JP2824821B2 - 乳酸菌及び発酵乳製品 - Google Patents

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【産業上の利用分野】本発明は、低ｐＨ領域及び低温保
存時における酸度の上昇等が抑制された発酵乳製品及び
該発酵乳製品の製造等に利用可能な新規なラクトバチル
ス・ヘルベチカス属乳酸菌に関する。

【０００２】

【従来の技術】ラクトバチルス属乳酸菌は、古くから発
酵乳製造時の代表的なスターターとして用いられてい
る。ラクトバチルス属等の乳酸桿菌は、ストレプトコッ
カス属およびラクトコッカス属等の乳酸球菌よりも乳酸
酸度が高くなり、乳蛋白質を分解するプロティナーゼ活
性も高いものが多い。特に、ラクトバチルス・ヘルベチ
カスは強い蛋白分解活性を有しており、その菌体外プロ
ティナーゼが乳蛋白質を分解して生成されるペプチド
は、血圧上昇作用の原因物質であるアンギオテンシン変
換酵素（Angiotensin Converting Enzyme 以下ＡＣＥ
と称す）に対して阻害活性を有することが報告されてい
る。更に、ラクトバチルス・ヘルベチカスによる発酵乳
にも同様の活性が認められる。これらのＡＣＥ阻害ペプ
チドは、自然発症高血圧ラット（SHR: Spontaneously H
ypertensive Rat）において血圧降下活性を示す事が確
認されている［Nakamura.Yら日本農芸化学会誌、67,289
(1993）］。

【０００３】しかし、ラクトバチルス・ヘルベチカス
は、乳発酵において乳酸の生成量が多く（従ってｐＨの
低下が著しく）、更に低温保存時にも乳酸酸度が上昇し
易いためにヨーグルト等への利用が困難であり、現在ヨ
ーグルトにはほとんど用いられていない。

【０００４】一般に、ヨーグルト製造後の低温保存時の
酸度上昇は重要な問題であり、酸度上昇を抑える工夫と
して変異処理による育種等の種々の検討がなされている
が、増殖活性の低い変異株が分離され易いために、目的
の変異株が得られていないのが現状である。

【０００５】これまでにアデノシントリホスファターゼ
（以下ＡＴＰａｓｅと称す）が微生物菌体内のｐＨ調整
に関与していることが知られている。即ち、乳酸菌の発
酵における最終代謝産物である乳酸の産生により菌体外
のｐＨは酸性になるが、ＡＴＰａｓｅの働きにより乳酸
菌体内のｐＨは中性に保たれる。また菌体内ｐＨと菌体
外ｐＨとの差が大きくなるに従いＡＴＰａｓｅの発現量
も増大する傾向にある。従って、酸性培地においてこの
ような細胞膜バリアーを破壊し、プロトンの濃度勾配を
なくした条件では、微生物細胞は増殖できないことが確
認されている［Hiroshi Kobayashi,Takashi Suzuki,and
Tsutomu Umemoto;The J. of Biological Chemistry.26
1,2.627-630(1986)]、[NANCY L-NANNEN and ROBERT W.
HUTKINS;J. of Dairy Sci.,74,747-751(1991)]。しかし
これらの報告は、いずれも微生物細胞外ｐＨとＡＴＰａ
ｓｅ活性との関係について示されているものであり、微
生物発酵により得られる発酵物の最終的なｐＨについて
は記載されていない。

【０００６】更に、ネオマイシン耐性については、大腸
菌(Escherchia coli)のネオマイシン耐性変異株が、Ａ
ＴＰａｓｅ活性も欠損していることが知られている[BAR
RY P. ROSEN;J. of Bacteriology,116,3.1124-1129(197
3)]。しかし、乳酸産生については一切記載されていな
い。

【０００７】

【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、強い
蛋白分解活性及び乳蛋白質に対する基質特異性を有し、
発酵乳中にＡＣＥ阻害ペプチドを産生させるというラク
トバチルス・ヘルベチカス乳酸菌の特性を維持しつつ、
培養時、培養物の保存時における乳酸酸度の増加が低い
等の特性を有する変異株を利用したラクトバチルス・ヘ
ルベチカス乳酸菌を提供することにある。

【０００８】本発明の別の目的は、低ｐＨ領域、低温保
存時において乳酸酸度の上昇等が抑制された発酵乳製品
を提供することにある。

【０００９】

【課題を解決するための手段】本発明によれば、培養物
を１０℃、２週間保存時の乳酸酸度増加量が０．５％以
下を示すこと、細胞膜結合性ＡＴＰａｓｅ活性が５μmo
l・ Pi/min/mg蛋白質以下であること、並びにネオマイシ
ン耐性を有することを特徴とするラクトバチルス・ヘル
ベチカス乳酸菌（以下乳酸菌Ａと称す）が提供される。

【００１０】また本発明によれば、前記乳酸菌Ａを含む
乳酸菌を用いて発酵処理したことを特徴とする発酵乳製
品が提供される。

【００１１】以下本発明を更に詳細に説明する。

【００１２】本発明の乳酸菌Ａは、ラクトバチルス・ヘ
ルベチカス乳酸菌の変異株であって、親株の乳酸菌が有
する菌学的性質に変化はなく、特に、菌体外プロテアー
ゼ活性の強さ、並びに基質に対する特異性には変化がな
いが、以下の(1)〜(3)の点において、親株と相違する特
異的性質を有する。(1)培養物を１０℃、２週間保存時
の乳酸酸度増加量が０．５％以内を示すこと、(2)細胞
膜結合性ＡＴＰａｓｅ活性が５μmol・Pi/min/mg蛋白質
以下であること、並びに(3)ネオマイシン耐性を有する
こと。

【００１３】前記(1)培養物の保存時の乳酸酸度増加量
は、１０℃、２週間保存時において、乳酸酸度上昇が
０．５％以内、好ましくは０．４％以内であれば、他の
条件における乳酸酸度増加量は特に限定されるものでは
ないが、培養時の場合、最終乳酸酸度が０．５〜１．２
％、特に０．６〜１．０％の範囲であるのが好ましく、
一方１０℃、１週間保存時においては、好ましくは乳酸
酸度上昇が０．４％以内、特に好ましくは０．２％以内
を示すのが望ましい。

【００１４】前記(2)細胞膜結合性ＡＴＰａｓｅ活性
は、培地中のｐＨにより変化するが５μmol. Pi/min/mg
蛋白質以下である。該細胞膜結合性ＡＴＰａｓｅ活性
の測定は、例えば各細胞からＮｅｕらの方法［Neu, H.
C ＆ Heppel. L. A. J. Biol.Chem. 240. 3685(1965)］
に従い浸透圧ショックにより蛋白質を抽出し、２５０ｍ
Ｍトリス塩酸（ｐＨ６．５）、２５ｍＭ塩化マグネシウ
ム、２５ｍＭアデノシントリフォスフェートナトリウム
および１６．５μｇ／ｍｌウシ血清アルブミン（ＢＳ
Ａ）の溶液１０μｌに抽出液４０μｌを加え３７℃で１
分間反応させた後、５μｌの０．１Ｎ塩酸を加えて反応
を停止させ、その後、生成された無機リン酸の濃度を商
品名「Ｐ−テストワコー」（和光純薬工業（株）製品）
により測定し、また、抽出液中の蛋白質濃度をブラッド
フォードの方法［Bradford.M. M.（1976) Anal. Bioche
m. 72, 284 (1976) ］により測定する方法等により行な
うことができる。

【００１５】前記ネオマイシン耐性を有するとは、ネオ
マイシンを含む培地で培養した際に死滅せずに増殖性を
示すものであれば良い。

【００１６】本発明の乳酸菌Ａとしては、前記親株の菌
学的性質を維持しており、且つ(1)〜(3)の特異的な性質
を有するものであれば特に限定されるものではなく、具
体的には、工業技術院生命工学工業技術研究所にＦＥＲ
Ｍ−Ｐ１３９１４（以下ＣＰＮ４と称す）として寄託さ
れているラクトバチルス・ヘルベチカス乳酸菌等を挙げ
ることができる。

【００１７】前記ＣＰＮ４の菌学的性質を光岡の方法
(臨床検査18.1163(1974))による同定の結果、親株であ
るラクトバチルス・ヘルベチカスJCM1003と菌学的性質は
同様であるが、ネオマイシン耐性、低ＡＴＰａｓｅ活
性、更に低ｐＨ領域における低い増殖性の点において明
らかに親株と異なる性質を有しており、ｐＨ感受性変異
株であることが確認できた。その具体的菌学的性質を表
１に示す。

【００１８】

【表１】

【００１９】本発明の乳酸菌Ａを調製するには、親株で
あるラクトバチルス・ヘルベチカス乳酸菌を、以下の方
法等により変異させることにより得ることができる。

【００２０】前記親株としては、ラクトバチルス・ヘル
ベチカス（Lactobacillus helveticus）であれば特に限
定されない。

【００２１】まず親株であるラクトバチルス・ヘルベチ
カス乳酸菌を、各菌株の増殖性の良い培地、例えば、ブ
リッグス・リバー・ブロス（Briggs Liver Broth）、Ｍ
ＲＳ培地、ＢＬ培地、ＧＡＭ培地等で増殖培養し、対数
増殖期に集菌する。この際各培地における乳酸菌の添加
量は、約１×１０⁶cells／ｍｌであるのが好ましく、ま
た培養条件としては、培養温度３０〜４５℃で、３〜２
４時間培養するのが好ましい。

【００２２】次にBarry［Barry,P.R.J. of Bacteriolog
y,116,1124-1129(1973)］により、ＡＴＰａｓｅ活性の
低い株を分離するためには、ネオマイシン耐性株の中か
らの分離が効果的とされているので、好ましくはこの方
法に従って、ネオマイン５〜１００μｇ／ｍｌを含む前
記増殖用培地を含む寒天培地に接種しネオマイシン耐性
株を選択する。

【００２３】前記方法において、変異を積極的に誘発す
るには、例えば紫外線照射や化学変異誘起剤等の前処理
を行うこともできる。前記紫外線照射の処理条件は、波
長５００ｎｍ以下、照射時間数秒〜３０分、照射距離１
０〜３０ｃｍで行うのが好ましい。また変異株を効率的
に選択するためには、増殖用培地中に対数増殖期の生菌
を懸濁し、生菌率０．１〜１．０％となるような条件で
紫外線照射するのが好ましい。更に化学変異誘起剤によ
る処理は、例えばニトロソグアニジン（Ｎ−メチル−
Ｎ′−ニトロ−ニトロソグアニジン）、エチルメタンス
ルホン酸、メチルメタンスルホン酸、５−ブロモウラシ
ル等を使用し、例えばニトロソグアニジンを使用する場
合には、好ましくは処理ｐＨ５．０〜８．０、特に好ま
しくはｐＨ６．０〜７．０の増殖用培地中に対数増殖期
の生菌を懸濁し、ニトロソグアニジン濃度を３０〜１０
００μｇ／ｍｌ、特に１００〜３００μｇ／ｍｌとし、
処理温度を室温〜５０℃、特に３０〜３７℃として、処
理時間１０〜６０分間、特に１５〜３０分間処理するの
が好ましい。

【００２４】前記ネオマイシン耐性株を選択した後、該
選択株の中から、増殖能の低いものを除き、更にｐＨ
４．５以下においてのみ増殖能の低い細胞株を選択す
る。更に、ここで選択された低ｐＨ領域における増殖活
性低下株は、脱脂粉乳等の乳培地にて例えば３０〜４５
℃で１〜３日間培養し、最終ｐＨが親株より高い細胞
株、即ち最終的な乳酸酸度の上昇が低い細胞株を選択す
る。ここで前記培養後の最終ｐＨ３．４〜３．８の変異
株を最終的に選択し、乳培地において例えば３０〜４５
℃で、３〜２４時間培養し、最終的に前記親株の菌学的
性質を維持し、前記(1)〜(3)の特性を有する細胞株を選
択することのより乳酸菌Ａを得ることができる。

【００２５】本発明の発酵乳製品は、前記乳酸菌Ａを用
いて発酵処理したものであれば特に限定されるものでは
なく、例えばヨーグルト、乳酸発酵飲料、チーズ等を挙
げることができ、それぞれ公知の方法により得ることが
できる。この際乳酸菌Ａは、公知の乳酸菌例えばストレ
プトコッカス・サーモフィラス（Streptococcus thermo
philus）、ラクトコッカス・ラクテス(Lactococcus lac
tis)、ビフィドバクテリウム・ロンガム(Bifidobacteriu
m longum)等を併用して用いることができる。発酵乳製
品を調製するには、前記乳酸菌Ａを用いる以外は、公知
の方法等により得ることができる。

【００２６】

【発明の効果】本発明のラクトバチルス・ヘルベチカス
乳酸菌は、長期低温保存した際の乳酸酸度の上昇を抑制
することができるヨーグルト等の発酵乳製品の製造に利
用することができる。また本発明の発酵乳製品は、前記
乳酸菌を使用するので、長期低温保存した際の乳酸酸度
の上昇を抑制することができる他、発酵終了直後の風味
を維持しながら、発酵乳中に血圧低下作用を有する。

【００２７】

【実施例】以下本発明を実施例に基づいて具体的に説明
するが、本発明はこれらに限定されるものではない。

【００２８】

【実施例１】 （変異株の分離）ラクトバチルス・ヘルベチカスＪＣＭ
−１００３(以下親株と称す)１×１０⁶細胞／ｍｌをブ
リッグス・リバー・ブロス（Briggs Liver Broth）に接
種して３７℃で２０時間培養した。更に新しい同培地で
３７℃にて６時間再培養し、対数増殖期のものを集菌
し、紫外線照射処理（１５ワット紫外線ランプ、照射時
間３０秒、照射距離２０ｃｍ）を行なった。次にネオマ
イシン５μｇ／ｍｌを含むブリッグス寒天培地上に、生
菌数が１×１０⁶細胞となるように接種し、３７℃、２
日間培養した。比較的大きいコロニーを形成するもの５
０株を選び、次いでｐＨ６．５及びｐＨ４．５に調整し
たブリッグス寒天培地上にレプリカし、ｐＨ６．５の培
地上で親株と同程度の増殖を示し、ｐＨ４．５の培地上
では親株に比較して増殖性の悪いもの１５株を選択し
た。次に、これら１５株を、９％脱脂粉乳に接種し、３
７℃で３日間培養して最終ｐＨを比較した結果、親株に
比較して高い最終ｐＨであった１株（以下ＣＰＮ４と称
す）を選択した。更にこれら変異株ＣＰＮ４及び親株に
ついて、それぞれ３日間培養後の最終ｐＨ、濁度（５９
０ｎｍの吸光度）を測定した。結果を表２に示す。

【００２９】

【表２】

【００３０】 （細胞膜結合性ＡＴＰａｓｅ活性の測定） ラクトバチルス・ヘルベティカス株９株をｐＨ５．０の
ブリッグス培地で３７℃、６時間培養し、各細胞からＮ
ｅｕらの方法［Neu, H. C ＆ Heppel. L. A. J. Biol.
Chem. 240. 3685(1965)］に従い浸透圧ショックにより
蛋白質を抽出し、以下の方法により活性測定した。酵素
活性は２５０ｍＭトリス塩酸（ｐＨ６．５）、２５ｍＭ
塩化マグネシウム、２５ｍＭアデノシントリフォスフェ
ートナトリウムおよび１６．５μｇ／ｍｌウシ血清アル
ブミン（ＢＳＡ）の溶液１０μｌに、抽出液４０μｌを
加えて、３７℃で１０分間反応させた後、５μｌの０．
１Ｎ塩酸を加えて反応を停止させた。その後、生成され
た無機リン酸の濃度を商品名「Ｐ−テストワコー」（和
光純薬工業（株）製品）により測定した。また、抽出液
中の蛋白質濃度をブラッドフォードの方法［Bradford.
M. M.（1976) Anal.Biochem. 72, 284 (1976) ］により
測定した。ＡＴＰａｓｅ活性を上記条件において測定
し、一定蛋白質当りに含まれる酵素の無機リン酸の生成
量（mol・ Pi/min/mg 蛋白質）で示した（表３）。ま
た、各菌株のネオマイシン耐性度を最小成育阻止濃度を
測定することにより求めた。これらの結果を表３に示
す。

【００３１】

【表３】

【００３２】表３の結果から、親株JCM-1003及び他の７
株は、高いレベルのＡＴＰａｓｅ活性が確認された。し
かし、ＣＰＮ４株は親株に比べて低いＡＴＰａｓｅ活性
を示した。

【００３３】次に、ＣＰＮ４株及び親株を９％脱脂粉乳
中で再度３７℃、３０時間培養し、これら変異株の発酵
乳中のペプチド量及びＡＣＥ阻害活性が親株と同程度で
あるかどうかを以下に示す方法により詳細に測定した。
また、参考に各菌株の菌体外プロテアーゼ活性を測定
し、最終ｐＨを再度確認した。これらの測定結果を表４
に示す。

【００３４】 （発酵乳中のＡＣＥ阻害活性の測定） ＡＣＥ阻害活性の測定は、CushmanとCheungとの方法［C
ushman. D. W ＆Cheung.H.S.Pharmacol.,20 1637(197
1)］に基づいて行った。即ち、各種発酵乳を１５０００
回転、５分間の遠心分離により上清（ホエー）を調製
し、その後１Ｎ水酸化ナトリウム溶液を用いてｐＨを中
性とし、８０μｌを試験管に移し、次に基質として０．
１Ｍホウ酸緩衝液（０．３Ｍ ＮａＣｌを含む、ｐＨ
８．３）で５ｍＭに調整したヒプリル・ヒスチジル・ロ
イシン（Hip-His-Leu, シグマ社製品）０．２ｍｌを加
えて、更に酵素溶液（０．１unit／ｍｌ、シグマ社製
品）２０μｌを添加して３７℃で３０分間反応させた。
その後、１Ｎ塩酸を２５０μｌ加えて反応を停止させた
後、１．７ｍｌの酢酸エチルを加えて約２０秒間撹拌し
た。次いで３０００回転で１０分間遠心分離し、酢酸エ
チル層１．４ｍｌを回収し、１２０℃で４０分間加熱し
て溶媒を除去した。溶媒除去後、蒸留水１ｍｌを加え
て、約２０秒間撹拌し抽出されたヒプリル酸の吸光度
（２２８ｎｍ）を測定した。酵素活性１ユニットはＡＣ
Ｅ活性の５０％阻害を与える量として下記式により算出
した。

【００３５】 酵素量（１ユニット）＝［（Ａ−Ｂ）／（Ａ−Ｃ）］×１００×１／５０ Ａ：試料を含まない場合の吸光度（２２８ｎｍ） Ｂ：試料を添加した場合の吸光度（２２８ｎｍ） Ｃ：酵素及び試料を添加しない場合の吸光度（２２８ｎｍ） ペプチド量の定量はＯＰＡ法［Charch.F.C.らJ.of Dair
y. Sci. 66 1219(1883)］により行った。検量線の作成
は、スタンダードとしてカゼインのトリプシン分解物を
用いた。

【００３６】 （菌体外プロテアーゼ活性の測定） 菌体外プロテアーゼ活性の測定は、Twiningの方法［Twi
ning.S.Anal.Biochem.143 3410］をもとにYamamotoらの
方法［Yamamoto.N.らJ.of Biochem.(1993)In Press］に
従って行った。即ち、各種菌株を９％脱脂粉乳中でｐＨ
６．０に維持して培養し、対数増殖期中期で集菌した。
クエン酸ナトリウムを終濃度１％になるように添加し、
乳培地を透明化し、５０００回転、１０分間の遠心分離
を行い菌体を回収した。次に、５０ｍＭβ−グリセロリ
ン酸により菌体を洗浄後、菌体を５０ｍＭトリス塩酸緩
衝液（ｐＨ７．８）に懸濁し、菌体表面の酸素活性を測
定した。０．４％フルオレセイン−イソチオシアネート
−カゼイン（シグマ社製）２０μｌに菌体懸濁液３０μ
ｌを加え４２℃で１時間インキュベートし、５％トリク
ロロ酢酸溶液を１２０μｌ加え室温にて約２０分間放置
し、１５０００回転、１０分間の遠心分離を行った。上
清６０μｌを３ｍｌの５００ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐ
Ｈ７．８）に加え、蛍光強度を測定した。蛍光強度は励
起波長４９０ｎｍで生じる５２５ｎｍの蛍光を測定し
た。活性は上記反応条件で、１％の蛍光強度を生じる酸
素量を１ユニットと定義した。ＣＰＮ４株は親株と同程
度の菌体外プロテアーゼ活性を示し、ペプチド量、ＡＣ
Ｅ阻害活性についても、ほぼ同様の値を示した。しか
し、最終ｐＨは、親株に比べ高いことが再確認された。
従って、その発酵乳に親株と同程度のＡＣＥ阻害活性を
有し、最終ｐＨが親株より高いＣＰＮ４株のみが、目的
にかなうものとして選択された。

【００３７】

【表４】

【００３８】（低温保存試験）更に、変異株ＣＰＮ４株
の１０℃における低温保存試験を行った。親株とＣＰＮ
４株を牛乳中で３７℃で培養し、乳酸産生量が０．６％
となった時点で冷却後、１０℃に保存した。保存後、１
週間後、２週間後に各発酵乳のｐＨ、乳酸酸度（％）、
ＡＣＥ阻害活性及びペプチド量を測定した。結果を表５
に示す。

【００３９】

【表５】

【００４０】表５の結果からＣＰＮ４株は親株に比べペ
プチド量及びＡＣＥ阻害活性に大きい違いはなかった。
一方、親株では乳酸酸度の上昇及びそれに伴うｐＨの低
下がみられたが、ＣＰＮ４株では保存期間中において乳
酸酸度の大きい変化はみられなかった。ＣＰＮ４株の２
週間保存中のｐＨの変化は０．２、酸度の上昇は０．２
７％であり、酸味の上昇はかなり抑制されていた。

【００４１】（高血圧ラットにおける血圧降下作用確
認）以上のようにして得られた変異株ＣＰＮ４を用い
て、ヨーグルトを作製し（上記低温保存試験における１
０℃、１週間保存のもの）、自然発症高血圧ラット（日
本チャールズリバー（株））に胃ゾンデで経口投与し、
血圧降下値を測定した。コントロールとしては、牛乳を
乳酸で同じ酸度としたものを用いた。１８週令雄ラット
（１群５匹）に発酵乳及びコントロール（未発酵乳）そ
れぞれを６ｍｌ／ｋｇ強制投与し６時間後に血圧を測定
した。血圧測定は、ソフトロン社の装置（型式「Softro
n BP-98A」）を用いて、tail-cuff法で最高血圧を求め
た。結果を表６に示す。

【００４２】

【表６】

【００４３】表６の結果より、未発酵乳は高血圧ラット
に対して血圧降下活性を示さず、ＣＰＮ４株発酵乳は強
い血圧降下活性を示すことが確認された。

【００４４】

【実施例２】実施例１で得られたＣＰＮ４株１×１０⁶
／ｍｌに、ストレプトコッカス・サーモフィラス ATCC-
144885 または ATCC-19258（Streptococcus thermophil
us ATCC-144885またはATCC-19258）をそれぞれ１×１０
⁵／ｍｌとなるように加えて乳培地中で３７℃、２４時
間混合培養し乳酸酸度、ｐＨ、ペプチド量及びＡＣＥ阻
害活性を、親株、ＣＰＮ４、ストレプトコッカス・サー
モフィラス ATCC-144885 または ATCC-19258をそれぞれ
単独で使用した場合と比較した。結果を表７に示す。

【００４５】

【表７】

【００４６】表７の結果、親株は最終ｐＨが低く、酸度
も最も高くなったが、ＣＰＮ４株は最終ｐＨが親株に比
べ、酸度も低かった。一方ストレプトコッカス・サーモ
フィラス ATCC-144885 または ATCC-19258 株単独で発
酵した場合、酸度の上昇は少ないもののペプチド量が少
なくＡＣＥ阻害活性は低かった。しかし、ＣＰＮ４株と
ストレプトコッカス・サーモフィラス ATCC-144885また
はATCC-19258の併用においては、いずれの株においても
ＡＣＥ阻害活性が確認され、酸度の上昇が低かった。ま
た、このような混合培養を行うことでラクトバチルス・
ヘルベチカス単独の場合よりも風味の生成が付加され
た。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号 ＦＩ Ｃ１２Ｒ 1:225）

Claims (2)

(57)【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 培養物を１０℃、２週間保存時の乳酸酸
   度増加量が０．５％以下を示すこと、細胞膜結合性アデ
   ノシントリホスファターゼ活性が５μmol・ Pi/min/mg蛋
   白質以下であること、並びにネオマイシン耐性を有する
   ことを特徴とするラクトバチルス・ヘルベチカス乳酸
   菌。
2. 【請求項２】 請求項１記載のラクトバチルス・ヘルベ
   チカス乳酸菌を含む乳酸菌を用いて発酵処理したことを
   特徴とする発酵乳製品。