JP4452799B2

JP4452799B2 - コアセルベートを活用したリポソームの製造方法

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Publication number: JP4452799B2
Application number: JP2004207860A
Authority: JP
Inventors: 知弘井村; 大北本; 宏柳下; 秀之根岸; 徹池上
Original assignee: National Institute of Advanced Industrial Science and Technology AIST
Current assignee: National Institute of Advanced Industrial Science and Technology AIST
Priority date: 2004-07-14
Filing date: 2004-07-14
Publication date: 2010-04-21
Anticipated expiration: 2024-07-14
Also published as: JP2006028069A

Description

本発明は、リポソームの製造方法に関し、特に、糖脂質系バイオサーファクタント化合物や生理活性成分を含むコアセルベートから、熱力学的に安定かつ高濃度に生理活性成分を含有したリポソームを製造する方法、該製造方法により製造されたリポソーム、およびこれらを配合した医薬品等に関する。

リポソームは脂質二分子膜を構成単位とする閉鎖小胞体であり、生体膜との親和性が高いことから、内部の水相や二分子膜内部に種々の薬剤等の生物活性物質を含有させ、それらの安定性の改善、活性の持続性の改善、及び標的組織への到達性の増大を図る試みが行われている。また最近では、上記のような生物活性物質をコードする遺伝子をリポソームと混合して複合体を作り、またはリポソームに封入保持し、これを患者に投与することにより標的組織の細胞内に遺伝子を注入し、生物活性物質をその場で生産させる遺伝子治療が研究されている。特に、がんの治療では、がんを抑制する遺伝子（アンチセンスＤＮＡなど）を体内注入する手法が、化学療法に代わる新しい治療法として注目されている。リポソームへ薬剤、生理活性物質、遺伝子を簡便に高効率で含有させるためには、超臨界炭酸ガスを使用するリポソーム製造法（例えば、特許文献１参照）などが報告されているが、多大なエネルギーやコストを消費するため実用化には適していない。

また、一般にリポソームは水溶液の状態では熱力学的に不安定であり、リポソーム粒子同士の凝集や融合、膜成分の結晶化による沈澱の生成、粒子径の増大などがおこり、効力及び外観変化による商品価値の損失となりやすかった。リポソームの水性懸濁液の安定化については検討例が少ないが、その方法として多価アルコール及びまたは糖類を配合して安定化させる方法が報告されている（例えば、特許文献２参照）。また、アミノ酸を用いてリポソームを安定化する方法も報告されている（例えば、特許文献３参照）。
しかしながら、上記方法で解決したのは室温以下の保存温度での安定性のみであり、室温においても水溶液状態で長期間安定なリポソームを提供するものではない。さらに、リポソームを用いる生体組織、細胞への物質導入には必要不可欠なリポソームへの薬剤、生理活性物質、遺伝子等を簡便に高効率で含有させる方法についても解決すべき問題が多く、実用化されていない。

特開２００３−１１９１２０号公報特開昭６４−３１１４号公報特開昭６２−４２７３３号公報

従って、本発明の目的は、薬物、生理活性物質、遺伝子などの物質を効率良く封入でき、標的細胞へ高い効率で導入でき、さらには、水溶液状態で長時間安定なリポソームの製造方法、該製造方法により製造されるリポソーム、およびそれよりなる物質導入担体を提供することにある。

上記したような従来技術の欠点を克服し、リポソームに薬物、生理活性物質、遺伝子などの物質を効率良く封入でき、かつ室温において水溶液状態で長期間安定なリポソームの製造方法および該リポソームについて鋭意研究を行った結果、糖脂質を用いて形成したコアセルベートから、リポソームを形成せしめることによって、薬物、生理活性物質、遺伝子などの物質を効率良く封入でき、かつ水溶液状態で長時間安定なリポソームの製造方法および該リポソームを見出し、本発明を完成させたものである。

本発明の課題は以下の手段によって達成される。
（１）糖脂質を用いて形成したコアセルベートより調製することを特徴とするリポソームの製造方法。
（２）前記糖脂質が下記一般式１で表されるマンノシドリピド系化合物であることを特徴とする、上記（１）記載のリポソームの製造方法。

上記一般式１中、Ｒ^１１、Ｒ^１２、Ｒ^１３、Ｒ^１４、Ｒ^１５、Ｒ^１６、Ｒ^１７およびＲ^１８は、それぞれ水素原子、ＣＨ_２（ＯＨ）−〔ＣＨ（ＯＨ）〕_ｍ１−ＣＨ_２−基、飽和もしくは不飽和で直鎖もしくは分岐鎖の脂肪族炭化水素基、または脂肪族アシル基を示す。ｍ１は０〜８の整数を示す。またｎ１は０〜１０の整数を示す。（ただし、Ｒ^１１、Ｒ^１２、Ｒ^１３、Ｒ^１４、Ｒ^１５、Ｒ^１６、Ｒ^１７およびＲ^１８の全てが水素原子である場合を除く。）
（３）前記マンノシドリピド系化合物が、下記一般式２で表される化合物であることを特徴とする、上記（２）記載のリポソームの製造方法。

上記一般式２中、Ｒ^２１、Ｒ^２２、Ｒ^２３、Ｒ^２４およびＲ^２５は、それぞれ水素原子、ＣＨ_２（ＯＨ）−〔ＣＨ（ＯＨ）〕_ｍ２−ＣＨ_２−基、飽和もしくは不飽和で直鎖もしくは分岐鎖の脂肪族炭化水素基、または脂肪族アシル基を示す。また、ｍ２は０〜８の整数を示す。（ただし、Ｒ^２１、Ｒ^２２、Ｒ^２３、Ｒ^２４およびＲ^２５の全てが水素原子である場合を除く。）
（４）前記糖脂質が下記一般式３または４で表されるラムノースリピド系化合物であることを特徴とする、上記（１）記載のリポソームの製造方法。

上記一般式３中、Ｒ^３３およびＲ^３４は、それぞれ水素原子、飽和もしくは不飽和で直鎖もしくは分岐鎖の脂肪族炭化水素基、脂肪族アシル基、または下記一般式５で表される基を示す。また、ｍ３およびｎ３は、それぞれ１〜３０の整数である。

上記一般式４中、Ｒ^４１およびＲ^４２は、それぞれ水素原子、飽和もしくは不飽和で直鎖もしくは分岐鎖の脂肪族炭化水素基、脂肪族アシル基、または下記一般式５で表される基を示す。また、ｍ４は１〜３０の整数である。

上記一般式５中、ｎ５は１〜３０の整数である。
（５）前記糖脂質が下記一般式６または７で表されるソフォロースリピド系化合物であることを特徴とする、上記（１）記載のリポソームの製造方法。

上記一般式６中、Ｒ^６１およびＲ^６２は、それぞれ水素原子、飽和もしくは不飽和で直鎖もしくは分岐鎖の脂肪族炭化水素基、または脂肪族アシル基を示し、ｍ６は１〜３０の整数を示す。

上記一般式７中、Ｒ^７１およびＲ^７２は、それぞれ水素原子、飽和もしくは不飽和で直鎖もしくは分岐鎖の脂肪族炭化水素基、または脂肪族アシル基を示し、Ｒ^７３は水素原子、または飽和もしくは不飽和で直鎖もしくは分岐鎖の脂肪族炭化水素基を示し、ｍ７は１〜３０の整数を示す。
（６）前記糖脂質が下記一般式８で表されるトレハロースリピド系化合物であることを特徴とする、上記（１）記載のリポソームの製造方法。

上記一般式８中、Ｒ^８１およびＲ^８２は、水素原子、下記一般式９で表される基、または下記一般式１０で表される基を示す。ただし、Ｒ^８１及びＲ^８２がともに水素原子である場合を除く。

上記一般式９中、ｍ９≧１４、ｎ９≧１３、ｍ９＋ｎ９＝１〜５０である。また、一般式９で表される基には、２重結合、分岐、ケトン基、シクロプロパン環、メトキシル基が含まれることがある。

上記一般式１０中、ｍ１０≧１４、ｎ１０≧１３、ｍ１０＋ｎ１０＝１〜５０である。また、一般式１０で表される基には、２重結合、分岐、ケトン基、シクロプロパン環、メトキシル基が含まれることがある。
（７）前記糖脂質が下記一般式１１で表されるサクシノイルトレハロースリピド系化合物であることを特徴とする、上記（１）記載のリポソームの製造方法。

上記一般式１１中、Ｒ^１１１、Ｒ^１１２、Ｒ^１１３およびＲ^１１４は、それぞれ水素原子または脂肪族アシル基を示し、かつＲ^１１１、Ｒ^１１２、Ｒ^１１３およびＲ^１１４のうち少なくとも１つはサクシノイル基である。
（８）前記糖脂質が下記一般式１２で表されるセロビオースリピド系化合物であることを特徴とする、上記（１）記載のリポソームの製造方法。

上記一般式１２中、Ｒ^１２１は水素原子またはＯＨを示し、Ｒ^１２２、Ｒ^１２３およびＲ^１２４は、それぞれ水素原子、飽和もしくは不飽和で直鎖もしくは分岐鎖の脂肪族炭化水素基、脂肪族アシル基、または下記一般式１３で表される基を示し、ｍ１２は１〜３０の整数を示す。

上記一般式１３中、ｎ１３は１〜３０の整数を示す。
（９）前記糖脂質が下記一般式１４で表されるグルコシドリピド系化合物であることを特徴とする、上記（１）記載のリポソームの製造方法。

上記一般式１４中、Ｒ^１４１、Ｒ^１４２、Ｒ^１４３、Ｒ^１４４、Ｒ^１４５、Ｒ^１４６、Ｒ^１４７およびＲ^１４８は、それぞれ水素原子、ＣＨ_２（ＯＨ）−〔ＣＨ（ＯＨ）〕_ｍ１４−ＣＨ_２−基、飽和もしくは不飽和で直鎖もしくは分岐鎖の脂肪族炭化水素基、または脂肪族アシル基を示し、ｍ１４は０〜８の整数を示す。ｎ１４は０〜１０の整数を示す。（ただし、Ｒ^１４１、Ｒ^１４２、Ｒ^１４３、Ｒ^１４４、Ｒ^１４５、Ｒ^１４６、Ｒ^１４７およびＲ^１４８の全てが水素原子である場合を除く。）
（１０）前記糖脂質が下記一般式１５で表されるアルカノイル−Ｎ−メチルグルカミドリピド系化合物であることを特徴とする、上記（１）記載のリポソームの製造方法。

上記一般式１５中、Ｒ^１５１は飽和または不飽和で直鎖または分岐鎖の脂肪族炭化水素基を示す。
（１１）前記糖脂質が、糖脂質系バイオサーファクタント化合物であることを特徴とする、上記（１）〜（１０）のいずれかに記載のリポソームの製造方法。
（１２）形成したコアセルベートを構成する糖脂質の化学構造を変化させて調製することを特徴とする、上記（１）〜（１１）のいずれかに記載のリポソームの製造方法。
（１３）形成したコアセルベートに、リン脂質、もしくは該コアセルベートを形成する糖脂質以外の糖脂質を混合することによって、調製することを特徴とする、上記（１）〜（１１）のいずれかに記載のリポソームの製造方法。
（１４）形成したコアセルベートに、電気的刺激を与えることにより、または、圧力もしくは温度を変化せしめることによって、調製することを特徴とする、上記（１）〜（１１）のいずれかに記載のリポソームの製造方法。
（１５）上記（１）〜（１４）のいずれかに記載のリポソームの製造方法で得られたことを特徴とするリポソーム。
（１６）熱力学的に安定であることを特徴とする、上記（１５）に記載のリポソーム。
（１７）上記（１５）または（１６）に記載のリポソームからなる、生体または細胞に物質を導入するための担体。
（１８）生体または細胞に導入される物質が、薬剤、生理活性物質または遺伝子であることを特徴とする、上記（１７）記載の担体、
（１９）上記（１５）または（１６）に記載のリポソームを含有し、薬剤、生理活性物質もしくは遺伝子を該リポソームに導入、または担持せしめたことを特徴とする医薬品。

糖脂質が形成するコアセルベートから、リポソームを形成せしめることによって、リポソームに薬物、生理活性物質、遺伝子などの物質を効率良く封入でき、かつ室温において水溶液状態で長期間安定なリポソームの製造方法およびリポソームを得た。本発明のリポソーム製造方法および該製造方法により得られたリポソームは、生理活性物質、遺伝子などの物質を効率良く封入でき、かつ水溶液状態で長時間安定なリポソームを提供するため、従来問題となっていたリポソームの常温での長期安定性や物質内包効率の低さを解決するものであり、標的細胞へ高い効率で導入できるような物質導入担体を提供できることとなる。

本発明に用いられる糖脂質について説明する。
本発明において、糖脂質として、糖脂質系バイオサーファクタントを用いることができる。
バイオサーファクタントとは、生物由来の両親媒性物質であり、界面活性作用を有するものである。例えば、微生物が産生するバイオサーファクタントとしては、糖脂質系のもの、コリノミコール酸（Ｃｏｒｙｎｏｍｙｃｏｌｉｃａｃｉｄ）等の脂肪酸系のもの、エマルサン（Ｅｍｕｌｓａｎ）、リポサン（Ｌｉｐｏｓａｎ）等のバイオポリマー系のもの、サーファクチン、ビィスコシン等のリポペプタイド系のもの等、種々のものが知られており、これらは通常の界面活性剤に比べ、１）複数の官能基や光学活性を有する点、２）嵩高い構造や複雑な構造を有する点、３）生理活性（抗微生物、抗腫瘍作用など）を有する点、および４）生分解性や安全性が高い点を有することを特徴とする。本発明は、上記バイオサーファクタントのうち、特に糖脂質系のものを用いる点に特徴を有するものである。
本発明において使用する糖脂質としては、例えば、トレハロースリピド系化合物、サクシノイルトレハロースリピド系化合物、ソフォロースリピド系化合物、セロビオースリピド系化合物、マルトースリピド系化合物、ポリオールリピド系化合物、グルコースリピド系化合物、フルクトースリピド系化合物、グルコシドリピド系化合物、マンノシドリピド系化合物、ラムノースリピド系化合物、シュークロースリピド系化合物、アルカノイル−Ｎ−グルカミドリピド系化合物等の各種化合物を挙げることができる。また、本発明において、これらの誘導体も糖脂質として使用することができる。

本発明において好ましく用いられる糖脂質としては、上記（２）〜（１０）記載の一般式で表された化合物であり、これらで示された一般式の定義中、飽和または不飽和で直鎖または分岐鎖の脂肪族炭化水素基のうち、好ましいものは炭素数１〜３６の直鎖または分岐鎖を有するアルキルまたはアルケニル基であり、脂肪族アシル基としては炭素数２〜３７のものが好ましい。

さらに、本発明において特に好ましい糖脂質を以下に例示する。これら化合物を使用する場合、１種のものを単独で用いてもよいし、２種以上のものを混合物の形態で用いることもできる。

まず、本発明に用いられるマンノシドリピド系化合物について説明する。
マンノシドリピド系化合物としては、一般式２で表される化合物が好ましく、一般式２で表される化合物のうち、Ｒ^２５がＣＨ_２（ＯＨ）−〔ＣＨ（ＯＨ）〕_ｍ２−ＣＨ_２−基（ただしｍ２＝１〜８、好ましくは２〜６の整数を示す。）であり、Ｒ^２１〜Ｒ^２４が同一もしくは異なっていても良い、炭素数１〜１５のアルカノイル基である化合物がより好ましく、一般式１６で表されるマンノシルエリスリトール系化合物（以下、ＭＥＬ−Ａとも略す）がさらに好ましい。

（一般式１６中、Ｒ^１６１およびＲ^１６２はそれぞれアセチル基（以下、Ａｃとも略す。）を表し、ｎ１６は４〜１４の整数を表す。）

また、マンノシドリピド系化合物としては、アルキルマンノシド系の化合物（一般式１において、Ｒ^１８がアルキル基のもの。）も好ましく、その中では一般式１７で表される化合物（ＭＬ−１）が特に好ましい。

（一般式１７中、Ｒ^１７８はドデシル基を表し、Ｒ^１７１、Ｒ^１７２、Ｒ^１７３およびＲ^１７４はそれぞれ水素原子を表す。）

次に、本発明に用いられるラムノースリピド系化合物について説明する。
ラムノースリピド系化合物の好ましい具体例（ＲＬ−１、ＲＬ−２、ＲＬ−３、ＲＬ−４、ＲＬ−Ａ、ＲＬ−Ｂ）を以下に示すが、本発明はこれに限定されるものではない。

次に、本発明に用いられるソフォロースリピド系化合物について説明する。
ソフォロースリピド系化合物の好ましい具体例（ＳＬ−１、ＳＬ−２、ＳＬ−３、ＳＬ−５、ＳＬ−６）を以下に示すが、本発明はこれに限定されるものではない。

次に、本発明に用いられるトレハロースリピド系化合物について説明する。
トレハロースリピド系化合物の好ましい具体例（ＴＬ−１、ＴＬ−２）を以下に示すが、本発明はこれに限定されるものではない。

次に、本発明に用いられるサクシノイルトレハロースリピド系化合物について説明する。
サクシノイルトレハロースリピド系化合物の好ましい具体例（ＳＴＬ−１、ＳＴＬ−２、ＳＴＬ−３）を以下に示すが、本発明はこれに限定されるものではない。

次に、本発明に用いられるセロビオースリピド系化合物について説明する。
セロビオースリピド系化合物の好ましい具体例（ＣＬ−Ａ、ＣＬ−Ｂ、ＣＬ−Ｃ）を以下に示すが、本発明はこれに限定されるものではない。

次に、本発明に用いられるグルコシドリピド系化合物について説明する。
グルコシドリピド系化合物として、アルキルグルコシド系の化合物（一般式１４において、Ｒ^１４８がアルキル基のもの。）が好ましい。グルコシドリピド系化合物の好ましい具体例（ＧＬ−１）を以下に示すが、本発明はこれに限定されるものではない。

（上記式中、Ｒ^２３８はドデシル基を表し、Ｒ^２３１、Ｒ^２３２、Ｒ^２３３およびＲ^２３４はそれぞれ水素原子を表す。）

次に、本発明に用いられるアルカノイル−Ｎ−メチルグルカミドリピド系化合物について説明する。
アルカノイル−Ｎ−メチルグルカミドリピド系化合物としては、上記一般式１５において、Ｒ^１５１が炭素数１２の飽和または不飽和で、直鎖または分岐鎖の脂肪族炭化水素基である場合が好ましい。

次に、本発明のリポソームの製造方法について説明する。
本発明においては、糖脂質を水中に懸濁してコアセルベートを形成させた後、糖脂質の化学構造を変化させることにより、リポソームを調製する。

次に、コアセルベートについて説明する。
２種類の高分子水溶液を混合したり、高分子や界面活性剤に塩やアルコールを添加することにより、コロイドに富む液相（濃厚水溶液）と、コロイドに乏しい液相（希薄水溶液）の２液に相分離する（コアセルベーション）。この２相に分離した水溶液のうち、コロイドに富む相をコアセルベートという。
本発明では、糖脂質を用い水中で形成したコアセルベートを経て、リポソームを形成する。コアセルベートは水中に存在する薬剤、タンパク質、酵素、医薬品等の溶質をその内部に多量に保持できる性質がある。従って、有機溶媒を用いて製造するような、従来法により得られるリポソームと比べて、コアセルベートより形成される本発明のリポソームは、より多量に且つ簡便に前記のような溶質を内包できる。
本発明において、コアセルベートの形成法として、例えば、糖脂質等の両性界面活性剤を水中に添加し、攪拌するだけでコアセルベートを形成する方法が挙げられるが、本発明においてはこれに限定されることはない。
コアセルベートを形成するための糖脂質の濃度は特に制限されないが、好ましくは１乃至５０ｍＭである。

上記方法により調製したコアセルベートを含む水溶液に、アセチルエステラーゼなどの酵素を添加し脱アセチル化反応等を引き起こすことにより、もしくは、アルカリ性水溶液を添加し加水分解反応を引き起こすこと等により、糖脂質の化学構造を変化させ、リポソームを調製することができる。
ここで、糖脂質の化学構造の変化とは、糖脂質の１位〜６位の炭素原子に結合する水酸基とのエステル化反応により付加された基（例えば、前記一般式１における、Ｒ^１１〜Ｒ^１８等が挙げられる）に対し、生化学的反応または化学的反応により、加水分解による脱離反応や、別の新たな基を付加する付加反応を行うことによりコアセルベートの形態を変化させて、結果リポソームを形成するような、糖脂質の構造変化をいう。

また、リポソームを調製する別の態様としては、上記方法により、コアセルベートを形成させた後、該コアセルベートを構成する糖脂質とは別の糖脂質、またはリン脂質等の公知の油脂を混合することで、リポソームを得ることができる。
リン脂質またはコアセルベートを構成する糖脂質とは別の糖脂質の添加量としては、コアセルベートを構成する糖脂質に対して、好ましくは１０乃至８０ｍｏｌ％、さらに好ましくは３０ｍｏｌ％である。
本発明に用いられるリン脂質としては、フォスファチジルコリン、ホスファチジルセリン等の公知の中性リン脂質が挙げられ、具体的には、卵ホスファチジルコリン、ジパルミトイルホスファチジルコリンおよびジステアロイルホスファチジルコリン等が挙げられる。
本発明に用いられる、コアセルベートを構成する糖脂質とは別の糖脂質としては、前記糖脂質系バイオサーファクタント等が挙げられる。

また、リポソームを調製するさらに別の態様としては、上記方法により、コアセルベートを形成させた後、電気的刺激を与えたり、圧力、温度等を変化させることによりリポソームを調製することができる。具体的には、（１）コアセルベートを含む水溶液に、１０乃至２００Ｖのパルス電圧を加えることにより、（２）コアセルベートを含む水溶液の圧力を１ｂａｒから１０ｂａｒ以上に加圧することにより、もしくは、（３）コアセルベートを含む水溶液の温度を常温（２５℃）から５０℃以上に加温することにより、リポソームを調製することができる。

一般に、糖脂質、りん脂質、界面活性剤等は、水などの媒体中で自ら集合（自己組織化）し、リポソーム、コアセルベート、若しくは、キュービック液晶等、様々な分子集合体を形成する。このうち、リポソームは、その内部に巨大な内水相を有している。
これに対し、ＭＥＬ−Ａ等の糖脂質は、水中に懸濁すると、リポソームに見られるような内水相は持たず、集合体の内部にも脂質が詰まっている油滴のようなコアセルベートとなる場合がある。このコアセルベートに対して、上記方法を実施することで、コアセルベートからリポソームへと形態が変化する。

上記方法により形成されたリポソームは、常温に３ヶ月以上放置しておいても、安定に分散することができる。すなわち、本発明のリポソームは、熱力学的に安定である。ここで、熱力学的に安定であるとは、リポソームの構造、及び分散状態が安定であることをいう。
本発明で調製されるリポソームは一枚膜でも多重膜のものでも良い。
また、従来の方法により製造されるリポソームは、通常、サイジング処理等を行わなければ、その粒子は数μｍ以上となる。しかし、本発明によれば、このような処理を行うことなく、１００〜１，０００ｎｍ程度の粒子径を持つリポソームを得ることができる。

また、本発明のコアセルベートを形成する原料脂質としては、糖脂質、好ましくは、糖脂質系バイオサーファクタント化合物の１種又は２種類以上を膜成分の全部又は一部として使用するが、所望により、非イオン性界面活性剤を用いることもできる。非イオン性界面活性剤としては、例えば、アルキル又はアルケニルポリオキシアルキレンエーテル、ポリオキシアルキレンアルキル又はアルケニルフェニルエーテル型、脂肪酸ポリオキシアルキレンエステル、アルキロールアマイド型、脂肪酸ポリオキシアルキレンソルビタンエステル、脂肪酸ポリオキシアルキレンソルビトールエステル、ポリオキシアルキレンひまし油、アルキル又はアルケニルポリオキシアルキレンアミン、アルキル又はアルケニルポリオキシアルキレンアミド、又は脂肪酸ソルビタンエステル、脂肪酸ソルビトールエステル、脂肪酸ポリグリセリンエステル、脂肪酸ショ糖エステル等の多価アルコール型及びアルキロールアミド型、ポリエーテル変性シリコーン型界面活性剤、ポリオキシアルキレングリコール型、アルキレングリコール脂肪酸エステル型、ポリアルキレングリコール脂肪酸エステル型、ポリオキシアルキレンソルビット脂肪酸エステル型、ポリオキシアルキレンソルビトール脂肪酸エステル型、グリセリン脂肪酸エステル型又はモノグリセリド有機酸エステル、ポリグリセリンエステル等の誘導体、ポリオキシアルキレングリセリン脂肪酸エステル型、ショ糖脂肪酸エステル型又はその誘導体、ポリオキシアルキレンショ糖脂肪酸エステル型、アミノ酸型、およびこれら２種類以上の混合物を挙げることができる。

また、コアセルベートに所望の薬剤、生理活性物質または遺伝子等の物質を添加すれば、これらの物質をリポソームの内水相（水性内部）に所望の濃度で封入したリポソームを容易に得ることができる。そして本発明のリポソームは、分散安定性に優れ、かつ薬剤、生理活性物質または遺伝子等の物質の封入効率が高いため、有効な治療等に用いることができる。

また、本発明のリポソームは、その表面に遺伝子等の物質を結合させて複合体を形成することにより、遺伝子等の物質を担持させることができる。
本発明により得られるリポソームに遺伝子を担持させようとする場合においては、目的とする遺伝子を含む発現ベクターを構築し、上記コアセルベートに該発現ベクター添加、混合し、上記方法によりリポソームを調製せしめれば、該発現ベクターを担持したリポソームを容易に得ることができる。
なお、本発明のリポソームに遺伝子を担持させる場合、該リポソームの構成物質の一部として、陽イオン性脂質が含まれていることが好ましい。陽イオン性脂質としては、コレスレリル−３β−カルボキシアミドエチレン−Ｎ−ヒドロキシエチルアミンやコレスレリル−３β−カルボキシアミドエチレン−Ｎ，Ｎ−ジメチルアミン等が挙げられ、これらの化合物の合成法は、Ｒ．Ｏｋａｙａｍａら、「ＦＥＢＳＬｅｔｔｅｒｓ」（４０８、２３２−２３４、１９９７）等に記載されている。

上記方法により調製した、薬剤、生理活性物質または遺伝子等の物質をリポソームの水性内部に導入したリポソーム、もしくは、リポソームの表面に担持したリポソームを、水又は生理食塩水等に懸濁して、例えば培養細胞に投与したり、生体内に静脈内注射することができるので、本発明のリポソームは遺伝子治療等において極めて有用なものである。
また、薬剤等を導入、担持させたリポソームを、化粧品に含有させることもできる。

本発明のリポソームに導入、または、担持される遺伝子としては、特にその種類により限定されるものではないが、生理活性物質等をコードする遺伝子、例えばα−、β−又はγ−インターフェロン遺伝子、Ｇ−ＣＳＦ遺伝子、肝炎ウイルスのアンチセンスをコードする遺伝子等が挙げられる。
本発明のリポソームに導入し得る薬剤および生理活性物質としては、特にその種類により限定されるものではないが、リン酸Ｌ−アスコルビルマグネシウム、アスコルビン酸グリコシド、グリチルリチン酸ジカリウム、エスチン、エスクリン、インドメタシン、アスコルビン酸、またはこれらの塩など等が挙げられる。

また、本発明のリポソーム、特に、糖脂質系バイオサーファクタント化合物からなるリポソームは、構成成分が天然物の由来のものであるため、生体に投与した場合に、従来のリポソームに比較して毒性が低いという利点がある。

以下、本発明の実施例を示すが、本発明は特にこれらにより限定されるものではない

（参考例）
一般式１６で示すｎ１６＝１０のものを主成分とするＭＥＬ−Ａを１〜５０ｍＭとなるように試験管中に測りとり、蒸留水２ｍＬを加えて１分間ボルテックス処理したところ、コロイド状の水溶液が得られた。ＭＥＬ−Ａの濃度が２ｍＭのときの水溶液をＮｉｋｏｎ社製の微分干渉光学顕微鏡であるＥ６００（商品名）を用いて観察した結果を図１に示す。この図から明らかなように、水溶液中にＭＥＬ−Ａが形成する粒子径２μｍ〜２０μｍのコアセルベートが多数観察された（図１中、球状部に相当する）。さらに、ＭＥＬ−Ａの濃度の増加に伴い、コアセルベートの粒子径は増大し、ＭＥＬ−Ａの濃度が５０ｍＭのときでは、コアセルベートの粒子径は１００μｍ程度となった。

（実施例１）
参考例で得られた、前記ＭＥＬ−Ａが形成するコアセルベートに、シグマ社製の酵素であるアセチルエステラーゼ１ｎＭを作用させることによって、ＭＥＬ−Ａの糖鎖部分を脱アセチル化した。この際のコアセルベートの形態変化をカールツアイス社製の共焦点レーザー操作顕微鏡を用いて観察した。その結果について、脱アセチル化処理前の共焦点レーザー操作顕微鏡写真を図２−１（ａ）に、脱アセチル化処理後の共焦点レーザー操作顕微鏡写真を図２−２（ａ）に示す。また、図２−１（ｂ）および図２−２（ｂ）は、図２−１（ａ）および図２−２（ａ）中の矢印に沿って測定した蛍光強度を示すグラフを表し、図２−１（ｂ）および図２−２（ｂ）中、横軸は図２−１（ａ）および図２−２（ａ）中の矢印の距離を示し、縦軸は、蛍光強度を示す。これらの図から明らかなように、糖鎖部分を脱アセチル化処理することによって、コアセルベートから、内部に内水相を持つリポソームを調製できた。

（実施例２）
ＭＥＬ−Ａの代わりに、ラムノースリピド系化合物としてＲＬ−４、ソフォロースリピド系化合物としてＳＬ−５、トレハロースリピド系化合物としてＴＬ−１（ｍ２０＝１４、ｎ２０＝１６のもの）、セロビオースリピド系化合物としてＣＬ−Ｃ（Ｒ^２２１がＯＨで、Ｘ＝４のもの）、グルコシドリピド系化合物としてドデシル−β−Ｄ−グルコシド（ＧＬ−１）、マンノシド系リピド化合物としてドデシル−β−Ｄ−マンノシド（ＭＬ−１）、または、アルカノイル−Ｎ−メチルグルカミドリピド系化合物としてドデシル−Ｎ−メチルグルカミドを用いて、それぞれ参考例と同様の操作を行ったところ、参考例と同様、コアセルベートを調製できた。なお、これらの糖脂質は、北本大、“オレオサイエンス”、１（１）、１７−３１（２００１）記載の方法によって微生物培養液より調製した。また、実施例１と同様に、上記のコアセルベートを形成している糖脂質の脱アセチル化処理を行うことによって、コアセルベートからリポソームが形成された。

（実施例３）
蛍光物質であるカルセイン（商品名、株式会社同仁研究所社製）０．１ｍＭを含む緩衝液（１０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．３））中で、参考例と同様、ＭＥＬ−Ａを用いてコアセルベートを調製した。これに、ジパルミトイルフォスファチジルコリン（ＤＰＰＣ）の添加量が、ＭＥＬ−Ａに対して０ｍｏｌ％〜１００ｍｏｌ％となるよう、１０ｍｏｌ％刻みで、ＤＰＰＣを添加し、リポソームを形成した。
次に、この調製したリポソーム懸濁液４０μＬを、２．０ｍＬの１０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．３）緩衝液に添加し、蛍光強度を測定した（励起波長は４９０ｎｍ、蛍光波長は５２０ｎｍとした）。このときの蛍光強度をＦｔとする。使用した装置は、蛍光分光光度計ＦＰ−６５００（商品名、日本電子株式会社）である。
次に、１０ｍＭのＣｏＣｌ_２水溶液を２０μＬ添加し、リポソームに封入されなかったカルセインを消光させ、リポソーム内部に封入されたカルセインのみの蛍光強度を測定した。このときの蛍光強度をＦｉｎとする。
さらに２０％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００（商品名）溶液を２０μＬ添加することにより、リポソームを破壊し、すべてのカルセインをＣｏ^２＋と結合させ消光させる。このときの蛍光強度をＦｑとする。
リポソームの保持効率は、以下の式により計算される。

上記式中、ｒはリポソーム懸濁液及び試薬の添加に伴う反応液の体積変化を補正した値を示し、本実施例においてはｒ＝（２．０ｍＬ（Ｔｒｉｓ緩衝液）＋０．０４ｍＬ（カルセインを含むリポソーム懸濁液）＋０．０２ｍＬ（ＣｏＣｌ_２水溶液）＋０．０２ｍＬ（ＴｒｉｔｏｎＸ−１００溶液））／２．０ｍＬ＝１．０４である。ここで、保持効率とは、リポソームに保持させたい薬物、生理活性物質のリポソームへの封入効率を示している。その結果を図３に示す。
図３より明らかなように、保持効率を持たないコアセルベートから、１０ｍｏｌ％〜８０ｍｏｌ％、特に、３０ｍｏｌ％のＤＰＰＣの添加によって、保持効率の大きなリポソームへと形態変化することが確認できた。
なお、ＤＰＰＣ以外のリン脂質であるジステアロイルフォスファチジルコリン（ＤＳＰＣ）、ジミリストリルフォスファチジルコリン（ＤＭＰＣ）、ジラウロイルフォスファチジルコリン（ＤＬＰＣ）を用いても、同様の結果が得られた。

（実施例４）
実施例３で形成したリポソームのうち、ＭＥＬ−Ａに対して、ＤＰＰＣを３０ｍｏｌ％添加して調製したリポソームの粒子径を、大塚電子（株）製の光散乱光度計を用いて測定した。その結果を図４に示す。図４からわかるように、本発明のリポソームの粒子径は、約６００ｎｍと極めて小さいことが確認できた。

（実施例５）
実施例３で調製したリポソームを、常温（２５℃）で３ヶ月間静置した後の、リポソームの安定性を検討した。
その結果、実施例３において保持効率が高かった、ＤＰＰＣをＭＥＬ−Ａに対して１０ｍｏｌ％〜８０ｍｏｌ％添加した場合、その他の組成の水溶液に比べて均一な水溶液が得られた。また、この組成においては、得られたリポソームは常温で３ヶ月以上静置していても熱力学的に安定であることがわかった。

（実施例６）
参考例で形成したＭＥＬ−Ａのコアセルベートに、蛍光ラベルしたヒト抗体であるシグマ社製のＦＩＴＣ−ｈＩｇＧ（商品名）を２０ｍｇ／ｍｌ添加、攪拌して、カールツアイス社製の共焦点レーザー操作顕微鏡を用いて観察した。
その結果、コアセルベート内部からのみ、ＦＩＴＣ−ｈＩｇＧの蛍光が確認され、コアセルベート内部に前記人抗体を添加したヒト抗体の総量のうち８０乃至９０％を濃縮して内包させることが可能であった。
なお、ＦＩＴＣ−ｈＩｇＧの代わりに、Ｐｒｏｍｅｇａ社製のプラスミドＤＮＡｐＧＬ３（商品名）を用いた場合も、同様の結果が得られた。

参考例にて調製したコアセルベートの微分干渉光学顕微鏡写真を示す。図２−１（ａ）は、参考例にて調製したコアセルベートを脱アセチル処理する前の状態を示す、共焦点レーザー操作顕微鏡写真を表わし、図２−１（ｂ）は図２−１（ａ）中の矢印に沿って測定した蛍光強度を示すグラフである。図２−２（ａ）は、参考例にて調製したコアセルベートを脱アセチル処理した後の状態を示す、共焦点レーザー操作顕微鏡写真を表わし、図２−２（ｂ）は図２−２（ａ）中の矢印に沿って測定した蛍光強度を示すグラフである。実施例３において形成したリポソームの物質の保持効率を示すグラフ。実施例３で得られたリポソームの粒子径分布を示し、横軸はリポソームの粒子径を示し、縦軸は相対散乱光強度を示す。

Claims

下記一般式１６で表されるマンノシドリピドを用いてコアセルベートを形成した後、該マンノシルリピドの脱アセチル化を行うかあるいはリン脂質を混合することを特徴とする、リポソームの製造方法。
（一般式１６中、Ｒ^１６１およびＲ^１６２はそれぞれアセチル基を表し、ｎ１６は４〜１４の整数を表す。）
請求項１に記載のリポソームの製造方法で得られたリポソーム（ただし、コレステロール誘導体を構成成分として含むリポソームを除く。）であって、粒子径が１００〜１０００ｎｍであることを特徴とするリポソーム。
熱力学的に安定であることを特徴とする、請求項２に記載のリポソーム。
請求項２または３に記載のリポソームからなる、生体または細胞に物質を導入するための担体。
生体または細胞に導入される物質が、薬剤、生理活性物質または遺伝子であることを特徴とする、請求項４に記載の担体。