JP4130179B2 - 骨髄腫を処置するためのc−kit阻害剤の使用 - Google Patents
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Description
rは0〜2であり;
nは0〜2であり;
mは0〜4であり;
R1およびR2は
(i)低級アルキルであるか、または
(ii)一緒になって部分構造式I*:
で示され、末端炭素原子2個を介して結合を達成する架橋構造を形成するか、または
(iii)一緒になって部分構造式I**:
[式中、環を構成する残基T1、T2、T3およびT4の1個または2個は窒素であり、他はいずれの場合もCHであり、この結合はT1およびT4を介して達成される]
で示される架橋構造を形成し;
Gは低級アルキレン、アシルオキシまたはヒドロキシで置換された低級アルキレン、−CH2−O−、−CH2−S−、−CH2−NH−、オキサ(−O−)、チア(−S−)またはイミノ(−NH−)であり;
Qは低級アルキルであり;
RはHまたは低級アルキルであり;
Xはイミノ、オキサまたはチアであり;
Yは非置換または置換のアリール、ピリジルまたは非置換または置換のシクロアルキルであり;そして
Zはアミノ、モノ置換またはジ置換のアミノ、ハロゲン、アルキル、置換アルキル、ヒドロキシ、エーテル化またはエステル化されたヒドロキシ、ニトロ、シアノ、カルボキシ、エステル化されたカルボキシ、アルカノイル、カルバモイル、N−モノ置換またはN,N−ジ置換のカルバモイル、アミジノ、グアニジノ、メルカプト、スルホ、フェニルチオ、フェニル−低級アルキルチオ、アルキルフェニルチオ、フェニルスルホニル、フェニル−低級アルキルスルフィニルまたはアルキルフェニルスルフィニルであり、ここに置換基Zが1個を超えて存在するならば、相互に同一であるかまたは相違し;
および波線で示される結合があれば一重結合または二重結合のいずれかであり;または
該化合物のN−オキシドはN原子の1個またはそれ以上が酸素原子を有する。]
で示されるc−kit阻害剤またはそのc−kit阻害剤に塩形成基が少なくとも1個あるならばその塩、の使用に関する。
を加え、細胞を5時間に下室まで遊走させる。VEGFもCD40(○)も入れない下室は対照として用いる。遊走した細胞をBeckman Coulterカウンターで計数し、遊走係数を下記実施例2に記載のようにして算出する。本実験は三重に行い、標準偏差のバーを示す。
の存在下でインキュベーションした。
これに加え、HUVE細胞を
に接触させる。[3H]−dTの取込み百分率を標準品と比べて増殖を測定する。本実験は三重に行い、標準偏差バーを記載する。
RPMI8226およびU266ヒトMM細胞系統はアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(ATCC;Rockville, MD)から入手する。患者由来のMM細胞はY.T. Tai, G. Teoh, Y. Shima et al, J. Immunol. Methods 235:11, 2000に記載のようにして患者のBMサンプルから精製する。ヒトMM細胞系統はすべて10%ウシ胎児血漿(FBS)、L−グルタチオン(L-glut, GIBCO, Grand Island, NY)2mmol/L、ペニシリン100U/mLおよびストレプトマイシン100mg/mL(P/S、GIBCO)添加RPMI−1640培地(Sigma Chemical, St. Louis, MO)中で培養する。MM患者の細胞では、>=95%がCD38+、CD45RA−である。骨髄間質細胞(BMSC)はMM患者ならびに健康なドナーの吸引物からD. Gupta, S. Treon, Y. Shima et al, Leukemia, 2001およびS. Gartner, H.S. Kaplan in Proc. Natl. Acad. Sci. U S A 77:4756, 1980に記載のようにして調製する。細胞は20%FBS、L−glut2mmol/L、およびP/S100μg/mL添加ISCOVE修正ダルベッコ培地で培養する。ヒト臍帯静脈内皮細胞(HUVEC・P168)はClonetics, Biowhittakerから購入し、EGM−2MV培地(Clonetics, Biowhittaker)中に維持する。PTK787はジメチルスルホキシド(DMSO; Sigma)に溶解し、使用するまで−20℃で100mM−ストック溶液として貯蔵する。全ての検定で化合物は0.01μMから100μMまでの範囲の濃度まで培養用培地で希釈する。全ての検定でDMSO濃度を0.1%まで希釈する。
MM細胞を2%FBS添加RPMI中で12時間スターブし、次にFBS不含RPMI−1640中で、PTK787またはDMSO対照の存在下に1時間インキュベーションする。続いてこの細胞をK. Podar, Y.T. Tai, et al in Blood 98:428, 2001の記載に従って100nM−VEGF165で刺激する。次に細胞を1mM−PMSF、1mM−バナジン酸ナトリウムおよびProtease inhibitor cocktail(Boehringer Mannheim)添加RIPA緩衝液中で溶解する。溶解物をドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル(SDS−PAGE)で直接分析するか、またはFlt−1に対する抗体(Ab)ならびにプロテインG・プラス−アガロース(共にSanta Cruz Biotechnology, CA、製品)と共に一夜インキュベーションする。全細胞溶解物(レーン当り30μg)または免疫沈澱物を8%〜10%SDS−PAGEゲルで分析し;Hybond C Super paper(Amersham, Arlington Heights, IL)に移す;次にホスホ−ERKに対するマウスMoAb、ホスホ−チロシン残基に対するマウスMoAb、またはFlt−1またはERK2に対するAbs(Santa Cruz)でプローブし;およびHRP−複合抗マウスまたは抗ウサギAb(共にSanta Cruz)および強化化学発光(ECL)基質溶液(Amersham)を使用して検出して証明する。
MM細胞を最初に2%FBS添加RPMI−1640培地中で12時間スターブし、次に薬剤またはDMSO対照の存在下に96ウェルマイクロタイタープレート(Costar, Cambridge, MA)に塗布する。実験はまたVEGF165(R and D Systems)の存在下または不在下にも行う。増殖は[3H]−チミジン(NEN Products, Boston, MA)の取り込みによって測定する。特定的には、細胞を48時間培養の最後の6時間に[3H]−チミジン(0.5μCi/ウェル)でパルスし、automatic cell harvester(Cambridge Technology, Cambridge, MA)を用いてガラスフィルター上に収集し、LKB Betaplateシンチレーションカウンター(Wallac, Gaithersburg, MD)を使用してカウントする。細胞生存率の測定はCellTiter96 AQueous One Solution Reagent(Promega, Madison, WI)を利用するMTS検定によって比色的に行う。細胞を48時間培養の最後の2時間にMTSと接触させ、ELISA plate reader(Molecular Devices Corp., Sunnyvale, CA)を用いて570nmにおけるODを測定して吸光度を測定する。
MM細胞(1×106細胞)を薬剤またはDMSO対照の存在下に24、48および72時間培養する。次に細胞を燐酸緩衝食塩水(PBS)で洗浄し、70%エタノールで固定し、RNAse(Sigma)で処理する。次に細胞をヨウ化プロピジウム(PI、5μg/mL)で染色し、Epics flow cytometer(Coulter Immunology, Hialeah, FL)を用いるMソフトウェアで細胞周期の特徴を判定する。
VEGF受容体(Flt−1、Flt−4、KDR)およびc−kitをRT−PCRにより検出するために、RNeasy Mini-kit(Qiagen, Valencia, CA)を用いて細胞系統から全RNAを抽出する。RT−PCRは全RNA5μgおよび正方向および逆方向プライマー各50pMを用いてthermal cycler(MJ Research, Watertown, MA)で行う。RNAはPlatinum Taq(Life Technologies, Gaithersburg, MD)を用いるSuperscript One-Step RT-PCRで30サイクル以上にわたって増幅する。Flt−1、KDRおよびFlt−4を検出するプライマーは各々 R. Masood, J. Cai, et al in Proc. Natl. Acad. Sci. U S A 94:979, 1997; S. Dias, K. Hattori, et al, in J. Clin. Invest. 106:511, 2000;およびE. Fournier, P. Dubreuil, et al in Oncogene 11:921, 1995の記載に従って使用する。GADPHの発現はRNAサンプルの品質を測定するための対照として用いる。RNAサンプルがDNAで汚染されていないことを確認するために、精製RNAを適当なプライマーおよび逆転写酵素不含Taqポリメラーゼとともにインキュベーションする。
PCR産物の分析は、Flt−1がMM細胞系統(MM.1R、MM.1S、RPMI8226およびU266)ならびに血漿血球白血病(PCL)患者由来の腫瘍細胞で発現されることを証明する。c−kitmRNAの発現は全てのMM細胞系統に検出できる。対照的に、KDRはいずれのMM細胞系統にも発現されない。また、Flt−4はMM.1SおよびMM.1R細胞にのみ発現される。
遊走検定をポアサイズ8μm挿入物と24ウェルプレートを用いて修正Boyden chamber systemで行う。検定前に、上室と下室をフィブロネクチン(10μg/mL)で被覆する。MM.1S細胞を検定前に6時間2%RPMI培地でスターブし、次に薬剤またはDMSO対照で4時間処理する。次にMM細胞(2×106細胞/mL)をトランスウェルシステムの上室に入れる。下室にRPMI(1%FBS)、0ng/mLまたは10ng/mLのVEGF165、またはCD40に対する活性化MoAb(10ng/mL)を加える。次にプレートを37℃で6時間インキュベーションし、下室の細胞を収集する。生存遊走細胞数はBeckman Coulterカウンターを用いてゲートし、測定する。遊走係数は細胞の遊走を対照と比較して算出する。本明細書では遊走係数をサンプル内生存遊走細胞(薬剤不在下または薬剤存在下、および±VEGF)百分率を対照内生存遊走細胞(無薬剤、無VEGF)百分率で割った商と定義する。
VEGFはMM.1S細胞の遊走を3.4倍(p=0.001)増強すること、およびこの反応が1μM−PTK787(p=0.002)(図1)によって減少することが観察される。PTK787(5μMおよび10μM)濃度がさらに高いとベースラインならびにVEGF誘発MM.1S細胞遊走の両方を低下させる。対照的に、PTK787はCD40が誘発するMM.1S細胞の遊走を有意に阻害しない。
BMSC(1×104細胞/ウェル)を96ウェルマイクロタイタープレートに塗布し、ISCOVE培地(20%FBS)中、37℃で24時間インキュベーションする。次にMM細胞を薬剤またはDMSO対照の存在下にBMSC含有ウェル(5×104細胞/ウェル)に加える。MM.1S細胞を使用する時は、BMSCとMM細胞との双方を2%FBS添加RPMI−1640培地中で12時間スターブする。患者PCL細胞を使用する時は、10%FBS添加RPMI培地中で共培養を行う。BMSCおよびMM細胞は個別に培養して対照とする。48時間後、増殖および細胞生存率を前記のようにして分析する。増殖検定のために全ての細胞が捕集されることを確認するために、収集の10分前に10×トリプシン(Sigma)を各ウェルに加える。
増殖は0.4mmポアサイズ挿入物入り24ウェルプレート(Costar)を使用して修正Boyden chamberトランスウェルシステムで測定する。BMSC(4×104細胞/ウェル)を下室に塗布し、スターブし、前記のように薬剤中でインキュベーションする。次にMM細胞(20×104細胞/mL)を上室に入れ(注入)、48時間後に各室への[3H]−チミジン取り込みを前記のように測定する。
図2〜図4に示すように、PTK787はMM.1S細胞、Dex−耐性MM.1R細胞、RPMI、患者血球白血病(PCL)および患者MM細胞の増殖を用量依存性に減少する。VEGF(50ng/mL)は有意ではないがMM増殖の増加を中庸に刺激する。試験した殆どのMM細胞系統に対するPTK787のIC50は1〜5μMの間である。HUVE細胞に対するPTK787のIC50は0.1〜1μMの間である。
MM.1S細胞をトランスウェル共培養システムの上室に入れて、MM細胞とBMSCとの間の直接的接触は妨害されるが、体液性因子の拡散が可能になるようにする。両細胞型の間に接触がないに拘らず、BMSCとインキュベーションしたMM.1S細胞による[3H]−dTの取り込みは48時間で約2.2倍(p<0.0001)増加する。対照的に、この共培養システムではBMSCは[3H]−dT取り込みの有意な増加を示さない。PTK787(5μM)をこのシステムで使用する時には、MM.1S細胞の増殖は62%(p<0.001)低下する。
MM.1S細胞をデキサメタゾン(0.1または1μM)、PTK787(5μM)、IL−6(20および100ng/mL)およびVEGF(50ng/mL)の存在下または不在下に1%RPMI中で24時間インキュベーションする。デキサメタゾンおよびPTK787はMM.1S細胞の増殖を24時間で各々58%(p<0.001)および35% p<0.001)阻害し、その生存率を各々83% (p<0.001)および46%(p<0.001)低下させる。IL−6はMM.1Sの増殖をDMSO対照に比べて17%増強(p<0.002)し、およびMM.1S細胞をデキサメタゾンから保護する(IL−6存在下16%阻害;IL−6不在下70.5%阻害、p<0.001)。予めPTK787に接触させた細胞にIL−6を加えると、MM.1Sの増殖をさらに阻害(64.7%対39.3%、p<0.001)し、細胞死を増加(54%対65%、p<0.01)する。これに加え、PTK787とデキサメタゾンの配合剤は、増殖を促進し、ならびにデキサメタゾンが誘導するアポトーシスからMM.1S細胞の保護する、IL−6の性能を完全に阻止する。これらの効果はデキサメタゾン濃度0.1〜1μMで認められた。さらに高濃度(100ng/mL)のIL−6でさえ、デキサメタゾンとPTK787との配合剤によるMM.1S細胞の増殖阻害を低下させない。
MM.1S細胞とBMSCとの共培養物から得た上清液を48時間に分離し、IL−6濃度をELISA検定で測定する。MM細胞とBMSCとの共培養物中ではBMSC単独の培養物と比較してIL−6濃度が上昇する(7.9倍、p<0.001)。MM.1S細胞からのIL−6分泌は検出限界以下である。PTK787を共培養システムに加えると、接着MM細胞の増殖低下に関連してIL−6濃度が有意に(70%)低下する。トリパンブルー排除およびMTS検定で分析したBMSC生存率は高く(95%)維持されており、PTK787がBMSCを殺さずにIL−6の分泌を低下することを示唆する。
MM.1S細胞または患者PCL細胞をBMSCと共培養すると腫瘍細胞の増殖をBMSCとMM細胞単独との組合せに比較して約1.8倍〜2.8に倍増大する。PTK787(5μM)をこの共培養システムに添加すると、MM.1S細胞および患者PCL細胞の両者の増殖が対照と比較して約75%(p<0.0001)も低下する。この効果はBMSCが正常ドナー由来であっても患者BM由来であっても観察される。
1)PTK787(1〜5μM)はMM細胞系統の増殖を阻止する。PTK787はVEGFの存在下または不在下のいずれでも増殖を阻害し;
2)VEGFが誘導するMM.1S細胞の遊走は1μM−濃度のPTK787によってベースライン水準まで効果的に低下し;
3)デキサメタゾンおよびPTK787は独立にMM.1S細胞の増殖を阻害するが、その阻害効果は少なくとも相加的であり;
4)重要なことは、PTK787はIL−6がMM細胞増殖を刺激する効果を克服することであり、PTK787は高IL−6濃度(100ng/mL)の場合でさえ、デキサメタゾンがMM細胞に誘発するアポトーシスに対してIL−6が誘導する耐性を克服できることであり;
5)PTK787は、BMSCとの共培養でのMM細胞増殖の増加を阻止する。PTK787が共培養システムでMM細胞の増殖を阻害できるという事実は、この薬剤がMM細胞のBMSCへの付着によって与えられる保護を克服できることを示唆する。
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- 1−(4−クロロアニリノ)−4−(4−ピリジルメチル)フタラジンまたはその塩を有効成分とする骨髄腫処置用医薬。
- 骨髄腫が通常の化学療法に抵抗性である、請求項1に記載の医薬。
- 骨髄腫が多発性骨髄腫である、請求項1または2に記載の医薬。
- デキサメタゾンと併用される、請求項1〜3のいずれかに記載の医薬。
- 併用が、同時的、個別的または逐次的である、請求項4に記載の医薬。
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