Ｍ）を含む溶媒Ａ）；流速：０．４ｍｌ／分；２６０ｎｍで検出）によって、両オリゴヌクレオチドを性質決定した。

上述のＲＰ−ＨＰＬＣ系上で、両プライマー１および２を同定した。さらに、図６に示すように、電気泳動移動度を、標準的プロトコルにしたがって別個に調製した、対応するオリゴヌクレオチドのものと比較することによって、両プライマーを陽性に同定した。

また、標的分子の同一性を、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ質量分析（マトリックス：水／アセトニトリル（１：１、ｖ／ｖ）中の３−ヒドロキシピコリン酸、Ｂｒｕｋｅｒ「Ｂｉｆｌｅｘ−ＩＩＩ」質量分析計を用いる）によっても確認した：プライマー１のｍ／ｚ計算値：６９４６．５７、測定値：６９４７．４；プライマー２のｍ／ｚ計算値：７６０３．０５、測定値：７６０５。

（実施例８）
タンデムに合成されたプライマー対を適用したＰＣＲアッセイ
実施例５に記載する一般法にしたがって、固体支持体構成要素（８）および（１２）由来の混成固体支持体を用い、以下のプライマー対を合成した：
プライマー対＃１：ｄ（ＴＡＡＴＣＴＧＴＧＴＧＣＴＴＡＣＡＴＴＴＴＡＧＧＧ）（配列番号８）およびｄ（ＴＴＣＡＴＴＧＣＴＡＣＴＧＧＧＧＴＧＴＴＧＴＣ）（配列番号９）；
プライマー対＃２：ｄ（ＧＣＴＴＴＣＡＴＣＡＡＧＴＴＴＡＴＣＣＣＡＡＣＣ）（配列番号１０）およびｄ（ＣＣＣＡＴＣＡＡＴＣＴＴＴＴＴＣＴＴＴＡＣＡＣＴＴＣ）（配列番号１１）。

ＭＪ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｅｎｇｉｎｅ Ｂｌｏｃｋサーマルサイクラー中でＰＣＲ実験を行った。ＰＣＲ反応を以下のように設定した：総体積２５μｌ中に、各試験管は、各２００μＭのｄＡＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰおよびｄＴＴＰを含有する「Ｇｏｌｄ緩衝液」（最終濃度：１５ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、５０ｍＭ ＫＣｌ、ｐＨ８．０（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ））中の１単位のｔａｑポリメラーゼを含有した。

女性ヒトゲノムＤＮＡをテンプレートとして用い、そして以下の３つの異なる条件セットで、プライマー対＃１を適用したＰＣＲ実験とともにプライマー対＃２を適用したＰＣＲ実験を行った：
Ｃ：４ｍＭ ＭｇＣｌ_２、プライマー濃度０．１μＭ、１０ｎｇテンプレート；
Ｄ：４ｍＭ ＭｇＣｌ_２、プライマー濃度０．２５μＭ、１０ｎｇテンプレート；および
Ｅ：６ｍＭ ＭｇＣｌ_２、プライマー濃度０．５μＭ、２０ｎｇテンプレート。

参照目的のため、標準的オリゴヌクレオチド合成プロトコルで個々に合成したプライマーを使用して、各実験を繰り返した。反応を９５℃７分間で開始し、その後、９４℃０．５分間の変性、６１℃０．５分間のアニーリング、および７２℃０．５分間の伸長の３０周期が続いた。図７に示すように、ゲル電気泳動（エチジウムブロミドを含有する３％アガロースゲル）を通じて、ＰＣＲ産物を解析した。プライマー対＃１に関して予期される１８２ｂｐのＰＣＲ産物、およびプライマー対＃２に関して予期されるおよそ１９０〜１９５ｂｐのＰＣＲ産物の存在が、明らかに見られた（レーン１〜４）。ＰＣＲ単位複製配列（ａｍｐｌｉｃｏｎ）産物バンドは、慣用的手段によって個々に合成したプライマーで得たバンド（レーン５）と同様の強度および品質である。

（実施例９）
混成支持体を用いたオリゴデオキシヌクレオチドのタンデム合成
自動化オリゴヌクレオチド合成の前に、固体支持体混合物を以下のように調製した：
メトキシエチリデン修飾汎用ＣＰＧ（１０）、Ｆｍｏｃ保護汎用ＣＰＧ（１１）、およびレブリニル保護汎用ＣＰＧ（１２）を含む、三つ組混成支持体の調製：３つのオリゴヌクレオチドの１：１：１混合物（ｍｏｌ／ｍｏｌ／ｍｏｌ）を合成するため、各装填値に関して、３種のＣＰＧの３３：３４：３３混合物を用いた。低速、室温で、蒸発装置上、回転蒸発装置フラスコ中で、構成要素固体支持体の混合を行った。

三つ組混成支持体上の３オリゴヌクレオチドのタンデム合成：
上述のように調製した固体支持体混合物を、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓモデル３９４合成装置の反応カラムに充填した。合成装置を１μｍｏｌ規模で用いた。第一および第二のオリゴヌクレオチド合成後のキャッピング工程、並びにそれに続く、それぞれ、Ｆｍｏｃおよびレブリニル保護基の除去を例外として、装置製造者に供給される合成プロトコルにしたがい、これらの工程を、以下のように行った：
１．第一のオリゴヌクレオチド：９量体ｄ（ＴＴＴＴＴＴＴＴＴ）のトリチル・オフモードでの合成；
２．無水酢酸中のＮ−メチルイミダゾール（１０％、ｖ／ｖ）および無水ピリジン無水酢酸：Ｎ−メチルイミダゾール（６００μｌ）の混合物（１：１、ｖ／ｖ）を室温で１分間用いたこの第一のオリゴヌクレオチドのキャッピング；
３．アセトニトリルでの固体支持体の洗浄；
４．ＤＭＦ（３００μｌ）中のピペリジン（２０％、ｖ／ｖ）で、室温で１分間処理することによる、固体支持体上のＦｍｏｃ基の除去；
５．アセトニトリルでの固体支持体の洗浄；
６．第二のオリゴヌクレオチド：１２量体ｄ（ＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴ）（配列番号１２）のトリチル・オフモードでの合成；
７．無水酢酸中のＮ−メチルイミダゾール（１０％、ｖ／ｖ）および無水ピリジン無水酢酸（６００μｌ）の混合物（１：１、ｖ／ｖ）を室温で１分間用いたオリゴヌクレオチドのキャッピング；
８．アセトニトリルでの固体支持体の洗浄；
９．ピリジンおよび氷酢酸（３００μｌ）の混合物（３：２、ｖ／ｖ）中の水酸化ヒドラジニウムの０．５Ｍ溶液で、室温で１分間処理することによる、固体支持体上のレブリニル基の除去；
１０．アセトニトリルでの固体支持体の洗浄；
１１．第三のオリゴヌクレオチド：１５量体ｄ（ＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴＴ）（配列番号１３）のトリチル・オフモードでの合成；
１２．水性ＭｅＮＨ_２（４０％、ｖ／ｖ）および水性ＮａＯＡｃ（３Ｍ）の混合物（１：１、ｖ／ｖ）で、７５℃で１時間処理することによる、固体支持体からのオリゴヌクレオチドの切断および脱保護；並びに
１３．標準法にしたがったエタノール沈殿による精製。

ゲル電気泳動およびＡＸ−ＨＰＬＣによって、合成した３つのオリゴヌクレオチドを性質決定した。実施例７に記載する方法にしたがって、後者を行い、そして対応するクロマトグラムを図８に示す。

（実施例１０）
部分的にレブリニル保護されたアンカー基を伴う汎用ＣＰＧを用いた均質支持体上のタンデム合成
レブリニル基に保護されたアンカー基をおよそ５０％伴う汎用支持体の調製：総イノシン装填が６．０ｍｍｏｌの誘導体化ＣＰＧ支持体（９）の部分を、ジオキサン（７００ｍｌ）中のＤＭＡＰ（０．１５ｍｍｏｌ、０．０２４等量）の溶液に懸濁した。ジイソプロピルカルボジイミド（３．８ｍｍｏｌ、０．６３等量）およびレブリン酸（３．０ｍｍｏｌ、０．５等量）を添加し、そして反応混合物を室温で２時間攪拌した。生じたＣＰＧをガラス融解じょうご上で収集し、ジオキサン（３回）、メタノール（２回）およびアセトニトリル（３回）で連続して洗浄し、そして最後に真空で乾燥させた。

上述のように調製した均質支持体を用い、実施例５に記載する一般法にしたがって、２つのオリゴヌクレオチド：
ｄ（ＣＡＴＣＴＧＴＡＧＴＣＴＴＴＣＡＣＣＴＧＴＴＴ）（配列番号６）および
ｄ（ＡＣＣＴＣＡＣＡＡＧＡＴＧＴＴＣＡＡＡＡＧＣＣＡＴ）（配列番号７）
のタンデム合成を行った。合成したオリゴヌクレオチドを、ゲル電気泳動およびＲＰ−ＨＰＬＣによって性質決定した。

（実施例１１）
タンデム法によって合成された２つのオリゴヌクレオチドのゲル電気泳動による精製
固体支持体構成要素（８）および（１２）由来の混成固体支持体を用い、実施例５に記載する一般法にしたがって、以下のプライマー対を合成した：
プライマー１：ｄ（ＡＣＧＴＴＧＧＡＴＧＧＴＣＴＴＣＡＧＡＧＡＣＡＴＡＧＴＴＡＡＧ）（配列番号１４）および
プライマー２：ｄ（ＡＣＧＴＴＧＧＡＴＧＧＴＧＧＡＧＴＡＡＧＡＧＴＡＡＡＴＧＴＣＣ）（配列番号１５）。

ゲル電気泳動（１５％アクリルアミド、＜１００ワットの定電力）によってプライマー対を精製した。図９に示すように、ＲＰ−ＨＰＬＣによって２つのオリゴヌクレオチドを性質決定し、そしてゲル電気泳動前および泳動後に得たクロマトグラムを比較することによって、精製が成功したことを確認した。

（実施例１２）
相補オリゴヌクレオチド対をタンデムに合成することによる、オリゴヌクレオチド二重鎖の調製
固体支持体構成要素（８）および（１２）由来の混成固体支持体を用い、実施例５に記載する一般法にしたがって、以下のオリゴヌクレオチド対を合成した：
対＃１
オリゴヌクレオチド（Ａ）：ｄ（ＧＣＧＡＣＣＧＡＧＣＣＴＧＡＣＣＴＣＣＡＧＴＣＣＧ）（配列番号１６）および
オリゴヌクレオチド（Ｂ）：ｄ（ＣＧＧＡＣＴＧＧＡＧＧＴＣＡＧＧＣＴＣＧＧＴＣＧＣ）（配列番号１７）。

対＃２
オリゴヌクレオチド（Ａ）：ｄ（ＡＣＧＣＴＧＣＣＡＧＴＣＡＣＧＧＣＧＡＣＣＧＣＴＣ）（配列番号１８）
オリゴヌクレオチド（Ｂ）：ｄ（ＧＡＧＣＧＧＴＣＧＣＣＧＴＧＡＣＴＧＧＣＡＧＣＧＴ）（配列番号１９）。

図１０に示すように、非変性条件下（尿素不含）のゲル電気泳動によって、対＃１および＃２によって形成される二重鎖を性質決定した。

図１は、均質固体支持体を用いて、単回合成実行において、異なる配列の２つのオリゴヌクレオチド（オリゴ１およびオリゴ２）を提供する、タンデムオリゴヌクレオチド合成の略図である。 図２は、混成固体支持体を用いて、単回合成実行において、異なる配列の２つのオリゴヌクレオチドを提供する、タンデムオリゴヌクレオチド合成の略図である。 図３は、Ｏ２’，Ｏ３’−メトキシエチリデン部分に保護されたアンカー基およびレブリニル保護基に保護されたアンカー基を含む均質固体支持体を使用した、タンデムオリゴヌクレオチド合成の略図である。 図４は、Ｏ２’，Ｏ３’−メトキシエチリデン部分に保護されたアンカー基およびレブリニル保護基に保護されたアンカー基を含む混成固体支持体を使用した、タンデムオリゴヌクレオチド合成の略図である。 図５は、実施例６に記載するように合成したプライマー対１〜３のタンデム合成の電気泳動解析を示す。レーン１、２および３は、それぞれ、プライマー対１、２および３に相当する。 図６は、実施例７に記載するような２５量体および２３量体オリゴヌクレオチドのタンデム合成の電気泳動解析を示す。レーン４および５は、２つのタンデムに合成されたオリゴヌクレオチドの分離を示す。レーン１および２は、それぞれ、慣用手段によって個々に合成された２３量体および２５量体に相当し、そしてレーン３は、その混合物の分離に相当する。 図７は、実施例８に記載するように調製したＰＣＲ産物の電気泳動解析を示す。上部ゲルセットは、３つの異なるＰＣＲ条件、Ｃ、ＤおよびＥを適用した、プライマー対＃１に関する結果を示す：レーン１〜４は、タンデムオリゴヌクレオチド合成を介して得られたプライマー対に相当し、レーン５は、各プライマーの別個の合成において、慣用的ＳＰＯＳプロトコルを通じて得たプライマー対に相当し、そしてレーンＭはサイズマーカー（５０ｂｐラダー）を含有する。下部ゲルセットは、相応して、プライマー対＃２に関する結果を示す。 図８は、実施例９に記載するような、３つのオリゴヌクレオチドｄ（Ｔ）_９、ｄ（Ｔ）_１２およびｄ（Ｔ）_１５のタンデム合成のＡＸ−ＨＰＬＣクロマトグラムを示す。 図９ＡおよびＢは、実施例１１にしたがったＲＰ−ＨＰＬＣクロマトグラムを例示する。図９Ａおよび９Ｂのクロマトグラムは、それぞれ、分取用ゲル電気泳動を介した精製前および精製後の解析に相当する。 図１０は、実施例１２に記載するような、タンデムに合成されたオリゴヌクレオチド二重鎖の非変性条件下での電気泳動解析を示す。レーン１および２は、４０量体オリゴヌクレオチドマーカーに相当する。レーン３〜５および６〜８は、それぞれ、オリゴヌクレオチド対１および２に形成された二重鎖に関する。

Claims (50)

1. ２以上の異なるオリゴヌクレオチドの合成法であって：
   ａ）固体支持体を提供し、ここで前記固体支持体は２以上の保護基によって保護されたアンカー基で構成され、前記保護基は互いにオルソゴナルであり、前記アンカー基は第一のヌクレオチド・シントンが付着する官能基であり；
   ｂ）前記保護基の１つをアンカー基から除去し；
   ｃ）脱保護したアンカー基上でオリゴヌクレオチドを合成し；
   ｄ）合成したオリゴヌクレオチドにキャッピングし；
   ｅ）すべての保護基が脱保護されるまで、工程ｂ）〜ｄ）を反復し、ここで最後の保護基に関しては工程ｄ）を省略する；そして
   ｆ）合成したオリゴヌクレオチドを固体支持体から切断する
   工程を含む、前記合成法。
2. ２以上の異なるオリゴヌクレオチドの合成法であって：
   ａ）固体支持体を提供し、ここで前記固体支持体は、部分的に保護されていないアンカー基で構成され、残りのアンカー基は１以上の保護基によって保護され、１より多い保護基を使用する場合、保護基は互いにオルソゴナルであり、前記アンカー基は第一のヌクレオチド・シントンが付着する官能基であり；
   ｂ）保護されていないアンカー基上でオリゴヌクレオチドを合成し；
   ｃ）合成したオリゴヌクレオチドにキャッピングし；
   ｄ）１つの保護基をアンカー基から除去し；
   ｅ）脱保護したアンカー基上でオリゴヌクレオチドを合成し；
   ｆ）すべての保護基が脱保護されるまで、工程ｃ）〜ｅ）を反復し；そして
   ｇ）合成したオリゴヌクレオチドをすべて支持体から切断する
   工程を含む、前記合成法。
3. 切断したオリゴヌクレオチドを、オリゴヌクレオチドを脱保護するのに適した条件に供する工程をさらに含む、請求項１または２の方法。
4. 固体支持体が、均質固体支持体または混成固体支持体からなる群より選択される、請求項１または２の方法。
5. 固体支持体が、汎用固体支持体またはあらかじめ装填された固体支持体から選択され、ここであらかじめ装填された固体支持体は、新しく合成されたオリゴヌクレオチドの末端として作用する共有結合したヌクレオシド部分を含み、また汎用固体支持体は、カップリング反応に適用される第一のヌクレオチド・シントンが新しく合成されたオリゴヌクレオチドの末端として作用するように共有結合したヌクレオシド部分を含まない、請求項４の方法。
6. 保護基が、ジメトキシトリチル（ＤＭＴ）、メトキシエチリデン、レブリニルおよび９−フルオレニルメトキシカルボニル（Ｆｍｏｃ）からなる群より選択される、請求項１または２の方法。
7. 保護基がレブリニルおよびＦｍｏｃ、メトキシエチリデンとレブリニル、メトキシエチリデンとＦｍｏｃ、ＤＭＴとレブリニル、ならびにＤＭＴとＦｍｏｃから選択される、請求項１または２の方法。
8. 固体支持体が、無機ポリマー、有機コーティングを伴うシリカまたはＣＰＧから選択される修飾無機ポリマー、および有機ポリマーからなる群より選択される、請求項１または２の方法。
9. 前記無機ポリマーが、シリカ、アルミナ、ゼオライトおよび調節孔ガラス（ＣＰＧ）からなる群より選択される無機オキシドである、請求項８の方法。
10. 前記修飾無機ポリマーが、アミノプロピル−シラン誘導体化シリカまたはアミノプロピル−シラン誘導体化ＣＰＧからなる群より選択される、請求項８の方法。
11. 前記有機ポリマーが、ポリスチレン、ポリアクリルアミド、ポリメタクリレート、ポリビニルアルコール、およびセルロースまたはデンプンから選択される炭水化物から選択される、請求項８の方法。
12. 保護基を伴うアンカー基の比を、合成しようとする個々のオリゴヌクレオチドの意図される比にしたがって調整する、請求項１または２の方法。
13. 保護基に保護されたアンカー基を過剰に使用し、該保護基が、意図される除去工程以前の工程の間に、部分的な損失を受けると予期される、請求項１２の方法。
14. 前記損失を補填するように前記過剰を調整する、請求項１３の方法。
15. すべての工程を自動化設定で行い、前記自動化設定が、最後にアセンブリされるオリゴヌクレオチドの合成中、最後の末端保護基が除去されるＤＭＴ−オフモードおよび最後にアセンブリされるオリゴヌクレオチドの合成中、最後の末端保護基が保持されるＤＭＴ−オンモードを含む、請求項１または２の方法。
16. 最後のオリゴヌクレオチドをＤＭＴ−オフモードで合成する、請求項１５の方法。
17. 最後のオリゴヌクレオチドをＤＭＴ−オンモードで合成する、請求項１５の方法。
18. 前記のあらかじめ装填された固体支持体が、以下の式を有する請求項５の方法：
    Ｑ−Ｌ−Ｎ
    ［式中
    Ｑは固相であり；
    Ｌはリンカーであり；そして
    Ｎは合成しようとするオリゴヌクレオチドの末端ヌクレオシドを確立するヌクレオシド部分であり、該ヌクレオシド部分は以下の構造のいずれかをもつヌクレオシド部分である：
    

    

    （式中
    Ｒ_１は、−Ｈ、−ＯＨ、−Ｆ、１〜４の炭素原子を有する、場合によって置換されたアルコキシルまたはアルケノキシル基、保護アミノ基、あるいはＯＲ_２からなる群より選択され、ここでＲ_２はオリゴリボヌクレオチド合成に有用な保護基から選択される；
    Ｂは、アデニン、シトシン、グアニン、チミンおよびウラシル、またはその化学的に修飾された誘導体からなる群より選択される核酸塩基であり、ここで核酸塩基の環外アミノ基はオリゴヌクレオチド合成に有用な保護基を所持することも可能である；
    ＸおよびＹは独立に、−Ｏまたは−ＮＨから選択され、ここでＸは固体支持体のアンカー基に相当し、そしてＹは固相上のリンカーへの付着部位に相当する；そして
    ＰＧは、アンカー基が保護されていないとき、保護基またはＨである）］。
19. Ｒ_１が、−ＯＣＨ_３、−ＯＣＨ_２ＣＨ＝ＣＨ_２および−ＯＣＨ_２ＯＣＨ_２ＣＨ_２ＯＣＨ_３からなる群より選択される、請求項１８の方法。
20. Ｒ_２がｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリルである、請求項１８の方法。
21. 核酸塩基の前記環外アミノ基が、ベンゾイル、イソブチリルおよびｔｅｒｔ−ブチルフェノキシアセチル（ＴＡＣ）からなる群より選択される保護基で保護された、請求項１８の方法。
22. 汎用固体支持体が、以下の式：
    Ｑ−Ｕ
    ［式中
    Ｑは固相であり；そして
    Ｕは以下の構造：
    

    

    （式中
    Ｓは、示したフラン環の５’−ヒドロキシル基と固相（Ｑ）を共有結合的に連結する、二官能性スペーサー部分であり；
    Ｚは、アデニン、シトシン、グアニン、チミンおよびウラシル、またはその化学的に修飾された誘導体からなる群より選択される核酸塩基、ここで核酸塩基の環外アミノ基はオリゴヌクレオチド合成に有用な保護基を所持することも可能である；Ｈ；−ＯＭｅ；ヒポキサンチン、並びに汎用リンカーの官能性、および方法が含む工程すべての両方と適合する他の部分いずれかからなる群より選択され；そして
    Ｒ_３およびＲ_４は、保護基、Ｈおよびキャッピング基からなる群から選択され、ここで環の２’または３’位のいずれかにあるヒドロキシル基がアンカー基として機能する）
    を有する汎用リンカーである］
    を有する、請求項５の方法。
23. Ｓが、−Ｃ（＝Ｏ）−、オキサリル、マロニル、スクシニル、およびグルタリルからなる群より選択されるジアシル部分、メチリデン、エチリデンおよびプロピリデンから選択されるジアルキル部分、−Ｃ（＝Ｏ）−ＣＨ_２−、−ＣＨ_２−Ｃ（＝Ｏ）−、−Ｃ（＝Ｏ）−ＣＨ_２−ＣＨ_２−および−ＣＨ_２−ＣＨ_２−Ｃ（＝Ｏ）−から選択されるアルキルアシル部分、−Ｐ（＝Ｏ）（ＯＨ）−、並びに式−Ｐ（＝Ｏ）（ＯＲ_６）−（式中、Ｒ_６はリン酸保護基である）を有する化合物から選択される保護リン酸部分からなる群より選択される、請求項２２の方法。
24. 前記リン酸保護基Ｒ_６が２−シアノエチルである、請求項２３の方法。
25. 核酸塩基の前記環外アミノ基が、ベンゾイル、イソブチリルおよびｔｅｒｔ−ブチルフェノキシアセチル（ＴＡＣ）からなる群より選択される保護基で保護された、請求項２２の方法。
26. Ｒ_３およびＲ_４が：Ｒ_３がＨであり、そしてＲ_４がキャッピング基である、Ｒ_３がキャッピング基であり、そしてＲ_４がＨである；Ｒ_３が保護基であり、そしてＲ_４がキャッピング基である；Ｒ_３がキャッピング基であり、そしてＲ_４が保護基である；またはＲ_３およびＲ_４が一緒になって、フラン環の２位および３位の酸素を架橋するメトキシエチリデン部分に相当する、からなる群より選択される、請求項２２の方法。
27. 前記キャッピング基がＣＯＣＨ_３である、請求項２６の方法。
28. ２以上の独立に選択された共有結合したヌクレオシド部分を含むあらかじめ装填された均質固体支持体であって、ここで前記ヌクレオシド部分が、互いにオルソゴナルである保護基によって保護されたアンカー基を含み、前記アンカー基は第一のヌクレオチド・シントンが付着する官能基である、前記均質固体支持体。
29. ２以上の独立に選択される共有結合した汎用リンカーを含む汎用均質固体支持体であって、前記汎用リンカーが、互いにオルソゴナルである保護基で保護されたアンカー基を含み、汎用リンカーは、オリゴヌクレオチド合成の経過中、支持体にカップリングされる第一のヌクレオチド・シントンと固体支持体の固相を共有結合的に連結し、また前記アンカー基は第一のヌクレオチド・シントンが付着する官能基である、前記汎用均質固体支持体。
30. ２以上の互いにオルソゴナルである保護基を含む混成固体支持体を調製する方法であって、２以上の固体支持体を混合する工程を含み、ここで各支持体が異なる保護基で保護されたアンカー基を含み、前記アンカー基は第一のヌクレオチド・シントンが付着する官能基である、前記方法。
31. あらかじめ装填された固体支持体の混合物を含む混成固体支持体であって、前記あらかじめ装填された固体支持体の各々が、独立に選択される共有結合したヌクレオシド部分で構成され、前記ヌクレオシド部分が、互いにオルソゴナルである保護基で保護されたアンカー基を含み、前記アンカー基は第一のヌクレオチド・シントンが付着する官能基である、前記混成固体支持体。
32. 前記ヌクレオシド部分の１つのアンカー基が、場合によって保護されていない、請求項２８または３１の固体支持体。
33. 共有結合したヌクレオシド部分の各々が以下の構造のうちの１つを有する、請求項２８または３１の固体支持体：
    

    

    （式中
    Ｒ_１は、−Ｈ、−ＯＨ、−Ｆ、１〜４の炭素原子を有する、場合によって置換されたアルコキシルまたはアルケノキシル基、保護アミノ基、あるいはＯＲ_２からなる群より選択され、ここでＲ_２はオリゴリボヌクレオチド合成に有用な保護基から選択される；
    Ｂは、アデニン、シトシン、グアニン、チミンおよびウラシル、またはその化学的に修飾された誘導体からなる群より選択される核酸塩基であり、ここで核酸塩基の環外アミノ基はオリゴヌクレオチド合成に有用な保護基を所持することも可能である；
    ＸおよびＹは独立に、−Ｏまたは−ＮＨから選択され、ここでＸは固体支持体のアンカー基に相当し、そしてＹは固相上のリンカーへの付着部位に相当する；そして
    ＰＧは保護基である）］。
34. Ｒ_１が、−ＯＣＨ_３、−ＯＣＨ_２ＣＨ＝ＣＨ_２および−ＯＣＨ_２ＯＣＨ_２ＣＨ_２ＯＣＨ_３からなる群より選択される、請求項３３の固体支持体。
35. Ｒ_２がｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリルである、請求項３３の固体支持体。
36. 核酸塩基の前記環外アミノ基が、ベンゾイル、イソブチリルおよびｔｅｒｔ−ブチルフェノキシアセチル（ＴＡＣ）からなる群より選択される保護基で保護された、請求項３３の固体支持体。
37. 保護基が、ＤＭＴ、レブリニルおよびＦｍｏｃから選択される、請求項２８または３１の固体支持体。
38. 汎用固体支持体の混合物を含む混成固体支持体であって、前記汎用固体支持体の各々が、独立に選択される共有結合した汎用リンカーで構成され、前記の汎用リンカーが、互いにオルソゴナルである保護基で保護されたアンカー基を含み、汎用リンカーは、オリゴヌクレオチド合成の経過中、支持体にカップリングされる第一のヌクレオチド・シントンと固体支持体の固相を共有結合的に連結し、また前記アンカー基は第一のヌクレオチド・シントンが付着する官能基である、前記混成固体支持体。
39. 前記汎用リンカーの１つのアンカー基が、場合によって保護されていない、請求項３８の固体支持体。
40. 汎用リンカーが、以下の構造：
    

    

    （式中
    Ｓは、示したフラン環の５’−ヒドロキシル基と固相（Ｑ）を共有結合的に連結する、二官能性スペーサー部分であり；
    Ｚは、アデニン、シトシン、グアニン、チミンおよびウラシル、またはその化学的に修飾された誘導体からなる群より選択される核酸塩基、ここで核酸塩基の環外アミノ基はオリゴヌクレオチド合成に有用な保護基を所持することも可能である；Ｈ；−ＯＭｅ；ヒポキサンチン、並びに汎用リンカーの官能性、および方法が含む工程すべての両方と適合する他の部分いずれかからなる群より選択され；そして
    Ｒ_３およびＲ_４は、保護基、Ｈおよびキャッピング基からなる群から選択され、ここで環の２’または３’位のいずれかにあるヒドロキシル基がアンカー基として機能する）
    を有する、請求項３８の固体支持体。
41. Ｓが、−Ｃ（＝Ｏ）−、オキサリル、マロニル、スクシニル、およびグルタリルからなる群より選択されるジアシル部分、メチリデン、エチリデンおよびプロピリデンから選択されるジアルキル部分、−Ｃ（＝Ｏ）−ＣＨ_２−、−ＣＨ_２−Ｃ（＝Ｏ）−、−Ｃ（＝Ｏ）−ＣＨ_２−ＣＨ_２−および−ＣＨ_２−ＣＨ_２−Ｃ（＝Ｏ）−から選択されるアルキルアシル部分、−Ｐ（＝Ｏ）（ＯＨ）−、並びに式−Ｐ（＝Ｏ）（ＯＲ_６）−、式中、Ｒ_６はリン酸保護基である、を有する化合物から選択される保護リン酸部分からなる群より選択される、請求項４０の固体支持体。
42. 前記リン酸保護基Ｒ_６が２−シアノエチルである、請求項４１の固体支持体。
43. 核酸塩基の前記環外アミノ基が、ベンゾイル、イソブチリルおよびｔｅｒｔ−ブチルフェノキシアセチル（ＴＡＣ）からなる群より選択される保護基で保護された、請求項４０の固体支持体。
44. Ｒ_３およびＲ_４が：Ｒ_３がＨであり、そしてＲ_４がキャッピング基である、Ｒ_３がキャッピング基であり、そしてＲ_４がＨである；Ｒ_３が保護基であり、そしてＲ_４がキャッピング基である；Ｒ_３がキャッピング基であり、そしてＲ_４が保護基である；またはＲ_３およびＲ_４が一緒になって、フラン環の２位および３位の酸素を架橋するメトキシエチリデン部分に相当する、からなる群より選択される、請求項４０の固体支持体。
45. 前記キャッピング基がＣＯＣＨ_３である、請求項４４の固体支持体。
46. 保護基が、メトキシエチリデン、ＤＭＴ、レブリニルおよびＦｍｏｃから選択される、請求項３８の固体支持体。
47. 混成固体支持体が、２つの構成要素で構成され、これらがそれぞれ、保護基、メトキシエチリデンおよびレブリニルで保護されている、請求項４６の固体支持体。
48. 混成固体支持体が、２つの構成要素で構成され、これらがそれぞれ、保護基、ＤＭＴおよびレブリニルで保護されている、請求項４６の固体支持体。
49. 固体支持体が、２つの構成要素で構成され、前記の第一の構成要素のアンカー基が保護されておらず、そして前記の第二の構成要素のアンカー基がレブリニル保護基で保護されている、請求項３９の混成固体支持体。
50. 固体支持体が、２つの構成要素で構成され、前記構成要素がそれぞれ、保護基、メトキシエチリデンおよびＦｍｏｃで保護されている、請求項３９の混成固体支持体。

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