JP4463109B2

JP4463109B2 - 栄養補助食品および水生動物の給餌方法

Info

Publication number: JP4463109B2
Application number: JP2004551747A
Authority: JP
Inventors: ハレル，モティ
Original assignee: アドバンスドバイオニュートリションコーポレーション
Priority date: 2002-11-07
Filing date: 2003-11-06
Publication date: 2010-05-12
Anticipated expiration: 2023-11-06
Also published as: US9687449B2; AU2003294244A1; NZ539900A; AU2003294244A8; WO2004043140A3; WO2004043140A2; US20060127453A1; EP1565167B1; EP1565167A2; EP1565167A4; JP2006512059A

Description

優先権の主張
本願明細書は、２００２年１１月７日に米国特許商標局に仮出願された米国特許出願第６０／４２４，３２４号明細書（発明の名称「栄養補助食品および水生動物の給餌方法（ＮｕｔｒａｃｅｕｔｉｃａｌｓａｎｄＭｅｔｈｏｄｏｆＦｅｅｄｉｎｇＡｑｕａｔｉｃＡｎｉｍａｌｓ）」）の優先権を主張するものである。この開示の全内容は、参照により本願明細書に含まれる。

技術分野
本発明は、水生動物に対する給餌、水生動物への生物活性剤に対するデリバリー賦形剤、およびプロバイオティック微生物を含む生物活性剤の放出制御を提供するための方法に関する。

背景技術
従来の水中飼料は、乾燥、半乾燥、または湿った形態で提供される。これらの飼料は、直接に水産養殖系に添加されるか、もしくは使用に先立って水と混合される。従来の飼料は、培養水中に飼料が送達されるとすぐに開始する飼料の物理的分解および破壊とともに、水中で急速に劣化する。飼料が水に含浸されるようになると、劣化しやすい生物活性剤は分解し始め、ついで動物の消化過程によって破壊されうる。魚などのすべての脊椎動物における飼料と飼料添加剤の設計において特に大きな障壁は、胃腸（ＧＩ）管である。胃腸管、強力な消化酵素、不透水性の胃腸管粘膜などにおいて変化するｐＨなどの生物的、化学的、および物理的な胃腸管因子のすべてが、飼料または飼料添加剤に含有される生物学的または化学的に活性なペプチドおよび他の成分の破壊と関連している。一般的な経口投与方法に通常従わない物質は極めて多く、その中でプロバイオティック細菌、ホルモン、多糖類、抗生物質、および他の有機物質などが挙げられる。これらの物質は、十分に保護されないと、胃腸管において酸加水分解、酵素、あるいは他の分解産物反応により、急速に効果を失うか、または破壊される。同文献で記載される保護方法は、徐放性製剤のための半透性物質によるコーティングもしくはトップコーティングと関与している（ムハンマド（Ｍｕｈａｍｍａｄ）ら１９９３）。別の手法では、コーティング剤の水溶性に基づいた時間パルスの送達を得るために、動水勾配溶解度が用いられる（アミドン（Ａｍｉｄｏｎ）およびリースマン（Ｌｅｅｓｍａｎ）、１９９３）。

現行の飼料送達方法に関連する難点の一部を克服するための一方法は、マイクロカプセル化飼料の進展であった。ＥＰ０２３７５４２号明細書（レビン（Ｌｅｖｉｎｅ）ら１９８７）では、遊離アミノ酸もしくはホルモン（例えば、サシェ（Ｓａｃｈｅ）およびバートランド（Ｂｅｒｔｒａｎｄ）、１９８０を参照）などの栄養成分が、リポソーム内に捕獲されてからさらに親水コロイドマトリックス内でカプセル化された系が記載されている。生成された「リポゲル」（ｌｉｐｏｇｅｌ）マイクロカプセルは、凍結乾燥粉末として貯蔵されるか、またはクロラムフェニコールを含有する水中で懸濁された。さらに、ビジャマール（Ｖｉｌｌａｍａｒ）とラングドン（Ｌａｎｇｄｏｎ）は、１９９３年に、懸濁物食者に対する飼料栄養素提供用の単一種の飼料粒子を得るための、飼料成分とアルギン酸塩およびゼラチンのゲル状混合物粒子に組み込まれた脂質障壁マイクロカプセルとからなる錯体マイクロカプセルの調製について述べた。

国際公開第８７／０１５８７号パンフレットでは、リポソームを用いるマイクロカプセルが、薬剤およびホルモンなどの物質の徐放性送達に有用であることも示唆された。これらの種類のマイクロカプセルは、リン脂質をベースとし、薬剤の周囲に膜を形成し、この膜を貫通する薬剤の徐放を可能にする。この種の膜障壁は、脆弱で高価で作製が困難であり、海洋動物用飼料の一部となりうる他の適切な物質と結合する際に別個のマイクロカプセルとして存続しにくい。さらに、リポソームは、相当な量の生物活性栄養素をカプセル化する能力がない。

当該技術で記載されるマイクロカプセル化飼料は、従来の飼料に関連するすべての問題を解決するわけではない。リポソームの産生と後続する親水コロイドマトリックス内でのカプセル化は、最終飼料コストに上乗せされる労働集約的な過程である。マイクロカプセル化飼料を凍結乾燥する結果、脂質成分が酸化され、要求に満たない飼料が提供される。乾燥状態で保存されるマイクロカプセル化飼料は、乾燥飼料に対して示されるように、やはり同一の不都合な点をいくらか有している。すなわち、同飼料は、やはり再水和され、手動で水槽内に導入されなければならない。さらに、先行技術で記載されるマイクロカプセル化飼料は、飼料の使用に付随する水質汚濁問題を解消していない。

生物活性剤の結合後に活性剤の放出制御を仲介するためのマトリックスとして、数種類の澱粉および多糖類高分子の利用が提案されている。該高分子の例として、ポリ（ビニルピロリドン）、ポリ（ビニルアルコール）、ポリ（エチレンオキシド）、セルロース（およびセルロース誘導体）、シリコーン、ポリ（ヒドロキシエチルメタクリレート）などが挙げられる。澱粉などの天然物の分解は動物の体では自然に発生することから、生物分解可能な多糖類マトリックスは興味深い対象である。食品の物質送達のための方法として、澱粉と乳化剤の組み合わせも想定されている（ユアン（Ｙｕａｎ）、２０００）。

エピクロルヒドリン、オキシ塩化リン、無水アジピン酸などの試薬による処理で得られる澱粉および架橋澱粉は、食品医薬品局の合意の上で、食品および製薬業界において広く安全に使用されている。数種類の澱粉分解酵素は、澱粉を自然に加水分解する。したがって、α−アミラーゼは、ポリグルコース鎖内に位置するα−（１，４）−Ｄ−グルコピラノシド結合に特異的な内酵素である。澱粉分解の主な分解製品は、オリゴ糖、デキストリンおよび麦芽糖である。プレバイオティック手法でプロバイオティック細菌の増殖を促進するために、架橋澱粉と非消化性澱粉が提案されている（ブラウン（Ｂｒｏｗｎ）ら、２００２）。

澱粉は、約４，０００グルコース単位を含有する非消化性画分であるアミロースと、約１００，０００グルコース単位を含有する分岐画分であるアミロペクチンという２つの異なる画分からなる。したがって、アミロースとアミロペクチンは、その化学構造だけでなく、消化率、希釈水溶液中での安定性、ゲル組織、および膜特性においても異なっている。アミロペクチンとアミロース間の水素結合によって結合されるミセル結晶は、澱粉粒の健全性を担っている。澱粉の水性懸濁液を加熱してある温度に達すると、水素結合は弱まり、粒は膨張後、「ゼラチン化」として知られる過程で崩壊する。

アミロースの好ましい構造は、さまざまな寸法を有するらせん形であり、通常は中心が開いた左巻きらせんである。このらせん形式をとることによって、Ｃ−６上に位置する水酸基が最も反応性がよく、つぎにＣ−３上の水酸基の反応性がよく、最後にＣ−２上の水酸基が続く。したがって、例えばエーテル化の過程により、新しい置換基や化学修飾されたこれらの−ＯＨ基を導入することで、特異的に置換されたアミロースを得ることは可能である。置換度は、アミロースの比率（アミロースの１ｋｇ当たりの置換基のモル）に対する置換基を変えることで調節可能である。例えば、グリシドールによって０．１〜１０．０の範囲で異なる置換度を得ることが可能である。慎重に置換剤や置換度を選択することで、アミロースの分解を保護し、高分子の酵素分解速度を調節することが可能である。このことにより、商用化を伴う研究開発の領域への扉が開かれる。

澱粉の水性分散の直接加熱または間接加熱、強アルカリを用いた同分散の化学的処置、または機械的処理と熱処理の組み合わせを含む、澱粉のゼラチン化に関する極めて多くの方法は、当該技術において周知である。プレゼラチン化澱粉（ｐｒｅ−ｇｅｌａｔｉｎｉｚｅｄｓｔａｒｃｈ）は冷水に可溶性を示すが、このことは澱粉のゼラチン化が放出制御賦形剤を得るのに好適でない場合があることを示唆している。しかしながら、本発明によると、出発物質として使用可能な高アミロース澱粉のゼラチン化は、置換剤との反応に先立って澱粉粒からのアミロースの浸出を許容することが判明している。このアミロースの浸出により、本発明の徐放性を制御することが可能になる。

本発明によると、置換剤の添加に先立つ高アミロース澱粉のゼラチン化は、水酸化ナトリウムを用いた化学的処置によって実現可能である。

発明の開示
本発明は、１種以上の非消化性高分子および１種以上の乳化剤を含む微粒子を提供する。該微粒子は、１種以上の生物活性剤をさらに含んでもよい。１つの実施形態において、同剤は微粒子によって微小結合（microbound）される。微粒子の非消化性高分子は、ポリ（ビニルピロリドン）、ポリ（ビニルアルコール）、ポリ（エチレンオキシド）、セルロース、セルロース誘導体、シリコーン、ポリ（ヒドロキシエチルメタクリレート）、澱粉、アミロースなどを含みうる。生物活性剤は、例えば、微生物、タンパク質、ペプチド、核酸、ホルモン、薬剤、抗生物質、酵素、ミネラル、ビタミン、薬剤、抗体、免疫原、マイクロ構造体、またはナノ構造体でありうる。微粒子は、湿った形態または乾燥形態で提供されうる。

本発明は、さらに１種以上の非消化性高分子および１種以上の乳化剤を含む微粒子を提供する。この微粒子は、多糖類高分子を含有し、１種以上の生物活性剤をさらに含有しうる。１つの実施形態において、生物活性剤は微粒子によって微小結合される。生物活性剤は、例えば、微生物、タンパク質、ペプチド、核酸、ホルモン、薬剤、抗生物質、酵素、ミネラル、ビタミン、薬剤、抗体、免疫原、マイクロ構造体、またはナノ構造体でありうる。微粒子は、湿った形態または乾燥形態で提供されうる。高分子またはポリペプチドは、例えば、アミロペクチン、ワックス様メイズ澱粉（waxy maize starch）、可溶性澱粉、グルテン、カゼイン、アルブミン、魚粉、魚粉加水分解物、小エビ粉、エビ粉、大豆粉、小麦全粒粉、綿実粕、あるいは豆粉でありうる。

本発明は、澱粉親水コロイドまたは１種以上のタンパク質を含有するアルギン酸マトリックスを含む巨大粒子をさらに提供する。本発明は、上記のような微粒子とともに、巨大粒子もさらに提供する。この巨大粒子は、１種以上の生物活性剤、すなわち、微生物、タンパク質、ペプチド、核酸、ホルモン、薬剤、抗生物質、酵素、ミネラル、ビタミン、薬剤、抗体、免疫原、マイクロ構造体、またはナノ構造体でありうる同剤を含みうる。生物活性剤には放出制御を施すことが可能である。巨大粒子は、湿った形態または乾燥形態で提供され、生物誘引物質および／または栄養素を含みうる。

本発明は、非消化性高分子および乳化剤を含む微粒子を含む飼料または飼料添加剤をさらに提供する。または、飼料または飼料添加剤は、消化性高分子、例えばタンパク質高分子および乳化剤を有する微粒子を含みうる。これらの飼料または飼料添加剤は、軟体動物、魚あるいはエビなどの水生動物に提供され、微生物、タンパク質、ペプチド、核酸、ホルモン、薬剤、抗生物質、酵素、ミネラル、ビタミン、薬剤、抗体、免疫原、マイクロ構造体、またはナノ構造体などの生物活性剤を含む可能性がある。飼料または飼料添加剤は、湿った形態または乾燥形態で提供されうる。

本発明は、非消化性高分子および乳化剤を含む巨大粒子を含む飼料または飼料添加剤をさらに提供する。それは微生物、タンパク質、ペプチド、核酸、ホルモン、薬剤、抗生物質、酵素、ミネラル、ビタミン、薬剤、抗体、免疫原、マイクロ構造体、またはナノ構造体などの生物活性剤を含む可能性がある。飼料または飼料添加剤は、軟体動物、魚、あるいはエビなどの水生動物に提供されうる。飼料または飼料添加剤の中にある巨大粒子は、湿った形態または乾燥形態で提供されうる。

別の態様において、本発明は、非消化性高分子および乳化剤を含む微粒子を生産するための方法を提供する。微粒子は、飼料または飼料添加剤として使用されうる。この方法により、微粒子に加えて巨大粒子を生産することが可能である。１つの実施形態において、巨大粒子は、１種以上の微粒子を含みうる。

本発明は、消化性高分子および乳化剤を含む微粒子を生産するための方法をさらに提供する。微粒子は、飼料または飼料添加剤として使用されうる。微粒子は、微生物、タンパク質、ペプチド、核酸、ホルモン、薬剤、抗生物質、酵素、ミネラル、ビタミン、薬剤、抗体、免疫原、マイクロ構造体、ナノ構造体などの生物活性剤を含みうる。微粒子は、湿った形態または乾燥形態で提供されうる。この方法により、微粒子を含む巨大粒子を生産することが可能である。微粒子は、クルマムシ、Artemia、軟体動物、魚、エビなどの水生動物に給餌するのに使用されうる。

本発明は、１種以上の消化性高分子および１種以上の乳化剤を含む巨大粒子を生産するための方法をさらに提供するか、代わりとして、非消化性高分子および乳化剤を含む巨大粒子を生産するための方法を提供する。これらの方法によって生産された巨大粒子は、クルマムシ、Artemia、軟体動物、魚、エビなどの水生動物用の飼料または飼料添加剤として使用されうる。巨大粒子は、例えば、微生物、タンパク質、ペプチド、核酸、ホルモン、薬剤、抗生物質、酵素、ミネラル、ビタミン、抗体、免疫原、マイクロ構造体、ナノ構造体といった１種以上の生物活性剤をさらに含みうる。巨大粒子は、湿った形態または乾燥形態で提供されうる。

本発明は、１種以上の非消化性高分子および１種以上の乳化剤を有する微粒子を含む１種以上の生物活性剤の送達方法を提供する。微粒子は、１種以上の生物活性剤をさらに含んでもよい。１つの実施形態において、同剤は微粒子によって微小結合される。微粒子の非消化性高分子は、ポリ（ビニルピロリドン）、ポリ（ビニルアルコール）、ポリ（エチレンオキシド）、セルロース、セルロース誘導体、シリコーン、ポリ（ヒドロキシエチルメタクリレート）、澱粉、およびアミロースを含みうる。生物活性剤は、例えば、微生物、タンパク質、ペプチド、核酸、ホルモン、薬剤、抗生物質、酵素、ミネラル、ビタミン、抗体、免疫原、マイクロ構造体、ナノ構造体でありうる。微粒子は、湿った形態または乾燥形態で提供されうる。

この送達方法により、細菌、酵母、ウイルス、バチルス属（Ｂａｃｉｌｌｕｓｓｐｐ．）、バチルス・リケニフォルミス（Ｂａｃｉｌｌｕｓｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ）、クリス・ハンセン・バイオシステムズ（ＣｈｒｉｓＨａｎｓｅｎ’ｓＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）から市販のバチルス・ズブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓｓｕｂｔｉｌｉｓ）株、ラクトバチルス属（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｓｐｐ．）、ラクトバチルス・ブルガリカス（Ｌ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ）、ラクトバチルス・ヘルベティカス（Ｌ．ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ）、ラクトバチルス・プランタラム（Ｌ．ｐｌａｎｔａｒｕｍ）、ラクトバチルス・パラカゼイ（Ｌ．ｐａｒａｃａｓｅｉ）、ラクトバチルス・カゼイ（Ｌ．ｃａｓｅｉ）、ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）、ラクトコッカス属（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓｓｐｐ．）、ラクトコッカス・ラクティス（Ｌ．ｌａｃｔｉｓ）、アルテロモナス属（Ａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｓｐｐ．）、アルテロモナス・メディア（Ａ．ｍｅｄｉａ）、カルノバクテリウム属（Ｃａｒｎｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｓｐｐ．）、カルノバクテリウム・ディベルゲンス（Ｃ．ｄｉｖｅｒｇｅｎｓ）、ビブリオ属（Ｖｉｂｒｉｏｓｐｐ．）、ビブリオ・アルギノリティカス（Ｖ．ａｌｇｉｎｏｌｙｔｉｃｕｓ）、シュードモナス属（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓｓｐｐ．）、シュードモナス・フルオレッセンス（Ｐ．ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ）、ストレプトコッカス属（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｓｐｐ．）、ストレプトコッカス・ラクティス（Ｓ．ｌａｃｔｉｓ）、ストレプトコッカス・サーモフィラス（Ｓ．ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）、シュードアルテロモナス属（Ｐｓｅｕｄｏａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｓｐｐ．）、シュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐ．ｕｎｄｉｎａ）、サッカロミセス属（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｓｐｐ．）、サッカロミセス・セレビシエ（Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、サッカロミセス・イグジグース（Ｓ．ｅｘｉｇｕｕｓ）、ファフィア属（Ｐｈａｆｆｉａｓｐｐ．）、Ｐ．ｒｈｏｄｏｚｏｍａ、ピキア属（Ｐｉｃｈｉａｓｐｐ．）、ピキア・パストリス（Ｐ．ｐａｓｔｏｒｉｓ)、クリュイベロミセス属（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓｓｐｐ．）、Ｋ．ａｅｓｔｕａｒｉｉ、クリュイベロミセス・マルシアヌス（Ｋ．ｍａｒｘｉａｎｕｓ）、Ｋ．ｙａｒｒｏｗｉｉなどの生物活性剤を送達可能である。

また、この送達方法により、ゲンタマイシン、テトラサイクリン、オキシテトラサイクリン、ドキシサイクリン、アンピシリン、チカルシリン、セファロチン、セファロリジン、セフォチアム、セフスロジン、セフメノキシム、セフメタゾール、セファゾリン、セフォタキシム、セフォペラゾン、セフチゾキシム、モキソラクタム（ｍｏｘｏｌａｃｔａｍ）、ラタモキセフ、チエナマイシン、スルファゼシン（ｓｕｌｆａｚｅｃｉｎ）、アズトレオナムなどの生物活性剤を送達可能である。

さらに、この送達方法により、ソマトスタチン、ソマトスタチン誘導体、成長ホルモン、プロラクチン、副腎皮質刺激ホルモン（ＡＣＴＨ）、メラニン細胞刺激ホルモン（ＭＳＨ）、甲状腺刺激ホルモン放出ホルモン（ＴＲＨ）、ＴＲＨ塩、ＴＲＨ誘導体、甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）、黄体形成ホルモン（ＬＨ）、オキシトシン、カルシトニン、ガストリン、セクレチン、パンクレオザイミン、コレシストキニン、インターロイキン、チモポエチン、チモシン、サイモスチムリン、胸腺因子、ボンベシン、ニューロテンシン、リゾチーム、タンパク質合成刺激ペプチド、血管作用性腸管ポリペプチド（ＶＩＰ）、成長ホルモン放出因子（ＧＲＦ）、somatocrininなどの生物活性タンパク質を送達可能である。

この送達方法により、生物活性剤を軟体動物、魚、エビなどの水生動物に送達可能である。この方法を用いることで、生物活性剤は、澱粉親水コロイドまたは１種以上のタンパク質を含むアルギン酸マトリックスを含む巨大粒子を含みうる。生物活性剤は、放出制御されうる。巨大粒子は、上記のように微粒子をさらに含みうる。巨大粒子は、例えば、微生物、タンパク質、ペプチド、核酸、ホルモン、薬剤、抗生物質、酵素、ミネラル、ビタミン、薬剤、抗体、免疫原、マイクロ構造体、ナノ構造体といった生物活性剤を含みうる。巨大粒子は、湿った形態もしくは乾燥形態で提供され、生物誘引物質または栄養素を含みうる。

さらに、この送達方法により、ソマトスタチン、ソマトスタチン誘導体、成長ホルモン、プロラクチン、副腎皮質刺激ホルモン（ＡＣＴＨ）、メラニン細胞刺激ホルモン（ＭＳＨ）、甲状腺刺激ホルモン放出ホルモン（ＴＲＨ）、ＴＲＨ塩、ＴＲＨ誘導体、甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）、黄体形成ホルモン（ＬＨ）、オキシトシン、カルシトニン、ガストリン、セクレチン、パンクレオザイミン、コレシストキニン、インターロイキン、チモポエチン、チモシン、サイモスチムリン、胸腺因子、ボンベシン、ニューロテンシン、塩化リゾチーム、タンパク質合成刺激ペプチド、血管作用性腸管ポリペプチド（ＶＩＰ）、成長ホルモン放出因子（ＧＲＦ）、somatocrininなどの生物活性タンパク質を送達可能である。

また、この送達方法により、ゲンタマイシン、テトラサイクリン、オキシテトラサイクリン、ドキシサイクリン、アンピシリン、チカルシリン、セファロチン、セファロリジン、セフォチアム、セフスロジン、セフメノキシム、セフメタゾール、セファゾリン、セフォタキシム、セフォペラゾン、セフチゾキシム、モキソラクタム（ｍｏｘｏｌａｃｔａｍ）、ラタモキセフ、チエナマイシン、スルファゼシン（ｓｕｌｆａｚｅｃｉｎ）、アズトレオナムなどの生物活性剤を送達可能である。この方法により、１種以上の生物活性剤を軟体動物、魚、エビなどの水生動物に送達可能である。

発明を実施するための形態
概要
生物活性剤および生存プロバイオティック微生物のためのデリバリー賦形剤を水生動物に対して提供することが本発明の目的である。デリバリー賦形剤は、動物の胃における消化と破壊から生物活性化合物および微生物を保護する。

生物活性剤および生存プロバイオティック微生物のための放出制御デリバリー賦形剤を水生動物に対して提供することが本発明の目的である。放出制御デリバリー賦形剤は、その化合物および／または微生物を動物の前腸や後腸に沿ってそれらの作用部位で徐放する。約２時間の後腸での通過時間に対応して予測可能な分解を提供し、また後腸での再現可能な放出を許容するために、賦形剤は、前腸のｐＨ範囲内で分解を開始し、後腸におけるｐＨ範囲で分解し続ける。後腸における条件により、この分解を促進することが可能である。

水生動物に対する生物活性剤および／または微生物のために、放出制御デリバリー賦形剤を生産する方法を提供することが本発明の目的である。放出制御デリバリー賦形剤は、可溶性澱粉および架橋アルギン酸塩と結合される栄養素および誘引物質を含む、湿性または乾燥性ビードレットの形態で提供される。生物活性剤および生存プロバイオティック微生物は、乳化した高アミロース澱粉（プレバイオティック化合物）と結合され、微粒子の形態でビードレット内に組み込まれている。

生物活性剤は、薬剤、ビタミン、ホルモン、ワクチン、ミネラル、ペプチド、核酸、酵素、細菌、ウイルス、抗体、ナノ構造体、マイクロ構造体、免疫原を含みうるが、これらに限定されない。活性剤の例として、ソマトスタチン、ソマトスタチン誘導体、成長ホルモン、プロラクチン、副腎皮質刺激ホルモン（ＡＣＴＨ）、メラニン細胞刺激ホルモン（ＭＳＨ）、甲状腺刺激ホルモン放出ホルモン（ＴＲＨ）およびその塩と誘導体、甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）、黄体形成ホルモン（ＬＨ）、オキシトシン、カルシトニン、ガストリン、セクレチン、パンクレオザイミン、コレシストキニン、インターロイキン（例えば、ＩＬ−Ｉ、ＩＩ、およびＩＩＩ）、チモポエチン、チモシン、サイモスチムリン、他の胸腺因子、ボンベシン、ニューロテンシン、リゾチーム、タンパク質合成刺激ペプチド、血管作用性腸管ポリペプチド（ＶＩＰ）、成長ホルモン放出ホルモン（例えば、ＧＲＦ、somatocrininなど）などが挙げられるが、これらに限定されない。

抗生物質の例として、ゲンタマイシン、テトラサイクリン、オキシテトラサイクリン、ドキシサイクリン、アンピシリン、チカルシリン、セファロチン、セファロリジン、セフォチアム、セフスロジン、セフメノキシム、セフメタゾール、セファゾリン、セフォタキシム、セフォペラゾン、セフチゾキシム、モキソラクタム、ラタモキセフ、チエナマイシン、スルファゼシン（ｓｕｌｆａｚｅｃｉｎ）、アズトレオナムなどが挙げられるが、これらに限定されない。

プロバイオティック細菌の例として、バチルス属（Ｂａｃｉｌｌｕｓｓｐｐ．）、バチルス・リケニフォルミス（Ｂａｃｉｌｌｕｓｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ）、クリス・ハンセン・バイオシステムズ（ＣｈｒｉｓＨａｎｓｅｎ’ｓＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）から市販のバチルス・ズブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓｓｕｂｔｉｌｉｓ）株、ラクトバチルス属（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｓｐｐ．）、ラクトバチルス・ブルガリカス（Ｌ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ）、ラクトバチルス・ヘルベティカス（Ｌ．ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ）、ラクトバチルス・プランタラム（Ｌ．ｐｌａｎｔａｒｕｍ）、ラクトバチルス・パラカゼイ（Ｌ．ｐａｒａｃａｓｅｉ）、ラクトバチルス・カゼイ（Ｌ．ｃａｓｅｉ）、ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）、ラクトコッカス属（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓｓｐｐ．）、ラクトコッカス・ラクティス（Ｌ．ｌａｃｔｉｓ）、ビフィドバクテリウム属（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｓｐｐ．）、ビフィドバクテリウム・ビフィドゥム（Ｂ．ｂｉｆｉｄｕｍ）、ビフィドバクテリウムｓｐ．Ｂ４２０（Ｂ．ｓｐ．Ｂ４２０）、ビフィドバクテリウム・ロンガム（Ｂ．ｌｏｎｇｕｍ）、ビフィドバクテリウム・ラクティス（Ｂ．ｌａｃｔｉｓ）、ビフィドバクテリウム・ジョンソニイ（Ｂ．ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ）,ビフィドバクテリウム・ルミナンティウム（Ｂ．ｒｕｍｉｎａｎｔｉｕｍ）、エンテロコッカス属（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓｓｐｐ．）、エンテロコッカス・フェシウム（Ｅ．ｆａｅｃｉｕｍ）、アルテロモナス属（Ａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｓｐｐ．）、アルテロモナス・メディア（Ａ．ｍｅｄｉａ）、カルノバクテリウム属（Ｃａｒｎｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｓｐｐ．）、カルノバクテリウム・ディベルゲンス（Ｃ．ｄｉｖｅｒｇｅｎｓ）、ビブリオ属（Ｖｉｂｒｉｏｓｐｐ．）、ビブリオ・アルギノリティカス（Ｖ．ａｌｇｉｎｏｌｙｔｉｃｕｓ）、シュードモナス属（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓｓｐｐ．）、シュードモナス・フルオレッセンス（Ｐ．ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ）、ストレプトコッカス属（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｓｐｐ．）、ストレプトコッカス・ラクティス（Ｓ．ｌａｃｔｉｓ）、ストレプトコッカス・サーモフィラス（Ｓ．ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）、シュードアルテロモナス属（Ｐｓｅｕｄｏａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｓｐｐ．）、シュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐ．ｕｎｄｉｎａ）などが挙げられるが、これらに限定されない。プロバイオティック酵母の例として、サッカロミセス属（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｓｐｐ．）、サッカロミセス・セレビシエ（Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、サッカロミセス・イグジグース（Ｓ．ｅｘｉｇｕｕｓ）、ファフィア属（Ｐｈａｆｆｉａｓｐｐ．）、Ｐ．ｒｈｏｄｏｚｏｍａ、ピキア属（Ｐｉｃｈｉａｓｐｐ．）、ピキア・パストリス（Ｐ．ｐａｓｔｏｒｉｓ)、クリュイベロミセス属（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓｓｐｐ．）、Ｋ．ａｅｓｔｕａｒｉｉ、クリュイベロミセス・マルシアヌス（Ｋ．ｍａｒｘｉａｎｕｓ）、Ｋ．ｙａｒｒｏｗｉｉなどが挙げられるが、これらに限定されない。

定義
本発明を記載する場合に、下記に明示する定義に従って、以下の専門用語が用いられる。

化合物または成分を「マイクロカプセル化する」とは、「微粒子」中、コーティングまたはゲルを用いた２０〜１５０μｍのサイズ範囲の球状あるいは不定形のペレット中、またはカプセル内にそれを封入することである。微粒子は、多種化合物から構成されうる。本発明の文脈において、「マイクロカプセル化」する物質は、ポリ（ビニルピロリドン）、ポリ（ビニルアルコール）、ポリ（エチレンオキシド）、セルロース、セルロース誘導体、澱粉、ヘミセルロース、シリコーン、ポリ（ヒドロキシエチルメタクリレート）などの多種多様な材料で構成されうる高分子物質であるが、これらに限定されない。

「微小結合される」物質は、「微粒子」内に含有されることで封入および／または固定化される物質である。

「巨大粒子」および「ビードレット」は、固体、半固体、または正球形あるいは不規則な形状単位を形成するゲルを形成し、その内部に誘引物質、化学物質、微粒子、細菌、菌類、酵母、ウイルス、他の有用物質などの添加剤を保持可能な高分子物質を互換的に参照するのに用いられる。巨大粒子またはビードレットのサイズ範囲は、その最小直径で約１００μｍ〜約１ｃｍで、最高で何ｃｍもの長さでありうる。

「放出制御」送達系は、ビードレットまたは粒子中にある材料が原型を保って所望の場所に確実に送達されるように操作を受ける系である。この放出制御を得るための機構は、本明細書に記載され、ビードレット中の特異的認識物質（例えば、腸粘膜にとってのキトサン）、ｐＨ感応物質、レドックス感応物質などを含む高分子成分の操作を含んでいる。

「生物誘引物質」は、標的動物を刺激して物質をより容易に消費させる化合物である。それは水生動物に関連していることから、生物誘引物質は、魚粉、エビ粉、小エビ粉、またはこれらの粉の加水分解物、およびベタイン、グリシン、リジン、アラニン、バリン、プロリン、ヒスチジン、タウリンなど(これらに限定されない）のアミノ酸でありうるがこれらに限定されない。ヒトにとって、生物誘引物質は、本発明の物質をより味が良い、またはそうでなければ魅了する砂糖、塩、香味料、ビタミン、油など(これらに限定されない）にするいずれかの物質を含む。

放出制御デリバリー賦形剤の生産
本発明の放出制御デリバリー賦形剤は、約１０μｍ〜約１０，０００μｍの範囲内の特定のサイズを有する乾燥性または湿性ビードレット飼料を調製することによって作製される。ビードレットは、有機高分子、可溶性澱粉および耐性澱粉、ゴム（アカシア（アラビアゴム）、カラギナンなど）、エチルセルロース、アルギン酸塩、ワックス、乳化剤、脂質、またはタンパク質などの種々の成分から作製される。海洋動物を魅了し、また海洋動物によって摂取されうる安定粒子を提供するために、ゲルは重合または架橋される。

微小結合粒子または微粒子における放出制御生物活性剤の調製
高アミロース澱粉粒のゼラチン化
１〜２５重量％の濃度での高アミロース澱粉（少なくとも５０％のアミロースを含有する澱粉）は、澱粉粒が十分に水に吸収され平衡に達するまで、２０〜６５℃の温度範囲で１〜５Ｎ水酸化ナトリウム溶液中に分散される。高アミロース澱粉のゼラチン化は、微粒子にある種の放出制御特性を与える。本発明の実施形態において、タンパク質やポリペプチドなどのマトリックス成分を添加することで、生物活性剤の放出速度を増加させることが可能である。放出速度を調節するのに使用可能性な物質の例として、カゼイン、アルブミン、大豆プロテイン、魚粉、小エビ粉などが挙げられるが、これらに限定されない。これらの速度増加成分は、代替のマトリックス材料に比べ、水や胃液に対して一層の溶解性を発揮する場合がある。溶解時に粒子の透過性が高まることにより、これら化合物への接近する機会が増大する。

ゼラチン状高アミロースの乳化
通常の環境下で、ゼラチン状の高アミロース澱粉が中和されたり冷却されたりすると、澱粉粒の不溶性沈殿物への再アニーリングが起こる。本発明では、リン脂質などの乳化剤を含有することで、冷却時および中和時における澱粉粒のこの再アニーリングを防止することを記載している。このことにより、低めの温度もしくは中性ｐＨにおいて生物活性または機能性物質を澱粉へ添加することで、添加物質の安定性および／または機能の促進が可能になる。

本願明細書で記載される処理により、アミロースと乳化剤との間の相互作用によって安定化される、部分的もしくは完全に溶解しない錯体の形態における澱粉および乳化剤を含む組成物の生成が可能である。一般に、乳化剤といえば、溶媒と長鎖飽和脂肪酸（例えば、約１０を超える炭素原子を含有するアシル基を有する）、ならびに飽和脂肪酸（例えば、約１２〜約１８炭素を含有する飽和脂肪酸）と不飽和脂肪酸（例えば、オレイン酸、リノール酸、エイコサペンタエン酸、アラキドン酸およびドコサヘキサエン酸などの約１２〜約２２炭素を含有する不飽和脂肪酸）のモノグリセリド、ソルビタンエステル、プロピレングリコールエステル、レシチン、ポリソルベート、およびスクロースエステルであろう。

乳化剤溶液（０．５〜１２．５重量％含有）は、澱粉粒が完全に溶解され、アミロースと乳化剤との相互作用によって安定化される、溶解性を有する錯体が平衡に達するまで、２０〜６５℃の温度範囲でアルカリ溶液中でゼラチン状の高アミロース澱粉に添加されうる。乳化剤の疎水性を高めることで、水あるいは胃液がいったん微粒子中に形成されたマトリックス内に浸透するのを容易に阻止したり遅延させる。

中和
製品のアルカリ度は、酸を添加することで、約７．５〜８ｐＨにまで徐々に低下する。また、澱粉および乳化剤の錯体は、親水コロイド、ゴム、高分子、加工澱粉、および／またはこれらの組み合わせとともに混合抽出されることで、澱粉−乳化剤組成物の水結合能力を変化させうる。例えば、キサンタンガム、アルギン酸塩、カラギナン、カルボキシメチルセルロース、メチルセルロース、グアールガム、アラビアゴム、ローカストビーンガム、および／またはこれらの組み合わせは、添加成分がアミロース−乳化剤錯体の構造を分解しない限り、中和後ならいつでも澱粉−乳化剤組成物に添加されうる。最後に、懸濁液組成物は室温までの冷却が許容される。

生物活性剤および／またはプロバイオティック微生物の添加と架橋反応
生物活性化合物および／または生存微生物または成育能力のある胞子を含む混合物は、懸濁液中に溶解され、組成物は、場合により、この目的のために一般に認められている、例えば、低温噴霧乾燥、ベルト乾燥、凍結乾燥、回転ドラム乾燥、または気流乾燥といった多くの方法によって乾燥されて粉末を生成しうる。例えば、この分散は、塩化カルシウム溶液内で噴霧され、かつ架橋されうる。この湿気を帯びた微粒子は、使用まで約４℃で冷凍保存されるか、または室温で乾燥されて保存されうる。乾燥した微粒子は、使用に先立って水または別の水溶液で再水和されるか、または送達時に再水和されうる。

ビードレットまたは巨大粒子の調製
親水コロイドの形成
１〜２５重量％の生物活性剤もしくは機能性物質を含有するワックス様メイズ澱粉（少なくとも５０％のアミロペクチンを含む）は、澱粉が完全に溶解するまで、２０〜６５℃の温度範囲で水中に分散される。澱粉懸濁液は、０．５〜１２．５重量％のキサンタンガム、アルギン酸塩、カラギナン、カルボキシメチルセルロース、メチルセルロース、グアールガム、アラビアゴム、ローカストビーンガム、および／またはこれらの組み合わせとともに混合抽出される。最後に、親水コロイド懸濁液組成物は、室温までの冷却が許容される。

タンパク質、栄養素、および誘引物質の添加
３〜３０重量％を含有する、魚、小エビ、エビ、またはカニの粉の加水分解物、または水生動物の粉の加水分解物の任意の組み合わせなどの誘引物質は、これらに限定されないが、親水コロイドならびに１〜５重量％のベタインおよびグリシン＋アラニン混合物中に誘引物質として溶解される。タンパク質またはポリペプチドをビードレットに添加することで、ＧＩプロテアーゼまたは他の酵素によって開口可能な部位や孔が得られ、水生動物による飼料の部分消化を可能にする。アミノ酸と脂肪酸、砂糖、多糖類、ミネラル、ビタミン、プロテアーゼ、リパーゼ、アミラーゼなどの他の栄養素または酵素は、これらに限定されないが、親水コロイド懸濁液に添加されうる。

１種もしくは数種類の生物活性剤および／またはプロバイオティック微生物を含有する放出制御微粒子の添加
経験的に決定される有効濃度の湿性および／または乾燥性の微粒子調製物は、親水コロイド懸濁液に添加することで、完全に混合されうる。

架橋反応およびビードレットの調製
親水コロイド懸濁液は、場合によって乾燥され、約１００μｍ〜約１０，０００μｍの範囲の種々のサイズにペレット化されて室温で保存されるか、または約１００μｍ〜約１０，０００μｍの範囲の種々のチューブサイズで滴下され、塩化カルシウム溶液、ディップ、またはスプレーで架橋される。プロピレングリコール、グリセロール、塩化カルシウム、またはＢＨＴなどの保存料のいずれかの種類は、これらに限定されないが、添加することで、湿性ビードレットは使用まで４℃で冷凍保存されうる。ビードレットを乾燥させる追加工程を実行することで、乾燥製品を生産することが可能である。

本発明の特定の実施形態は、ここで以下の実施例を通して、より詳細に記載される。実施例は、本発明の選択された実施形態の記載をより十分にサポートすることを目的とするものであり、決して本発明の範囲に限定するように考えられるべきではない。

実施例１
プロバイオティック微生物のラクトバチルス・ラムノサス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｈａｍｎｏｓｕｓ）を含有する放出制御微粒子の生産
４グラムの高アミロース澱粉（７０％アミロース；「ハイロン」（Ｈｙｌｏｎ）ＶＩＩ、ナショナル・スターチ・アンド・ケミカル（ＮａｔｉｏｎａｌＳｔａｒｃｈａｎｄＣｈｅｍｉｃａｌ）、ニュージャージー州ブリッジウォーター）を５０℃で１Ｎ水酸化ナトリウムに溶解した（図１、左パネル）。２グラムの粉末状卵レシチン（アーチャー・ダニエルズ・ミッドランド・カンパニー（Ａｒｃｈｅｒ−Ｄａｎｉｅｌｓ−ＭｉｄｌａｎｄＣｏ．）、イリノイ州ディケイター）をアルカリ懸濁液に添加し、３０分間でアミロースとの錯体形成を可能にした（図１、右パネル）。図１に示すように、澱粉粒を水酸化する（ゼラチン化する）際の物理的相違が観察される。つぎに、アルカリ錯体懸濁液を塩酸を用いてｐＨ７．５まで中和した。つぎに、２グラムのアルギン酸を水和した澱粉懸濁液中に溶解し、いったん溶解すると、室温までの冷却を許容した。２０グラムのラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）（ＬＣＳ−７４２、森永乳業株式会社（ＭｏｒｉｎａｇａＭｉｌｋＩｎｄｕｓｔｒｙＣｏ．，ＬＴＤ．）、神奈川、日本）を冷却・中和した澱粉／アルギン酸塩の懸濁液に添加した。つぎに、懸濁液をグラコ（Ｇｒａｃｏ）１９０ＥＳのペイントスプレーヤを用いて５重量％の塩化カルシウムと１重量％の塩化ナトリウムの溶液中に噴霧し、約１０μｍ〜約１００μｍのサイズ範囲の微粒子を形成した。精細なメッシュスクリーン上で微粒子を水道水洗浄し、使用まで４℃で冷凍保存状態にした。表１に、微粒子の組成物を示す。

実施例２
ビードレット中のラクトバチルス・ラムノサス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｈａｍｎｏｓｕｓ）細菌の生存力
実施例１と同様にビードレットを調製し、半乾燥状態とし（すなわち、ビードレットの抜水を行ったが、それ以上乾かなかった）、４℃および室温で時間をかけて微小結合する細菌の生存力を試験した。１０個のビードレットをバッチから無菌の５ｍｍガラスビーズの１／３の容積を含有する無菌のビードビーター（Ｂｅａｄｂｅａｔｅｒ）チューブに移動させることによってビードレットを試験した。滅菌水（１ｍＬ）を添加して同チューブを満たし、最高で３回の４０秒パルスの間ビードビーター中でチューブを処理し、ビーズを分解した。この材料は、順に滅菌水中に希釈し、ラクトバチルスＭＲＳ培地（ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓＭＲＳＡｇａｒ）（ディフコ（Ｄｉｆｃｏ））上に播いて拡散させた。３０℃で２〜３日間プレートを培養し、ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）のコロニー数を計数した。細菌の生存率を図２に示す。細菌の生存力は、最初の細菌数に対して、室温での保存処理の間に時間の経過とともに減少したものの、４℃での保存処理の間に増加した。

実施例３
伝染性膵臓壊死症ウイルス（ＩＰＮＶ）ワクチンを含有する放出制御微粒子の生産
実施例１の記載と同様に、錯体懸濁液を調製し、ＨＣｌによってｐＨ７．５に調節した。つぎに、ＩＰＮＶ粒子を発現するパン酵母（湿重量２０ｇのサッカロミセス・セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ））を冷却・中和した懸濁液（アドバンスド・バイオニュートリション・コーポレーション（ＡｄｖａｎｃｅｄＢｉｏＮｕｔｒｉｔｉｏｎＣｏｒｐ．）で生産）に添加した。つぎに、同懸濁液を５重量％の塩化カルシウムと１重量％の塩化ナトリウムの溶液中に噴霧し、約１０μｍ〜約１００μｍ間のサイズ範囲で微粒子を形成した。微粒子を精細なメッシュスクリーン上で水道水洗浄し、使用まで４℃で冷凍保存状態にした。表２に、微粒子組成物を示す。

実施例４
ハイブリッドシマスズキ稚魚へのプロバイオティック細菌ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）のビードレットでの送達
商用の標準飼料に加えて、高アミロース錯体との微小結合の有無を問わず、若いハイブリッドシマスズキ（１〜２ｇ）を生存ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）を含有する湿性ビードレットで毎日０．２重量％ずつ給餌した。つぎに、魚や切除された胃から全消化管を除去した。無菌の５ｍｍガラスビーズの１／３の容積を含有する無菌ビードビーター（Ｂｅａｄｂｅａｔｅｒ）チューブ内に１つの腸を置いた。滅菌水（１ｍＬ）を添加してチューブを満たし、最高で３回の４０秒パルスの間ビードビーター中でチューブを処理し、腸組織を分解した。この材料は、順に滅菌水中に希釈し、ラクトバチルスＭＲＳ培地（ＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓＭＲＳＡｇａｒ）（ディフコ（Ｄｉｆｃｏ））上に播いて拡散させた。３０℃で２〜３日間プレートを培養し、ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）のコロニー数を計数した。表３に示すように、魚に微小結合したラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）を含有するビードレットで給餌した結果、微小結合されない細菌で得られるレベルを上回る腸コロニー形成レベルに達した（微小結合されたラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）を給餌された魚における１０^４ｃｆｕ／腸に対し、微小結合されない細菌を給餌された魚においては１０^２ｃｆｕ／腸）。標準飼料によるウォッシュアウトの１０日後であっても、腸のコロニー形成は明らかであった。魚の成長速度を図３に示す。微小結合されたラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）を含有するビードレットを給餌された魚では、ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）を含有しないビードレットを給餌された魚に比べて５０％を上回る成長速度が達成された。

実施例５
ＧｎＲＨ生殖ホルモンを含有する放出制御微粒子の生産
錯体懸濁液は、４ｇの高アミロース澱粉、３ｇの卵レシチン、２ｇのアルギン酸、および９１ｇの水を含有する実施例１に記載どおりに調製し、ｐＨ７．５に調節する。つぎに、合成ＧｎＲＨアナログ（オヴァプリム（Ｏｖａｐｒｉｍ）、シンデル・インターナショナル・インコーポレーテッド（ＳｙｎｄｅｌＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌＩｎｃ．）、ブリティッシュコロンビア州バンクーバー、カナダ）を含有する溶液を冷却・中和した懸濁液に添加する。つぎに、懸濁液を５重量％の塩化カルシウムと１重量％の塩化ナトリウムの溶液中に噴霧し、約１０μｍ〜約１００μｍ間のサイズ範囲の微粒子を形成する。微粒子を精細なメッシュスクリーン上で水道水洗浄し、使用まで４℃で冷凍保存状態にする。表４に、微粒子組成物を示す。

実施例６
ＩＰＮＶワクチンおよびプロバイオティック微生物とともに放出制御微粒子を含有するビードレットの生産
３グラムのワックス様メイズ澱粉（ウルトラ−スパース（Ｕｌｔｒａ−Ｓｐｅｒｓｅ）Ｍ、ナショナル・スターチ・アンド・ケミカル（ＮａｔｉｏｎａｌＳｔａｒｃｈａｎｄＣｈｅｍｉｃａｌ）、ニュージャージー州ブリッジウォーター）を５０℃で４５ｇの蒸留水中に溶解する。つぎに、２グラムのアルギン酸塩を懸濁液に溶解し、室温まで冷却することを許容する。１０ｇの魚粉加水分解物と誘引物質調製物（アクア・セイヴァー（ＡｑｕａＳａｖｏｒ）、ベントリ・インコーポレーテッド（Ｂｅｎｔｏｌｉ、Ｉｎｃ．）、フロリダ州ホームステッド）を冷却した親水コロイドおよび等量（２０ｇまたは各々異なる）のプロバイオティック微粒子中に溶解し、実施例１および２に記載される酵母微粒子を含有するＩＰＮＶワクチンを、各々親水コロイドに添加する。つぎに、５重量％の塩化カルシウムおよび１重量％の塩化ナトリウムの溶液中に、親水コロイド懸濁液をチューブ直径５ｍｍの蠕動ポンプを用いて滴下した。ビードレットを水道水下で完全に洗浄したスクリーン上に収集して、食塩溶液中に室温で保存した。表５に微粒子組成物を示す。

実施例７
プロバイオティック／ＩＰＮＶワクチンビードレットによるマスの給餌
約１００ｇサイズのマス稚魚を１５℃で１ｍ^３当たり３０ｋｇの淡水で貯蔵する。機械的な生物濾過システムにより、水槽水を速やかに交換することで水質を保持する。実施例３に記載のように、２１日間、１日４回、商用飼料および２％（湿重量）放出制御ビードレットで総量２％体重を魚に給餌する。１日当たりの成長速度を以下の公式に従って計算する。
成長速度＝（魚の最終平均重量）−（初期平均重量）／（成長日数）
食品換算率（ｆｏｏｄｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎｒａｔｉｏ）（ＦＣＲ）を以下の公式に従って計算する。
ＦＣＲ＝（（全給餌量）／（魚全体の最終生物量））−（グラム単位による魚全体の初期生物量）

ＩＰＮＶに対する抗体特異性のための分析や存在するプロビオントを定量化するための腸マイクロフローラ分析のために、血液サンプルを採取する。

実施例８
ＧｎＲＨ合成アナログを有する放出制御微粒子を含有するビードレットの生産
実施例６に記載のように、親水コロイドを生産し、実施例５に記載のように調製したＧｎＲＨ微粒子を冷却した親水コロイド溶液に添加した。つぎに、蠕動ポンプおよび５ｍｍのチューブ直径を用いて、親水コロイド懸濁液を５重量％の塩化カルシウムおよび１重量％の塩化ナトリウムの溶液に滴下した。ビードレットを水道水下で完全に洗浄したスクリーン上に収集して、食塩溶液中に室温で保存した。表６に、微粒子組成物を示す。

実施例９
ＧｎＲＨビードレットによるマスの給餌
親マスを１ｍ^３当たり１０ｋｇの淡水で１０℃の温度で貯蔵する。機械的な生物濾過システムにより、水槽水を速やかに交換することで水質を保持する。実施例３に記載のように、１４日間、１日４回、商用飼料および２％（湿重量）放出制御ビードレットで総量２％体重を魚に給餌する。ＧｎＲＨプロフィール分析のために、血液サンプルを採取し、商用の標準飼料だけで給餌される魚と比較する。

実施例１０
プロバイオティック混合物によるエビ（バナメイ種（Ｐｅｎａｅｕｓｖａｎｎａｍｅｉ））の給餌
約１０ｇサイズのエビ稚魚を２８℃で１ｍ^３当たり１０ｋｇの海水で貯蔵する。機械的な生物濾過システムにより、水槽水を速やかに交換することで水質を保持する。１日４回、２％体重の総量で、ペレット化された標準飼料をエビに給餌し、ペレットサイズを成長するエビの開口サイズに合うように調節する。標準飼料に加えて、微小結合されたラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）とシュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐｓｅｕｄｏａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｕｎｄｉｎａ）（ＤＳＭＺ６０６５、ＤｅｕｔｓｃｈｅＳａｍｍｌｕｎｇｖｏｎＭｉｋｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｅｎｕｎｄＺｅｌｌｋｕｌｔｕｒｅｎＧｍｂＨ）を等量ずつ有する混合物を含有する０．２％体重の湿性ビードレットによってもエビに給餌する。実施例１に記載のように、、微小結合された細菌を調製する。この実験は、エビが４０ｇの平均商用サイズに達する際に終了する。実施例７に記載のように、１日当たりの成長速度と食品変換率を計算する。

２０匹のエビサンプルを容器槽に入れ、白斑ウイルス（ＷＳＶ）に感染させ、感染の２週間後に生存率が記録される。

実施例１１
猫ウイルス（猫ヘルペスウイルス１；ＦＨＶ１）ワクチンを含有する放出制御微粒子の生産
実施例１に記載のように、４ｇの高アミロース澱粉、２ｇの卵レシチン、２ｇのアルギン酸、および７２ｇの水を用いて錯体懸濁液を調製してから、ＨＣｌによってｐＨ７．５に調節する。つぎに、ＦＨＶ１粒子を発現するパン酵母（サッカロミセス・セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ））の湿重量２０グラムを冷却・中和させた懸濁液に添加する。つぎに、懸濁液を５重量％の塩化カルシウムと１重量％の塩化ナトリウムの溶液中に噴霧し、１０μｍ〜１００μｍ間のサイズ範囲の微粒子を形成する。微粒子を精細なメッシュスクリーン上で水道水洗浄し、凍結乾燥し、使用まで乾燥粉末状態にする。表７に、微粒子組成物を示す。

実施例１２
ＦＨＶ１ワクチンビードレットでトップコーティングを施された押し出し成型飼料による猫への給餌
実施例１１に記載のように、ペイントスプレーガンを用いて、１％のアルギン酸塩と２０％の微粒子の懸濁液によって商用で標準のペレット化された猫用飼料にトップコーティングを施す。つぎに、トップコーティングを施したペレットを４０℃で１晩乾燥させる。１０匹の猫に対して、１週間、ＦＨＶ１を含有する飼料の給餌後、２週間、標準飼料を給餌し、さらに１週間、飼料でトップコーティングを施したワクチンで増加投与した。ＦＨＶ１に対する抗体の滴定濃度を決定するため、実験の開始から１ヵ月後に血液サンプルを採取し、分析する。

実施例１３
ビードレットによるヒトへの生物活性化合物の送達
実施例１に記載の方法に従って粒子を調製し、ＧＭＰ（ＧｏｏｄＭａｎｕｆａｃｔｕｒｉｎｇＰｒｏｃｅｄｕｒｅｓ）に適合するように同方法の正当性を立証することで、送達装置としてヒトでの使用を可能にする。この方法によって、標準化された栄養補給剤をヒトに送達することは可能である。４％フェノール化合物に標準化されている植物の地上部由来の粉末状エキナケア・プルプレア（Ｅｃｈｉｎａｃｅａｐｕｒｐｕｒｅａ）抽出物をビードレットの標準化された用量率である１ｍｇのフェノール化合物／ｇに添加する。ビードレットの味をおいしくするのに、薬剤またはバニリンなどの香味料のマスキングを用いる。つぎに、ビードレットを直径２００〜３００μｍの範囲内で作製し、スプレードライさせる。つぎに、投与量当たりフェノール化合物１ｍｇのヒトへの穀類送達用トップコーティングとして、スプレードライしたビーズを用いる。

実施例１４
インスリンの経口送達
インスリンは胃の中で速やかに分解されるので、経口によるインスリン送達は難題を提示している。経口インスリン投与は、糖尿病患にとっては大きな救いであろうが、インスリンはコストがかかり、経口送達には大用量を要することから、現在の治療法ではたいてい注射を用いる。現在では、ノベックス（Ｎｏｂｅｘ）やグラクソ・スミスクライン（ＧｌａｘｏＳｍｉｔｈＫｌｉｎｅ）などの企業は、インスリンの化学修飾（例えば、インスリンに対するポリエチレングリコールの添加）により、経口インスリンを送達する方法を構築中である。本発明は、別の選択肢、すなわち微小結合様式でのアルギン酸塩／澱粉ビーズの送達を提供する。

表８の組成とＣａＣｌ_２重合を用い、上記実施例に記載された技法を用いて微粒子を作製する。１ｇ当たり１１〜１４Ｕの湿重量を含有するビードレットを形成する。粒子サイズを約０．１〜約０．２ｍｍの間に調節し、ビーズをスプレードライさせる。つぎに、水中での使用に先立って約１分間スプレードライさせたビーズを再水和し、水分吸収によって消費する。濃度を８８０〜１１４０まで変化させ、患者のサイズの違いを考慮して１１〜１４Ｕの用量を提供する一方、依然としてわずか１ｇの用量で送達する。

実施例１５
ビードレットでテラピア稚魚に給餌されるプロバイオティック細菌ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｈａｍｎｏｓｕｓ）の用量反応
商用の標準飼料に加えて、毎日体重の０、０．２および２％で、実施例１に記載のように調製された高アミロース錯体で微小結合された生存ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）を含有する湿性ビードレットによって若いテラピア（１〜２ｇ）に給餌した。魚の成長速度を図４に示す。０．２％の微小結合されたラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）を含有するビードレットで給餌された魚は、ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）を含有しない対照ビードレットで給餌された魚よりも３．３倍高い成長速度を達成した。細菌の用量の増加によって更なる成長は認められず、２％のラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）で処理しても、成長に関して対照飼料とは有意に異なる効果は生じなかった。

実施例１６
プロバイオティック混合物による太平洋白エビ（バナメイ種（Ｐｅｎａｅｕｓｖａｎｎａｍｅｉ））の給餌：白斑ウイルス負荷に対する効果
約１０ｇサイズのエビ稚魚を２８℃で１ｍ^３当たり１０ｋｇの海水で貯蔵した。機械的な生物濾過システムにより、水槽水を速やかに交換することで水質を保持した。１日４回、２％体重の総量で、ペレット化された標準飼料をエビに給餌し、ペレットサイズを成長するエビの開口サイズに合うように調節した。標準飼料に加えて、微小結合されたラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）とシュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐｓｅｕｄｏａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｕｎｄｉｎａ）（ＤＳＭＺ６０６５、ＤｅｕｔｓｃｈｅＳａｍｍｌｕｎｇｖｏｎＭｉｋｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｅｎｕｎｄＺｅｌｌｋｕｌｔｕｒｅｎＧｍｂＨ）を等量ずつ有する混合物を含有する０．２％体重の湿性ビードレットによってもエビに給餌した。実施例１に記載のように、微小結合された細菌を調製した。この実験は、エビが４０ｇの平均商用サイズに達する際に終了した。図５に、エビの生存率とＦＣＲを示す。実施例７に記載のように、１日当たりの成長速度と食品変換率を計算した。ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）であろうと、ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）とシュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐ．ｕｎｄｉｎａ）の組み合わせであろうと、プロビオントを含有させることで、エビの生存率は増加し、そのＦＣＲは減少する結果となった。

２０匹のエビのサンプルは、マイクロカプセル化したシュードアルテロモナス・ウンディナで補助飼料上に保持しながら、容器槽に入れ、白斑ウイルス（ＷＳＶ）に経口感染させた。２週間の培養期間後に、ダール（Ｄｈａｒ）（ダール（Ｄｈａｒ）ら、２００２）の方法によってリアルタイムＲＴ−ＰＣＲを用いてウイルス負荷を決定した。入力ＤＮＡとサイクル閾値（Ｃ_Ｔ）との間には、線形関係が存在する。ウイルスが抑制されると、Ｃ_Ｔ値が増加する。シュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐ．ｕｎｄｉｎａ）の飼料がＷＳＶの増殖を抑制した一方で、対照およびラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）の飼料は、図６に示すようにウイルスを阻害しなかった。

実施例１７
マイクロカプセル化プロバイオティック生物のサンプル生産方法
２０％細菌負荷で１ｋｇを生産するために、本願明細書ではプロバイオティックのマイクロカプセル化調合物について記載する。この方法を改良することで、標準的方法を用いて細菌負荷を調節することが可能である。例えば、ある種のプロビオント（例として、シュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐ．ｕｎｄｉｎａ）ペースト）の水分含有量が十分に高い場合があり、２０％未満の最大負荷に限って実現可能である。出発物質中の適切な水分量を決定するために、すべての成分重量は開始前に計算するべきである。

蒸留水（７２６ｍｌ）を撹拌／加熱プレート上で１リットルのガラスビーカーに添加し、しぶきが発生しないように注意して撹拌棒の速さを最大に調節する。１０グラムの水酸化ナトリウムを添加し、可溶化させる。１４グラムの高メイズ澱粉（ハイロン（Ｈｙｌｏｎ）ＶＩＩ−ナショナル・スターチ（ＮａｔｉｏｎａｌＳｔａｒｃｈ））を添加してから１４グラムの大豆レシチン（「エピクロン」（Ｅｐｉｋｕｒｏｎ）１００Ｐ−デグサ（Ｄｅｇｕｓｓａ））を添加する。サーモスタットを調節し、約５０℃の液体温度を得て、混合物を約２時間にわたり撹拌する。混合物は、反応が完了する頃には外見上、不透明から半透明に変化し、黄色っぽくなる。顕微鏡検査によって澱粉粒がゼラチン化することは、実証可能である。混合物は、冷却し、約１５ｍｌの高濃度ＨＣｌの添加によって約７．３〜約７．８のｐＨに調節することが可能である。ｐＨが約８．５〜８．０に達すると、混合物の色は薄くなり、不透明になる。

１０グラムのアルギン酸ナトリウム（Ｔ−５００、食品グレード（ｆｏｏｄｇｒａｄｅ）、マルチケム・コーポレーション（Ｍｕｌｔｉ−ＫｅｍＣｏｒｐ．））をこの混合物に徐々に添加する。約１時間またはアルギン酸塩顆粒が完全に溶解するまで、高速ミキサーを用いる。未洗浄のシュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐ．ｕｎｄｉｎａ）をカプセル化する際、アルギン酸塩を添加する前に、５ｇのヘキサメタリン酸ナトリウム（プラクティカルグレード（ｐｒａｃｔｉｃａｌｇｒａｄｅ））を混合物に添加する。

つぎに、プロビオント、例えば、乾燥状態（例えば、脱水状態またはペースト状）の細菌を混合物に添加し、均質になるまで完全に混合する。ペーストを用いる際、標準的方法を用いて生存力のある細胞当たりの含水率を決定する。この方法によって、湿度解析に基づいて、例えば２００ｇの凍結乾燥したラクトバチルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）または２００ｇ固体に相当する量のウンディナ（ｕｎｄｉｎａ）ペーストをカプセル化する。ここで混合物は容易に噴霧される。細菌をカプセル化混合物に添加した直後に、噴霧を施すべきである。

噴霧や架橋結合に先立ってマイクロカプセル化した混合物の重量は、最終製品の重量に正比例する。この過程で水の増減は生じない。プロビオントがペースト状である場合、水分／固体の含有量を用いることで出発物質中の適切な水分量を決定可能である。ペースト中の水分の価値は、製法の中に見出され、混合物に添加される水分量に寄与すると考えられる。

洗浄溶液のイオン組成物および方法においては、調節が必要になる場合がある。例えば、ウンディナ（ｕｎｄｉｎａ）ペーストを洗浄する際、ペースト中の余分な塩化物イオンは、アルギン酸塩の重量の約５０％に相当する量で、ヘキサメタリン酸ナトリウムの混合物への添加を決定づける場合がある。

実施例１８
澱粉マトリックス中のアルギン酸塩物質の噴霧によるゲル化
飼料を塩化カルシウム溶液（ダウフレーク（Ｄｏｗｆｌａｋｅ）、プロセスグレード（ｐｒｏｃｅｓｓｇｒａｄｅ）、ダウ（Ｄｏｗ））中に噴霧することで、澱粉マトリックス中のアルギン酸塩の数種類の飼料をゲル化した。同物質はゲル粒子を形成し、ふるい分けによって溶液から回収された。飼料を３０ガロンの水槽中に注入し、「モイノ」（Ｍｏｙｎｏ）のプログレッシブ・キャビティ・ポンプを用いて、第２の３０ガロンの水槽中に噴霧するシュリック（Ｓｈｌｉｃｋ）の２つの流体ノズル中に噴入した。第２の水槽は、塩化カルシウム水溶液で満たした。稼動ごとで最後には、溶液をふるいを通して排出し、産物を回収した。塩化カルシウムの負荷は、３〜５％であった。ノズルのサイズと噴霧条件をニロ（Ｎｉｒｏ）によって選択し、好適な噴霧が得られた。スループットを最大にしたり、噴霧条件を粒子サイズと相関させるのに試行錯誤はなかった。その目的は、実地試験のために物質を生産することであった。

これらの実施において、多種の（０．５〜１．３）ノズル口を利用し、種々のサイズの粒子を用意した。シュリック（Ｓｈｌｉｃｋ）流体スプレーヤに取り付けるノズル口の大きさによってこのサイズの操作することができる。さらに、粒子のサイズを操作する方法として、噴霧化する空気率の操作を用いた（空気流を増加させると、粒子サイズが減少する）。（（ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）＜シュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐ．ｕｎｄｉｎａ））で利用される２つのプロビオントの添加の際に増加した）飼料の粘性により、気流速度を調節した。一般に、粘性が高めであると、同サイズのビーズを得るために大きめのノズル直径が必要である。図７に示すように、ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）、ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）、およびシュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐ．ｕｎｄｉｎａ）ビーズを含有するビーズや、いずれの細菌も含有しない飼料を作製し提供した。

２つの顕微鏡写真の比較に示される、アルカリ溶液中のゼラチン状の高アミロース澱粉粒にレシチンを添加する場合の効果。左パネルは、実施例１にさらに詳細に示される、複合過程の開始時におけるゼラチン状の粒を示し、右パネルは、溶解された粒とその結果生じるレシチンと澱粉高分子との錯体形成を示す。１日、７日、または４７日保存後におけるビード当たりのコロニー形成数として示される、ビードレット内にカプセル化されたラクトバチルス・ラムノサス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓｒｈａｍｎｏｓｕｓ）細菌の生存力。図２は、実施例２をより詳しく示している。若いハイブリッドシマスズキの１日当たりの成長速度に関して、微小結合された形態と微小結合されない形態とを比較したラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）の送達効果。成長速度を平均±Ｓ．Ｅ、ｎ＝９として示す。図３は、実施例３をより詳しく示している。毎日の体重の増加として示される、テラピア稚魚の成長速度に関するプロバイオティック投与範囲（０〜２％）の効果。「Ａ」を指定するバーは、「Ｂ」を指定するバーとは有意に異なる成長速度を示す（Ｐ＜０．０５、ｎ＝１５）。図４は、実施例１５をより詳しく示している。エビ生存率と食品変換率（ＦＣＲ）に関するプロバイオティック飼料の効果。ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）によるエビの給餌により、白斑ウイルスの負荷後、その生存率は有意に増加した。ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）とシュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐｓｅｕｄｏａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｕｎｄｉｎａ）との組み合わせによるエビの給餌により、白斑ウイルスの負荷後、その生存率はラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）単独による給餌よりも大幅に有意に増加した。エビの給餌がラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）によるものであってもシュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐｓｅｕｄｏａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｕｎｄｉｎａ）によるものであっても、食品変換率は減少した。ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）とシュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐｓｅｕｄｏａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｕｎｄｉｎａ）との組み合わせによるエビの給餌により、食品変換率はラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）単独もしくはシュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐｓｅｕｄｏａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｕｎｄｉｎａ）単独の場合の給餌よりも大幅に減少した。指定文字が異なるバーは、有意に異なる値を示す（Ｐ＜０．０５）。図５は、実施例１６をより詳しく示している。ＷＳＶウイルス負荷に関する白斑ウイルスによる経口負荷効果。ダール（Ｄｈａｒ）らの方法（２００２）による腹脚サンプルのＷＳＶ特異性ＰＣＲ分析によってウイルス負荷を測定した。低いデルタサイクル閾値（Ｃ_Ｔ）は、より高度のウイルス負荷を示す。シュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐｓｅｕｄｏａｌｔｅｒｏｍｏｎａｓｕｎｄｉｎａ）により、マイクロカプセル化されたプロビオントを消費するエビのウイルス負荷は有意に減少した。図６は、実施例１６をより詳しく示している。実施例１８をさらに示すのに作成されたアルギン酸塩／澱粉・ビーズの顕微鏡写真。

参考文献
Amidon G, Leesman G (1993) Pulsatile drug delivery system. In: US Patent 5,229,131. University of Michigan, USA.
BrownI, Conway P, Evans A, Henriksson K, McNaughtK, Wang X (2002) Alterationsof microbial populations in the gastrointestinal tract. In: US Patent &num;6,348, 452 B1. Univ of New South Wales, Bums Philip & Co. , CSIRO,Gist-Brocades Aust. , Goodman Fielder Ingredients Ltd. , USA.
DharAK, Roux MM, Klimpel KR (2002) Quantitative assay for measuring the Taurasyndrome virus and yellow head virus load in shrimp by real-time RT-PCR usingSYBR Green chemistry. J. Virol. Methods 104: 69-82.
Hayward J, Levine D, Simon S(1987) Microcapsules. In : PCT Publ W08701587.
Levine D, Sanford S, Hayward J (1987) Microcapsules. In:European Patent EP0237542.
Muhammad N, Boisvert W, Harris M, Weiss J (1993) Sustained releaseformulations. In: US Patent 5,188, 836. Warner-Lambert Company, USA.
Sache E, Bertrand H (1980) Liposomes containing heparin and a process for obtainingthem. In: US Patent 4,239, 754. Choay, S. A. van Lengerich B (2001) Embeddingand encapsulation of controlled release particles. In: US Patent 6,190, 591.General Mills, USA.
Villamar DF, Langdon C (1993) Delivery of dietary components to larval shrimp (Penaeusvannamei) by means of complex microcapsules. Marine Biol. 115: 635-642.
Yuan C (2000) Starch emulsifier compositon and methods of making. In: US Patent6,017, 388. Opta Food Ingredients, Inc., USA.

Claims

微粒子を含む動物飼料組成物であって、前記微粒子はアルギン酸塩及び澱粉−乳化剤錯体を含み、前記アルギン酸塩が前記微粒子の湿重量で約０．５〜約１．５％を含み、前記乳化剤が約１：１０〜約１０：１の前記澱粉との比率を含み、前記澱粉錯体は部分的にまたは完全に不溶性である、動物飼料組成物。
前記アルギン酸塩が前記微粒子の約０．５〜約１．０重量％を含む、請求項１に記載の動物飼料組成物。
前記アルギン酸塩が前記微粒子の約１．０重量％を含む、請求項１に記載の粒子を含む動物飼料組成物。
前記澱粉は、加工澱粉及び澱粉誘導体、高アミロース、並びにこれらの組み合わせからなる群から選択され、溶解された澱粉粒が、前記澱粉がアルカリ溶液中で前記乳化剤と錯体を形成した際に形成される、請求項１に記載の微粒子を含む動物飼料組成物。
前記乳化剤と前記澱粉が約１：５〜約５：１の比率で存在する、請求項１に記載の微粒子を含む動物飼料組成物。
前記乳化剤と前記澱粉が約１：２〜約２：１の比率で存在する、請求項１に記載の微粒子を含む動物飼料組成物。
前記乳化剤と前記澱粉が約２：１の比率で存在する、請求項１に記載の動物飼料組成物。
前記動物飼料組成物が水生動物用である、請求項１に記載の微粒子を含む動物飼料組成物。
前記水生動物が軟体動物と、魚と、エビとから選択される、請求項８に記載の動物飼料組成物。
生物活性剤をさらに含む、請求項１に記載の動物飼料組成物。
前記生物活性剤が、微生物と、タンパク質と、ペプチドと、核酸と、ホルモンと、薬剤と、抗生物質と、酵素と、ミネラルと、ビタミンと、抗体と、免疫原と、マイクロ構造体と、ナノ構造体とから選択される、請求項１０に記載の動物飼料組成物。
前記動物飼料組成物が乾燥形態にある、請求項１に記載の動物飼料組成物。
前記動物飼料組成物が湿った形態にある、請求項１に記載の動物飼料組成物。
粒子を含む動物飼料組成物を生産するための方法であって、
（ａ）澱粉をアルカリ溶液に溶解すること、
（ｂ）乳化剤を前記澱粉及びアルカリ溶液に十分な時間添加して澱粉−乳化剤錯体を形成すること、ここで、前記澱粉−乳化剤錯体は部分的または完全に不溶性である、
（ｃ）形成された前記澱粉−乳化剤錯体を含む前記溶液を中和すること、
（ｄ）アルギン酸塩を前記澱粉−乳化剤錯体を含む前記溶液に添加すること、
（ｅ）生物活性剤を添加すること、
（ｆ）（ａ）〜（ｅ）から得られた懸濁液を噴霧すること、ここで、前記噴霧により約１０μｍ〜約１０，０００μｍのサイズの粒子が産生され、前記生物活性剤は、放出制御形式で微小結合し、生存し、生物利用性である、
を含む、方法。
前記生物活性剤が、微生物と、タンパク質と、ペプチドと、核酸と、ホルモンと、薬剤と、抗生物質と、酵素と、ミネラルと、ビタミンと、薬剤と、抗体と、免疫原と、マイクロ構造体と、ナノ構造体とから選択される、請求項１４に記載の方法。
前記粒子が乾燥形態で使用される、請求項１４に記載の方法。
前記粒子が湿った形態で使用される、請求項１４に記載の方法。
前記粒子が水生動物用に使用される、請求項１４に記載の方法。
前記水生動物が、クルマムシと、アルテミアと、軟体動物と、魚と、エビとから選択される、請求項１８に記載の方法。
前記微生物が、バチルス・リケニフォルミス（Ｂａｃｉｌｌｕｓｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ）と、バチルス・スブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓｓｕｂｔｉｌｉｓ）と、ラクトバチルス・ブルガリカス（Ｌ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ）と、ラクトバチルス・ヘルベティカス（Ｌ．ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ）と、ラクトバチルス・プランタラム（Ｌ．ｐｌａｎｔａｒｕｍ）と、ラクトバチルス・パラカゼイ（Ｌ．ｐａｒａｃａｓｅｉ）と、ラクトバチルス・カゼイ（Ｌ．ｃａｓｅｉ）と、ラクトバチルス・ラムノサス（Ｌ．ｒｈａｍｎｏｓｕｓ）と、ラクトコッカス・ラクティス（Ｌ．ｌａｃｔｉｓ）と、アルテロモナス・メディア（Ａ．ｍｅｄｉａ）と、カルノバクテリウム・ディベルゲンス（Ｃ．ｄｉｖｅｒｇｅｎｓ）と、ビブリオ・アルギノリティカス（Ｖ．ａｌｇｉｎｏｌｙｔｉｃｕｓ）と、シュードモナス・フルオレッセンス（Ｐ．ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ）と、ストレプトコッカス・ラクティス（Ｓ．ｌａｃｔｉｓ）と、ストレプトコッカス・サーモフィラス（Ｓ．ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）と、シュードアルテロモナス・ウンディナ（Ｐ．ｕｎｄｉｎａ）と、サッカロミセス・セレビシエ（Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）と、サッカロミセス・イグジグース（Ｓ．ｅｘｉｇｕｕｓ）と、Ｐ．ｒｈｏｄｏｚｏｍａと、ピキア・パストリス（Ｐ．ｐａｓｔｏｒｉｓ)と、Ｋ．ａｅｓｔｕａｒｉｉと、クリュイベロミセス・マルシアヌス（Ｋ．ｍａｒｘｉａｎｕｓ）と、Ｋ．ｙａｒｒｏｗｉｉとから選択される、請求項１５に記載の方法。
前記生物活性剤が前記微粒子によって微小結合されている、請求項１に記載の動物飼料組成物組成物。
前記乳化剤が、溶媒及び長鎖飽和脂肪酸のモノグリセリド、ソルビタンエステル、プロピレングリコールエステル、レシチン、ポリソルベート、およびスクロースエステルからなる群から選択される、請求項１に記載の動物飼料組成物。
前記生物活性剤が前記粒子によって微小結合されている、請求項１４に記載の方法。
前記乳化剤が、溶媒及び長鎖飽和脂肪酸のモノグリセリド、ソルビタンエステル、プロピレングリコールエステル、レシチン、ポリソルベート、およびスクロースエステルからなる群から選択される、請求項１４に記載の方法。