JP3880473B2 - （メチルスルファニル）フェノキシ構造を側鎖に有するユニットを含む新規なポリヒドロキシアルカノエート及びその製造方法 - Google Patents
（メチルスルファニル）フェノキシ構造を側鎖に有するユニットを含む新規なポリヒドロキシアルカノエート及びその製造方法 Download PDFInfo
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Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、新規な構成ユニットを含むポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）と、その製造方法に関する。より具体的には、側鎖末端に（メチルスルファニル）フェノキシ基を有する３−ヒドロキシアルカン酸ユニットを含む新規な生分解性ＰＨＡ及び、ＰＨＡを生産し菌体内に蓄積する能力を有する微生物を利用し、末端に（メチルスルファニル）フェノキシ基を置換基として有するアルカン酸を原料とする、前記ＰＨＡを製造する方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
これまで、多くの微生物がポリ−３−ヒドロキシ酪酸（以下、ＰＨＢと略す）あるいはその他のＰＨＡを生産し、菌体内に蓄積することが報告されてきた（「生分解性プラスチックハンドブック」，生分解性プラスチック研究会編，（株）エヌ・ティー・エス，Ｐ１７８−１９７（１９９５））。これらのポリマーは、従来のプラスチックと同様に、溶融加工等により各種製品の生産に利用することができる。更に、生分解性であるがゆえに、自然界で微生物により完全に分解されるという利点を有していることから、従来の多くの合成高分子化合物のように自然環境に残留して汚染を引き起こすことがない。また、生体適合性にも優れており、医療用軟質部材料等としての応用も期待されている。
【０００３】
このように微生物産生ＰＨＡは、その生産に用いる微生物の種類や培地組成、培養条件等により、様々な組成や構造のものとなり得ることが知られており、これまで主に、ＰＨＡの物性の改良という観点から、このような組成や構造の制御に関する研究がなされてきた。例えば、アルカリゲネス・ユウトロファスＨ１６株（Ａｌｃａｌｉｇｅｎｅｓ ｅｕｔｒｏｐｕｓ Ｈ１６、ＡＴＣＣ Ｎｏ．１７６９９）及びその変異株は、その培養時の基質を変化させることによって、３−ヒドロキシ酪酸（以下、３ＨＢと略す）と３−ヒドロキシ吉草酸（以下、３ＨＶと略す）との共重合体を様々な組成比で生産することが報告されている（特公平６−１５６０４号公報、特公平７−１４３５２号公報、特公平８−１９２２７号公報等）。
【０００４】
また、特許公報第２６４２９３７号には、シュードモナス・オレオボランス・ＡＴＣＣ ２９３４７株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｏｌｅｏｖｏｒａｎｓ ＡＴＣＣ ２９３４７）に基質として非環状脂肪族炭化水素を与えることにより、炭素数６から１２までの３−ヒドロキシアルカノエートをモノマーユニットとするＰＨＡを生産することが開示されている。
【０００５】
特開平５−７４９２号公報には、メチロバクテリウム属（Ｍｅｔｈｙｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．）、パラコッカス属（Ｐａｒａｃｏｃｃｕｓ ｓｐ．）、アルカリゲネス属（Ａｌｃａｌｉｇｅｎｅｓ ｓｐ．）、シュードモナス属（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｐ．）の微生物を、炭素数３から７の第一級アルコールに接触させることにより、３ＨＢと３ＨＶとの共重合体を生産させる方法が開示されている。
【０００６】
特開平５−９３０４９号公報、及び特開平７−２６５０６５号公報には、アエロモナス・キャビエ（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ ｃａｖｉａｅ）をオレイン酸やオリーブ油を基質として培養することにより、３ＨＢと３−ヒドロキシヘキサン酸との二成分共重合体を生産することが開示されている。
【０００７】
特開平９−１９１８９３号公報には、コマモナス・アシドボランス・ＩＦＯ １３８５２株（Ｃｏｍａｍｏｎａｓ ａｃｉｄｏｖｏｒａｎｓ ＩＦＯ １３８５２）が、基質としてグルコン酸及び１，４−ブタンジオールを用いた培養により、３ＨＢと４−ヒドロキシ酪酸とをモノマーユニットに持つポリエステルを生産することが開示されている。
【０００８】
更に、ある種の微生物では、様々な置換基、例えば、不飽和炭化水素、エステル基、アリル基、シアノ基、ハロゲン化炭化水素、エポキシドなどが導入されたＰＨＡを生産することが報告されており、このような手法によって微生物産生ＰＨＡの物性改良を目指す試みもなされている。例えば、Ｍａｋｒｏｍｏｌ．Ｃｈｅｍ．，１９１，１９５７−１９６５， （１９９０）、Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，２４，５２５６−５２６０， （１９９１）、Ｃｈｉｒａｌｉｔｙ，３，４９２−４９４， （１９９１）等では、シュードモナス・オレオボランスが３−ヒドロキシ−５−フェニル吉草酸（以下、３ＨＰＶと略す）をモノマーユニットをして含むＰＨＡを生産することが報告されており、３ＨＰＶが含まれることに起因すると思われる、ポリマー物性の変化が認められている。
【０００９】
また、置換基を側鎖に導入したＰＨＡのうち、近年フェノキシ基を側鎖に有するＰＨＡの開発が盛んである。
【００１０】
Ｍａｃｒｏｍｏｌ．Ｃｈｅｍ．Ｐｈｙｓ．， １９５，１６６５−１６７２ （１９９４）には、シュードモナス・オレオボランス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓｏｌｅｏｖｏｒａｎｓ）が、１１−フェノキシウンデカン酸から３−ヒドロキシ−５−フェノキシ吉草酸ならびに３−ヒドロキシ−９−フェノキシノナン酸をユニットとして含むＰＨＡを生産することが報告されている。
【００１１】
Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ， ２９，３４３２−３４３５ （１９９６）には、シュードモナス・オレオボランス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｏｌｅｏｖｏｒａｎｓ）を用いて、６−フェノキシヘキサン酸から、３−ヒドロキシ−４−フェノキシ酪酸と３−ヒドロキシ−６−フェノキシヘキサン酸をユニットとして含むＰＨＡを、８−フェノキシオクタン酸から、３−ヒドロキシ−４−フェノキシ酪酸、３−ヒドロキシ−６−フェノキシヘキサン酸及び３−ヒドロキシ−８−フェノキシオクタン酸をユニットとして含むＰＨＡを、１１−フェノキシウンデカン酸から、３−ヒドロキシ−５−フェノキシ吉草酸と３−ヒドロキシ−７−フェノキシヘプタン酸をユニットとして含むＰＨＡを、それぞれ生産することが報告されている。
【００１２】
Ｃａｎ．Ｊ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．， ４１，３２−４３ （１９９５）には、シュードモナス・オレオボランス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｏｌｅｏｖｏｒａｎｓ）ＡＴＣＣ ２９３４７株及びシュードモナス・プチダ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｐｕｔｉｄａ）ＫＴ２４２２株を用いて、オクタン酸と６−（４−シアノフェノキシ）ヘキサン酸あるいは６−（ｐ−ニトロフェノキシ）ヘキサン酸を基質として、３−ヒドロキシ−６−（４−シアノフェノキシ）ヘキサン酸あるいは３−ヒドロキシ−６−（４−ニトロフェノキシ）ヘキサン酸をモノマーユニットとして含むＰＨＡを生産することが報告されている。
【００１３】
【発明が解決しようとする課題】
これら側鎖上に官能基を有するＰＨＡのうち、近年フェノキシ基を側鎖に有するＰＨＡの開発が盛んである。特にフェノキシ基の芳香環部分にフルオロ基、シアノ基、ニトロ基など、機能性置換基を導入したＰＨＡが数多く報告されているものの、上記したものに限られており、新たなる機能性置換基を導入したＰＨＡの報告はないのが現状である。
【００１４】
本発明の目的は、フェノキシ基の芳香環部分に、機能性置換基であるメチルスルファニル基を導入した新規なポリヒドロキシアルカノエート、及びその製造方法を提供することにある。
【００１５】
【課題を解決するための手段】
すなわち、本発明のポリヒドロキシアルカノエートは、下記一般式（１）：
【００１６】
【化１３】
【００１７】
（式中、ｘは、１〜８から選択される任意の整数を表し、ポリマー中において、一つ以上の値をとり得る）で示されるユニットをポリマー分子中に含むことを特徴とするポリヒドロキシアルカノエートである。
【００１８】
なお、本発明のポリヒドロキシアルカノエートは、前記一般式（１）で示されるユニットに加えて、
下記一般式（２）：
【００１９】
【化１４】
【００２０】
（式中、ｙは、０〜８から選択される任意の整数を表し、ポリマー中において、一つ以上の値をとり得る）で示される３−ヒドロキシアルカン酸ユニット、あるいは、下記一般式（３）：
【００２１】
【化１５】
【００２２】
（式中、ｚは、３および５から選択される任意の整数を表し、ポリマー中において、一つ以上の値をとり得る）で示される３−ヒドロキシアルカ−５−エン酸ユニットのうち、いずれか、或いは両方共を含んでいてもよい。また、そのポリマー分子の数平均分子量は、５０００〜３０００００の範囲である。
【００２３】
上記の構成を有する本発明のＰＨＡには、例えば、下記化学式（４）：
【００２４】
【化１６】
【００２５】
で示される３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含むことを特徴とするポリヒドロキシアルカノエートが含まれる。
【００２６】
また、本発明は、
下記一般式（５）：
【００２７】
【化１７】
【００２８】
（式中、ｘは、１〜８から選択される任意の整数を表し、一つ以上の値をとり得る）で示される化合物を少なくとも一種類以上含む培地中で、ポリヒドロキシアルカノエート産生能を有する微生物を培養する工程を有することを特徴とする、
下記一般式（１）：
【００２９】
【化１８】
【００３０】
（式中、ｘは、１〜８から選択される任意の整数を表し、ポリマー中において、一つ以上の値をとり得る）で示されるユニットを分子中に含むポリヒドロキシアルカノエートの製造方法である。
【００３１】
本発明の方法で製造されるポリヒドロキシアルカノエートは、前記一般式（１）で示されるユニットに加えて、
下記一般式（２）：
【００３２】
【化１９】
【００３３】
（式中、ｙは、０〜８から選択される任意の整数を表し、ポリマー中において、一つ以上の値をとり得る）で示される３−ヒドロキシアルカン酸ユニット、あるいは、下記一般式（３）：
【００３４】
【化２０】
【００３５】
（式中、ｚは、３および５から選択される任意の整数を表し、ポリマー中において、一つ以上の値をとり得る）で示される３−ヒドロキシアルカ−５−エン酸ユニットのうち、いずれか、或いは両方共を含んでいてもよい。
【００３６】
また、本発明のＰＨＡの製造方法における培養工程において利用する前記培地は、ポリペプトンを含んでいることができる。あるいは、培養工程において利用する前記培地は、酵母エキスを含んでいることができる。さらに、培養工程において利用する前記培地は、糖類を含んでいることができる。この場合、培地中に含有される糖類は、グリセロアルデヒド、エリトロース、アラビノース、キシロース、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトース、グリセロール、エリトリトール、キシリトール、グルコン酸、グルクロン酸、ガラクツロン酸、マルトース、スクロース、ラクトースからなる群から選択される１種類以上の化合物であることが好ましい。
【００３７】
加えて、本発明のＰＨＡの製造方法においては、培養工程において利用する前記培地は、有機酸またはその塩を含んでいるものでもよい。その際、培地中に含有される有機酸またはその塩は、ピルビン酸、リンゴ酸、乳酸、クエン酸、コハク酸、あるいはこれらの塩からなる群から選択される１つ以上の化合物であることが好ましい。あるいは、培養工程において利用する前記培地は、アミノ酸またはその塩を含んでいることもできる。例えば、培地中に含有されるアミノ酸またはその塩は、グルタミン酸、アスパラギン酸あるいはこれらの塩からなる群から選択される１つ以上の化合物であることが好ましい。
【００３８】
場合によっては、本発明のＰＨＡの製造方法においては、培養工程において利用する前記培地は、炭素数４から１２の直鎖アルカン酸またはその塩を含んでいることもできる。
【００３９】
また、本発明のＰＨＡの製造方法においては、前記微生物の培養における二段階以上の培養を行うことができる。この場合、二段階目以降の培養では培地中に窒素源が含まれていないことが好ましい。
【００４０】
前記微生物の培養において、二段階以上の培養を行う本発明の製造方法として、
（工程１−１） 下記一般式（５）：
【００４１】
【化２１】
【００４２】
（式中、ｘは、１〜８から選択される任意の整数を表す）で示される化合物を少なくとも一種類以上含み、かつポリペプトンを含む培地中で、ポリヒドロキシアルカノエート産生能を有する微生物を培養する工程と、これに続き、
（工程１−２） 前記一般式（５）で示される化合物を少なくとも一種類以上含み、かつ有機酸またはその塩とを含む培地中で、工程１−１で培養された微生物を更に培養する工程とを有する製造方法とすることができる。その際、前記工程１−２で用いる培地中に含有される有機酸またはその塩は、ピルビン酸、リンゴ酸、乳酸、クエン酸、コハク酸あるいはこれらの塩からなる群から選択される１つ以上の化合物であることが好ましい。なお、前記工程１−２で利用する培地中には、窒素源が含まれていないことがより好ましい。
【００４３】
また更に、
（工程１−３） 下記一般式（５）：
【００４４】
【化２２】
【００４５】
（式中、ｘは、１〜８から選択される任意の整数を表す）で示される化合物を少なくとも一種類以上含み、かつ糖類を含む培地中で、ポリヒドロキシアルカノエート産生能を有する微生物を培養する工程と、これに続き、
（工程１−４） 前記一般式（５）で示される化合物を少なくとも一種類以上含み、また、糖類を含む培地中で、工程１−３で培養された微生物を更に培養する工程とを有する製造方法とすることもできる。その際、前記工程１−３及び工程１−４で用いるそれぞれの培地中に含有される糖類は、グリセロアルデヒド、エリトロース、アラビノース、キシロース、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトース、グリセロール、エリトリトール、キシリトール、グルコン酸、グルクロン酸、ガラクツロン酸、マルトース、スクロース、ラクトースからなる群から選択される１種類以上の化合物であることが好ましい。なお、前記工程１−４で利用する培地中には、窒素源が含まれていないことがより好ましい。
【００４６】
本発明のＰＨＡの製造方法には、例えば、下記化学式（６）：
【００４７】
【化２３】
【００４８】
で示される５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸を含む培地中で微生物を培養し、
下記化学式（４）：
【００４９】
【化２４】
【００５０】
で示される３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットをポリマー分子中に含むポリヒドロキシアルカノエートを生産させることを特徴とするポリヒドロキシアルカノエートの製造方法が含まれる。
【００５１】
また、本発明の製造方法には、下記化学式（７）：
【００５２】
【化２５】
【００５３】
で示される６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸を含む培地中で微生物を培養し、
下記化学式（８）：
【００５４】
【化２６】
【００５５】
で示される３−ヒドロキシ−６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸ユニット及び、
下記化学式（９）：
【００５６】
【化２７】
【００５７】
で示される３−ヒドロキシ−４−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］酪酸ユニットをポリマー分子中に含むポリヒドロキシアルカノエートを生産させることを特徴とするポリヒドロキシアルカノエートの製造方法が含まれる。
【００５８】
なお、本発明のＰＨＡの製造方法においては、前記の培養工程に加えて、培養細胞からポリヒドロキシアルカノエートを分離回収する工程を設けることができ、本工程は、培養された微生物細胞中に蓄積されるポリヒドロキシアルカノエートを可溶化する工程、もしくは、培養された微生物細胞を破砕する工程を含むことを特徴とする製造方法とすることが望ましい。
【００５９】
一方、上述した種々の構成をとることが可能な本発明のＰＨＡの製造方法において、利用する微生物は、前記培養方法によって、本発明のＰＨＡを生産しうる微生物であれば如何なる微生物でもよく、その中でも特に、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物であることが好ましい。例えば、前記シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物が、シュードモナス・チコリアイ ＹＮ２株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｃｉｃｈｏｒｉｉ ＹＮ２； ＦＥＲＭＢＰ−７３７５）、シュードモナス・チコリアイ Ｈ４５株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｃｉｃｈｏｒｉｉ Ｈ４５； ＦＥＲＭ ＢＰ−７３７４）、シュードモナス・ジェッセニイ Ｐ１６１株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｊｅｓｓｅｎｉｉＰ１６１； ＦＥＲＭ ＢＰ−７３７６）のうちから選択される微生物であることがより好ましい。
【００６０】
【発明の実施の形態】
本発明の新規なポリヒドロキシアルカノエートは、含まれるヒドロキシアルカン酸のモノマーユニット中に、（メチルスルファニル）フェノキシ構造をその側鎖に有し、この構造によりこれまでに知られている微生物生産ポリヒドロキシアルカノエートとは著しく異なった物理化学的性質を有している。本発明の新規なポリヒドロキシアルカノエートは、例えば、ＰＨＡ生産能力を有する微生物を、原料となるω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸に加えて、増殖基質を含んだ培地中で培養する工程、この培養工程において微生物により生産され、その細胞内に蓄積される、側鎖末端に（メチルスルファニル）フェノキシ構造を有するユニットを含むポリヒドロキシアルカノエートを分離回収する工程、この二段階の工程を経て製造されるものである。なお、本発明のＰＨＡは一般式（１）に示されるユニットを含め、全ての３−ヒドロキシアルカン酸ユニットの３位の炭素は不斉炭素であるが、その絶対配置は、Ｒ体となり、生分解性を示すものである。
【００６１】
以下に、本発明について、より詳細に説明する。
【００６２】
（生産微生物）
本発明のＰＨＡの製造方法では、目的とする一般式（１）で示されるユニットを含むＰＨＡの生産に用いる微生物は、原料化合物の一般式（５）で示されるω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸を含む培地中で培養した際、対応する側鎖末端に（メチルスルファニル）フェノキシ基を有する３−ヒドロキシアルカン酸ユニットを含むＰＨＡを生産し、その細胞内に蓄積する微生物であれば、いかなる微生物であってもよい。例えば、ＰＨＡ産生能を有するシュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物が挙げられる。好適なシュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物の一例を挙げると、シュードモナス・チコリアイ ＹＮ２株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｃｉｃｈｏｒｉｉ ＹＮ２；ＦＥＲＭ ＢＰ−７３７５）、シュードモナス・チコリアイ Ｈ ４５株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｃｉｃｈｏｒｉｉ Ｈ４５、ＦＥＲＭ ＢＰ−７３７４）、シュードモナス・ジェッセニイ Ｐ１６１株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｊｅｓｓｅｎｉｉ Ｐ１６１、ＦＥＲＭ ＢＰ−７３７６）の三種の菌株が挙げられる。これら三種の微生物は、寄託者として本願出願人を名義として、先に国内寄託され、その後、その原寄託よりブタペスト条約に基づく寄託へと移管され、国際寄託機関としての経済産業省 産業技術総合研究所 生命工学工業技術研究所（ＮＩＢＨ）よりそれぞれ、前記の受託番号を付与され、現在の、独立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センターに寄託されている。また、新規なＰＨＡ産生能を有する菌株として、既に、特開２００１−１７８４８４号公報に記載されている微生物である。
【００６３】
以下に、ＹＮ２株、Ｈ４５株及びＰ１６１株について、その菌学的性質を示す。
【００６４】
＜ＹＮ２株の菌学的性質＞
（１）形態学的性質
細胞の形と大きさ ：桿菌、０．８μｍ×１．５〜２．０μｍ
細胞の多形性 ：なし
運動性 ：あり
胞子形成 ：なし
グラム染色性 ：陰性
コロニー形状 ：円形、全縁なめらか、低凸状、表層なめらか、光沢、半透明
（２）生理学的性質
カタラーゼ ：陽性
オキシダーゼ ：陽性
Ｏ／Ｆ試験 ：酸化型（非発酵性）
硝酸塩の還元 ：陰性
インドールの生成 ：陽性
ブドウ糖酸性化 ：陰性
アルギニンジヒドロラーゼ ：陰性
ウレアーゼ ：陰性
エスクリン加水分解 ：陰性
ゼラチン加水分解 ：陰性
β−ガラクトシダーゼ ：陰性
Ｋｉｎｇ’ｓ Ｂ寒天での蛍光色素産生 ：陽性
４％ＮａＣｌでの生育 ：陽性（弱い生育）
ポリ−β−ヒドロキシ酪酸の蓄積：陰性（＊）
Ｔｗｅｅｎ８０の加水分解 ：陽性
＊ ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ培養コロニーをズダンブラックで染色することで判定
（３）基質資化能
ブドウ糖 ：陽性
Ｌ−アラビノース ：陽性
Ｄ−マンノース ：陰性
Ｄ−マンニトール ：陰性
Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミン ：陰性
マルトース ：陰性
グルコン酸カリウム ：陽性
ｎ−カプリン酸 ：陽性
アジピン酸 ：陰性
ｄｌ−リンゴ酸 ：陽性
クエン酸ナトリウム ：陽性
酢酸フェニル ：陽性
【００６５】
＜Ｈ４５株の菌学的性質＞
（１）形態学的性質
細胞の形と大きさ ：桿菌、０．８μｍ×１．０〜１．２μｍ
細胞の多形性 ：なし
運動性 ：あり
胞子形成 ：なし
グラム染色性 ：陰性
コロニー形状 ：円形、全縁なめらか、低凸状、表層なめらか、光沢、クリーム色
（２）生理学的性質
カタラーゼ ：陽性
オキシダーゼ ：陽性
Ｏ／Ｆ試験 ：酸化型
硝酸塩の還元 ：陰性
インドールの生成 ：陰性
ブドウ糖酸性化 ：陰性
アルギニンジヒドロラーゼ ：陰性
ウレアーゼ ：陰性
エスクリン加水分解 ：陰性
ゼラチン加水分解 ：陰性
β−ガラクトシダーゼ ：陰性
Ｋｉｎｇ’ｓ Ｂ寒天での蛍光色素産生 ：陽性
４％ＮａＣｌでの生育 ：陰性
ポリ−β−ヒドロキシ酪酸の蓄積：陰性
（３）基質資化能
ブドウ糖 ：陽性
Ｌ−アラビノース ：陰性
Ｄ−マンノース ：陽性
Ｄ−マンニトール ：陽性
Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミン ：陽性
マルトース ：陰性
グルコン酸カリウム ：陽性
ｎ−カプリン酸 ：陽性
アジピン酸 ：陰性
ｄｌ−リンゴ酸 ：陽性
クエン酸ナトリウム ：陽性
酢酸フェニル ：陽性
【００６６】
＜Ｐ１６１株の菌学的性質＞
（１）形態学的性質
細胞の形と大きさ ：球状、φ０．６μｍ
桿状、０．６μｍ×１．５〜２．０μｍ
細胞の多形性 ：あり（伸長型）
運動性 ：あり
胞子形成 ：なし
グラム染色性 ：陰性
コロニー形状 ：円形、全縁なめらか、低凸状、表層なめらか、淡黄色
（２）生理学的性質
カタラーゼ ：陽性
オキシダーゼ ：陽性
Ｏ／Ｆ試験 ：酸化型
硝酸塩の還元 ：陽性
インドールの生成 ：陰性
ブドウ糖酸性化 ：陰性
アルギニンジヒドロラーゼ ：陽性
ウレアーゼ ：陰性
エスクリン加水分解 ：陰性
ゼラチン加水分解 ：陰性
β−ガラクトシダーゼ ：陰性
Ｋｉｎｇ’ｓ Ｂ寒天での蛍光色素産生 ：陽性
（３）基質資化能
ブドウ糖 ：陽性
Ｌ−アラビノース ：陽性
Ｄ−マンノース ：陽性
Ｄ−マンニトール ：陽性
Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミン ：陽性
マルトース ：陰性
グルコン酸カリウム ：陽性
ｎ−カプリン酸 ：陽性
アジピン酸 ：陰性
ｄｌ−リンゴ酸 ：陽性
クエン酸ナトリウム ：陽性
酢酸フェニル ：陽性
また、シュードモナス属に属する微生物に加えて、アエロモナス属（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ ｓｐ．）、コマモナス属（Ｃｏｍａｍｏｎａｓ ｓｐ．）、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ ｓｐ．）などに属し、例えば、ω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸を原料（基質）として用いて、３−ヒドロキシ−ω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸ユニットを含むＰＨＡを生産する微生物を用いることも可能である。
【００６７】
（培養工程）
本発明にかかるＰＨＡの製造方法は、原料の上記一般式（５）に示されるω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸を含む培地中で、上気するＰＨＡ産生能を有する微生物を培養することで、対応する前記一般式（１）で表される、側鎖末端に（メチルスルファニル）フェノキシ基を有する３−ヒドロキシアルカン酸ユニットを含むＰＨＡを生産させ、細胞内に蓄積させる。
【００６８】
微生物の通常の培養、例えば、保存菌株の作製、ＰＨＡの生産に必要とされる菌数や活性状態を確保するための増殖などには、用いる微生物の増殖に必要な成分を含有する培地を適宜選択して用いる。例えば、微生物の生育や生存に悪影響を及ぼすものでない限り、一般的な天然培地（肉汁培地、酵母エキスなど）や、栄養源を添加した合成培地など、いかなる種類の培地をも用いることができる。
【００６９】
温度、通気、攪拌などの培養条件は、用いる微生物に応じて適宜選択する。
【００７０】
一方、前記したようなＰＨＡ生産微生物を用いて、目的とする一般式（１）で示される、側鎖末端に（メチルスルファニル）フェノキシ基を有する３−ヒドロキシアルカン酸ユニットを含むＰＨＡを製造する際には、培地として、ＰＨＡ生産用の原料として、このモノマーユニットに対応する、上記一般式（５）で示されるω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸に加えて、微生物の増殖用炭素源を少なくとも含んだ無機培地などを用いることができる。原料の一般式（５）で示される化合物は、培地あたり０．０１％〜１％（ｗ／ｖ）の範囲、より好ましくは、０．０２％〜０．２％（ｗ／ｖ）の範囲に初期の含有率を選択することが望ましい。原料の一般式（５）で示されるω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸の水溶性は必ずしも良好ではないが、本発明においては、上記の微生物を用いる場合、培地中に懸濁された状態であっても何ら問題とはならない。
【００７１】
なお、原料の一般式（５）で示される化合物は、分散性を高めるため、場合によっては、１−ヘキサデセンやｎ−ヘキサデカンのような溶媒に溶解、あるいは、微細な懸濁物とした形状で培地中に添加することも可能である。その際には、利用する１−ヘキサデセンやｎ−ヘキサデカンのような溶媒の添加濃度は、培地に対して、その濃度は３％（ｖ／ｖ）以下にすることが必要である。
【００７２】
培地には、微生物が増殖に利用する増殖基質を別途添加することが好ましい。この増殖基質は、酵母エキスやポリペプトン、肉エキスといった栄養素を用いることが可能である。更に、糖類、ＴＣＡ回路中の中間体として生じる有機酸ならびにＴＣＡ回路から一段階ないしは二段階の生化学反応を経て生じる有機酸またはその塩、アミノ酸またはその塩、炭素数４〜１２の直鎖アルカン酸またはその塩などから、用いる菌株に応じて、増殖基質としての有用性を考慮して、適宜選択することができる。
【００７３】
これら種々の増殖基質のうち、糖類としては、
グリセロアルデヒド、エリトロース、アラビノース、キシロース、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトースといったアルドース、グリセロール、エリトリトール、キシリトール等のアルジトール、グルコン酸等のアルドン酸、グルクロン酸、ガラクツロン酸等のウロン酸、マルトース、スクロース、ラクトースといった二糖等から選ばれる１つ以上の化合物が好適に利用できる。
【００７４】
また、有機酸あるいはその塩としては、ピルビン酸、リンゴ酸、乳酸、クエン酸、コハク酸またはそれらの塩からなる群から選ばれる１つ以上の化合物が好適に利用できる。一方、アミノ酸またはその塩としては、グルタミン酸、アスパラギン酸あるいはそれらの塩からなる群から選ばれる１つ以上の化合物が好適に利用できる。
【００７５】
一般に、これら種々の増殖基質の中でも、ポリペプトンや糖類を用いるのがより好ましい。原料化合物と共存させる、これらの増殖基質は、通常、培地あたり０．１％〜５％（ｗ／ｖ）の範囲、より好ましくは、０．２％〜２％（ｗ／ｖ）の範囲にその含有率を選択することが望ましい。
【００７６】
微生物にＰＨＡを生産・蓄積させる培養方法としては、一旦十分に増殖させた後に、塩化アンモニウムのような窒素源を制限した培地へ菌体を移し、目的ユニットの基質となる化合物を加えた状態でさらに培養すると生産性が向上する場合がある。例えば、異なる培養条件からなる工程を複数段接続した多段方式の採用が挙げられる。
【００７７】
より具体的には、（工程１−１）として、一般式（５）で示される化合物、ならびに増殖基質となるポリペプトンを含む培地中で微生物を培養する工程を対数増殖後期から定常期の時点まで続け、一旦菌体を遠心分離等で回収した後、これに続き、（工程１−２）として、一般式（５）で示される化合物、ならびに増殖基質となる、上に例示したような有機酸またはその塩を含む（好ましくは、窒素源を含まない）培地中で、前段の工程１−１で培養・増殖した微生物の菌体をさらに培養する工程を行う方法、あるいは、（工程１−３）として一般式（５）で示される化合物、ならびに増殖基質となる糖類を含む培地中で微生物を培養する工程を対数増殖後期から定常期の時点まで続け、一旦菌体を遠心分離等で回収した後、これに続き、（工程１−４）として、一般式（５）で示される化合物、ならびに増殖基質となる糖類とを含む培地中（好ましくは窒素源を含まない）で、工程１−３で培養・増殖した微生物の菌体をさらに培養する工程を行う方法等である。
【００７８】
培養温度は、上記の菌株が良好に増殖可能な温度であればよく、例えば、１５〜４０℃、好ましくは２０〜３５℃の範囲、より好ましくは２０℃〜３０℃の範囲に選択することが適当である。
【００７９】
培養は、液体培養、固体培養など、利用する微生物が増殖し、培地中に含有される原料の一般式（５）の化合物から、前記一般式（１）で示されるユニットを含むＰＨＡを生産する培養方法ならば、いかなる培養方法をも用いることができる。さらには、原料、増殖基質、さらには酸素の供給が適正に行われるならば、バッチ培養、フェドバッチ培養、半連続培養、連続培養などの種類も問わない。
【００８０】
例えば、液体バッチ培養の形態としては、振とうフラスコによって振とうさせて酸素を供給する方法、ジャーファーメンターによる攪拌通気方式の酸素供給方法がある。
【００８１】
上記の培養方法に用いる無機培地としては、リン源（例えば、リン酸塩など）、窒素源（例えば、アンモニウム塩、硝酸塩など）等、微生物の増殖に必要な成分を含んでいる培地であればいかなるものでも良く、例えば、ＭＳＢ培地、Ｍ９培地等を挙げることができる。
【００８２】
例えば、後に述べる実施例において用いた無機塩培地：Ｍ９培地の組成を以下に示す。
【００８３】
［Ｍ９培地］
Ｎａ２ＨＰＯ４ ６．２ｇ
ＫＨ２ＰＯ４ ３．０ｇ
ＮａＣｌ ０．５ｇ
ＮＨ４Ｃｌ １．０ｇ
（培地１リットル中、ｐＨ７．０）
更に、良好な増殖と、それに伴うＰＨＡの生産のためには、上記の無機塩培地に、例えば、以下に示す微量成分溶液を０．３％（ｖ／ｖ）程度添加して、必須微量元素を補う必要がある。
【００８４】
［微量成分溶液］
ニトリロ三酢酸 ：１．５ｇ；
ＭｇＳＯ４ ：３．０ｇ；
ＭｎＳＯ４ ：０．５ｇ；
ＮａＣｌ ：１．０ｇ；
ＦｅＳＯ４ ：０．１ｇ；
ＣａＣｌ２ ：０．１ｇ；
ＣｏＣｌ２ ：０．１ｇ；
ＺｎＳＯ４ ：０．１ｇ；
ＣｕＳＯ４ ：０．１ｇ；
ＡｌＫ（ＳＯ４）２：０．１ｇ；
Ｈ３ＢＯ３ ：０．１ｇ；
Ｎａ２ＭｏＯ４ ：０．１ｇ；
ＮｉＣｌ２ ：０．１ｇ
（溶液１リットル中、ｐＨ７．０）
（ＰＨＡの回収工程）
本発明に用いる微生物は、このような培養方法により、上記一般式（１）で示される、側鎖末端に（置換ファニルメチル）スルファニル基を有する３−ヒドロキシアルカン酸ユニットを含むＰＨＡを産生し、その菌体内に蓄積する。従って、本発明のＰＨＡの製造方法では、培養後、その培養菌体から、目的とするＰＨＡを分離回収する工程を設ける。
【００８５】
この微生物の培養菌体からのＰＨＡの回収には、溶媒抽出法を利用して、可溶化したＰＨＡを細胞由来の不溶成分と分離し、回収する手段を用いることができる。通常行われているクロロホルム抽出が最も簡便であるが、クロロホルム以外に、ジクロロメタン、ジオキサン、テトラヒドロフラン、アセトニトリル、アセトン等が用いられる場合もある。また、有機溶媒が使用しにくい環境中においては、ＳＤＳ等の界面活性剤処理、リゾチーム等の酵素処理によって、ＰＨＡ以外の菌体内成分を可溶化・除去することによって、不溶性画分として、ＰＨＡのみを回収する方法を採ることもできる。さらには、超音波破砕法、ホモジナイザー法、圧力破砕法、ビーズ衝撃法、摩砕法、擂潰法、凍結融解法等の微生物細胞を破砕する処理を行って、細胞中に蓄積されたＰＨＡのみを分離、回収する方法を採ることもできる。
【００８６】
なお、本発明のＰＨＡの製造方法において、微生物の培養、その間における、培養される微生物におけるＰＨＡの生産と菌体への蓄積を行う工程、ならびに、培養後、その菌体からのＰＨＡ回収を行う工程は、上記の方法に限定されるものではない。
【００８７】
本発明の方法により製造される、微生物産生のＰＨＡは、一般式（１）のユニットに加えて、培地中に添加する増殖基質を利用して、脂肪酸合成系を介して生合成する、一般式（２）で示される３−ヒドロキシアルカン酸ユニット、あるいは、一般式（３）で示される３−ヒドロキシアルカ−５−エン酸ユニットを含むこともある。なお、含まれる３−ヒドロキシアルカン酸ユニットは、いずれも、その３位の炭素原子は不斉炭素であるが、その絶対配置は同じくＲ−体であり、その生分解性を保持することは勿論のことである。
【００８８】
本発明のＰＨＡは、例えば、一般的なプラスチックが使用される用途の他、デバイス材料や医薬材料、医療用シート等の医療用材料など、様々な分野においての応用が考えられる。
【００８９】
さらに、一般式（１）のユニット中の、（メチルスルファニル）フェノキシ基を有することで、ポリマーそのものに新たな物理化学的な性質が加わり、物性の改良が見込まれ、これまでに応用し得なかった分野への展開が期待できる。
【００９０】
【実施例】
以下に、実施例を挙げて、本発明をより具体的に説明する。これら実施例は、本発明の最良の実施形態の一例ではあるものの、本発明は、これら実施例により限定されうるものではない。なお、以下における「％」は特に標記した以外は重量基準である。
【００９１】
（実施例１）
ポリペプトン０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・ＹＮ２株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ピルビン酸ナトリウム０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【００９２】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ２８ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【００９３】
得られたＰＨＡの平均分子量は、ゲル・パーミエーション・クロマトグラフィー（ＧＰＣ；東ソーＨＬＣ−８２２０、カラム；東ソー ＴＳＫ−ＧＥＬ ＳｕｐｅｒＨＭ−Ｈ、溶媒；クロロホルム、ポリスチレン換算）により評価した。その結果、数平均分子量 Ｍｎ＝１５６００、重量平均分子量 Ｍｗ＝３６０００であった。
【００９４】
更に、得られたＰＨＡの構造を特定するため、以下の条件でＮＭＲ分析を行った。
図１に、測定された１Ｈ−ＮＭＲスペクトルチャートを示し、また、表１に、その同定結果を示す。
【００９５】
【表１】
表１
【００９６】
表１に示す結果より、当該ＰＨＡは３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを含んでおり、加えて、それ以外のモノマーユニットとして、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸をも含んでおり、具体的には、その構成は
下記化学式（１０）：
【００９７】
【化２８】
【００９８】
に示されるＰＨＡであることが確認された。また、得られたＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを２３．０ｍｏｌ％含んでいることがわかった。
【００９９】
（実施例２）
ポリペプトン０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・Ｈ４５株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ピルビン酸ナトリウム０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１００】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ１１ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１０１】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを２１．４ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１０２】
（実施例３）
ポリペプトン０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・ジェッセニイ・Ｐ１６１株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ピルビン酸ナトリウム０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１０３】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ９ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１０４】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを１８．４ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１０５】
（実施例４）
Ｄ−グルコース０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・ＹＮ２株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、Ｄ−グルコース０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１０６】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ１８ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１０７】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを２９．６ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１０８】
（実施例５）
Ｄ−グルコース０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・Ｈ４５株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、Ｄ−グルコース０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１０９】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ１８ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１１０】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを３５．６ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１１１】
（実施例６）
酵母エキス（ＤＩＦＣＯ製）０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・ＹＮ２株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ピルビン酸ナトリウム０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１１２】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ１５ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１１３】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを１５．１ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１１４】
（実施例７）
グルタミン酸ナトリウム０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・ＹＮ２株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ピルビン酸ナトリウム０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１１５】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ２５ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１１６】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを１２．２ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１１７】
（実施例８）
ポリペプトン０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・ＹＮ２株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ノナン酸０．１％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１１８】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ３０ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１１９】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを３．１ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１２０】
表２に、上記の各実施例における菌体乾燥重量、ポリマー乾燥重量、ポリマー乾燥重量／菌体乾燥重量比率、ならびに得られたＰＨＡポリマーの３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニット（３ＨＭＳＰｘＶ）ユニットのｍｏｌ％をまとめて示す。
【０１２１】
【表２】
表２
【０１２２】
表３に、実施例１から８で得られたポリマーの分子量を示す。
【０１２３】
【表３】
表３
【０１２４】
（実施例９）
ポリペプトン０．５％、６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・ＹＮ２株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ピルビン酸ナトリウム０．５％、６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１２５】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ２２ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１２６】
得られたＰＨＡの平均分子量は、ゲル・パーミエーション・クロマトグラフィー（ＧＰＣ；東ソーＨＬＣ−８２２０、カラム；東ソー ＴＳＫ−ＧＥＬ ＳｕｐｅｒＨＭ−Ｈ、溶媒；クロロホルム、ポリスチレン換算）により評価した。その結果、数平均分子量 Ｍｎ＝１４５００、重量平均分子量 Ｍｗ＝３３０００であった。
【０１２７】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡは、３−ヒドロキシ−６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸ユニット及び３−ヒドロキシ−４−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］酪酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含むＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸モノマーユニットを８．１ｍｏｌ％並びに３−ヒドロキシ−４−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］酪酸モノマーユニットを９．２ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１２８】
（実施例１０）
Ｄ−グルコース０．５％、６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・Ｈ４５株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、Ｄ−グルコース０．５％、６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１２９】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ１６ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１３０】
実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡは、３−ヒドロキシ−６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸ユニット及び３−ヒドロキシ−４−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］酪酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含むＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸モノマーユニットを１２．４ｍｏｌ％並びに３−ヒドロキシ−４−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］酪酸モノマーユニットを１５．１ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１３１】
表４に、上記の実施例９及び１０における菌体乾燥重量、ポリマー乾燥重量、ポリマー乾燥重量／菌体乾燥重量比率、ならびに得られたＰＨＡポリマーの３−ヒドロキシ−６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸ユニット（３ＨＭＳＰｘＨｘ）ユニット及び３−ヒドロキシ−４−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］酪酸ユニット（３ＨＭＳＰｘＢ）ユニットのｍｏｌ％をまとめて示す。
【０１３２】
表５に、実施例９および１０で得られたポリマーの分子量を示す。
【０１３３】
【表４】
表４
【０１３４】
【表５】
表５
【０１３５】
【発明の効果】
本発明のＰＨＡの製造方法においては、原料として、ω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸含む培地中で微生物を培養し、対応する３−ヒドロキシ−ω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸ユニットを含む新規な生分解性ＰＨＡが効率的に製造される。また、本発明のＰＨＡは、機能性ポリマーとして有用なポリヒドロキシアルカノエートであり、デバイス材料や医薬材料等の各分野への応用が期待できる。
【図面の簡単な説明】
【図１】実施例１で得られたＰＨＡについて測定された１Ｈ−ＮＭＲスペクトルチャートである。
【発明の属する技術分野】
本発明は、新規な構成ユニットを含むポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡ）と、その製造方法に関する。より具体的には、側鎖末端に（メチルスルファニル）フェノキシ基を有する３−ヒドロキシアルカン酸ユニットを含む新規な生分解性ＰＨＡ及び、ＰＨＡを生産し菌体内に蓄積する能力を有する微生物を利用し、末端に（メチルスルファニル）フェノキシ基を置換基として有するアルカン酸を原料とする、前記ＰＨＡを製造する方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
これまで、多くの微生物がポリ−３−ヒドロキシ酪酸（以下、ＰＨＢと略す）あるいはその他のＰＨＡを生産し、菌体内に蓄積することが報告されてきた（「生分解性プラスチックハンドブック」，生分解性プラスチック研究会編，（株）エヌ・ティー・エス，Ｐ１７８−１９７（１９９５））。これらのポリマーは、従来のプラスチックと同様に、溶融加工等により各種製品の生産に利用することができる。更に、生分解性であるがゆえに、自然界で微生物により完全に分解されるという利点を有していることから、従来の多くの合成高分子化合物のように自然環境に残留して汚染を引き起こすことがない。また、生体適合性にも優れており、医療用軟質部材料等としての応用も期待されている。
【０００３】
このように微生物産生ＰＨＡは、その生産に用いる微生物の種類や培地組成、培養条件等により、様々な組成や構造のものとなり得ることが知られており、これまで主に、ＰＨＡの物性の改良という観点から、このような組成や構造の制御に関する研究がなされてきた。例えば、アルカリゲネス・ユウトロファスＨ１６株（Ａｌｃａｌｉｇｅｎｅｓ ｅｕｔｒｏｐｕｓ Ｈ１６、ＡＴＣＣ Ｎｏ．１７６９９）及びその変異株は、その培養時の基質を変化させることによって、３−ヒドロキシ酪酸（以下、３ＨＢと略す）と３−ヒドロキシ吉草酸（以下、３ＨＶと略す）との共重合体を様々な組成比で生産することが報告されている（特公平６−１５６０４号公報、特公平７−１４３５２号公報、特公平８−１９２２７号公報等）。
【０００４】
また、特許公報第２６４２９３７号には、シュードモナス・オレオボランス・ＡＴＣＣ ２９３４７株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｏｌｅｏｖｏｒａｎｓ ＡＴＣＣ ２９３４７）に基質として非環状脂肪族炭化水素を与えることにより、炭素数６から１２までの３−ヒドロキシアルカノエートをモノマーユニットとするＰＨＡを生産することが開示されている。
【０００５】
特開平５−７４９２号公報には、メチロバクテリウム属（Ｍｅｔｈｙｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．）、パラコッカス属（Ｐａｒａｃｏｃｃｕｓ ｓｐ．）、アルカリゲネス属（Ａｌｃａｌｉｇｅｎｅｓ ｓｐ．）、シュードモナス属（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｐ．）の微生物を、炭素数３から７の第一級アルコールに接触させることにより、３ＨＢと３ＨＶとの共重合体を生産させる方法が開示されている。
【０００６】
特開平５−９３０４９号公報、及び特開平７−２６５０６５号公報には、アエロモナス・キャビエ（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ ｃａｖｉａｅ）をオレイン酸やオリーブ油を基質として培養することにより、３ＨＢと３−ヒドロキシヘキサン酸との二成分共重合体を生産することが開示されている。
【０００７】
特開平９−１９１８９３号公報には、コマモナス・アシドボランス・ＩＦＯ １３８５２株（Ｃｏｍａｍｏｎａｓ ａｃｉｄｏｖｏｒａｎｓ ＩＦＯ １３８５２）が、基質としてグルコン酸及び１，４−ブタンジオールを用いた培養により、３ＨＢと４−ヒドロキシ酪酸とをモノマーユニットに持つポリエステルを生産することが開示されている。
【０００８】
更に、ある種の微生物では、様々な置換基、例えば、不飽和炭化水素、エステル基、アリル基、シアノ基、ハロゲン化炭化水素、エポキシドなどが導入されたＰＨＡを生産することが報告されており、このような手法によって微生物産生ＰＨＡの物性改良を目指す試みもなされている。例えば、Ｍａｋｒｏｍｏｌ．Ｃｈｅｍ．，１９１，１９５７−１９６５， （１９９０）、Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，２４，５２５６−５２６０， （１９９１）、Ｃｈｉｒａｌｉｔｙ，３，４９２−４９４， （１９９１）等では、シュードモナス・オレオボランスが３−ヒドロキシ−５−フェニル吉草酸（以下、３ＨＰＶと略す）をモノマーユニットをして含むＰＨＡを生産することが報告されており、３ＨＰＶが含まれることに起因すると思われる、ポリマー物性の変化が認められている。
【０００９】
また、置換基を側鎖に導入したＰＨＡのうち、近年フェノキシ基を側鎖に有するＰＨＡの開発が盛んである。
【００１０】
Ｍａｃｒｏｍｏｌ．Ｃｈｅｍ．Ｐｈｙｓ．， １９５，１６６５−１６７２ （１９９４）には、シュードモナス・オレオボランス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓｏｌｅｏｖｏｒａｎｓ）が、１１−フェノキシウンデカン酸から３−ヒドロキシ−５−フェノキシ吉草酸ならびに３−ヒドロキシ−９−フェノキシノナン酸をユニットとして含むＰＨＡを生産することが報告されている。
【００１１】
Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ， ２９，３４３２−３４３５ （１９９６）には、シュードモナス・オレオボランス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｏｌｅｏｖｏｒａｎｓ）を用いて、６−フェノキシヘキサン酸から、３−ヒドロキシ−４−フェノキシ酪酸と３−ヒドロキシ−６−フェノキシヘキサン酸をユニットとして含むＰＨＡを、８−フェノキシオクタン酸から、３−ヒドロキシ−４−フェノキシ酪酸、３−ヒドロキシ−６−フェノキシヘキサン酸及び３−ヒドロキシ−８−フェノキシオクタン酸をユニットとして含むＰＨＡを、１１−フェノキシウンデカン酸から、３−ヒドロキシ−５−フェノキシ吉草酸と３−ヒドロキシ−７−フェノキシヘプタン酸をユニットとして含むＰＨＡを、それぞれ生産することが報告されている。
【００１２】
Ｃａｎ．Ｊ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．， ４１，３２−４３ （１９９５）には、シュードモナス・オレオボランス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｏｌｅｏｖｏｒａｎｓ）ＡＴＣＣ ２９３４７株及びシュードモナス・プチダ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｐｕｔｉｄａ）ＫＴ２４２２株を用いて、オクタン酸と６−（４−シアノフェノキシ）ヘキサン酸あるいは６−（ｐ−ニトロフェノキシ）ヘキサン酸を基質として、３−ヒドロキシ−６−（４−シアノフェノキシ）ヘキサン酸あるいは３−ヒドロキシ−６−（４−ニトロフェノキシ）ヘキサン酸をモノマーユニットとして含むＰＨＡを生産することが報告されている。
【００１３】
【発明が解決しようとする課題】
これら側鎖上に官能基を有するＰＨＡのうち、近年フェノキシ基を側鎖に有するＰＨＡの開発が盛んである。特にフェノキシ基の芳香環部分にフルオロ基、シアノ基、ニトロ基など、機能性置換基を導入したＰＨＡが数多く報告されているものの、上記したものに限られており、新たなる機能性置換基を導入したＰＨＡの報告はないのが現状である。
【００１４】
本発明の目的は、フェノキシ基の芳香環部分に、機能性置換基であるメチルスルファニル基を導入した新規なポリヒドロキシアルカノエート、及びその製造方法を提供することにある。
【００１５】
【課題を解決するための手段】
すなわち、本発明のポリヒドロキシアルカノエートは、下記一般式（１）：
【００１６】
【化１３】
（式中、ｘは、１〜８から選択される任意の整数を表し、ポリマー中において、一つ以上の値をとり得る）で示されるユニットをポリマー分子中に含むことを特徴とするポリヒドロキシアルカノエートである。
【００１８】
なお、本発明のポリヒドロキシアルカノエートは、前記一般式（１）で示されるユニットに加えて、
下記一般式（２）：
【００１９】
【化１４】
（式中、ｙは、０〜８から選択される任意の整数を表し、ポリマー中において、一つ以上の値をとり得る）で示される３−ヒドロキシアルカン酸ユニット、あるいは、下記一般式（３）：
【００２１】
【化１５】
（式中、ｚは、３および５から選択される任意の整数を表し、ポリマー中において、一つ以上の値をとり得る）で示される３−ヒドロキシアルカ−５−エン酸ユニットのうち、いずれか、或いは両方共を含んでいてもよい。また、そのポリマー分子の数平均分子量は、５０００〜３０００００の範囲である。
【００２３】
上記の構成を有する本発明のＰＨＡには、例えば、下記化学式（４）：
【００２４】
【化１６】
で示される３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含むことを特徴とするポリヒドロキシアルカノエートが含まれる。
【００２６】
また、本発明は、
下記一般式（５）：
【００２７】
【化１７】
（式中、ｘは、１〜８から選択される任意の整数を表し、一つ以上の値をとり得る）で示される化合物を少なくとも一種類以上含む培地中で、ポリヒドロキシアルカノエート産生能を有する微生物を培養する工程を有することを特徴とする、
下記一般式（１）：
【００２９】
【化１８】
（式中、ｘは、１〜８から選択される任意の整数を表し、ポリマー中において、一つ以上の値をとり得る）で示されるユニットを分子中に含むポリヒドロキシアルカノエートの製造方法である。
【００３１】
本発明の方法で製造されるポリヒドロキシアルカノエートは、前記一般式（１）で示されるユニットに加えて、
下記一般式（２）：
【００３２】
【化１９】
（式中、ｙは、０〜８から選択される任意の整数を表し、ポリマー中において、一つ以上の値をとり得る）で示される３−ヒドロキシアルカン酸ユニット、あるいは、下記一般式（３）：
【００３４】
【化２０】
（式中、ｚは、３および５から選択される任意の整数を表し、ポリマー中において、一つ以上の値をとり得る）で示される３−ヒドロキシアルカ−５−エン酸ユニットのうち、いずれか、或いは両方共を含んでいてもよい。
【００３６】
また、本発明のＰＨＡの製造方法における培養工程において利用する前記培地は、ポリペプトンを含んでいることができる。あるいは、培養工程において利用する前記培地は、酵母エキスを含んでいることができる。さらに、培養工程において利用する前記培地は、糖類を含んでいることができる。この場合、培地中に含有される糖類は、グリセロアルデヒド、エリトロース、アラビノース、キシロース、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトース、グリセロール、エリトリトール、キシリトール、グルコン酸、グルクロン酸、ガラクツロン酸、マルトース、スクロース、ラクトースからなる群から選択される１種類以上の化合物であることが好ましい。
【００３７】
加えて、本発明のＰＨＡの製造方法においては、培養工程において利用する前記培地は、有機酸またはその塩を含んでいるものでもよい。その際、培地中に含有される有機酸またはその塩は、ピルビン酸、リンゴ酸、乳酸、クエン酸、コハク酸、あるいはこれらの塩からなる群から選択される１つ以上の化合物であることが好ましい。あるいは、培養工程において利用する前記培地は、アミノ酸またはその塩を含んでいることもできる。例えば、培地中に含有されるアミノ酸またはその塩は、グルタミン酸、アスパラギン酸あるいはこれらの塩からなる群から選択される１つ以上の化合物であることが好ましい。
【００３８】
場合によっては、本発明のＰＨＡの製造方法においては、培養工程において利用する前記培地は、炭素数４から１２の直鎖アルカン酸またはその塩を含んでいることもできる。
【００３９】
また、本発明のＰＨＡの製造方法においては、前記微生物の培養における二段階以上の培養を行うことができる。この場合、二段階目以降の培養では培地中に窒素源が含まれていないことが好ましい。
【００４０】
前記微生物の培養において、二段階以上の培養を行う本発明の製造方法として、
（工程１−１） 下記一般式（５）：
【００４１】
【化２１】
（式中、ｘは、１〜８から選択される任意の整数を表す）で示される化合物を少なくとも一種類以上含み、かつポリペプトンを含む培地中で、ポリヒドロキシアルカノエート産生能を有する微生物を培養する工程と、これに続き、
（工程１−２） 前記一般式（５）で示される化合物を少なくとも一種類以上含み、かつ有機酸またはその塩とを含む培地中で、工程１−１で培養された微生物を更に培養する工程とを有する製造方法とすることができる。その際、前記工程１−２で用いる培地中に含有される有機酸またはその塩は、ピルビン酸、リンゴ酸、乳酸、クエン酸、コハク酸あるいはこれらの塩からなる群から選択される１つ以上の化合物であることが好ましい。なお、前記工程１−２で利用する培地中には、窒素源が含まれていないことがより好ましい。
【００４３】
また更に、
（工程１−３） 下記一般式（５）：
【００４４】
【化２２】
（式中、ｘは、１〜８から選択される任意の整数を表す）で示される化合物を少なくとも一種類以上含み、かつ糖類を含む培地中で、ポリヒドロキシアルカノエート産生能を有する微生物を培養する工程と、これに続き、
（工程１−４） 前記一般式（５）で示される化合物を少なくとも一種類以上含み、また、糖類を含む培地中で、工程１−３で培養された微生物を更に培養する工程とを有する製造方法とすることもできる。その際、前記工程１−３及び工程１−４で用いるそれぞれの培地中に含有される糖類は、グリセロアルデヒド、エリトロース、アラビノース、キシロース、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトース、グリセロール、エリトリトール、キシリトール、グルコン酸、グルクロン酸、ガラクツロン酸、マルトース、スクロース、ラクトースからなる群から選択される１種類以上の化合物であることが好ましい。なお、前記工程１−４で利用する培地中には、窒素源が含まれていないことがより好ましい。
【００４６】
本発明のＰＨＡの製造方法には、例えば、下記化学式（６）：
【００４７】
【化２３】
で示される５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸を含む培地中で微生物を培養し、
下記化学式（４）：
【００４９】
【化２４】
で示される３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットをポリマー分子中に含むポリヒドロキシアルカノエートを生産させることを特徴とするポリヒドロキシアルカノエートの製造方法が含まれる。
【００５１】
また、本発明の製造方法には、下記化学式（７）：
【００５２】
【化２５】
で示される６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸を含む培地中で微生物を培養し、
下記化学式（８）：
【００５４】
【化２６】
で示される３−ヒドロキシ−６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸ユニット及び、
下記化学式（９）：
【００５６】
【化２７】
で示される３−ヒドロキシ−４−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］酪酸ユニットをポリマー分子中に含むポリヒドロキシアルカノエートを生産させることを特徴とするポリヒドロキシアルカノエートの製造方法が含まれる。
【００５８】
なお、本発明のＰＨＡの製造方法においては、前記の培養工程に加えて、培養細胞からポリヒドロキシアルカノエートを分離回収する工程を設けることができ、本工程は、培養された微生物細胞中に蓄積されるポリヒドロキシアルカノエートを可溶化する工程、もしくは、培養された微生物細胞を破砕する工程を含むことを特徴とする製造方法とすることが望ましい。
【００５９】
一方、上述した種々の構成をとることが可能な本発明のＰＨＡの製造方法において、利用する微生物は、前記培養方法によって、本発明のＰＨＡを生産しうる微生物であれば如何なる微生物でもよく、その中でも特に、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物であることが好ましい。例えば、前記シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物が、シュードモナス・チコリアイ ＹＮ２株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｃｉｃｈｏｒｉｉ ＹＮ２； ＦＥＲＭＢＰ−７３７５）、シュードモナス・チコリアイ Ｈ４５株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｃｉｃｈｏｒｉｉ Ｈ４５； ＦＥＲＭ ＢＰ−７３７４）、シュードモナス・ジェッセニイ Ｐ１６１株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｊｅｓｓｅｎｉｉＰ１６１； ＦＥＲＭ ＢＰ−７３７６）のうちから選択される微生物であることがより好ましい。
【００６０】
【発明の実施の形態】
本発明の新規なポリヒドロキシアルカノエートは、含まれるヒドロキシアルカン酸のモノマーユニット中に、（メチルスルファニル）フェノキシ構造をその側鎖に有し、この構造によりこれまでに知られている微生物生産ポリヒドロキシアルカノエートとは著しく異なった物理化学的性質を有している。本発明の新規なポリヒドロキシアルカノエートは、例えば、ＰＨＡ生産能力を有する微生物を、原料となるω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸に加えて、増殖基質を含んだ培地中で培養する工程、この培養工程において微生物により生産され、その細胞内に蓄積される、側鎖末端に（メチルスルファニル）フェノキシ構造を有するユニットを含むポリヒドロキシアルカノエートを分離回収する工程、この二段階の工程を経て製造されるものである。なお、本発明のＰＨＡは一般式（１）に示されるユニットを含め、全ての３−ヒドロキシアルカン酸ユニットの３位の炭素は不斉炭素であるが、その絶対配置は、Ｒ体となり、生分解性を示すものである。
【００６１】
以下に、本発明について、より詳細に説明する。
【００６２】
（生産微生物）
本発明のＰＨＡの製造方法では、目的とする一般式（１）で示されるユニットを含むＰＨＡの生産に用いる微生物は、原料化合物の一般式（５）で示されるω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸を含む培地中で培養した際、対応する側鎖末端に（メチルスルファニル）フェノキシ基を有する３−ヒドロキシアルカン酸ユニットを含むＰＨＡを生産し、その細胞内に蓄積する微生物であれば、いかなる微生物であってもよい。例えば、ＰＨＡ産生能を有するシュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物が挙げられる。好適なシュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物の一例を挙げると、シュードモナス・チコリアイ ＹＮ２株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｃｉｃｈｏｒｉｉ ＹＮ２；ＦＥＲＭ ＢＰ−７３７５）、シュードモナス・チコリアイ Ｈ ４５株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｃｉｃｈｏｒｉｉ Ｈ４５、ＦＥＲＭ ＢＰ−７３７４）、シュードモナス・ジェッセニイ Ｐ１６１株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｊｅｓｓｅｎｉｉ Ｐ１６１、ＦＥＲＭ ＢＰ−７３７６）の三種の菌株が挙げられる。これら三種の微生物は、寄託者として本願出願人を名義として、先に国内寄託され、その後、その原寄託よりブタペスト条約に基づく寄託へと移管され、国際寄託機関としての経済産業省 産業技術総合研究所 生命工学工業技術研究所（ＮＩＢＨ）よりそれぞれ、前記の受託番号を付与され、現在の、独立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センターに寄託されている。また、新規なＰＨＡ産生能を有する菌株として、既に、特開２００１−１７８４８４号公報に記載されている微生物である。
【００６３】
以下に、ＹＮ２株、Ｈ４５株及びＰ１６１株について、その菌学的性質を示す。
【００６４】
＜ＹＮ２株の菌学的性質＞
（１）形態学的性質
細胞の形と大きさ ：桿菌、０．８μｍ×１．５〜２．０μｍ
細胞の多形性 ：なし
運動性 ：あり
胞子形成 ：なし
グラム染色性 ：陰性
コロニー形状 ：円形、全縁なめらか、低凸状、表層なめらか、光沢、半透明
（２）生理学的性質
カタラーゼ ：陽性
オキシダーゼ ：陽性
Ｏ／Ｆ試験 ：酸化型（非発酵性）
硝酸塩の還元 ：陰性
インドールの生成 ：陽性
ブドウ糖酸性化 ：陰性
アルギニンジヒドロラーゼ ：陰性
ウレアーゼ ：陰性
エスクリン加水分解 ：陰性
ゼラチン加水分解 ：陰性
β−ガラクトシダーゼ ：陰性
Ｋｉｎｇ’ｓ Ｂ寒天での蛍光色素産生 ：陽性
４％ＮａＣｌでの生育 ：陽性（弱い生育）
ポリ−β−ヒドロキシ酪酸の蓄積：陰性（＊）
Ｔｗｅｅｎ８０の加水分解 ：陽性
＊ ｎｕｔｒｉｅｎｔ ａｇａｒ培養コロニーをズダンブラックで染色することで判定
（３）基質資化能
ブドウ糖 ：陽性
Ｌ−アラビノース ：陽性
Ｄ−マンノース ：陰性
Ｄ−マンニトール ：陰性
Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミン ：陰性
マルトース ：陰性
グルコン酸カリウム ：陽性
ｎ−カプリン酸 ：陽性
アジピン酸 ：陰性
ｄｌ−リンゴ酸 ：陽性
クエン酸ナトリウム ：陽性
酢酸フェニル ：陽性
【００６５】
＜Ｈ４５株の菌学的性質＞
（１）形態学的性質
細胞の形と大きさ ：桿菌、０．８μｍ×１．０〜１．２μｍ
細胞の多形性 ：なし
運動性 ：あり
胞子形成 ：なし
グラム染色性 ：陰性
コロニー形状 ：円形、全縁なめらか、低凸状、表層なめらか、光沢、クリーム色
（２）生理学的性質
カタラーゼ ：陽性
オキシダーゼ ：陽性
Ｏ／Ｆ試験 ：酸化型
硝酸塩の還元 ：陰性
インドールの生成 ：陰性
ブドウ糖酸性化 ：陰性
アルギニンジヒドロラーゼ ：陰性
ウレアーゼ ：陰性
エスクリン加水分解 ：陰性
ゼラチン加水分解 ：陰性
β−ガラクトシダーゼ ：陰性
Ｋｉｎｇ’ｓ Ｂ寒天での蛍光色素産生 ：陽性
４％ＮａＣｌでの生育 ：陰性
ポリ−β−ヒドロキシ酪酸の蓄積：陰性
（３）基質資化能
ブドウ糖 ：陽性
Ｌ−アラビノース ：陰性
Ｄ−マンノース ：陽性
Ｄ−マンニトール ：陽性
Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミン ：陽性
マルトース ：陰性
グルコン酸カリウム ：陽性
ｎ−カプリン酸 ：陽性
アジピン酸 ：陰性
ｄｌ−リンゴ酸 ：陽性
クエン酸ナトリウム ：陽性
酢酸フェニル ：陽性
【００６６】
＜Ｐ１６１株の菌学的性質＞
（１）形態学的性質
細胞の形と大きさ ：球状、φ０．６μｍ
桿状、０．６μｍ×１．５〜２．０μｍ
細胞の多形性 ：あり（伸長型）
運動性 ：あり
胞子形成 ：なし
グラム染色性 ：陰性
コロニー形状 ：円形、全縁なめらか、低凸状、表層なめらか、淡黄色
（２）生理学的性質
カタラーゼ ：陽性
オキシダーゼ ：陽性
Ｏ／Ｆ試験 ：酸化型
硝酸塩の還元 ：陽性
インドールの生成 ：陰性
ブドウ糖酸性化 ：陰性
アルギニンジヒドロラーゼ ：陽性
ウレアーゼ ：陰性
エスクリン加水分解 ：陰性
ゼラチン加水分解 ：陰性
β−ガラクトシダーゼ ：陰性
Ｋｉｎｇ’ｓ Ｂ寒天での蛍光色素産生 ：陽性
（３）基質資化能
ブドウ糖 ：陽性
Ｌ−アラビノース ：陽性
Ｄ−マンノース ：陽性
Ｄ−マンニトール ：陽性
Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミン ：陽性
マルトース ：陰性
グルコン酸カリウム ：陽性
ｎ−カプリン酸 ：陽性
アジピン酸 ：陰性
ｄｌ−リンゴ酸 ：陽性
クエン酸ナトリウム ：陽性
酢酸フェニル ：陽性
また、シュードモナス属に属する微生物に加えて、アエロモナス属（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ ｓｐ．）、コマモナス属（Ｃｏｍａｍｏｎａｓ ｓｐ．）、バークホルデリア属（Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ ｓｐ．）などに属し、例えば、ω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸を原料（基質）として用いて、３−ヒドロキシ−ω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸ユニットを含むＰＨＡを生産する微生物を用いることも可能である。
【００６７】
（培養工程）
本発明にかかるＰＨＡの製造方法は、原料の上記一般式（５）に示されるω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸を含む培地中で、上気するＰＨＡ産生能を有する微生物を培養することで、対応する前記一般式（１）で表される、側鎖末端に（メチルスルファニル）フェノキシ基を有する３−ヒドロキシアルカン酸ユニットを含むＰＨＡを生産させ、細胞内に蓄積させる。
【００６８】
微生物の通常の培養、例えば、保存菌株の作製、ＰＨＡの生産に必要とされる菌数や活性状態を確保するための増殖などには、用いる微生物の増殖に必要な成分を含有する培地を適宜選択して用いる。例えば、微生物の生育や生存に悪影響を及ぼすものでない限り、一般的な天然培地（肉汁培地、酵母エキスなど）や、栄養源を添加した合成培地など、いかなる種類の培地をも用いることができる。
【００６９】
温度、通気、攪拌などの培養条件は、用いる微生物に応じて適宜選択する。
【００７０】
一方、前記したようなＰＨＡ生産微生物を用いて、目的とする一般式（１）で示される、側鎖末端に（メチルスルファニル）フェノキシ基を有する３−ヒドロキシアルカン酸ユニットを含むＰＨＡを製造する際には、培地として、ＰＨＡ生産用の原料として、このモノマーユニットに対応する、上記一般式（５）で示されるω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸に加えて、微生物の増殖用炭素源を少なくとも含んだ無機培地などを用いることができる。原料の一般式（５）で示される化合物は、培地あたり０．０１％〜１％（ｗ／ｖ）の範囲、より好ましくは、０．０２％〜０．２％（ｗ／ｖ）の範囲に初期の含有率を選択することが望ましい。原料の一般式（５）で示されるω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸の水溶性は必ずしも良好ではないが、本発明においては、上記の微生物を用いる場合、培地中に懸濁された状態であっても何ら問題とはならない。
【００７１】
なお、原料の一般式（５）で示される化合物は、分散性を高めるため、場合によっては、１−ヘキサデセンやｎ−ヘキサデカンのような溶媒に溶解、あるいは、微細な懸濁物とした形状で培地中に添加することも可能である。その際には、利用する１−ヘキサデセンやｎ−ヘキサデカンのような溶媒の添加濃度は、培地に対して、その濃度は３％（ｖ／ｖ）以下にすることが必要である。
【００７２】
培地には、微生物が増殖に利用する増殖基質を別途添加することが好ましい。この増殖基質は、酵母エキスやポリペプトン、肉エキスといった栄養素を用いることが可能である。更に、糖類、ＴＣＡ回路中の中間体として生じる有機酸ならびにＴＣＡ回路から一段階ないしは二段階の生化学反応を経て生じる有機酸またはその塩、アミノ酸またはその塩、炭素数４〜１２の直鎖アルカン酸またはその塩などから、用いる菌株に応じて、増殖基質としての有用性を考慮して、適宜選択することができる。
【００７３】
これら種々の増殖基質のうち、糖類としては、
グリセロアルデヒド、エリトロース、アラビノース、キシロース、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトースといったアルドース、グリセロール、エリトリトール、キシリトール等のアルジトール、グルコン酸等のアルドン酸、グルクロン酸、ガラクツロン酸等のウロン酸、マルトース、スクロース、ラクトースといった二糖等から選ばれる１つ以上の化合物が好適に利用できる。
【００７４】
また、有機酸あるいはその塩としては、ピルビン酸、リンゴ酸、乳酸、クエン酸、コハク酸またはそれらの塩からなる群から選ばれる１つ以上の化合物が好適に利用できる。一方、アミノ酸またはその塩としては、グルタミン酸、アスパラギン酸あるいはそれらの塩からなる群から選ばれる１つ以上の化合物が好適に利用できる。
【００７５】
一般に、これら種々の増殖基質の中でも、ポリペプトンや糖類を用いるのがより好ましい。原料化合物と共存させる、これらの増殖基質は、通常、培地あたり０．１％〜５％（ｗ／ｖ）の範囲、より好ましくは、０．２％〜２％（ｗ／ｖ）の範囲にその含有率を選択することが望ましい。
【００７６】
微生物にＰＨＡを生産・蓄積させる培養方法としては、一旦十分に増殖させた後に、塩化アンモニウムのような窒素源を制限した培地へ菌体を移し、目的ユニットの基質となる化合物を加えた状態でさらに培養すると生産性が向上する場合がある。例えば、異なる培養条件からなる工程を複数段接続した多段方式の採用が挙げられる。
【００７７】
より具体的には、（工程１−１）として、一般式（５）で示される化合物、ならびに増殖基質となるポリペプトンを含む培地中で微生物を培養する工程を対数増殖後期から定常期の時点まで続け、一旦菌体を遠心分離等で回収した後、これに続き、（工程１−２）として、一般式（５）で示される化合物、ならびに増殖基質となる、上に例示したような有機酸またはその塩を含む（好ましくは、窒素源を含まない）培地中で、前段の工程１−１で培養・増殖した微生物の菌体をさらに培養する工程を行う方法、あるいは、（工程１−３）として一般式（５）で示される化合物、ならびに増殖基質となる糖類を含む培地中で微生物を培養する工程を対数増殖後期から定常期の時点まで続け、一旦菌体を遠心分離等で回収した後、これに続き、（工程１−４）として、一般式（５）で示される化合物、ならびに増殖基質となる糖類とを含む培地中（好ましくは窒素源を含まない）で、工程１−３で培養・増殖した微生物の菌体をさらに培養する工程を行う方法等である。
【００７８】
培養温度は、上記の菌株が良好に増殖可能な温度であればよく、例えば、１５〜４０℃、好ましくは２０〜３５℃の範囲、より好ましくは２０℃〜３０℃の範囲に選択することが適当である。
【００７９】
培養は、液体培養、固体培養など、利用する微生物が増殖し、培地中に含有される原料の一般式（５）の化合物から、前記一般式（１）で示されるユニットを含むＰＨＡを生産する培養方法ならば、いかなる培養方法をも用いることができる。さらには、原料、増殖基質、さらには酸素の供給が適正に行われるならば、バッチ培養、フェドバッチ培養、半連続培養、連続培養などの種類も問わない。
【００８０】
例えば、液体バッチ培養の形態としては、振とうフラスコによって振とうさせて酸素を供給する方法、ジャーファーメンターによる攪拌通気方式の酸素供給方法がある。
【００８１】
上記の培養方法に用いる無機培地としては、リン源（例えば、リン酸塩など）、窒素源（例えば、アンモニウム塩、硝酸塩など）等、微生物の増殖に必要な成分を含んでいる培地であればいかなるものでも良く、例えば、ＭＳＢ培地、Ｍ９培地等を挙げることができる。
【００８２】
例えば、後に述べる実施例において用いた無機塩培地：Ｍ９培地の組成を以下に示す。
【００８３】
［Ｍ９培地］
Ｎａ２ＨＰＯ４ ６．２ｇ
ＫＨ２ＰＯ４ ３．０ｇ
ＮａＣｌ ０．５ｇ
ＮＨ４Ｃｌ １．０ｇ
（培地１リットル中、ｐＨ７．０）
更に、良好な増殖と、それに伴うＰＨＡの生産のためには、上記の無機塩培地に、例えば、以下に示す微量成分溶液を０．３％（ｖ／ｖ）程度添加して、必須微量元素を補う必要がある。
【００８４】
［微量成分溶液］
ニトリロ三酢酸 ：１．５ｇ；
ＭｇＳＯ４ ：３．０ｇ；
ＭｎＳＯ４ ：０．５ｇ；
ＮａＣｌ ：１．０ｇ；
ＦｅＳＯ４ ：０．１ｇ；
ＣａＣｌ２ ：０．１ｇ；
ＣｏＣｌ２ ：０．１ｇ；
ＺｎＳＯ４ ：０．１ｇ；
ＣｕＳＯ４ ：０．１ｇ；
ＡｌＫ（ＳＯ４）２：０．１ｇ；
Ｈ３ＢＯ３ ：０．１ｇ；
Ｎａ２ＭｏＯ４ ：０．１ｇ；
ＮｉＣｌ２ ：０．１ｇ
（溶液１リットル中、ｐＨ７．０）
（ＰＨＡの回収工程）
本発明に用いる微生物は、このような培養方法により、上記一般式（１）で示される、側鎖末端に（置換ファニルメチル）スルファニル基を有する３−ヒドロキシアルカン酸ユニットを含むＰＨＡを産生し、その菌体内に蓄積する。従って、本発明のＰＨＡの製造方法では、培養後、その培養菌体から、目的とするＰＨＡを分離回収する工程を設ける。
【００８５】
この微生物の培養菌体からのＰＨＡの回収には、溶媒抽出法を利用して、可溶化したＰＨＡを細胞由来の不溶成分と分離し、回収する手段を用いることができる。通常行われているクロロホルム抽出が最も簡便であるが、クロロホルム以外に、ジクロロメタン、ジオキサン、テトラヒドロフラン、アセトニトリル、アセトン等が用いられる場合もある。また、有機溶媒が使用しにくい環境中においては、ＳＤＳ等の界面活性剤処理、リゾチーム等の酵素処理によって、ＰＨＡ以外の菌体内成分を可溶化・除去することによって、不溶性画分として、ＰＨＡのみを回収する方法を採ることもできる。さらには、超音波破砕法、ホモジナイザー法、圧力破砕法、ビーズ衝撃法、摩砕法、擂潰法、凍結融解法等の微生物細胞を破砕する処理を行って、細胞中に蓄積されたＰＨＡのみを分離、回収する方法を採ることもできる。
【００８６】
なお、本発明のＰＨＡの製造方法において、微生物の培養、その間における、培養される微生物におけるＰＨＡの生産と菌体への蓄積を行う工程、ならびに、培養後、その菌体からのＰＨＡ回収を行う工程は、上記の方法に限定されるものではない。
【００８７】
本発明の方法により製造される、微生物産生のＰＨＡは、一般式（１）のユニットに加えて、培地中に添加する増殖基質を利用して、脂肪酸合成系を介して生合成する、一般式（２）で示される３−ヒドロキシアルカン酸ユニット、あるいは、一般式（３）で示される３−ヒドロキシアルカ−５−エン酸ユニットを含むこともある。なお、含まれる３−ヒドロキシアルカン酸ユニットは、いずれも、その３位の炭素原子は不斉炭素であるが、その絶対配置は同じくＲ−体であり、その生分解性を保持することは勿論のことである。
【００８８】
本発明のＰＨＡは、例えば、一般的なプラスチックが使用される用途の他、デバイス材料や医薬材料、医療用シート等の医療用材料など、様々な分野においての応用が考えられる。
【００８９】
さらに、一般式（１）のユニット中の、（メチルスルファニル）フェノキシ基を有することで、ポリマーそのものに新たな物理化学的な性質が加わり、物性の改良が見込まれ、これまでに応用し得なかった分野への展開が期待できる。
【００９０】
【実施例】
以下に、実施例を挙げて、本発明をより具体的に説明する。これら実施例は、本発明の最良の実施形態の一例ではあるものの、本発明は、これら実施例により限定されうるものではない。なお、以下における「％」は特に標記した以外は重量基準である。
【００９１】
（実施例１）
ポリペプトン０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・ＹＮ２株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ピルビン酸ナトリウム０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【００９２】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ２８ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【００９３】
得られたＰＨＡの平均分子量は、ゲル・パーミエーション・クロマトグラフィー（ＧＰＣ；東ソーＨＬＣ−８２２０、カラム；東ソー ＴＳＫ−ＧＥＬ ＳｕｐｅｒＨＭ−Ｈ、溶媒；クロロホルム、ポリスチレン換算）により評価した。その結果、数平均分子量 Ｍｎ＝１５６００、重量平均分子量 Ｍｗ＝３６０００であった。
【００９４】
更に、得られたＰＨＡの構造を特定するため、以下の条件でＮＭＲ分析を行った。
【００９５】
【表１】
表１
表１に示す結果より、当該ＰＨＡは３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを含んでおり、加えて、それ以外のモノマーユニットとして、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸をも含んでおり、具体的には、その構成は
下記化学式（１０）：
【００９７】
【化２８】
に示されるＰＨＡであることが確認された。また、得られたＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを２３．０ｍｏｌ％含んでいることがわかった。
【００９９】
（実施例２）
ポリペプトン０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・Ｈ４５株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ピルビン酸ナトリウム０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１００】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ１１ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１０１】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを２１．４ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１０２】
（実施例３）
ポリペプトン０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・ジェッセニイ・Ｐ１６１株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ピルビン酸ナトリウム０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１０３】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ９ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１０４】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを１８．４ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１０５】
（実施例４）
Ｄ−グルコース０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・ＹＮ２株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、Ｄ−グルコース０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１０６】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ１８ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１０７】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを２９．６ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１０８】
（実施例５）
Ｄ−グルコース０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・Ｈ４５株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、Ｄ−グルコース０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１０９】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ１８ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１１０】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを３５．６ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１１１】
（実施例６）
酵母エキス（ＤＩＦＣＯ製）０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・ＹＮ２株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ピルビン酸ナトリウム０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１１２】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ１５ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１１３】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを１５．１ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１１４】
（実施例７）
グルタミン酸ナトリウム０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・ＹＮ２株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ピルビン酸ナトリウム０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１１５】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ２５ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１１６】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを１２．２ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１１７】
（実施例８）
ポリペプトン０．５％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・ＹＮ２株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ノナン酸０．１％、５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１１８】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ３０ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１１９】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡも、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含んでおり、従って、その構成は上記化学式（１０）で示されるＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸モノマーユニットを３．１ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１２０】
表２に、上記の各実施例における菌体乾燥重量、ポリマー乾燥重量、ポリマー乾燥重量／菌体乾燥重量比率、ならびに得られたＰＨＡポリマーの３−ヒドロキシ−５−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］吉草酸ユニット（３ＨＭＳＰｘＶ）ユニットのｍｏｌ％をまとめて示す。
【０１２１】
【表２】
表２
表３に、実施例１から８で得られたポリマーの分子量を示す。
【０１２３】
【表３】
表３
（実施例９）
ポリペプトン０．５％、６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・ＹＮ２株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、ピルビン酸ナトリウム０．５％、６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１２５】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ２２ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１２６】
得られたＰＨＡの平均分子量は、ゲル・パーミエーション・クロマトグラフィー（ＧＰＣ；東ソーＨＬＣ−８２２０、カラム；東ソー ＴＳＫ−ＧＥＬ ＳｕｐｅｒＨＭ−Ｈ、溶媒；クロロホルム、ポリスチレン換算）により評価した。その結果、数平均分子量 Ｍｎ＝１４５００、重量平均分子量 Ｍｗ＝３３０００であった。
【０１２７】
得られたＰＨＡについて、実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡは、３−ヒドロキシ−６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸ユニット及び３−ヒドロキシ−４−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］酪酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含むＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸モノマーユニットを８．１ｍｏｌ％並びに３−ヒドロキシ−４−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］酪酸モノマーユニットを９．２ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１２８】
（実施例１０）
Ｄ−グルコース０．５％、６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸０．１％を含むＭ９培地２００ｍｌに、シュードモナス・チコリアイ・Ｈ４５株を植菌し、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４８時間後、菌体を遠心分離により回収し、Ｄ−グルコース０．５％、６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸０．１％を含み、窒素源（ＮＨ４Ｃｌ）を含まないＭ９培地２００ｍｌに再懸濁して、更に、３０℃、１２５ストローク／分で振盪培養した。４６時間後、菌体を遠心分離により回収し、冷メタノールにて一度洗浄して凍結乾燥した。また、凍結乾燥された菌体の重量（菌体乾燥重量）を秤量した。
【０１２９】
この凍結乾燥菌体ペレットを２０ｍｌクロロホルムに懸濁し、６０℃で２０時間攪拌してＰＨＡを抽出した。抽出液を孔径０．４５μｍのメンブラン・フィルターで濾過した後、ロータリーエバポレーターで濃縮した。この濃縮液を、冷メタノール中に加えて、ＰＨＡを再沈澱させた。更に、沈澱物のみを回収し、次いで、真空乾燥した後、ＰＨＡポリマーの乾燥重量（回収量）を秤量した。本例では、ＰＨＡ１６ｍｇ（乾燥重量）が得られた。
【０１３０】
実施例１と同様の条件でＮＭＲ分析、平均分子量の測定を行った。ＮＭＲ分析の結果から、本例のＰＨＡは、３−ヒドロキシ−６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸ユニット及び３−ヒドロキシ−４−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］酪酸ユニットを含み、且つそれ以外に、３−ヒドロキシ酪酸、３−ヒドロキシ吉草酸などの炭素数４から１２までの３−ヒドロキシアルカン酸、または３−ヒドロキシアルケン酸のモノマーユニットを含むＰＨＡであることが確認された。なお、本例のＰＨＡは、１Ｈ−ＮＭＲスペクトル積分比より、３−ヒドロキシ−６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸モノマーユニットを１２．４ｍｏｌ％並びに３−ヒドロキシ−４−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］酪酸モノマーユニットを１５．１ｍｏｌ％含むこともわかった。
【０１３１】
表４に、上記の実施例９及び１０における菌体乾燥重量、ポリマー乾燥重量、ポリマー乾燥重量／菌体乾燥重量比率、ならびに得られたＰＨＡポリマーの３−ヒドロキシ−６−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］ヘキサン酸ユニット（３ＨＭＳＰｘＨｘ）ユニット及び３−ヒドロキシ−４−［４−（メチルスルファニル）フェノキシ］酪酸ユニット（３ＨＭＳＰｘＢ）ユニットのｍｏｌ％をまとめて示す。
【０１３２】
表５に、実施例９および１０で得られたポリマーの分子量を示す。
【０１３３】
【表４】
表４
【表５】
表５
【発明の効果】
本発明のＰＨＡの製造方法においては、原料として、ω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸含む培地中で微生物を培養し、対応する３−ヒドロキシ−ω−［（メチルスルファニル）フェノキシ］アルカン酸ユニットを含む新規な生分解性ＰＨＡが効率的に製造される。また、本発明のＰＨＡは、機能性ポリマーとして有用なポリヒドロキシアルカノエートであり、デバイス材料や医薬材料等の各分野への応用が期待できる。
【図面の簡単な説明】
【図１】実施例１で得られたＰＨＡについて測定された１Ｈ−ＮＭＲスペクトルチャートである。
Claims (23)
- 下記一般式（１）：
- 前記一般式（１）で示されるユニットに加えて、
下記一般式（２）：
- ポリマー分子の数平均分子量は、５０００〜３０００００の範囲であることを特徴とする請求項１または２に記載のポリヒドロキシアルカノエート。
- 下記化学式（４）：
- 一般式（５）：
下記一般式（１）：
- 前記ポリヒドロキシアルカノエートは、前記一般式（１）で示されるユニットに加えて、
下記一般式（２）：
- 前記培地は、ポリペプトンを含んでいることを特徴とする請求項５または６に記載の製造方法。
- 前記培地は、酵母エキスを含んでいることを特徴とする請求項５または６に記載の製造方法。
- 前記培地は、糖類を含んでいることを特徴とする請求項５または６に記載の製造方法。
- 培地中に含有される糖類は、
グリセロアルデヒド、エリトロース、アラビノース、キシロース、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトース、グリセロール、エリトリトール、キシリトール、グルコン酸、グルクロン酸、ガラクツロン酸、マルトース、スクロース、ラクトースからなる群から選択される１種類以上の化合物であることを特徴とする請求項９に記載の製造方法。 - 前記培地は、有機酸またはその塩を含んでいることを特徴とする請求項５または６に記載の製造方法。
- 培地中に含有される有機酸またはその塩は、ピルビン酸、リンゴ酸、乳酸、クエン酸、コハク酸、あるいはこれらの塩からなる群から選択される１つ以上の化合物であることを特徴とする請求項１１に記載の製造方法。
- 前記培地は、アミノ酸またはその塩を含んでいることを特徴とする請求項５または６に記載の製造方法。
- 培地中に含有されるアミノ酸またはその塩は、グルタミン酸、アスパラギン酸あるいはこれらの塩からなる群から選択される１つ以上の化合物であることを特徴とする請求項１３に記載の製造方法。
- 前記培地は、炭素数４から１２の直鎖アルカン酸またはその塩を含んでいることを特徴とする請求項５または６に記載の製造方法。
- 前記微生物の培養が、二段階以上の培養工程を含むことを特徴とする請求項５〜１５のいずれかに記載の製造方法。
- 前記微生物の培養において、二段階目以降の培地中に窒素源が含まれていないことを特徴とする請求項１６に記載の製造方法。
- 前記微生物の培養が、
（工程１−１） 下記一般式（５）：
（工程１−２） 前記一般式（５）で示される化合物を少なくとも一種類以上含み、かつ有機酸またはその塩とを含む培地中で、工程１−１で培養された微生物を更に培養する工程とを有することを特徴とする請求項１６または１７に記載の製造方法。 - 前記工程１−２で用いる培地中に含有される有機酸またはその塩は、ピルビン酸、リンゴ酸、乳酸、クエン酸、コハク酸あるいはこれらの塩からなる群から選択される１つ以上の化合物であることを特徴とする請求項１８に記載の製造方法。
- 前記微生物の培養が、
（工程１−３） 下記一般式（５）：
（工程１−４） 前記一般式（５）で示される化合物を少なくとも一種類以上含み、かつ、糖類を含む培地中で、工程１−３で培養された微生物を更に培養する工程とを有することを特徴とする請求項１６または１７に記載の製造方法。 - 下記化学式（６）：
下記化学式（４）：
- 前記微生物は、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物であることを特徴とする請求項５〜２１のいずれかに記載の製造方法。
- 前記シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物が、シュードモナス・チコリアイ ＹＮ２株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓｃｉｃｈｏｒｉｉ ＹＮ２；ＦＥＲＭ ＢＰ−７３７５）、シュードモナス・チコリアイ Ｈ４５株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｃｉｃｈｏｒｉｉ Ｈ４５；ＦＥＲＭ ＢＰ−７３７４）、シュードモナス・ジェッセニイ Ｐ１６１株（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｊｅｓｓｅｎｉｉ Ｐ１６１；ＦＥＲＭ ＢＰ−７３７６）のうちから選択される微生物であることを特徴とする請求項２２に記載の製造方法。
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