JP4476989B2 - ヒト腫瘍壊死因子αに対する特異性を有する抗体分子およびそれらの使用 - Google Patents
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Description
軽鎖可変領域のCDRは、Kabat番号付けに従って、24-34番残基(CDRL1)、50-56番残基(CDRL2)、および89-97番残基(CDRL3)に位置している。
TNFαは免疫系の細胞によって放出され、それらの細胞と相互作用する催炎作用性サイトカインである。従って、TNFαはグラム陰性細菌のリポポリサッカライド(LPS)によって活性化されたマクロファージによって放出される。このように、TNFαはバクテリア敗血症と関連した内毒素性ショックの発生と病理に関与する非常に重要な内在性仲介物質であるように見える。TNFαは、慢性関節リウマチ、クローン病、潰瘍性大腸炎および多発性硬化病のような慢性疾病を含む多くのヒト疾病においてアップレギュレーションされることが示されている。ヒトTNFαについてトランスジェニックであるマウスは構成的に高レベルのTNFαを産生し、慢性関節リウマチに似た自発的破壊性多発性関節炎を発生させる(Kafferら、EMBO J, 10, 4025-4031, 1991)。従って、TNFαはプロ催炎作用性サイトカインと称される。
好ましくは、本発明の第1または第2の側面による抗体分子は、可変領域がCDRH1として図3にH1として記載した配列(配列番号1)、CDRH2として図3にH2'として(配列番号2)または図3にH2として(配列番号7)記載した配列、または、CDRH3として図3にH3として記載した(配列番号3)配列を有するCDR(Kabatによる定義(上述))を含む重鎖、並びに、可変領域がCDRL1として図3にL1として記載した配列(配列番号4)、CDRL2として図3にL2として(配列番号5)記載した配列、または、CDRL3として図3にL3として記載した(配列番号6)配列を有するCDR(Kabatによる定義(上述))を含む軽鎖、を含む。
CDRが移植される場合、そのCDRが由来するドナー抗体のクラス/タイプを考慮しつつ、マウス、霊長類およびヒトフレームワーク領域を含むどんな適当なアクセプター可変領域フレームワーク配列も使用することができる。本発明において使用し得るヒトフレームワークの例はKOL、NEWM、REI、EU、TUR、TEI、LAYおよびPOM(Kabatら、上述)である。例えば、KOLおよびNEWMは重鎖に使用でき、REIは軽鎖に使用でき、EU、LAYおよびPOMは重鎖及び軽鎖のいずれにも使用できる。軽鎖のための好ましいフレームワーク領域は図1に示したヒトグループ1フレームワーク領域(配列番号83、85、87および89)である。重鎖のための好ましいフレームワーク領域は図2に示したグループ1およびグループ3フレームワーク領域である(それぞれ、配列番号91、93、95および97、および配列番号106、107、108および109)。
本発明の抗体分子は以下を含み得る:完全長重鎖および軽鎖を有する完全な抗体分子;Fab、改変Fab、Fab'、F(ab')2、またはFv断片のような、それらの断片;軽鎖又は重鎖モノマー、またはダイマー;一本鎖抗体、例えば重鎖および軽鎖可変領域がペプチドリンカーによって結合している一本鎖Fv。同様に、重鎖及び軽鎖可変領域は適宜他の抗体領域と結合していても良い。
このポリマー分子は、一般には、合成ポリマーまたは天然に存在するポリマーであってよく、例えば場合によっては置換されていても良い、直鎖若しくは分枝したポリアルキレン、ポリアルケニレン若しくはポリオキシアルキレンポリマー、または分枝若しくは非分枝の多糖、例えば、ホモ-多糖またはヘテロ-多糖であってよい。
好ましくは、本発明の抗体分子は軽鎖可変領域hTNF40-gL1(配列番号8)および重鎖可変領域gh3hTNF40.4(配列番号11)を含んでいる。これらの軽鎖および重鎖の可変領域の配列はそれぞれ図8および11に示した。
好ましくは、本DNA配列は本発明の抗体分子の重鎖または軽鎖をコードする。
別の好ましい態様では、本DNA配列は重鎖をコードし、配列番号10(gh1hTNF40.4)または配列番号11(gh3hTNF40.4)またはそれらの縮重した等価物を含む。
本発明はまた、本発明の1以上のDNA配列を含むクローニングベクターまたは発現ベクターに関する。好ましくは、本クローニングベクターまたは発現ベクターは本発明の抗体分子の軽鎖および重鎖をそれぞれコードする2つのDNA配列を含む。
本発明はまた図19に示したベクターpDNAbEng-G1を含む。
本発明の抗体分子をコードするDNA配列を調製するために分子生物学の標準的な技法を使用することができる。所望のDNA配列はオリゴヌクレオチド合成技法を用いて完全にまたは部分的に合成することができる。適切ならば、部位特異的変異導入およびポリメラーゼ連鎖反応(PCR)技術を使用することができる。
本発明はまた、本発明の抗体分子を製薬的に許容できる賦形剤、希釈剤または担体と混合することを含む、治療用または診断用組成物を調製する方法を提供する。
本発明の抗体分子が投与される用量は、治療される状態の性質、所望のレベルを越えて生じた中和すべきまたは中和されると期待されるTNFαのレベルの程度、および、抗体分子が予防的に使用されるか既存の状態を治療するために使用されるかに依存する。
また、本発明の抗体は遺伝子治療の利用によって投与することができることも予測される。これを達成するためには、適切なDNA要素の制御下にある、抗体分子の重鎖及び軽鎖をコードするDNA配列を患者に導入し、抗体鎖をそのDNA配列から発現させin situでアッセンブルさせる。
本発明はさらに、TNFαによって媒介される疾病の治療のための医薬品の製造における本発明の抗体の使用を提供する。
本発明はまた、TNFαによって媒介される疾病にかかった、またはその危険のあるヒト若しくは動物患者の治療方法であって、患者に本発明の抗体の効果的量を投与することを含む前記方法を提供する。
本発明は、短縮された(truncated)ドナーCDR配列を含むハイブリッドCDRを含む抗体分子も提供する。その短縮されたドナーCDRの欠失部分は異なる配列によって置換され、機能のあるCDRを形成している。本明細書において、用語「ハイブリッドCDR」は1以上の位置において、例えばその末端の一方または両端において短縮されたドナーCDRを含むCDRを意味する。その短縮されたドナーCDRの欠失部分は異なる配列によって置換され、完全かつ機能のあるCDRを形成している。ハイブリッドCDRは完全なドナーCDRに比較して少なくとも一つのアミノ酸置換を有する。CDRの短縮された部分を置換する配列はどのような配列であってもよい。好ましくは、CDR配列の非ドナー部分は、生殖細胞系列抗体配列のような、その抗体分子のフレームワーク領域が由来する抗体に由来するものである。
好ましくは、ドナーCDRの短縮は1〜8アミノ酸、より好ましくは4〜6アミノ酸である。短縮はCDRのC-末端で行われることがさらに好ましい。
本発明はまた、本発明のハイブリッドCDRを含む抗体分子をコードする核酸配列を含む発現ベクターを提供する。
本発明はまた、本発明の宿主細胞を培養し、抗体分子を単離することを含む、ハイブリッドCDRを含む抗体分子を生産する方法を提供する。
キメラhTNF40抗体分子の遺伝子クローニングおよび発現
hTNF40ハイブリドーマ細胞からのRNA調製
全RNAを以下に示すように3x107個のハイブリドーマ細胞から調製した。
hTNF40重鎖および軽鎖の可変領域をコードするcDNA配列を逆転写酵素を使って合成し、全RNA中に存在するmRNAの一本鎖cDNAコピーを作製し、続いてそのcDNAに対して特異的オリゴヌクレオチドプライマーによりポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を行った。
以下の試薬を含む20μlの反応体積中でcDNAを合成した:50mM Tris-HCl pH8.3、75mM KCl、10mM ジチオスレイトール、3mM MgCl2、0.5mMの各デオキシリボヌクレオシド三リン酸、20ユニットRNAsin、75ngのランダムヘキサヌクレオチドプライマー、2μgのhTNF40 RNAおよび200ユニットのモロニーマウス白血病ウイルス逆転写酵素。42℃にて60分間インキュベーション後、95℃にて5分間加熱することにより反応を停止させた。
cDNAのアリコートを重鎖および軽鎖に特異的なプライマーの組合せを用いてPCRにかけた。重鎖および軽鎖のために5'プライマーヌクレオチド配列はそれぞれ表1および表2に示した。これらの配列はすべて、順に、その5'末端から7ヌクレオチドから始まる制限酵素部位、生じるmRNAの最適翻訳を可能とするための配列GCCGCCACC(配列番号12)、開始コドン、および既知のマウス抗体のリーダーペプチド配列(Kabatら、Sequences of proteins of immunological interest, 第5版、1991、米国保健社会福祉省, 公衆衛生局, 国立衛生研究所)に基づく20〜30ヌクレオチドを含んでいる。
軽鎖反応プール2において生成されたDNA断片を酵素BstBIおよびSplIで消化し、エタノール沈殿により濃縮し、1.4%アガロースゲル上で電気泳動して、400塩基対の範囲のDNAバンドを回収した。これらをBstBIおよびSplIで切断しておいたベクターpMR15.1(図4)中にライゲーションによりクローン化した。ライゲーション後、混合物で大腸菌LM1035を形質転換し、得られたバクテリアコロニーからのプラスミドをBstBIおよびSplI消化により挿入物についてスクリーニングした。各ライゲーションからの挿入物を有する代表物をさらにヌクレオチドシーケンシングによって解析した。
多数の単離物からのVh挿入物を含むプラスミドDNAをプライマーR1053(表5参照)(pMR14中のHCMVプロモーターの3'領域でプライミングする)およびR720(表5参照)(ヒトC-γ4の5'領域中でプライミングし、pMR14上のDNA挿入物を通してシーケンシングを可能とする)を用いてシーケンシングした。多数のクローン中のVh挿入物のヌクレオチド配列はシグナルペプチドおよびJ領域の相違を除いて同一であることが見いだされた。このことは、調べたクローンがPCR段階でオリゴヌクレオチド混合物からの異なるプライマーが利用されたことによって生じた独立の単離物であったことを示している。抗体hTNF40の重鎖の可変領域(hTNF40Vh)の決定したヌクレオチド配列および予想されるアミノ酸配列は図7に示した(配列番号100)。
表1 マウス重鎖の5'領域のためのオリゴヌクレオチドプライマー
CH1 : 5'ATGAAATGCAGCTGGGTCAT(G,C)TTCTT3' (配列番号:13)
CH2 : 5'ATGGGATGGAGCT(A,G)TATCAT(C,G)(C,T)TCTT3' (配列番号:14)
CH3 : 5'ATGAAG(A,T)TGTGGTTAAACTGGGTTTT3' (配列番号:15)
CH4 : 5'ATG(G,A)ACTTTGGG(T,C)TCAGCTTG(G,A)T3' (配列番号:16)
CH5 : 5'ATGGACTCCAGGCTCAATTTAGTTTT3' (配列番号:17)
CH6 : 5'ATGGCTGTC(C,T)T(G,A)G(G,C)GCT(G,A)CTCTTCTG3' (配列番号:18)
CH7 : 5'ATGG(G,A)ATGGAGC(G,T)GG(G,A)TCTTT(A,C)TCTT3' (配列番号:19)
CH8 : 5'ATGAGAGTGCTGATTCTTTTGTG3' (配列番号:20)
CH9 : 5'ATGG(C,A)TTGGGTGTGGA(A,C)CTTGCTATT3' (配列番号:21)
CH10 : 5'ATGGGCAGACTTACATTCTCATTCCT3'(配列番号:22)
CH11 : 5'ATGGATTTTGGGCTGATTTTTTTTATTG3' (配列番号:23)
CH12 : 5'ATGATGGTGTTAAGTCTTCTGTACCT3' (配列番号:24)
上記プライマーのそれぞれは、その5'末端に加えた配列5' GCGCGCAAGCTTGCCGCCACC 3' (配列番号25)を有している。
表2 マウス軽鎖の5'領域のためのオリゴヌクレオチドプライマー
CL1 : 5'ATGAAGTTGCCTGTTAGGCTGTTGGTGCT3' (配列番号:26)
CL2 : 5'ATGGAG(T,A)CAGACACACTCCTG(T,C)TATGGGT3' (配列番号:27)
CL3 : 5'ATGAGTGTGCTCACTCAGGTCCT3' (配列番号:28)
CL4 : 5'ATGAGG(G,A)CCCCTGCTCAG(A,T)TT(C,T)TTGG3' (配列番号:29)
CL5 : 5'ATGGATTT(T,A)CAGGTGCAGATT(T,A)TCAGCTT3' (配列番号:30)
CL5A : 5'ATGGATTT(T,A)CA(A,G)GTGCAGATT(T,A)TCAGCTT3' (配列番号:31)
CL6 : 5'ATGAGGT(T,G)C(T,C)(T,C)TG(T,C)T(G,C)AG(T,C)T(T,C)CTG(A,G)G3'(配列番号:32)
CL7 : 5'ATGGGC(T,A)TCAAGATGGAGTCACA3' (配列番号:33)
CL8 : 5'ATGTGGGGA(T,C)CT(G,T)TTT(T,C)C(A,C)(A,C)TTTTTCAAT3'(配列番号:34)
CL9 : 5'ATGGT(G,A)TCC(T,A)CA(G,C)CTCAGTTCCTT3' (配列番号:35)
CL10 : 5'ATGTATATATGTTTGTTGTCTATTTC3' (配列番号:36)
CL11 : 5'ATGGAAGCCCCAGCTCAGCTTCTCTT3'(配列番号:37)
CL12A : 5'ATG(A,G)AGT(T,C)(A,T)CAGACCCAGGTCTT(T,C)(A,G)T3' (配列番号:38)
CL12B : 5'ATGGAGACACATTCTCAGGTCTTTGT3' (配列番号:39)
CL13 : 5'ATGGATTCACAGGCCCAGGTTCTTAT3' (配列番号:40)
CL14 : 5'ATGATGAGTCCTGCCCAGTTCCTGTT3' (配列番号:41)
CL15 : 5'ATGAATTTGCCTGTTCATCTCTTGGTGCT3' (配列番号:42)
CL16 : 5'ATGGATTTTCAATTGGTCCTCATCTCCTT3' (配列番号:43)
CL17A : 5'ATGAGGTGCCTA(A,G)CT(C,G)AGTTCCTG(A,G)G3' (配列番号:44)
CL17B : 5'ATGAAGTACTCTGCTCAGTTTCTAGG3' (配列番号:45)
CL17C : 5'ATGAGGCATTCTCTTCAATTCTTGGG3' (配列番号:46)
上記プライマーのそれぞれは、その5'末端に付加した配列5' GGACTGTTCGAAGCCGCCACC 3'(配列番号47)を有している。
表3 マウスVhおよびVl遺伝子の3'末端のためのオリゴヌクレオチドプライマー
軽鎖 (CL12 ) :
5'GGATACAGTTGGTGCAGCATCCGTACGTTT3' (配列番号:48)
重鎖 ( R2155 ) :
5'GCAGATGGGCCCTTCGTTGAGGCTG(A,C)(A,G)GAGAC(G,T,A)GTGA3' (配列番号:49)
表4
a)軽鎖PCR反応のための5'プライマー混合物
プール1 : CL2
プール2 : CL7
プール3 : CL13
プール4 : CL6
プール5 : CL5A, CL9, CL17A
プール6 : CL8
プール7 : CL12A
プール8 : CL1, CL3, CL4, CL5, CL10, CL11, CL2B, CL14, CL15, CL16, CL17B, CL17C
b)重鎖PCR反応のための5'プライマー混合物
プール1 : CH1, CH2, CH3, CH4
プール2 : CH5, CH6, CH7, CH8
プール3 : CH9, CH10, CH11, CH12
表5 ヌクレオチド配列解析に用いたプライマー
R1053 : 5'GCTGACAGACTAACAGACTGTTCC3' (配列番号:50)
R720 : 5'GCTCTCGGAGGTGCTCCT3' (配列番号:51)
キメラ遺伝子の活性の評価
キメラ遺伝子の活性はそれらを哺乳動物細胞で発現させ、新たに合成された抗体を精製し定量することによって評価した。このための方法論は以下に記載してあり、続いてこの抗体の生物学的特徴づけのために使用した生化学的および細胞ベースのアッセイについて記載してある。
生物学的評価のためのキメラ抗体は、適切な重鎖および軽鎖対のチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞へのリン酸カルシウム沈殿を用いた共トランスフェクション後に一過性発現によって作製した。
翌日、トランスフェクションの3時間前に培養液を交換した。トランスフェクションのために、50μgの各重鎖および軽鎖発現ベクターを含む0.25M のCaCl2 1.25mlを1.25mlの2xHBS(1リットル中、16.36g NaCl、11.0g HEPESおよび0.4g Na2HPO4、NaOHでpH7.1に調整)と混合してリンサンカルシウム沈殿を調製し、直ちに細胞の培地に添加した。CO2インキュベーター中で37℃にて3時間後、培地および沈殿を除去し、リン酸緩衝食塩水(PBS)中の15mlの15%グリセロールを1分間添加することにより細胞にショックを与えた。グリセロールを除去し、細胞をPBSで一度洗浄し、10mM酪酸ナトリウムを含む25mlの培地中で48〜96時間インキュベーションした。抗体は、プロテインA-セファロースへの結合と溶出によって培地から精製することができる。
ELISAのために、Nunc ELISAプレートをコーティングバッファー(15mM炭酸ナトリウム、35mM炭酸水素ナトリウム、pH6.9)中の5μg/mlの抗ヒトFc断片特異的ポリクローナルヤギ抗体のF(ab)2断片(Jackson Immunoresearch, コード 109-006-098)で4℃にて一晩コーティングした。蒸留水で5回洗浄することによりコーティングしなかった抗体を除去した。定量すべきサンプルおよび精製標準品をコンジュゲートバッファー(0.1M Tris-HCl、pH7.0、0.1M NaCl、0.2% v/v Tween 20、0.2%ハマーステン(Hammersten)カゼイン)中でおよそ1μg/mlに希釈した。サンプルをマイクロタイターウェル内で2倍系列希釈して各ウェル最終体積0.1mlとし、振盪しながら室温にて1時間インキュベーションした。第1のインキュベーション工程後、プレートを蒸留水で10回洗浄し、次に前のように、コンジュゲートバッファー中で1:700希釈した0.1mlのマウスモノクローナル抗ヒトκ(クローンGD12)ペルオキシダーゼコンジュゲート抗体(The Binging Site, コードMP135)と1時間インキュベーションした。再びプレートを洗浄し、基質溶液(0.1ml)をウェルに添加した。基質溶液は、150μlのN, N, N, N-テトラメチルベンジジン(DMSO中10mg/ml)、10mlの0.1M酢酸ナトリウム/クエン酸ナトリウム、pH6.0溶液中の150μlの過酸化水素(30%溶液)を含む。プレートを630nmでの吸光度が適当になるまで5〜10分間現像した。プレート読み取り機を用いて630nmにおける吸光度を測定し、標準品の滴定曲線と比較することによってサンプルの濃度を測定した。
hTNF40とヒトTNFの間の結合相互作用は、BIA技術を用いて調べた。hTNF40の定常領域に対するアフィニティー精製したヤギポリクローナル抗体を、標準的なNHS/EDC化学を用いてデキストランポリマーセンサーチップ表面に固体化した。質量輸送効果が最小になるように比較的低レベル(200〜500 RU)のhTNF40を捕捉した。種々の濃度のヒトTNFを捕捉したhTNF40上に通過させ、結合キネティクスを評価できるようにした。リガンドの注入につづいてバッファーを表面上に通過させ解離を測定できるようにした。固相hTNF40とヒトTNFとの相互作用について結合および解離速度定数を計算し、KD値を導いた。
実施例1
hTNF40のCDR移植
hTNF40抗体の重鎖および軽鎖の可変領域に対する遺伝子の分子クローニングおよびキメラ(マウス-ヒト)hTNF40抗体を作製するためのそれらの使用を上述した。マウスhTNF40 VlおよびVhのヌクレオチド配列およびアミノ酸配列をそれぞれ図6および7に示した(配列番号99および配列番号100)。本実施例ではhTNF40抗体のCDR移植を記載する。
hTNF40軽鎖のフレームワーク領域と4つのヒト軽鎖サブグループのフレームワーク領域(Kabatら、1991, 上述)とのアラインメントは、hTNF40はヒト軽鎖サブグループ1の抗体と最も相同であることを明らかにした。従って、CDR移植軽鎖の構築のためにヒトグループ1コンセンサス配列に対応するフレームワーク領域を選んだ。
hTNF40-gL1の構築を以下に詳細に記載した。以下の重複するオリゴヌクレオチド(P7982-P7986)をポリメラーゼ連鎖反応(PCR)に使用して、短縮された移植軽鎖をアッセンブルした。アッセンブルした断片は抗体リーダー配列およびフレームワーク1の最初の17アミノ酸を欠失している。
5'GAATTCAGGGTCACCATCACTTGTAAAGCCAGTCAGAACGTAGGTACTAACGTAGCCTGGTATCAGCAAA3' (配列番号:52)
オリゴ2 P7983:
5' ATAGAGGAAAGAGGCACTGTAGATGAGGGCTTTTGGGGCTTTACCTGGTTTTTGCTGATACCAGGCTACGT3' (配列番号:53)
オリゴ3 P7984:
5' TACAGTGCCTCTTTCCTCTATAGTGGTGTACCATACAGGTTCAGCGGATCCGGTAGTGGTACTGATTTCAC3' (配列番号:54)
オリゴ4 P7985:
5'GACAGTAATAAGTGGCGAAATCTTCTGGCTGGAGGCTACTGATCGTGAGGGTGAAATCAGTACCACTACCG3' (配列番号:55)
オリゴ5 P7986:
5'ATTTCGCCACTTATTACTGTCAACAGTATAACATCTACCCACTCACATTCGGTCAGGGTACTAAAGTAGAAATCAAACGTACGGAATTC3' (配列番号:56)
Fwd P7981:
5'GAATTCAGGGTCACCATCACTTGTAAAGCC3' (配列番号:57)
Bwd P7980:
5'GAATTCCGTACGTTTGATTTCTACTTTAGT3' (配列番号:58),
PCR反応、100μlは、10mM Tris-HCl、pH8.3、1.5mM MgCl2、50mM KCl、0.01% w/v ゼラチン、0.25mMの各デオキシリボヌクレオシド三リン酸、2pmoleのP7982、P7983、P7984、P7985、P7986、10pmoleのP7980、P7981および1ユニットのTaqポリメラーゼを含むように設定した。反応は、94℃にて1分間、55℃にて1分間および72℃にて1分間を繰り返した。30サイクル後、各反応をアガロースゲル上の電気泳動で解析し、ゲルからPCR断片を切り出しMermaid Kitを用いて回収した。回収した断片を適当なバッファー中で酵素BstEIIおよびSplIで切断した。得られた産物を最終的にアガロースゲル上で電気泳動し、270塩基対のDNA断片をゲル切片から回収し、同じ酵素で予め消化しておいたベクターCTIL5-gL6(図12)へライゲーションした。上述のベクターは欠失していた抗体リーダー配列およびフレームワーク1の最初の17アミノ酸を提供する。
hTNF40-gL2(配列番号9)をPCRを用いて構築した。以下のオリゴヌクレオチドを用いてアミノ酸変異を導入した:
R1053: 5'GCTGACAGACTAACAGACTGTTCC3' (配列番号:59)
R5350: 5'TCTAGATGGCACACCATCTGCTAAGTTTGATGCAGCATAGATCAGGAGCTTAGGAGC3' (配列番号:60)
R5349: 5'GCAGATGGTGTGCCATCTAGATTCAGTGGCAGTGGATCAGGCACAGACTTTACCCTAAC3' (配列番号:61)
R684: 5'TTCAACTGCTCATCAGAT3' (配列番号:62)
それぞれが20μlの2つの反応を設定した。それぞれ、10mM Tris-HCl pH8.3、1.5mM MgCl2、50mM KCl、0.01% w/vゼラチン、0.25mMの各デオキシリボヌクレオシド三リン酸、0.1μgのhTNF40-gL1、6pmoleのR1053/R5350またはR5349/R684および0.25ユニットのTaqポリメラーゼを含む。反応は、94℃にて1分間、55℃にて1分間、および72℃にて1分間を繰り返した。30サイクル後、各反応をアガロースゲル上の電気泳動により解析し、ゲルからPCR断片を切りだし、Mermaid Kitを用いて回収した。
hTNF40重鎖のCDR移植は、軽鎖について記載したのと同じストラテジーを用いて行った。hTNF40重鎖はサブグループ1に属するヒト重鎖に最も相同であることが見いだされ、従って、ヒトサブグループ1フレームワークのコンセンサス配列をhTNF40重鎖CDRを受け入れるために選択した。
重複するオリゴヌクレオチドを適切なプライマーの存在下でPCRにかけることによりgh1hTNF40.4(配列番号10)をアッセンブルした。PCRでは以下のオリゴヌクレオチドを用いた:
グループ1移植
オリゴ1 P7989:
5'GAAGCACCAGGCTTCTTAACCTCTGCTCCTGACTGGACCAGCTGCACCTGAGAGTGCACGAATTC3' (配列番号:63)
オリゴ2 P7990:
5'GGTTAAGAAGCCTGGTGCTTCCGTCAAAGTTTCGTGTAAGGCCTCAGGCTACGTGTTCACAGACTATGGTA3' (配列番号:64)
オリゴ3 P7991:
5'CCAACCCATCCATTTCAGGCCTTGTCCCGGGGCCTGCTTGACCCAATTCATACCATAGTCTGTGAACACGT3' (配列番号:65)
オリゴ4 P7995:
5'GGCCTGAAATGGATGGGTTGGATTAATACTTACATTGGAGAGCCTATTTATGTTGACGACTTCAAGGGCAGATTCACGTTC3' (配列番号:66)
オリゴ5 P7992:
5'CCATGTATGCAGTGCGTTGTGGAGGTGTCTAGAGTGAACGTGAATCTGCCCTTGAA3' (配列番号:67)
オリゴ6 P7993:
5'CCACAAGCACTGCATACATGGAGCTGTCATCTCTGAGATCCGAGGACACCGCAGTGTACTAT3' (配列番号:68)
オリゴ7 P7994:
5'GAATTCGGTACCCTGGCCCCAGTAGTCCATGGCATAAGATCTGTATCCTCTAGCACAATAGTACACTGCGGTGTCCTC3' (配列番号:69)
Fwd:P7988
5'GAATTCGTGCACTCTCAGGTGCAGCTGGTC3' (配列番号:70)
Bwd:P7987
5'GAATTCGGTACCCTGGCCCCAGTAGTCCAT3' (配列番号:71)
アッセンブリ反応、100μlは、10mM Tris-HCl pH8.3、1.5mM MgCl2、50mM KCl、0.01% w/v ゼラチン、0.25mM 各デオキシリボヌクレオシド三リン酸、各2pmoleのp7989、p7990、p7991、p7995、p7992、p7993およびp7994、各10pmoleのp7988およびp7987および1ユニットのTaqポリメラーゼを含む。反応は、94℃にて1分間、55℃にて1分間および72℃にて1分間を繰り返した。30サイクル後、反応物をフェノール/クロロホルム(1/1)で抽出し、次にクロロホルムで抽出し、エタノールで沈殿させた。遠心後、DNAを適当な制限酵素バッファーに溶解しApaLIおよびKpnIで消化した。生じた断片をアガロースゲルから単離し、予め同じ酵素で消化しておいたpMR14(図5)にライゲーションした。pMR14はヒトγ4重鎖定常領域を含んでおり、ApaLIとKpnIで消化した場合に、開裂させたベクターは消化したDNAの3'末端がγ4定常領域をコードする配列の5'末端にリーディングフレーム内で接続するように消化したDNAを受け入れることができる。従って、このベクターから発現される重鎖はγ4アイソタイプである。このライゲーション混合物を用いて大腸菌LM1035を形質転換し、得られたバクテリアコロニーは制限酵素消化およびヌクレオチドシーケンシング解析によりスクリーニングした。このようにして、gh1hTNF40.4の正しい配列(図10)(配列番号10)を含むプラスミドを同定した。
重複するオリゴヌクレオチドを適切なプライマーの存在下でPCRにかけることによりgh3hTNF40.4(配列番号11)をアッセンブルした。PCRでは以下のオリゴヌクレオチドを用いた:
グループ3移植
オリゴ1 P7999:
5'GATCCGCCAGGCTGCACGAGACCGCCTCCTGACTCGACCAGCTGAACCTCAGAGTGCACGAATTC3' (配列番号:72)
オリゴ2 P8000:
5'TCTCGTGCAGCCTGGCGGATCGCTGAGATTGTCCTGTGCTGCATCTGGTTACGTCTTCACAGACTATGGAA3' (配列番号:73)
オリゴ3 P8001:
5'CCAACCCATCCATTTCAGGCCCTTTCCCGGGGCCTGCTTAACCCAATTCATTCCATAGTCTGTGAAGACGT3' (配列番号:74)
オリゴ4 P7995:
5'GGCCTGAAATGGATGGGTTGGATTAATACTTACATTGGAGAGCCTATTTATGTTGACGACTTCAAGGGCAGATTCACGTTC3' (配列番号:66)
オリゴ5 P7997:
5'GGAGGTATGCTGTTGACTTGGATGTGTCTAGAGAGAACGTGAATCTGCCCTTGAA3' (配列番号:75)
オリゴ6 P7998:
5'CCAAGTCAACAGCATACCTCCAAATGAATAGCCTGAGAGCAGAGGACACCGCAGTGTACTAT3' (配列番号:76)
オリゴ7 P7993:
5'GAATTCGGTACCCTGGCCCCAGTAGTCCATGGCATAAGATCTGTATCCTCTAGCACAATAGTACACTGCGGTGTCCTC3' (配列番号:77)
Fwd P7996:
5'GAATTCGTGCACTCTGAGGTTCAGCTGGTC3' (配列番号:78)
Bwd P7987:
5'GAATTCGGTACCCTGGCCCCAGTAGTCCAT3' (配列番号:71)
アッセンブリ反応、100μlは、10mM Tris-HCl pH8.3、1.5mM MgCl2、50mM KCl、0.01% w/v ゼラチン、0.25mM 各デオキシリボヌクレオシド三リン酸、各2pmoleのp7999、p8000、p8001、p7995、p7997、p7998およびp7993、各10pmoleのp7996およびp7987および1ユニットのTaqポリメラーゼを含む。反応は、94℃にて1分間、55℃にて1分間および72℃にて1分間を繰り返した。30サイクル後、反応物をフェノール/クロロホルム(1/1)で抽出し、次にクロロホルムで抽出し、エタノールで沈殿させた。遠心後、DNAを適当な制限酵素バッファーに溶解しApaLIおよびKpnIで消化した。生じた断片をアガロースゲルから単離し、予め同じ酵素で消化しておいたpMR14(図5)にライゲーションした。pMR14はヒトγ4重鎖定常領域を含んでいる。pMR14をApaLIとKpnIで消化すると、開裂させたベクターは消化したDNAの3'末端がγ4定常領域をコードする配列の5'末端にリーディングフレーム内で接続するように、消化したDNAを受け入れることができる。従って、このベクターから発現される重鎖はγ4アイソタイプである。このライゲーション混合物を用いて大腸菌LM1035を形質転換し、得られたバクテリアコロニーは制限酵素消化およびヌクレオチドシーケンシング解析によりスクリーニングした。このようにして、gh3hTNF40.4の正しい配列(配列番号11)(図11)を含むプラスミドを同定した。
抗体hTNF40に基づくCDR移植改変Fab断片を大腸菌ベクターpTTO-1を用いて構築した。抗体hTNF40の可変領域をこのベクターにサブクローニングし、遺伝子間配列を最適化してpTTO(CDP870)を作製した。pTTO発現ベクターは、可溶性組換えタンパク質のペリプラズム蓄積を生じさせるように設計されている。このプラスミドの主要な特徴は以下のとおりである:
(i)テトラサイクリン耐性マーカー − 耐性遺伝子の産物によっては不活性化されない抗生物質であり、従って、プラスミド保持細胞の選抜が維持される;
(ii)低コピー数 − 複製起点はp15A由来であり、colE1由来レプリコンを含むプラスミドと和合性である;
(iii)クローン化した遺伝子のための強力な、誘導可能tacプロモーター;
(iv)lacIq遺伝子 − lacリプレッサータンパク質の構成的発現を生じさせ、IPTG/アロラクトースによる誘導までtacプロモーターを抑制状態に維持する;
(v)OmpAシグナル配列 − クローン化した遺伝子のペリプラズム分泌を生じさせる;および
(vi)翻訳の効率的開始を起こすため、OmpAシグナル配列とlacZ短ペプチドとの翻訳共役。
材料と方法
DNA技術
DNA制限処理、アガロース電気泳動、ライゲーションおよび形質転換を含むプロトコルには標準的な方法を用いた。制限酵素およびDNA修飾酵素はNew England BiolabsまたはBoehringer Mannheimから入手し、供給者の推奨に従って使用した。DNA断片はGeneCleanプロトコル(BIO 101)を用いてアガロースから精製した。オリゴヌクレオチドはOswel Oligonucleotide Serviceから供給され、40nmスケールで合成された。プラスミドDNAはQiagenのPlasmid DNA Mini/Midiキットを用いて単離した。PCRはPerkin Elmerの"Amplitaq"を用いて推奨されたように行った。DNAシーケンシングはApplied Biosystems Taqサイクルシーケンシングキットを用いて行った。
大腸菌W3110培養物はテトラサイクリン(7.5μg/ml)を補充したL-培地で増殖させた。誘導のため、新しい一晩培養物(30℃で増殖させた)を2Lバッフル付きフラスコ中で200mlのL-培地中で0.1のOD600に希釈し、30℃にて回転式インキュベータにて増殖させた。0.5のOD600にてIPTGを200μMになるように添加した。サンプル(ODについて正規化した)を時々採取した。
培養サンプルを氷上で冷却し(5分間)、次に細胞を遠心で収集した。抽出バッファー(100mM Tris.HCl, 10mM EDTA, pH7.4)中での再懸濁に続き、サンプルを一晩30℃でインキュベーションし、次に遠心により清澄化した。
改変Fab濃度はELISAによって測定した。プレートを抗ヒトFd 6045(コーティングバッファー、生理食塩水中2μg/ml、ウェルあたり100μl)により一晩4℃にてコーティングした。洗浄後、ウェルあたり100μlのサンプルを装荷した;精製A5B7γ-1Fab'、初期2μg/ml、を標準として使用した。サンプルをサンプルコンジュゲートバッファー(1リットルあたり、6.05gのトリスアミノメタン;2.92g NaCl;0.1ml Tween-20;1mlカゼイン(0.2%))中でプレートをまたがって系列的に二倍希釈した;プレートを室温にて振盪しながら1時間インキュベーションした。プレートを洗浄し乾燥させ、次に100μlの抗ヒトC-κ(GD12)−ペルオキシダーゼを添加した(サンプルコンジュゲートバッファーで希釈)。インキュベーションは振盪しながら室温にて1時間行った。プレートを洗浄し、乾燥させ、100μlの基質溶液(10ml酢酸ナトリム/クエン酸ナトリウム溶液(0.1M、pH6);100μl H2O2溶液;100μlテトラメチルベンジジン溶液)(ジメチルスルホキシド中10mg/ml))を添加した。基質添加後、630nmにおける吸光度を4〜6分間読み取った。
(a)pTTQ9ポリリンカーの置換
プラスミドpTTQ9はAmershamから入手したものであり、図14に示した。アリコート(2μg)を制限酵素SalIおよびEcoRIで消化し、消化物を1%アガロースゲルに流し、大きなDNA断片(4520bp)を精製した。アニーリングするとOmpAポリリンカー領域(図15)をコードする二本のオリゴヌクレオチドが合成された。この配列はpTTQ9の切断により生じるSalIおよびEcoRI末端に適合する接着末端を有している。このオリゴヌクレオチド「カセット」をpTTQ9ベクターにクローニングすると、SalIは生成されないが、EcoRI部位は維持される。このカセットは大腸菌外膜タンパク質Omp-Aのシグナル配列の最初の13アミノ酸をコードしており、その前にOmpA遺伝子のシャインダルガーノリボソーム結合部位が存在している。加えて、酵素XbaI、MunI、StyIおよびSplIの制限酵素部位が存在している。MunIおよびStyI部位はOmpAシグナル配列のコード領域の内部にあり、遺伝子の挿入のための5'クローニング部位として意図されている。このカセットを作り出す2つのオリゴヌクレオチドを5pmol/μlの濃度で混合し、水槽で95℃にて3分間加熱し、次に、ゆっくりと室温に冷却することによってアニーリングした。アニーリングした配列を次にSalI/EcoRI切断したpTTQ9と接続した。得られたプラスミド中間体、pTTQompをDNAシーケンシングにより確認した。
プラスミドpACYC184からの1つのDNA断片とpTQOmpから生成した2つの断片とをライゲーションすることによってプラスミドpTTO-1を構築した。プラスミドpACYC184はNew England Biolabsから入手し、制限酵素地図を図16に記載した。アリコート(2μg)を制限酵素StyIで完全に消化し、次にMung Beanヌクレアーゼで処理した:この処理は5'塩基オーバーハングを削り取ることにより平滑末端を作り出す。フェノール抽出およびエタノール沈殿に続いて、このDNAを酵素PvuIIで切断し、2348、1081、412および403bpの断片を生成した。2348bp断片をアガロースゲル電気泳動いによって精製した。この断片はテトラサイクリン耐性マーカーおよびp15A複製起点をコードしている。次にこの断片を仔ウシ腸アルカリホスファターゼで処理して5'末端のリン酸を除去し、それによってこの分子の自己ライゲーションを阻止した。
可変軽鎖領域hTNF40gL1(配列番号8)は哺乳動物細胞発現のための対応するベクターpMR10.1からPCR「レスキュー」によって得た。OmpAリーダー配列が元々のIgリーダーと置き変わっている。PCRプライマーの配列は以下のとおりである:
5'プライマー:
CGCGCGGCAATTGCAGTGGCCTTGGCTGGTTTCGCTACCGTAGCGCAAGCTGACATTCAAATGACCCAGAGCCC(配列番号79)
3'プライマー: TTCAACTGCTCATCAGATGG(配列番号80)
標準的条件の下でのPCR後、産物を精製し、酵素MunIおよびSplIで消化し、次にゲル精製した。次に精製した断片をpTTO-2のMunI/SplI部位に挿入し、軽鎖中間体pTTO(hTNF40L)を作製した。
5'プライマー:
GCTATCGCAATTGCAGTGGCGCTAGCTGGTTTCGCCACCGTGGCGCAAGCTGAGGTTCAGCTGGTCGAGTCAGGAGGC(配列番号81)
3'プライマー: GCCTGAGTTCCACGACAC(配列番号82)
PCRに続いて、産物を精製し、酵素NheIおよびApaIで消化し、次にベクターpDNAbEng-G1(図19)にサブクローニングした。DNAシーケンシングにより確認後、重鎖を酵素EcoRIで切断し、pTTO(hTNF40L)のEcoRI部位にサブクローニングし、大腸菌発現プラスミドpTTO(hTNF40)を作製した。
pTTOベクターにおいては、改変Fab発現は初めに軽鎖、次に重鎖をコードする2シストロン性メッセンジャーから起こる。2つの遺伝子の間の配列(遺伝子間配列(intergenic sequence)、IGS)は、翻訳開始速度に影響を与えることにより重鎖の発現レベルに影響し得る。例えば、短い遺伝子間配列は、翻訳中のリボソームは軽鎖合成の完了後、重鎖合成を開始する前に完全には解離しないかもしれないという点で、軽鎖及び重鎖の翻訳共役を生じさせる。シャインダルガーノ(SD)リボソーム結合部位(16S rRNA)の「強度」も影響を与え得るものであり、SDとATG開始コドンの間の距離および配列構成も同様である。ATG付近のmRNAの可能な二次構造は別の重要な要因である;ATGは「ループ」中になければならず、「ステム」内部に束縛されていてはならず、一方SDについてはその逆が適用される。
図20に示したIGSカセットは側方にSacIおよびMunIクローニング部位を有する。これらは相補的オリゴヌクレオチド対をアニーリングさせることによって構築した。pTTO(hTNF40)をSacIおよびNotIで消化することによってベクター断片を調製し、pDNAbENgG1(hTNF40H)をMunIおよびNotIで消化することによって重鎖断片を調製した。次に等モル量の2つの制限酵素断片とおよそ0.05pmoleの各アニーリングしたオリゴカセットを用いて3者ライゲーションを行った。これにより4つの発現プラスミドpTTO(hTNF40 IGS-1)、pTTO(hTNF40 IGS-2)、pTTO(hTNF40 IGS-3)、pTTO(hTNF40 IGS-4)を作製した。
元の発現構築物とともに4つのプラスミドで大腸菌株W3110を形質転換し、記載したように振盪フラスコ内での発現について解析した。典型的な実験の結果を図21に示した。異なる遺伝子間配列は異なる発現プロフィールを与える。IGS1およびIGS2は改変Fabをペリプラズムに急速に蓄積させ、誘導後1時間にピークを有し、その後レベルが落ちる。IGS1についてピークはより大きく低下はより鋭い。これらの結果はこれらの構築物についての翻訳共役について期待されるように、高レベルの合成と対応する。IGS1はIGS2よりも高レベルの重鎖発現を与えるようである。この例では、ペリプラズム発現レベルは1時間のピークの後に落ちるので、発現が高レベルであることはあまり寛容でないようである。これは、誘導後1時間にピークがありその後落ちるというIGS1培養物(提示せず)の増殖プロフィールに見られる。このことは細胞の死及び溶解を示唆する。
プラスミドpTTO(CDP870)によってコードされる重鎖は配列番号115に記載の配列を有し、軽鎖は配列番号113に記載の配列を有している。
精製した改変Fabを分枝したPEG分子と部位特異的にコンジュゲートさせる。このことは改変Fabの短縮されたヒンジ領域中の単一のシステイン残基を活性化させ、従前に記載されたように(A.P. Chapmanら、Nature Biotechnology 17, 780-783, 199)(PEG)-リシル−マレイミドと反応させることによって達成される。PEG化した分子は、CDP870と呼ばれ、図13に示した。
CDP870はおよそ11日という長い半減期を有する。
我々は、RAにかかった患者のランダム化二重−盲目プラセボ−制御用量増加試験(double-blind placebo-controlled dose escalating trial)における静脈内CDP870の安全性及び効能を評価した。
患者:
18才から75才の、慢性関節リウマチに関する1987年改訂American College of Rheumatology(ACR)診断基準(Arnettら、Arthritis Rheum., 31, 315-324, 1988)を満たす患者をロンドン、ケンブリッジ、ノルフォークおよびノルウィッチ(英国)Rheumatologyクリニックの外来患者から集めた。患者は、以下の基準のうちの少なくとも3つを有することによって定義される、臨床的に活性な疾病を有することが要求された:6以上の痛みのあるまたは触覚過敏関節;45分間以上の早朝硬直;および28mm/hr以上の赤血球沈降速度(ESR)。患者らは、少なくとも一つの疾病改変抗リウマチ剤(Disease Modifying Anti-Rheumatic Drug, DRARD)に対して応答しなかったことが必要で、少なくとも4週間治療を受けていないことを必要とした。コルチコステロイドはその用量がプレドニソロンの7.5mg/日以上であったならば許容した。妊娠した女性、授乳女性および効果的な避妊法を用いていない出産可能な女性は除外した。また、悪性履歴、重篤な制御できない随伴医学的状態、以前のTNFα-中和治療法の失敗またはポリエチレングリコールに対するアレルギーの経歴がある場合もその患者を除外した。文書化したインフォームドコンセントを登録前に各患者から受けとった。研究は、地域の研究倫理委員会に承認された。
36人のRA患者を3つのグループに分け、それぞれに試験薬剤を用量を増加させて(1、5または20mg/kg)与えた。12人の各グループをランダムにCDP870を与える8人とプラセボを与える4人に分けた。CDP870は60分間にわたる1回の静脈注入(総量100ml)として与えた。プラセボ(酢酸ナトリウムバッファー)を同様に60分間にわたって1回の100mlの静脈注入として与えた。治療は外来患者に基づいて行った。8週間後、全ての患者に5または20mg/kgのCCDP870を受ける機会を公開で与えた。
RA疾病活性は、28関節についての世界保健機構およびリウマチ学協会国際連盟(International League of Associations for Rheumatology)(Boersら、J. Rheumatol−Supplement, 41, 86-89, 1994)および対リウマチヨーロッパ連合(European League Against Rheumatism)(EULAR)(Scottら、Clin. Exp. Rheumatol., 10, 521-525, 1992)スコアデータセットに基づいて評価した。疾病活性の変化は疾病活性スコア(Disease Activity Score)(Prevooら、Arthritis Rheum., 38, 44-48, 1995)およびACR応答基準(Felsonら、Arthritis Rheum., 38, 727-735, 1995)によって評価した。評価は治療前、および治療後1、2、4、6および8週間で行った。患者は試験薬の安全性および寛容性についても評価した。血液学、生化学、項CDP-870抗体および有害な事象を各訪問ごとに評価した。
CDP870は酵素結合免疫固相アッセイ(ELISA)によって測定した。患者の血清の系列希釈物を、組換えヒトTNFα(Strathmann Biotech GmbH, Hannover)でコーティングしたマイクロタイタープレート(Nunc)中でインキュベーションした。捕捉されたCDP870をホースラディッシュコンジュゲートヤギ抗ヒトκ軽鎖(Cappel, ICN)および続いてテトラメチルベンジジン(TMB)基質で顕在化させた。
本研究は研究的性質のものであり、サンプルサイズは類似の薬剤についての以前の経験に基づいたものである。CDP870の効能を非公開試験手順を用い、疾病活性スコア(DAS)を計算すること、および治療意図およびプロトコルごと(per-protocol)に対するCDR20/50応答によって解析した。疾病活性スコアは以下のように計算した:DAS=0.555x(28触覚過敏関節)1/2+0.284x(28腫脹関節)1/2+0.7xIn(ESR)+0.0142x(患者の全体的評価)。まず、集めた活性グループをプラセボと比較した。この比較が5%水準で有意であった場合、各用量投与グループをプラセボと比較した。全ての比較は有意水準5%で両側検定した。全てのP-値は実地調査解析から導いたもので、推論的解釈に用いてはならない。
人口統計学:
RAの36人の患者を集めた。患者の人口統計学的データは表6に示した。平均年齢は56歳で30人の患者は女性であった。RAの平均期間は13年であり21人の患者はリウマチ因子陽性であった。異なるグループの患者は同様な人口統計学的特徴を有している。盲目投与期間において、6/12人のプラセボ処理した患者は投与4週間以上で悪化RAについての研究から離脱した。2/24人のCDP870処置患者は、投与4週間以降で1mg/kg群のどちらについても悪化RA/消失についての追跡調査から離脱した。差異は統計的に有意であった(p=0.009、フィッシャー完全検定(Fisher exact test))。
前に行った最新の観察についてのプロトコル集団ごとのACR20の改善のあった患者の割合は、4週間後にてプラセボ、1、5および20mg/kg CDP870で16.7、50、87.5および62.5%であり(合わせた治療効果P=0.012)、8週間後にて16.7、25、75および75%であった(P=0.032)。前に行った最新の観察についてのプロトコル集団ごとのDASスコア(メジアン)の低下は、4週間後にてプラセボ、1、5および20mg/kg CDP870で0.15、1.14、1.91および1.95(合わせた治療効果P=0.001)であり、8週間後にて0.31、0.09、2.09および1.76(P=0.008)であった(図23)。世界保健機構およびリウマチ学協会国際連盟におけるスコアデータセットの個々の要素の変化を図24に示す。
治療はインフュージョン関連反応が無くよく許容された。アレルギー反応または皮膚発疹は全く報告されなかった。二重盲目フェーズでは、プラセボ、1,5および20mg/kgの群でそれぞれ、19、38、8および14の有害事象が起こった。最も一般的なのは5人の患者(プラセボ1人、1mg/kgで3人、20mg/kgで1人)で9例起こった頭痛であった。プラセボを与えられた1人の患者およびCDP870を与えられた3人の患者(1人は5mg/kg、2人は20mg/kg)は低度の呼吸気道感染を起した。これらは軽いまたは中程度のものとして報告された。それらの患者は経口抗生物質で治療し、1〜2週間の間に回復した。1および5mg/kg群中の各3人の患者および20mg/kgの1人の患者はCDP870処置の1〜2か月後に尿道感染を起した。1mg/kgのインフュージョンの3日後に、頚部痛という有害事象が1例起こり、それは重篤と評価された。抗核抗体の上昇が4人の患者で見られた:プラセボ群に1人(1/40に対して陰性)、1mg/kg群に2人(1/40に対して陰性、1/80に対して陰性)および、20mg/kg群に1人(1/40に対して陰性)。抗-DNAおよび抗-カルジオリピン抗体に変化は見られなかった。
予測されたように、CDP870の全ての用量レベルについて、インフュージョンの終わりに血漿濃度のピークがあり、ピーク血漿濃度は用量比例的であり、血漿濃度はその後緩やかに減少した。CDP870の血漿濃度プロフィールは有志者において以前に見られたものと非常に類似しており、そこでは半減期はおよそ14日であると計算された。再投与において、単一回投与インフュージョンと類似のプロフィールが見られた。
考察
TNFαを中和することはRAにおける効果的な治療戦略である。現在、これはキメラmAbまたは可溶性レセプター/ヒトFc融合タンパク質のような生物学的試薬の使用を必要とし、それらは製造に費用がかかる。TNFα中和治療剤はTNFαと高アフィニティーで結合する必要があり、長い血漿半減期、低抗原性および高い寛容性と安全性を有する必要がある。またTNFα遮断薬の利益を得られるであろうRAのすべての患者に入手できることが必要である。この目的を達成し得る一つの技術は、大腸菌で作られたTNFα結合抗体断片とポリエチレングルコールを結合させることである。この予備的研究において、我々は、PEG化された、抗TNFα改変FabであるCDP870が効果的でRA患者によく許容されることを見いだした。
上述した例は単なる例示であって請求の範囲に定義した本発明の範囲を制限するものではないことは言うまでもない。
Claims (27)
- 軽鎖可変領域hTNF40−gL1(配列番号8)および重鎖可変領域gh3hTNF40.4(配列番号11)を含むことを特徴とする、ヒトTNFαに対する特異性を有する抗体分子。
- Fab、Fab’又はF(ab’)2であって、そして、軽鎖可変領域hTNF40−gL1(配列番号8)および重鎖可変領域gh3hTNF40.4(配列番号11)を含む、請求項1に記載の抗体分子。
- 配列番号113に記載の配列を含む軽鎖、および、配列番号111に記載の配列を含む重鎖、を含むFab断片であることを特徴とする、ヒトTNFαに対する特異性を有する抗体分子。
- エフェクター分子又はレポーター分子が付加し得るように1以上のアミノ酸を重鎖のC−末端に有する改変Fab断片であることを特徴とする、請求項1〜3のいずれか1項に記載の抗体分子。
- 追加のアミノ酸が、エフェクター分子またはレポーター分子が付加し得る1または2個のシステイン残基を含有する改変ヒンジ領域を形成することを特徴とする、請求項4に記載の抗体分子。
- 配列番号113に記載の配列を含む軽鎖および配列番号115に記載の配列を含む重鎖を含むことを特徴とする、ヒトTNFαに対する特異性を有する抗体分子。
- 配列番号113に記載の配列からなる軽鎖および配列番号115に記載の配列からなる重鎖を含むことを特徴とする、ヒトTNFαに対する特異性を有する抗体分子。
- 請求項4〜7のいずれか1項に記載の抗体分子を含む化合物であって、エフェクターまたはレポーター分子が、その抗体の重鎖のC−末端のアミノ酸に共有結合的に付加していることを特徴とする、上記化合物。
- エフェクター分子を含むことを特徴とする、請求項8に記載の化合物。
- エフェクター分子が1以上のポリマーを含むことを特徴とする、請求項9に記載の化合物。
- 請求項10に記載の化合物であって、1以上のポリマーが、場合により置換されていてもよい、直鎖若しくは分枝鎖のポリアルキレン、ポリアルケニレン若しくはポリオキシアルキレンポリマー、または分枝若しくは非分枝の多糖であることを特徴とする、前記化合物。
- 1以上のポリマーがメトキシポリ(エチレングリコール)であることを特徴とする、請求項11に記載の化合物。
- ヒトTNFαに対する特異性を有する抗体分子を含む化合物であって、配列番号113に記載の配列を含む軽鎖および配列番号115に記載の配列を含む重鎖を含み、重鎖のC−末端のシステイン残基の一つに1以上の合成または天然に存在するポリマーが付加していることを特徴とする、前記化合物。
- ヒトTNFαに対する特異性を有する抗体分子を含む化合物であって、配列番号113に記載の配列からなる軽鎖および配列番号115に記載の配列からなる重鎖を含み、重鎖のC−末端のシステイン残基の一つに1以上の合成または天然に存在するポリマーが付加していることを特徴とし、前記化合物。
- 請求項1〜7のいずれか1項に記載の抗体分子の重鎖および軽鎖をコードする、DNA。
- 配列番号8および11に記載の配列を含む、請求項15に記載のDNA。
- 配列番号112及び110、あるいは、112および114に記載の配列を含む、請求項15に記載のDNA。
- 請求項15〜17のいずれか1項に記載のDNAを含む、クローニングベクターまたは発現ベクター。
- 請求項15〜17のいずれか1項に記載のDNAを含む、大腸菌発現ベクター。
- 請求項18または19に記載のベクターで形質転換したことを特徴とする、宿主細胞。
- 請求項20に記載の宿主細胞を培養し、抗体分子を単離することを含むことを特徴とする、請求項1〜7のいずれか1項に記載の抗体分子を製造する方法。
- 請求項15〜17のいずれか1項に記載のDNAを含む大腸菌発現ベクターを含む大腸菌を培養し、そして抗体分子を単離することを含むことを特徴とする、請求項1〜7のいずれか1項に記載の抗体分子を製造する方法。
- 請求項1〜7のいずれか1項に記載の抗体分子または請求項8〜14のいずれか1項に記載の化合物を含むことを特徴とする、治療用組成物または診断用組成物。
- さらに製薬的に許容できる希釈剤または担体を含むことを特徴とする、請求項8〜14のいずれか1項に記載の化合物。
- 治療に使用するためであることを特徴とする、ヒトTNFαに対する特異性を有する請求項1〜7のいずれか1項に記載の抗体分子又は請求項8〜14のいずれか1項に記載の化合物。
- 炎症性または自己免疫の疾患の治療のための医薬の製造において使用されることを特徴とする、ヒトTNFαに対する特異性を有する請求項1〜7のいずれか1項に記載の抗体分子又は請求項8〜14のいずれか1項に記載の化合物の使用。
- 疾患が、リウマチ関節炎または骨関節炎である、請求項26に記載の使用。
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