JP3536039B2 - Htlv−i腫瘍に対する抗腫瘍抗原又はその抗原エピトープ - Google Patents
Htlv−i腫瘍に対する抗腫瘍抗原又はその抗原エピトープInfo
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Description
(ATL)等のヒトT細胞白血病ウイルスI型(HTL
V−I)腫瘍に対して抗腫瘍効果を有する細胞傷害活性
T細胞(CTL)を誘導することができる抗原エピトー
プや、該抗原エピトープペプチドによるHTLV−I腫
瘍に対する抗腫瘍効果を有するCTLの誘導活性を増強
するアジュバントのスクリーニング方法や、前記CTL
認識抗原エピトープ又はそれらのDNAを有効成分とす
る免疫応答誘導用ワクチン等に関する。
ウイルス脊髄症/熱帯性痙性対麻痺(HAM/TS
P)、その他の炎症性疾患などの発症に関与している
(Blood 50, 481-492, 1977、Proc. Natl. Acad. Sci.
USA 77, 7415-7419, 1980、Proc. Natl. Acad. Sci. US
A 78, 6476-6480, 1981、Lancet. 2, 407-410, 1985、L
ancet. 1, 1031-1032, 1986)。HTLV−Iは、その
envと3′LTRの間にpXという特殊な配列を持
ち、このpX領域は他の動物の発癌性レトロウイルスに
はみられず、その産物のTax蛋白はHTLV−Iの多
彩な病原性に重要な役割を演じていると考えられてい
る。また、上記HTLV−IのTaxはウイルス調節タ
ンパク質であり、インビトロでラット及びヒトの細胞を
不死化させることができることが知られている(Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 87, 1071-1075, 1990、Blood 8
6, 4243-4249, 1995、J. Virol. 66, 4570-4575, 199
2)。これらのことは、HTLV−IのTaxがHTL
V−I誘導による白血病発症のメカニズムに関与してい
ることを強く示唆しているが、インビボでのATL発症
のメカニズムは未だ明らかになっていない。
に対する宿主細胞性免疫のレベルは、HAM/TSP患
者のものとは異なることが明らかになっており、HAM
/TSP患者及び無症候性HTLV−Iキャリアから
は、HTLV−I特異的CTLは見い出されるが、AT
L患者からはCTLが見出されることはほとんどないこ
とが報告されている(J. Immunol. 130, 2942-2946, 19
83、J. Exp. Med. 158, 994-999, 1983、J. Immunol. 1
33, 1037-1041, 1984、Nature 348, 245-248, 1990、Vi
rology 188, 628-636, 1992、Int. J. Cancer 54, 582-
588, 1993)。これらの報告から、宿主細胞の免疫がH
TLV−I関連疾患の発症に影響を及ぼすと考えられて
いる。
するという重要な役割を果たすだけでなく、腫瘍根治の
役割も担っている。HTLV−IキャリアにおけるHT
LV−I特異的CD8+CTLにおいては、HTLV−
IのTaxを認識し(Nature 348, 245-248, 1990、In
t.Immunol. 3, 761-767, 1991)、インビトロでATL
細胞を溶解することが、本発明者らや他のグループによ
って報告されている(J. Immunol. 133, 1037-1041, 19
84、Int. J. Cancer 54, 582-588, 1993)。これらのこ
とから、HTLV−I特異的CTLsは、HTLV−I
の誘導による腫瘍細胞の増殖に対する宿主細胞の免疫監
視機構における重要なエフェクターであることが示唆さ
れる。しかしながら、上記のCTLの役割は、インビボ
でHTLV−I腫瘍に対するものか、単に感染の結果に
よるものなのかは、未だ明らかにされていない。
けるCTLの効果を明確にするため、本発明者らはAT
L様疾患の2種類の実験ラットモデル系を開発した(J.
Virol. 73, 6031-6040, 1999、J. Virol. 74, 428-43
5, 2000、特願平10−315174)。一つは、HT
LV−I不死化ラット細胞株を接種した無胸腺ラットの
T細胞リンパ腫のモデルである(J.Virol. 73, 6031-60
40, 1999)。このモデルでは、免疫T細胞を養子移入す
ることによって、致死性のリンパ腫からラットを守っ
た。もう一方のモデルにおいては、T細胞活性化に対す
る共刺激シグナルを阻害するために抗CD80及びCD
86モノクローナル抗体を用いて、免疫正常ラットを処
理することにより、T細胞リンパ腫の発達を誘導した
(J.Virol. 74, 428-435, 2000)。これらの結果から、
インビボでのHTLV−I腫瘍の増殖を防ぐという宿主
T細胞免疫応答の役割が強く示唆される。
におけるCTLの研究結果は、プレATL患者における
HTLV−I特異的CTLが増強することにより、AT
L発症から患者を守る可能性が示唆されている。ATL
の治癒率は、化学療法に対して抵抗性を有することから
リンパ球増殖性疾患の中でも極端に低く、このことから
疾患の早い段階においての免疫学的アプローチによる治
療法の開発が期待されている。効果的な抗腫瘍免疫応答
を誘導するためには、腫瘍抗原を正確に特定し、細胞性
免疫が認識する強力な免疫原を宿主に投与しなければな
らない。特に、腫瘍を認識する主な細胞群の一つである
CD8+CTLの応答を誘導させるためには、抗原提示
細胞のクラスII抗原と同じようにMHCクラスIにより
プロセシングされた適切なペプチドの提示が必要である
(Nature 343, 692-696, 1989)。MHCクラスIによ
る抗原提示の経路が優先されることから、標的抗原をコ
ードする外来性遺伝子の分泌や発現に用いることができ
る種々のウイルスベクターが提案されている(J. Natl.
Cancer Inst. 90, 1894-1900, 1998)。無処理のDN
Aを直接投与しても、同様の効果が得られることが考え
られている(Annu. Rev. Immunol. 18, 927-974, 200
0)。また、DNAをベースとしたワクチンより安全な
MHC分子に直接結合するCTLエピトープに相当する
ペプチドをベースとしたワクチンも考えられている(In
t. J. Cancer63, 883-885, 1995)。
の保有率を持つHTLV−Iの感染によって引き起こさ
れる腫瘍性疾患であるが、化学療法剤に抵抗性であるた
め、極めて予後の悪い悪性腫瘍とされてきた。一方で種
々の臨床的観察から、宿主細胞性免疫、特にCTLの抗
腫瘍効果が示唆されている。本発明の課題は、ATL等
のHTLV−I腫瘍に対して抗腫瘍効果を有するCTL
を誘導することができるCTL認識抗原又は該抗原エピ
トープのスクリーニング方法や、HTLV−I腫瘍に対
して抗腫瘍効果を有するCTLを誘導することができる
CTL認識抗原若しくは該抗原エピトープや、該抗原エ
ピトープペプチド等による、HTLV−I腫瘍に対する
抗腫瘍効果を有するCTLの誘導活性を増強するアジュ
バントのスクリーニング方法や、前記CTL認識抗原若
しくは該抗原エピトープ又はそれらのDNAを有効成分
とする免疫応答誘導用ワクチン等を提供することにあ
る。
題を解決するために鋭意研究し、nu/+ラット由来H
TLV−I感染細胞株FPM1−V1AXで免疫した同
系免疫正常ラット由来の脾臓T細胞を、ホルマリン固定
FPM1−V1AXで2週間おきに刺激を繰り返し行う
ことによりHTLV−I特異的CTL細胞株を樹立し、
HTLV−1特異的CTLの主要な認識エピトープを含
むと考えられる各種合成ペプチドで感作した標的細胞G
14に対する上記HTLV−I特異的CTL細胞株の細
胞傷害活性を検討したところ、標的細胞が特に強いCT
L感受性を示すペプチド、すなわちHTLV−1腫瘍に
対して抗腫瘍効果を有するCTLを誘導することができ
るCTL認識抗原の主要エピトープを同定した。かかる
エピトープの合成ペプチドを免疫原とし、アジュバント
を用いることにより免疫正常ラットに腫瘍抗原エピトー
プ特異的なCTLが誘導可能であることや、この誘導さ
れたCTLが生体内におけるHTLV−I感染腫瘍細胞
の増殖を強く抑制しうることを確認し、本発明を完成す
るに至った。
アミノ酸配列からなるペプチド、又は、このアミノ酸配
列において、1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若
しくは付加されたアミノ酸配列からなり、HTLV−I
腫瘍に対して抗腫瘍作用を有するCTLを誘導すること
ができるペプチドからなることを特徴とするHTLV−
I腫瘍に対して抗腫瘍効果を有するCTLを誘導するこ
とができるCTL認識抗原エピトープ(請求項1)に関
する。
抗原エピトープと被検アジュバントとを用いて誘導した
CTLをHTLV−I関連疾患モデル非ヒト動物に投与
し、該非ヒト動物における腫瘍の変化を測定・評価する
ことを特徴とするHTLV−I腫瘍に対する抗腫瘍効果
を増強するアジュバントのスクリーニング方法(請求項
2)や、HTLV−I関連疾患モデル非ヒト動物が、成
人T細胞白血病モデル非ヒト動物であることを特徴とす
る請求項2記載のHTLV−I腫瘍に対する抗腫瘍効果
を増強するアジュバントのスクリーニング方法(請求項
3)や、非ヒト動物が、ラットであることを特徴とする
請求項2又は3記載のHTLV−I腫瘍に対する抗腫瘍
効果を増強するアジュバントのスクリーニング方法(請
求項4)や、請求項1記載のCTL認識抗原エピトープ
と被検アジュバントとを用いて誘導したCTLと、HT
LV−I感染腫瘍細胞株とを接触させ、該CTLの細胞
傷害活性を測定・評価することを特徴とするHTLV−
I腫瘍に対する抗腫瘍効果を増強するアジュバントのス
クリーニング方法(請求項5)に関する。
識抗原エピトープを有効成分として含有することを特徴
とする免疫応答誘導用ワクチン(請求項6)や、請求項
1記載のCTL認識抗原エピトープをコードするDNA
を有効成分として含有することを特徴とする免疫応答誘
導用ワクチン(請求項7)や、HTLV−I腫瘍に対す
る抗腫瘍効果を増強するアジュバントをさらに含むこと
を特徴とする請求項6又は7記載の免疫応答誘導用ワク
チン(請求項8)に関する。
効果を有するCTLを誘導することができるCTL認識
抗原又は該抗原エピトープのスクリーニング方法として
は、ATL等のHTLV−I関連疾患モデル非ヒト動物
に、被検物質によって誘導されたCTLを投与し、かか
る非ヒト動物における腫瘍の変化を測定・評価する方法
や、被検物質によって誘導されたCTLと、HTLV−
I感染腫瘍細胞株とを接触させ、該CTLの細胞傷害活
性を測定・評価する方法や、被検物質で感作した標的細
胞又は被検物質を発現する標的細胞と、HTLV−I特
異的CTL細胞株とを接触させ、該HTLV−I特異的
CTL細胞株の細胞傷害活性を測定・評価する方法を具
体的に挙げることができる。ここで、CTLを誘導する
ことができるCTL認識抗原又は該抗原エピトープと
は、インビボやインビトロにおいてCTLを誘導するこ
とができるCTL認識抗原又は該抗原エピトープを意味
する。
としては、HTLV−Iを感染させることにより、AT
L、HAM/TSP、HAAP、ブドウ膜炎、気管支肺
胞炎、シェーグレン症候群類似の唾液腺炎等のHTLV
−I関連疾患を起こす非ヒト動物であれば特に制限され
るものではないが、再現性よく長期間にわたってHTL
V−I感染腫瘍細胞を増殖させることができるものが好
ましい。また本発明における非ヒト動物としては、マウ
ス、ラット、モルモット、サル、ネコ、ウサギ等の非ヒ
ト哺乳類動物を具体的に挙げることができるが、これら
に限定されるものではない。以下、ATLモデル非ヒト
動物の作製方法を、ATLモデルラットを例にとって説
明する。
ラットにHTLV−I感染腫瘍細胞株を投与することに
より得ることができるが、T細胞機能を欠損した非ヒト
動物の皮下、腹腔内、静脈内等にHTLV−I感染腫瘍
細胞株を投与することによって得られるATLモデルラ
ットの方が、再現性の点及び体内でHTLV−I感染腫
瘍細胞を増殖/継代させることができる点で好ましい。
そして、評価の際に用いる野生型ラットとしては、AT
Lモデルラットと同系の野生型ラットを用いることが好
ましい。上記T細胞機能を欠損した非ヒト動物として
は、ヌード非ヒト動物等を具体的に挙げることができる
がこれらに限定されるものではない。また、上記HTL
V−I感染腫瘍細胞株としては、公知の方法によりHT
LV−Iを感染させた細胞株で、且つ野生型非ヒト動物
とMHCが一致しているものであればどのようなもので
もよく、例えば、FPM1−V1AX等の細胞株を具体
的に挙げることができる。
検物質としては、タンパク質、ペプチド、DNA、RN
A、アンチセンスDNA、アンチセンスRNA等を具体
的に挙げることができる。上記被検物質で感作した標的
細胞、又は被検物質を発現する標的細胞としては、MH
Cが一致している細胞であればどのような細胞でもよい
が、CD8+T細胞株であるG14細胞(J. Virol. 74,
9610-9616, 2000)を好ましく例示することができる。
際の発現系としては、上記被検物質を細胞内で発現させ
ることができる発現系であればどのようなものでもよ
く、染色体、エピソーム及びウイルスに由来する発現
系、例えば、細菌プラスミド由来、酵母プラスミド由
来、SV40のようなパポバウイルス、ワクシニアウイ
ルス、アデノウイルス、鶏痘ウイルス、仮性狂犬病ウイ
ルス、レトロウイルス由来のベクター、バクテリオファ
ージ由来、トランスポゾン由来及びこれらの組合せに由
来するベクター、例えば、コスミドやファージミドのよ
うなプラスミドとバクテリオファージの遺伝的要素に由
来するものを挙げることができる。この発現系は発現を
起こさせるだけでなく発現を調節する制御配列を含んで
いてもよい。また、読み枠を変えて翻訳することができ
る発現ベクターシリーズも有利に用いることができる。
系の宿主細胞への導入は、Davisら(BASIC METHODS IN
MOLECULAR BIOLOGY, 1986)及びSambrookら(MOLECULAR
CLONING: A LABORATORY MANUAL, 2nd Ed., Cold Sprin
g Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.
Y., 1989)などの多くの標準的な実験室マニュアルに記
載される方法、例えば、リン酸カルシウムトランスフェ
クション、DEAE−デキストラン媒介トランスフェク
ション、トランスベクション(transvection)、マイクロ
インジェクション、カチオン性脂質媒介トランスフェク
ション、エレクトロポレーション、形質導入、スクレー
プローディング (scrape loading)、弾丸導入(ballisti
c introduction)、感染等により行うことができる。
ては、HTLV−Iを特異的に認識するCTL細胞株で
あれば特に制限されるものではないが、MHCクラスI
に拘束されるものが好ましく、かかるMHCクラスIに
拘束されたHTLV−I特異的CTL細胞株は公知の方
法、例えば、MHCクラスI分子を発現する非ヒト動物
由来のT細胞にHTLV−Iを感染させた細胞を、T細
胞機能が欠損した非ヒト動物(ヌード非ヒト動物)の体
内で増殖させることによりHTLV−I感染腫瘍細胞株
を樹立し、この樹立した細胞株で免疫した免疫正常非ヒ
ト動物の脾臓T細胞を、ホルマリン固定HTLV−I感
染腫瘍細胞株で刺激を繰り返すことにより得ることがで
きる。
HTLV−I腫瘍に対して抗腫瘍効果を有するCTLを
誘導することができるCTL認識抗原としては、配列番
号1に示されるHTLV−IのTaxタンパク質や、配
列番号1に示されるアミノ酸配列において1若しくは数
個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸
配列からなり、HTLV−I腫瘍に対して抗腫瘍作用を
有するCTLを誘導することができるタンパク質等を挙
げることができ、上記スクリーニング方法により得られ
る、抗原エピトープとしては、配列番号2、配列番号3
又は配列番号4に示されるアミノ酸配列からなるペプチ
ド、特に好ましくは本発明の配列番号2に示されるアミ
ノ酸配列からなるペプチドや、これらアミノ酸配列にお
いて、1若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは
付加されたアミノ酸配列からなり、HTLV−I腫瘍に
対して抗腫瘍作用を有するCTLを誘導することができ
るペプチド等を具体的に挙げることができるが、これら
に限定されるものでない。
る抗腫瘍効果を増強するアジュバント、すなわち、より
効率よくHTLV−I腫瘍に対して抗腫瘍効果を有する
CTL認識抗原又は該抗原エピトープ特異的なCTLを
誘導することができるアジュバンドのスクリーニング方
法としては、上記のCTL認識抗原又は該抗原エピトー
プ、好ましくは配列番号2に示されるアミノ酸配列から
なる抗原エピトープペプチドと被検アジュバントとを用
いて誘導したCTLを、成人T細胞白血病モデル非ヒト
動物等のHTLV−I関連疾患モデル非ヒト動物に投与
し、該非ヒト動物における腫瘍の変化を測定・評価する
方法や、上記のCTL認識抗原又は該抗原エピトープ、
好ましくは配列番号2に示されるアミノ酸配列からなる
抗原エピトープペプチドと被検アジュバントとを用いて
誘導したCTLと、HTLV−I感染腫瘍細胞株とを接
触させ、該CTLの細胞傷害活性を測定・評価する方法
であれば、特に制限されるものではなく、かかるスクリ
ーニング方法により得られるアジュバントとして、例え
ば、効率よくペプチド特異的なCTLを誘導することが
できるCpGモチーフを含むISS−ODN(Immunost
imulatory DNA sequences-oligodeoxynucleotide;Nat.
Med. 3, 849-854, 1997)、細胞傷害性T細胞を刺激す
るQS21(Quil1aia saponaria、Cambridge Biotec
h,Worcester,MAより商業的に入手可能)、水酸化アル
ミニウム、リン酸アルミニウム、酸化アルミニウム、油
性エマルジョン、サポニン、ビタミンE溶解物等を具体
的に挙げることができる。
HTLV−I腫瘍に対して抗腫瘍効果を有するCTLを
誘導することができるCTL認識抗原若しくは該抗原エ
ピトープ又はそれらをコードするDNAは、細胞性免疫
や体液性免疫等の免疫応答誘導用ワクチンとして用いる
ことができる。本発明の免疫応答誘導用ワクチンとして
は、HTLV−I腫瘍に対して抗腫瘍効果を有するCT
Lを誘導することができるCTL認識抗原、例えば、配
列番号1に示されるHTLV−IのTaxタンパク質
や、配列番号1に示されるアミノ酸配列において、1若
しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加された
アミノ酸配列からなり、HTLV−I腫瘍に対して抗腫
瘍作用を有するCTLを誘導することができるタンパク
質、又は、CTL認識抗原エピトープ、例えば、本発明
の配列番号2に示されるアミノ酸配列からなるペプチド
や、配列番号2に示されるアミノ酸配列において、1若
しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加された
アミノ酸配列からなり、HTLV−I腫瘍に対して抗腫
瘍作用を有するCTLを誘導することができるペプチド
を有効成分として含有する免疫応答誘導用ワクチンや、
HTLV−I腫瘍に対して抗腫瘍効果を有するCTLを
誘導することができる上記CTL認識抗原又は該抗原エ
ピトープをコードするDNAを有効成分として含有する
免疫応答誘導用ワクチンなどを挙げることができる。ま
た、本発明の免疫応答誘導用ワクチンとしては、さらに
細胞性の又は局所的な免疫を増強する種々のアジュバン
トを含むものがより好ましく、かかるアジュバントとし
ては、ISS−ODN等の前記HTLV−I腫瘍に対す
る抗腫瘍効果を増強するアジュバントのスクリーニング
方法により得られるアジュバントを例示することができ
る。アジュバントを用いる場合、アジュバントとなる種
々の菌体成分や毒素等と、前記CTL認識抗原又は該抗
原エピトープ、好ましくは配列番号2に示されるアミノ
酸配列からなる抗原エピトープペプチドとを連続してコ
ードするDNAから作製した組換え融合タンパクあるい
は組換え融合ペプチドとして用いることもできる。
は、医薬的に容認可能な担体または希釈剤、免疫賦活
剤、添加剤等を含んでいてもよい。担体または希釈剤と
しては、例えば、SPGAなどの安定化剤や、ソルビト
ール、マンニトール、澱粉、スクロース、グルコース、
デキストラン等の炭水化物や、アルブミン、カゼイン等
のタンパク質や、ウシ血清、スキムミルク等のタンパク
質含有物質や、リン酸緩衝液、生理食塩水、水等の緩衝
液などを具体的に挙げることができる。免疫賦活財とし
ては、インターロイキン−2(IL−2)、インターロ
イキン−12(IL−12)、腫瘍壊死因子α(THF
−α)等のサイトカインを具体的に例示することがで
き、添加剤としては、低分子量のポリペプチド(約10
残基未満)、タンパク質、アミノ酸、グルコース又はデ
キストランを含む炭水化物、EDTAなどのキレート
剤、蛋白質安定化剤、微生物増殖阻止若しくは抑制剤等
を例示することができるがこれらに限定されるものでは
ない。
物としては、前記免疫応答誘導用ワクチンの他に、免疫
応答誘導用ワクチンを非ヒト動物等に投与することによ
り誘導されるHTLV−I認識CTLを有効成分として
含有するものを挙げることができ、これら医薬品や医薬
組成物は、経口、静脈内、腹腔内、鼻腔内、皮内、皮
下、筋肉内等により投与することができる形状のものが
好ましい。投与すべき有効量は、医薬品や医薬組成物の
種類・組成、投与方法、患者の年齢や体重等を考慮して
適宜決定することができ、これらを1日あたり1〜数回
投与することが好ましい。また、経口投与する場合、通
常、製剤用担体と混合して調製した製剤の形で投与され
る。この際、製剤に用いることができる担体としては、
製剤分野において常用され、かつ本発明のペプチドと反
応しない物質が用いられる。
顆粒剤、散剤、シロップ剤、懸濁剤、坐剤、軟膏、クリ
ーム剤、ゲル剤、貼付剤、吸入剤、注射剤等を具体的に
例示することができ、これらの製剤は常法に従って調製
され、特に液体製剤にあっては、用時、水又は他の適当
な媒体に溶解又は懸濁する形態とすることもできる。ま
た錠剤、顆粒剤は周知の方法でコーティングしてもよ
い。注射剤の場合には、本発明のペプチドを水に溶解さ
せて調製されるが、必要に応じて生理食塩水あるいはブ
ドウ糖溶液に溶解させてもよく、また緩衝剤や保存剤を
添加してもよい。またこれらの製剤は、治療上価値のあ
る他の成分を含有していてもよい。
するCTLを誘導することができるCTL認識抗原又は
該抗原エピトープは、HTLV−Iの感染予防及び/又
はHTLV−I関連疾患の症状改善用食品素材として、
プリン、クッキー、パン、ケーキ、ゼリー、煎餅などの
焼き菓子、羊羹などの和菓子、冷菓、チューインガム等
のパン・菓子類や、うどん、そば等の麺類や、かまぼ
こ、ハム、魚肉ソーセージ等の魚肉練り製品や、ヨーグ
ルト、ドリンクヨーグルト、ジュース、牛乳、豆乳、酒
類、コーヒー、紅茶、煎茶、ウーロン茶、スポーツ飲料
等の各種飲料や、みそ、しょう油、ドレッシング、マヨ
ネーズ、甘味料等の調味類や、豆腐、こんにゃく、その
他佃煮、餃子、コロッケ、サラダ等の各種総菜へ配合
し、機能性食品として摂取することもできる。
的に説明するが、この発明の範囲はこれらの例示に限定
されるものではない。 実施例1(細胞株) FPM1−V1AX(J. Virol. 73, 6031-6040, 199
9)は、免疫正常ラットF344/N Jcl-rnu/+(nu/+)
(4週齢雌ラット;Clea Japan, Inc.社製)のT細胞に
HTLV−Iを感染させて樹立した不死化ラットT細胞
株FPM1を、ヌードラットF344/N Jcl-rnu/ rnu(n
u/nu)の体内で増殖させて樹立した(J. Virol. 7
3, 6436-6443, 1999)。FPM−SVは、nu/+ラッ
ト由来の腎臓細胞株にHTLV−I陰性SV40を形質
転換することによって樹立した(J. Virol. 73, 6031-6
040, 1999)。WKAHラットの脾臓細胞から樹立した
HTLV−I感染T細胞株(TARS−1;J. Exp. Me
d. 159, 1105-1116, 1984)は、北海道大学のDr. T. Yo
shikiから提供されたものを用いた。RT1.A1/TA
RS−1は、RT1.A1発現プラスミドであるpRe
p10をTARS−1細胞にトランスフェクションし、
インビトロで400μg/mlのハイグロマイシンで選
択することによって樹立した。なお、pRep10(Im
munogenetics 39, 447, 1994)は、Dr. S. Salgar(Mia
mi Univ., FL)から提供されたものを用い、上記RT
1.A1/TARS−1細胞におけるRT1.A1の発現
は免疫蛍光分析により確認した。nu/+ラットから樹
立したIL−2依存HTLV−I陰性CD8+T細胞株
であるG14及びTax遺伝子を安定発現する細胞であ
るG14−Tax細胞株は、文献(J. Virol. 74, 9610
-9616, 2000)記載の方法により調製した。また、使用
した全細胞株は、10%の熱不活性FCS(Whittaker,
Walkersville, MD)、ペニシリン、及びストレプトマ
イシンを含むRPMI1640で保存し、上記G14及
びG14−Taxにおいては、10U/mlの組換えヒ
トIL−2(rhIL-2)(塩野義製薬社製)を添加したR
PMI1640培地で保存した。
M1−V1AX細胞を2週間の間隔をあけて2回投与し
て免疫した。最終免疫の1週間後、脾臓T細胞を単離
し、ナイロンウールカラムで精製した後、さらに補体溶
解法(complement lysis method)によりリンパ球サブ
セットを精製した。簡潔に説明すると、脾臓T細胞の浮
遊物を、抗ラットCD8モノクローナル抗体(R1−1
0B5)又は抗ラットCD4モノクローナル抗体(RT
H−7)と混合し、氷上で30分間インキュベーション
した。1%FCS−PBSで洗浄した後、上記細胞を2
%のウサギ血清(Cedarlane Laboratories Limited, On
tario, Canada)を含むRPMI1640培地中におい
て37℃で45分間インキュベーションし、10%FC
S−RPMI1640で2回洗浄した。その後、フロー
サイトメトリー分析によりCD8+又はCD4+T細胞が
98%以上に濃縮されているかどうかを確認した。
抗腫瘍効果) 本発明者らは、以前にHTLV−I感染腫瘍細胞株FP
M1−V1AXを投与したF344/N Jcl-rnu/rnu(nu/
nu)ラットに、HTLV−I感染細胞で免疫したラッ
トの脾臓T細胞を養子移入することにより悪性リンパ腫
の増殖を効果的に阻害できることを報告している(J. V
irol. 73, 6031-6040, 1999)。そこで、インビボでの
腫瘍の退行に直接必要とされる免疫T細胞のサブセット
を明らかにするために、実施例2記載の方法により単離
したCD4+又はCD8+細胞群を用いて、F344/N Jcl-r
nu/rnu(nu/nu)ラットの各サブセットに対する抗
腫瘍効果を調べてみた。4週齢のnu/nu雌ラット
(Clea Japan, Inc.社製)に2×107のFPM1−V
1AX細胞株を皮下接種すると同時に、実施例2により
単離した107のCD4+T細胞(▲)、CD8+T細胞
(■)又は全T細胞(●)を腹腔内投与し、それぞれの
皮下腫瘍の大きさをカリパスで1日おきに測定し、腫瘍
増殖の抑制効果を調べてみた。なお、腫瘍の大きさ
(V;mm3)は、上記測定により最長表面長(mm;
a)と幅(mm;b)を決定し、文献(J. Virol. 73,
6031-6040, 1999)記載の公式(V=ab2/2)を用い
て求めた。なお、FPM1−V1AX細胞株を単独で皮
下接種した4週齢のnu/nuラットをコントロール
(○)として用いた。
D8+T細胞は共に、全T細胞と同様に、HTLV−I
感染腫瘍細胞株の成長を阻害する効果を有しているのが
確認できた。腫瘍ラットの肺及び縦隔洞リンパ節におい
ては結節が明らかに確認できるのに対して、免疫T細胞
のサブセットをトランスファーしたラットにおいては、
転移性結節はみられなかった。
(CD4+T細胞、CD8+T細胞、又は全T細胞)をト
ランスファーすることにより、腫瘍が完全に退行した2
8日目における各nu/nuラットから脾臓T細胞(C
D4+T細胞、CD8+T細胞、全T細胞)をそれぞれ単
離し、それぞれの標的細胞に対する細胞傷害活性を調べ
てみた。各ウエルにつき2mlの10%FCS−RPM
I1640が入った24ウエルプレート中で、上記各種
脾臓T細胞(5×106細胞/ウエル)とホルマリンで
固定したFPM1−V1AX細胞(2×106細胞/ウ
エル)とをそれぞれ6日間共培養し、かかる細胞(E;
エフェクター細胞)と標的細胞(T;FPM1−V1A
X、同系のT細胞株G14、又はG14−Tax)の割
合(E/T)を10として、文献(Immunology 14, 181
-196, 1968)記載のように51Cr放出分析を6時間行
い、標的細胞に対する細胞傷害活性を測定し、次式によ
り計算した。なお、値(平均値±SD)は3回の実験か
ら求めた。
各種T細胞はFPM1−V1AX及びG14−Taxに
対して高い細胞傷害活性を示したが、HTLV−I陰性
G14細胞に対する細胞傷害活性はみられなかった。な
お、上記各種免疫T細胞(CD4+又はCD8+免疫T細
胞)をトランスファーしたnu/nuラットから単離さ
れた脾臓T細胞においては、フローサイトメトリーによ
りそれぞれCD4又はCD8に対して陽性であることが
顕著に確認できた。これらの結果は、CD4+又はCD
8+T細胞のHTLV−I特異的細胞傷害活性がインビ
ボにおけるHTLV−I感染腫瘍細胞の直接の排除に強
く関与していることを示唆している。
性抗原を調べてみるために、北海道大学のDr. H. Shida
から提供された4種類のHTLV−I遺伝子を含む組換
えワクシニアウイルス(rvv;Embo J. 6, 3379-338
4, 1987、J. Virol. 62, 3718-3728, 1988、Cell 55, 1
97-209, 1988)、すなわち、HTLV−Iのenv遺伝
子を含むrvv(WR−env)、HTLV−Iのga
g遺伝子を含むrvv(WR−gag)、及びHTLV
−IのpX遺伝子を含むrvv(WR−40X及びWR
−27X)を用いた。WR−27Xはp21X、p27
rex及びp40taxを、WR−40Xはp21X及
びp40taxを、発現する組換えワクシニアウイルス
である。10m.o.i(multiplicity of infection)で上
記各HTLV−I−rvv(WR−40X、WR−27
X、WR−env、WR−gag)をFPM−SV細胞
に37℃で1時間感染させた。インキュベーション後、
10%FCS−RPMI1640で細胞を1回洗浄し、
10%FCS−RPMI1640で37℃で12時間培
養した。かかる感染細胞を以下の実施例に用いるために
放射性同位元素により標識した。
LV−I抗原) FPM1−V1AXを腹腔内投与したnu/+ラットか
ら単離した脾臓T細胞を、ホルマリンで固定したFPM
1−V1AXで6日間刺激したものをエフェクター細胞
として以下の実施例に用いた。標的細胞としては、FP
M1−V1AX、FPM−SV、及び、実施例4により
調製した各種HTLV−I−rvv感染FPM−SV細
胞(WR−40X、WR−27、WR−env、WR−
gag)を用いた。なお、HTLV−I遺伝子を含まな
いrvvをFPM−SV細胞に感染させたもの(WR−
HA)をコントロールとして用いた。上記HTLV−I
−rvv感染FPM−SV細胞に対して免疫蛍光分析を
行ったところ、これらの細胞はMHCクラスIに対して
陽性を示すが、MHCクラスII抗原に対しては陰性であ
ったことから、これらの細胞はMHCクラスIに限定さ
れた抗原を選択的に発現していると考えられる。
クター細胞(E)と標的細胞(T)とを図3に示す各E
/Tの割合で用いることにより51Cr放出分析を行っ
た。なお、測定値(平均値±SD)は3回の実験から求
めた。その結果を図3に示す。これらの結果から、エフ
ェクター細胞は、FPM1−V1AXに対しては高い傷
害性を有するが、FPM−SV細胞に対しては傷害性を
示さなかった。また、HTLV−I−rvv感染FPM
−SV細胞のうち、HTLV−IのTaxを発現するW
R−40X感染細胞とWR−27X感染細胞はエフェク
ター細胞に対して最も高い感受性を示した。HTLV−
Iのenv(エンベロープ)を発現する標的細胞もまた
感受性を示していたが、その度合いはHTLV−IのT
ax発現細胞より低かった。しかし、HTLV−Iのg
agを発現するFPM−SV細胞に対する細胞傷害活性
は、コントロールとしての標的細胞(WR−HA)に対
する細胞傷害活性と同様に低かった。
るHTLV−I特異的CTL細胞株の細胞傷害性の阻害
を調べた。長期間培養することによって得られたHTL
V−IのTaxに対してより特異的なCD8+CTL細
胞株と、標的細胞([3H]−TdR標識FPM1−V
1AX:5×103細胞/ウエル)とを、E/Tの割合
が10となるように96ウエルのU底プレートに移し、
さらに競合物と標的細胞との割合が図4に示される値に
なるように競合物[非標識化FPM1−V1AX
(●)、G14−Tax(■)、又はG14(▲)]を
加え、37℃で6時間インキュベーションした。その
後、Micro96Harvester(Skatron社
製)を用いて細胞を回収した後、残存した標的細胞量を
マイクロプレートβ−カウンター(microplate β-coun
ter;Micro Beta Plus社製)により測定し、特異的な細
胞傷害活性(%)を次式により計算した。値(平均値±
SD)は3回の実験から求めた。なお、上記標的細胞
は、あらかじめ106細胞あたり3.7MBqの[3H]
−TdRと共に37℃で12時間インキュベーションし
た後、3回洗浄したものを用いた。
FPM1−V1AXに対するCTL細胞株の細胞傷害活
性は、非標識化G14−Taxを増加させることにより
顕著に阻害されたが、G14細胞では阻害されなかっ
た。以上のことから、HTLV−IのTaxが、インビ
ボで同系のHTLV−I感染細胞を投与したnu/+ラ
ット由来のCTLが特異的に認識する主な抗原であるこ
とがわかった。
V−I特異的細胞傷害活性のMHCクラスI拘束) 長期培養でHTLV−I特異的CTL細胞株(2種類の
CD8+CTL細胞株及びCD4+CTL細胞株)を誘導
するために、2.5×106細胞/ウエルの脾臓T細胞
を、20U/mlのrhIL−2が添加された10%F
CS−RPMI1640中で同数のホルマリン固定化F
PM1−V1AX細胞といっしょに共培養し、2週間毎
にホルマリン固定化FPM1細胞で定期的に刺激するこ
とにより2種類のCD8+CTL細胞株(CD8+CTL
−1及びCD8+CTL−2)及びCD4+CTL細胞株
を樹立し、これらの誘導されたHTLV−I特異的CT
L細胞株を用いて細胞傷害活性に対するMHCクラスI
拘束性を実施例5の方法と同様に調べてみた。なお、標
的細胞としては、実施例5の方法と同様に[3H]−T
dRで標識化された4つの細胞株、ラットMHCクラス
I分子であるRT1.A1を発現するnu/+ラット由
来のFPM1−V1AXと、RT1.A1を発現しない
WKAHラット由来のW7KSVと、RT1.A1を発
現しないWKAHラット由来のTARS−1と、TAR
S−1細胞にRT1.A1cDNAを安定的にトランス
フェクションすることにより樹立した細胞株RT1.A
1/TARS−1とを用いた。
+CTL細胞株(CD8+CTL−1及びCD8+CTL
−2)は、TARS−1細胞ではなくRT1.A1/T
ARS−1細胞を著しく溶解したが、FPM1−V1A
X細胞で免疫したnu/+ラット由来のCD4+CTL
細胞株では溶解が確認できなかった。これらのことか
ら、nu/+ラット由来のHTLV−IのTaxに対し
て特異的なCD8+CTL細胞株の細胞傷害活性は、ラ
ットMHCクラスIのRT1.A1によって拘束される
ことがわかった。
識エピトープの同定) FPM1−V1AXで免疫したnu/+ラットから得た
HTLV−IのTax特異的CD8+CTLが認識する
標的エピトープを同定するため、ペプチドマッピング分
析を行った。ラットMHCクラスI(RT1.A1)に
拘束されるHTLV−I特異的CTL細胞株は、nu/
+ラット由来HTLV−I感染細胞株FPM1−V1A
Xで免疫した同系免疫正常ラット由来の脾臓T細胞を、
ホルマリン固定FPM1−V1AXで2週間おきに繰り
返し刺激を行うことにより樹立した。また、図6、7及
び8に示される、HTLV−IのTaxのアミノ酸配列
に相当する一連の合成ペプチドのいくつかは、製造者が
指定する化学物質やプログラムサイクルを用いて、自動
ペプチド合成機(model PSSM-8; Shimazu Corporation,
Kyoto, Japan)による固相ペプチド合成法により合成
し、フッ化水素で樹脂から分離させた後、HPLCシス
テム(Model SPRINT; PE Biosystems Japan, Tokyo, Ja
pan)の逆相クロマトグラフィーにより95%以上の純
度で精製した。なお、9merオリゴペプチド(Tax
179−187,180−188,181−189,1
82−190,183−191,184−192,18
5−193,186−194,187−195及びイン
フルエンザMatrix58−66)は、Hokudo
Co.(北海道、日本)に委託合成したものを用い
た。
するために、放射性同位元素[3H]−TdRでラベル
した同系ラット由来の標的細胞(G14細胞;5×10
3細胞/ウエル)に、29個の部分的に重なる合成ペプ
チド(15〜24mers;図6及び7に示されるTa
xタンパク質における部分ペプチド)をそれぞれ10μ
Mの濃度となるように加えて37℃で1時間培養した
後、HTLV−I特異的CTL細胞株に対する感受性を
6時間の[3H]−TdR遊離法で測定し、値(平均値
±SD)を3回の実験から求めた。なお、E/Tは10
にて行った。その結果を図6及び7に示す。これらの結
果から、HTLV−I特異的CTL細胞株は、ペプチド
Tax177−200又はTax181−195で感作
した標的細胞を効果的に溶解し、また、ペプチドTax
17−40、Tax33〜56、Tax81−104、
又はTax97−120で感作した標的細胞に対して低
い細胞傷害活性を示した(図6)。長期培養したCTL
株を用いた場合においても、Tax177−200又は
Tax181−195で感作した標的細胞を顕著に溶解
するのが確認できた(図7)。Tax177−200又
はTax181−195以外の合成ペプチドで感作した
標的細胞では、有意の傷害性は確認できなかった。
領域に含まれる10種の異なる9アミノ酸合成ペプチド
(9mペプチド)を合成し、上記と同様の方法によりH
TLV−IのTax特異的CTLエピトープの詳細なマ
ッピングを行った。使用した合成ペプチドのアミノ酸配
列を表1に、これら9アミノ酸合成ペプチドを用いた細
胞傷害活性分析の結果を図8に示す。その結果、ペプチ
ドTax180−188、Tax181−189で感作
した標的細胞が特に強いCTL感受性を示し、次いでT
ax179−187、Tax182−190で感作した
標的細胞がCTLに対して感受性を示していたが、Ta
x179〜187においては、複数の実験で異なる結果
が得られた。以上の結果からTax180−188〜T
ax182−190に、HTLV−I特異的CTLの認
識する主要エピトープが存在する可能性が示唆された。
るためCTLの傷害活性誘導に必要なTax180−1
88、Tax181−189、Tax182−190の
ペプチド濃度を検討した。段階希釈した各ペプチドであ
らかじめ1時間処理した標的細胞G14をHTLV−I
特異的CTL細胞株と共培養し、標的細胞のCTL感受
性を検討した。なお、E/Tの割合は10で行い、値
(平均値±SD)は3回の実験から求めた。その結果を
図9に示す。これらの結果から、Tax180−188
(●)で感作した標的細胞で強いCTL感受性が認めら
れ、10-3pMという極めて低いペプチド濃度において
もCTLに対して感受性を示すことが明らかとなった。
一方、Tax180−188と同程度の細胞傷害活性を
誘導するために、Tax181−189(■)は1μ
M、Tax182−190(▲)は10μMの濃度が必
要であることがわかった。また、コントロールとして用
いたTax11−19(○)ではいかなる濃度において
もCTL感受性は認められなかった。以上の結果から、
RT1.A1に拘束されるHTLV−I特異的CTLの
主要な認識エピトープは9アミノ酸からなるペプチド、
Tax180−188(GAFLTNVPY:配列番号
2)であることが明らかとなった。
TLによるTax180−188の認識) HTLV−I特異的CTL細胞株が認識するHTLV−
IのTaxの標的エピトープ中で、ペプチドTax18
0−188が主要なものであるかどうかについて調べる
ために、非標識化競合物である、無処理のG14細胞
(○)、10μMのTax180−188(■)又はT
ax11−19(▲)であらかじめ感作したG14細
胞、非標識化G14−Tax細胞(●)の存在下で、H
TLV−IのTax特異的CTL細胞株の[3H]−T
dR標識G14−Tax細胞に対する細胞傷害活性を測
定した。なお、E/Tの割合は10で行い、値(平均値
±SD)は3回の実験から求めた。その結果を図10に
示す。このことから、10μMのTax180−188
(■)で処理したG14細胞を用いた場合、放射標識し
たG14−Taxに対する細胞傷害活性は競合物/標的
細胞(competitor/Target)の割合が40のときに完全
に阻害されることがわかった。また、Tax180−1
88で処理されたG14細胞による競合効果は、非標識
化G14−Tax(●)による競合効果と同程度であっ
た。無処理のG14細胞(○)又は10μMの各種ペプ
チド[Tax181−189、Tax182−190、
及びTax11−19(▲)]で処理したG14細胞
は、HTLV−IのTax特異的CTL細胞株の細胞傷
害活性に対してほとんど影響がなかった。これらの結果
は、エピトープTax180−188が、HTLV−I
のTax特異的CTL細胞株が認識する主要エピトープ
であることを示唆している。
188認識CTL細胞株のHTLV−I感染腫瘍細胞増
殖抑制効果) Tax180−188認識CTL細胞株が、ラット生体
内におけるHTLV−I感染腫瘍細胞FPM1−V1A
Xの増殖を抑制しうるかどうかを調べてみた。nu/n
u雌ラットにHTLV−I感染腫瘍細胞FPM1−V1
AX(2×107)のみを皮下接種したもの(●)をポ
ジティブコントロールとし、FPM1−V1AXを皮下
接種すると同時にTax180−188を認識するCT
L細胞株(107)を腹腔内投与したラット(▲)にお
ける腫瘍増殖の抑制効果を観察した。なお、腫瘍増殖の
変化は実施例3と同様にそれぞれの皮下腫瘍の大きさを
カリパスで1日おきに測定し、腫瘍の大きさ(V;mm
3)を計測した。これら皮下腫瘍増殖の時間経過を図1
1に示す。この結果、FPM1−V1AXのみを接種し
たラット(●)では皮下腫瘍は増殖を続けたのに対し、
CTLを同時に移入したラット(▲)では速やかに拒絶
されることが確認できた。以上のことから、Tax18
0−188認識CTL細胞株がHTLV−I感染腫瘍細
胞の生体内増殖を抑制しうること、つまりTax180
−188ペプチドが腫瘍拒絶抗原として重要なエピトー
プである可能性が示唆された。
SS−ODNによるワクチン効果) 上記決定された抗原ペプチドが実際に生体内において単
独で腫瘍拒絶抗原になっているかは、この抗原ペプチド
が腫瘍ワクチンモデルとしてどの程度応用しうるかを考
える上で極めて重要である。そこで、次にペプチドワク
チンによってTax180−188特異的CTLが生体
内で誘導可能であるか、また、誘導されたCTLが生体
内において抗腫瘍効果を示しうるかを検討した。より効
率良くTax180−188特異的CTLを誘導するた
めにアジュバンドとしてCpGモチーフを含むISS−
ODN(Immunostimulatory DNA sequences-oligod
eoxynucleotide)を用いた(Nat. Med. 3, 849-854, 19
97)。なお、ISS−ODN[ESPEC OLIGO SERVICE社
製;5′−TGACTGTGAACGTTCGAGAT
GA−3′(配列番号5)]としては、モノチオリン酸
塩(Phosphorothioate)の一本鎖オリゴヌクレオチドと
して合成したものを用いた。100μgのTax180
−188合成ペプチド(■)、10nmolのISS−
ODN(▲)、100μgのTax180−188及び
10nmolのISS−ODN(*)、あるいは100
μgのインフルエンザA型マトリックス(Influenza A
matrix)の58〜66番目のアミノ酸配列からなるペ
プチド(GILGFVFTL;配列番号6)及び10n
molのISS−ODN(◆)をそれぞれ200μlの
生理食塩水に混合したものを4週齢の雌nu/+ラット
に皮下投与し、2週間後再び同条件で免疫を行った。な
お、生理食塩水のみ(naive T cells)を皮下投与した
ものをコントロール(●)とした。最終免疫から2週間
後、各ラットより脾臓T細胞(107個)を分離し、4
週齢のnu/nu雌ラットの腹腔内に投与した。また、
腹腔内投与と同時にHTLV−I感染腫瘍細胞FPM1
−V1AX(2×107個)を皮下投与し、接種部位に
おける腫瘍増殖抑制効果を実施例3と同様にそれぞれの
皮下腫瘍の大きさをカリパスで1日おきに測定し、腫瘍
の大きさ(V;mm3)を計測した。
ax180−188及びISS−ODN(*)で免疫し
たラット由来の脾臓T細胞を移入した群でのみ強い腫瘍
増殖抑制が認められたが、Tax180−188ペプチ
ドのみ(■)、ISS−ODNのみ(▲)、あるいはIn
fluenza A matrix 58−66及びISS−ODN
(◆)で免疫したラット由来の脾臓T細胞を移入した群
では、そのような腫瘍増殖抑制効果は認められなかっ
た。以上の結果から適当なアンジュバンドを用いること
によって免疫正常ラットにTax180−188特異的
なCTLが誘導可能であること、また、誘導されたCT
Lは生体内におけるHTLV−I感染腫瘍細胞の増殖を
強く抑制しうることが明らかとなった。これらの結果
は、Tax180−188が単独で腫瘍拒絶抗原として
働きうること、また、Tax180−188ペプチドと
ISS−ODNを共に使用したワクチンにより、T細胞
免疫が効果的に誘導され、生体内でのHTLV−I感染
腫瘍から防御したこと、さらに、本実験系がワクチンの
開発モデルとして、極めて有用であることを示してい
る。
れたHTLV−I腫瘍に対して抗腫瘍効果を有するCT
Lを誘導することができるCTL認識抗原又は該抗原エ
ピトープのタンパク質、ペプチド、核酸等を免疫原と
し、アジュバンドを用いて誘導したCTLは生体内にお
けるHTLV−I感染腫瘍細胞の増殖を強く抑制しうる
ことから、HTLV−I腫瘍に対して抗腫瘍効果を有す
るCTLを誘導することができるCTL認識抗原又は該
抗原エピトープのタンパク質、ペプチド、核酸等は、成
人T細胞白血病(ATL)等のHTLV−I関連疾患に
対するワクチンとして有用であり、またかかるタンパク
質、ペプチド、核酸等によって誘導されたCTLは、上
記HTLV−I関連疾患の予防・治療薬として有用であ
る。
疫T細胞のサブセットを調べた結果を示す図である。
細胞の標的細胞に対する細胞傷害活性についての結果を
示す図である。
ス性抗原を調べた結果を示す図である。
L細胞株の標的細胞に対する細胞傷害性の阻害について
の結果を示す図である。
Xにより誘導された各種CTLの細胞傷害活性の結果を
示す図である。
のスクリーニングによる結果を示す図である。
−I特異的CTL細胞株認識ペプチドのスクリーニング
による結果を示す図である。
アミノ酸合成ペプチドのスクリーニングによる結果を示
す図である。
CTLの細胞傷害活性を調べた結果を示す図である。
チドTax180−188に対する特異性を示す図であ
る。
体内におけるHTLV−I腫瘍増殖抑制効果の結果を示
す図である。
ワクチンとしての有効性を示す図である。
Claims (8)
- 【請求項1】 配列番号2に示されるアミノ酸配列から
なるペプチド、又は、このアミノ酸配列において、1若
しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加された
アミノ酸配列からなり、HTLV−I腫瘍に対して抗腫
瘍作用を有するCTLを誘導することができるペプチド
からなることを特徴とするHTLV−I腫瘍に対して抗
腫瘍効果を有するCTLを誘導することができるCTL
認識抗原エピトープ。 - 【請求項2】 請求項1記載のCTL認識抗原エピトー
プと被検アジュバントとを用いて誘導したCTLをHT
LV−I関連疾患モデル非ヒト動物に投与し、該非ヒト
動物における腫瘍の変化を測定・評価することを特徴と
するHTLV−I腫瘍に対する抗腫瘍効果を増強するア
ジュバントのスクリーニング方法。 - 【請求項3】 HTLV−I関連疾患モデル非ヒト動物
が、成人T細胞白血病モデル非ヒト動物であることを特
徴とする請求項2記載のHTLV−I腫瘍に対する抗腫
瘍効果を増強するアジュバントのスクリーニング方法。 - 【請求項4】 非ヒト動物が、ラットであることを特徴
とする請求項2又は3記載のHTLV−I腫瘍に対する
抗腫瘍効果を増強するアジュバントのスクリーニング方
法。 - 【請求項5】 請求項1記載のCTL認識抗原エピトー
プと被検アジュバントとを用いて誘導したCTLと、H
TLV−I感染腫瘍細胞株とを接触させ、該CTLの細
胞傷害活性を測定・評価することを特徴とするHTLV
−I腫瘍に対する抗腫瘍効果を増強するアジュバントの
スクリーニング方法。 - 【請求項6】 請求項1記載のCTL認識抗原エピトー
プを有効成分として含有することを特徴とする免疫応答
誘導用ワクチン。 - 【請求項7】 請求項1記載のCTL認識抗原エピトー
プをコードするDNAを有効成分として含有することを
特徴とする免疫応答誘導用ワクチン。 - 【請求項8】 HTLV−I腫瘍に対する抗腫瘍効果を
増強するアジュバントをさらに含むことを特徴とする請
求項6又は7記載の免疫応答誘導用ワクチン。
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