JP4335311B2 - プロテアーゼインヒビターの生物学的及び抗ウイルス活性を改善する方法 - Google Patents

Description

発明の背景
発明の分野
本発明は、プロテアーゼインヒビター（protease inhibitors）のような治療薬剤を細胞が取り込む（uptake）ことを改善し及びそれらの活性、殊に抗-ＨＩＶ活性を増強するための方法に関する。
背景の検討
エイズ（ＡＩＤＳ）として知られる病気は早くも１９７９年に最初に確認された。ＣＤＣ（Centers for Disease Control and Prevention）に報告された事例の数はその時から各年劇的に増加し、且つ１９８２年においてＣＤＣはエイズの新たな流行を宣言した。１９８７年１２月と１９８８年１１月の間、32,000を超えるエイズの新たな事例がＣＤＣによって報告された（ＨＩＶ／ＡＩＤＳサーベイランスレポート，1-16，1989年12月）。3,000を超える新規の事例が１９８４年だけで報告された。早くも１９９５年で、世界保健機構（ＷＨＯ）では、世界中で発生しているこの病気の事例が少なくとも４百万と見積もった。また凡そ１千万の人々が今日、ＨＩＶに感染していると見積もっている。
アメリカ合衆国において、エイズは約441,000の事例が今までＣＤＣにより報告されている。1995年1月現在、ＣＤＣは、合衆国単独でエイズにより250,000人が死亡していることを報告した。人間の生存の期間におけるエイズ伝染の代価は不安定（staggering）であり、且つ最悪の事態がさらに到来することは明らかである。
レトロウイルスはエイズの原因となる作因として定義される。最近、ヒト免疫不全ウイルスタイプ１（ＨＩＶ）がエイズのためのウイルス応答のための適した名称として現われている。ＨＩＶの抗体はエイズ感染者又は前エイズ症候群（pre-AIDS syndrome）として診断された患者の８０％以上に存在し、且つそれはまた危険群と同定された中から高率で見出されている。
エイズに伸展する危険性を診断することは困難であると見なされる。エイズはＨＩＶに感染した殆ど全ての個人において結局発現することが知られる。
患者はＴ細胞の免疫が損なわれ完全な免疫システム獲得を持つ以前の健全な成人の時にエイズを持つものと一般的に診断される。その損なわれた免疫性は１８ケ月から３年の期間を通じて現われる。この損なわれた免疫性の結果として、その患者は、日和見感染を受け易く、カポジ肉腫、及び免疫システムの機能低下に関連した別の疾患のような各種の癌腫になる。
病気を予防すること又はエイズの免疫不全性の有意な転換ができる現に有効である治療は無い。日和見感染を持つ全ての患者とカポジ肉腫を持った全ての患者のうちの概ね半数は、診断の二年以内に死亡している。エイズを持つ患者における免疫システムの復活の試みは今までのところ成功していない。
３′−アジド−３′−デオキシチミジン（ＡＺＴ）は、ＨＩＶ感染とエイズの治療において最も汎用されているが、それは可逆性の骨髄毒性のような重要な負の副作用を持ち、かつ患者によってＡＺＴに対してウイルス抵抗性が発現する。このように治療の他の方法は非常に切望されている。
ウイルスは伝統的に抗体治療に応答しない。それ故に、他の治療剤はウイルス感染を治療する時に使用される。昨今発見された治療の一つは、ウイルス複製サイクルを分裂させるプロテアーゼインヒビターを使用しあちこち循環させるものである。プロテアーゼインヒビター治療は、レトロウイルス（例えばＨＩＶ）、ヘパドナウイルス（例えばＣ型肝炎ウイルス（hepatitis C virus））、ヘルペスウイルス（例えば単純ヘルペスウイルス（herpes simplex virus）及びサイトメガロウイルス）及びミクソウイルス（例えばインフルエンザウイルス）、同様に寄生プロトゾア（例えばクリプトスポリジウム及びマラリア）、癌の化学療法とウイルス性病状の病気によるそれらの事例のような、ウイルス感染症を含む疾患の広い範囲の治療に使用し得る潜在能力を持っている。実施例のために、ＨＩＶ複製サイクルにおけるＨＩＶプロテアーゼの役割を以下に記す。
ＨＩＶプロテアーゼと複製サイクル
ＨＩＶはＤＮＡ中間体を通して複製する。それぞれのウイルス粒子はウイルスのヌクレオカプシド蛋白質（nucleocapsid protein）によって囲まれた二つの同一の一重鎖ＲＮＡ分子を含む。ウイルスの残るコアはカプシド（capsid）とマトリックス蛋白質とから構成されている。宿主細胞（host cells）内のウイルスの遺伝的材料の複製化及び構築のために要求される酵素もまた、そのカプシドの内部に含まれる。ウイルス粒子の外被覆はウイルス性外皮糖タンパク質（viral envelope glycoproteins）と宿主細胞に由来する膜とから構成される。
他のレトロウイルスと共に、ＨＩＶは、ｇａｇ，ｐｏｌ，及びｅｎｖ遺伝子のための同様の基本的な遺伝的構造を持つ。これらの遺伝子は、非スプライス伝達ＲＮＡと呼ばれる、ウイルスの遺伝的材料の一つの中間体形態から発現し、先駆体（precursor）ｇａｇ-ｐｏｌ融合ポリタンパク質の合成を生じる。そのポリタンパク質は次いで成熟したウイルスのタンパク質を生じるように、ＨＩＶプロテアーゼ酵素によって切断される。ｇａｇ先駆体は、ｐ１７（マトリックス）、ｐ２４（カプシド）、ｐ７（ヌクレオカプシド）及びｐ６に切断する。一方、ｐｏｌ先駆体は、個別のプロテアーゼ、逆転写酵素及びインテグラーゼ酵素にて処理される。かくしてＨＩＶプロテアーゼは、全ての伝染し得るウイルスにおけるウイルス粒子の成熟に通じる開裂発生の調整カスケードのために応答し得るものである。
ＨＩＶプロテアーゼはアスパラギン酸プロテアーゼファミリーの一員である。それは２つのサブユニットのホモ二量体として機能する哺乳動物のアスパラギン酸プロテアーゼとは異なる。対照してみると、哺乳動物のプロテアーゼは単量体ポリタンパク質である。しかしながらプロテアーゼの二つの型は、それらの全体的な構造と機能において類似する。1988年において、それは非感染性、未熟なウイルス粒子、ＨＩＶの複製サイクル内で必須の機能を提供し且つエイズのための特異的抗ウイルス薬の設計のため魅力ある標的となるプロテアーゼ作製の示唆の結果により、ＨＩＶプロテアーゼ遺伝子の変異又は欠失が観測された。他のアスパラギン酸プロテアーゼに関する研究から蓄積された知見の広大な内容、最も注目に値するヒトのレニンは、ＨＩＶプロテアーゼインヒビターの設計と発見とを容易にしている。コンピューター補助論理的薬物設計（computer-aided rational drug design）における最近の前進はＨＩＶの有効で且つ高度に特異的なインヒビターの発見のための製薬及び遺伝子工学において広く翻訳されている。プロテアーゼインヒビターは、それのインビトロにおける論理的解釈を提供でき、プロテアーゼインヒビターの構造が複合体であれば、エックス線分析によって決定される。
ＨＩＶ複製の後段階では、構成タンパク質と複製性酵素先駆体の成熟化の過程のためにウイルスのコード化されたアスパラギン酸プロテアーゼが要求される。プロテアーゼの阻害は、未熟化、非感染ウイルス粒子及びウイルス伝染性の停止の結果を生じる。
ＨＩＶプロテアーゼインヒビター
これまでに、ＨＩＶプロテアーゼ機能を阻害する数々の化合物が確認されている。以下の図表は臨床試験の様々な段階で広く知られたＨＩＶプロテアーゼインヒビターの種類を示し、且つＨＩＶ治療におけるこれら化合物を調査している会社である。

構造式は上記プロテアーゼインヒビターの選択のために以下に用意される。

これらの化合物は、それらがＨＩＶの複製サイクルの後段階でＨＩＶを攻撃することから抗レトロウイルスの一つの特に有望な新規のクラスを組み上げ、且つこれにより慢性的な感染細胞中の潜伏ウイルスに対して潜在的な攻撃をする。一般に許可された、ＡＺＴ，ｄｄＩ，ｄｄＣ、及びより最近のｄ４Ｔと対照すれば、逆転写酵素のインヒビターとして働き、ＨＩＶ複製の早い段階でウイルスの酵素に作用する。一方、これらの薬剤はＨＩＶ感染を妨げることができ且つ更なる感染が無いよう細胞を保護し、それらは慢性的な感染細胞のように既に完成した細胞に対し本質的に不活性である。感染が細胞中に一旦確立すると（例えばＨＩＶ遺伝的材料が宿主細胞ゲノム内に統合される）、逆転写酵素はもはやウイルス複製のために要求されない。しかしながら、プロテアーゼ酵素は感染をもたらすビリオン（virions）、成熟したウイルス粒子のために必須である。ＨＩＶプロテアーゼインヒビターの機能は、新規に作製されるウイルス粒子に非感染性を与えることである。それ故に、慢性的な感染細胞中で活性な薬剤、単独で又は他の抗-ＨＩＶ薬剤と組み合わせるかのいずれか一方で使用される、ＨＩＶ感染の治療において成功の機会を提供する薬剤が緊急に必要とされる。
一つのファクターは、プロテアーゼインヒビターのような薬剤のインビトロでのＥＣ₅₀（中間有効濃度）と、インビボでの生理的条件の下で要求される薬剤のタンパク質結合性の範囲及び効果の抗ウイルス性の濃度の間の相関関係に影響を与えることができる。幾つかのＨＩＶプロテアーゼインヒビターの抗ウイルス活性はヒトの血清又は血漿の高い濃度での存在を減少させる結果を示している（Bilello，アブストラクト #419 1st Intl. Conference on Human Retroviruses, Dec. 12-16 1993 Washington, D.C.; Bilello，アブストラクト I78, 34th Interscience Conference on Antimicrobial Agents and Chemotherapy Oct. 4-7,1994）。ＨＩＶプロテアーゼインヒビターの高い結合親和性は、それらの親油性に関係する（Kagayamaら，Antimicro. Agents and Chemother., 38:1107-1111, 1994）。ソマドシイら（Sommadossiら，アブストラクト”A Human Serum Glycoprotein Profoundly Affects Antiviral Activity of the Protease Inhibitor SC-52151 by Decreasing Its Cellular Uptake”The Second Nat’1 Conference on Human Retroviruses and Related Infections, Washington, DC, 1995年1月30日）及びビレロら（Bilello,ら，1993 supra）には、アルブミンではないが、ヒト血漿の両方の主要成分で、プロテアーゼインヒビターA77003とSC-52151及びそれらの類似物の抗ウイルス活性を著しく減じることができるヒトのアルファ−１−酸 糖タンパク質（ＡＡＧ）を最近示している。ＡＡＧは、0.5から1.5mg/mlの通常な生理学的レベルを持つ急性期タンパク質であり、感染、癌、炎症及び創傷によってホメオスタシスの傷害の後に増加させることができる。ＡＡＧの平均値は、健康人と比べ、エイズ及び癌の患者は50-100%高いことが報告されている（Oeiら，J. AIDS, 6:25-27, 1993）。
実験で抗ウイルス活性が確かめられた抗ＨＩＶ薬剤は、デキストラン硫酸、オリゴヌクレオチド及びペプチドミメチック基（peptidomimetic-based）プロテアーゼインヒビター、及びより小さい範囲について、ヌクレオシド類似物、（Kagayamaら（supra）; Hartmanら，AIDS Res. Hum. Retroviruses, 6:805-812, 1990）を含み、ヒト血清又はヒト血漿の成分の高い濃度によって顕著に作用する。特別の薬剤の候補の構造はインビトロでの血漿タンパク質結合親和性（Schmid in”The Plasma Proteins, Structure, Function and Genetic Control”Ed. by F.W. Putnam, Academic Press, Inc. New York, pp184-228, 1975）を予想して使用することができないが、アルブミン又はＡＡＧのような血漿又は血漿成分の生理学的に適切な濃度の存在する中で抗ウイルス能力を縮小することは、臨床学的に重大な意味を持たすことができる。
ＥＣ₅₀に作用しかつプロテアーゼインヒビターの抗ウイルス濃度の別のファクターは、プロテアーゼインヒビターに抵抗するウイルスの株の発展である。あらゆるプロテアーゼインヒビターと逆転写酵素インヒビターの安易な使用は、抵抗性ウイルス株を生じる可能性を持つ。これはＨＩＶ感染の治療に事例において特別なことであるが、その能力のためにＨＩＶは直ちに変異し且つ抵抗性は発展する。メローら（Mellrsら，International Antiviral News, 3（1）, pp 8-13,1995）はＲＴインヒビターと抵抗性変異体に発展しているＨＩＶに対するプロテアーゼインヒビターの多様性を最近報告している。（Condraら，Nature 374, pp. 569-571, 1995を参照）。
かくして、同一又は一様に高い抗ウイルス活性のレベルを保持する間に弱いプロテアーゼインヒビターを用いた治療が実行できるなら、感染薬はプロテアーゼインヒビターに対する抵抗体を減少すべき株の中の変異を処理する傾向となる。
結論において、ＡＡＧに対するプロテアーゼインヒビターの結合は、抗-ＨＩＶ活性の変更という結果を生じる薬剤の細胞取り込みを主に減退させることになる。それ故、プロテアーゼインヒビターの細胞への取り込みを続行することが、それらのインビボでの抗-ＨＩＶ活性のため、およびそのような細胞の合体のために危うければ、ＡＡＧの効果は封じねばならない。
発明の開示
従って本発明の目的の一つは、プロテアーゼインヒビターの細胞の取り込みと細胞内濃度を増加させるための方法の提供である。
本発明の更なる目的は、プロテアーゼ逆転写酵素インヒビター、抗融合／結合性剤（antifusion/binding agents）、抗インテグラーゼ剤及び抗ウイルスオリゴヌクレオチドから選択された１種またはそれ以上の付加的な治療薬の存在中、１種またはそれ以上のプロテアーゼインヒビターの細胞の取り込みと細胞内濃度を増加するための方法を提供することである。
本発明の更なる目的は、病原性ウイルス及びウイルス性、カビ性、抗レニン、寄生プロトゾア、癌及び抗菌性疾患を含む感染性疾患のためのプロテアーゼインヒビターの細胞の取り込みと細胞内濃度を増加するための方法を提供することである。
本発明の更なる目的は、ＨＩＶプロテアーゼインヒビターの抗ＨＩＶ活性の改善のための方法を提供することである。
本発明の更なる目的は、プロテアーゼインヒビターの存在中、ＡＡＧを競合的に結合させるための方法を提供することである。
本発明の更なる目的は、細胞への取り込みのためにプロテアーゼインヒビターの有効性を増加させることによって、プロテアーゼインヒビターを基礎とした治療において投与されるプロテアーゼインヒビターの量を減じる方法を提供することである。
本発明のこれら及び他の目的は、マクロライド（Macrolide）及びリンコサミド（Lincosamide）ファミリーのような、ＡＡＧプロテアーゼインヒビター結合定数より優れた結合定数を持つＡＡＧ結合性の幾つかの、有効なＡＡＧバインダーの発見によって満足されており、かくしてプロテアーゼインヒビターの細胞の取り込みが増加され、且つプロテアーゼインヒビター、殊にプロテアーゼインヒビターの抗ＨＩＶ活性のような治療薬の細胞の取り込みと抗ウイルス活性を改善するための方法においてこの発見を使用する。
好適な実施態様の詳細な説明
本発明は、プロテアーゼインヒビターの細胞への取り込みと細胞内濃度を改善するための方法に関し、その必要における主体として、プロテアーゼインヒビターに対するＡＡＧの親和性よりも強力なＡＡＧへの親和性を有するＡＡＧ-結合性化合物の有効量を、単独で或いは１種又はそれ以上の付加的な治療薬と組み合わせて投与することを備える。
この方法において、ＡＡＧ結合性化合物が実験的に働く全てではない。事実、本発明のＡＡＧ-結合性化合物は、プロテアーゼインヒビターの存在中でＡＡＧに競合的に結合するＡＡＧ結合性のために、十分に強い親和性を有する必要がある。
本発明において使用される好適なＡＡＧ-結合性化合物は、マクロライド系抗生物質およびリンコサミド系抗生物質を含む。より好ましいマクロライド系抗生物質は、エリスロマイシン（erythromycin）、トロレアンドマイシン（troleandomycin）、クラリスロマイシン（clarithromycin）及びロキシスロマイシン（roxithromycin）を含む。最も好ましいマクロライド系抗生物質はクラリスロマイシンとロキシスロマイシンである。最も好適なロンコサミド抗生物質はリンコマイシン（lincomycin）である。
本発明の好適な方法において、ＡＡＧ結合性化合物は、投薬組成物のための通常の方法の何れかにおいて投与することができる。そのような方法は、静脈内に腹膜腔内に、及び経口内への投与を含むが、それに限定されない。その組成物は、注射用溶液、経口摂取溶液、タブレット、カプセル、トローチ剤、粉末、などの形態において投与することができる。本発明の方法において、ＡＡＧ結合性化合物は、単独で或いは２種またはそれ以上のＡＡＧ結合性化合物の混合物として投与することができる。加えて、ＡＡＧ結合性化合物は、プロテアーゼインヒビターの投与の直前に、プロテアーゼインヒビターの投与と同時に、或いはプロテアーゼインヒビターの投与の後に、投与することができ、好ましくはプロテアーゼインヒビターの投与の直前又は同時である。
プロテアーゼインヒビター療法において使用される何れかのプロテアーゼインヒビターが本発明の方法において使用可能である。プロテアーゼインヒビターは、単独で或いは２種又はそれ以上の混合物として投与して良い。好適なプロテアーゼインヒビターは、前述の表中に記したものを含み、ＳＣ−５２１５１が最も好ましい。
１種又はそれ以上のプロテアーゼインヒビターと１種又はそれ以上のＡＡＧ結合性化合物が同時に投与されるならば、それらは直接の投与に先立って混入して良く、或いはＡＡＧ結合性化合物の投与のための上述した形態の何れかで投与することができる。
本発明の更なる実施態様において、本発明による１種又はそれ以上のＡＡＧ結合性化合物は、プロテアーゼ逆転写酵素インヒビター、抗融合／結合性剤、抗インテグラーゼ剤及び抗ウイルス性オリゴヌクレオチドから選択される１種又はそれ以上の補足的な治療薬と併合した１種又はそれ以上のプロテアーゼインヒビターの投与と共に投与されて良い。
本発明によるＡＡＧ結合性化合物は、非-プロテアーゼインヒビターを基礎とした治療におけるそれの正常の投薬範囲の０．１倍から、それの最大許容投薬量（その化合物の毒性に基づく）までの投薬範囲において使用される。好ましくは、本発明によるＡＡＧ結合性化合物は、非-プロテアーゼインヒビターを基礎とした治療におけるそれの正常の投薬範囲の１から１０倍の投薬範囲において使用される。例えば、ロキシスロマイシンは、１５０ｍｇで一日２回の量において細菌感染の治療に通常使用される。しかしながら、本発明の方法において、ロキシスロマイシンは１日２回、１５ｍｇから３０００ｍｇの量で投与される。
プロテアーゼインヒビター治療の間にＡＡＧ結合性化合物を使用することによって、プロテアーゼインヒビターの細胞への取り込みを増加させる本発明が提供される。本発明は一方で、本発明のＡＡＧ結合性化合物の作用の形態に関する何らかの特別な理論によって結合されることを望むものではなく、それはＡＡＧに非結合性であるが故に生じるよりフリーな（非結合性の）プロテアーゼインヒビターの存在においてＡＡＧ結合性化合物がＡＡＧに競合的に結合することによるものと確信される。これは細胞の取り込みのためにより有効なプロテアーゼインヒビターを提供するものと確信される。
本方法は、レトロウイルス（例えばＨＩＶ）、ヘパドナウイルス（例えばＣ型肝炎ウイルス）、ヘルペスウイルス（例えば単純ヘルペスウイルスとサイトメガロウイルス）及びミクソウイルス（例えばインフルエンザウイルス）によってこれらに起因する各種のウイルス感染症、及び同様に寄生プロトゾア（クリプトスポリジウム及びマラリア）、プロテアーゼインヒビターを用いて治療される癌の化学療法及び病態疾患の治療、それに限定されない、を含むプロテアーゼインヒビターを用いた各種の治療に有益である。
実施例のために、ＨＩＶプロテアーゼインヒビターの細胞への取り込みについての本方法の効果を以下に記す。
ＳＣ−５２１５１は、例えば（Ｓ）−ヒドロキシ配置が好ましいレニンインヒビターとは対照をなして、（Ｒ）−ヒドロキシ異性体において強い選択性が示される（ヒドロキシエチル）ウレアアイソスターを結合させるＨＩＶプロテアーゼインヒビターの有効なクラスの一員である。そのＳＣ−５２１５１の構造を、式（Ｉ）として以下に示す。

ＳＣ−５２１５１は他のＨＩＶプロテアーゼインヒビターに比して、インビトロでの同様の抗ウイルス有効性と、選択性を有する（Chang, J. Physicians Assoc. Aids Res., July pp.8-18, 1994）。
ＨＩＶプロテアーゼインヒビターＳＣ−５２１５１は、ヒドロキシエチルウレアアイソスターを含む密着結合性の遷移状態類似物である。最近の臨床試行において、ＰＣＲ，ＲＮＡ，Ｐ２４抗原又はＣＤ4+を含むＳＣ−５２１５１は抗-ＨＩＶ活性のマーカー上に測定されない効果を導き、経口吸収にもかかわらず、インビトロでのＥＣ₅₀を上記の５から１８倍より上の血漿レベルに導く。ヒト血清ＡＡＧはウイルス性プロテアーゼインヒビターのウイルス学的効果を妨害することが示されている。次の表は、ＨＩＶに感染したＣＥＭ細胞中のプロテアーゼインヒビターのインビトロでの抗ウイルス活性におけるＡＡＧの有効性を示す。
ＨＩＶに感染したＣＥＭ細胞中のプロテアーゼインヒビターのインビトロにおける抗ウイルス活性についてのヒト血清アルファ−１酸糖タンパク質（ＡＡＧ）の有効性。

生理学的濃度で、ヒト血清ＡＡＧは、Ｒｏ ３１−８９５９とＭＫ−６３９のＥＣ₉₀値を５−６倍に増幅し且つＳＣ−５２１５１のＥＣ₉₀値を２５倍増加すると共に、プロテアーゼインヒビターのインビトロにおける抗-ＨＩＶ活性を妨害するように見える。ＶＸ−４７８とＫＮＩ−２７２の抗ウイルス活性もまたＡＡＧの存在によって多くは影響される。ＳＣ−５２１５１，ＶＸ−４７８及びＫＮＩ−２７２に関連するタンパク質結合性の研究では、これらは各々ＡＡＧとヒト血漿タンパク質に結合される。ヒトのＨＩＶに感染しＰＨＡ活性化された抹消血液単核細胞（ＰＣＭＣ）に対する１μＭのＳＣ−５２１５１の暴露は、３０分以内に１．５から４．０pmole／１０⁶細胞の細胞内定常状態レベルの結果を生じ、非感染細胞より２−３倍増加した。細胞が低い或いは高い感染多重度（ＭＯＩ）で感染した時、ＳＣ−５２１５１の細胞内含有量に違いのないことが検出された。アルブミンではないＡＡＧの生理学的濃度はＳＣ−５２１５１の抗ウイルス能力に実質的に影響を及ぼす。
本発明によるＡＡＧ結合性化合物は、ＡＡＧが存在すると結合し、プロテアーゼインヒビターをフリーの状態とし、又はＡＡＧに対するプロテアーゼインヒビターの結合を妨げることによて、ＳＣ−５２１５１のようなプロテアーゼインヒビターの活性増加を提供する。
広く記載された本発明の有する、更なる理解は、単なる説明の目的のためにここに提供されかつ別の特定された場合を除き限定されることを企図しないある特定の実施例に鑑みて得ることができる。
実施例
ＳＣ−５２１５１の調製
プロテアーゼインヒビターＳＣ−５２１５１はゲットマンら（Getmanら，J. Med. Chem., 36:288-291（1993））の方法を用いて調製される。
ＳＣ−５２１５１の細胞への取り込みにおけるＡＡＧ結合性化合物の有効性
フィトヘマグルタニン（phytohemagglutanin;PHA）-刺激したヒト抹消血液単核細胞（ＰＢＭＣ）中のＨＩＶプロテアーゼインヒビターＳＣ−５２１５１の細胞の蓄積は、１ｍｇ／ｍｌのＡＡＧと本発明のＡＡＧ結合性化合物を各種の濃度で含む活性調節剤の存在中、１μＭのＳＣ−５２１５１に曝露した後に測定される。活性調節剤の各々はＡＡＧとＳＣ−５２１５１の添加より１５分前に加えられ且つ実験は測定の２時間前に実行される。以下の全ての実験にヒトＡＡＧが使用される。ウシＡＡＧの使用は同様の結果を得ることができるが、しかしながら本発明のＡＡＧ結合性化合物の細胞の取り込みの活性と効果はウシＡＡＧの使用で弱れられる。その結果を次の表において示す。

表１はＡＡＧが不在中でのＳＣ−５２１５１の投与及びＡＡＧの1mg/mlの存在中でＨＩＶプロテアーゼインヒビターＳＣ−５２１５１の投与とを比較して、ＡＡＧの存在中でプロテアーゼインヒビターＳＣ−５２１５１の細胞の取り込みに関しての有効性を示す。表中に示す如く、プロテアーゼインヒビターの細胞濃度が５０μＭから５００μＭの範囲を通して、ＡＡＧの不在において得られるレベルの本質的に１００％に著しく増加する。細胞濃度５０μＭのエリスロマイシンとトロレアンドマイシンの一様な低レベルは、ＡＡＧの無いコントロールの３０−４０％であり、ＡＡＧの存在中で実行されたコントロール実験は、ＡＡＧの不在中で得られるものに比較して僅か８．３％に細胞濃度が減じられた。かくして明確に示されたように、エリスロマイシンとトロレアンドマイシンのようなマクロライド系抗生物質は、プロテアーゼインヒビターの細胞濃度をかなり増加することができる。
クラリスロマイシンは、エリスロマイシン又はトロレアンドマイシンに比較して、クラリスロマイシンの低い投薬量でプロテアーゼインヒビターの細胞濃度を増化させることによって示される通り、エリスロマイシン又はトロレアンドマイシンで見られるよりも、プロテアーゼインヒビター細胞濃度に関する一様に強い有効性を提供する。この結果は表２中に示す。

全てとは限らないがＡＡＧ結合性化合物は、低濃度で本発明において有望に使用される。更に、全てではないがマクロライド系抗生物質は、ミデカマイシン（midecamycin）、オレアンドマイシン（oleandomycin）及びスピラマイシン（spiramycin）を用いて得られた結果を提供する以下の表３中に示す通り有用である。ＨＩＶプロテアーゼインヒビターの細胞濃度の幾らかの改善は、これらのマクロライド系抗生物質を用いて得られるが、その効果はＡＡＧに強力な結合親和性を有するマクロライド系抗生物質に対して明らかに劣る。

本発明において使用する最強のマクロライド系抗生物質の一つはロキシスロマイシンである。表４と５にロキシスロマイシンを用いた二つの従属実験から得られた結果を示す。ＨＩＶプロテアーゼインヒビターＳＣ−５２１５１の細胞濃度は、ＡＡＧが存在し且つロキシスロマイシンの不在において実行された実験に比較して改善されるだけでなく、ＳＣ−５２１５１の細胞濃度はＡＡＧの不在中で実行したコントロールに比べても増加しており、細胞濃度が該コントロールを７２．４％超えるほど高く増加した。従って、ロキシスロマイシンは、ＡＡＧが不在の時、予め到達する程度より以上及び超えて、プロテアーゼインヒビターの細胞濃度を増大する。これらの結果から明らかなように、マクロライド系抗生物質のＡＡＧ結合能力は、ミデカマイシンのような有能なＡＡＧ結合能力を有することが知られた化合物からプロテアーゼインヒビターの細胞濃度に影響するファクターだけではなく、100μＭで一様なプロテアーゼインヒビターの細胞の取り込みに著しい影響を及ぼすことはない。

表６は、ＡＡＧに結合することが知られたリンコサミド系抗生物質、クリンダマイシン（clindamycin）に比較して、リンコサミド系抗生物質であるリンコマイシンを用いて得られた細胞濃度における改善を示す。その結果、クリンダマイシンがプロテアーゼインヒビター細胞取り込みを無視できる程度に増加させることが示されたことからして、ＡＡＧ結合性がプロテアーゼインヒビターの細胞取り込みの増加を演じる上での単なるファクターでないことを再び示す。

本発明は、ＡＡＧ-プロテアーゼインヒビター結合性を分裂させ或いは妨害するＡＡＧに対して十分な結合親和性を有し、且つプロテアーゼインヒビターの細胞の取り込みを増加するＡＡＧ結合性化合物の使用を請求する。表７の化合物はＡＡＧに結合することが知られている（Kremerら，Pharm. Rev. 40（1）, 1-47, 1988とそこに引用された参考文献）。しかしながら、例えそれらの化合物がＡＡＧに結合することが知られていたとしても、ＳＣ−５２１５１中で細胞の取り込みに適度な改善が示されたベラパミールを除いて、それらは臨床的な相対濃度でのプロテアーゼインヒビター濃度について有意な有効性を有することは現われなかった。

上述した研究において示されたプロテアーゼインヒビターの細胞取り込みの増加は、抗ウイルス化合物の細胞取り込みの増加が示されるマクロライド系抗生物質の存在中で回復されるであろうプロテアーゼインヒビターの抗ウイルス活性かどうか更なる研究をした。
抗ウイルスの研究
細胞． 健全なＨＩＶ−１血清反応陰性、且つＢ型肝炎ウイルス血清反応陰性の供与者からのヒトＰＢＭＣは、1,000ｘｇで３０分間、フィコール-ハイパック不連続密度勾配遠心分離によって分離し、そしてリン酸塩緩衝液（pH7.2，PBS）にて２度洗浄し、さらに300ｘｇで１０分間ペレット化した。感染の前に、その細胞は、１５％の加熱不活性化したウシ胎児血清、１．５ｍＭのＬ−グルタミン、ペニシリン（１００Ｕ／ｍｌ）、ストレプトマイシン（１００Ｕ／ｍｌ）、及び４ｍＭの重炭酸ナトリウム緩衝液を補充したＲＰＭＩ１６４０培地中で三日間、８μｇ／ｍｌの濃度でフィトヘマグルチニン（ＰＨＡ）によって刺激した。
ウイルス． ＨＩＶ−１（ＬＡＶ−１株）はＣＤＣ，アトランタ、ＧＡから入手した。そのウイルスは、ＰＨＡ又はフンギゾンを除外し、且つ１００Ｕ／ｍｌの組替え体インターロイキン−２（Cetus）及び７μｇ／ｍｌのＤＥＡＥ-デキストラン（ファーマシア，Uppsala，スウェーデン）を補充した以外は先の記述（McDougalら，J. Immun. Meth. 76:171-183,1985）の通りのＲＰＭＩ１６４０培地を用いてヒトＰＢＭＣ中で増殖させた。無細胞培養の上清から得られたウイルスは滴定し且つ等分して使用するまで-70℃で保管した。
ヒトＰＢＭＣ中のウイルス複製の禁止．
非感染化したＰＨＡ-刺激ヒトＰＢＭＣは、約２ｘ１０⁶細胞／ｍｌを含む５ｍｌの懸濁液が付与されるように２５ｃｍ²フラスコ中に均一に分配した。ウイルスの適当な希薄物は培養液中に感染するために加えられる。接種物の逆転写酵素（ＲＴ）の活性の測定値は、60,000ｄｐｍＲＴ活性／１０⁶細胞（ＭＯＩ＝0.01）であった。ＲＰＭＩ１６４０培地５ｍｌの２度の遠心分離後に補充されるべき薬剤が上述した通り添加される。平衡細胞密度で非感染化した及び未処理のＰＢＭＣは、コントロールとして平行して培養した。その培養物は湿った５％ＣＯ₂−９５％空気中のインキュベーター中に、全ての培養物が上清のＲＴ活性のためのサンプルとされる時点で感染した後、６日間保管した。研究の前に、最大ＲＴレベルはその時点で得られたことが示されている。処理しないコントロールに比較した細胞の上清を結合したＲＴ活性の９０％の減少が提供された濃度が、ＥＣ₉₀値として以下に報告される。
ＲＴ活性アッセイ． 各培養物からの上清６ｍｌは、３００ｘｇで１０分間の遠心分離によって清浄化した。ウイルス粒子は、ベックマン７０．１Ｔｉローターを用いて40,000ｒｐｍで３０分間遠心分離し、５ｍｌのサンプルからペレット化し、更にウイルス分散緩衝液（５０ｍＭトリス塩酸、ｐＨ７．８、８００ｍＭのＮａＣｌ、２０％のグリセロール、０．５ｍＭのフェニルメチルスルホニルフルオリド、及び０．５％のトリトンＸ−１００）２００μｌ中に懸濁させた。
そのＲＴアッセイは、スピラら（Spiraら，J. Clin. Microbiol. 25:97-99, 1987）によって記述された通り、９６穴ミクロタイタープレート中で実行した。その反応混合物、５０ｍＭのトリス塩酸ｐＨ７．８，９のＭｇＣｌ₂、５ｍＭのジチオトレイトール、４．７μｇ／ｍｌ（ｒＡ）_n・（ｄＴ）_12-18、１４０μＭのｄＡＴＰ、及び０．２２μＭ［³Ｈ］ＴＴＰ（比活性７８．０Ｃｉ／ｍｍｏｌ，17,300ｃｐｍ／ｐｍｏｌに等しい；ＮＥＮリサーチプロダクツ、ボストン、ＭＡ．）は、それぞれの穴に加えられる。そのサンプル（２０μｌ）は３７℃で２時間インキュベートしてから反応混合物に加える。その反応は、０．４５ｍＭのピロリン酸を含む１０％トリクロロ酢酸１００μｌの添加によって停止される。沈澱した酸不溶性の核酸は、スカトロンセミオートマチックハーベスター（Skatron semi-automatic harvester）（セッテイング９）を用いるガラスフィルター上に捕集される。そのフィルターは５％ＴＣＡと７０％エタノールで洗浄し、乾燥し、そしてシンチレーション管（scintillation vials）に移した。シンチレーション液（エコライト、ＩＣＮｍ，Irvine，CA）４ｍｌを加え、そしてそれぞれのサンプル中の放射能活性の量は、パッカード トリ-カーブ リキッド シンチレーション アナライザー（Packard Tri-Carb liquid scintillation analyzer（model 2,000CA））を用いて測定される。その結果は、最初の清浄化した上清のｄｐｍ／ｍｌに明示される。上記ＰＢＭＣ中の抗ＨＩＶ−１アッセイのための手続は、公開されている（Schinaziら，in Antimicrob. Agents Chemother. 32:1784-1789, 1988及びSchinaziら，in Antimicrob. Agents Chemother. 34:1061-1067 1990）。ＣＥＭ研究は、スキナジら（Schinaziら，in Antimicrob. Agents Chemother. 36:2423-2431, 1992）によって開示された通り実行される。
次の表８に、急性感染したＰＢＭとＣＥＭ細胞におけるマクロライド系抗生物質によるＳＣ−５２１５１の抗ＨＩＶ活性の復活に関する抗ウイルス研究の結果を提示する。

上述のデータより、クラリスロマイシン、エリスロマイシン及びロキシスロマイシンは、６００μＭまでのＨＩＶ−１に対する抗ウイルス活性は全てが本質的に不活性である。ＰＢＭ又はＣＥＭ細胞中にＳＣ−５２１５１が単独で存在する時、ＳＣ−５２１５１のＥＣ₉₀は０．１４μＭである。ＡＡＧが添加された時、ＰＢＭ中のＳＣ−５２１５１のＥＣ₉₀は１．２２μＭの大きなレベルに増加する（ＣＥＭ細胞中１．１８μＭ）。しかしながら、本発明のＡＡＧ結合性化合物、すなわちクラリスロマイシン、エリスロマイシン及びロキシスロマイシンが添加された時、ＥＣ₉₀が投薬量に比例して減少され、優れた抗ウイルス能力を示す。特に、本発明のＡＡＧ結合性化合物の添加は、抗ウイルス活性を増加させるものと解釈されるＳＣ−５２１５１の細胞取り込みの増加を提供する。事実、上記表中のＡＡＧ結合性化合物は、ＳＣ−５２１５１単独で達せられたものを超えた抗ウイルス活性の増加を提供する。この増幅された活性は、ＰＢＭ細胞とＣＥＭ細胞の両方の上記結果によって確認される通り、細胞系に従うのではない。
明らかに、本発明の付加的な修正や変化は、上記の教示に照して可能である。それ故に添付のクレームの範囲内にあると理解されるべき発明は、特徴的なここの記載以外のことを実行することができる。

Claims (5)

1. ＨＩＶ感染治療用組成物であり、マクロライド系抗生物質であるエリスロマイシン、トロレアンドマイシン、クラリスロマイシン及びロキシスロマイシン並びにリンコサミド系抗生物質であるリンコマイシンからなる群から選択される１種又はそれ以上のＡＡＧ（アルファ−１−酸 糖タンパク質）結合性化合物を混ぜた、ＳＣ−５２１５１、ＭＫ−６３９、Ｒｏ ３１−８９５９、及びＶＸ−４７８からなる群から選択される１種又はそれ以上のプロテアーゼインヒビターの有効量を備えたことを特徴とする組成物。
2. プロテアーゼ逆転写酵素インヒビター、抗融合／結合性剤、抗インテグラーゼ剤及び抗ウイルスオリゴヌクレオチドからなる群より選択される１種またはそれ以上の補足的治療薬を更に備えたことを特徴とする請求項１記載の組成物。
3. 上記１種又はそれ以上のＡＡＧ（アルファ−１−酸 糖タンパク質）結合性化合物が、エリスロマイシン、トロレアンドマイシン、クラリスロマイシン及びロキシスロマイシンからなる群より選択されるマクロライド系抗生物質であることを特徴とする請求項２記載の組成物。
4. 上記１種又はそれ以上のＡＡＧ（アルファ−１−酸 糖タンパク質）結合性化合物が、リンコマイシンであることを特徴とする請求項２記載の組成物。
5. 上記１種又はそれ以上のＡＡＧ（アルファ−１−酸 糖タンパク質）結合性化合物が、ロキシスロマイシン又はクラリスロマイシン又はそれらの混合物であることを特徴とする請求項１記載の組成物。