JP4529015B2 - 金属結合タンパク質と関連した方法 - Google Patents
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Description
1.発明の分野:
本発明は、重金属への高い結合アフィニティーを有するユニークな金属結合タンパク質に概して関する。より特別には、本発明は、ユニークな金属結合タンパク質を包含する組成物と、関連した産生の方法、並びに重金属の低下又は回収が所望される場合の使用に向けられる。
金属回収及び金属救済(remediation)と金属廃棄物の浄化の効率的で安全な方法への関連ニーズは、金属汚染物質によりもたらされるヒトの健康への毒性及び潜在リスク、並びに貴重な重金属の経済価値のために、不断の環境及びビジネス上の関心事となっている。実際、農業、工業、及び他の商業活動からの重金属のような有毒廃棄物の放出が続くにつれて、有効かつ安全で低コストの金属救済法へのニーズが高まっている。米国環境保護局(EPA)による最近の報告書において、金属汚染は、多くの汚染地域で依然として重要な関心事であり、これまでもそうであった(USEPA 作業アサインメント番号011059、1997年3月5日、契約番号68−W5−0055)。さらに、汚染した土壌又は廃棄物質からの金属中毒の結果としてヒトの健康への危険だけでなく、野生生物、家畜、植物への損害に関する数多くの公表報告がある(「鉛汚染土壌の公衆衛生に及ぼす影響(Impact of Lead-Contaminated Soil on Public Health)」Xintaras, C. 著、1992年5月、http://www.atsdr.cdc.gov/cxlead.html)。例えば、ヒトへの主要な懸念は、鉛(Pb)汚染により創出される健康被害である。鉛への曝露は、食物、水、土壌からの鉛の摂取、又は粉塵の吸入といった多様な方法を介して起こり得る。鉛中毒はきわめて危険で潜在的に致命的であり、発作、精神遅滞、及び行動障害を含む症状を伴う。故に、金属救済の方法は、我々の環境の保護と疾患からの保護の両方できわめて貴重である。
先行技術のメタロチオネイン(MT)タンパク質は、一般に約60〜68アミノ酸残基のサイズであり、異なる種の間で高い度合いの配列保存性を有する。この高い度合いの配列保存性及び類似性はこのMT遺伝子の発見の容易さに大いに貢献したが、本発明の新規金属結合タンパク質は配列が実質的に異なるが故に、入手するのがずっと困難で、より多くの忍耐を必要とした。
のようなアミノ酸配列と、配列番号2又は配列番号4の1以上の保存性(conservative)アミノ酸置換を取り込む配列を包含することができる。本発明を金属回収及び金属救済の文脈で今後論じるが、本発明は、重金属の除去、回収、又は単に結合が所望される、多くの他の使用にも容易に適用可能であることに留意すべきである。
ヒト、齧歯動物、細菌、カニ、ニワトリ、等のような様々な種より単離された既知の金属結合タンパク質(MT)は、類似のサイズ(約6.0〜6.8kDa)、高いアミノ酸配列保存性、及びタンパク質の全アミノ酸組成中の高比率のシステイン残基のような非常に類似した構造特徴を有することが知られている。亜鉛、銅、カドミウム、水銀、コバルト、鉛、ニッケル、白金、銀、及び金のような重金属へのこのタンパク質の結合アフィニティーを説明するのは、これらの既知MTのシステイン組成である。
に類似したアミノ酸配列を有する。本発明の範囲内にはまた、タンパク質の金属結合アフィニティーを保存する、上記配列番号2の配列の変異体である、実質的に精製された金属結合タンパク質もある。特に、本発明の範囲内の保存性アミノ酸置換は、以下のいずれを含んでもよい:(1)イソロイシンのロイシン若しくはバリンでの置換、ロイシンのイソロイシンでの置換、そしてバリンのロイシン若しくはイソロイシンでの置換;(2)アスパラギン酸のグルタミン酸での置換とグルタミン酸のアスパラギン酸での置換;(3)グルタミンのアスパラギンでの置換とアスパラギンのグルタミンでの置換;並びに(4)セリンのスレオニンでの置換とスレオニンのセリンでの置換。
本発明の教示に従って、以下の例示プロトコールは、本発明の新規金属結合タンパク質の産生、精製、及び解析に有用な方法を例示する。
新規金属結合タンパク質の単離における準備工程として、アルテミア・ブラインシュリンプを人工海水(AS)(422.7mM NaCl,7.24mM KCl,22.58mM MgCl2・6H2O,25,52mM MgSO4・7H2O,1.33mM CaCl2・2H2O,及び0.476mM NaHCO3)に成育させた。アルテミア嚢胞(2.5g)を、抗生物質補充ASの250mlにおいて、125rpmで回転させながら30℃で48時間インキュベートした。24時間後、光合成アルテミアを採取し、さらに24時間培養してから、布濾過により採取した。このシュリンプを秤量し、すぐに使用しなければ、−80℃に保存した。
150K上清をSorvall SA−600ローターにおいて8,500rpm、4℃で30分間遠心分離した。次いで、生じた上清を、HPLC保証0.45ミクロンLC13アクロディスク(acrodisk)フィルター(Gelman Sciences)に通して濾過した。濾過した150K上清の20mlアリコートを2μlの109Cd(0.066μCi)とともに4℃で20分間インキュベートして金属結合タンパク質を放射標識した。次いで、この試料を、N2で飽和した50mM Tris−HCl(pH8.0)で予め平衡化したSephadex G−50分子量排除カラム(2.6x94cm)にかけた。試料ロードに先立って1モルのDTT(2μl)を分画60〜100へ加え、低分子量の金属結合タンパク質を含有する分画において還元条件を維持した。溶出液を280nmでモニターしながら、20ml/時間の流速の50mM Tris(pH8.0)でカラムを溶出した。溶出時間の間、緩衝液リザバーは絶えずN2でパージした。アミノ酸分析に使用する試料は放射標識しなかった。
新規金属結合タンパク質の構造特徴を確認するために、あらゆるクロマトグラフィー及び分子量試験を実施した。使用したプロトコールはいずれも B. Harpham,「金属結合タンパク質のアルテミアからの単離(Isolation of Metal Binding Proteins From Artemia)」、修士論文、カリフォルニア州立大学、ロングビーチライブラリー(1998)にすでに記載の通りであった。当該技術分野でよく知られていて、例えば B. Harpham,「金属結合タンパク質のアルテミアからの単離(Isolation of Metal Binding Proteins From Artemia)」、同上に記載される、陰イオン交換及び逆相クロマトグラフィー技術を使用して、アルテミア由来の金属結合タンパク質を精製し、他の既知の金属結合タンパク質より予想外に低い分子量とアミノ酸配列長さを有することを決定した。SDS−PAGE条件下で、アルテミアの金属結合タンパク質は、他の哺乳動物種由来の金属結合タンパク質の6〜7kDaに比較して、約5.8kDaの分子量を有する。アルテミア金属結合タンパク質のタンパク質分析は、48個のアミノ酸の配列長さを示す。アルテミアのアミノ酸配列は、60〜68個のアミノ酸残基の長さに及ぶ他の既知の金属結合タンパク質よりも、長さが予想外に、そして有意に短かかった。
本発明の教示により、以下に、新規な金属結合タンパク質の遺伝子をクローニングするのに有効な例示の戦略を教示する。クローニングした金属結合タンパク質遺伝子とその配列情報は、本発明の方法に有用な金属結合タンパク質の発現に特に有用である。
RNAゾール(zol)法を使用して、48時間のナウプリウスより全RNAを単離した。48時間ナウプリウスの試料は、実施例1において上記に記載のように調製した。次いで、PolyTract Procedure(プロメガ、ウィスコンシン州)を使用して全RNA試料よりmRNAを単離した。SuperScript及び3’RACEキット法(カタログ番号18373、ギブコ/BRL、ウィスコンシン州)を使用してmRNAよりcDNAを産生してから、以下の合成反応へかけた。
使用した初発のPCRプライマー配列は以下の通りであった:
「MT−NotI」[配列番号5]と命名した5’プライマー(N末端側)は:
95℃で3分間の初発の変性に続き、29サイクルの:
MT NcoI[配列番号9](NdeIサイトを含む5’プライマー)
以下は、金属結合タンパク質としてのタンパク質の検証か又は新規な金属結合タンパク質としてのタンパク質の同定のいずれかに役立つ、本発明の新規金属結合タンパク質のいずれかについて実施し得る例示の試験を教示する。例えば、本発明の金属結合タンパク質は、亜鉛、カドミウム、及び銅のような重金属へ結合することが可能である。図1に示すように、重金属へ結合する単離タンパク質の能力を、本発明の例示MTでの E. coli の開示される形質転換において記載して詳述した。
トランスジェニックタバコ植物
TOPO.CR2ベクターへクローニングしたMTのcDNAをpARTmtと呼ぶ。TMVコートタンパク質のω−5’非翻訳領域を多重クローニング部位とインフレームで含有するpUC18ベースのプラスミドへMTのコード配列をクローニングした(図2を参照のこと)。これは、5’プライマー上にNcoI制限部位、そして3’プライマー上にSalI部位を含有するPCRプライマーを使用して、pARTmt由来のMTコード配列の増幅により達成した。このPCR産物とベクターをそれぞれNcoIとSalIで制限酵素処理し、精製した。次いで、T4 DNAリガーゼを使用して、該ベクターへPCR産物を連結した。このライゲーション混合物を使用して、エレクトロポレーションによりDH5α細胞を形質転換した。LB培地に個別コロニーを接種し、一晩増殖させた。プラスミドを単離し、配列決定して、MTコード配列の存在及び完全性を検証した。
A. tumefaciens を、エレクトロポレーションによりサイトゾルpSSmt構築体で形質転換し、抗生物質を含有するYEB培地、pH7.4において27℃で一晩増殖させた。この細胞を採取し、誘導培地(YEB,pH5.8,抗生物質、及び20μMアセトシリンゴン)に再懸濁し、27℃で一晩増殖させた。翌朝、細胞を遠心分離により採取し、浸潤培地(抗生物質と200μMアセトシリンゴンを含有するMMA緩衝液)において1.5のA600まで再懸濁し、室温で2時間インキュベートした。この細菌懸濁液に植物の葉を浸漬し、真空デシケーターに入れた。葉は、30〜40ミリバールの真空下で浸潤させた。この葉を室温に72時間置いてから、液体窒素中で微粉末になるまで粉砕し、10mM Tris(pH=8.0),0.05mM DTT,1mM PMSFで抽出した。30,000xgでの遠心分離によりこの溶液を澄明にし、上清について109Cd金属結合アッセイを使用してMTをアッセイした。金属結合活性は、明らかに、アルテミアMTの遺伝子を含有する葉において明白である。
pSSmtで形質転換した A. tumefaciens の懸濁物を上記のように増殖させた。葉を(中心葉脈のない)小片へ切断し、50〜100mlの細菌懸濁液(A600〜1.0)を含有する無菌のweckガラスへ移し、室温で30分間インキュベートした。次いで、この葉片を、プラスチックのペトリ皿において滅菌水で予湿した無菌のWhatman 3MM濾紙上に移した。この皿をサランラップで密封し、26〜28℃、暗所で2日間インキュベートした。次いで、抗生物質を含有する滅菌水でこの葉片を洗浄し、MS II寒天プレート上へ移した。この小片を25℃で3〜4週間、16時間の日長でインキュベートした。苗条が生じはじめたとき、この苗条を取り出してMS III寒天プレート上へ移し、25℃で16時間の日長でインキュベートすると、やがて根が生えはじめた。MS III培地を含有するweckガラスへこの小植物を移し、25℃、16時間の日長で、約2週間インキュベートした。次いで、この若い植物を土壌へ植えた。植物からの若葉を採取し、上記のようにMT活性をアッセイし、トランスジェニック植物を決定した。
Claims (26)
- 配列番号2を含むアミノ酸配列をコードする核酸又はそれらの縮重変異体;配列番号4を含むアミノ酸配列をコードする核酸又はそれらの縮重変異体;アルテミア金属結合(MT)タンパク質をコードする配列番号1のヌクレオチド配列を含む核酸;及び、アルテミアMTタンパク質の金属結合領域をコードする配列番号3のヌクレオチド配列を含む核酸;からなる群から選択される単離核酸。
- ブラインシュリンプ(brine shrimp)から単離された、請求項1記載の核酸。
- ブラインシュリンプがアルテミア属由来である、請求項2記載の単離核酸。
- DNAである、請求項1〜3のいずれか1項記載の単離核酸。
- アミノ酸配列がアルテミアMTタンパク質である、請求項1記載の単離核酸。
- 配列番号1のヌクレオチド配列からなる、請求項1記載の単離核酸。
- 配列番号3のヌクレオチド配列からなる、請求項1記載の単離核酸。
- 配列番号1又は配列番号3のヌクレオチド配列を含む核酸を含むベクター。
- さらに少なくとも1の、前記核酸の発現又は調節を制御するコントロール配列を含む、請求項8記載のベクター。
- コントロール配列が、オペレーター、プロモーター、エンハンサー及びプロモーター近接因子からなる群から選択される、請求項9記載のベクター。
- 請求項8〜10のいずれか1項記載のベクターを含む、改変宿主細胞。
- 宿主細胞が、細菌、酵母、藻類、哺乳類細胞からなる群から選択される、請求項11記載の改変宿主細胞。
- 宿主細胞がアルテミアMTタンパク質又は金属結合アミノ酸配列を発現する、請求項12記載の改変宿主細胞。
- 基質から少なくとも1の金属を除去するための装置であって、前記基質が接触することができる、少なくとも1の純粋なアルテミア金属結合(MT)タンパク質が結合する支持体を含み、前記金属が前記少なくとも1のMTタンパク質と結合して前記基質から除去され、ここで前記少なくとも1のMTタンパク質が配列番号2のアミノ酸配列を含む、前記装置。
- 基質から少なくとも1の金属を除去するための装置であって、前記基質が接触することができる、少なくとも1の純粋なアルテミア金属結合(MT)タンパク質が結合する支持体を含み、前記金属が前記少なくとも1のMTタンパク質と結合して前記基質から除去され、ここで前記少なくとも1のMTタンパク質が配列番号4のアミノ酸配列を含む、前記装置。
- 支持体が、マトリックス、膜、半透膜、粉体及び樹脂からなる群から選択される、請求項14または15記載の装置。
- 基質が、水、土壌及び汚泥からなる群から選択される、請求項14〜16いずれか1項記載の装置。
- 基質から除去される少なくとも1の金属が、金、銀、プラチナ、亜鉛、銅、カドミウム、水銀、ニッケル、鉛、コバルト、それらの放射性同位体並びにそれらの組合わせからなる群から選択される、請求項14〜17いずれか1項記載の装置。
- 支持体が膜である、請求項14〜18いずれか1項記載の装置。
- 基質から少なくとも1の金属を除去する方法であって、以下の:
少なくとも1の金属結合(MT)タンパク質が結合している1の支持体を提供する工程;
少なくとも1の金属がある基質を前記支持体と接触させて、前記少なくとも1の金属を、前記少なくとも1のMTタンパク質と結合させる工程;
前記基質から、前記少なくとも1のMTタンパク質に結合した前記少なくとも1の金属がある前記支持体を分離する工程;及び
支持体から前記少なくとも1の金属を回収して、前記基質から前記少なくとも1の金属を除去する工程;
を含み、ここで前記少なくとも1のMTタンパク質が配列番号2のアミノ酸配列を含む、前記方法。 - 基質から少なくとも1の金属を除去する方法であって、以下の:
少なくとも1の金属結合(MT)タンパク質が結合している1の支持体を提供する工程;
少なくとも1の金属がある基質を前記支持体と接触させて、前記少なくとも1の金属を、前記少なくとも1のMTタンパク質と結合させる工程;
前記基質から、前記少なくとも1のMTタンパク質に結合した前記少なくとも1の金属がある前記支持体を分離する工程;及び
支持体から前記少なくとも1の金属を回収して、前記基質から前記少なくとも1の金属を除去する工程;
を含み、ここで前記少なくとも1のMTタンパク質が配列番号4のアミノ酸配列を含む、前記方法。 - 提供する工程がさらに、アルテミア属ブラインシュリンプから、前記少なくとも1の純粋なMTタンパク質を得る工程を含む、請求項20または21記載の方法。
- 接触する工程がさらに、水、土壌及び汚泥からなる群から選択される基質と、前記MTタンパク質がある前記支持体と接触される工程を含む、請求項20〜22いずれか1項記載の方法。
- 基質から回収される少なくとも1の金属が、金、銀、プラチナ、亜鉛、銅、カドミウム、水銀、ニッケル、鉛、コバルト、それらの放射性同位体並びにそれらの組合わせからなる群から選択される、請求項20〜23いずれか1項記載の方法。
- 供給された支持体が、マトリックス、膜、半透膜、粉体及び樹脂からなる群から選択される、請求項20〜24いずれか1項記載の方法。
- 支持体が膜である、請求項20〜25いずれか1項記載の方法。
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