JP2593951B2 - 血液凝固因子▲ix▼の単離方法 - Google Patents
血液凝固因子▲ix▼の単離方法Info
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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Description
【発明の詳細な説明】 本発明は,α−ヒドロキシル−アミノ−基を有するマ
トリックスで血液凝固因子IXを吸着し,その因子を溶出
し,硫酸化された炭水化物を有するマトリックスで引き
続き吸着して,血しょう又は他の分画から血液凝固因子
IXをほぼ純粋な形で,高収量で単離する,簡単な方法に
関する。
トリックスで血液凝固因子IXを吸着し,その因子を溶出
し,硫酸化された炭水化物を有するマトリックスで引き
続き吸着して,血しょう又は他の分画から血液凝固因子
IXをほぼ純粋な形で,高収量で単離する,簡単な方法に
関する。
血友病Aによれば血友病Bは二番目に頻度の多い遺伝
性血液凝固阻害である。その患者には,凝固に不可欠な
因子IXがない。因子IX−含有調製物で置き換えることに
よって,この遺伝しうる凝固阻害を処理することができ
る。
性血液凝固阻害である。その患者には,凝固に不可欠な
因子IXがない。因子IX−含有調製物で置き換えることに
よって,この遺伝しうる凝固阻害を処理することができ
る。
血友病Bの処置は,今日ほとんどいわゆるPPSB−濃縮
物−これは因子IXの他に更に他のビタミンK−依存性血
液凝固因子II,VII及びXの種々の量を含有する−を用い
て行われる。この様な調製物の比活性−たとえばこれは
ヨーロッパ特許第56629号及び第41174号明細書中に記載
されている−は,たん白質mgあたり約2.5E因子IXであ
る。
物−これは因子IXの他に更に他のビタミンK−依存性血
液凝固因子II,VII及びXの種々の量を含有する−を用い
て行われる。この様な調製物の比活性−たとえばこれは
ヨーロッパ特許第56629号及び第41174号明細書中に記載
されている−は,たん白質mgあたり約2.5E因子IXであ
る。
PPSB−濃縮物に対する代替物は,凝固阻害の治療に対
する,高富化された因子IX−濃縮物である。たん白質mg
あたり10Eより多くの,因子IXに関する比活性を有す
る,高富化された因子IX−濃縮物を現在の技術によれば
血しょうから数段階の分画によってしか得ることができ
ない。このことに関する例は,国際特許出願WO83/03760
号明細書又はドイツ特許出願公開第2429191号明細書中
に記載されている。
する,高富化された因子IX−濃縮物である。たん白質mg
あたり10Eより多くの,因子IXに関する比活性を有す
る,高富化された因子IX−濃縮物を現在の技術によれば
血しょうから数段階の分画によってしか得ることができ
ない。このことに関する例は,国際特許出願WO83/03760
号明細書又はドイツ特許出願公開第2429191号明細書中
に記載されている。
ドイツ特許第3826792号明細書中,α−ヒドロキシル
−アミノ−基を有する吸着剤を用いてたん白質mgあたり
20E因子IXまでの比活性を有する因子IX−濃縮物を単離
することが記載されている。
−アミノ−基を有する吸着剤を用いてたん白質mgあたり
20E因子IXまでの比活性を有する因子IX−濃縮物を単離
することが記載されている。
ミカルスキー(Michalski,C.等(Vox Sang.55(4),
202−10,1989)の研究に於て,DEAE−アニオン交換体と
ヘパリン−セフアロースの組合せ使用によってたん白質
mgあたり約10Eの比活性を有する因子IX−濃縮物を単離
することができる方法が示されている。
202−10,1989)の研究に於て,DEAE−アニオン交換体と
ヘパリン−セフアロースの組合せ使用によってたん白質
mgあたり約10Eの比活性を有する因子IX−濃縮物を単離
することができる方法が示されている。
たん白質あたり120〜150E因子IXのより一層高い純度
は、ブルノフ(Burnouf),T.等(Int.Symp.on Biotechn
ogy of Plasma Proteins,Nancy17,05,1988,Abstr.4.0
9)によれば2回アニオン交換−クロマトグラフィー及
びアフィニティークロマトグラフィーの使用によって得
られる。米国特許第3920625号,第4,721,572号及び第47
25673号明細書中,有機及び無機担体に固定化された,
硫酸化された炭水化物を用いる因子IX−濃縮物の高度の
精製が記載されている。このアフィニティークロマトグ
ラフィーは、専ら出発血しょうに対して低い全収量を有
する数段階精製法の最後の段階であるか,あるいは最終
生成物は不純物以外のたん白質をまた含有する。僅かに
より高い収量が,しばしばプロテアーゼ阻害剤,たとえ
ばベンズアミジン又はPMSFの添加によって達成される。
しかしヒトの治療に使用するために,血しょう又は最終
生成物に異種物質の添加をできる限り止めねばならな
い。
は、ブルノフ(Burnouf),T.等(Int.Symp.on Biotechn
ogy of Plasma Proteins,Nancy17,05,1988,Abstr.4.0
9)によれば2回アニオン交換−クロマトグラフィー及
びアフィニティークロマトグラフィーの使用によって得
られる。米国特許第3920625号,第4,721,572号及び第47
25673号明細書中,有機及び無機担体に固定化された,
硫酸化された炭水化物を用いる因子IX−濃縮物の高度の
精製が記載されている。このアフィニティークロマトグ
ラフィーは、専ら出発血しょうに対して低い全収量を有
する数段階精製法の最後の段階であるか,あるいは最終
生成物は不純物以外のたん白質をまた含有する。僅かに
より高い収量が,しばしばプロテアーゼ阻害剤,たとえ
ばベンズアミジン又はPMSFの添加によって達成される。
しかしヒトの治療に使用するために,血しょう又は最終
生成物に異種物質の添加をできる限り止めねばならな
い。
本発明は,たん白質mgあたり150Eより大きい因子IXの
比活性を有する,異種たん白質を全く含有しない,でき
る限り純粋な因子IX−調製物を簡単に得る方法を調製す
ることを課題とする。
比活性を有する,異種たん白質を全く含有しない,でき
る限り純粋な因子IX−調製物を簡単に得る方法を調製す
ることを課題とする。
この課題は本発明によれば次の様にして解決される。
すなわち血しょう又は他の,凝固因子IXを含有する分画
に,α−ヒドロキシル−アミノ−基を有するマトリック
スを加え,因子IXを吸着し,適当な緩衝液で後洗滌し,
次いで特異的に溶出する。次いでこの溶出液中の因子IX
を,ほとんどすべての他のたん白質を吸着しない条件下
で固定化された硫酸化された炭水化物を有する担体と結
合させる。塩−勾配で最後に因子IXを溶出する。
すなわち血しょう又は他の,凝固因子IXを含有する分画
に,α−ヒドロキシル−アミノ−基を有するマトリック
スを加え,因子IXを吸着し,適当な緩衝液で後洗滌し,
次いで特異的に溶出する。次いでこの溶出液中の因子IX
を,ほとんどすべての他のたん白質を吸着しない条件下
で固定化された硫酸化された炭水化物を有する担体と結
合させる。塩−勾配で最後に因子IXを溶出する。
驚くべきことに本発明者は,因子IXをこの簡単な二段
階方法を用いて高収量かつほぼ純粋な形で得ることがで
きることを見い出した。因子IXの凝固活性の維持のため
に非生理的たん白質阻害剤の添加は,必ずしも必要では
ない。
階方法を用いて高収量かつほぼ純粋な形で得ることがで
きることを見い出した。因子IXの凝固活性の維持のため
に非生理的たん白質阻害剤の添加は,必ずしも必要では
ない。
出発材料として血しょう及び血しょう分画又は他の,
凝固因子IXを含有する溶液を使用することができる。
凝固因子IXを含有する溶液を使用することができる。
本発明による方法の場合,たとえば血しょうを少し高
められた伝導度,好ましくは12〜15mS/cm及び好ましく
は7.0〜7.7のpHでα−ヒドロキシル−アミノ−担体,た
とえばフラクトゲル(Ftaktogel)TSK−アミノ(メクル
社製,ダルムシュタット)で吸着する。担体を,因子IX
をほんの僅かしか溶離しない条件下に洗滌する。この洗
滌を,低分子の有機アミン−これはα−ヒドロキシル−
アミノ−プロピル−基と一定の類似性を有しなければな
らない−,たとえば1−アミノ2−プロパノ−ル,1,3−
ジアミノ−2−プロパノ−ル又は1,3−ジアミノプロパ
ンを用いてたとえば10mMクエン酸塩,10mMリン酸塩及び1
00mM Naclを有する緩衝液中でpH7.5で実施するのが好ま
しい。洗滌工程をアミン不含の緩衝液でも行うことがで
きる。勿論これからほんの僅かな純度及び収量が得られ
る。次いでアミン−又は場合により塩濃度の増加によっ
て,因子IXを担体から溶出する。低分子アミンの添加
は,洗滌工程でも,因子IXの溶出でも特異性を増加させ
る。
められた伝導度,好ましくは12〜15mS/cm及び好ましく
は7.0〜7.7のpHでα−ヒドロキシル−アミノ−担体,た
とえばフラクトゲル(Ftaktogel)TSK−アミノ(メクル
社製,ダルムシュタット)で吸着する。担体を,因子IX
をほんの僅かしか溶離しない条件下に洗滌する。この洗
滌を,低分子の有機アミン−これはα−ヒドロキシル−
アミノ−プロピル−基と一定の類似性を有しなければな
らない−,たとえば1−アミノ2−プロパノ−ル,1,3−
ジアミノ−2−プロパノ−ル又は1,3−ジアミノプロパ
ンを用いてたとえば10mMクエン酸塩,10mMリン酸塩及び1
00mM Naclを有する緩衝液中でpH7.5で実施するのが好ま
しい。洗滌工程をアミン不含の緩衝液でも行うことがで
きる。勿論これからほんの僅かな純度及び収量が得られ
る。次いでアミン−又は場合により塩濃度の増加によっ
て,因子IXを担体から溶出する。低分子アミンの添加
は,洗滌工程でも,因子IXの溶出でも特異性を増加させ
る。
次いで因子IX−活性を有する溶出液を,硫酸化された
炭水化物を有する担体,たとえばヘパリン−セフアロー
ス(フアルマシア社製,フライブルグ)ヘパリン−フラ
クトゲル−TSK,ヘパリン−オンペルギト(Eupergit)
(レーム社製,ダルムシュタット)又はデキストランス
ルフアート−セフアロース上に施す。その際伝導度を13
〜17,好ましくは15mS/cmに調整する。この方法で因子IX
しか担体に著しく吸着されない。次いでこれをたとえば
0〜1M NaClを用いる塩−勾配によってほぼ純粋な形で
マトリックスから溶出することができる。得られた因子
IX−溶出液をダイア(Dia)−及び限外濾過によって濃
縮し,次いで凍結乾燥する。
炭水化物を有する担体,たとえばヘパリン−セフアロー
ス(フアルマシア社製,フライブルグ)ヘパリン−フラ
クトゲル−TSK,ヘパリン−オンペルギト(Eupergit)
(レーム社製,ダルムシュタット)又はデキストランス
ルフアート−セフアロース上に施す。その際伝導度を13
〜17,好ましくは15mS/cmに調整する。この方法で因子IX
しか担体に著しく吸着されない。次いでこれをたとえば
0〜1M NaClを用いる塩−勾配によってほぼ純粋な形で
マトリックスから溶出することができる。得られた因子
IX−溶出液をダイア(Dia)−及び限外濾過によって濃
縮し,次いで凍結乾燥する。
この簡単な方法での収率は,たん白質mgあたり200〜3
00Eの比活性を有する因子IXに関して,血しょう中で出
発活性の40%までである。その際因子IXの凝固活性を,
ベーリング社の市場で入手できるテキスト試剤を用いて
製造者の指示に従って測定する。分画のたん白質含有量
は,ブラドフォード(Bradford),MM.,Anal.Biochem.7
2,248−254(1976)のマイクロ法によって又は窒素−検
知器を備えたマイクロケルダール法によって製造者(ア
ンテクインストルメンツ社,ヒューストン,テキサス
州)の指示に従って測定される。
00Eの比活性を有する因子IXに関して,血しょう中で出
発活性の40%までである。その際因子IXの凝固活性を,
ベーリング社の市場で入手できるテキスト試剤を用いて
製造者の指示に従って測定する。分画のたん白質含有量
は,ブラドフォード(Bradford),MM.,Anal.Biochem.7
2,248−254(1976)のマイクロ法によって又は窒素−検
知器を備えたマイクロケルダール法によって製造者(ア
ンテクインストルメンツ社,ヒューストン,テキサス
州)の指示に従って測定される。
最終生成物中,ゲル−電気泳動を用いてライスフエル
ド(Reisfeld),RA等,Nature195,281(1962)及びラエ
ンリー(Laenmli),UK.等,Nature227,680(1970)に従
って減少する及び自然条件下に因子IX−移動性を有する
たん白質しか著しく検出することができない。
ド(Reisfeld),RA等,Nature195,281(1962)及びラエ
ンリー(Laenmli),UK.等,Nature227,680(1970)に従
って減少する及び自然条件下に因子IX−移動性を有する
たん白質しか著しく検出することができない。
この様な比活性は,従来数段階処理によってしか達成
され得なかった。当然その収率は,明らかに本発明によ
る方法を用いれば得ることができる30−40%以下であ
る。
され得なかった。当然その収率は,明らかに本発明によ
る方法を用いれば得ることができる30−40%以下であ
る。
したがって本発明による因子IXの精製方法は,凝固因
子IXの工業的収得に於て著しい進歩である。この長所
は,簡単かつ迅速な方法で高収率及び高純度にある。
子IXの工業的収得に於て著しい進歩である。この長所
は,簡単かつ迅速な方法で高収率及び高純度にある。
α−ヒドロキシル−アミノ−マトリックスに又は硫酸
化された炭水化物−マトリックスに因子IXを吸着前又は
吸着後,β−プロピオラクトン及び(又は)UV−照射
で,溶剤/洗剤で,安定剤を用いるパスツゥール法を行
うことによって無菌化を行い,場合により存在するヒト
病原体ウイルスを不活性化する。
化された炭水化物−マトリックスに因子IXを吸着前又は
吸着後,β−プロピオラクトン及び(又は)UV−照射
で,溶剤/洗剤で,安定剤を用いるパスツゥール法を行
うことによって無菌化を行い,場合により存在するヒト
病原体ウイルスを不活性化する。
次の例によって本発明を説明する。
例1 グリシジルメタアクリラート,ペンタエリスロールジ
メチルアクリラート及びポリビニルアルコールのコポリ
マーから成る,α−ヒドロキシル−アミノ−プロピルを
有するマトリックス,たとえばフラクトゲルTSK−アミ
ノ(メルク社製,ダルムシュタット)を有するカラム25
0mlを,緩衝液A1500ml(10mMクエン酸塩,10mM NaHPO4,1
00mM NaCl,pH7.5)で平衡化する。
メチルアクリラート及びポリビニルアルコールのコポリ
マーから成る,α−ヒドロキシル−アミノ−プロピルを
有するマトリックス,たとえばフラクトゲルTSK−アミ
ノ(メルク社製,ダルムシュタット)を有するカラム25
0mlを,緩衝液A1500ml(10mMクエン酸塩,10mM NaHPO4,1
00mM NaCl,pH7.5)で平衡化する。
伝導度13mS/cmを有する血しょう5000mlを流動度300ml
/hで施し,次いで緩衝液A1000mlで洗滌する。因子IXを
0〜0.5M NaClの直線勾配で緩衝液A中に溶出する。3E
因子IX/mgたん白質以上の比活性を有する分画を貯留す
る。
/hで施し,次いで緩衝液A1000mlで洗滌する。因子IXを
0〜0.5M NaClの直線勾配で緩衝液A中に溶出する。3E
因子IX/mgたん白質以上の比活性を有する分画を貯留す
る。
ヘパリン−セフアロースを有するカラム500ml(フア
ルマシア社,フライブルグ)を,緩衝液A1000mlで平衡
化する。因子IX−溶出液を緩衝液B(10mMクエン酸塩,p
H7.5)で伝導度15mS/cmに希釈し,カラムに装てんす
る。次いで緩衝液B500mlで洗滌し,0.1M NaClの勾配で緩
衝液B中に溶出する。
ルマシア社,フライブルグ)を,緩衝液A1000mlで平衡
化する。因子IX−溶出液を緩衝液B(10mMクエン酸塩,p
H7.5)で伝導度15mS/cmに希釈し,カラムに装てんす
る。次いで緩衝液B500mlで洗滌し,0.1M NaClの勾配で緩
衝液B中に溶出する。
因子IX−溶出液を,ダイア濾過及び限外濾過によって
濃縮し,凍結乾燥する。因子IXに関する全収率は,プラ
ズマ中で出発活性の30%である。因子IXの比活性は,270
E因子IX/mgたん白質である。
濃縮し,凍結乾燥する。因子IXに関する全収率は,プラ
ズマ中で出発活性の30%である。因子IXの比活性は,270
E因子IX/mgたん白質である。
例2 クエン酸塩−血しょう1000ml中に例1と同様にクロマ
トグラフィー分離する。因子IXを,今回α−ヒドロキシ
ル−アミノ−プロピル−マトリックスフラクトゲルTSK
−アミノ(メルク社,ダルムシュタット)から遊離配位
子,すなわち1−アミノ−2−プロパノ−ルと共に溶出
する。カラムを緩衝液Aで,次いで緩衝液A中の0.2M 1
−アミノ−2−プロパノ−ルで洗滌した後,緩衝液A中
の0.25M1−アミノ−2−プロパノ−ルで溶出する。
トグラフィー分離する。因子IXを,今回α−ヒドロキシ
ル−アミノ−プロピル−マトリックスフラクトゲルTSK
−アミノ(メルク社,ダルムシュタット)から遊離配位
子,すなわち1−アミノ−2−プロパノ−ルと共に溶出
する。カラムを緩衝液Aで,次いで緩衝液A中の0.2M 1
−アミノ−2−プロパノ−ルで洗滌した後,緩衝液A中
の0.25M1−アミノ−2−プロパノ−ルで溶出する。
例1と同様にヘパリン−セフアロースを介して因子IX
−溶出液をクロマトグラフィー分離した後,因子IXの比
活性は265E因子IX/mgたん白質である。収率は,血しょ
う中で出発活性の39%である。
−溶出液をクロマトグラフィー分離した後,因子IXの比
活性は265E因子IX/mgたん白質である。収率は,血しょ
う中で出発活性の39%である。
例3 血しょう1000mlを,例1と同様にクロマトグラフィー
分離する。ヘパリン−担体として,クリジルメタアクリ
ラート,ペンタエリスロール−ジメチトアクリラート及
びポリビニルアルコールのコポリマータイプのポリマー
(メルク社のフラクトゲル−TKS,ダルムシュタット)を
使用する。
分離する。ヘパリン−担体として,クリジルメタアクリ
ラート,ペンタエリスロール−ジメチトアクリラート及
びポリビニルアルコールのコポリマータイプのポリマー
(メルク社のフラクトゲル−TKS,ダルムシュタット)を
使用する。
ヘパリン−フラクトゲルを,フラクトゲル−TSK−ア
ミノ50gと0.2Mリン酸塩緩衝液50ml中にヘパリン1.5g及
びNaCNBH3150mgとをpH7.0、2日間室温で反応させ,次
いで蒸溜水で洗滌して製造する。
ミノ50gと0.2Mリン酸塩緩衝液50ml中にヘパリン1.5g及
びNaCNBH3150mgとをpH7.0、2日間室温で反応させ,次
いで蒸溜水で洗滌して製造する。
因子IXの比活性は,出発血しょうに対して収率27%
で,200Emgたん白質である。
で,200Emgたん白質である。
例4 血しょう1000ml中に,例1と同様にクロマトグラフィ
ー分離する。ヘパリン−セフアロースの代わりに,デキ
ストランスルフアート−セフアロースを使用する。
ー分離する。ヘパリン−セフアロースの代わりに,デキ
ストランスルフアート−セフアロースを使用する。
デキストランスルフアート−セフアロースを,セフア
ロース4B100ml(フアルマシア社,フライブルグ)とデ
キストランスルフアート5gとを水100ml及びブロムシア
ン4g中でpH11で10分間反応させることによって製造す
る。pH8で更に24時間後,ゲルを水及び緩衝液で洗滌す
る。
ロース4B100ml(フアルマシア社,フライブルグ)とデ
キストランスルフアート5gとを水100ml及びブロムシア
ン4g中でpH11で10分間反応させることによって製造す
る。pH8で更に24時間後,ゲルを水及び緩衝液で洗滌す
る。
因子IXの比活性は,出発血しょうに対して収率31%
で,210E/mgたん白質である。
で,210E/mgたん白質である。
例5 血しょう1000mlを,0.25%β−プロピオラクトンを用
いてpH8.0で一晩処理し,次いでUV−光線を照射する。
低温滅菌された血しょうを例2に準じて後処理する。20
%の収率で純度は,210E/mgたん白質である。
いてpH8.0で一晩処理し,次いでUV−光線を照射する。
低温滅菌された血しょうを例2に準じて後処理する。20
%の収率で純度は,210E/mgたん白質である。
例6 クエン酸塩−血しょう1000mlを,例2に準じてクロマ
トグラフィー分離する。2つのクロマトグラフィー分離
−工程の間で,フラクトゲルTSK−アミノの溶出液を8
時間,25℃で0.3%トリ−N−ブチルホスフアート及び1
%トゥ−ン80を用いて処理し,次いで2個の20ワットUV
−ランプを有する回転流動−装置中で600UpM及び流量20
l/hrで1cm間隔で照射する。
トグラフィー分離する。2つのクロマトグラフィー分離
−工程の間で,フラクトゲルTSK−アミノの溶出液を8
時間,25℃で0.3%トリ−N−ブチルホスフアート及び1
%トゥ−ン80を用いて処理し,次いで2個の20ワットUV
−ランプを有する回転流動−装置中で600UpM及び流量20
l/hrで1cm間隔で照射する。
因子IXの比活性は,245E因子IX/mgたん白質である。収
率は,血しょう中で出発活性の35%である。
率は,血しょう中で出発活性の35%である。
例7 0.6E因子IX/mgたん白質の比活性を有するPPSB−市販
生成物100mlを,例2と同様に例1で使用された吸着剤
夫々30mlを介してクロマトグラフィー分出する。この方
法で210E/mgたん白質の因子IXを,収率76%で単離する
ことができる。
生成物100mlを,例2と同様に例1で使用された吸着剤
夫々30mlを介してクロマトグラフィー分出する。この方
法で210E/mgたん白質の因子IXを,収率76%で単離する
ことができる。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 ベルトラーム・アイヒエントップフ ドイツ連邦共和国、バート・ゾーデン、 ロッセルト ストラーセ、13 (56)参考文献 特開 平1−207239(JP,A) 特開 昭62−26227(JP,A) 特開 昭57−80323(JP,A)
Claims (14)
- 【請求項1】a)血液凝固因子IXを含有する溶液を,α
−ヒドロキシル−アミノ−基を有する吸着剤で吸着し,
血液凝固因子を溶出し, b)因子IX−溶出液から因子IXを硫酸化された炭水化物
を有するマトリックスと結合させ,その際伝導度を13〜
17mS/cmに調整し,次いで塩−勾配で溶出し, c)純粋な因子IXを濃縮し,凍結乾燥することを特徴と
する,血液凝固因子IXの単離方法。 - 【請求項2】α−ヒドロキシル−アミノ−担体として,
グリシジルメタアクリラート,ペンタエリスロールジメ
タアクリラート及びポリビニルアルコールのコポリマー
のポリマーを使用する請求項1記載の方法。 - 【請求項3】α−ヒドロキシル−アミノ−担体の因子IX
用溶出剤として低分子の第一有機アミンを使用する請求
項1又は2記載の方法。 - 【請求項4】溶出剤として1−アミノ−2−プロパノ−
ルを使用する請求項3記載の方法。 - 【請求項5】溶出剤として1,3−ジアミノ−2−プロパ
ノール又は1,3−ジアミノ−プロパンを使用する請求項
3記載の方法。 - 【請求項6】吸着を,カラムクロマトグラフィーとして
α−ヒドロキシル−アミノ−担体でバッチ法で又は膜で
実施する請求項1ないし5のいずれかに記載した方法。 - 【請求項7】硫酸化された炭水化物を有するマトリック
スとして,グリシジルメタアクリラート,ペンタエリス
ロール−ジメタアクリラート及びポリビニルアルコール
のコポリマータイプのポリマーに固定されたヘパリンを
使用する請求項1ないし6のいずれかに記載した方法。 - 【請求項8】硫酸化された炭水化物を有するマトリック
スとして,メタアクリルアミド,N−メチレン−ビス−メ
タアクリルアミド及びアリルクリシジルエーテルのコポ
リマータイプのポリマーに固定されたヘパリンを使用す
る請求項1ないし6のいずれかに記載した方法。 - 【請求項9】硫酸化された炭水化物を有するマトリック
スとして,炭水化物のポリマーに固定化されたヘパリン
を使用する請求項1ないし6のいずれかに記載した方
法。 - 【請求項10】硫酸化された炭水化物を有するマトリッ
クスとして,炭水化物のポリマーに固定化されたデキス
トランスルフアートを使用する請求項1ないし6のいず
れかに記載した方法。 - 【請求項11】吸着を,カラムクロマトグラフィーとし
て硫酸化された炭水化物を有するマトリックスでバッチ
法で又は膜で実施する請求項1ないし10のいずれかに記
載した方法。 - 【請求項12】出発溶液として血液凝固因子IXを含有す
る血しょう,血しょう分画又は発酵溶液又はその分画を
使用する請求項1ないし11のいずれかに記載した方法。 - 【請求項13】α−ヒドロキシル−アミノ−担体又は硫
酸化された炭水化物−担体で吸着前又は吸着後,溶液中
に存在するウイルスを適当な操作で不活性化する請求項
1ないし12のいずれかに記載した方法。 - 【請求項14】α−ヒドロキシル−アミノ−担体又は硫
酸化された炭水化物−担体で吸着前又は吸着後,溶液中
に存在するウイルスを,β−プロピオラクトン及び(又
は)UV−照射で処理して,溶剤及び(又は)洗剤で処理
して又は溶液の形で安定剤を用いてパストゥール法を行
うことによって又はこれらの方法の組合せによって不活
性化する請求項13記載の方法。
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DE3914869.6 | 1989-05-05 | ||
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EP (1) | EP0396022B1 (ja) |
JP (1) | JP2593951B2 (ja) |
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AT395597B (de) * | 1991-01-25 | 1993-01-25 | Immuno Ag | Reagens zur bestimmung von faktor viii-aktivitaet |
ES2150914T3 (es) | 1991-03-01 | 2000-12-16 | Rhone Poulenc Rorer Int | Preparacion de factor ix. |
IT1262899B (it) * | 1992-03-27 | 1996-07-22 | Sclavo Spa | Processo per l'isolamento di fattore ix, fattore x e fattore ii altamente purificati dal complesso protrombinico o dal plasma umano |
DE4342132C1 (de) * | 1993-12-10 | 1994-11-03 | Octapharma Ag | Verfahren zur Herstellung virusinaktivierte Vitamin K abhängige Plasmakomponenten sowie Protein C und Protein S enthaltender Mittel durch Membran-Chromatographie |
DE19504852C2 (de) * | 1995-02-15 | 2003-01-23 | Octapharma Ag Lachen | Verfahren zur Reinigung Vitamin K-abhängiger Gerinnungsfaktoren durch Affinitäts-Chromatographie |
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DE10045434B4 (de) * | 2000-09-14 | 2005-07-14 | Fresenius Hemocare Gmbh | Adsorbens mit unterschiedlich modifizierten Oberflächenbereichen, Verfahren zu dessen Herstellung und Verwendung davon |
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US9663553B2 (en) | 2014-01-29 | 2017-05-30 | Hemarus Therapeutics Limited | Integrated process for the production of therapeutics (human albumin, immunoglobulins, clotting factor VIII and clotting factor IX) from human plasma |
US10793327B2 (en) | 2017-10-09 | 2020-10-06 | Terumo Bct Biotechnologies, Llc | Lyophilization container and method of using same |
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DE3172210D1 (en) * | 1980-05-27 | 1985-10-17 | Miles Lab | Blood coagulation promoting product and process of preparing same |
DE3033932C2 (de) * | 1980-09-10 | 1984-05-24 | Biotest-Serum-Institut Gmbh, 6000 Frankfurt | Verfahren zur Kaltsterilisation von Blutgerinnungsfaktor VIII enthaltenden Präparaten |
DE3101752A1 (de) * | 1981-01-21 | 1982-08-26 | Behringwerke Ag, 3550 Marburg | "verfahren zur reinigung der blutgerinnungsfaktoren ii, vii, ix und/oder x und danach hergestellte praeparationen" |
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US4721572A (en) * | 1985-07-12 | 1988-01-26 | Miles Laboratories, Inc. | Purfication of blood clotting factors and other blood proteins on non-carbohydrate sulfated matrices |
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EP0317376B2 (fr) * | 1987-10-23 | 1996-04-03 | Centre Regional De Transfusion Sanguine De Lille | Préparation de concentré de facteur IX humain de haute pureté et d'autres protéines plasmatiques |
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