JP2023171257A

JP2023171257A - 交叉反応を抑制した葉酸測定方法

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Publication number: JP2023171257A
Application number: JP2023056820A
Authority: JP
Inventors: 俊介三谷; Shunsuke Mitani
Original assignee: Tosoh Corp
Current assignee: Tosoh Corp
Priority date: 2022-05-20
Filing date: 2023-03-31
Publication date: 2023-12-01

Abstract

【課題】葉酸の測定系において、１．防腐効果、２．ＦＯＬ低濃度域での感度が向上する、という２つの効果を両立できるような防腐剤の種類と濃度を提供する。【解決手段】検体中の葉酸を、葉酸と葉酸結合蛋白質との結合を利用した測定系で測定する方法において、検体中の葉酸と葉酸結合蛋白質とが接触する際に、０．０００１～０．００３ｗ／ｖ％の２－メチル－４－イソチアゾリン－３－オン及び０．０００１～０．０１ｗ／ｖ％の５－クロロ－２－メチル－４－イソチアゾリン－３－オンを共存させる。【選択図】図１

Description

本発明は、交叉反応を抑制した葉酸（以下「ＦＯＬ」という）の測定方法に関するものである。

体外診断用医薬品には、種々の物質が含有されており、直接測定に関与するもののほかに、種々の添加剤が含有されている。その１つとして防腐剤があげられ、例えばプロクリン防腐剤（シグマアルドリッチジャパン株式会社製）のプロクリン１５０、プロクリン２００、プロクリン３００、プロクリン９５０が挙げられる（非特許文献１）。これらには２－メチル－４－イソチアゾリン－３－オン（以下「ＲＨ５７３」とする）や５－クロロ－２－メチル－４－イソチアゾリン－３－オン（以下「ＲＨ６５１」とする）が含有されている。

臨床診断薬用防腐剤／緩衝液用防腐剤ＰｒｏＣｌｉｎカタログ、シグマアルドリッチジャパン株式会社、発行日２０２１年１０月

本発明は、ＲＨ５７３を高濃度で含む防腐剤を使用すると、ＦＯＬ測定時に、ＦＯＬ低濃度域での測定値が理論値よりも高値となるという課題を見出した。本発明は、１．防腐効果、２．ＦＯＬ低濃度域での感度が向上するという２つの効果を両立できるような防腐剤の種類と濃度を提供することを目的とする。

本発明者らは、前記課題を解決すべく鋭意検討を行なった結果、防腐剤の種類と濃度を特定の範囲に限定することにより、ＦＯＬ低濃度域であっても測定値が理論値に近い値となる、即ち感度が向上することを見出し、本発明を完成するに至った。

即ち、本発明は以下のとおりである。
（１）検体中のＦＯＬを、ＦＯＬと葉酸結合蛋白質との結合を利用した測定系で測定する方法において、検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質とが接触する際に、０．０００１～０．００３ｗ／ｖ％のＲＨ５７３を共存させることを特徴とする方法。
（２）上述の（１）に記載の方法において、検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質とが接触する際に、さらに０．０００１～０．０１ｗ／ｖ％のＲＨ６５１を共存させる方法。

以下、本発明を詳細に説明する。なお、本明細書において、特に断りが無い限り、％はｗ／ｖ％を示す。

本発明において、検体とは特に限定されるものではないが、例えば血液、尿等の体液があげられる。好ましくは血液であり、全血又は血漿若しくは血清等であってもよいが、特に血清が好ましい。

本発明において、ＦＯＬと葉酸結合蛋白質との結合を利用した測定系とは、特に限定されるものではないが、例えば競合法があげられる。具体的には、検体中のＦＯＬと、検出試薬として標識されたＦＯＬとが、葉酸結合蛋白質に対して競合して反応する測定系があげられる。このとき、標識されたＦＯＬの代わりに、標識されたＦＯＬ誘導体を用いることができる。ＦＯＬ誘導体としては、例えば葉酸、プテロイックアシッド、トリフルオロアセチルプテロイックアシッド等を用いることができる。

標識としては特に限定は無いが、例えば酵素、色素、放射性物質等が用いられる。

一方、葉酸結合蛋白質は固相に固定化されていてもよく、それによって検出が行いやすくなるため好ましい。

固相としては特に限定は無いが、例えば粒子、微粒子、プレートなどであってよく、その材質も樹脂、ガラス等が利用できる。

本発明において、検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質とが接触する際に、０．０００１～０．００３ｗ／ｖ％のＲＨ５７３を共存させることが必須であるが、好ましくは０．０００４～０．００２％、さらに好ましくは０．０００６～０．００１％である。

また検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質とが接触する際に、さらにＲＨ６５１が０．０００１～０．０１％共存下でＦＯＬの測定を行うことが好ましい。さらに好ましくは０．００１～０．００５％、とりわけ好ましくは０．００２～０．００２５％である。

本発明に用いられる測定系として、例えば、検体中のＦＯＬと、検出試薬として標識されたＦＯＬ誘導体とが、葉酸結合蛋白質に対して競合して反応する場合を例示すると、検体中のＦＯＬと、検出試薬として標識されたＦＯＬ誘導体とは、葉酸結合蛋白質に対して同時に反応させてもよく、又は順次反応させてもよい。例えば、検体中のＦＯＬと、葉酸結合蛋白質とを反応させた後に、検出試薬として標識されたＦＯＬ誘導体を反応させる場合には、葉酸結合蛋白質が固相に固定化されていれば、ＦＯＬ誘導体を反応させる前に分離／洗浄工程を設けることができ、その後にＦＯＬ誘導体を反応させてもよい。それによって、未反応物質を除去することができるため好ましいものである。

本発明によれば、１．防腐効果、２．葉酸低濃度域での感度向上という２つの効果を両立することができる。この理由は明らかではないが、検体中のＦＯＬがＲＨ５７３と交叉反応するため、本発明の方法によりこの交叉反応を抑制することができると考えられる。

実施例２と比較例４との相関を示す図である。実施例３と比較例５の結果を示す図である。図２の低濃度域を拡大した図である。

以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は本実施例により限定されるものではない。

［実施例１、比較例１～３］希釈試験
免疫測定装置として全自動エンザイムイムノアッセイ装置（ＡＩＡ－ＣＬ２４００、東ソー（株）製）と、当該装置用のＡＩＡ－パックＣＬ葉酸と同様の２穴を有する試薬容器とを用い、１ステップディレイ競合法により測定を行った。詳細は以下のとおりである。

（１）検体希釈試薬の調整
表１に示した通りに各溶液を調製し、検体希釈試薬とした。即ち、ＦＯＬＦｒｅｅ血清に、表１に記載の糖、消泡剤、防腐剤等を加えて攪拌後、２穴を有する試薬容器の一方の穴に分注し、凍結乾燥を行った。

表１において、０．１％プロクリン９５０は、検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質が接触する際にＲＨ５７３が０．００４７５％共存する。また０．１％プロクリン３００は、検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質が接触する際にＲＨ６５１が０．００２～０．００２５％、ＲＨ５７３が０．０００７～０．０００９％共存する。

（２）測定
上述の検体希釈試薬を用いて、また測定試薬として、上述の２穴を有する別の試薬容器の一方の穴には磁性微粒子に固定化された葉酸結合蛋白質を含む凍結乾燥体、他方の穴にはアルカリ性ホスファターゼ標識葉酸誘導体を含む凍結乾燥体が、それぞれ封入されたものを用いて、１ステップディレイ競合法により測定を行った。具体的には、以下のとおりである。

１）ＡＩＡ－パックＣＬ葉酸の前処理試薬の変性剤に、溶解液（アジ化ナトリウムを含む分注水）を２０μＬ、検体（患者血清又は血漿）を４０μＬ加えて、１０分間反応させた。
２）次に中和剤に溶解液を７５μＬ加えて溶解させ、１）に４０μＬ加えて前処理反応を停止させた。
３）次に（１）で調製した検体希釈試薬に、溶解液（アジ化ナトリウムを含む分注水）と２）で得られた前処理済み検体を分注し、各希釈率（１／５又は１／１０）に調整した。
４）上述の測定試薬の磁性微粒子に固定化された葉酸結合蛋白質の凍結乾燥体が封入された穴に分注水１０μＬと３）で得られた希釈検体４０μＬを加え、３７℃で６分間反応させ（第一反応）、未反応物を分離（Ｂ／Ｆ分離）及び洗浄液で３回洗浄することにより除去した。
５）次に上述の測定試薬の他方の穴（アルカリ性ホスファターゼ標識ＦＯＬ誘導体の凍結乾燥物が封入）に溶解液を入れて溶解し、それを前述の第一反応後の穴に分注し、３７℃で３分間反応させた（第二反応）。
６）その後Ｂ／Ｆ分離及び洗浄液で３回洗浄して未反応物質を除去した後、発光基質（化合物名ＤＩＦＵＲＡＴ：３－（５－ｔｅｒｔ－ブチルー４，４－ジメチルー２，６，７－トリオキサビシクロ［３．２．０］ヘプト－１－イル）フェニルリン酸エステルジナトリウム塩）を分注して４分間反応させ、固相に結合したアルカリホスファターゼの活性を発光量から測定した。

これら一連の操作は前記自動免疫測定装置で行った。

（３）測定結果
検体を１／５又は１／１０倍希釈して測定した結果を比較した。結果を表２に示す。希釈検体の回収率は、［測定値からの算出濃度／理論濃度］×１００（％）で算出した。

実施例１より、防腐剤であるプロクリン３００（検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質が接触する際の濃度換算で、ＲＨ６５１が０．００２～０．００２５％、ＲＨ５７３が０．０００７～０．０００９％共存）を使用すると、ＦＯＬ低濃度域（１／５又は１／１０希釈）であっても、ＦＯＬの回収率に問題は見られなかった。一方、比較例１，２より、防腐剤であるプロクリン９５０（検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質が接触する際の濃度換算で、ＲＨ５７３が０．００４７５％共存）を使用すると、ＦＯＬ低濃度域で高回収になることが分かった。

以上より、検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質が接触する際の濃度換算で、ＲＨ５７３が０．００４７５％以上共存すると、ＦＯＬがＲＨ５７３と交叉反応することが示唆された。

［実施例２、比較例４］相関性試験
免疫測定装置として全自動エンザイムイムノアッセイ装置（ＡＩＡ－ＣＬ２４００、東ソー（株）製）を用い、１ステップディレイ競合法により測定を行った。詳細は以下の通りである。

（１）測定試薬の調製
表３に示した通りに測定試薬を調製した。即ち、実施例１と同様にして、但し、表３に記載のプロクリンを共存させて、測定試薬（一方の穴には磁性微粒子に固定化された葉酸結合蛋白質を含む凍結乾燥体を含み、他方の穴にはアルカリ性ホスファターゼ標識ＦＯＬ誘導体を含む凍結乾燥体を含む）を調製した。

表３において、０．１％プロクリン９５０は、検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質が接触する際の濃度換算で、ＲＨ５７３が０．００４７５％共存する。また０．１％プロクリン３００は、検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質が接触する際の濃度換算で、ＲＨ６５１が０．００２～０．００２５％、ＲＨ５７３が０．０００７～０．０００９％共存する。

（２）測定
上述の（１）で調製した測定試薬を用いて、実検体を２０例用いて１ステップディレイ競合法により測定を行った。具体的には、以下のとおりである。
１）ＡＩＡ－パックＣＬ葉酸の前処理試薬の変性剤に溶解液（アジ化ナトリウムを含む分注水）を２０μＬ、検体（実検体の血清）を４０μＬ加えて、１０分間反応させた。
２）次に中和剤に溶解液を７５μＬ加えて溶解させ、１）に４０μＬ加えて前処理反応を停止させた。
３）次に（１）で調製した測定試薬の一方の穴（磁性微粒子に固定化された葉酸結合蛋白質を含む凍結感光体が封入）に溶解液（アジ化ナトリウムを含む分注水）１０μＬと前処理された検体４０μＬを加え、３７℃で６分間反応させ（第一反応）、未反応物をＢ／Ｆ分離及び洗浄液で３回洗浄することにより除去した。
４）次に、測定試薬の他方に穴（アルカリ性ホスファターゼ標識ＦＯＬ誘導体を含む凍結乾燥体が封入）に溶解液を入れて溶解し、それをもう一方の穴に分注し、３７℃で３分間反応させた（第二反応）。
５）その後Ｂ／Ｆ分離及び洗浄液で３回洗浄して未反応物質を除去した後、実施例１と同様にして、発光基質を用いて測定した。

これら一連の操作は前記自動免疫測定装置で行った。

（３）測定結果
結果を図１に示す。縦軸は実施例２によるＦＯＬ濃度、横軸は比較例４によるＦＯＬ濃度を示す。実施例２、比較例４の相関より、実施例２（防腐剤プロクリン９５０（検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質が接触する際の濃度換算で、ＲＨ５７３が０．００４７５％共存）がない条件）では、比較例４よりも低濃度域で高い測定値が得られたことから、実施例２の方が感度が向上したことが示唆された。
［実施例３、比較例５］
実施例１又は比較例２と同様にして、但し、検体の希釈倍率を表４に示したようにして、それぞれ実施例３、比較例５を行った。結果を表４に示す。またその結果を図２に示し、さらにその低濃度域の拡大図を図３に示す。図中、白丸は比較例５を、黒丸は実施例３を示す。

表４及び図２，３から明らかなように、実施例３のように、防腐剤である０．１％プロクリン３００（検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質が接触する際の濃度換算で、ＲＨ６５１が０．００２～０．００２５％、ＲＨ５７３が０．０００７～０．０００９％共存）を使用すると、ＦＯＬ低濃度域（希釈倍率０．２又は０．１）であっても、ＦＯＬの回収率に問題は見られなかった。一方、比較例５のように、防腐剤である０．１％プロクリン９５０（検体中のＦＯＬと葉酸結合蛋白質が接触する際の濃度換算で、ＲＨ５７３が０．００４７５％共存）を使用すると、ＦＯＬが高度域では問題がないものの、ＦＯＬ低濃度域で高回収になることが分かった。

Claims

検体中の葉酸を、葉酸と葉酸結合蛋白質との結合を利用した測定系で測定する方法において、検体中の葉酸と葉酸結合蛋白質とが接触する際に、０．０００１～０．００３ｗ／ｖ％の２－メチル－４－イソチアゾリン－３－オンを共存させることを特徴とする方法。
請求項１に記載の方法において、検体中の葉酸と葉酸結合蛋白質とが接触する際に、さらに０．０００１～０．０１ｗ／ｖ％の５－クロロ－２－メチル－４－イソチアゾリン－３－オンを共存させる方法。