JP4515446B2 - 薬剤を製造するためのミルナシプランの(1s,2r)エナンチオマーの使用 - Google Patents
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Description
Z−(±)フェニル−1−アミノメチル−2−シクロプロパン−カルボン酸の塩酸塩(F1567):
特徴:白色結晶
融点:230℃
プレートクロマトグラフィー:媒体:シリカ
溶媒:ブタノール/エタノール/水(6/2/2)
顕色剤:紫外線およびニンヒドリン
Rf:0.6
(±)フェニル−3 メチレン−3−4 ピロリドン−3(F1612):
特徴:白色結晶
融点:70℃
プレートクロマトグラフィー:媒体:シリカ
溶媒:ベンゼン/ジオキサン/エタノール(90/25/4)
顕色剤:紫外線およびヨウ素
Rf:0.46
Z(±)−(パラ−ヒドロキシフェニル)−1−ジエチルアミノカルボニル−1−アミノメチル−2−シクロプロパンの塩酸塩(F2782):
特徴:白色結晶
融点:250℃
プレートクロマトグラフィー:媒体:シリカ
溶媒:ブタノール/エタノール/水(6/2/2)
顕色剤:紫外線およびヨウ素−ニンヒドリン
Rf:0.42
Z(±)−フェニル−1−エチルアミノカルボニル−1−アミノメチル−2−シクロプロパンのシュウ酸塩(F2800):
特徴:白色結晶
融点:150℃
プレートクロマトグラフィー:媒体:シリカ
溶媒:CHCl3/メタノール/NH4OH(90/9/1)
顕色剤:紫外線およびニンヒドリン
Rf:0.40
Z(±)−フェニル−1−アミノカルボニル−1−アミノメチル−2−シクロプロパンの塩酸塩(F2941)
特徴:白色結晶
融点:245℃
プレートクロマトグラフィー:媒体:シリカ
溶媒:CHCl3/メタノール/NH4OH(80/18/2)
顕色剤:紫外線およびニンヒドリン
Rf:0.30
− 心調律異常、特に、患者の心拍数の上昇。
鬱病、特に、深い抑鬱状態、難治性鬱病、高齢者の鬱病、心因性鬱病、インターフェロン治療により誘発される鬱病、抑鬱状態、躁鬱症候群、季節性鬱症状、全般的な健康状態に関連する鬱症状、向精神薬に関連する鬱症状、双極性障害、精神分裂症、全般性不安、不機嫌および衰弱状態、ストレス関連疾患、パニック発作、恐怖症、特に、広場恐怖症、強迫性障害、行動障害、反抗性障害、心的外傷後ストレス障害、免疫系の低下、疲労および随伴疼痛症候群、慢性疲労症候群、線維筋痛、ならびにその他の身体機能障害、自閉症、全般的な健康状態による注意欠陥障害、注意欠陥多動障害、摂食障害、神経性過食症、神経性食欲不振、肥満、精神病性障害、アパシー、片頭痛、疼痛、特に、慢性疼痛、過敏性大腸症候群、心血管疾患、特に、心筋梗塞または高血圧症における不安性抑鬱症候群、神経変性疾患および関連不安性抑鬱症候群(アルツハイマー病、ハンチントン舞踏病、パーキンソン病)、尿失禁、特に、ストレスおよび遺尿に関連する尿失禁、薬物嗜癖、特に、タバコ(特に、ニコチン)、アルコール、麻薬、薬物、これらの中毒状態から脱するのに使用される鎮痛薬への不安性依存症。
鬱病、特に、深い抑鬱状態、難治性鬱病、高齢者の鬱病、心因性鬱病、インターフェロン治療により誘発される鬱病、抑鬱状態、躁鬱症候群、季節性鬱症状、全般的な健康状態に関連する鬱症状、向精神薬に関連する鬱症状の治療または予防において、同時に、別々に、または時間をずらして使用する組合せ製品として、
a)ミルナシプランおよび/または少なくとも1つのその代謝産物のエナンチオマー、ならびにそれらの薬学上許容される塩の、(1S,2R)エナンチオマー含量の高いエナンチオマー混合物、ならびに
b)向精神薬、特に、抗鬱薬および抗ムスカリン作用薬の中から選択される少なくとも1つの活性化合物
も含む。
セロトニン(5−HT)およびノルアドレナリン(NA)再取り込みの二重阻害によって治療可能な症状または障害の治療または予防において、同時に、別々に、または時間をずらして使用する組合せ製品として、
a)ミルナシプランおよび/または少なくとも1つのその代謝産物のエナンチオマー、ならびにそれらの薬学上許容される塩の、(1S,2R)エナンチオマー含量の高い前記エナンチオマー混合物、ならびに
b)器官毒性を引き起こす活性化合物、ならびに組織毒性、特に、肝および/または腎毒性を引き起こす活性化合物の中から選択される少なくとも1つの他の活性物質(あるいは肝または腎不全の治療を目的とする1以上の活性物質を含む)
も含む。
セロトニン(5−HT)およびノルアドレナリン(NA)再取り込みの二重阻害によって治療可能な症状または障害の治療または予防において、同時に、別々に、または時間をずらして使用する組合せ製品として、
a)ミルナシプランおよび/または少なくとも1つのその代謝産物のエナンチオマー、ならびにそれらの薬学上許容される塩の、(1S,2R)エナンチオマー含量の高い前記エナンチオマー混合物、ならびに
b)心血管副作用を引き起こす活性化合物または心臓病を治療するために与えられる化合物の中から選択される少なくとも1つの他の活性物質
も含む。
塩酸ミルナシプラン(F2207)およびそのエナンチオマー(F2695およびF2696)についての薬物動態研究を、種々の動物種およびヒトで行った。
動物において、ラセミ化合物の投与後または単一エナンチオマーの投与後に各エナンチオマーの薬物動態を調査した。F2695およびF2696エナンチオマーの血漿濃度は調べた動物種(サルおよびラット)においてはほぼ同じである。
塩酸ミルナシプラン(F2207)の2つのエナンチオマー(F2695およびF2696)を、ラット脳におけるノルアドレナリンおよびセロトニンの取り込み、ならびにパロキセチン(paroxetine)結合についてin vitroにて調査した。
2.1.1.ラット視床下部のホモジネート(P 2 )によるノルアドレナリン取り込み
P2の調製
200〜300gの雄Sprague-Dawleyラットを気絶させ、断頭し、視床下部を手早く摘出した。2つの視床下部を4mlのスクロース0.32M中、Potter Sにて、800rpmで16回往復することでホモジナイズした後、1000gにて10分間遠心分離し、細胞残屑を除去する。上清を10000gにて20分間遠心分離し、このようにして得られたP2を4mlのスクロース0.32M中に回収し、Dounceにてホモジナイズする。
3H−(1)−NA:13Ci/mmol(Amersham)を使用する。
使用する30分前にO2/CO2(95%/5%)の混合物で事前酸素処理したリン酸バッファー(1リットル当たり8gのNaCl、1.21gのK2HPO4および0.34gのKH2PO4を含有)中に取り込みを行う。
100μlのバッファーまたは阻害剤、
700μlのバッファー(25μMのパルギリン含有)、
100μlのP2。
温度が平衡状態に達したら、100μlの3H−NA、最終濃度50nMの添加により反応を開始する。
阻害率は、式:
{(全取り込み−NS)−(阻害剤の存在下での取り込み−NS)}/(全取り込み−NS)
を用いて算出する。
IC50は、阻害剤濃度の対数に対する阻害率の平均曲線(4回のアッセイ)のグラフから決定する。
方法は、Gray and Whittaker(1962, J. Anat., 96: 79-97)のものに従って構築した。脳組織をスクロース溶液中でホモジナイズした後には、シナプス前末端は軸索から分かれ、閉鎖し、細胞下分画により得られるシナプトソームを形成している。
・ 350μlの30分前に事前酸素処理した冷却バッファー(NaCl 136mM、KH2PO4 2.4mM、K2HPO4 6.9mM、pH 7.2)、
・ 50μlの膜(最終的には5mg/ml)、
・ 非特異的な取り込み用の50μlのシタロプラム(最終的には10−5M)、
・ 50μlの3H−5−HT(最終的には50nM)(NEN, France, 28.4Ci/mmol)。
フィルターで収集した放射能を、Emulsifier-Safe(Packard)を用いる液体シンチレーションにより測定した(Packard Tricarb 4640)。
IC50は、阻害率を製品濃度の対数に対するグラフに置き換えて決定した(6濃度2試験)。
重量180〜200gの雄Sprague-Dawleyラット(Janvier)を使用した。数匹のラットの視床下部を集め、5mlの冷却バッファー(50mM Tris−HCl、120mM NaCl、5mM KCl、pH 7.5)中、Dounceにてホモジナイズし、そのホモジネートを30000gにて10分間遠心分離した(27000rpm−Beckman. L5−50E、ローター T40)。得られた残渣を5mlのバッファー中に回収し、同じ条件下で再び遠心分離した。新しい残渣を同じバッファー中に回収し、最後に、Dounceにて組織濃度10mg/mlに再びホモジナイズした。膜懸濁液(100μl)を濃度(最終)0.1nMの3H−パロキセチン(NEN, France, 28.6Ci/mmol)とともにに、最終量1ml中、20℃にて2時間インキュベートした。インキュベーションの2時間後、30分前に0.05%ポリエチレンイミン溶液で前処理した(4mlの冷却バッファーで希釈調製した後、その試験管を2回4mlですすいだ)Whatman GF/Fフィルターでの真空濾過により反応を停止させた。放射能を、シンチレーション液としてEmulsifier-Safe(Packard)を用いる液体シンチレーション分光測定(Packard、Tricarb 4640)により測定した。
IC50は、阻害率を製品濃度の対数に対するグラフに置き換えて決定した(6濃度2試験)。
F2207:バッチ番号10−CTN3 Key P118
F2695:バッチ番号PL−I−205
F2696:バッチ番号PL−I−204C。
F2207およびその2つのエナンチオマーのノルアドレナリンおよびセロトニン取り込みならびにパロキセチン結合への影響を、F2207、F2695およびF2696の濃度(M)を横座標に、対する阻害率(%)を縦座標にしたグラフで示す(データは示していない)。2回調べた、各製品濃度に対する阻害率の値は、4回の独立試験の平均結果である。
F2695はF2207より2倍活性が高かった。
F2695はF2696より25倍活性が高かった。
セロトニン取り込みにおいて:
F2695はF2207より3倍活性が高かった。
F2695はF2696より12倍活性が高かった。
パロキセチン結合において:
F2695はF2207より2倍活性が高かった。
F2695はF2696より10倍活性が高かった。
3.1.緒論
以上のことから、F2207およびF2695のa)経口経路により単回投与した後の心拍数(n=28 イヌ)への影響、ならびにb)イヌにおいて経口経路により5日間連続投与した後の収縮期および弛緩期血圧(n=6 イヌ)への影響を調べるために調査を設計した。
− 脱イオン水で処置する群1(対照)、
− F2207で20mg/kg/日の用量にて処置する群2、
− F2695で10mg/kg/日の用量にて処置する群3。
同時に埋め込まれる動物が少数であること(最大8)、使用する装置の記録レーン数(8レーン)をかんがみて、かつ、同質的な処置群を構成するために、4調査により総括的評価を行った。各調査は、3シリーズに分け(3製品各々での各動物の処置)、プローブの再初期設定を含むウォッシュアウト期間によって区切りをつけた。各シリーズ自体は2段階で実施する:
− 全ての動物を封じ込めおよび胃挿管による経口処置に適合させるためにそれらを脱イオン水で処置する第1段階、
− 動物が各処置を受ける第2段階(心拍数については単回投与、調査番号894/926/935/936;血圧については5日間連続投与、調査番号894)。
− 単回投与前、
− 単回処置後6時間にわたって30分おき。
− 処置前、
− 処置後6時間にわたって30分おき。
3.3.1. 心拍数(4調査統合)に関しては、個々の回数の変化について、処置前の値に対する処置試験後の12回の値各々について、ならびに各記録時間における絶対心拍数値についてテューキー検定を実施した。
#変化値について統計分析を行った場合には(図1):
− F2207(20mg/kg)の単回投与後最初の1/2時間からの心拍数の有意な上昇、処置後最大5.5時間持続的に上昇(処置後の時点0.5および5.5時間−p≦0.01−ならびに時点5.0時間−p≦0.05−を除いて、全収集時間についてp≦0.001)、
− F2695の投与後の心拍数の上昇がF2207の投与後に得られたものよりも小さいこと。さらに、投与から1および4時間の時点でのこのF2207とF2695との効果の差は有意であり(p<0.05)、F2695に有利であること、
− F2695を受けた場合の心拍数の上昇はF2207を受けた場合よりも持続時間が短い(1.0〜4.5時間)(処置後最大5.5時間持続する)こと。
− F2207(20mg/kg)の単回投与後最初の1時間からの心拍数の有意な上昇、処置後最大5.5時間持続的に上昇(処置後の時点3.5時間−p≦0.01を除いて、1.0〜4.5時間の全収集時間についてp≦0.001;ならびに収集時間 処置後5.5時間についてp≦0.01)、
− F2695の投与後の心拍数の上昇がF2207の投与後に得られたものよりも小さいこと。さらに、投与から1および4時間の時点でのこのF2207とF2695との効果の差は有意であり(p<0.05)、F2695に有利であること、
− F2695を受けた場合の心拍数の上昇はF2207を受けた場合よりも持続時間が短い(1.0〜4.5時間)(処置後最大5.5時間持続する)こと。
− 脱イオン水による処置に対し、F2207(20mg/kg/日)またはF2695(10mg/kg/日)の5日間連続投与後においての弛緩期血圧の有意な上昇(p≦0.001)、
− F2207(20mg/kg/日)の5日間連続投与後の平均弛緩期血圧値とF2695(10mg/kg/日)の連続投与後の平均弛緩期血圧値において有意な差(p≦0.05)、
− 収縮期血圧に対して有意な影響を及ぼさないこと;従って、注目すべきはF2695の5日間連続投与後のsBP値が脱イオン水による処置後のsBP値に近いことである。
遠隔測定装置が埋め込まれた覚醒イヌにおける経口投与による一連の4調査において実施した本評価の試験条件下では:
単回投与の場合、対照群(n=28)に対して、心拍数の上昇が明らかに有意であり、20mg/kg/日の用量のF2207では持続していた;同等に薬理学的に有効な用量10mg/kg/日のF2695では、その上昇が統計上および臨床上少なく、より一時的なものであった。
4.1.材料および方法
F2695およびF2696化合物、ラセミ化合物分子F2207のエナンチオマー、ならびにクロミプラミン、参照製品、(調査ではC218と符号化した)を本調査で評価した。最終試験に使用する3種類の濃度を選択するために、まず、2つのエナンチオマー、F2695およびF2696を初代ラット肝細胞での予備細胞毒性試験(MTTアッセイ)により評価した。
Safe-Hitは、予測毒性薬理学についてのゲノム試験であり、製品をそれらの毒性の最適評価に基づいて比較し、順位付けすることが可能な、感度が高く、厳格で、信頼性があり、迅速かつ確実な試験である。
− 種々の製品を、予備細胞毒性試験(MTTアッセイ)により推定した3種類の異なる濃度で用いての細胞系統の処置:80%細胞生存に相当する参照濃度、可能であれば、10倍高い濃度および10倍低い濃度、
− 全RNAとその対応する放射性同位元素標識cDNAプローブの調製、
− cDNAプローブのハイブリダイゼーション:WTp53の過剰発現(p53はこの方法論の進行から選択される最も遍在する細胞ストレスの「メディエーター」である)により誘導される遺伝子スプライシングの変化に対応する682種類の独立クローンを含有するSafe-Hitマクロアレイ、
− 毒性指数の取得および決定。
調査(細胞毒性についての予備MTTアッセイおよび本試験)に使用する細胞は、標準条件下で培養した、Sprague-Dawleyラットの凍結保存肝細胞初代培養物(バッチ Hep 184005およびHep 184006−Biopredic)である。
− 融解培地: 100IU/mlのペニシリン、100μg/mlのストレプトマイシンおよび0.6Mのグルコースを添加したグルタマックス1含有Leibovitz 15培地(バッチ MIL 210009−Biopredic)、
− 播種培地: 100IU/mlのペニシリン、100μg/mlのストレプトマイシン、4μg/mlのウシインスリンおよび10%v/vウシ胎児血清を添加したグルタマックス1含有ウィリアムズE培地(バッチ MIL 260005)−Biopredic)、
− インキュベーション培地: 100IU/mlのペニシリン、100μg/mlのストレプトマイシン、4μg/mlのウシインスリンおよび50μMのヘミコハク酸ヒドロコルチゾンを添加したグルタマックス1含有ウィリアムズE培地(バッチ MIL 260009〜260007−Biopredic)。
37℃、CO2雰囲気(5%)、相対湿度(95%)。
細胞毒性試験(MTTアッセイ)は、ミトコンドリアの活性を示す細胞呼吸の完全性を明示する比色反応を利用して生細胞を検出する試験である。水溶性のMTT(臭化3−[4,5−ジメチルチアゾール−2−イル]−2,5−ジフェニルテトラゾリウム)は、生細胞のミトコンドリア内酵素の影響下での分解により紫色の不溶性ホルマザンに変化する。ホルマザンを有機溶媒に可溶化し、得られた溶液を分光光度法により測定する。吸光度測定値は生存細胞数に比例する。
このように曝露させた後、MTT溶液(初代肝細胞のインキュベーション培地中0.5mg/ml)を3時間添加する。ホルマザン結晶を可溶化した後、マルチウェルプレートを分光光度計により500nmにて読み取り、細胞生存率を決定する。
本調査は、試験間の一貫性を高め、得られた結果の正当性を立証するために、各製品に曝露した播種培養物を用いて2回実施する。
細胞を播種し、予備MTTアッセイに基づいて選択される3種類の濃度の各製品とともに16時間培養する;2つの対照(非処置細胞および溶媒単独)を一連のものに加える。
処置後、RNAを抽出し、以下のように解析する:
− 細胞の収集および遠心分離、
− 抽出、製造業者のプロトコールに従い、調製済フェノール試薬(トリゾール−バッチ 1106266および1121067−Invitrogen)を用いて実施、
− RNAの水への可溶化、
− 分光光度法によるRNAアッセイ(260、280および300nmにて光学密度を測定)、
− Agilentの使用によるRNAの質の検証。
cDNAプローブを放射性逆転写(α dATP33P−Amersham)により調製する。プローブが確実に放射能を有するように放射性cDNAを定量する(インスタントイメージャー−Packard)。
682種のDATASクローン(選択的スプライシングによるパターン)をQ-Pix装置(GENETIX)を用いてプレカットナイロン(Q-BIOgene)で作製されたSafe-Hitメンブレン上に置く(2組)。DNAプローブをメンブレンと一晩ハイブリダイズさせ、メンブレンを洗浄する。
− マトリックス: 5μgの全RNA(各処置系列に関して、そして、各濃度に関して)、
− プライマー: ラットでの第1回および第2回ハイブリダイゼーションに関して、100ngのオリゴ−dTVオリゴヌクレオチド(バッチ 12.00,Invitrogen)、
− 主要混合物:
10μlの第1鎖5×プレミアバッファー(バッチ 1131226−Invitrogen)
1μlのdCTP+dGTP+dTTP 20mM(バッチ 1105201−Invitrogen)
1μMのATP 120μM(バッチ 1105201−Invitrogen)
5μlのジチオスレイトール(DTT) 0.1M(バッチ 133609−Invitrogen)
1μlのOut 40U RNアーゼ(バッチ 1113345−Invitrogen)
5μlの33pdATP 3 000Ci/mmol 10mCi/μl(バッチ B0239−Amersham)
4μlのスーパースクリプト II(バッチ 1137806−Invitrogen)
1μlのグリコーゲン(バッチ 1129328−Invitrogen)
RNAとオリゴ−dTVを70℃にて10分間インキュベートし、その後、氷上に置く。27μlのマスターミックスを添加し、43℃にて1時間、次いで、50℃にて15分間インキュベートする。20μlの水の後、20μlのEDTA 50mM、次いで、4μlのNaOH 10Nを添加する。65℃にて20分間インキュベートし、その後、氷上に置く。
8μlの酢酸、100μlのイソプロパノールおよび1μlのグリコーゲン(20μg/μl)を添加する。−20℃にて20分間インキュベートし、4℃にて、13000rpmにて20分間遠心分離する。200μlの水で懸濁液として再構成する、定量:インスタントイメージャー,Packard:1μlの反応混合物。
5mlのプレハイブリダイゼーションバッファーをハイブリダイゼーションチューブに等分し、
対応する量のサケ精子DNAを最終濃度100μg/mlまで添加し、
メンブレンを5×SSCに浸漬し、
メンブレンをハイブリダイゼーションチューブに入れ、65℃にて2時間プレハイブリダイズする。
プレハイブリダイゼーションバッファーを除去し、10〜20mlの5×SSCで洗い流し、
5×SSCを除去し、5mlのバッファー+サケ精子DNAに取り替え、
RTプローブを95℃にて5分間変性させた後、氷上に1分間置き、
チューブ内で再構成した後、適当量の変性RTプローブを回収するために遠心分離し(100000〜200000cpm/ml)、55℃にて一晩インキュベートする。
メンブレンを10〜20mlの洗浄バッファー1で洗い流し、
そのバッファーを除去し、それを50mlの洗浄バッファー2に取り替え、
35℃にて30分間インキュベートした後、バッファー4で洗浄しながら除去し、置き換え、55℃にて30分間インキュベートし、その後、最終洗浄バッファーを捨て、
メンブレンをチューブから取り出し、それらをカセット上に置き、取得を3時間継続する。
メンブレンをスクリーン(FX イメージングスクリーンK−Bio-rad)上に3時間置く。その後、パーソナルモレキュラーイメージャー FX(Bio-rad)を用いてフィルムを読み取る。画像は、Safe-Hitリーダーソフトウェア(COSE)を使用して解析する。
全データを、種々のメンブレンを正規化し、任意濃度の特定化合物に関し、非処置の対照の結果と比べて、アップレギュレートおよびダウンレギュレートされた遺伝子数の合計に相当する毒性指数を算出する自動計算プログラムに移す。次いで、2つのSafe-Hit解析結果を比較し、組み合わせて、種々の試験化合物の潜在毒性を評価する。ユーザーによって変更可能な2パラメーターが毒性指数の算出に関係する:
バックグラウンド閾値(BT)により、バックグラウンドノイズに近く、かつ、重要な遺伝子発現に帰することのない弱いシグナルを除く。従って、これにより検出閾値が決定される;
誘導係数(IF)は、対照サンプルに対する、アップレギュレートまたはダウンレギュレートされるであろうクローンの増倍率として決定される。適切な結果を得るためのこのパラメーターの値は、通常、2以下である。段階的に上昇するIF値はさらに強くアップレギュレートまたはダウンレギュレートされるクローンを選択する値である。
− 得られた全ての値のlog値への変換、
− 二重アッセイでの各平均log値の算出(MiRおよびMiE)、
− 全てのシグナルについてのMiR−MiE(=Di)に関するマトリックスの作成、
− MiEからDiの隣接した14個の値の中央値を引くことによる各MiE値の正規化(=NMiE)、
− 正規化値の参照値との比較(Ci=NMiE−MiR)、
− Ciの指数変換(=Fi)、
− Fiのユーザーによって選択された誘導係数との比較:
− Fi>IFの場合には、その遺伝子がアップレギュレートされていると考えられ、
− 1/IF<Fi<IFの場合には、その遺伝子には変化がないと考えられ、
− Fi<1/IFの場合には、その遺伝子ダウンレギュレートされていると考えられる。
これらのアッセイを16時間曝露した初代ラット肝細胞について3回実施した。
クロミプラミン(C218と記す)では、細胞を16時間曝露した後に細胞生存が認められなかったため、100μMにて著しい毒性が示された。逆に、25μMでは毒性は認められなかった。50μMでの80%を超える細胞生存は、ゲノム薬物毒性研究と完全に一致している。F2695およびF2696化合物は、このアッセイにおいて、100μMの濃度でさえも細胞毒性がないことが示される。
実施するアッセイにおけるF2695およびF2696の評点獲得能力を比較するため、各試験で同じ濃度を使用した:1μM、10μMおよび100μM。クロミプラミンについては、1μM、10μMおよび50μMの濃度を使用した。図6a、6bおよび6cを参照。
毒性指数(IT)を上記のように決定した。シグナルがバックグラウンド閾値(BT)より2倍高かったクローンだけを考慮に入れ、対照と比べて変化したことが認められるクローンだけを2つの独立した試験で検討した。2つの独立した解析を非処置の対照に対する2つの分化水準(誘導係数−IF)を用いて行った:
− 非処置の対照に対する係数少なくとも1.7。 1.7倍のこの係数は最小値であり、2つの非処置の対照との比較では指数が得られない。
− 非処置の対照に対する係数少なくとも2。 2倍のこの係数では、最も強いシグナルが考慮される。
係数2にて過剰発現および過少発現したクローンに関し、F2695では、100μMの濃度でさえ、いかなるサインも現れなかった。
F2207の薬理学的に有効なエナンチオマーであるF2695は、この試験において重大な影響を及ぼすものではなかったが、クロミプラミンは正の対照とする参照製品として使用される。
こうしたあらゆる点が、この実験モデルにおいて、F2696よりも安全係数が極めて有意に良好である、活性F2695エナンチオマーについての優れた毒性ゲノムプロフィールを示す証拠となる。
ラット肝細胞初代培養物を用いて、F2207のエナンチオマーであるF2695およびF2696分子(濃度10、50および100μMにて)、ならびにC218(クロミプラミン、濃度1、10および50μMにて)で実施したゲノム薬物毒性調査では、濃度依存性ストレスサインと毒性指数を得た。これらの調査により、MTTアッセイのような古典的細胞生死判別アッセイにおいていかなる毒性も引き起こさない処置条件(濃度、処置期間)下でストレスサインを明示するゲノム薬物毒性試験の性能が確認される。
− 初代ラット肝細胞モデルでは、F2207の薬理学的に有効なエナンチオマーであるF2695だけが有意な毒性指数を与えなかった;
− F2207の不活性エナンチオマーであるF2696と参照向精神薬製品であるクロミプラミンは顕著な指数を与え、非常に類似したまたは共通のストレスサインが認められた。この系では、正の対照となる参照分子のクロミプラミンでは、最小濃度で始めた場合に、最大数のストレスサイン、有意な指数がもたらされることが観察された。この件に関し、興味深いことには、クロミプラミンによって、ヒトにおいて、頻脈、起立性低血圧症、心伝導系または心調律異常、例外的に、肝炎などの一定数の有害事象が引き起こされ得る。クロミプラミンを誤って過量投与した場合には、失神、血液異常および重篤な心血管症状が認められることもある。
Claims (17)
- ラセミ混合物形態のミルナシプランの投与に関連する心血管障害の危険性を制限しながら、肝および/または腎不全を有する患者、肝臓もしくは腎臓および/または組織毒性を引き起こす治療を受けている患者、心臓病の治療を受けている患者、心血管副作用を引き起こす治療を受けている患者、心血管疾患の病歴のある患者および/または心血管障害に罹患している患者から選択される患者における、鬱病、尿失禁、全般性不安、パニック発作、恐怖症、強迫性障害、行動障害、疲労および随伴疼痛症候群、疼痛、および薬物依存症から選択される障害または症状を治療または予防するための、医薬組成物であって、
ミルナシプラン(Z(±)−2−(アミノメチル)−N,N−ジエチル−1−フェニルシクロプロパンカルボキサミド)の(1S,2R)エナンチオマーまたはその薬学上許容される塩を含んでなる、医薬組成物。 - 心血管障害が血圧の上昇および/または心拍数の上昇である、請求項1に記載の医薬組成物。
- 血圧の上昇が弛緩期血圧の上昇である、請求項2に記載の医薬組成物。
- 器官および/または組織毒性の危険性をさらに制限する、請求項1〜3のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 器官毒性が心毒性であり、かつ、組織毒性が肝および/または腎毒性である、請求項4に記載の医薬組成物。
- ミルナシプランの(1S,2R)エナンチオマーが、Z−(1S,2R)−2−(アミノメチル)−N,N−ジエチル−1−フェニルシクロプロパンカルボキサミド(F2695)の塩酸塩である、請求項1〜5のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 深い抑鬱状態、難治性鬱病、高齢者の鬱病、心因性鬱病、インターフェロン治療により誘発される鬱病、抑鬱状態、躁鬱症候群、季節性鬱症状、全般的な健康状態に関連する鬱症状、または、向精神薬に関連する鬱病状の治療または予防のための、請求項1〜6のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 広場恐怖症、慢性疼痛、慢性疲労症候群、または、線維筋痛の治療または予防に用いられる、請求項1〜6のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- ストレスおよび遺尿に関連する尿失禁の治療または予防のための、請求項1〜6のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- タバコ、アルコール、麻薬、薬物、および/またはこれらの中毒状態から脱するのに使用される鎮痛薬への不安性依存症の治療または予防のための、請求項1〜6のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 心血管疾患および/または心血管障害の病歴が、心筋梗塞、心調律異常(頻脈、徐脈、心悸亢進)、血圧異常(低血圧または高血圧患者)および心臓病の中から選択される、請求項1〜10のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- ラセミ混合物形態のミルナシプランの投与に関連する心血管障害の危険性を制限しながら、肝および/または腎不全を有する患者、肝臓もしくは腎臓および/または組織毒性を引き起こす治療を受けている患者、心臓病の治療を受けている患者、心血管副作用を引き起こす治療を受けている患者、心血管疾患の病歴のある患者および/または心血管障害に罹患している患者から選択される患者における、鬱病の治療または予防のために、同時に、別々に、または時間をずらして使用する組合せ製品であって、
a) ミルナシプランの(1S,2R)エナンチオマーまたは1つのその薬学上許容される塩と、
b) 向精神薬および抗ムスカリン作用薬から選択される少なくとも1つの活性化合物と
を含んでなる、組合せ製品。 - 鬱病が、深い抑鬱状態、難治性鬱病、高齢者の鬱病、心因性鬱病、インターフェロン治療により誘発される鬱病、抑鬱状態、躁鬱症候群、季節性鬱症状、全般的な健康状態に関連する鬱症状、および、向精神薬に関連する鬱症状から選択される、請求項12に記載の組合せ製品。
- 向精神薬が、抗鬱薬である、請求項12または13に記載の組合せ製品。
- 鬱病、尿失禁、全般性不安、疲労および随伴疼痛症候群、疼痛、および薬物依存症から選択される障害または症状の治療または予防のために、同時に、別々に、または時間をずらして使用する組合せ製品であって、
a) ミルナシプランの(1S,2R)エナンチオマーまたは1つのその薬学上許容される塩と、
b) 器官毒性を引き起こす活性化合物、および、細胞毒性を引き起こす活性化合物の中から選択される少なくとも1つの他の活性物質と
を含んでなる、組合せ製品。 - 細胞毒性が、肝および/または腎毒性である、請求項15に記載の組合せ製品。
- 鬱病、尿失禁、全般性不安、疲労および随伴疼痛症候群、疼痛、および薬物依存症から選択される障害または症状の治療または予防のために、同時に、別々に、または時間をずらして使用する組合せ製品であって、
a) ミルナシプランの(1S,2R)エナンチオマーまたは1つのその薬学上許容される塩と、
b) 心血管副作用を引き起こす活性化合物の中から選択される少なくとも1つの他の活性物質と
を含んでなる、組合せ製品。
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