JP4284562B2 - Udp−キシロースの製造方法 - Google Patents
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Description
これらの酵素は植物や、真核生物では線虫からヒトなどの高等哺乳類まで、UDP-キシロースを使用する生物であればもっている普遍的な酵素である。ただし、このような生物は合成したUDP-キシロースを使用していくため、細胞内にUDP-キシロースが蓄積していくことはない。このため、生物体からUDP-キシロースを単離する場合、その生産量は極めて低くかつ高価である。また、遺伝子工学的手法を用いてUDP-キシロースを合成した例は見あたらない。
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dehydrogenase をコードする遺伝子(UGD1遺伝子)を初めて単離し、この遺伝子の構造を明らかにするとともに、この遺伝子を同じくシロイヌナズナのUDP-キシロース合成の後半の反応を触媒するUXS3遺伝子とともに共発現することによって、生体内および生体外で効率よくUDP-キシロースが合成されることを見いだし、本発明を完成させるに到った。
(1) 宿主細胞が、以下のA)に記載のタンパク質をコードするDNAにより組み換えられた組換えベクターと以下のB)に記載の蛋白質をコードするDNAにより組み換えられた組み換えベクターとにより形質転換されている形質転換体であって、宿主細胞が酵母細胞であることを特徴とする、上記形質転換体。
A)(a)配列番号2で示されるアミノ酸配列を有するタンパク質、あるいは(b)配列番号2で示されるアミノ酸配列において、1乃至数個のアミノ酸が、欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列を有し、UDP-グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質。
B)(a)配列番号4で示されるアミノ酸配列を有するタンパク質、あるいは(b)配列番号4で示されるアミノ酸配列において、1乃至数個のアミノ酸が、欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列を有し、UDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼ活性を有するタンパク質。
(2) 請求項1(a)に記載のDNAが配列番号1で示される塩基配列を有することを特徴とする、上記(1)に記載の形質転換体。
(3) 上記(1)又は(2)に記載の形質転換体を培地に培養し、培養物からUDP-キシロースを採取することを特徴とする、UDP-キシロースの製造方法。
(4) 上記(1)又は(2)に記載の形質転換体を培地に培養し、得られた培養物、培養処理物、酵素抽出液または精製酵素をUDP-グルコースと接触させることにより、UDP-グルコースをUDP-キシロースに変換させることを特徴とする、UDP-キシロースの製造方法。
(5) 上記(4)に記載の形質転換体の培養物、培養処理物、酵素抽出液または精製酵素とUDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼ生産細胞の培養物、培養処理物、酵素抽出液または精製酵素とを同時に、UDP-グルコースに作用させ、UDP-グルコースをUDP-キシロースに変換させることを特徴とする、UDP-キシロースの製造方法。
本発明においては、上記シロイヌナズナのUGD1遺伝子を用いた遺伝子工学的手法によりUDP-キシロースを効率よく生産可能であるが、この製造法には大別して生体内で生産する方法と生体外で生産する方法の2つがある。
(1)シロイヌナズナのUDP-グルコース デヒドロゲナーゼ(UDP-glucose dehydrogenase)遺伝子(以下、UGD1遺伝子という場合がある。)を取得する。
(2)シロイヌナズナUGD1遺伝子を発現用プラスミド等のベクターに導入し、UGD1遺伝子を発現するベクターを構築する。
(3)上記発現ベクターを、UDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼ(UDP-glucuronic acid decarboxylase)産生能を有する宿主細胞に導入し、該宿主細胞を形質転換する。
上記UDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼ産生能を有する宿主細胞としては、UDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼを本来的に産生する細胞でもよいし、UDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼ(UDP-glucuronic acid decarboxylase遺伝子(以下、UXS3遺伝子という場合がある。)を有する発現ベクターで形質転換された細胞でもよい。すなわち、該細胞内で、UGD1遺伝子産物(UDP-グルコースデヒドロゲナーゼ)を発現させると共にUXS3遺伝子産物(UDP-グルクロン酸デカルボキシラーゼ)を活性を保ったまま発現させ、UDP-グルコースよりUDP-キシロースに変換する。UXS3遺伝子としては、例えば、シロイヌナズナ由来の遺伝子が挙げられ、該遺伝子は、配列番号4に示すアミノ酸配列をコードするDNAであり、具体的には配列番号3に示される塩基配列を有するが、これのみでなく、配列番号4で示されるアミノ酸配列において、1乃至数個のアミノ酸が、欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつUDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼ活性を有するタンパク質をコードするDNAも包含される。
(4)上記(3)の組換え体を培地に培養し、得られた培養物あるいは細胞破砕物等の培養処理物から抽出によりUDP-キシロースを採取し、さらに単離・精製する。
(1)シロイヌナズナのUDP-glucose dehydrogenase遺伝子(UGD1遺伝子)を取得する;
(2)シロイヌナズナUGD1遺伝子を発現用プラスミド等のベクターに導入し、UGD1遺伝子を発現するベクターを構築する;
(3)上記発現ベクターを、UDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼ(UDP-glucuronic acid decarboxylase)産生能を有する宿主細胞に導入し、該宿主細胞を形質転換する。
上記UDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼ産生能を有する宿主細胞としては、UDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼを本来的に産生する細胞でもよいし、UDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼ(UDP-glucuronic acid decarboxylase遺伝子(以下、UXS3遺伝子という場合がある。)を有する発現ベクターで形質転換された細胞でもよい。
すなわち、該細胞内で、UGD1遺伝子産物(UDP-グルコースデヒドロゲナーゼ)を発現させると共にUXS3遺伝子産物(UDP-グルクロン酸デカルボキシラーゼ)を活性を保ったまま発現させる。
(4)上記の形質転換体の培養物、細胞破砕物等の培養処理物、細胞内抽出物あるいは該抽出物から単離精製した酵素を酵素源とし、UDP-グルコースおよびNADHを添加することによりUDP-グルコースをUDP-キシロースに変換し、単離・精製を行う。該UDP-キシロースはキシロース含有糖鎖の合成の際に糖供与体として必須なものであるので、機能的に重要と思われる糖鎖へのキシロース付加の際に有用なものである。
以下、本発明をさらに詳細に説明する。本明細書において、アミノ酸配列および塩基配列の略号による表示は、IUPAC-IUBの規定および当該分野における通称または慣行に従うものとする。
本発明のUGD1遺伝子の取得は、一般的手法に従ってシロイヌナズナから調製したcDNAライブラリを鋳型とし、PCR法により単離することができる。
ベクターを組み込む方法としては、例えばT.Maniatisらの方法[Molecular Cloning, Cold Spring Harbor Laboratory, p.239 (1982)]に従うことができる。
また、形質転換する宿主が酵母である場合、ENO1プロモーター、GAL10プロモーター、GAPDHプロモーター、ADHプロモーターなどが挙げられる。
宿主としては、UDP-キシロースを生体内で消費しない出芽酵母(Saccharomyces
cerevisia)などが挙げられるが、この他UDP-キシロースを消費しない他の酵母(Pichia pastorisなど)などでもよい。また、酵母以外でも、UDP-キシロースの消費する酵素系を持たない宿主であればいかなるものでもよい。
また、細胞破砕物、酵素抽出物等を用い、生体外でUDP-キシロースを生産する場合、細胞質内で該遺伝子産物を生産することが可能な宿主であれば、いかなるものでも用いることができる。
上記形質転換体の作成は、それぞれの宿主について一般的に行われている方法で行う。または一般的ではなくても適用可能な方法ならばよい。例として、宿主が酵母であれば、リチウム法あるいはエレクトロポレーション法により組み換えDNAを含むベクターを導入する。
また、例えば、UDP-グルコースデヒドロゲナーゼとUDP-グルクロン酸でカルボキシラーゼを共に産生する形質転換体を得る場合、UGD1遺伝子により形質転換される宿主は、あらかじめシロイヌナズナのUXS3遺伝子を有する組み換えDNAを含むベクターで形質転換されているか、あるいは本来的にUXS3遺伝子産物を発現しているものである必要がある。
上記の遠心分離によって分離された上清画分からUDP-キシロースを分離する場合は、ゲルろ過法等により低分子量の画分を集め、さらにHPLCによる分離を行うことにより、精製単離する。
また、生体外で酵素変換反応を行い、UDP-キシロースを製造する場合においては、上清画分に硫酸アンモニウムを75%の濃度に溶かし、これにより沈殿してくるタンパク質画分を集め、透析等により脱塩したものを酵素源として使用することができる。
以下、本発明の実施例を示すが、本発明はこの実施例にのみ限定されるものではない。
シロイヌナズナのcDNAライブラリを用いてPCR法により遺伝子のクローニングを行った。cDNAライブラリはCLONTECH社のQUICK-Clone cDNAを用いた。プライマーの設計においては、制限酵素でタンパク質をコードしている部分が容易に切り出せるようにN-末端Eco RIサイト、C-末端部分にSal Iサイトに位置させ、また、N-末端には、あらかじめ標識抗原をコードするvsv-g配列を付加せしめた。それぞれのプライマーの配列を以下に示す。
AGAATTCATGTATACTGATATTGAAATGAATAGATTGGGTAAAATGGTGAAGATATGCTGCATAGGAG(配列番号5)
AAAAAAAGTCGACTCATGCCACAGCAGGCATATCCTTGAGCC(配列番号6)
PCRの条件は以下の通り。
94℃ 30秒
55℃ 30秒
72℃ 2分
30サイクル
この条件で得られた約1.5 kbpのDNA増幅断片をアガロース電気泳動で分離した後、TAクローニングキットを用いてpGEM-5Z f(+)ベクターに挿入した。このクローニングされた遺伝子をダイデオキシ法を用いたシークエンスキットにより塩基配列を確認し、配列番号2に示した塩基配列であることを確認した。
pGEM-5Z f(+)ベクターに挿入されているUGD1遺伝子をEco RI及びSal Iで切り出し、酵母の解糖系のプロモーターであるGAPDHとそのターミネーターの間にpUC18のマルチクローニングサイトのうちEco RIからSal Iまでの部分を持つ発現用ベクターYEp352GAP-IIのEco RI 及びSal Iサイトに挿入した。さらにこのベクターからGAPDHプロモーター、UGD1-vsv-g、GAPDHターミネーターの3つの部分を含む断片をBam HIを用いて切り出し、酵母の染色体組み込み型ベクターでありLUE2マーカーを持つpRS-305のBamHIサイトに挿入しpONJ-UGD1-vsv-gを構築した。UXS3遺伝子もUGD1と同様にPCRを用いてクローニングしたあとYEp352GAP-IIのEco RI 及びSal Iサイトに挿入した。さらにこのベクターからGAPDHプロモーター、pONJ-UXS3-c-myc、GAPDHターミネーターの3つの部分を含む断片をBam HIを用いて切り出し、酵母の染色体組み込み型ベクターでありTRP1マーカーを持つpRS-304のBamHIサイトに挿入しpONJ-UXS3-c-mycを構築した。また、C-末端にはあらかじめc-myc標識抗原遺伝子をプライマーに付加しておいた。これらの発現ベクターは、それぞれ単独あるいは2つ一緒に酵母のW303-1A株(ura3, lue2, his3, trp1,ade2)に導入し、3種の形質転換体、すなわち、UGD1遺伝子導入株(W303/pONJ-UGD1-vsv-g株)、UXS3遺伝子導入株(W303/pONJ-UXS3-c-myc株)並びにUGD1・UXS3遺伝子導入株(W303/ pONJ-UGD1-vsv-g、pONJ-UXS3-c-myc株)を得た。なお、このうちUGD1・UXS3遺伝子導入株(W303/ pONJ-UGD1-vsv-g、pONJ-UXS3-c-myc株)は、茨城県つくば市東1−1−1中央第6に所在の独立行政法人産業技術総合研究所、特許生物寄託センターに 受託日:2006年2月24日 受託番号:FERM BP−10538として寄託されている。
〔実施例2〕で得られた形質転換体について、それぞれの細胞内でタンパク質が発現されているかどうかをウエスタンブロッティングを用いて確認した。まず、上記3種の形質転換体〔W303/pONJ-UGD1-vsv-g株、W303/pONJ-UXS3-c-myc株、W303/ pONJ-UGD1-vsv-g、pONJ-UXS3-c-myc株)およびW303株をSD培地で24時間30℃で培養し、得られた酵母細胞をガラスビーズで破砕した。得られた破砕物を遠心操作を用いて細胞壁画分及びミクロソーム画分を取り除き、細胞質画分だけを分離した。このタンパク質を含む細胞質画分を20mM Tris-HCl pH7.4に溶かし、タンパク質定量をBCAキットを用いて行った。それぞれ100μgのタンパク質をとってSDS-PAGEを行った後、PVDF膜に電気的に転写し、それぞれ、抗-vsv-g抗体もしくは抗c-myc抗体を用いてタンパク質の発現を確認した(図2)。その結果、UGD1遺伝子導入株(W303/pONJ-UGD1-vsv-g株)及びUGD1・UXS3遺伝子導入株(W303/ pONJ-UGD1-vsv-g、pONJ-UXS3-c-myc株)ではUGD1タンパク質が、及びUGD1・UXS3遺伝子導入株(W303/ pONJ-UGD1-vsv-g、pONJ-UXS3-c-myc株)ではUXS3タンパク質が発現していることが確かめられた。すなわちUGD1遺伝子とUXS3遺伝子が導入された形質転換体は、UGD1タンパク質とUXS3タンパク質と共発現していることが分かる
UDP-キシロース活性測定は基質としてUDP-グルコースを、補助因子として5 mM NADHを用い、100 mM Tris-HCl、pH 7.4という条件で30℃、2時間反応を行い、フェノール:クロロホルム溶液 (24: 1) を加え撹拌した後、遠心分離を行い、上清を回収した。上清を0.2 マイクロメートルポアサイズのフィルターに通し、HPLCによりUDP-キシロースとUDP-グルコースの測定を行った。HPLCはC18カラムを用いて1%アセトニトリルを含む20 mMトリエチルアミン(pH 5.8) 溶液を1 ml/minで流して分離を行い、さらに、各分画についてESI−MS測定を行った(図4)。その結果、UXS3タンパク質とUGD1タンパク質を共発現させたW303/ pONJ-UGD1-vsv-g、pONJ-UXS3-c-mycのみでUDP-キシロース合成活性を検出した(図3、4)。また、UGD1タンパク質のみを発現させたW303/pONJ-UGD1-vsv-g株では、UDP-グルクロン酸合成活性が検出された。なお、UXS3遺伝子のみ発現させたW303/pONJ-UXS3-c-myc株ではUDP-グルクロン酸を基質として用いた場合にのみUDP-キシロース合成活性が検出された。
Claims (5)
- 宿主細胞が、以下のA)に記載のタンパク質をコードするDNAにより組み換えられた組換えベクターと以下のB)に記載の蛋白質をコードするDNAにより組み換えられた組み換えベクターとにより形質転換されている形質転換体であって、宿主細胞が酵母細胞であることを特徴とする、上記形質転換体。
A)(a)配列番号2で示されるアミノ酸配列を有するタンパク質、あるいは(b)配列番号2で示されるアミノ酸配列において、1乃至数個のアミノ酸が、欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列を有し、UDP-グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質。
B)(a)配列番号4で示されるアミノ酸配列を有するタンパク質、あるいは(b)配列番号4で示されるアミノ酸配列において、1乃至数個のアミノ酸が、欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列を有し、UDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼ活性を有するタンパク質。 - 請求項1(a)に記載のDNAが配列番号1で示される塩基配列を有することを特徴とする、請求項1に記載の形質転換体。
- 請求項1又は2に記載の形質転換体を培地に培養し、培養物からUDP-キシロースを採取することを特徴とする、UDP-キシロースの製造方法。
- 請求項1又は2に記載の形質転換体を培地に培養し、得られた培養物、培養処理物、酵素抽出液または精製酵素をUDP-グルコースと接触させることにより、UDP-グルコースをUDP-キシロースに変換させることを特徴とする、UDP-キシロースの製造方法。
- 請求項4に記載の形質転換体の培養物、培養処理物、酵素抽出液または精製酵素とUDP-グルクロン酸 デカルボキシラーゼ生産細胞の培養物、培養処理物、酵素抽出液または精製酵素とを同時に、UDP-グルコースに作用させ、UDP-グルコースをUDP-キシロースに変換させることを特徴とする、UDP-キシロースの製造方法。
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