JP4280826B2 - シスタチオニン−γ−シンターゼ活性を有する新規耐熱性タンパク質 - Google Patents
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Description
本発明は、シスタチオニン−γ−シンターゼ活性を有する新規耐熱性タンパク質に関する。本出願は、国の委託に係る成果の出願である。
シスタチオニン−γ−シンターゼ（EC4.2.99.2）は、別名、Ｏ−サクシニルホモセリン（チオール）−リアーゼとも称し、Ｏ−サクシニル−Ｌ−ホモセリンおよびＬ−システインに作用して、シスタチオニンおよびコハク酸を生成する合成酵素である。このシスタチオニン−γ−シンターゼは、微生物および植物において、メチオニン生合成経路が、他のアミノ酸から分岐する段階を触媒し、メチオニン生合成制御の鍵となる酵素である。このような酵素としては、植物（ニコチアナ・タバクム（Nicotianatabacum）、アラビドプシス（Arbidopsis）由来のものなどがすでに公知であり（非特許文献１、非特許文献２、非特許文献３参照）、新規な抗生物質および除草剤の設計における魅力的な標的となるであろうことが示唆されている。また、その遺伝子は植物の種子中のメチオニン含量を増加させるために使用されている（特許文献１、特許文献２参照）。さらに、従来から、シスタチオニン−γ−シンターゼは上記した植物由来の酵素のほかに、コリネバクテリウム・グルタミクム（Corynebacteriumglutamicum）、バチルス・スフェリカス（Bacillus sphaericus）（非特許文献４参照）、大腸菌（非特許文献５参照）などの微生物由来の酵素が知られている。しかしながら、耐熱性菌からは、その遺伝子の存在は予知されているが、未だタンパクとして採取されていない。耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼは、バイオリアクターへの利用などが所望され、その活用範囲は広がるものと考えられる。
他方、超好熱性古細菌（非特許文献６参照）についての研究があり、スルホロブス属細菌の１種であるスルホロブス・トコダイイ（Sulfolobus tokodaii）（JCM１０５４５）（非特許文献７参照）は、その遺伝子が既に解析されている（非特許文献８参照）。したがって、この超好熱古細菌が、シスタチオニン−γ−シンターゼを産生するとすれば、それは優れた耐熱性を有すると予想される。
J.Mol. Biol. 1999 July.30;290(5):983-96 J. Biol. Chem. 2002 Sep 27;277(39):36380-6 Plant Physiol. 2002 Feb;128(2):454-62） 米国特許第５，９１２，４１４号
米国特許第６，１２７，６００号
Eur. J.Biochem. 1987, Feb. 16:163(1):105-12
Biochemistry, vol.29, issue2, 1990, p.435-442
Advances in Protetin Chemistry, Volume 48, Enzymes and Proteins from Hyperthermophilic Microorganisms (M.Adams ed.), Academic Press (1996)
Suzuki, T. et al., Extremophiles, 2002 Feb;6(1):39-44
Kawarabayashi,Y. et al., "Complete genome sequence of an aerobic thermoacidophilic crenarchaeon, Sulfolobus tokodaii strain7", DNA Res. 8 (4), 123-140 (2001)
J.Mol. Biol. 1999 July.30;290(5):983-96 J. Biol. Chem. 2002 Sep 27;277(39):36380-6 Plant Physiol. 2002 Feb;128(2):454-62）
本発明は、このような事情に鑑みなされたものであり、シスタチオニン−γ−シンターゼ活性を持つ新規耐熱性タンパク質の提供を、その目的とする。
前記目的を達成するために、超好熱性古細菌であるスルホロブス・トコダイイ（Sulfolobus tokodaii）（JCM１０５４５）のゲノム情報について調べたところ、この細菌が、シスタチオニン−γ−シンターゼを産生する可能性があることを突き止めた。この知見に基づき、さらに研究を重ねたところ、この細菌の遺伝子から、シスタチオニン−γ−シンターゼ活性を持つ新規耐熱性タンパク質を発現させることに成功し、本発明に到達した。なお、スルホロブス・トコダイイ（Sulfolobus tokodaii）（JCM１０５４５）は、理化学研究所生物基盤研究部微生物系統保存施設に保存されており、第三者の要求により分譲可能である。スルホロブス・トコダイイ（Sulfolobus tokodaii）（JCM１０５４５）の生育温度は８０℃であり、生育限界温度が８７℃であるから、本発明のタンパク質は、８０℃以上の高温であっても活性がある。
すなわち、本発明のタンパク質は、下記の（ａ）または（ｂ）のタンパク質である。
（ａ） 配列番号１のアミノ酸配列からなる耐熱性タンパク質。
（ｂ） 配列番号１のアミノ酸配列において、１つ以上のアミノ酸残基が、欠失、置換、付加若しくは挿入されたアミノ酸配列からなり、シスタチオニン−γ−シンターゼ活性を有する耐熱性タンパク質。
（ａ） 配列番号１のアミノ酸配列からなる耐熱性タンパク質。
（ｂ） 配列番号１のアミノ酸配列において、１つ以上のアミノ酸残基が、欠失、置換、付加若しくは挿入されたアミノ酸配列からなり、シスタチオニン−γ−シンターゼ活性を有する耐熱性タンパク質。
本発明により、シスタチオニン−γ−シンターゼ活性を有する新規耐熱性タンパク質が提供できる。
前記タンパク質のシスタチオニン−γ−シンターゼ活性は、Ｏ−サクシニル−Ｌ−ホモセリンおよびＬ−システインに作用して、シスタチオニンおよびコハク酸を生成するというものである。なお、本発明のタンパク質は、前記反応の逆反応を触媒してもよい。
また、本発明のタンパク質は、ピリドキサル５’−リン酸 (PLP)の存在下、Ｏ−サクシニル−Ｌ−ホモセリンを、２−オキソ酪酸に変換する反応を触媒する。なお、本発明のタンパク質は、前記反応の逆反応を触媒してもよい。
前述のように、本発明の新規耐熱性タンパク質は、超好熱性古細菌由来であり、具体的には、スルホロブス・トコダイイ(Sulfolobus tokodaii) （JCM１０５４５）由来である。但し、本発明のタンパク質は、この菌が産生するものに限定されず、遺伝子工学的手法により、他の生物が産生するものであってもよい。
つぎに、本発明の発現ベクターは、前記本発明のタンパク質をコードするＤＮＡまたは配列番号２に記載のＤＮＡを含むベクターである。
つぎに、本発明の形質転換体は、前記本発明のベクターにより形質転換された形質転換体である。なお、宿主は特に制限されず、例えば、大腸菌等がある。
つぎに、本発明のタンパク質の製造方法は、前記本発明の形質転換体を培養する工程と、前記培養工程において発現した前記タンパク質を回収する工程とを含む製造方法である。
つぎに、本発明の第１の製造方法は、酵素反応により、Ｏ−サクシニル−Ｌ−ホモセリンおよびＬ−システインからシスタチオニンおよびコハク酸を製造する方法であって、前記酵素として前記本発明のタンパク質を用い、温度７５〜８５℃でｐＨ６．５〜７．５の条件で前記酵素反応を行う製造方法である。
また、本発明の第２の製造方法は、酵素反応により、ピリドキサル５’−リン酸(PLP)の存在下、Ｏ−サクシニル−Ｌ−ホモセリンから、２−オキソ酪酸を製造する方法であって、前記酵素として前記本発明のタンパク質を用い、温度７５〜８５℃の条件で前記酵素反応を行う製造方法である。
このように、前記本発明のタンパク質を用いれば、温度７５〜８５℃の高温領域で酵素反応を実施でき、この結果、工業的な用途が広がる。また、本発明の第１の製造方法は、メチオニンの工業的製造に利用できる方法である。なお、これらの製造方法において、前記酵素反応のｐＨは、ｐＨ６．５〜７．５の範囲が好ましい。
以下、本発明について、さらに詳細に説明する。
本発明者らは、海洋底から採取された超好熱性古細菌であって、好気性thermoacidophilic crenarchaeonの１種であるスルホロブス・トコダイイ(Sulfolobus tokodaii)種７（JCM１０５４５）の遺伝子配列からシスタチオニン−γ−シンターゼ活性を示すと推定される遺伝子（配列番号２）をクローニングし、これを大腸菌を用いて発現させることにより、本発明の新規耐熱性タンパク質を得るに至った。遺伝子のクローニング方法は、後記した実施例１に記載した通り実施した。クローニングされた遺伝子の塩基配列は配列番号２に示す通りであり、また、その推定アミノ酸配列は配列番号１に示す通りである。なお、本発明の耐熱性タンパク質は、シスタチオニン−γ−シンターゼ活性を有していれば、配列番号１のアミノ酸配列において、一つ以上若しくは数個のアミノ酸残基が、欠質、置換、付加若しくは挿入されていてもよい。このアミノ酸配列における「アミノ酸の欠失、置換、付加若しくは挿入」は、当業者に公知の方法（例えば、突然変異誘発法）に従って実施することができる。
本発明のタンパク質は、前述の本発明のタンパク質の製造方法により製造可能であるが、これに限定されず、他の製造方法で製造されてもよい。例えば配列番号１に示すように、そのアミノ酸配列が決定されているタンパク質については、その配列を元に当業者に公知の手法、例えば、個々のアミノ酸を化学的に重合してタンパク質を合成する方法に従って調製することができる。
本発明のタンパク質をコードする遺伝子の一例としては、配列番号２に示す遺伝子がある。前記遺伝子は、例えば、後記する実施例２に示すように超好熱性古細菌スルホロブス・トコダイイ(Sulfolobus tokodaii)（JCM１０５４５）のゲノムから、例えば配列番号２で示される塩基配列の一部をプライマーとして用いるＰＣＲ法あるいは該ＤＮＡ断片をプローブとして用いるハイブリダイゼーション法により調製することができる。また、その塩基配列をもとに、当業者に公知である核酸化学合成法等に従って前記遺伝子を得ることもできるが、これらに限定されない。
本発明の発現ベクターは、前記遺伝子もしくは配列番号２のＤＮＡを適当なベクターに挿入することによって得ることができる。本発明の遺伝子を挿入するためのベクターは、宿主中で複製可能なものであれば、特に制限されるものではなく、例えば、プラスミドＤＮＡ、ファージＤＮＡ、ＡｃＭＮＰＶなどのバキュロウイルスなどが挙げられる。プラスミドＤＮＡは、大腸菌やアグロバクテリウムからアルカリ抽出法またはその変法などにより調製することができる。また、市販プラスミドとして、例えばｐＥＴ-１１ａ（Novagen社製）あるいはバチルス属の宿主を用いて分泌型のプラスミドなどを用いてもよい。これらのプラスミドは、アンピシリン耐性遺伝子、カナマイシン耐性遺伝子、クロラムフェニコール耐性遺伝子などが含まれていてもよい。
ベクターへの遺伝子等の挿入は、例えば、精製された遺伝子の塩基配列を適当な制限酵素で切断し、適当なベクターＤＮＡの制限酵素部位またはマルチクローニングサイトに挿入してベクターに連結する方法などを用いることができるが、これらに限定されない。また、本発明の遺伝子の機能が発揮されるように、本発明の発現ベクターには本発明の遺伝子のほか、プロモーター、ターミネーター、リボソーム結合配列などを組み込んでいてもよい。さらに、本発明の遺伝子も他のタンパク質のコードする配列を融合したものを挿入してもよい。
前記発現ベクターで宿主生物を形質転換すれば、本発明の形質転換体が得られる。宿主生物としては、本発明の遺伝子を発現できるものであれば、特に制限されるものではなく、例えば、大腸菌などの原核生物細胞が挙げられるが、これらに限定されない。形質転換法としては、既に公知である塩化カルシウム法などを使用することができるが、これらの方法に限定されない。
本発明のタンパク質の製造方法は、前記形質転換体を培養する工程と、前記培養工程において発現した前記タンパク質を回収する工程とを含む製造方法である。前記培養する方法は、宿主細胞の培養に用いられる通常の方法に従って行われる。大腸菌等の微生物を宿主とした形質転換体を培養する培地としては、微生物が資化し得る炭素源、窒素源、無機塩類などを含有し、形質転換体の培養を効率的に行えるものであれば、天然培地、合成培地などのいずれを用いてもよい。本発明のタンパク質の回収は、特に制限されない。前記タンパク質が菌体内または細胞内に生産される場合には、菌体または細胞を破砕することによって前記タンパク質を回収する。また、本発明の前記タンパク質が菌体外または細胞外に生産される場合には、培養液をそのまま使用するか、遠心分離などにより菌体または細胞を除去した後、タンパク質の単離精製に用いられる一般的な生化学的方法、例えば、硫酸アンモニウム沈殿、ゲルクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィーなどを単独でまたは適宜組み合わせて用いることにより、培養物中から本発明のタンパク質を単離精製することができる。なお、培養液をそのまま使用する場合、熱処理をすることにより、本発明のタンパク質以外のタンパク質が失活するので、実質上、本発明のタンパク質のみの酵素液として使用できる。
以下に実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらにより限定されない。
染色体ＤＮＡの調製
スルフォロブス・トコダイイ(Sulfolobus tokodaii(ＪＣＭ１０５４５))をＬ培地中で37℃にて一晩培養して集菌したものに、ＳＳＣ溶液 (０．１５Ｍ ＮａＣｌ, ０．０１５Ｍ クエン酸ナトリウム)１０ｍＬ、０．５Ｍ ＥＤＴＡ、１００ｍｇ／ｍｌ ニワトリ卵白リゾチーム ０．１ｍＬおよび１０％非イオン性界面活性剤Ｂｒｉｊ-５８を０．５ｍＬ加え、０℃で３０分間放置した後、プロテイナーゼＫ(Ｍｅｒｃｋ社製)５ｍｇを１０％ＳＤＳ ０．２ｍＬに溶かした溶液を加え、３７℃で２、３日間放置した。この溶液に水飽和フェノール、クロロホルム、イソアミルアルコールの混合溶液を加えて、３７℃で１時間放置した後、水層を分取し、そこへエタノールを加えてＤＮＡを沈殿濃縮した。このＤＮＡの沈殿をＴＥ溶液(１０ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ(ｐＨ７．５)、１ｍＭ ＥＤＴＡ(ｐＨ８．０))１０ｍＬに溶解し、リボヌクレアーゼ０．２５ｍＬ(最終濃度０．２５ｍｇ／ｍＬ)を加えて、３７℃で一晩放置した後、エタノールで沈殿させた。次いで、ＤＮＡをＴＥ溶液５ｍＬに溶解した後、２６０ｎｍの吸光度より、ＤＮＡ濃度を決定した（Clarke,L.& Carbon,J.(1979) Methods Enzymol.68,396-408）。
スルフォロブス・トコダイイ(Sulfolobus tokodaii(ＪＣＭ１０５４５))をＬ培地中で37℃にて一晩培養して集菌したものに、ＳＳＣ溶液 (０．１５Ｍ ＮａＣｌ, ０．０１５Ｍ クエン酸ナトリウム)１０ｍＬ、０．５Ｍ ＥＤＴＡ、１００ｍｇ／ｍｌ ニワトリ卵白リゾチーム ０．１ｍＬおよび１０％非イオン性界面活性剤Ｂｒｉｊ-５８を０．５ｍＬ加え、０℃で３０分間放置した後、プロテイナーゼＫ(Ｍｅｒｃｋ社製)５ｍｇを１０％ＳＤＳ ０．２ｍＬに溶かした溶液を加え、３７℃で２、３日間放置した。この溶液に水飽和フェノール、クロロホルム、イソアミルアルコールの混合溶液を加えて、３７℃で１時間放置した後、水層を分取し、そこへエタノールを加えてＤＮＡを沈殿濃縮した。このＤＮＡの沈殿をＴＥ溶液(１０ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ(ｐＨ７．５)、１ｍＭ ＥＤＴＡ(ｐＨ８．０))１０ｍＬに溶解し、リボヌクレアーゼ０．２５ｍＬ(最終濃度０．２５ｍｇ／ｍＬ)を加えて、３７℃で一晩放置した後、エタノールで沈殿させた。次いで、ＤＮＡをＴＥ溶液５ｍＬに溶解した後、２６０ｎｍの吸光度より、ＤＮＡ濃度を決定した（Clarke,L.& Carbon,J.(1979) Methods Enzymol.68,396-408）。
発現プラスミドの構築と遺伝子発現
１．発現プラスミドの構築
耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼ遺伝子の翻訳領域の前後に制限酵素ＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩ、 ＮｏｔＩサイトを含むＤＮＡを構築する目的で下記のDNAプライマーを合成し、このプライマーを用いたＰＣＲで耐熱性シスタチオニン-γ-シンターゼ遺伝子の翻訳領域の前後に制限酵素サイトを導入した。用いたＤＮＡポリメラーゼはＫＯＤ Ｄａｓｈ（東洋紡社製）であった。
Forward primer（配列番号３）：5'-ATATCATATGCATGGGTTGCGTGAAGGGACTAAAGTTACA-3'
Reverse primer（配列番号４）：5'-ATATGGATCCgcggccgcTTATTAattaagtgaagttagtgc-3'
１．発現プラスミドの構築
耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼ遺伝子の翻訳領域の前後に制限酵素ＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩ、 ＮｏｔＩサイトを含むＤＮＡを構築する目的で下記のDNAプライマーを合成し、このプライマーを用いたＰＣＲで耐熱性シスタチオニン-γ-シンターゼ遺伝子の翻訳領域の前後に制限酵素サイトを導入した。用いたＤＮＡポリメラーゼはＫＯＤ Ｄａｓｈ（東洋紡社製）であった。
Forward primer（配列番号３）：5'-ATATCATATGCATGGGTTGCGTGAAGGGACTAAAGTTACA-3'
Reverse primer（配列番号４）：5'-ATATGGATCCgcggccgcTTATTAattaagtgaagttagtgc-3'
ＰＣＲ反応後、Ｅｘ Ｔａｑ(宝酒造社製)を用いて増幅断片の３’末端側にデオキシアデノシンを付加した後、ｐＧＥＭ-Ｔ Ｅａsｙ Ｖｅｃｔｏｒ(Promega社製)と、Ｔ４リガーゼで１５℃、３０分間反応させ連結した。連結したＤＮＡを大腸菌ＤＨ５αのコンピテントセルに導入し，形質転換体のコロニーを得た。得られた形質転換体をアンピシリンを含むＬＢ培地(１８ｍＬ)で２４時間培養し、その培養液からプラスミドを改変アルカリＳＤＳ法で精製した。プラスミド中に期待される大きさのインサートが存在することを、図１に示すように、アガロース電気泳動で確認した。精製プラスミドのインサートの塩基配列は，ＢｉｇＤｙｅ Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ ｋｉｔ(登録商標：Applied Biosystems社製)とＡＢＩ ＰＲＩＳＭ ３７００ ＤＮＡ Ａｎａｌｙｚｅｒ(登録商標：Applied Biosystems社製)を用いて決定し、インサートの塩基配列が耐熱性シスタチオニン-γ-シンターゼ遺伝子の正しい配列であることを確認した。正しい配列を有するプラスミドの一部を制限酵素ＮｄｅＩとＢａｍＨＩで完全分解(３７℃で２時間)した後、アガロース電気泳動により、耐熱性シスタチオニン-γ-シンターゼの構造遺伝子を精製した。ｐＥＴ-１１ａ(Novagen社製)を制限酵素ＮｄｅＩとＢａｍＨＩで切断・精製した後、上記の構造遺伝子とＴ４リガーゼで反応させ連結した。連結したＤＮＡの一部を大腸菌ＤＨ５αのコンピテントセルに導入し、アンピシリンを含むＬＢ寒天プレートに適量まき、３７℃で一晩培養し、形質転換体のコロニーを得た。得られた形質転換体をアンピシリンを含むＬＢ培地(１８ｍＬ)で２４時間培養し、その培養液から発現プラスミドを改変アルカリＳＤＳ法で精製した。
２．組換え遺伝子の発現
大腸菌 Ｒｏｓｅｔｔａ-ｇａｍｉ(ＤＥ３)(Novagen社製)のコンピテントセルを融解して、ファルコンチューブに０．１ｍＬ移した。その中に上記１．の精製発現プラスミドの溶液０．００２ｍＬを加え氷中に２０分間放置した後、４２℃でヒートショックを９０秒間行い、氷中に1分間放置した後、クロラムフェニコールとアンピシリンを含むＬＢ寒天プレートに適量まき、３７℃で一晩培養し、形質転換体を得た。得られた形質転換体をアンピシリンを含むＬＢ培地(５ｍＬ)で18時間培養し、耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼ遺伝子を発現した。培養後、遠心分離（１３，０００Ｇ、１０分）で集菌した。
大腸菌 Ｒｏｓｅｔｔａ-ｇａｍｉ(ＤＥ３)(Novagen社製)のコンピテントセルを融解して、ファルコンチューブに０．１ｍＬ移した。その中に上記１．の精製発現プラスミドの溶液０．００２ｍＬを加え氷中に２０分間放置した後、４２℃でヒートショックを９０秒間行い、氷中に1分間放置した後、クロラムフェニコールとアンピシリンを含むＬＢ寒天プレートに適量まき、３７℃で一晩培養し、形質転換体を得た。得られた形質転換体をアンピシリンを含むＬＢ培地(５ｍＬ)で18時間培養し、耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼ遺伝子を発現した。培養後、遠心分離（１３，０００Ｇ、１０分）で集菌した。
集菌した菌体に，破砕液(２０ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ、１００ｍＭ ＫＣｌ、ｐＨ７．５)を０．２ｍＬ加え，超音波発生器で細胞を破砕し，その懸濁液を０．１ｍＬずつ２本のサンプルチューブに分けた。一方のサンプルチューブは遠心分離(１３，０００Ｇ、１０分)して上清と沈殿に分け，沈殿は破砕液 ０．１ｍＬで懸濁した。もう一方のサンプルチューブは，熱処理（７０℃，１０分）を施した後，遠心分離（１３，０００Ｇ、１０分）して上清と沈殿に分け，沈殿は破砕液０．１ｍＬで懸濁した。これらの試料の一部をＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＰＡＧＥ）で分析し，発現を確認できた。この結果を、図２のＳＤＳ−ＰＡＧＥの写真に示す。
耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼの発現が見られた試料についてＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動を行った後、エレクトロブロッティングによりＰＶＤＦ膜に転写し，染色によって可視化された目的組換えタンパク質である耐熱性シスタチオニン-γ-シンターゼのバンドを切り出し，プロテインシーケンサーＭｏｄｅｌ４９２Ｐｒｏｃｉｓｅ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）を用いて，アミノ末端配列を解析した結果、配列番号５に示すように１０残基のアミノ末端配列が決定できた。この配列により、発現タンパク質が耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼであることを確認できた。この発現タンパク質は、３７７アミノ酸残基より構成されており、その推定分子量は４１．６ｋＤであり、前記図２の結果とほぼ一致した。
組換え大腸菌の大量培養
実施例２と同様にして調製したプラスミドＤＮＡ（ｐＥＴ−１１ａベクター） を用いて、大腸菌ＤＨ５α株を常法に従い形質転換した。形質転換された大腸菌ＤＨ５αからアルカリＳＤＳ法を用いてプラスミドＤＮＡを抽出した。このプラスミドＤＮＡを用いて、大腸菌ロゼッタ・ガミ(Rosetta-Gami)（ＤＥ３）株を形質転換した。プレート上に生えてきたコロニーを３白金耳量とり、５ｍＬのＬＢＬ培地(１％ペプトン、０．５％酵母抽出液、０．５％ＮａＣｌ、０．１％ラクトース、５０μｇ／ｍＬアンピシリン、４０μｇ／ｍＬクロラムフェニコール)に植菌して、培養開始直前まで約６時間、３７℃で前培養した。この前培養液を全量、３Ｌの４×ＬＢＬ培地(４％ペプトン、２％酵母抽出液、 ２％ＮａＣｌ、５０μｇ／ｍＬアンピシリン)に加え、高密度培養槽(ABLE社製)にて３７℃、ｐＨ７．２、圧力０．０２Ｐａでコンピュータプログラム制御し、培養した。ｐＨは、オートクレーブ済みの２Ｍ ＨＣｌ(和光純薬社製)および２Ｍ ＮａＯＨ(和光純薬社製)で調整した。集菌約２１時間前および集菌約２１時間前にオートクレーブ済みの３００ｍＬ発現誘導液（１０％ラクトース、２０％グリセロール）を加えた。大腸菌の生育度が定常期に入ったところ（培養開始４５時間後）で大型遠心分離機(Beckman社製AvantiHP-30I)を用い集菌した。回収した菌体は、−３０℃で保存した。この時、菌体を少量、別に取り、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８）、５ｍＭ β-メルカプトエタノールに溶解・懸濁し、超音波破砕装置（TOMY社製UD-201）で破砕した。この溶液を２等分し、一方を９１００Ｇ 、４℃で１０分間、遠心分離し、上清と沈殿に分け、他方を７５℃に設定した恒温槽（TAITEC社製DryThermounit DTU-1C）で１０分間、加熱した後、９１００Ｇ 、４℃で１０分間、遠心分離し、上清と沈殿に分けた。これら４種の上清および沈殿（沈殿は、菌体破砕液にて再縣濁）に変性剤（６２．５ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ６．８）、１０％グリセロール、２％ＳＤＳ、２．４％β−メルカプトエタノール、０．００５％ ブロムフェノールブルー（和光純薬社製））を加え、９５℃で５分間加熱し、変性させた。これらの変性させたタンパク質溶液を１２．５％または１５％(発現させるタンパク質の分子量により異なる)ポリアクリルアミドゲルに加え、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにて電気泳動を行った。染色液(Quick-CBB、和光純薬社製)を用い、電気泳動後のゲルを染色・脱色し、目的タンパク質の発現を確認した。
実施例２と同様にして調製したプラスミドＤＮＡ（ｐＥＴ−１１ａベクター） を用いて、大腸菌ＤＨ５α株を常法に従い形質転換した。形質転換された大腸菌ＤＨ５αからアルカリＳＤＳ法を用いてプラスミドＤＮＡを抽出した。このプラスミドＤＮＡを用いて、大腸菌ロゼッタ・ガミ(Rosetta-Gami)（ＤＥ３）株を形質転換した。プレート上に生えてきたコロニーを３白金耳量とり、５ｍＬのＬＢＬ培地(１％ペプトン、０．５％酵母抽出液、０．５％ＮａＣｌ、０．１％ラクトース、５０μｇ／ｍＬアンピシリン、４０μｇ／ｍＬクロラムフェニコール)に植菌して、培養開始直前まで約６時間、３７℃で前培養した。この前培養液を全量、３Ｌの４×ＬＢＬ培地(４％ペプトン、２％酵母抽出液、 ２％ＮａＣｌ、５０μｇ／ｍＬアンピシリン)に加え、高密度培養槽(ABLE社製)にて３７℃、ｐＨ７．２、圧力０．０２Ｐａでコンピュータプログラム制御し、培養した。ｐＨは、オートクレーブ済みの２Ｍ ＨＣｌ(和光純薬社製)および２Ｍ ＮａＯＨ(和光純薬社製)で調整した。集菌約２１時間前および集菌約２１時間前にオートクレーブ済みの３００ｍＬ発現誘導液（１０％ラクトース、２０％グリセロール）を加えた。大腸菌の生育度が定常期に入ったところ（培養開始４５時間後）で大型遠心分離機(Beckman社製AvantiHP-30I)を用い集菌した。回収した菌体は、−３０℃で保存した。この時、菌体を少量、別に取り、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８）、５ｍＭ β-メルカプトエタノールに溶解・懸濁し、超音波破砕装置（TOMY社製UD-201）で破砕した。この溶液を２等分し、一方を９１００Ｇ 、４℃で１０分間、遠心分離し、上清と沈殿に分け、他方を７５℃に設定した恒温槽（TAITEC社製DryThermounit DTU-1C）で１０分間、加熱した後、９１００Ｇ 、４℃で１０分間、遠心分離し、上清と沈殿に分けた。これら４種の上清および沈殿（沈殿は、菌体破砕液にて再縣濁）に変性剤（６２．５ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ６．８）、１０％グリセロール、２％ＳＤＳ、２．４％β−メルカプトエタノール、０．００５％ ブロムフェノールブルー（和光純薬社製））を加え、９５℃で５分間加熱し、変性させた。これらの変性させたタンパク質溶液を１２．５％または１５％(発現させるタンパク質の分子量により異なる)ポリアクリルアミドゲルに加え、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにて電気泳動を行った。染色液(Quick-CBB、和光純薬社製)を用い、電気泳動後のゲルを染色・脱色し、目的タンパク質の発現を確認した。
組換えタンパク質の精製
実施例３において、−３０℃で保存してあった菌体を、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８）、５ｍＭ β−メルカプトエタノールに溶解・懸濁し、超音波破砕装置（TOMY社製UD-201）で破砕し、７５℃に設定した恒温槽（TAITEC社製、DryThermoUnit DTU-1C）で、１０分間、加熱した後、すばやく冷却した。次に、この破砕菌体液を大型遠心分離機（Beckman社製Avanti HP-30I）を用いて、１００，０００Ｇで１時間、遠心分離し、上清を回収した。
実施例３において、−３０℃で保存してあった菌体を、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８）、５ｍＭ β−メルカプトエタノールに溶解・懸濁し、超音波破砕装置（TOMY社製UD-201）で破砕し、７５℃に設定した恒温槽（TAITEC社製、DryThermoUnit DTU-1C）で、１０分間、加熱した後、すばやく冷却した。次に、この破砕菌体液を大型遠心分離機（Beckman社製Avanti HP-30I）を用いて、１００，０００Ｇで１時間、遠心分離し、上清を回収した。
次に、この上清をタンパク質精製装置（Amersham Biosciences社製、AKTA explorer）を用いて、１．５Ｍ 硫安、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、５ｍＭ β−メルカプトエタノールの緩衝溶液に置換した後、疎水交換カラム(Amersham Biosciences 社製, RESOURCETM Phe 6ml)に通した。１．５Ｍ→０の硫安濃度勾配で溶出させ、各画分をSDS-PAGEにて確認し、目的タンパク質の画分を回収した。
次に、回収した画分を２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、５ｍＭ β−メルカプトエタノールの緩衝溶液に置換した後、陰イオン交換カラム（Amersham Biosciences社製、RESOURCETM Q ６ｍｌ）に通した。塩化ナトリウムで溶出を行い、溶出してきた各画分をＳＤＳ−ＰＡＧＥにて確認し、目的タンパク質の画分を回収した。
次に、回収した画分を１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．０、５ｍＭ β−メルカプトエタノールの緩衝溶液に置換した後、遠心濃縮チューブ（ミリポア社製VIVASPIN10000）を用いて遠心分離して濃縮し、活性測定に供した。
活性測定
１．測定方法
以下に、実施例４において精製したタンパク質によるγ−脱離反応を、下記に示す種々の条件下、乳酸デヒドロゲナーゼ（以下、ＬＤＨ）カップリングアッセイ系を用いることにより測定した。この測定方法は、つぎのとおりである。すなわち、まず、１２．５μＭのピリドキサル５’−リン酸 (PLP)（Ｓｉｇｍａ社製）と、１．２５ｍＭのＯ−サクシニル−Ｌ−ホモセリン(OSHS) （Ｓｉｇｍａ社製）と、２．１μＭの実施例４において精製したタンパク質とを含む５０ｍＭの緩衝溶液（後述のとおり、各測定によって種類が異なる）２５０μＬを１０分間反応させた後、２４．６％のトリクロロ酢酸を５０μＬ加えて５分間室温で保持することにより反応を停止した。その後、ＮａＯＨを加えることにより溶液を中和し、３ｍＭのＮＡＤＨとＬＤＨを加え、生成物である２−オキソ酪酸の還元反応を行った。この溶液の３４０ｎｍの吸光度を定量することにより、反応の進行度（実施例４において精製したタンパク質の活性に対応する）を観測した。進行度の指標として見かけの速度定数ｋａｐｐを用いた。前記ＬＤＨカップリング系の反応を下記に示す。
１．測定方法
以下に、実施例４において精製したタンパク質によるγ−脱離反応を、下記に示す種々の条件下、乳酸デヒドロゲナーゼ（以下、ＬＤＨ）カップリングアッセイ系を用いることにより測定した。この測定方法は、つぎのとおりである。すなわち、まず、１２．５μＭのピリドキサル５’−リン酸 (PLP)（Ｓｉｇｍａ社製）と、１．２５ｍＭのＯ−サクシニル−Ｌ−ホモセリン(OSHS) （Ｓｉｇｍａ社製）と、２．１μＭの実施例４において精製したタンパク質とを含む５０ｍＭの緩衝溶液（後述のとおり、各測定によって種類が異なる）２５０μＬを１０分間反応させた後、２４．６％のトリクロロ酢酸を５０μＬ加えて５分間室温で保持することにより反応を停止した。その後、ＮａＯＨを加えることにより溶液を中和し、３ｍＭのＮＡＤＨとＬＤＨを加え、生成物である２−オキソ酪酸の還元反応を行った。この溶液の３４０ｎｍの吸光度を定量することにより、反応の進行度（実施例４において精製したタンパク質の活性に対応する）を観測した。進行度の指標として見かけの速度定数ｋａｐｐを用いた。前記ＬＤＨカップリング系の反応を下記に示す。
２．至適温度
４５、６０、７５、８８、９５℃の各温度において、前記測定を行い、ｋａｐｐを求めた。緩衝溶液には、N, N’-Bis(2-hydroxyethyl)glycine (Bicine)（ｐＨ８．２）（ナカライテスク社製）を用いた。測定結果を、図３のグラフに示す。図示のとおり、７５〜８５℃において最大活性を示した。
４５、６０、７５、８８、９５℃の各温度において、前記測定を行い、ｋａｐｐを求めた。緩衝溶液には、N, N’-Bis(2-hydroxyethyl)glycine (Bicine)（ｐＨ８．２）（ナカライテスク社製）を用いた。測定結果を、図３のグラフに示す。図示のとおり、７５〜８５℃において最大活性を示した。
３．熱安定性
前記測定に先立ち、２．１μＭの実施例４において精製したタンパク質を、７５℃および９５℃で、０．５、１、１．５、２、２．５、３時間前処理した。前記前処理物を用いて、前記測定を行い、ｋａｐｐを求めた。緩衝溶液には、N, N’-Bis(2-hydroxyethyl)glycine (Bicine)（ｐＨ８．２）（ナカライテスク社製）を用い、反応温度は、７５℃とした。なお、前処理時間０時間は、前処理を行っていないものである。測定結果を、図４のグラフに示す。図示のとおり、前処理を行うことで、活性の低下は見られるものの、完全に活性を失うことはないことが分かった。
前記測定に先立ち、２．１μＭの実施例４において精製したタンパク質を、７５℃および９５℃で、０．５、１、１．５、２、２．５、３時間前処理した。前記前処理物を用いて、前記測定を行い、ｋａｐｐを求めた。緩衝溶液には、N, N’-Bis(2-hydroxyethyl)glycine (Bicine)（ｐＨ８．２）（ナカライテスク社製）を用い、反応温度は、７５℃とした。なお、前処理時間０時間は、前処理を行っていないものである。測定結果を、図４のグラフに示す。図示のとおり、前処理を行うことで、活性の低下は見られるものの、完全に活性を失うことはないことが分かった。
４．至適ｐＨ
ｐＨ５．８９、６．１４、６．５５、６．９９、７．４、７．８７、８．４２、８．８７、９．３７の各条件で、前記測定を行い、ｋａｐｐを求めた。緩衝溶液には、ｐＨ５．８９ではＭＥＳ（同仁堂社製）を、ｐＨ６．１４、６．５５、６．９９、７．４ではＴｒｉｓ（ナカライテスク社製）−ＨＣｌを、ｐＨ７．８７、８．４２、８．８７、９．３７ではＮａＨＣＯ３（和光純薬社製）−ＮａＯＨ（ナカライテスク社製）を用い、反応温度は、７５℃とした。測定結果を、図５のグラフに示す。図示のとおり、アルカリ性領域では活性の低下が見られたが、酸性領域では比較的安定な活性を示した。
ｐＨ５．８９、６．１４、６．５５、６．９９、７．４、７．８７、８．４２、８．８７、９．３７の各条件で、前記測定を行い、ｋａｐｐを求めた。緩衝溶液には、ｐＨ５．８９ではＭＥＳ（同仁堂社製）を、ｐＨ６．１４、６．５５、６．９９、７．４ではＴｒｉｓ（ナカライテスク社製）−ＨＣｌを、ｐＨ７．８７、８．４２、８．８７、９．３７ではＮａＨＣＯ３（和光純薬社製）−ＮａＯＨ（ナカライテスク社製）を用い、反応温度は、７５℃とした。測定結果を、図５のグラフに示す。図示のとおり、アルカリ性領域では活性の低下が見られたが、酸性領域では比較的安定な活性を示した。
なお、緩衝溶液にグリシン溶液を用いて、前記測定を行ったところ、γ−脱離反応が全く見られなくなった。この現象の原因として考えられるのは、グリシンが阻害剤として働いたことである。この理由としては、グリシン構造が ＯＳＨＳ のホモセリン部分の構造と類似しており、今回の測定に緩衝溶液として用いたグリシン濃度が５０ｍＭであり、基質として用いたＯＳＨＳの濃度１．２５ｍＭと比較すると大過剰であったことがあげられる。なお、これは本発明者の推察であり、この推察によって本発明は限定的に解釈されることはない。
本発明により、シスタチオニン−γ−シンターゼ活性を有する新規耐熱性タンパク質が提供できる。本発明のタンパク質は、高温下で使用することが可能であり、工業的用途が広がると共に、基質濃度の増加、反応効率の向上、混入微生物の除去、保存期間および耐用期間の延長などの多くの利点がもたらされる。
配列番号１：耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼのアミノ酸配列
配列番号２：耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼの塩基配列
配列番号３：耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼの構造遺伝子の末端に制限酵素部位ＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩ、ＮｏｔＩを導入するための順方向プライマーを示す。
配列番号４：耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼの構造遺伝子の末端に制限酵素部位ＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩ、ＮｏｔＩを導入するための逆方向プライマーを示す。
配列番号５：Ｎ末端アミノ酸配列
配列番号２：耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼの塩基配列
配列番号３：耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼの構造遺伝子の末端に制限酵素部位ＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩ、ＮｏｔＩを導入するための順方向プライマーを示す。
配列番号４：耐熱性シスタチオニン−γ−シンターゼの構造遺伝子の末端に制限酵素部位ＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩ、ＮｏｔＩを導入するための逆方向プライマーを示す。
配列番号５：Ｎ末端アミノ酸配列
Claims (2)
- 酵素反応により、Ｏ−サクシニル−Ｌ−ホモセリン及びＬ−システインからシスタチオニン及びコハク酸を製造する方法であって、超好熱性古細菌スルホロブス・トコダイイ(Sulfolobus tokodaii)（JCM１０５４５）由来の下記（ａ）又は（ｂ）の耐熱性タンパク質を用い、温度７５〜８５℃、ｐＨ６．５〜７．５の条件で前記酵素反応を行うことを含む、製造方法。
（ａ）配列番号１のアミノ酸配列からなる耐熱性タンパク質。
（ｂ）配列番号１のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸残基が、欠失、置換、付加若しくは挿入されたアミノ酸配列からなり、シスタチオニン−γ−シンターゼ活性を有する耐熱性タンパク質。 - 酵素反応により、ピリドキサル５’−リン酸(PLP)の存在下、Ｏ−サクシニル−Ｌ−ホモセリンから、２−オキソ酪酸を製造する方法であって、超好熱性古細菌スルホロブス・トコダイイ(Sulfolobus tokodaii)（JCM１０５４５）由来の下記（ａ）又は（ｂ）の耐熱性タンパク質を用い、温度７５〜８５℃、ｐＨ６．５〜７．５の条件で前記酵素反応を行うことを含む、製造方法。
（ａ）配列番号１のアミノ酸配列からなる耐熱性タンパク質。
（ｂ）配列番号１のアミノ酸配列において、１又は数個のアミノ酸残基が、欠失、置換、付加若しくは挿入されたアミノ酸配列からなり、シスタチオニン−γ−シンターゼ活性を有する耐熱性タンパク質。
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