JP2949845B2 - 細胞電気活動計測用電極 - Google Patents
細胞電気活動計測用電極Info
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- JP2949845B2 JP2949845B2 JP33797390A JP33797390A JP2949845B2 JP 2949845 B2 JP2949845 B2 JP 2949845B2 JP 33797390 A JP33797390 A JP 33797390A JP 33797390 A JP33797390 A JP 33797390A JP 2949845 B2 JP2949845 B2 JP 2949845B2
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- electrodes
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- cell
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Description
【発明の詳細な説明】 産業上の利用分野 本発明は、生体活動の電気的計測、特に神経細胞の電
気的活動を計測する神経電気生理の分野で用いる、多電
極を有する細胞電気活動計測用電極に関する。
気的活動を計測する神経電気生理の分野で用いる、多電
極を有する細胞電気活動計測用電極に関する。
従来の技術 従来、神経細胞の電気的活動を計測するには、ガラス
電極等からなる記録電極と、金属電極等からなる刺激電
極とを各々細胞内または細胞間に挿入し、刺激電極より
刺激電流（または電圧）を加えた際の、神経細胞の電気
的活動を記録電極により計測するのが普通であった。
電極等からなる記録電極と、金属電極等からなる刺激電
極とを各々細胞内または細胞間に挿入し、刺激電極より
刺激電流（または電圧）を加えた際の、神経細胞の電気
的活動を記録電極により計測するのが普通であった。
これ以外にも、例えば細胞体をガラス吸引電極で吸い
つけ、単一細胞の電気的活動を詳細に観測するいわゆる
パッチクランプ法等多数の変法がある。
つけ、単一細胞の電気的活動を詳細に観測するいわゆる
パッチクランプ法等多数の変法がある。
発明が解決しようとする課題 上述した従来の技術およびその変法においては、主に
空間的な制約と操作精度上の制約で、１つのサンプル中
に一度に２本以上の記録電極を挿入し、神経細胞の電気
的活動を記録する多点同時計測は非常に困難であるとい
う課題があった。
空間的な制約と操作精度上の制約で、１つのサンプル中
に一度に２本以上の記録電極を挿入し、神経細胞の電気
的活動を記録する多点同時計測は非常に困難であるとい
う課題があった。
測定点が増えるに従って、困難さの度合いが増加し、
多細胞間の観測ができ難いという課題があった。
多細胞間の観測ができ難いという課題があった。
本発明は、多点同時計測を簡便に行い、多細胞間に渡
る信号伝達観察を可能ならしめる細胞電気活動計測用電
極を提供することを目的とする。
る信号伝達観察を可能ならしめる細胞電気活動計測用電
極を提供することを目的とする。
課題を解決するための手段 本発明は、絶縁基板上に、最近接の電極間距離が、相
等しい複数個の電極を備え、前記電極からリード線を放
射状に配設した配線部と、前記配線部上の前記電極上に
孔を有した絶縁層とを設けた細胞電気活動計測用電極に
よって、上記課題を解決したものである。
等しい複数個の電極を備え、前記電極からリード線を放
射状に配設した配線部と、前記配線部上の前記電極上に
孔を有した絶縁層とを設けた細胞電気活動計測用電極に
よって、上記課題を解決したものである。
作用 本発明の細胞電気活動計測用電極上に培養した細胞に
信号を与え、同時に細胞間の信号の伝達を計測する際
に、最近接の電極間距離を調整し、しかもこの電極間を
等間隔で並ばせることにより、一細胞体が電極上に配置
し、この細胞体から伸びた細胞突起を介した細胞体が、
隣合う電極上に位置する確立が高くなる。したがって、
隣合う細胞体間の信号の伝達を検知できる。
信号を与え、同時に細胞間の信号の伝達を計測する際
に、最近接の電極間距離を調整し、しかもこの電極間を
等間隔で並ばせることにより、一細胞体が電極上に配置
し、この細胞体から伸びた細胞突起を介した細胞体が、
隣合う電極上に位置する確立が高くなる。したがって、
隣合う細胞体間の信号の伝達を検知できる。
また、電極から伸ばしたリード線を放射状に配設する
ことにより、リード線間の容量成分が少なくなり、ノイ
ズが減少し測定制度が向上する。
ことにより、リード線間の容量成分が少なくなり、ノイ
ズが減少し測定制度が向上する。
実施例 本発明に供される基板材料としては、細胞培養後顕微
鏡観察する必要があるため透明な基板が好ましく、石英
ガラス、鉛ガラス、ホウ珪酸ガラス等のガラス、若しく
は石英等の無期物質、または、有機ガラス等の有機物質
が挙げられるが、機械的強度と透明性とを加味すると無
期物質が好ましい。
鏡観察する必要があるため透明な基板が好ましく、石英
ガラス、鉛ガラス、ホウ珪酸ガラス等のガラス、若しく
は石英等の無期物質、または、有機ガラス等の有機物質
が挙げられるが、機械的強度と透明性とを加味すると無
期物質が好ましい。
本発明に供される電極材料としては、例えば酸化イン
ジウム錫（ITO）、酸化錫、Cr、Au、Cu、Ni、Al等が使
用可能である。ただし、ITO若しくは酸化錫を用いる
と、電極はわずかに黄色を帯びた透明なものとなり、神
経細胞の顕微鏡下での視認性が良く、実験操作上有利で
あるが、とりわけITOが良導電性であるため望ましい。
ジウム錫（ITO）、酸化錫、Cr、Au、Cu、Ni、Al等が使
用可能である。ただし、ITO若しくは酸化錫を用いる
と、電極はわずかに黄色を帯びた透明なものとなり、神
経細胞の顕微鏡下での視認性が良く、実験操作上有利で
あるが、とりわけITOが良導電性であるため望ましい。
リード線材料にも同様の材料が適応でき、やはり電極
材料と同様の理由でITOが好ましい。
材料と同様の理由でITOが好ましい。
また、本発明の供される絶縁層材料としては、例えば
ポリイミド（PI）樹脂、エポキシ樹脂、アクリレート樹
脂、ポリエステル樹脂、或はポリアミド樹脂等透明な樹
脂が挙げられる。
ポリイミド（PI）樹脂、エポキシ樹脂、アクリレート樹
脂、ポリエステル樹脂、或はポリアミド樹脂等透明な樹
脂が挙げられる。
これらの樹脂は、配線部上に通常の手法によって塗布
して絶縁層が構成される。なお、絶縁層材料が光照射重
合性であると、パターン形成が可能となるため好まし
い。
して絶縁層が構成される。なお、絶縁層材料が光照射重
合性であると、パターン形成が可能となるため好まし
い。
特に、絶縁層材料がPIであり培養する細胞が培養神経
細胞である場合には、良好な生育を示すため望ましい。
さらにPIの中でも、ネガティブフォトセンシティブポリ
イミド（NPI）が、半導体のパターン形成と同様に、配
線部に塗布した後フォトエッチングプロセスを用いて孔
を形成できるため好ましい。
細胞である場合には、良好な生育を示すため望ましい。
さらにPIの中でも、ネガティブフォトセンシティブポリ
イミド（NPI）が、半導体のパターン形成と同様に、配
線部に塗布した後フォトエッチングプロセスを用いて孔
を形成できるため好ましい。
また、絶縁層の厚みは、絶縁性が付与できる程度であ
ればよく、特に限定するものではないが、通常0.1〜10
μｍが好ましく、１〜５μｍ程度がさらに好ましい。
ればよく、特に限定するものではないが、通常0.1〜10
μｍが好ましく、１〜５μｍ程度がさらに好ましい。
本発明の細胞電気活動計測用電極は、直接細胞を培養
して細胞の電気活動を計測記録する。培養条件若しくは
細胞の種類によって、細胞体の大きさ若しくは細胞突起
の長さが異なるが、一体複合電極の最近接の電極間距離
は、10〜1000μｍが好ましい。電極間距離が10μｍ未満
であると、互いに近接し過ぎるため細胞体が細胞突起を
介して相隣合う確率が減り、またリード線の配線も困難
になる。また、1000μｍを越えると、リード線の配線は
しやすいが、細胞突起が1000μｍ程度も伸びることは稀
なため、細胞体が電極上に位置する確率が減る。一般の
条件で培養した細胞突起の長さは、平均100μｍ程度で
あるため、電極間距離も100μｍ程度が望ましい。
して細胞の電気活動を計測記録する。培養条件若しくは
細胞の種類によって、細胞体の大きさ若しくは細胞突起
の長さが異なるが、一体複合電極の最近接の電極間距離
は、10〜1000μｍが好ましい。電極間距離が10μｍ未満
であると、互いに近接し過ぎるため細胞体が細胞突起を
介して相隣合う確率が減り、またリード線の配線も困難
になる。また、1000μｍを越えると、リード線の配線は
しやすいが、細胞突起が1000μｍ程度も伸びることは稀
なため、細胞体が電極上に位置する確率が減る。一般の
条件で培養した細胞突起の長さは、平均100μｍ程度で
あるため、電極間距離も100μｍ程度が望ましい。
電極の形状は、最近接の電極間距離を一定にする要請
のため、正方形か円形が好ましく、細胞体の形状は一般
には球状体なので円形形状の電極が好ましい。また、電
極の大きさは、培養する細胞体の大きさ程度が好まし
く、正方形状の電極の場合一辺が15〜20μｍ、円形状の
電極の場合直径が15〜20μｍが好ましい。
のため、正方形か円形が好ましく、細胞体の形状は一般
には球状体なので円形形状の電極が好ましい。また、電
極の大きさは、培養する細胞体の大きさ程度が好まし
く、正方形状の電極の場合一辺が15〜20μｍ、円形状の
電極の場合直径が15〜20μｍが好ましい。
さらに、本発明の細胞電気活動計測用電極の絶縁層中
の孔は、細胞電気活動計測用電極上で培養した細胞体に
電気信号を与えて刺激させると同時に、隣合う細胞体か
ら刺激信号を検知するため、電極を露出させる目的で形
成し、電極中心部に位置する。この孔の大きさは、電極
以下の大きさを有すればよく、５〜20μｍ程度が好まし
い。
の孔は、細胞電気活動計測用電極上で培養した細胞体に
電気信号を与えて刺激させると同時に、隣合う細胞体か
ら刺激信号を検知するため、電極を露出させる目的で形
成し、電極中心部に位置する。この孔の大きさは、電極
以下の大きさを有すればよく、５〜20μｍ程度が好まし
い。
また、本発明の細胞電気活動計測用電極の電極中心部
が、同心円状若しくは６×６の格子状の各交点に位置す
る構成であると、リード線を放射状に配線でき、特に６
×６の格子状の場合はリード線の配線の構成を簡単にす
ることができるため好ましい。
が、同心円状若しくは６×６の格子状の各交点に位置す
る構成であると、リード線を放射状に配線でき、特に６
×６の格子状の場合はリード線の配線の構成を簡単にす
ることができるため好ましい。
以下具体的実施例で、本発明の細胞電気活動計測用電
極をさらに詳細に説明する。
極をさらに詳細に説明する。
実施例１ 先ず、細胞電気活動計測用電極配線部の作製について
述べる。
述べる。
細胞電気活動計測用電極の基盤は機械的強度の強い透
明な絶縁素材として、厚さ1mmの硬質ガラス（IWAKI COD
E 7740 GLASS（岩城硝子（株）製）以下同じ）を用い
た。
明な絶縁素材として、厚さ1mmの硬質ガラス（IWAKI COD
E 7740 GLASS（岩城硝子（株）製）以下同じ）を用い
た。
配線部外寸は、リードレスチップキャリアーパッケー
ジ実装用ソケット（75 SERIES（山一電機工業（株）
製））に適合するものとした。
ジ実装用ソケット（75 SERIES（山一電機工業（株）
製））に適合するものとした。
電極およびリード線の材料にはITOを用い、IWAKI COD
E 7740 GLASS上に約1000Å厚にコートし、その後洗浄し
た。
E 7740 GLASS上に約1000Å厚にコートし、その後洗浄し
た。
次に、第１図に示すような６×６の格子上の各交点の
電極の中心が位置し、各電極の最近接の電極の中心間距
離が等しく、しかもリード線が放射状に伸びた形状の電
極１およびリード線２のパターンになるように、フォト
レジストを用いて露光し、純水50、塩酸50、硝酸１の体
積比で混合した溶液中でITOをエッチングした後、フォ
トレジストを除去した。電極１の直径は15μｍ、リード
線２の幅は10μｍ、電極中心間距離は100μｍの配線部
を形成した。
電極の中心が位置し、各電極の最近接の電極の中心間距
離が等しく、しかもリード線が放射状に伸びた形状の電
極１およびリード線２のパターンになるように、フォト
レジストを用いて露光し、純水50、塩酸50、硝酸１の体
積比で混合した溶液中でITOをエッチングした後、フォ
トレジストを除去した。電極１の直径は15μｍ、リード
線２の幅は10μｍ、電極中心間距離は100μｍの配線部
を形成した。
次いで、絶縁層としてネガティブフォトセンシティブ
ポリイミド（以下NPIと略す）を、乾燥後の厚みが１μ
ｍとなるようにスピンコートし、第２図に示すように配
線部の各電極の中心に直径10μｍの孔３ができるよう
に、絶縁層パターンを露光形成させた。
ポリイミド（以下NPIと略す）を、乾燥後の厚みが１μ
ｍとなるようにスピンコートし、第２図に示すように配
線部の各電極の中心に直径10μｍの孔３ができるよう
に、絶縁層パターンを露光形成させた。
リードレスチップキャリアーパッケージ実装用ソケッ
トとの接点は、金およびニッケルでコートし、耐久性を
向上させた。さらに、電極１の部分を１％の塩化白金
（IV）酸六水和物と0.01％酢酸鉛の混合水溶液に電極を
浸漬し、50mA/cm2の電流を30s間通電し電極表面に白金
黒を析出させる所謂プラチナイズすることで、インピー
ダンスを低下させた後、以下の実験に供した。
トとの接点は、金およびニッケルでコートし、耐久性を
向上させた。さらに、電極１の部分を１％の塩化白金
（IV）酸六水和物と0.01％酢酸鉛の混合水溶液に電極を
浸漬し、50mA/cm2の電流を30s間通電し電極表面に白金
黒を析出させる所謂プラチナイズすることで、インピー
ダンスを低下させた後、以下の実験に供した。
なお、本実施例では電極１およびリード２の部分にIT
O、絶縁層にNPIを用いたが、用いる材料はこれらに限定
されないことは既に述べた。
O、絶縁層にNPIを用いたが、用いる材料はこれらに限定
されないことは既に述べた。
また、本発明の細胞電気活動計測用電極を構成するた
めのプロセスは本実施例の方法に限定されない。
めのプロセスは本実施例の方法に限定されない。
実施例２ 次に、細胞電気活動計測用電極上での神経細胞の培養
について述べる。
について述べる。
実施例１のようにして構成した細胞電気活動計測用電
極上で、神経細胞としてラット大脳視覚皮質細胞を培養
した。
極上で、神経細胞としてラット大脳視覚皮質細胞を培養
した。
以下、培養法について詳細に述べる。
（イ）生後２、３日を経過したSDラットの脳を摘出し、
氷冷したハンクス液に浸たす。
氷冷したハンクス液に浸たす。
（ロ）氷冷ハンクス液中の脳から視覚皮質を切り出し、
イーグルの最小必須培地（以下MEMと略す）液中に移
す。
イーグルの最小必須培地（以下MEMと略す）液中に移
す。
（ハ）MEM液中で、視覚皮質をできるだけ細かく、最大
でも0.2mm角となるように、切断する。
でも0.2mm角となるように、切断する。
（ニ）細かく切断した視覚皮質を遠沈管に入れ、カルシ
ウムおよびマグネシウムを含まないハンクス液（CMFハ
ンクス液）で３回洗浄した後、適量の同液中に分散す
る。
ウムおよびマグネシウムを含まないハンクス液（CMFハ
ンクス液）で３回洗浄した後、適量の同液中に分散す
る。
（ホ）上記（ニ）の遠沈管中に、トリプシンのCMFハン
クス溶液（0.25重量パーセント）を加え、全量を倍にす
る。緩やかに撹はんしながら、37℃で15分から20分間恒
温状態に保ち酵素反応をおこなわせた（即ちインキュベ
ート）。
クス溶液（0.25重量パーセント）を加え、全量を倍にす
る。緩やかに撹はんしながら、37℃で15分から20分間恒
温状態に保ち酵素反応をおこなわせた（即ちインキュベ
ート）。
（へ）牛胎児血清（FCS）10％を含むダルベッコ変更イ
ーグル培地とＦ−12培地とを１対１の体積比で混合した
DMEM/F12混合培地を上記（ホ）を経た遠沈管中に加え、
全量をさらに倍にする。先端をバーナーであぶり口径を
小さくしたパスツールピペットで、緩やかにピペッティ
ングを繰り返し（最大20回程度）、細胞をほぐす。
ーグル培地とＦ−12培地とを１対１の体積比で混合した
DMEM/F12混合培地を上記（ホ）を経た遠沈管中に加え、
全量をさらに倍にする。先端をバーナーであぶり口径を
小さくしたパスツールピペットで、緩やかにピペッティ
ングを繰り返し（最大20回程度）、細胞をほぐす。
（ト）9806.65m/s2（即ち1000g）で約５分間遠心分離を
行う。遠心分離終了後、上清を捨て、沈殿をFCS5％を含
むDMEM/F12混合培地に混濁する。
行う。遠心分離終了後、上清を捨て、沈殿をFCS5％を含
むDMEM/F12混合培地に混濁する。
（チ）上記（ト）の混濁液を、再び1000gで５分間遠心
分離する。
分離する。
（リ）上記操作（ト）および（チ）をあと２回（計３
回）繰り返す。
回）繰り返す。
（ヌ）最終的に得られた沈殿を、1m1の５％FCSを含むDM
EM/F12混合培地に混濁し、混濁液中の細胞濃度を赤血球
勘定板を用いて計測する。同様の培地を用いて細胞濃度
を２〜４×106個/mlになるように調整する。
EM/F12混合培地に混濁し、混濁液中の細胞濃度を赤血球
勘定板を用いて計測する。同様の培地を用いて細胞濃度
を２〜４×106個/mlになるように調整する。
（ル）細胞電気活動計測用電極上に直径12mm、高さ7mm
のプラスティック製円筒を、複合電極の中心と円筒の中
心を合わせて接着することにより構成した細胞培養用ウ
ェル中に、あらかじめ５％FCSを含むDMEM/F12混合培地5
00μｌを加え、CO2インキュベータ内（O2濃度95％、CO2
濃度５％、湿度97％、温度37℃）で暖めておく。
のプラスティック製円筒を、複合電極の中心と円筒の中
心を合わせて接着することにより構成した細胞培養用ウ
ェル中に、あらかじめ５％FCSを含むDMEM/F12混合培地5
00μｌを加え、CO2インキュベータ内（O2濃度95％、CO2
濃度５％、湿度97％、温度37℃）で暖めておく。
（ヲ）上記（ル）のウェル中に細胞濃度を調整した混濁
液100μｌを静かに加え、再びCO2インキュベータ内に静
置する。
液100μｌを静かに加え、再びCO2インキュベータ内に静
置する。
（ヨ）上記（ル）の操作より３日後に、培地の半量を新
しいものと交換する。交換培地はFCSを含まないDMEM/F1
2混合培地を用いる。
しいものと交換する。交換培地はFCSを含まないDMEM/F1
2混合培地を用いる。
（タ）以降、４〜５日毎に上記と同様の培地交換を行
う。
う。
これら一連の操作により、細胞電気活動計測用電極上
でラット大脳視覚皮質の神経細胞を培養することができ
た。
でラット大脳視覚皮質の神経細胞を培養することができ
た。
細胞は絶縁層（PI）上でもプラチナイズされた電極上
でも良好に生育した。
でも良好に生育した。
したがって、適当な位置にある電極を刺激電極または
記録電極として用いれば、神経細胞電気活動の同時多点
計側が可能であった。
記録電極として用いれば、神経細胞電気活動の同時多点
計側が可能であった。
なお、神経細胞の培養法は本実施例以外にも多数の変
法があり、本実施例に限定されるものではない。
法があり、本実施例に限定されるものではない。
発明の効果 本発明は、絶縁基板上に、最近接の電極間距離が相等
しい複数個の電極を備え、前記電極からリード線を放射
状に配設した配線部と、前記配線部上の前記電極上に孔
を有した絶縁層とを設けた細胞電気活動計測用電極を用
い、この上での神経細胞の培養が可能であった。
しい複数個の電極を備え、前記電極からリード線を放射
状に配設した配線部と、前記配線部上の前記電極上に孔
を有した絶縁層とを設けた細胞電気活動計測用電極を用
い、この上での神経細胞の培養が可能であった。
さらにこの電極を用いれば、従来不可能または非常に
困難であった神経細胞電気活動の同時多点計測及び多細
胞に渡る信号伝達観察が実現できる効果がある。
困難であった神経細胞電気活動の同時多点計測及び多細
胞に渡る信号伝達観察が実現できる効果がある。
第１図は本発明の細胞電気活動計測用電極の一実施例の
配線部のパターン上面図、第２図は本発明の細胞電気活
動計測用電極の一実施例の絶縁層のパターン上面図であ
る。
配線部のパターン上面図、第２図は本発明の細胞電気活
動計測用電極の一実施例の絶縁層のパターン上面図であ
る。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献 特開 平２−57954（ＪＰ，Ａ) 特開 昭64−67200（ＪＰ，Ａ) 実開 昭64−42009（ＪＰ，Ｕ) (58)調査した分野(Int.Cl.6，ＤＢ名) G01N 27/30
Claims (5)
- 【請求項１】絶縁基板上に複数個の電極と、前記電極か
ら放射状に配設されたリード線を有する配線部と、前記
電極上に孔を有した絶縁層とを設け、前記絶縁層の上に
置かれた測定資料の特性を前記電極を介して測定するこ
とを特徴とする細胞電気活動計測用電極。 - 【請求項２】最近接の電極間距離が、10〜1000μｍであ
る請求項１記載の細胞電気活動計測用電極。 - 【請求項３】電極の大きさが、正方形若しくは円形であ
って、一辺の長さ若しくは直径が15〜20μｍである請求
項１記載の細胞電気活動計測用電極。 - 【請求項４】孔の大きさが、電極の大きさ以下である請
求項１若しくは３何れかに記載の細胞電気活動計測用電
極。 - 【請求項５】複数個の電極中心部が、６×６の格子状各
交点に位置する請求項１記載の細胞電気活動計測用電
極。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP33797390A JP2949845B2 (ja) | 1990-11-30 | 1990-11-30 | 細胞電気活動計測用電極 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP33797390A JP2949845B2 (ja) | 1990-11-30 | 1990-11-30 | 細胞電気活動計測用電極 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH04204244A JPH04204244A (ja) | 1992-07-24 |
| JP2949845B2 true JP2949845B2 (ja) | 1999-09-20 |
Family
ID=18313740
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP33797390A Expired - Lifetime JP2949845B2 (ja) | 1990-11-30 | 1990-11-30 | 細胞電気活動計測用電極 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2949845B2 (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7678249B2 (en) | 2003-06-27 | 2010-03-16 | Panasonic Corporation | Instrument and system for pharmacologic measurement and well vessel used therein |
Families Citing this family (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE69333945T2 (de) * | 1992-09-04 | 2006-06-29 | Matsushita Electric Industrial Co., Ltd., Kadoma | Flache Elektrode |
| US5810725A (en) * | 1993-04-16 | 1998-09-22 | Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. | Planar electrode |
| US6297025B1 (en) | 1994-06-13 | 2001-10-02 | Matsushita Electric Industrial Co., Ltd | Measurement of complete electrical waveforms of tissue or cells |
| US5563067A (en) * | 1994-06-13 | 1996-10-08 | Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. | Cell potential measurement apparatus having a plurality of microelectrodes |
| USRE40209E1 (en) | 1994-06-13 | 2008-04-01 | Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. | Cell potential measurement apparatus having a plurality of microelectrodes |
| JP3909738B2 (ja) | 2000-07-13 | 2007-04-25 | 松下電器産業株式会社 | 細胞外記録用一体化複合電極 |
| CN1204396C (zh) * | 2001-06-20 | 2005-06-01 | 松下电器产业株式会社 | 细胞外记录电极 |
| CN102247137B (zh) * | 2010-05-19 | 2013-06-19 | 中国科学院电子学研究所 | 基于微电极阵列的多通道神经信息检测系统 |
| EP3128000B1 (en) * | 2014-03-31 | 2018-05-16 | Panasonic Intellectual Property Management Co., Ltd. | Electrochemical measurement device |
-
1990
- 1990-11-30 JP JP33797390A patent/JP2949845B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7678249B2 (en) | 2003-06-27 | 2010-03-16 | Panasonic Corporation | Instrument and system for pharmacologic measurement and well vessel used therein |
| US8435393B2 (en) | 2003-06-27 | 2013-05-07 | Panasonic Corporation | Instrument and system for pharmacologic measurement and well vessel used therein |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH04204244A (ja) | 1992-07-24 |
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