JP4686712B2 - スギ花粉アレルゲンの高次構造ＩｇＥエピトープを含むペプチドおよびその利用 - Google Patents

Description

本発明は、スギ花粉アレルゲンの高次構造ＩｇＥエピトープを含むペプチド、そのペプチドと結合する抗体、およびそのペプチドをコードするポリヌクレオチド、並びにそれらの代表的利用に関するものである。

スギ花粉症は、第二次世界大戦後に植林された大量のスギ林から早春に飛散する花粉を吸入することによって起こる即時型アレルギーであり、近年の恒温で気密性に富む居住環境、環境汚染、ストレスの増加などの要因から患者が急増している。特に、働き盛りの成年層の患者が多く存在し、深刻な社会問題となっている。これまでその対策としては、一時的な対症療法からスギ花粉抗原を用いた減感作療法まで各種行なわれてきているが、ホヤ喘息，ハチ毒アレルギーで得られたような著しい症状の改善例が少ないのが現状である。

スギ花粉症は、１９６４年、堀口、斎藤らによって見いだされ、安枝ら（非特許文献１参照）によってCry j 1が、坂口ら（非特許文献２参照）によってCry j 2が、スギ花粉主要抗原（スギ花粉主要アレルゲン）として同定された。Cry j 1はペクテートリアーゼ活性を示す分子量４５，０００〜５０，０００、等電点８．５〜９の糖タンパク質で、花粉中の含量は採集された地域間変動が少なく、１００ｇ当たり２７〜３５ｍｇである。モノクローナル抗体を用いたエピトープ解析の結果から、Cry j 1 の免疫グロブリンＥ（ＩｇＥ）抗体に対するエピトープ（以下、適宜「ＩｇＥエピトープ」という）は、ペプチド部分に少なくとも５ヶ所存在するということが分かっている（非特許文献３参照）。

かかるＩｇＥエピトープとしては、二つのタイプが存在し、一つはタンパク質のある特定なアミノ酸配列（一次構造）上にあるもの（シークエンシャルエピトープ）であり、もう一つは高次構造上にある高次構造エピトープ（コンフォーメーショナルエピトープ）である。アレルゲン分子の一次構造上にあるエピトープ構造（シークエンシャルエピトープ）は、比較的容易に同定することができる。しかしＩｇＥ抗体は、そのほとんど天然のアレルゲン分子の高次構造（立体配置）を認識するために、当該高次構造の特定の部位がそのままエピトープとなる場合が多い。すなわちＩｇＥエピトープの大多数が、高次構造エピトープ（コンフォーメーショナルエピトープ）であるといっても過言でない。

高次構造ＩｇＥエピトープ（コンフォーメーショナルＩｇＥエピトープ）を解析する方法としては、主に二つの方法が知られている。一つはＸ線による結晶解析であり、もう一つはＮＭＲを用いた解析である。前者のＸ線解析を用いる方法ではアレルゲンを結晶化する必要があり、高度な結晶化技術と大量のアレルゲン（１０ｍｇ以上）が必要であるという問題点がある。一方、ＮＭＲを用いる方法では、溶液状態で解析可能であるが、アレルゲン中のアミノ酸を点変換して立体配置の変化と活性を測定し、コンフォーメーショナルＩｇＥエピトープを同定していく必要があり、そのためには、リコンビナントアレルゲンを天然のアレルゲンと同じ立体構造をもった状態で生産しなければならない。高等生物由来のアレルゲンは、さまざまな修飾を受けているので、天然のアレルゲンと同じ立体構造を備えるリコンビナントアレルゲンを生産することは至難の業である。したがって、現在でもアレルゲン分子の高次構造ＩｇＥエピトープ（コンフォーメーショナルＩｇＥエピトープ）の構造決定は、極めて困難であるといえる。

スギ花粉主要アレルゲン（Cry j 1 および Cry j 2 ）についてＩｇＥエピトープの解析が行われており、シークエンシャルＩｇＥエピトープについてはいくつか報告されているが（Cry j 1 については非特許文献４参照、Cry j 2 については例えば特許文献１参照）、高次構造ＩｇＥエピトープ（コンフォーメーショナルＩｇＥエピトープ）については、いまだに同定されていないのが現状である。

１価のＩｇＥエピトープは、アレルギー反応の抑制に有効であることが知られており、アレルギー治療薬、改善薬としての利用が期待されている。１価のＩｇＥエピトープによるアレルギー反応の抑制は、肥満細胞または好塩基球上のＩｇＥ分子と１価のＩｇＥエピトープとが結合し、天然型アレルゲン分子の多価エピトープによるＩｇＥ分子架橋の形成を阻害することによるものであると考えられている。
H. Yasueda, Y. Yui, T. Shimizu et al. :J. Allergy Clin. Immunol., 71, 77(1983). M. Sakaguchi, S. Inoue, M. Taniai, S. Ando et al.: Allergy, 45, 309(1990). M. Sakaguti, M. Hashimoto, H. Nigi et al. : Immunology, 91, 161 (1997). Taniai M, Kayano T, Takakura R, Yamamoto S, Usui m, Ando Kurimoto M, Panzani R, Matuhasi T. Mol Immunol. 1993; 30:183-9. 特開平８−４７３９２号公報（公開日：平成８年（１９９６）２月２０日）

スギ花粉主要アレルゲン（Cry j 1 、Cry j 2 ）のＩｇＥエピトープの大多数は、シークエンシャルエピトープではなく、高次構造エピトープ（コンフォーメーショナルエピトープ）であるということが知られている。上述の通り、高次構造エピトープの同定は困難であり、スギ花粉主要アレルゲン（Cry j 1 、Cry j 2 ）のＩｇＥエピトープの大多数は未知のままである。したがって、スギ花粉症のメカニズムの解明や、ＩｇＥエピトープを用いたスギ花粉症の改善薬、治療薬の開発を十分に行なうことができないという問題点がある。

本発明は、上記の問題点に鑑みてなされたものであり、スギ花粉アレルゲンのＩｇＥエピトープのうち、特に高次構造エピトープ（以下「高次構造ＩｇＥエピトープ」という）を含むペプチド、そのペプチドをコードするポリヌクレオチド、およびそのペプチドと結合する抗体を提供すること、並びにそれらを用いてスギ花粉症の治療薬、診断キット等を提供することを目的としている。

本発明者らは、上記課題を解決すべく、あらゆるアミノ酸の組み合わせのペプチドを発現することができるファージを用い、スギ花粉症患者由来ＩｇＥ抗体と結合することができるペプチドの検索を行なった。その結果、高次構造ＩｇＥエピトープを含むペプチドを発見し、本発明を完成させるに至った。

すなわち本発明にかかるペプチドは、上記課題を解決すべく、スギ花粉アレルゲンの高次構造ＩｇＥエピトープを含むペプチドである。

また本発明にかかるペプチドは、上記課題を解決すべく、上記スギ花粉アレルゲンが、Cry j 1であってもよい。

また本発明にかかるペプチドは、上記課題を解決すべく、配列番号２に示されるアミノ酸配列を有し、かつスギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合することを特徴とするペプチドであってもよい。

また本発明にかかるペプチドは、上記課題を解決すべく、配列番号３に示されるアミノ酸配列を有し、かつスギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合することを特徴とするペプチドであってもよい。

また本発明にかかるペプチドは、上記課題を解決すべく、配列番号８に示されるアミノ酸配列を有し、かつスギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合することを特徴とするペプチドであってもよい。

また本発明にかかるペプチドは、上記課題を解決すべく、配列番号９に示されるアミノ酸配列を有し、かつスギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合することを特徴とするペプチドであってもよい。

また本発明にかかるペプチドは、上記課題を解決すべく、配列番号１０に示されるアミノ酸配列を有し、かつスギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合することを特徴とするペプチドであってもよい。

一方、本発明にかかる抗体は、上記課題を解決すべく、上記本発明にかかるペプチドのいずれかと結合するものである。

一方、本発明にかかるポリヌクレオチドは、上記課題を解決すべく、上記本発明にかかるペプチドのいずれかをコードすることを特徴とするものである。

一方、本発明にかかる薬学的組成物は、上記課題を解決すべく、上記本発明にかかるペプチドのいずれかを有効成分として含有するものである。

また、本発明にかかる薬学的組成物は、上記課題を解決すべく、上記いずれかに記載の本発明にかかるペプチドを有効成分として含有するものであってもよい。

一方、本発明にかかるスギ花粉症の診断キットは、上記課題を解決すべく、上記本発明にかかるペプチドのいずれかを含むことを特徴とするものである。

また、本発明にかかるスギ花粉症の診断方法は、上記課題を解決すべく、上記本発明にかかるペプチドのいずれかと被験者の血清とを反応させる工程を含むことを特徴としている。

本発明によれば、これまで未知であったスギ花粉アレルゲンの高次構造ＩｇＥエピトープを含むペプチドを提供することができる。それゆえ、スギ花粉症の発症および抑制のメカニズムの解明、スギ花粉症の有効な治療薬および改善薬の提供、並びにスギ花粉症の診断手段の提供を行なうことが可能となり、スギ花粉症の根治に寄与することができるという効果を奏する。

本発明の実施の形態について説明すれば、以下のとおりである。なお、本発明はこれに限定されるものではない。

＜１．本発明にかかるペプチド＞
本発明にかかるペプチドは、既述の通り、スギ花粉アレルゲン（例えば、Cry j 1 、Cry j 2等）のＩｇＥエピトープのうち、高次構造ＩｇＥエピトープを含有することを特徴とするものである。

ここで「ＩｇＥエピトープ」は、「Ｂ細胞エピトープ」または単に「エピトープ（抗原決定基）」とも呼ばれ、ＩｇＥ抗体が認識するアレルゲン（抗原）上の部位を意味する。特に本発明にかかるペプチドに含まれる「高次構造ＩｇＥエピトープ」は、「シーケンシャルＩｇＥエピトープ」、すなわちスギ花粉アレルゲンのアミノ酸配列中にそのアミノ酸配列があり、かつスギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合することが可能なものとは異なるタイプのエピトープである。

図６（ａ）にシーケンシャルＩｇＥエピトープを、図６（ｂ）にコンフォーメーショナルＩｇＥエピトープを示す模式図を示す。シーケンシャルＩｇＥエピトープは、アレルゲンのアミノ酸配列（１次配列）を抗体が認識するものであり、当該エピトープのアミノ酸配列はアレルゲンのアミノ酸配列（１次構造）上の存在する。一方、高次構造ＩｇＥエピトープは、アレルゲンが立体構造（高次構造）をとることによってはじめて出現するエピトープである。したがって、「高次構造ＩｇＥエピトープ」とは、アレルゲンのエピトープのうち、そのアミノ酸配列がアレルゲンタンパク質のアミノ酸配列上に存在するＩｇＥエピトープを除くもの（すなわち「シーケンシャルＩｇＥエピトープ」）ということもできる。

上述の通り、かかる高次構造ＩｇＥエピトープは、アレルゲンが立体構造をとることによって始めて出現するエピトープであるため、アレルゲンのアミノ酸配列（１次構造）の情報から解析および同定することは非常に困難である。本発明者らは、あらゆる組み合わせのペプチドを提示するファージを用いて、かかる高次構造ＩｇＥエピトープの解析を行なうこととした。上記あらゆる組み合わせのペプチドを提示するファージおよびそのファージライブラリーとしては、特に限定されるものではなく、公知のファージディスプレイ法の原理を用いてＭ１３ファージの先端表面にファージのｇ３ｐ（gene 3 protein）との融合タンパク質としてペプチドを提示させるようにしたものを使用すればよい。このようなあらゆる組み合わせのペプチドを提示するファージライブラリーキットが既に市販されており、たとえばPh.D.12^TMPhage Display Peptide Library Kit （BioLabs Inc.製）が利用可能である。当該Ph.D.12^TMPhage Display Peptide Library Kit （BioLabs Inc.製）は、任意の１２アミノ酸からなるペプチドをファージ表面に提示するものである。

本発明者らは、スギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合可能なファージの選抜をまず行なった。かかるファージが提示するペプチド中には、少なくともエピトープの存在が予想される。次に本発明者らは、スギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合可能なファージが提示するペプチドのアミノ酸配列が、スギ花粉アレルゲンのアミノ酸配列中に存在するか否かを検討した。スギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合可能なペプチドのアミノ酸配列が、スギ花粉アレルゲンのアミノ酸配列中に存在しないものであれば、当該ペプチドは高次構造ＩｇＥエピトープを含むペプチド、すなわち本発明にかかるペプチドである判断できる。本発明にかかるペプチドは上記手法により、発見したものである。

なお本発明にかかるにかかるペプチドは、上記手法により発見されたものに限られず、その他任意のペプチドを化学合成等で調製したものと、スギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体との結合性、および当該ペプチドのアミノ酸配列を指標に見出したものであってもよい。

本発明の説明において「スギ花粉アレルゲン」とは、スギ花粉症の原因となるアレルゲン（抗原）であれば特に限定されるものではなく、例えば、主要抗原として公知のCry j 1 、Cry j 2、およびその他の抗原としてCry j 3, CJP-6, CJP-4等が挙げられる。なお、Cry j 3 については[ Futamura N, Mukai Y, Sakaguchi M, Yasueda H, Inouye S, et al. Biosci Biotechnol Biochem 2002;66:2495-2500.]、CJP-6 については[Kawamoto S, Fujimura T, Nishida M, Tanaka T, Aki T et al; Cli Exp Allergy 2002;32:1064-1070.]、CJP-4については[ Fujimura T, Shigeta S, Suwa T, Kawamoto S, Aki T et al. Clin Exp Allergy 2005 inpress.]に記載されている。上記スギ花粉アレルゲンのアミノ酸配列は、既に公開されているアミノ酸配列情報を利用すればよい。例えば、Cry j 1のアミノ酸配列は、DNA Data Bank of Japan（ＤＤＢＪ：http://www.ddbj.nig.ac.jp）に、アクセッション番号 D34639、Cry j 2のアミノ酸配列はアクセッション番号 D37765として公開されている。なお、上記Cry j 1のアミノ酸配列を配列番号１に示した。またその他、Cry j 1 のアミノ酸配列はいくつか報告されており、例えばSwiss-Prot(http://kr.expasy.org/cgi-bin/get-sprot-entry?P18632)に公開されている。またNCBI（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?CMD=search&DB=protein）上に、アクセッション番号 JC2124、JC2123、およびP18632として公開されている。

また「スギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体」とは、スギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体、スギ花粉症患者由来Ｂ細胞（B cell）上のＩｇＥ抗体、およびスギ花粉症患者由来肥満細胞上のＩｇＥ抗体を意味する。なお「スギ花粉症患者」とは、スギ花粉アレルゲンに感作され、スギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体を体内で産生するヒトのことを意味し、スギ花粉症を発症したか否かは特に問わない。またスギ花粉症を発症している場合であっては、その症状の程度については問わない。

本発明にかかるペプチドとしては、例えば、スギ花粉主要アレルゲンCry j 1 から見出したペプチド（「ペプチド２６−２」、「ペプチド２６−３」、「ペプチドＳ９５−１」、「ペプチドＢ０７−８」および「ペプチドＢ０７−９」）が挙げられる。当該ペプチド２６−２、ペプチド２６−３、ペプチドＳ９５−１、ペプチドＢ０７−８、およびペプチドＢ０７−９は既述のPh.D.12^TMPhage Display Peptide Library Kit （BioLabs Inc.製）を利用して見出したものであり、簡単には、以下のようにした。

まず、あらゆる１２アミノ酸からなるペプチドを提示するＭ１３ファージからなるファージライブラリーに対して、抗Cry j 1モノクローナル抗体（商品名：Ab-Cry j 1, Monoclonal Antibody (clone 026 ),発売元：生化学工業株式会社，以下「Cry j 1モノクローナル抗体０２６」と称する））を用いて合計６回Panningを行なった。６回目のPanningで得られたファージから任意に選択したファージの中からCry j 1モノクローナル抗体０２６との結合性が高いファージをＥＬＩＳＡ（Enzyme-Linked Immuno-Sorbent Assay）を用いて検討を行ない、確かな結合性を示した「ペプチド２６−２」および「ペプチド２６−３」を提示するファージを選抜した（当該ファージをそれぞれ「ファージ２６−２」および「ファージ２６−３」という）。ファージ２６−２、およびファージ２６−３についてＥＬＩＳＡ inhibition を用いてさらに検討したところ、ファージ２６−２の方がファージ２６−３よりもCry j 1モノクローナル抗体０２６に対する結合性（反応性）が高いということが分かった。ファージ２６−２が提示するペプチド２６−２のアミノ酸配列を検討した結果、ＨＬＰＰＳＹＹＬＳＲＮＮ（配列番号２）であった。またペプチド２６−３のアミノ酸配列はＨＰＤＦＤＬＮＲＳＬＭＤ（配列番号３）であった。

また本発明者らが作製したCry j 1モノクローナル抗体Ｓ９５（Sakaguchi M, Hashimoto M, Nigi H, Yasueda H, Takahashi Y, Watanabe M, Nagoya T, Taniguchi Y, Kurimoto M, Inouye S., Immunology. 1997 Jun;91(2):161-6. “Epitope specificity of IgE antibodies to a major allergen (Cry j 1) of Japanese cedar pollen in sera of humans and monkeys with pollinosis.”参照）をPanningに用い、上記と同様の操作を行なってペプチドＳ９５−１を発見した。ペプチドＳ９５−１のアミノ酸配列は、ＴＹＳＰＦＨＳＦＴＳＩＰ（配列番号８）であった。

さらに本発明者らが作製したCry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７（Sakaguchi M, Hashimoto M, Nigi H, Yasueda H, Takahashi Y, Watanabe M, Nagoya T, Taniguchi Y, Kurimoto M, Inouye S., Immunology. 1997 Jun;91(2):161-6. “Epitope specificity of IgE antibodies to a major allergen (Cry j 1) of Japanese cedar pollen in sera of humans and monkeys with pollinosis.”参照）をPanningに用い、上記と同様の操作を行なってペプチドＢ０７−８、ペプチドＢ０７−９を発見した。ペプチドＢ０７−８のアミノ酸配列はＮＥＹＱＡＰＰＨＷＴＫＫ（配列番号９）であり、ペプチドＢ０７−９のアミノ酸配列はＬＰＲＹＳＦＰＶＱＡＰＶ（配列番号１０）であった。

上記ペプチド２６−２、ペプチド２６−３、ペプチドＳ９５−１、ペプチドＢ０７−８、およびペプチドＢ０７−９を公知のペプチド合成装置を用いて化学合成した。化学合成により入手したペプチド２６−２とCry j 1モノクローナル抗体０２６との結合性をＥＬＩＳＡ inhibition を用いて確認した上で、スギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体との結合性を同方法にて確認した。その結果、ペプチド２６−２は、スギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体と結合するということが分かった。配列番号２に示されるペプチド２６−２のアミノ酸配列は、Cry j 1 のアミノ酸配列上（配列番号１）には存在せず、当該ペプチド２６−２は高次構造ＩｇＥエピトープを含むペプチドであるということが分かった。配列番号２に示されるペプチド２６−２のアミノ酸配列が、Cry j 1 のアミノ酸配列上（配列番号１）には存在するかどうかの検討は、公知のソフトウエアを用いることによって容易に検討することができる。上記ペプチド２６−２の選抜、Cry j 1モノクローナル抗体０２６との結合性の検討、およびスギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体との結合性については、後述する実施例においてより具体的に説示する。

また化学合成により入手したペプチドＳ９５−１と抗Cry j 1モノクローナル抗体Ｓ９５との結合性をＥＬＩＳＡ inhibition を用いて確認した上で、スギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体との結合性をＥＬＩＳＡ法にて確認した。その結果、ペプチドＳ９５−１は、スギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体と強く結合するということが分かった。配列番号８に示されるペプチドＳ９５−１のアミノ酸配列は、Cry j 1 のアミノ酸配列上（配列番号１）には存在せず、当該ペプチドＳ９５−１は高次構造ＩｇＥエピトープを含むペプチドであるということが分かった。配列番号８に示されるペプチドＳ９５−１のアミノ酸配列が、Cry j 1 のアミノ酸配列上（配列番号１）には存在するかどうかの検討は、公知のソフトウエアを用いることによって容易に検討することができる。上記ペプチドＳ９５−１の選抜、Cry j 1モノクローナル抗体Ｓ−９５との結合性の検討、およびスギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体との結合性については、後述する実施例においてより具体的に説示する。

また化学合成により入手したペプチドＢ０７−９と抗Cry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７との結合性をＥＬＩＳＡ inhibition を用いて確認した上で、スギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体との結合性をＥＬＩＳＡ法にて確認した。その結果、ペプチドＢ０７−９は、スギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体と結合するということが分かった。配列番号１０に示されるペプチドＢ０７−９のアミノ酸配列は、Cry j 1 のアミノ酸配列上（配列番号１）には存在せず、当該ペプチドＢ０７−９は高次構造ＩｇＥエピトープを含むペプチドであるということが分かった。配列番号１０に示されるペプチドＢ０７−９のアミノ酸配列が、Cry j 1 のアミノ酸配列上（配列番号１）には存在するかどうかの検討は、公知のソフトウエアを用いることによって容易に検討することができる。上記ペプチドＢ０７−９の選抜、Cry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７との結合性の検討、およびスギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体との結合性については、後述する実施例においてより具体的に説示する。

また、ペプチド２６−３、ペプチドＢ０７−８についても同様に検討を行なえば、スギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体と結合するということが確認できる。さらにそのアミノ酸配列情報（ペプチド２６−３：配列番号３、ペプチドＢ０７−８：配列番号９）から、ペプチド２６−３およびペプチドＢ０７−８も高次構造ＩｇＥエピトープを含むペプチドであるということが確認できる。

なお本発明にかかるペプチドは、配列番号２に示されるアミノ酸配列からなるペプチド２６−２、配列番号３に示されるアミノ酸配列からなるペプチド２６−３、配列番号８に示されるアミノ酸配列からなるペプチドＳ９５−１、配列番号９に示されるアミノ酸配列からなるペプチドＢ０７−８、および配列番号１０に示されるアミノ酸配列からなるペプチドＢ０７−９のみに限定されるものではなく、配列番号２、３、８、９または１０に示されるそれぞれのアミノ酸の一部がスギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体との結合性（結合性）を有する限りにおいて、置換、欠失したペプチドであっても、また任意のアミノ酸が付加されたペプチドであってもよい。

また本発明にかかるペプチドは、上記ペプチド２６−２、ペプチド２６−３、ペプチドＳ９５−１、ペプチドＢ０７−８、およびペプチドＢ０７−９に限られるものではなく、上記同様の方法を用いて見出したCry j 1 の高次構造ＩｇＥエピトープを含有する他のペプチドをも含む。また上記Panningの際にCry j 2に対する抗体（モノクローナル抗体）、Cry j 3に対する抗体（モノクローナル抗体）、CJP-6に対する抗体（モノクローナル抗体）、およびCJP-4に対する抗体（モノクローナル抗体）を用いることによって、それぞれCry j 2、Cry j 3、CJP-6 および CJP-4の高次構造ＩｇＥエピトープを含むペプチドを取得することができる。よって、上記Cry j 2、Cry j 3、CJP-6、およびCJP-4の高次構造ＩｇＥエピトープを含むペプチドも本発明にかかるペプチドである。

なお上記Ph.D.12^TM Phage Display Peptide Library Kit （BioLabs Inc.製）を用いて見出した本発明にかかるペプチドは、１２アミノ酸からなるものであるが、本発明のペプチドはこれに限定されるものではない。本発明のペプチドは、少なくとも高次構造ＩｇＥエピトープを含有するものであればよい。したがって、高次構造ＩｇＥエピトープのみからなるペプチドであっても、高次構造ＩｇＥエピトープにエピトープ構造に影響を及ぼさないアミノ酸（例えば、グリシン、リジン等）がＮ末端側、Ｃ末端側に付加されたペプチドでも、本発明のペプチドに包含される。

高次構造ＩｇＥエピトープのアミノ酸配列を特定する方法としては、例えば本発明にかかるペプチド（例えばペプチド２６−２、ペプチド２６−３、ペプチドＳ９５−１、ペプチドＢ０７−８、およびペプチドＢ０７−９等）から任意のペプチド断片を調製し、スギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合する必須のアミノ酸領域を絞り込むという方法が挙げられる。

なお、本発明にかかるペプチドには１価のＩｇＥエピトープを含有していることが好ましい。ここで「１価のＩｇＥエピトープ」とは、ＩｇＥ抗体と結合するＩｇＥエピトープが１つ含まれるということを意味する。これに対して多価のＩｇＥエピトープとは、ＩｇＥ抗体と結合するＩｇＥエピトープが複数含まれるということを意味する。１価のＩｇＥエピトープを含有する本発明にかかるペプチドを、スギ花粉症治療薬、スギ花粉症改善薬等に利用することによって、肥満細胞または好塩基球上のＩｇＥ分子と１価のＩｇＥエピトープとが結合し、天然型アレルゲン分子の多価エピトープによるＩｇＥ分子架橋の形成を阻害することができ、ヒスタミン等の化学メディエーターの放出を抑制することができる。

＜２.本発明にかかるペプチドの調製方法、および本発明にかかるポリヌクレオチド＞
ところで、本発明にかかるペプチドは、「固相法」または「液相法」として知られる斯界において慣用のペプチド合成法により調製することができる。例えば、社団法人日本生化学会編「新生化学実験講座」、第１巻、「タンパク質ＶＩ」、第３〜４４頁、１９９２年、東京化学同人発行などにはペプチド合成の詳細が記載されている。また、該ペプチドは、マルチペプチドシンセサイザー（シンフォニー、プロテインテクノロジー社製）を用い、Fmoc (9-fluorenyl methyloxycarbonyl)固相合成法にて同装置のプロトコールに従って合成することができる。すなわち、合成する各ペプチドのＣ末端に相当するアミノ酸が導入されているFmoc-L-アミノ酸Wang樹脂（またはCl-Trt樹脂）を上記ペプチド合成装置の反応容器にセットし、デプロテクション溶液を用いてFmocを除く。さらにＣ末端から２番目のアミノ酸に相当するアミノ酸溶液とアクチベーター溶液を反応せしめ、反応後再びFmoc基のデプロテクションを行ない、同様の操作を繰り返すことにより、目的とするペプチドを合成することができる。

本発明にかかるペプチドは化学合成により調製されたものに限定されず、組換えＤＮＡ技術により調製したものであってもよく、例えば、上記ペプチド２６−２、ペプチド２６−３、ペプチドＳ９５−１、ペプチドＢ０７−８、またはペプチドＢ０７−９をコードするポリヌクレオチド（ＤＮＡ）を調製し、これを自立増殖可能なベクターに挿入したものを大腸菌、枯草菌、放線菌、酵母等の宿主に導入して形質転換体とし、その培養物から本発明にかかるペプチドを取得してもよい。

上記ポリヌクレオチドの塩基配列は、本発明にかかるペプチド（例えば、上記ペプチド２６−２、ペプチド２６−３、ペプチドＳ９５−１、ペプチドＢ０７−８、またはペプチドＢ０７−９）をコードするポリヌクレオチドであれば特に限定されるものではない。本発明にかかるペプチドのアミノ酸配列に対応する塩基配列を有するポリヌクレオチドは全て上記ポリヌクレオチドに含まれる。アミノ酸配列に対応する塩基配列は、公知のコドン表により容易に理解できる。なお、本発明にかかるペプチドをコードするポリヌクレオチドを「本発明にかかるポリヌクレオチド」と称する。本発明にかかるポリヌクレオチドは、本発明にかかるペプチドの大量調製に利用可能である。

本明細書中で使用される場合、用語「ポリヌクレオチド」は「核酸」または「核酸分子」と交換可能に使用され、ヌクレオチドの重合体が意図される。本明細書中で使用される場合、用語「塩基配列」は、「核酸配列」または「ヌクレオチド配列」と交換可能に使用され、デオキシリボヌクレオチド（Ａ、Ｇ、ＣおよびＴと省略される）の配列として示される。

本発明にかかるポリヌクレオチドは、ＲＮＡ（例えば、ｍＲＮＡ）の形態、またはＤＮＡの形態（例えば、ｃＤＮＡまたはゲノムＤＮＡ）で存在し得る。ＤＮＡは、二本鎖または一本鎖であり得る。一本鎖ＤＮＡまたはＲＮＡは、コード鎖（センス鎖としても知られる）であり得るか、またはそれは、非コード鎖（アンチセンス鎖としても知られる）であり得る。

所望の塩基配列を有するポリヌクレオチド（ＤＮＡ）を調製する方法としては、例えば、該所望のＤＮＡの部分配列ヌクレオチドであって、両端がオーバーラップするようなセンスおよびアンチセンスヌクレオチドを化学合成し、次いでポリメラーゼ連鎖反応［Saiki, R. K. et al (1988) Science 239, 487-491参照］等のＤＮＡポリメラーゼ反応やリガーゼ反応を利用することにより、それら部分配列が連結したものを得る方法等が挙げられる。また公知のＤＮＡシンセサイザーを用いる方法により、化学合成したものであってもよい。

上記のごとくして得られる本発明のペプチドのアミノ酸配列をコードするポヌクレオチド（ＤＮＡ）を好適なベクターに組み込むことにより、原核生物または真核生物の宿主細胞を形質転換させることができる。さらに、これらのベクターに適当なプロモーターおよび形質転換にかかわる配列を導入することにより、それぞれの宿主細胞において該ＤＮＡを発現させることができる。

原核細胞の宿主としては、例えば大腸菌（Escherichia coli）や枯草菌（Bacillus subtilis）等が挙げられる。目的の遺伝子をこれらの宿主細胞内で形質発現させるには、宿主と適合し得る種由来のレプリコン、すなわち複製起点および調節配列を含んでいるプラスミドベクターで宿主細胞を形質転換させればよい。またベクターは形質転換細胞に表現形質（表現型）の選択性を付与することができる配列を持つものが望ましい。

例えば大腸菌としてはＥ．ｃｏｌｉ Ｋ１２株、ＪＭ１０９株等がよく用いられ、ベクターとしては一般にｐＢＲ３２２やｐＵＣ系のプラスミドがよく用いられるが、これらに限定されず、公知の各種の菌株およびベクターがいずれも利用できる。

プロモーターとしては、大腸菌においてはトリプトファン（ｔｒｐ）プロモーター、ラクトース（ｌａｃ）プロモーター、トリプトファン・ラクトース（ｔａｃ）プロモーター、リポプロテイン（ｌｐｐ）プロモーター、バクテリオファージ由来のラムダ（λ）ＰＬプロモーター、ポリペプチド鎖伸長因子Ｔｕ（ｔｕｆＢ）プロモーター、ｌａｃＵＶ５プロモーター等が挙げられ、いずれのプロモーターも本発明のペプチドの産生に使用することができる。

枯草菌としては、例えば２０７−２５株が好ましく、ベクターとしてはｐＴＵＢ２２８［Ohmura, K., et al. (1984) J. Biochem. 95, 87-93 参照］等が用いられるが、これに限定されるものではない。枯草菌用プロモーターとしては、枯草菌のα−アミラーゼ遺伝子の調節配列がよく用いられ、さらに必要によりα−アミラーゼのシグナルペプチド配列をコードするＤＮＡ配列を連結することにより、菌体外での分泌発現も可能となる。

宿主細胞として大腸菌を用いる場合を例に挙げると、発現ベクターとしては、ｐＢＲ３２２複製起点を有し、大腸菌において自律増殖が可能であり、さらに転写プロモーター、翻訳開始シグナルを備えたものを用いることができる。該発現ベクターはカルシウム−クロライド法［Mandel, M. and Higa, A. (1970) J. Mol. Biol. 53, 154参照］、Hanahanの方法［Hanahan, D. and Meselson, M. (1980) Gene 10, 63 参照］および電気パルス穿孔法［Neumann, E., et al. (1982)EMBO J. 1, 841-845 参照］等により大腸菌に取り込ませることができ、かくして所望のベクターがトランスフェクトされた細胞を得ることができる。

真核生物の宿主細胞には、脊椎動物、昆虫、酵母等の細胞が含まれ、脊椎動物細胞としては、例えばサルの細胞であるＣＯＳ細胞［Gluzman, Y. (1981) Cell23, 175-182 参照］やチャイニーズハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ）のジヒドロ葉酸レダクターゼ欠損株［Urlaub, G. and Chasin, L. A. (1980) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77, 4216-4220参照］、ヒトナマルバ細胞、ハムスターＢＨＫ細胞等がよく用いられるが、これらに限定されない。

脊椎動物細胞の発現ベクターとしては、通常発現させようとする遺伝子の上流に位置するプロモーター、ＲＮＡのスプライス部位、ポリアデニル化部位および転写終結配列等を有するものを使用でき、これはさらに必要により複製起点を有してもよい。該発現ベクターの例としては、ＳＶ４０の初期プロモーターを有するｐＳＶ２ｄｈｆｒ［Subramani, S., et al. (1981) Mol. Cell. Biol. 1, 854-864参照］等を例示できるが、これに限定されない。

また真核微生物としては酵母が一般によく用いられており、その中でもサッカロミセス属酵母、例えばサッカロミセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）が好ましい。該酵母等の真核生物の発現ベクターとしては、例えばアルコール脱水素酵素遺伝子のプロモーター［Bennetzen, J. L. and Hall, B. D. (1982) J. Biol. Chem. 257, 3018-3025 参照］や酸性ホスファターゼ遺伝子のプロモーター［Miyanohara, A., et al. (1983) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 80, 1-5参照］等を好ましく利用できる。

宿主細胞として、ＣＯＳ細胞を用いる場合を例に挙げると、発現ベクターとしては、ＳＶ４０複製起点を有し、ＣＯＳ細胞において自立増殖が可能であり、さらに転写プロモーター、転写集結シグナルおよびＲＮＡスプライス部位を備えたものを用いることができる。該発現ベクターはＤＥＡＥ−デキストラン法［Luthman, H. and Magnusson, G. (1983) Nucleic Acids Res. 11, 1295-1308 参照］、リン酸カルシウム−ＤＮＡ共沈澱法［Graham, F. L. and van der Ed, A. J.(1973) Virology 52, 456-457 参照］および電気パルス穿孔法［Neumann, E., et al. (1982) EMBO J. 1, 841-845 参照］等によりＣＯＳ細胞に取り込ませることができ、かくして所望の形質転換細胞を得ることができる。また、宿主細胞としてＣＨＯ細胞を用いる場合には、発現ベクターと共にＧ４１８耐性マーカーとして機能するｎｅｏ遺伝子を発現し得るベクター、例えばｐＲＳＶｎｅｏ［Sambrook, J., et al. (1989) "Molecular Cloning: A Laboratory Manual" Cold Spring Harbor Laboratory, NY参照］やｐＳＶ２ｎｅｏ［Southern, P. J. and Berg, P. (1982) J. Mol. Appl. Genet. 1, 327-341 参照］等をコ・トランスフェクトし、Ｇ４１８耐性のコロニーを選択することにより本発明のペプチドを安定に産生する形質転換細胞を得ることができる。

上記で得られる所望の形質転換体は、常法に従い培養することができ、該培養により細胞内または細胞外に本発明にかかるペプチドが生産される。該培養に用いられる培地としては、採用した宿主細胞に応じて慣用される各種のものを適宜選択でき、例えば、大腸菌であればトリプトン−イースト培地（バクトトリプトン１．６％、イーストエキストラクト１．０％、塩化ナトリウム ０．５％（ｐＨ７．０））やペプトン培地（ディフコ社製）等を使用できる。また、上記ＣＯＳ細胞であればＲＰＭＩ１６４０培地やダルベッコ修正イーグル培地（ＤＭＥＭ）等の培地に必要に応じウシ胎児血清（ＦＢＳ）等の血清成分を添加したものを使用できる。

上記により、形質転換体の細胞内または細胞外に生産される本発明にかかるペプチドは、該ペプチドの物理的性質や化学的性質等を利用した各種の公知の分離操作法により、分離・精製することができる。かかる方法としては、具体的には例えば通常のタンパク質沈澱剤による処理、限外ろ過、分子ふるいクロマトグラフィー（ゲルろ過）、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）等の各種クロマトグラフィー、透析法、これらの組合せ等を例示できる。

外来遺伝子を大腸菌等に導入して大量発現させた場合、産生されたペプチドが、封入体と呼ばれる水に不溶の集塊を形成することがある。そのような場合、グアニジンイソチオシアネート等の強力な変性剤を用いて該ペプチドを変性させることにより該ペプチドを可溶化することができる。

さらに、本発明にかかるペプチドは、かくして得られるペプチドに糖質やポリエチレングリコールを付加して得られる複合体としての形態、さらには、ペプチドをアセチル化、アミド化および／または多官能試薬により架橋重合させて得られる誘導体またはホモ若しくはヘテロ重合体としての形態であってもよい。そのような本発明にかかるペプチドの複合体、誘導体または重合体の製造にあたっては、糖質等の付加、アセチル化、アミド化および／または架橋重合は、本発明にかかるペプチド中のスギ花粉アレルゲン由来の高次構造ＩｇＥエピトープの機能を損なわないよう、前記した本発明にかかるペプチドのＮ末端および／またはＣ末端の付加的ペプチドにおいて行われることが好ましいが、これに限定されない。

本発明にかかるペプチドの複合体としては、例えばＮ末端のアミノ基にポリエチレングリコール、モノメトキシポリエチレングリコール、デキストラン、さらには、プルラン、エルシナンなどのマルトトリオースを反復単位とする多糖類を付加したもの等、本発明の技術分野における当業者に周知の方法で合成できるものを挙げることができ、これらは例えば社団法人日本生化学会編「新生化学実験講座」第１巻「タンパク質ＩＶ」第２３６〜２５２頁（1991年、東京化学同人発行）等の記載に従って製造することができる。

また、本発明にかかるペプチドの誘導体としては、例えばＮ末端をアセチル化したもの、Ｃ末端をアミド化したもの等、本発明の技術分野における当業者に周知の方法で合成できるものを挙げることができる。かかる誘導体は、例えば上記「新生化学実験講座」第１巻「タンパク質ＩＶ」第１８〜２０頁および同第９巻「ホルモンＩ」第２９０〜２９８頁（いずれも1991年、東京化学同人発行）等の記載に従って製造することができる。

さらに、本発明にかかるペプチドの重合体としては、本発明にかかる１種または２種以上のペプチドの重合体が挙げられ、例えばジスクシンイミジルスベレート等の二価性架橋試薬により本発明のペプチド２分子を重合したもの等、本発明の技術分野における当業者に周知の方法で合成できるものを挙げることができる。かかる重合体の調製は、例えば上記「新生化学実験講座」第１巻「タンパク質ＩＶ」第２０７〜２２６頁の記載に従って行なうことができる。

例えば、プロテアーゼで特異的に切断可能なアミノ酸配列を含むリンカーペプチドを介して、本発明にかかるペプチド（ペプチド２６−２、ペプチド２６−３、ペプチドＳ９５−１、ペプチドＢ０７−８、またはペプチドＢ０７−９等）より選ばれる単一または異なるペプチドが複数個連結しているような重合体を、大腸菌等の宿主に組換え体として生産させてから、該プロテアーゼで該重合体を消化することにより、本発明にかかるペプチドを得ることもできる。その際、該重合体は本発明にかかるペプチドの一つが重合したホモ重合体または複数種の本発明にかかるペプチドが重合したヘテロ重合体のいずれでもよいが、単一のペプチドを大量に生産させることを目的とする場合には、ホモ重合体が選択される。またプロテアーゼは、特定のアミノ酸配列を認識して切断するものであれば、公知のものをいずれも使用することができるが、好適にはトリプシン、カテプシンＢ、カテプシンＤ、カテプシンＥ等である
＜３．本発明にかかる抗体＞
本発明にかかる抗体は、上記本発明にかかるペプチドと結合するものである。本明細書中で使用される場合、用語「抗体」は、特に限定しない限り、免疫グロブリン（ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ、ＩｇＭおよびこれらのＦａｂフラグメント、Ｆ（ａｂ’）_２フラグメント、Ｆｃフラグメント）を意味し、例としては、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、単鎖抗体、抗イディオタイプ抗体およびヒト化抗体が挙げられるがこれらに限定されない。本発明にかかる抗体は、本発明にかかるペプチドを発現する生物材料（ファージ含む）、本発明にかかるペプチドを精製、調製する際に利用可能である。例えば、本発明にかかる抗体を固定化し、公知のアフィニティークロマトグラフィーを行なうことによって、本発明にかかるペプチドを含むクルードな溶液から、当該ペプチドを容易に精製することができる。上記アフィニティークロマトグラフィーに用いる担体、抗体の固定化方法、アフィニティークロマトグラフィーの運転条件等は、公知の情報を適宜選択の上、採用することが可能である。

「抗体」は、種々の公知の方法（例えば、ＨａｒＬｏｗら、「Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８８）」、岩崎ら、「単クローン抗体 ハイブリドーマとＥＬＩＳＡ、講談社（１９９１）」）に従えば作製することができる。

ペプチド抗体は、当該分野に周知の方法によって作製される。例えば、Ｃｈｏｗ，Ｍ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８２：９１０−９１４；およびＢｉｔｔｌｅ，Ｆ．Ｊ．ら、Ｊ．Ｇｅｎ．Ｖｉｒｏｌ．６６：２３４７−２３５４（１９８５）（本明細書中に参考として援用される）を参照のこと。一般には、動物は遊離ペプチドで免疫化され得る；しかし、抗ペプチド抗体力価はペプチドを高分子キャリア（例えば、キーホールリンペットヘモシアニン（ＫＬＨ）または破傷風トキソイド）にカップリングすることにより追加免疫され得る。例えば、システインを含むペプチドは、ｍ−マレイミドベンゾイル−Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステル（ＭＢＳ）のようなリンカーを使用してキャリアにカップリングされ得、一方、他のペプチドは、グルタルアルデヒドのようなより一般的な連結剤を使用してキャリアにカップリングされ得る。ウサギ、ラット、およびマウスのような動物は、遊離またはキャリア−カップリングペプチドのいずれかで、例えば、約１００μｇのペプチドまたはキャリアタンパク質およびＦｒｅｕｎｄのアジュバントを含むエマルジョンの腹腔内および／または皮内注射により免疫化される。いくつかの追加免疫注射が、例えば、固体表面に吸着された遊離ペプチドを使用してＥＬＩＳＡ法により検出され得る有用な力価の抗ペプチド抗体を提供するために、例えば、約２週間の間隔で必要とされ得る。免疫化動物からの血清における抗ペプチド抗体の力価は、抗ペプチド抗体の選択により、例えば、当該分野で周知の方法による固体支持体上のペプチドへの吸着および選択された抗体の溶出により増加され得る。

本明細書中で使用される場合、用語「ペプチドと特異的に結合する抗体」は、本発明にかかるペプチドに特異的に結合し得る完全な抗体分子および抗体フラグメント（例えば、ＦａｂおよびＦ（ａｂ’）_２フラグメント）を含むことを意味する。ＦａｂおよびＦ（ａｂ’）_２フラグメントは完全な抗体のＦｃ部分を欠いており、循環によってさらに迅速に除去され、そして完全な抗体の非特異的組織結合をほとんど有し得ない（Ｗａｈｌら、Ｊ．Ｎｕｃｌ．Ｍｅｄ．２４：３１６−３２５（１９８３）（本明細書中に参考として援用される））。従って、これらのフラグメントが好ましい。

さらに、本発明にかかるのペプチドに結合し得るさらなる抗体が、抗イディオタイプ抗体の使用を通じて２工程手順で産生され得る。このような方法は、抗体それ自体が抗原であるという事実を使用し、従って、二次抗体に結合する抗体を得ることが可能である。この方法に従って、本発明にかかるペプチドと特異的に結合する抗体は、動物（好ましくは、マウス）を免疫するために使用される。次いで、このような動物の脾細胞はハイブリドーマ細胞を産生するために使用され、そしてハイブリドーマ細胞は、本発明にかかるペプチドと特異的に結合する抗体に結合する能力が、本発明にかかるペプチドによってブロックされ得る抗体を産生するクローンを同定するためにスクリーニングされる。このような抗体は、本発明にかかるペプチドと特異的に結合する抗体に対する抗イディオタイプ抗体を含み、そしてさらなる本発明にかかるペプチドと特異的に結合する抗体の形成を誘導するために動物を免疫するために使用され得る。

ＦａｂおよびＦ（ａｂ’）_２ならびに本発明にかかる抗体の他のフラグメントは、本明細書中で開示される方法に従って使用され得ることが、明らかである。このようなフラグメントは、代表的には、パパイン（Ｆａｂフラグメントを生じる）またはペプシン（Ｆ（ａｂ’）_２フラグメントを生じる）のような酵素を使用するタンパク質分解による切断によって産生される。あるいは、本発明にかかるペプチドに結合するフラグメントは、組換えＤＮＡ技術の適用または合成化学によって産生され得る。

このように、本発明にかかる抗体は、少なくとも、本発明にかかるペプチドを認識する抗体フラグメント（例えば、ＦａｂおよびＦ（ａｂ’）_２フラグメント）を備えていればよいといえる。すなわち、本発明にかかるペプチドを認識する抗体フラグメントと、異なる抗体分子のＦｃフラグメントとからなる免疫グロブリンも本発明に含まれることに留意すべきである。

つまり、本発明の目的は、本発明にかかるペプチドを認識する抗体を提供することにあるのであって、本明細書中に具体的に記載した個々の免疫グロブリンの種類（ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧまたはＩｇＭ）、キメラ抗体作製方法、ペプチド抗原作製方法等に存するのではない。したがって、上記各方法以外によって取得される抗体も本発明の技術的範囲に属することに留意しなければならない。

＜４．本発明にかかる薬学的組成物＞
本発明にかかるペプチド（その複合体、その誘導体を含む）を有効成分として含む本発明にかかる薬学的組成物（スギ花粉症治療薬またはスギ花粉改善薬）は、スギ花粉症に罹患した患者に投与すると、スギ花粉症を治療または改善することができる。ＩｇＥエピトープ、特に１価のＩｇＥエピトープは、アレルギー反応の抑制に有効であることが知られており、アレルギー治療薬、改善薬としての利用が期待されている。１価のＩｇＥエピトープによるアレルギー反応の抑制は、肥満細胞または好塩基球上のＩｇＥ分子と１価のＩｇＥエピトープとが結合し、天然型アレルゲン分子の多価エピトープによるＩｇＥ分子架橋の形成を阻害することによるものであると考えられている。一方、本発明の薬学的組成物（スギ花粉症治療薬、スギ花粉症改善薬）をスギ花粉が飛散しはじめる前に健常な個体や潜在的なスギ花粉症の個体に投与するときには、スギ花粉症に対して顕著な予防効果を発揮するとともに、発症時のアレルギー症状の寛解に著効を発揮する。

また本発明にかかる薬学的組成物は、上記本発明にかかる抗体を含有するものであってもよい。本発明にかかる抗体は、スギ花粉アレルゲンのＩｇＥエピトープを含むペプチドに対する抗体であり、スギ花粉アレルゲンのＩｇＥエピトープと特異的に結合する。したがって、本発明にかかる抗体を含有する薬学的組成物を、スギ花粉症患者に投与すれば、本発明にかかる抗体が、体内に侵入したスギ花粉アレルゲンの高次構造ＩｇＥエピトープをトラップし、肥満細胞または好塩基球上のＩｇＥ分子架橋形成を阻害することができ、スギ花粉症の症状を改善することができる。

本発明にかかる薬学的組成物についてさらに詳しく説明すると、本発明にかかる薬学的組成物は通常、本発明にかかるペプチドまたは抗体を０．０１％（ｗ／ｗ）〜１００％（ｗ／ｗ）、好ましくは０．０５％（ｗ／ｗ）〜５０％（ｗ／ｗ）、さらに好ましくは０．５％（ｗ／ｗ）〜５．０％（ｗ／ｗ）含んでなる。本発明にかかる薬学的組成物は、当該ペプチドまたは抗体単独の形態はもとより、それ以外に生理的に許容される、例えば、血清アルブミン、ゼラチン、グルコース、シュークロース、ラクトース、マルトース、トレハロース、ソルビトール、マルチトール、ラクチトール、マンニトール、プルランなどの担体、賦形剤、免疫助成剤、安定剤、さらには必要に応じてステロイドホルモンやクロモグリク酸ナトリウムなどの抗炎症剤や抗ヒスタミン剤、抗ロイコトリエン剤、抗タキキニン剤を含む１種または２種以上の他の薬剤と組み合わせた組成物としての形態を包含する。さらに、本発明の薬学的組成物は、投薬単位形態の薬剤をも包含し、その投薬単位形態の薬剤とは、本発明にかかるペプチドまたは抗体を、例えば、１日当たりの用量またはその整数倍（４倍まで）またはその約数（１／４０まで）に相当する量を含有し、投与に適する物理的に分離した一体の剤形にある薬剤を意味する。このような投薬単位形態の薬剤としては、散剤、細粒剤、顆粒剤、丸剤、錠剤、カプセル剤、トローチ剤、口腔剤、シロップ剤、乳剤、軟膏剤、硬膏剤、パップ剤、坐剤、点眼剤、点鼻剤、噴霧剤、注射剤などが挙げられる。

本発明の薬学的組成物は、スギ花粉症の治療、改善または予防を目的に、経口、経皮、点鼻、点眼または注射投与される。ヒトにおける投薬量は、投与の目的や方法、症状によっても異なるが、通常、対象者の症状や投与後の経過を観察しながら、成人１日当たり０．０１ｍｇ〜１０００ｍｇ、好ましくは１ｍｇ〜１０ｍｇを目安に、毎日１回〜毎月１回の頻度で、約１〜６ヶ月間、通常、用量を増やしながら反復投与される。

＜本発明にかかるスギ花粉症の診断キット＞
本発明にかかるスギ花粉症の診断キットには、本発明にかかるペプチドを含むことを特徴としている。本発明にかかるペプチドと被験者の血清との結合性（反応性）をＥＬＩＳＡ法等で検討することによって、被験者血清中にスギ花粉アレルゲンに対するＩｇＥ抗体を有しているか否かを判断することができ、被験者がスギ花粉症である（スギ花粉症を発症しているかは問わない）か否かを診断することができる。

なお本発明にかかるスギ花粉症の診断キットに含まれる本発明にかかるペプチドは、一種類に限定されるものではなく、複数種類のペプチドを包含することが好ましい。換言すれば、スギ花粉アレルゲンのＩｇＥエピトープを含む複数のペプチドが、本発明にかかる診断キットに含まれていることが好ましい。また、単一のアレルゲンのＩｇＥエピトープを含むペプチドに限定されるものでなく、種々のアレルゲンに対するＩｇＥエピトープを含むペプチドがそれぞれ含まれていることが好ましい。

本発明にかかるスギ花粉症の診断キットに、複数の本発明にかかるペプチドが含まれていることによって、被験者（スギ花粉症患者）のアレルギー反応の原因となるスギ花粉アレルゲンをさらに詳細に特定することが可能となる。

なお、本発明かかるスギ花粉症の診断キットには、本発明にかかるペプチドの他、公知のＩｇＥエピトープを含むペプチド、公知のアレルゲンタンパク質が含まれていてもよい。被験者のアレルギー反応の原因となるアレルゲンの特定を、さらに詳細に行なうことができる。

また、本名発明にかかるスギ花粉症の診断キットには、ＥＬＩＳＡ法を行なうために必要な試薬（２次抗体、発色試薬等）、プレート（９６ウェルプレート等）等が含まれていてもよい。またウエスタンブロット法を行なうために必要なメンブレン、電気泳動用ゲル、電気泳動装置、ブロッティング装置、ブロッティング用試薬等が含まれていてもよい。上記構成が含まれることによって、スギ花粉症の診断をさらに簡便に行なうことができる。

また本発明にかかるスギ花粉症診断キットは、本発明にかかるペプチドが基板上に固定化されている検出器具が含まれている態様であってもよい。当該実施態様にかかる検出器具は、いわゆるプロテインチップである。

本明細書中で使用される場合、用語「基板」は、目的物（例えば、ペプチドまたはタンパク質等）を担持することのできる物質が意図され、用語「支持体」と交換可能に使用される。好ましい基板（支持体）としては、ビーズ（例えば、ポリスチレンビーズ）、固相（例えば、ガラスチューブ、試薬ストリップ、ポリスチレン製のマイクロタイタープレートまたはアミノ基結合型のマイクロタイタープレート）などが挙げられるが、これらに限定されない。目的物をこれらの基板に固定化する方法は、当業者に周知であり、例えば、Ｎａｔｕｒｅ ３５７：５１９−５２０（１９９２）（本明細書中に参考として援用される）に記載される。

本実施態様にかかる検出器具に用いる基板の材質としては、ペプチドを安定して固定化することができるものであればよい。上記した基板以外には、例えば、ポリカーボネートやプラスティックなどの合成樹脂、ガラス等を挙げることができるが、これらに限定されない。基板の形態も特に限定されないが、例えば、板状、フィルム状等の基板を好適に用いることができる。

上記の方法以外のペプチドを基板上に固定化する方法としては、例えば、ニトロセルロース膜やＰＤＶＦ膜にポリペプチドや抗体をドットブロットの要領でスポットする物理吸着法、または、ポリペプチドや抗体の変性を軽減するために、スライドガラス上にポリアクリルアミドのパッドを接合して、これにペプチドをスポットする方法が挙げられる。さらに、ペプチドを基板表面に吸着させるだけでなく、強固に結合させるため、アルデヒド修飾ガラスを利用した方法（Ｇ．ＭａｃＢｅａｔｈ，Ｓ．Ｌ．Ｓｃｈｒｅｉｂｅｒ，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２８９，１７６０（２０００））を用いることもできる。また、基板上でのペプチドの配向を揃えて固定化する方法としては、オリゴヒスチジンタグを介して、ニッケル錯体で表面修飾した基板へ固定化する方法（Ｈ．Ｚｈｕ，Ｍ．Ｂｉｌｇｉｎ，Ｒ．Ｂａｎｇｈａｍ，Ｄ．Ｈａｌｌ，Ａ．Ｃａｓａｍａｙｏｒ，Ｐ．Ｂｅｒｔｏｎｅ，Ｎ．Ｌａｎ，Ｒ．Ｊａｎｓｅｎ，Ｓ．Ｂｉｄｌｉｎｇｍａｉｅｒ，Ｔ．Ｈｏｕｆｅｋ，Ｔ．Ｍｉｔｃｈｅｌｌ，Ｐ．Ｍｉｌｌｅｒ，Ｒ．Ａ．Ｄｅａｎ，Ｍ．Ｇｅｒｓｔｅｉｎ，Ｍ．Ｓｎｙｄｅｒ，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２９３，２１０１（２００１））を用いることができる。

このように、本発明にかかかるスギ花粉診断キットには、少なくとも、本発明にかかるペプチドが含まれていればよいといえる。そのほかにスギ花粉症の診断に必要な構成を備える場合も、本発明の技術的範囲に含まれる点に留意すべきである。

＜本発明にかかるスギ花粉症の診断方法＞
本発明にかかるスギ花粉症の診断方法は、本発明にかかるペプチドと被験者の血清と反応させる工程（反応工程）を含むことを特徴としている。本発明にかかるペプチドと被験者の血清との結合性（反応性）をＥＬＩＳＡ法等で検討することによって、被験者血清中にスギ花粉アレルゲンに対するＩｇＥ抗体を有しているか否かを判断することができ、被験者がスギ花粉症である（スギ花粉症を発症しているかは問わない）か否かを診断することができる。

当該反応工程を行なう方法は特に限定されるものではなく、例えばＥＬＩＳＡ法、ＲＩＡ法、ウエスタンブロット法、ドットブロット法等公知の方法を適宜選択の上、適用可能である。例えば、ＥＬＩＳＡ法を採用する場合場合は、マイクロタイタープレート上に本発明にかかるペプチドを固定し、被験者の血清をアプライして反応させればよい。なお被験者の血清は、適当な濃度になるように緩衝液（リン酸緩衝液等）で希釈して使用することが好ましい。血清の濃度が高すぎると本発明にかかるペプチドと非特異的に結合するからである。ペプチドの固定量、血清の反応温度、反応時間等の反応条件については、適宜検討の上、設定すればよい。なお、被験者の血清と反応させるのは、本発明にかかるペプチドに限定されるものではなく、その他のＩｇＥエピトープを含むペプチドや、その他公知のアレルゲンタンパク質等と反応させてもよい。したがって、上記マイクロタイタープレート上に固定する物質は、本発明にかかるペプチドのみならず、その他のＩｇＥエピトープを含むペプチドや、その他公知のアレルゲンタンパク質等であってもよい。

また本発明にかかるスギ花粉症の診断方法には、本発明にかかるペプチドと患者血清中に含まれるＩｇＥ抗体との結合を検出する検出工程が含まれていることが好ましい。本発明にかかるペプチドに結合した患者血清中に含まれるＩｇＥ抗体に、ペルオキシダーゼ、ガラクトシダーゼ等で標識した２次抗体（抗ヒト抗体）を結合させ、さらに標識した酵素によって発色する基質を加え発色させることによって、本発明にかかるペプチドと患者血清中に含まれるＩｇＥ抗体との結合を容易かつ定量的に検出することができ、被験者がスギ花粉症か否かを判断することができる。なお検出工程は、放射性同位体標識した２次抗体を用いても良く、また検出感度を向上させるべく２次抗体に対する抗体（３次抗体）を用いてもよい。なお検出には、適宜市販の抗体、および検出用試薬を適宜選択の上、利用すればよい。

上記反応工程、検出工程には、当該工程に必要な操作（例えば、未反応の血清抗体等を反応系から除去する洗浄操作、マイクロタータープレートと抗体との非特異的な結合を防止するブロッキング操作等）が含まれていてもよい。また本発明にかかるスギ花粉症の診断方法には、患者から採血する工程、採血した血液から遠心分離により血清を調製する血清調製工程等が含まれていてもよい。なお、ＥＬＩＳＡ法の具体的な方法については、実施例の記載を適宜援用することが可能である。

以下添付した図面に沿って実施例を示し、本発明の実施の形態についてさらに詳しく説明する。もちろん、本発明は以下の実施例に限定されるものではなく、細部については様々な態様が可能であることはいうまでもない。さらに、本発明は上述した実施形態に限定されるものではなく、請求項に示した範囲で種々の変更が可能であり、それぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態についても本発明の技術的範囲に含まれる。

〔実施例１：Cry j 1 のＩｇＥエピトープを提示するファージの検索〕
（方法）
あらゆる１２アミノ酸からなるペプチドを提示するＭ１３ファージからなるファージライブラリー（Ph.D.12^TM Phage Display Peptide Library Kit （BioLabs Inc.製））に対して、抗Cry j 1モノクローナル抗体であるCry j 1モノクローナル抗体０２６（発売元：生化学工業株式会社）、Cry j 1モノクローナル抗体Ｓ９５（Sakaguchi M, Hashimoto M, Nigi H, Yasueda H, Takahashi Y, Watanabe M, Nagoya T, Taniguchi Y, Kurimoto M, Inouye S., Immunology. 1997 Jun;91(2):161-6. “Epitope specificity of IgE antibodies to a major allergen (Cry j 1) of Japanese cedar pollen in sera of humans and monkeys with pollinosis.”参照）、Cry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７（Sakaguchi M, Hashimoto M, Nigi H, Yasueda H, Takahashi Y, Watanabe M, Nagoya T, Taniguchi Y, Kurimoto M, Inouye S., Immunology. 1997 Jun;91(2):161-6. “Epitope specificity of IgE antibodies to a major allergen (Cry j 1) of Japanese cedar pollen in sera of humans and monkeys with pollinosis.”参照）をそれぞれ用いて合計６回Panningを行なった。なお上記Cry j 1モノクローナル抗体Ｓ９５およびCry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７は、独立行政法人 理化学研究所 坂口雅彦氏から享受した。

具体的には、0.1M NaHCO₃ (pH 8.6)でCry j 1モノクローナル抗体を１０μg / mlになるように希釈し、９６ウェルマイクロタイタープレート（以下「９６ウェルプレート」という）の各ウェルに150μlずつ加え４℃で一晩放置した。

E.coli ER2738を10mlのLB培地に植菌し、３７℃で振盪培養を行なった。E.coli ER2738が増殖している間に、プレートにコートしたCry j 1モノクローナル抗体０２６をウェルから取り除き、blocking buffer (BSA 5mg/ml, 0.02% NaN₃ / 0.1M NaHCO₃-pH 8.6 )でウェルを満たし、４℃で１時間インキュベートを行なった。

その後ウェル内のblocking bufferを取り除き、TBST(50mM Tris-HCl pH7.5, 150mM NaCl＋0.1% [v/v] Tween-20)で６回洗浄した。次にTBSTで希釈した4×10¹⁰のファージライブラリーを、ウェルに加え、室温で１時間振盪した。このウェルをTBSTで１０回洗浄し、0.2M Glycine-HCl( pH2.2 ), 1mg/ml BSA を100μl加え、１０分間振盪した。溶出したファージを、1M Tris-HCl (pH 9.1) 15μlで中和した。このファージ溶出液を、General M13 Methods (Stain Maintenance)でtiterした。残りのファージ溶出液を、20mlのER2738-LB培地に加え、３７℃で４．５時間振盪した。培地を遠心分離(10000rpm, 10mim, ４℃)を行ない、遠心上清の1/6 volumeのPEG/NaCl ( 20% (w/v) polyethylenglycolo-8000, 2.5M NaCl )を加え、４℃で一晩放置した。

その後、遠心分離(10000rpm, 10mim, ４℃)を行ない、遠心上清を取り除き、1mlのTBS(50mM Tris-HCl pH7.5, 150mM NaCl)にペレットを懸濁し、遠心(10000rpm, 5mim, ４℃)を行なった。このとき得られた遠心上清に対し、1/6 volumeのPEG/NaClを加え１時間インキュベートを行なった。次に、遠心分離(10000rpm, 10mim, ４℃)を行なった後、遠心上清を取り除き、ペレットをTBS, 0.02% NaN₃で懸濁し、さらに遠心分離(10000rpm, 1mim, ４℃)を行なった。この遠心上清をファージ増幅液とし、上記工程を６回繰り返した。なお、特記しない限り、Ph.D.12^TM Phage Display Peptide Library Kit （BioLabs Inc.製）のマニュアルに準じた。

６回目のPanningで得られたファージ群から任意に１０個のファージを選択し、そのファージの塩基配列を決定し、その塩基配列情報から当該ファージが提示するペプチドのアミノ酸配列を決定した。

（結果）
Cry j 1モノクローナル抗体０２６を用いたPanningにより選択されたファージが提示するペプチドのアミノ酸配列を図１に示した。また右端の分数は（例えば「（６／１０）」）、１０個のファージのうち、同一のアミノ酸配列からなるペプチドを提示するファージがいくつあったかを示すものである。例えば「６／１０」と表示していれば、１０個のファージのうち６個が同一のアミノ酸配列からなるペプチドを提示したということを示す。換言すれば、１０個のファージのうち６個が同一のファージであったことを意味する。

図１によれば、異なるアミノ酸配列からなるペプチドを提示する５種類のファージを取得したということが分かった。ファージ２６−１は、ＡＴＫＫＡＴＳＴＹＡＴＫ（配列番号４）のアミノ酸配列からなるペプチド（ペプチド２６−１）を提示するファージであった。またファージ２６−２；ファージ２６−６；ファージ２６−７；ファージ２６−８；ファージ２６−９およびファージ２６−１０は、ＨＬＰＰＳＹＹＬＳＲＮＮ（配列番号２）のアミノ酸配列からなるペプチド（以下、同じアミノ酸配列を有するペプチドを「ペプチド２６−２」という）を提示するファージであった。またファージ２６−３は、ＨＰＤＦＤＬＮＲＳＬＭＤ（配列番号３）のアミノ酸配列からなるペプチド（ペプチド２６−３）を提示するファージであった。またファージ２６−４は、ＡＰＴＦＤＭＮＰＬＲＴＲ（配列番号５）のアミノ酸配列からなるペプチド（ペプチド２６−４）を提示するファージであった。またファージ２６−５は、ＹＡＲＴＰＮＲＤＦＴＰＧ（配列番号６）のアミノ酸配列からなるペプチド（ペプチド２６−５）を提示するファージであった。

Cry j 1モノクローナル抗体Ｓ９５を用いたPanningにより選択されたファージが提示するペプチドのアミノ酸配列を図７に示した。図の見方は、図１と同様である。図７によれば、異なるアミノ酸配列からなるペプチドを提示する３種類のファージを取得したということが分かった。ファージＳ９５−１；ファージＳ９５−２；ファージＳ９５−３；ファージＳ９５−４；ファージＳ９５−５；ファージＳ９５−７；ファージＳ９５−８およびファージＳ９５−１０は、ＴＹＳＰＦＨＳＦＴＳＩＰ（配列番号８）のアミノ酸配列からなるペプチド（以下、同じアミノ酸配列を有するペプチドを「ペプチドＳ９５−１」という）を提示するファージであった。またファージＳ９５−６は、ＨＱＹＱＲＤＨＧＰＱＫＳ（配列番号１１）のアミノ酸配列からなるペプチド（ペプチドＳ９５−６）を提示するファージであった。またファージＳ９５−９は、ＫＭＨＴＡＳＬＳＨＰＬＭ（配列番号１２）のアミノ酸配列からなるペプチド（ペプチドＳ９５−９）を提示するファージであった。

Cry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７を用いたPanningにより選択されたファージが提示するペプチドのアミノ酸配列を図８に示した。図の見方は、図１および７と同様である。図８によれば、異なるアミノ酸配列からなるペプチドを提示する５種類のファージを取得したということが分かった。ファージＢ０７−１；ファージＢ０７−２；ファージＢ０７−５；ファージＢ０７−６；ファージＢ０７−７およびファージＢ０７−１０は、ＱＧＰＨＷＷＲＬＥＧＤＰ（配列番号１３）のアミノ酸配列からなるペプチド（以下、同じアミノ酸配列を有するペプチドを「ペプチドＢ０７−１」という）を提示するファージであった。またファージＢ０７−３は、ＩＳＰＰＱＨＰＰＨＷＦＲ（配列番号１４）のアミノ酸配列からなるペプチド（ペプチドＢ０７−３）を提示するファージであった。またファージＢ０７−４は、ＱＡＰＨＷＷＹＴＡＰＭＬ（配列番号１５）のアミノ酸配列からなるペプチド（ペプチドＳ９５−９）を提示するファージであった。またファージＢ０７−８は、ＮＥＹＱＡＰＰＨＷＴＫＫ（配列番号１６）のアミノ酸配列からなるペプチド（ペプチドＢ０７−８）を提示するファージであった。またファージＢ０７−９は、ＬＰＲＹＳＦＰＶＱＡＰＶ（配列番号１７）のアミノ酸配列からなるペプチド（ペプチドＢ０７−９）を提示するファージであった。

〔実施例２：各ファージと抗Cry j 1モノクローナル抗体との結合性〕
（方法）
各ファージ（ファージ２６−１〜２６−５；ファージＳ９５−１；ファージＳ９５−６；ファージＳ９５−９；ファージＢ０７−１；ファージＢ０７−３；ファージＢ０７−４；ファージＢ０７−８；ファージＢ０７−９およびランダムファージ）を、１×１０⁹個/wellとなるように９６ウェルプレートにコートした。抗Cry j 1モノクローナル抗体であるCry j 1モノクローナル抗体０２６（発売元：生化学工業株式会社）を用いたＥＬＩＳＡ法により、ファージ２６−１〜２６−５とCry j 1モノクローナル抗体０２６との結合性を検討した。抗Cry j 1モノクローナル抗体であるCry j 1モノクローナル抗体Ｓ９５を用いたＥＬＩＳＡ法により、ファージ９５−１；ファージＳ９５−６；ファージＳ９５−９とCry j 1モノクローナル抗体Ｓ９５との結合性を検討した。抗Cry j 1モノクローナル抗体であるCry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７を用いたＥＬＩＳＡ法により、ファージＢ０７−１；ファージＢ０７−３；ファージＢ０７−４；ファージＢ０７−８；ファージＢ０７−９とCry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７との結合性を検討した。なお、ランダムファージとは、上記実施例１において選抜されなかったファージであり、陰性対照として用いたものである。

９６ウェルプレートに、Bicarbonate buffer(100mM NaHCO₃pH9.2〜9.5)で希釈した各ファージ（ファージ２６−１〜２６−５；ファージＳ９５−１；ファージＳ９５−６；ファージＳ９５−９；ファージＢ０７−１；ファージＢ０７−３；ファージＢ０７−４；ファージＢ０７−８；ファージＢ０７−９；およびランダムファージ）溶液を、ファージが１×１０⁹個/wellとなるようにウェルにアプライし２時間静置した。次にWashing buffer(Na₂HPO₄・12H₂O 43g, NaH₂PO₄3.6g, NaCl 263g, Tween20 15ml / 3L 蒸留水)でプレートを３回洗浄後、Blocking buffer 300μl をアプライし、４℃で一晩静置した。

次にプレートを３回洗浄後、Blocking buffer（3%スキムミルク, 1%BSA / PBST）で500倍希釈したCry j 1モノクローナル抗体０２６（発売元：生化学工業株式会社）50μlをそれぞれウェルにアプライし、３時間静置した。次にプレートを３回洗浄後、PBST（3%スキムミルク＋1%BSA入り）で1000倍希釈したBiotin-labeled anti-mouse IgG1（入手先:A Becton Dickinson co.） 50μlをウェルにアプライし、２時間静置した。

次にプレートを６回洗浄後、PBST(3%スキムミルク+1%BSA入り)で1000倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識streptavidin（入手先:Roche, Mannheim, Germany）を50μlアプライし、室温で１時間静置した。その後プレートを６回洗浄し、Attophos^TMsubstrate buffer （プロメガ株式会社製）50μl をウェルにアプライし、遮光の状態で発色するまで放置した。蛍光強度をCyto^TMFluorII（日本パーセプティブ株式会社製）で測定した。

（結果）
ファージ２６−１〜２６−５についての結果を図２に示した。横軸は各ファージを示し、縦軸はＥＬＩＳＡ法における蛍光強度を示す。図２の結果より、実施例１において選抜したファージのうち、ファージ２６−２および２６−３のみが、Cry j 1モノクローナル抗体０２６と結合するということが分かった。

またファージＳ９５−１、ファージＳ９５−６およびファージＳ９５−９についての結果を図９に示した。横軸は各ファージを示し、縦軸はＥＬＩＳＡ法における蛍光強度を示す。図９の結果より、実施例１において選抜したファージのうち、ファージＳ９５−１のみが、Cry j 1モノクローナル抗体Ｓ９５と結合するということが分かった。

またファージＢ０７−１、ファージＢ０７−３、ファージＢ０７−４、ファージＢ０７−８およびファージＢ０７−９についての結果を図１０に示した。横軸は各ファージを示し、縦軸はＥＬＩＳＡ法における蛍光強度を示す。図１０の結果より、実施例１において選抜したファージのうち、ファージＢ０７−８およびＢ０７−９のみが、Cry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７と結合するということが分かった。

なお図２、９、１０において「*」を付した結果は、陰性対照であるランダムファージの結果に対して危険率５％未満（Ｐ＜０．０５）において有意差があったことを示すものである。

〔実施例３：ファージ２６−２、２６-３の抗Cry j 1モノクローナル抗体との結合性〕
（方法）
１．０μg/mlとなるようにCry j 1 （発売元：生化学工業株式会社）を９６ウェルプレートにコートし、Cry j 1 に対するCry j 1モノクローナル抗体０２６（発売元：生化学工業株式会社）の結合を、ファージ２６−２または２６−３を用いて阻害した（ＥＬＩＳＡ inhibition）。陰性対照として、ランダムファージを用いた。具体的には、以下のようにして行なった。

ファージ２６−２、２６−３およびランダムファージを、それぞれ9.5×10¹¹個/50μlとなるようにBlocking buffer（3%スキムミルク, 1%BSA / PBST）で、５倍ずつ段階希釈を行なった。希釈したそれぞれのファージ溶液50μlと、500倍希釈したCry j 1モノクローナル抗体０２６（発売元：生化学工業株式会社）50μlとを混合し、４℃で一晩プレインキュベートを行なった。

９６ウェルプレートに、Bicarbonate buffer(100mM NaHCO₃pH9.2〜9.5)で1μg/mlとなるように、希釈したスギ花粉主要抗原Cry j 1（発売元:生化学工業株式会社）50μlをウェルにアプライし、２時間静置した。次にWashing buffer(Na₂HPO₄・12H₂O 43g, NaH₂PO₄3.6g, NaCl 263g, Tween20 15ml / 3L 蒸留水)で９６ウェルプレートを３回洗浄後、Blocking buffer 300μl をアプライし、４℃で一晩静置した。

次にプレートを３回洗浄後、プレインキュベートしていたサンプル50μlをそれぞれウェルにアプライし、３時間静置した。次に９６ウェルプレートを３回洗浄後、PBST（3%スキムミルク＋1%BSA入り）で1000倍希釈したBiotin-labeled anti-mouse IgG1（入手先：A Becton Dickinson co.） 50μlをウェルにアプライし、２時間静置した。PBSTの組成は、「NaCl 4g, Na₂HPO4・12H₂O 0.1g , KCl 1.45g, KH₂PO4 1g ,Tween20 15ml / 500ml蒸留水」である（以下同じ）。

次に９６ウェルプレートを６回洗浄後、PBST(3%スキムミルク+1%BSA入り)で1000倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識streptavidin（入手先：Roche, Mannheim, Germany）を50μlアプライし、室温で１時間静置した。その後９６ウェルプレートを６回洗浄し、Attophos^TMsubstrate buffer （プロメガ株式会社製）50μl をウェルにアプライし、遮光の状態で発色するまで放置した。蛍光強度をCyto^TMFluorII（日本パーセプティブ株式会社製）で測定した。

（結果）
結果を図３に示した。丸のシンボルはファージ２６−２の結果を示し、三角のシンボルはファージ２６−３の結果を示し、ひし形のシンボルはランダムファージの結果を示した。図３の結果によれば、ファージ２６−３よりもファージ２６−２の方が強い阻害を示すということがわかった。よって、Cry j 1モノクローナル抗体０２６に対する特異性は、ファージ２６−２の方が高いということが分かった。

〔実施例４：ペプチド２６−２と抗Cry j 1モノクローナル抗体との結合性〕
（方法）
ファージ２６−２が提示するペプチド（ペプチド２６−２：ＨＬＰＰＳＹＹＬＳＲＮＮ；配列番号２）、およびコントロールペプチド（ＴＴＴＲＦＳＱＤＭＡＷＷ；配列番号７）を化学合成により調製し、以下の試験に用いた。

1.0μg/mlとなるようにCry j 1 （発売元：生化学工業株式会社）を９６ウェルプレートにコートし、Cry j 1 に対するCry j 1モノクローナル抗体０２６の結合を、ペプチド２６−２を用いて阻害した（ＥＬＩＳＡ inhibition）。陰性対照として、上記コントロールペプチドを用いた。具体的には、以下のようにした。

ペプチド２６−２およびコントロールペプチドを、それぞれ1.0mg/mlとなるようにBlocking buffer（3%スキムミルク,1%BSA入りPBST）で５倍希釈を行なった。希釈したそれぞれのペプチド溶液50μlと、1000倍希釈したCry j 1モノクローナル抗体０２６（発売元：生化学工業株式会社）50μlとを混合し、４℃で一晩プレインキュベートした。

９６ウェルプレートに、Bicarbonate buffer(100mM NaHCO₃pH9.2〜9.5)で1μg/mlとなるように、希釈したスギ花粉主要抗原Cry j 1（発売元:生化学工業株式会社）50μlをウェルにアプライし、２時間静置した。次にWashing buffer(Na₂HPO₄・12H₂O 43g, NaH₂PO₄3.6g, NaCl 263g, Tween20 15ml / 3L 蒸留水)でプレートを３回洗浄後、Blocking buffer 300μl をアプライし、４℃で一晩静置した。

次に９６ウェルプレートを３回洗浄後、プレインキュベートしていたサンプル50μlをそれぞれウェルにアプライし、３時間静置した。次に９６ウェルプレートを３回洗浄後、PBST（3%スキムミルク＋1%BSA入り）で1000倍希釈したBiotin-labeled anti-mouse IgG1（入手先:A Becton Dickinson co.） 50μlをウェルにアプライし、２時間静置した。次に９６ウェルプレートを６回洗浄後、PBST(3%スキムミルク+1%BSA入り)で1000倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識streptavidin（入手先：Roche, Mannheim, Germany）を50μlアプライし、室温で１時間静置した。その後９６ウェルプレートを６回洗浄し、Attophos^TMsubstrate buffer （プロメガ株式会社製）50μl をウェルにアプライし、遮光の状態で発色するまで放置した。蛍光強度をCyto^TMFluorII（日本パーセプティブ株式会社製）で測定した。

（結果）
結果を図４に示した。丸のシンボルはペプチド２６−２の結果を示し、四角のシンボルはコントロールペプチドの結果を示した。図４の結果より、ペプチド２６−２の濃度を増加するに連れて阻害率が増加し、最終的には１００％の阻害を示すということが分かった。したがって、ペプチド２６−２はエピトープ構造を有しているということが分かった。

〔実施例５：ペプチド２６−２、ペプチドＳ９５−１、ペプチドＢ０７−１、ペプチドＢ０７−９と抗Cry j 1モノクローナル抗体との結合性〕
ペプチド２６−２（1mg/ml）およびCry j 1（100μg/ml）を、Blocking buffer（3%スキムミルク, 1%BSA / PBST）で５倍ずつ段階希釈した溶液50μlと、5000倍希釈したCry j 1モノクローナル抗体０２６（発売元：生化学工業株式会社）50μｌとをそれぞれ混合し、４℃で一晩プレインキュベートした。

またペプチドＳ９５−１（1mg/ml）およびCry j 1（100μg/ml）を、Blocking buffer（3%スキムミルク, 1%BSA / PBST）で５倍ずつ段階希釈した溶液50μlと、2500倍希釈したCry j 1モノクローナル抗体Ｓ９５ 50μｌとをそれぞれ混合し、４℃で一晩プレインキュベートした。

またペプチドＢ０７−１、ペプチドＢ０７−９（1mg/ml）およびCry j 1（100μg/ml）を、Blocking buffer（3%スキムミルク, 1%BSA / PBST）で５倍ずつ段階希釈した溶液50μlと、5000倍希釈したCry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７ 50μlとをそれぞれ混合し、４℃で一晩プレインキュベートした。

９６ウェルプレートにBicarbonate buffer(100mM NaHCO₃pH9.2〜9.5)で1μg/mlとなるように、希釈したスギ花粉主要抗原Cry j 1（発売元:生化学工業株式会社）50μlをウェルにアプライし、２時間静置した。次にWashing buffer(Na₂HPO₄・12H₂O 43g, NaH₂PO₄3.6g, NaCl 263g, Tween20 15ml / 3L 蒸留水)で96ウェルプレートを３回洗浄後、Blocking buffer 300μl をアプライし、４℃で一晩静置した。

次に９６ウェルプレートを３回洗浄後、プレインキュベートしていたサンプル50μlをそれぞれウェルにアプライし、３時間静置した。次に９６ウェルプレートを３回洗浄後、PBST（3%スキムミルク＋1%BSA入り）で1000倍希釈したBiotin-labeled anti-mouse IgG1（入手先:A Becton Dickinson co.） 50μlをウェルにアプライし、２時間静置した。次に９６ウェルプレートを６回洗浄後、PBST(3%スキムミルク+1%BSA入り)で1000倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識streptavidin（入手先：Roche, Mannheim, Germany）を50μlアプライし、室温で１時間静置した。その後９６ウェルプレートを６回洗浄し、Attophos^TMsubstrate buffer （プロメガ株式会社製）50μl をウェルにアプライし、遮光の状態で発色するまで放置した。蛍光強度をCyto^TMFluorII（日本パーセプティブ株式会社製）で測定した。

なお陰性対照として、９アミノ酸からなるBradykinin（ＲＰＰＧＦＳＰＦＲ:配列番号１８）を用いた。

（結果）
図１１にペプチド２６−２の結果を示した。同図中、四角のシンボルはCry j 1に対するモノクローナル抗体の結合をペプチド２６−２で阻害をかけた場合の結果を示し、ひし形のシンボルはポジティブコントロールとしてCry j 1で阻害をかけた場合の結果を示し、三角のシンボルはBradykininで阻害をかけた場合の結果を示す。図１２の結果より、ペプチド２６−２はCry j 1に対する抗体の結合を完全に阻害することができるということが分かった。またペプチド２６−２のアミノ酸配列と、Cry j 1のアミノ酸配列とを比較したところ、相同性のある部分がなかったことから、このペプチドはCry j 1モノクローナル抗体０２６に対するコンフォーメーショナルなエピトープであることが示唆された。

また図１２にペプチドＳ９５−１の結果を示した。同図中、四角のシンボルはCry j 1に対するモノクローナル抗体の結合をペプチドＳ９５−１で阻害をかけた場合の結果を示し、ひし形のシンボルはポジティブコントロールとしてCry j 1で阻害をかけた場合の結果を示し、三角のシンボルはBradykininで阻害をかけた場合の結果を示す。図１２の結果より、ペプチドＳ９５−１はCry j 1に対する抗体の結合を完全に阻害することができるということが分かった。またペプチドＳ９５−１のアミノ酸配列と、Cry j 1のアミノ酸配列とを比較したところ、相同性のある部分がないことから、このペプチドはCry j 1モノクローナル抗体Ｓ９５に対するコンフォーメーショナルなエピトープであることが示唆された。

また図１３にペプチドＢ０７−１およびＢ０７−９の結果を示した。同図中、四角のシンボルはCry j 1に対するモノクローナル抗体の結合をペプチドＢ０７−９で阻害をかけた場合の結果を示し、丸のシンボルはCry j 1に対するモノクローナル抗体の結合をペプチドＢ０７−１で阻害をかけた場合の結果を示し、ひし形のシンボルはポジティブコントロールとしてCry j 1で阻害をかけた場合の結果を示し、三角のシンボルはBradykininで阻害をかけた場合の結果を示す。図１３の結果より、ペプチドＢ０７−９はCry j 1に対する抗体の結合を完全に阻害することができるということが分かった。またペプチドＢ０７−９のアミノ酸配列とCry j 1のアミノ酸配列とを比較したところ、相同性のある部分がないことから、このペプチドはCry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７に対するコンフォーメーショナルなエピトープであることが示唆された。

〔実施例６：ペプチド２６−２とスギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体との結合性〕
（材料）
スギ花粉症患者（患者Ａ〜Ｐ）血清は、たかのはし中央病院耳鼻咽喉科（広島市）より入手し、以下の試験に用いた。なお上記スギ花粉症患者（患者Ａ〜Ｐ）は、１５歳から７０歳（男女問わず）で、スギ花粉アレルゲンに対するラスト値４以上を示す患者である。

（方法）
1.0μg/mlとなるようにCry j 1 （生化学工業株式会社）を９６ウェルプレートにコートし、Cry j 1 に対するスギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体の結合を、ペプチド２６−２（3.125μg）、Cry j 1 （0.250μg）を用いて阻害した（ＥＬＩＳＡ inhibition）。

ペプチド２６−２（3.125μg）およびCry j 1（0.250μg）を、Blocking buffer（3%スキムミルク, 1%BSA / PBST）に溶解させた溶液50μlと、２０倍希釈した患者血清50μlとを混合し、４℃で一晩プレインキュベートした。

９６ウェルマイクロタイタープレートに、Bicarbonate buffer(100mM NaHCO₃ pH9.2〜9.5)で1μg/mlとなるように、希釈したスギ花粉主要抗原Cry j 1（発売元:生化学工業株式会社）50μlをウェルにアプライし、２時間静置した。次にWashing buffer(Na₂HPO₄・12H₂O 43g, NaH₂PO₄3.6g, NaCl 263g, Tween20 15ml / 3L 蒸留水)で９６ウェルプレートを３回洗浄後、Blocking buffer 300μl をアプライし、４℃で一晩静置した。

次に９６ウェルプレートを３回洗浄後、プレインキュベートしていたサンプル50μlをそれぞれウェルにアプライし、４時間静置した。次に９６ウェルプレートを３回洗浄後、PBST（3%スキムミルク＋1%BSA入り）で1000倍希釈したBiotin-labeled anti-human IgE（入手先：ε chain-specific, Vector Laboratories, Burlingame, CA, USA） 50μlをウェルにアプライし、２時間静置した。次に９６ウェルプレートを６回洗浄後、PBST(3%スキムミルク+1%BSA入り)で1000倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識streptavidin（入手先：Roche, Mannheim, Germany）を50μlアプライし、室温で１時間静置した。その後９６ウェルプレートを６回洗浄し、Attophos^TMsubstrate buffer （プロメガ株式会社製）50μl をウェルにアプライし、遮光の状態で発色するまで放置した。蛍光強度をCyto^TMFluorII（日本パーセプティブ株式会社製）で測定した。

（結果）
結果を図５に示した。横軸に各スギ花粉症患者を示し、縦軸に蛍光強度をユニット（Ｕ）で示した。なお１Ｕ＝１００蛍光強度である。同図中白抜きの棒グラフはCry j 1 をコートしなかった場合の結果を示し、黒塗りの棒グラフはCry j 1に対するスギ花粉症患者血清ＩｇＥの結合をCry j 1で阻害した場合の結果を示し、斜線の棒グラフはCry j 1に対するスギ花粉症患者血清ＩｇＥの結合をペプチド２６−２で阻害した場合の結果を示した。

図５の結果より、ペプチド２６−２（3.125μg）は、Cry j 1 （0.250μg）を用いた場合と同様に、Cry j 1 に対するスギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体の結合を阻害するということが分かった。したがって、ペプチド２６−２には、Cry j 1 のＩｇＥエピトープが含まれているということが分かった。

さらに、ペプチド２６−２のアミノ酸配列（配列番号２）は、Cry j 1のアミノ酸配列（配列番号１）上に存在しないものであった。したがって、ペプチド２６−２にはCry j 1 の高次構造ＩｇＥエピトープが含まれているということが分かった。

〔実施例７：ペプチド２６−２、ペプチドＳ９５−１、Ｂ０７−９とスギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体との結合性〕
（牛血清アルブミンと各種ペプチドとのカップリング）
各種ペプチドを９６ウェルプレート上に固定化すべく、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）とカップリングさせることとした。

（Ａ法）まず45mg/mlのBSA溶液30μlと0.1M リン酸水素二水素ナトリウム(pH6.2)200μlとを混合した。50mg/mlのSulfo-NHS(PIERCE社製)溶液20μl添加して混合した。さらに50mg/mlのEDC(PIERCE社製)を20μl添加して混合し、室温で２０分間インキュベートした。続いて10mg/mlの各ペプチド溶液50μlと50mM MES(pH 6.0)1000μlとを混合した溶液を添加して、室温で２時間インキュベートした。反応物にPBS-TN(PBS, 0.02% Tween20, 0.05% sodium azide, pH7.4 )を加えながら、Microcon YM-3(MILLIPORE社製)を用いて限外ろ過を行なった。

（Ｂ法）まず10mg/mlのペプチド溶液100μlと0.1M リン酸水素二水素ナトリウム(pH6.2)600μlとを混合した。100mg/mlのSulfo-NHS(PIERCE社製)溶液70μlを添加して混合した。さらに50mg/mlのEDC(PIERCE社製)を70μl混合して混合し、室温で２０分間インキュベートした。続いて45mg/mlのBSA溶液200μlと50mM MES(pH 6.0)3000μlとを混合した溶液を追加して室温で２時間インキュベートした。反応物にPBS-TN(PBS, 0.02% Tween20, 0.05% sodium azide, pH7.4 )を加えながら、Microcon YM-3(MILLIPORE社製)を用いて限外ろ過を行なった。

（ＢＳＡとカップリングした各種ペプチドと患者血清ＩｇＥとの結合性）
ＢＳＡとカップリングさせたペプチド（ペプチド２６−２、ペプチドＳ９５−１、ペプチドＢ０７−９）と２倍濃度のBicarbonate buffer(100mM NaHCO₃ pH9.2〜9.5)とを１：１で混合し、９６ウェルプレートのウェルにアプライし、室温で２時間静置した。

Washing buffer(Na₂HPO₄・12H₂O 43g, NaH₂PO₄ 3.6g, NaCl 263g, Tween20 15ml / 3L 蒸留水)で９６ウェルプレートを３回洗浄後、Blocking buffer（3%スキムミルク, 1%BSA / PBS）を300μlアプライし、４℃で一晩静置した。

９６ウェルプレートを３回洗浄後、(3%スキムミルク+1%BSA)/PBST(NaCl 4g, Na₂HPO₄・12H₂O 0.1g , KCl 1.45g, KH₂PO₄1g ,Tween20 15ml / 500ml蒸留水)でスギ花粉症患者血清（患者Ａ〜Ｔ）を10倍希釈し、１時間インキュベートしたものを、ウェルに50μlにアプライし、４時間静置した。

９６ウェルプレートを3回洗浄後、(3%スキムミルク+1%BSA / PBSTで1000倍希釈したBiotin-labeled anti-human IgE（入手先：ε chain-specific, Vector Laboratories, Burlingame, CA, USA）をウェルに50μlアプライし、２．５時間静置した。

９６ウェルプレートを４回洗浄後、(3%スキムミルク+1%BSA) / PBSTで1000倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識streptavidin（入手先：Roche, Mannheim, Germany）を50μlアプライし、室温で１．５時間静置した。

９６ウェルプレートを５回洗浄後、Attophos^TM substrate buffer（プロメガ株式会社製）をwellに50μlアプライし、遮光の状態で発色するまで放置した。蛍光強度をCyto FluorII（日本パーセプティブ株式会社製）で測定した。なお陰性対照として、前出のBradykininを用いた。

なおスギ花粉症患者（患者Ａ〜Ｔ）血清は、たかのはし中央病院耳鼻咽喉科（広島市）より入手し、以下の試験に用いた。なお上記スギ花粉症患者（患者Ａ〜Ｔ）は、１５歳から７０歳（男女問わず）で、スギ花粉アレルゲンに対するラスト値４以上を示す患者である。

（結果）
結果を図１４に示した。横軸に各スギ花粉症患者を示し、縦軸に蛍光強度をユニット（Ｕ）で示した。なお１Ｕ＝１００蛍光強度である。また同図中、白抜きの棒グラフはペプチド２６−２に対する各スギ花粉症患者血清ＩｇＥの結合度を示す結果であり、黒塗りの棒グラフはペプチドＳ９５−１に対する各スギ花粉症患者血清ＩｇＥの結合度を示す結果であり、斜線の棒グラフはペプチドＢ０７−９に対する各スギ花粉症患者血清のＩｇＥ結合を示す結果であり、縦しまの棒グラフは陰性対照であるBradykininに対する各スギ花粉症患者血清ＩｇＥの結合度を示す結果である。なお同図において「*」を付した結果は、陰性対照であるBradykininの結果に対して危険率５％未満（Ｐ＜０．０５）において有意差があったことを示すものである。

図１４の結果より、ペプチドＳ９５−１は、スギ花粉症患者の２０人中４人の血清ＩｇＥと確かな結合活性を有するということが分かった。よってペプチドＳ９５−１はＩｇＥエピトープであることが明らかとなった。

以上のように本発明によれば、スギ花粉アレルゲンのＩｇＥエピトープのうち、特に高次構造エピトープ（以下「高次構造ＩｇＥエピトープ」という）を含むペプチド、そのペプチドをコードするポリヌクレオチド、およびそのペプチドと結合する抗体を提供すること、並びにそれらを用いてスギ花粉症の治療薬、診断キット等を提供することができ、スギ花粉症のメカニズムの解明、スギ花粉症の治療および改善、スギ花粉症の容易かつ詳細な診断等を行なうことが可能となる。

したがって、本発明はスギ花粉症の診断薬および治療薬等の開発を行なう医薬品産業等において特に有効利用が可能である。また本発明は、スギ花粉症根絶に大いに寄与するものである。

抗Cry j 1モノクローナル抗体（Cry j 1モノクローナル抗体０２６）を用いたPanningにおいて最終的に選抜されたファージが提示するアミノ酸配列を示す図である。 実施例１において選抜されたファージ（ファージ２６−１、ファージ２６−２、ファージ２６−３、ファージ２６−４、ファージ２６−５）と抗Cry j 1モノクローナル抗体（Cry j 1モノクローナル抗体０２６）との結合性を、ＥＬＩＳＡ法により検討した結果を示すヒストグラムである。 実施例２において選抜されたファージ（ファージ２６−２、ファージ２６−３）と抗Cry j 1モノクローナル抗体（Cry j 1モノクローナル抗体０２６）との結合性を、ＥＬＩＳＡ inhibitionにより検討した結果を示す折れ線図である。 化学合成により調製したペプチド２６−２と抗Cry j 1モノクローナル抗体（Cry j 1モノクローナル抗体０２６）との結合性を、ＥＬＩＳＡ inhibitionにより検討した結果を示す折れ線図である。 化学合成により調製したペプチド２６−２とスギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体との結合性を、ＥＬＩＳＡ inhibitionにより検討した結果を示すヒストグラムである。 （ａ）はシーケンシャルＩｇＥエピトープを説明する模式図であり、（ｂ）はコンフォーメーショナルＩｇＥエピトープを説明する模式図である。 抗Cry j 1モノクローナル抗体（Cry j 1モノクローナル抗体Ｓ９５）を用いたPanningにおいて最終的に選抜されたファージが提示するアミノ酸配列を示す図である。 抗Cry j 1モノクローナル抗体（Cry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７）を用いたPanningにおいて最終的に選抜されたファージが提示するアミノ酸配列を示す図である。 実施例１において選抜されたファージ（ファージＳ９５−１、ファージＳ９５−６およびファージＳ９５−９）と抗Cry j 1モノクローナル抗体（Cry j 1モノクローナル抗体Ｓ９５）との結合性を、ＥＬＩＳＡ法により検討した結果を示すヒストグラムである。 実施例１において選抜されたファージ（ファージＢ０７−１、ファージＢ０７−３、ファージＢ０７−４、ファージＢ０７−８およびファージＢ０７−９）と抗Cry j 1モノクローナル抗体（Cry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７）との結合性を、ＥＬＩＳＡ法により検討した結果を示すヒストグラムである。 実施例５においてペプチド２６−２とCry j 1モノクローナル抗体０２６との結合性を調べた結果を示す折れ線図である。 実施例５においてペプチドＳ９５−１とCry j 1モノクローナル抗体Ｓ９５との結合性を調べた結果を示す折れ線図である。 実施例５においてペプチドＢ０７−１およびペプチドＢ０７−９とCry j 1モノクローナル抗体Ｂ０７との結合性を調べた結果を示す折れ線図である。 実施例７において、ペプチド２６−２、ペプチドＳ９５−１、Ｂ０７−９とスギ花粉症患者血清ＩｇＥ抗体との結合性を調べた結果を示すヒストグラムである。

Claims (3)

1. Cry j 1の高次構造ＩｇＥエピトープを含む、以下の（ａ）〜（ｅ）のいずれかのペプチド：
   （ａ）配列番号２に示されるアミノ酸配列を含み、かつスギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合することを特徴とするペプチド；
   （ｂ）配列番号３に示されるアミノ酸配列を含み、かつスギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合することを特徴とするペプチド；
   （ｃ）配列番号８に示されるアミノ酸配列を含み、かつスギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合することを特徴とするペプチド；
   （ｄ）配列番号９に示されるアミノ酸配列を含み、かつスギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合することを特徴とするペプチド；および
   （ｅ）配列番号１０に示されるアミノ酸配列を含み、かつスギ花粉アレルゲン特異ＩｇＥ抗体と結合することを特徴とするペプチド。
2. 請求項１に記載のペプチドをコードすることを特徴とするポリヌクレオチド。
3. 請求項１に記載のペプチドを含むことを特徴とするスギ花粉症の診断キット。

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