JP2022515018A - バイオレチノールを生産する微生物及びそれを用いたバイオレチノールの生産方法 - Google Patents

バイオレチノールを生産する微生物及びそれを用いたバイオレチノールの生産方法 Download PDF

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Abstract

【解決手段】本発明は、レチノール生合成遺伝子が導入されたレチノールを生産する微生物、及びそれを培養するステップを含むレチノール生産方法に関する。【効果】本発明の微生物は、レチノール生産能を向上させるので、レチノールを生産するのに効率的に用いることができ、前記微生物を培養するステップを含むレチノール生産方法によりレチノール生産効率を向上させることができる。

Description

本発明は、β－カロテン及びレチノール生合成遺伝子が導入されたバイオレチノールを生産する微生物、並びにそれを培養するステップを含むバイオレチノール生産方法に関する。
レチノールは、シワ改善及び抗酸化効果を有する高付加価値原料であり、具体的には、レチノール及びその誘導体は、皮膚のシワ改善を促す成分として食品医薬品安全処から機能性化粧品原料として告示された４種類の成分のうち３種類を占めるほどにシワ改善に卓越した効能を有する原料である。よって、このような機能を有するレチノールは、シワ改善効果を有する化粧料組成物として用いることができる。
しかし、レチノールのこのような有用性にもかかわらず、レチノールの大量生産は容易でないのが現状である。レチノールの従来の代表的な生産方法は、天然資源から前駆物質を抽出し、その後ペンタジエン（pentadiene）→レチナール（retinal）→レチノールと続く化学反応により最終産物であるレチノール及びその誘導体を生産するものである。しかし、このような化学的工程による方法は、生産価格が１ｋｇ当たり３，５００～４，０００米ドルであり、レチノール含有製品の生産コストを引き上げるという問題がある。よって、より安定した生産と高い収率を達成するために、バイオ工程による高効率レチノール生産技術が求められている。
J. Sambrook et al., Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 2nd Edition, Cold Spring Harbor Laboratory press, Cold Spring Harbor,New York, 1989 F.M. Ausubel et al., Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, Inc., New York Sambrook et al., supra, 9.50-9.51, 11.7-11.8
本発明者らは、レチノールの生産量を増加させるために鋭意努力した結果、レチノールをさらに安定的かつ高効率で生産する微生物を開発し、前記微生物を様々な条件で培養してレチノールの生産量の増加を確認し、本発明を完成するに至った。本発明の酵母発酵工程でレチノールを生産すると、環境にやさしく安全な酵母菌株を用いるので、安全性が高いだけでなく、マルチコピー（multi-copy）プラスミドを用いたＢＣＭＯ発現により高効率生産が可能であるので、従来の生産技術に比べて価格競争力を向上させることができるものと期待される。
本発明は、ゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ（GGPP synthase, crtE）、フィトエンシンターゼ（Phytoene synthase, crtYB）、デサチュラーゼ（desaturase, crtI）、β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ（β-carotene 15,15' monooxygenase, BCMO）及びレチノールデヒドロゲナーゼ（retinol dehydrogenase, ybbO）のタンパク質活性が強化された、レチノールを生産する微生物を提供することを目的とする。
また、本発明は、前記微生物を培養培地で培養するステップを含むレチノール生産方法を提供することを目的とする。
本発明の微生物は、レチノール生産能を向上させるので、レチノールを生産するのに効率的に用いることができ、前記微生物を培養するステップを含むレチノール生産方法によりレチノール生産効率を向上させることができる。
レチノールの生合成代謝経路の設計を示す図である。 ＳＤＳ－ＰＡＧＥによりｃｒｔＥ（Ａ）、ｃｒｔＩ（Ｂ）及びｃｒｔＹＢ（Ｃ）遺伝子挿入を確認した図である。 ＰＣＲ結果によりＢＣＭＯ－ＳＲ又はＢＣＭＯ－ｂｌｈ遺伝子挿入を確認した図である。 ＢＣＭＯ－ＳＲ又はＢＣＭＯ－ｂｌｈ遺伝子挿入を示すコロニー形成（Ａ）及びマスターコロニー形成（Ｂ）を確認した図である。 ＳＤＳ－ＰＡＧＥによりＢＣＭＯ－ＳＲ（Ａ）又はＢＣＭＯ－ｂｌｈ（Ｂ）遺伝子挿入を確認した図である。 ＰＣＲ結果によりｙｙｂＯ遺伝子挿入を確認した図である。 本発明の形質転換菌株のレチナール（Ａ）及びレチノール（Ｂ）生産量を測定したＨＰＬＣ／ＵＶクロマトグラフィー分析グラフである。 野生型菌株（Ａ）及び本発明の形質転換菌株（Ｂ）のレチノール生産量を測定したＥＳＩ－Ｍａｓｓスペクトルグラフである。 シングルコピープラスミド及びマルチコピープラスミドを用いてＢＣＭＯ遺伝子を導入したそれぞれの場合のレチノール生産量を測定したＨＰＬＣグラフである。 シングルコピープラスミド又はマルチコピープラスミドを用いた場合のレチノール生産量の定量的比較結果を示すグラフである。
前記目的を達成するための本出願の一態様は、ゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ（GGPP synthase, crtE）、フィトエンシンターゼ（Phytoene synthase, crtYB）、デサチュラーゼ（desaturase, crtI）、β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ（β-carotene 15,15' monooxygenase, BCMO）及びレチノールデヒドロゲナーゼ（retinol dehydrogenase, ybbO）のタンパク質活性が強化された、レチノールを生産する微生物を提供する。
また、本発明は、ゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ（GGPP synthase, crtE）、フィトエンシンターゼ（Phytoene synthase, crtYB）、デサチュラーゼ（desaturase, crtI）、β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ（β-carotene 15,15' monooxygenase, BCMO）及びレチノールデヒドロゲナーゼ（retinol dehydrogenase, ybbO）のタンパク質活性が強化された微生物のレチノール生産用途を提供する。
本発明における「レチノール（retinol）」とは、ビタミンＡの一種であり、皮膚の表皮細胞が本来の機能を維持する上で重要な役割を果たすものである。具体的には、ビタミンＡ１の化学名であり、動物の腸粘膜細胞に存在し、緑黄色植物に多量に含まれることが知られている。活性形態であるレチノイン酸（retinoic acid）に変換されることもあり、皮膚細胞に存在する細胞核中のＤＮＡがＲＮＡを発現するようにして細胞分化を促進し、動物の細胞間に繊維状の固体で存在する硬タンパク質であるコラーゲンと、弾性繊維で構成されるエラスチンなどの生合成を促進し、シワを減少させて皮膚の弾力を増加させる効能がある。このように、レチノールは、化粧品原料として用いられてきた。しかし、主に天然植物資源から前駆物質を抽出し、その後化学反応により最終産物であるレチノール及びその誘導体を生産するが、このような化学的生産方法は、他の不純物が混ざっている確率が高いので純度が低く、その生産量が少ないので生産コストが高くなるという欠点があった。よって、本発明の高効率発酵生産技術により製造したレチノールは、皮膚老化防止、皮膚弾力増進、シワ改善などの効果を有する化粧料組成物として用いられる。
本発明における「ゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ（GGPP synthase, crtE）」とは、下記反応式の可逆反応を触媒する酵素を意味する。
Figure 2022515018000002
本発明における「フィトエンシンターゼ（Phytoene synthase, crtYB）」とは、カロテノイド生合成に関与する酵素の一つであり、下記反応式の可逆反応を触媒する酵素を意味し、具体的にはフィトエン（Phytoene）を合成する酵素を意味するが、これに限定されるものではない。
Figure 2022515018000003
本発明における「デサチュラーゼ（desaturase, crtI）」とは、下記反応式の可逆反応を触媒する酵素を意味し、具体的にはリコペン（Lycopene）を合成する酵素を意味するが、これに限定されるものではない。また、フィトエンデサチュラーゼ（Phytoene desaturase）と混用されてもよい。
Figure 2022515018000004
本発明における「β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ（β-carotene 15,15’ monooxygenase, BCMO）」とは、下記反応式の反応を触媒する酵素を意味し、具体的には酸素分子を用いてβ－カロテンを分解し、レチナール２分子を生成する酵素を意味する。また、β－クリプトキサンチン、アポカロテナール、４'－アポ－β－カロテナール、α－カロテン及びγ－カロテンを分解することができる。さらに、β－カロテン１５，１５’ジオキシゲナーゼ（β-carotene 15,15’ dioxygenase）と混用されてもよい。
Figure 2022515018000005
本発明における「レチノールデヒドロゲナーゼ（retinol dehydrogenase, ybbO）」とは、下記反応式の可逆反応を触媒する酵素を意味し、前記酵素の基質はａｌｌ－ｔｒａｎｓ－又は－ｃｉｓ－レチノールであってもよく、２つの基質（レチノール及びＮＡＤ+）を用いて３つの産物（レチナール，ＮＡＤＨ，Ｈ+）を生成することができる。また、ミクロソームレチノールデヒドロゲナーゼ（microsomal retinol dehydrogenase）、ａｌｌ－ｔｒａｎｓレチノールデヒドロゲナーゼ、レチナールレダクターゼ（retinal reductase）及びレチネンレダクターゼ（retinene reductase）と混用されてもよい。
Figure 2022515018000006
前記ゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ、フィトエンシンターゼ、デサチュラーゼ、β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ及びレチノールデヒドロゲナーゼの遺伝的情報は、公知のデータベースから得られ、例えば米国国立生物工学情報センター（National Center for Biotechnology Information; NCBI）のＧｅｎＢａｎｋなどから得られるが、これらに限定されるものではない。
前記ゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ、フィトエンシンターゼ及びデサチュラーゼは、キサントフィロマイセス・デンドロアス（Xanthophyllomyces dendrorhous）に由来するものであってもよく、前記β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ及びレチノールデヒドロゲナーゼは、ハロバクテリウム属ＮＲＣ－１（Halobacterium sp. NRC-1）、海洋細菌６６Ａ０３（marine bacterium 66A03）又はエシェリキア属微生物に由来するものであってもよいが、微生物の種又は微生物によって活性を示すタンパク質のアミノ酸配列に違いがあることがあるので、その由来や配列が限定されるものではない。特に、前記レチノールデヒドロゲナーゼは、エシェリキア属微生物、具体的にはＥ．ｃｏｌｉに由来するものであるが、これに限定されるものではない。
具体的には、前記ゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼは、配列番号７のアミノ酸配列を含むタンパク質であってもよく、前記フィトエンシンターゼは、配列番号８のアミノ酸配列を含むタンパク質であってもよく、前記デサチュラーゼは、配列番号９のアミノ酸配列を含むタンパク質であってもよく、前記β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼは、ＢＣＭＯ－ＳＲにおいては配列番号１０のアミノ酸配列を、ＢＣＭＯ－ｂｌｈにおいては配列番号１１のアミノ酸配列を含むタンパク質であってもよく、レチノールデヒドロゲナーゼは、配列番号１２のアミノ酸配列を含むタンパク質であってもよいが、これらに限定されるものではない。本発明における「アミノ酸配列を含むタンパク質」は、「アミノ酸配列からなるタンパク質」と混用されてもよい。
また、本発明における前記酵素には、各酵素と同一又は相当する生物学的活性を有するものであれば、前述した配列番号だけでなく、前記アミノ酸配列と８０％以上、８５％以上、９０％以上、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上の相同性を示すタンパク質が含まれる。
さらに、前記配列と相同性を有する配列であって、実質的に前述した配列番号の酵素タンパク質と同一又は相当する生物学的活性を有するアミノ酸配列であれば、一部の配列が欠失、改変、置換又は付加されたアミノ酸配列を有するものも本発明に含まれることは言うまでもない。
本願における「相同性」とは、与えられたアミノ酸配列又はヌクレオチド配列に一致する程度を意味し、百分率で表される。本明細書において、与えられたアミノ酸配列又はヌクレオチド配列と同一又は類似の活性を有するその相同性配列は「相同性率」で表される。例えば、スコア（score）、同一性（identity）、類似度（similarity）などのパラメーター（parameter）を計算する標準ソフトウェア、具体的にはＢＬＡＳＴ ２．０を用いるか、定義されたストリンジェントな条件（stringent condition）下にてサザンハイブリダイゼーション実験で配列を比較することにより確認することができ、定義される好適なハイブリダイゼーション条件は当該技術の範囲内であり、当業者に公知の方法（例えば、非特許文献１、２）で決定されてもよい。前記「ストリンジェントな条件」とは、ポリヌクレオチド間の特異的ハイブリダイゼーションを可能にする条件を意味する。例えば、このような条件は文献（例えば、非特許文献１）に具体的に記載されている。
本発明のゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ、フィトエンシンターゼ、デサチュラーゼ、β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ及びレチノールデヒドロゲナーゼには、前述した各酵素と同一又は相当する生物学的活性を有するものであれば、前述した配列番号のアミノ酸配列又は前記配列と８０％以上、８５％以上、９０％以上、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上の相同性を示すタンパク質をコードするポリヌクレオチドが含まれ、具体的にはゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ（GGPP synthase, crtE）をコードする遺伝子には、配列番号１の塩基配列が含まれ、フィトエンシンターゼ（Phytoene synthase, crtYB）をコードする遺伝子には、配列番号２の塩基配列が含まれ、デサチュラーゼ（desaturase, crtI）をコードする遺伝子には、配列番号３の塩基配列が含まれ、β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ（ＢＣＭＯ）をコードする遺伝子には、ＢＣＭＯ－ＳＲ遺伝子においては、配列番号４の塩基配列が、ＢＣＭＯ－ｂｌｈ遺伝子においては、配列番号５の塩基配列が含まれ、レチノールデヒドロゲナーゼをコードする遺伝子には、配列番号６の塩基配列が含まれる。
また、前記酵素をコードするポリヌクレオチドは、コドンの縮退（degeneracy）により前記タンパク質を発現させようとする生物において好まれるコドンを考慮して、コード領域から発現するタンパク質のアミノ酸配列が変化しない範囲でコード領域に様々な改変を行うことができる。よって、前記ポリヌクレオチドは、各酵素タンパク質をコードするポリヌクレオチド配列であればいかなるものでもよい。
さらに、公知の遺伝子配列から製造されるプローブ、例えば前記ポリヌクレオチド配列の全部又は一部に対する相補配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることにより前記ゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ、フィトエンシンターゼ、デサチュラーゼ、β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ及びレチノールデヒドロゲナーゼの酵素タンパク質の活性を有するタンパク質をコードする配列であればいかなるものでもよい。
前記「ストリンジェントな条件」とは、ポリヌクレオチド間の特異的ハイブリダイゼーションを可能にする条件を意味する。このような条件は文献（例えば、非特許文献１）に具体的に記載されている。例えば、相同性の高い遺伝子同士、４０％以上、具体的には９０％以上、より具体的には９５％以上、さらに具体的には９７％以上、特に具体的には９９％以上の相同性を有する遺伝子同士をハイブリダイズし、それより相同性の低い遺伝子同士をハイブリダイズしない条件、又は通常のサザンハイブリダイゼーションの洗浄条件である６０℃、１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、具体的には６０℃、０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳ、より具体的には６８℃、０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳに相当する塩濃度及び温度において、１回、具体的には２回～３回洗浄する条件が挙げられる。
ハイブリダイゼーションは、たとえハイブリダイゼーションの厳格さに応じて塩基間のミスマッチ（mismatch）が可能であっても、２つのポリヌクレオチドが相補的配列を有することが求められる。「相補的」とは、互いにハイブリダイゼーションが可能なヌクレオチド塩基間の関係を表すために用いられるものである。例えば、ＤＮＡにおいて、アデノシンはチミンに相補的であり、シトシンはグアニンに相補的である。よって、本発明には、実質的に類似したポリヌクレオチド配列だけでなく、全配列に相補的な単離されたポリヌクレオチド断片が含まれてもよい。
具体的には、相同性を有するポリヌクレオチドは、５５℃のＴｍ値でハイブリダイゼーションステップが行われるハイブリダイゼーション条件と前述した条件を用いて探知することができる。また、前記Ｔｍ値は、６０℃、６３℃又は６５℃であってもよいが、これらに限定されるものではなく、その目的に応じて当業者により適宜調節されてもよい。
ポリヌクレオチドをハイブリダイズする適切な厳格さはポリヌクレオチドの長さ及び相補性の程度に依存し、変数は当該技術分野で公知である（非特許文献３参照）。
本発明における「活性の強化」とは、酵素タンパク質の活性が導入されるか、微生物が有する内在性活性又は改変前の活性に比べて活性が向上することを意味する。前記活性の「導入」とは、微生物が本来持っていなかった特定タンパク質の活性が自然に又は人為的に現れるようにすることを意味する。具体的には、酵素タンパク質の活性が強化された微生物とは、天然の野生型微生物又は非改変微生物より酵素タンパク質の活性が向上した微生物を意味する。例えば、前記活性の強化には、外来のゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ、フィトエンシンターゼ、デサチュラーゼ、β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ及び／もしくはレチノールデヒドロゲナーゼを導入して強化すること、又は内在性ゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ、フィトエンシンターゼ、デサチュラーゼ、β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ及び／もしくはレチノールデヒドロゲナーゼの活性を強化することが全て含まれる。具体的には、本発明における活性強化の方法は、１）前記酵素をコードするポリヌクレオチドのコピー数の増加、２）前記ポリヌクレオチドの発現を増加させる発現調節配列の改変、３）前記酵素の活性を強化する染色体上のポリヌクレオチド配列の改変、４）それらの組み合わせにより強化する改変などにより行われるが、これらに限定されるものではない。
前記１）ポリヌクレオチドのコピー数の増加は、特にこれらに限定されるものではないが、ベクターに作動可能に連結された形態で行われるか、宿主細胞内の染色体内に挿入することにより行われる。また、コピー数の増加の一態様として、酵素の活性を示す外来ポリヌクレオチド又は前記ポリヌクレオチドのコドン最適化された変異型ポリヌクレオチドを宿主細胞に導入することにより行われてもよい。前記外来ポリヌクレオチドは、前記酵素と同一／類似の活性を示すものであれば、その由来や配列が限定されるものではない。前記導入は、公知の形質転換方法を当業者が適宜選択して行うことができ、宿主細胞内で前記導入されたポリヌクレオチドが発現することにより酵素が生成されるので、その活性が増加する。
次に、２）ポリヌクレオチドの発現を増加させる発現調節配列の改変は、特にこれらに限定されるものではないが、前記発現調節配列の活性がさらに強化されるように、核酸配列の欠失、挿入、非保存的もしくは保存的置換、又はそれらの組み合わせにより配列上の変異を誘導して行われるか、より強い活性を有する核酸配列に置換することにより行われる。前記発現調節配列には、特にこれらに限定されるものではないが、プロモーター、オペレーター配列、リボソーム結合部位をコードする配列、転写及び翻訳の終結を調節する配列などが含まれる。
具体的には、ポリヌクレオチド発現単位の上流には、本来のプロモーターに代えて強力な異種プロモーターが連結されてもよいが、前記強力なプロモーターの例としては、ＣＪ７プロモーター、ｌｙｓＣＰ１プロモーター、ＥＦ－Ｔｕプロモーター、ｇｒｏＥＬプロモーター、ａｃｅＡ又はａｃｅＢプロモーターなどが挙げられる。より具体的には、ｈｘｐｒ２プロモーター又はＵＡＳ１Ｂプロモーターに作動可能に連結することにより、前記酵素をコードするポリヌクレオチドの発現率を向上させることができるが、これらに限定されるものではない。
また、３）染色体上のポリヌクレオチド配列の改変は、特にこれらに限定されるものではないが、前記ポリヌクレオチド配列の活性がさらに強化されるように、核酸配列の欠失、挿入、非保存的もしくは保存的置換、又はそれらの組み合わせにより発現調節配列上の変異を誘導して行われるか、より強い活性を有するように改良されたポリヌクレオチド配列に置換することにより行われる。
最後に、４）前記１）～３）の組み合わせにより強化する改変は、前記酵素をコードするポリヌクレオチドのコピー数の増加、その発現を増加させる発現調節配列の改変、染色体上の前記ポリヌクレオチド配列の改変、及び前記酵素の活性を示す外来ポリヌクレオチド又はそのコドン最適化された変異型ポリヌクレオチドの改変の少なくとも１つの方法を共に適用することにより行われる。
前記ポリヌクレオチドは、機能するポリヌクレオチドの集合体であればよく、遺伝子ともいう。本発明において、ポリヌクレオチドと遺伝子は混用されてもよく、ポリヌクレオチド配列とヌクレオチド配列は混用されてもよい。
本発明における「ベクター」とは、好適な宿主内で標的タンパク質を発現させることができるように、好適な調節配列に作動可能に連結された前記標的タンパク質をコードするポリヌクレオチドの塩基配列を含有するＤＮＡ産物を意味する。前記調節配列には、転写を開始するプロモーター、その転写を調節するための任意のオペレーター配列、好適なｍＲＮＡリボソーム結合部位をコードする配列、並びに転写及び翻訳の終結を調節する配列が含まれる。ベクターは、好適な宿主細胞内に形質転換されると、宿主ゲノムに関係なく複製及び機能することができ、ゲノム自体に組み込まれうる。
本発明に用いられるベクターは、宿主細胞内で複製可能なものであれば特に限定されるものではなく、当該技術分野で公知の任意のベクターが用いられる。通常用いられるベクターの例としては、天然状態又は組換え状態のプラスミド、コスミド、ウイルス及びバクテリオファージが挙げられる。例えば、ファージベクター又はコスミドベクターとしては、ｐＷＥ１５、Ｍ１３、ＭＢＬ３、ＭＢＬ４、ＩＸＩＩ、ＡＳＨＩＩ、ＡＰＩＩ、ｔ１０、ｔ１１、Ｃｈａｒｏｎ４Ａ、Ｃｈａｒｏｎ２１Ａなどを用いることができ、プラスミドベクターとしては、ｐＢＲ系、ｐＵＣ系、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ系、ｐＧＥＭ系、ｐＴＺ系、ｐＣＬ系、ｐＥＴ系などを用いることができる。具体的には、ｐＤＺ、ｐＡＣＹＣ１７７、ｐＡＣＹＣ１８４、ｐＣＬ、ｐＥＣＣＧ１１７、ｐＵＣ１９、ｐＢＲ３２２、ｐＭＷ１１８、ｐＣＣ１ＢＡＣ、ｐＳＫＨ、ｐＲＳ－４１３、ｐＲＳ－４１４、ｐＲＳ－４１５ベクター、ｐＢＣＡベクター、ｐＹＬＩベクターなどを用いることができるが、これらに限定されるものではない。
本発明に使用可能なベクターは、特に限定されるものではなく、公知の発現ベクターを用いることができる。また、細胞内染色体導入用ベクターにより、染色体内に標的タンパク質をコードするポリヌクレオチドを挿入することができる。前記ポリヌクレオチドの染色体内への挿入は、当該技術分野で公知の任意の方法、例えば相同組換えにより行うことができるが、これに限定されるものではない。前記染色体に挿入されたか否かを確認するための選択マーカー（selection marker）をさらに含んでもよく、それに関する遺伝子を除去してもよい。選択マーカーは、ベクターで形質転換された細胞を選択、すなわち標的核酸分子が挿入されたか否かを確認するためのものであり、薬物耐性、栄養要求性、細胞毒性剤に対する耐性、表面タンパク質の発現などの選択可能表現型を付与するマーカーが用いられる。選択剤（selective agent）で処理した環境においては、選択マーカーを発現する細胞のみ生存するか、異なる表現形質を示すので、形質転換された細胞を選択することができる。
本発明における「形質転換」とは、標的タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含むベクターを宿主細胞に導入することにより、宿主細胞内で前記ポリヌクレオチドがコードするタンパク質を発現させることを意味する。形質転換されたポリヌクレオチドは、宿主細胞内で発現するものであれば、宿主細胞の染色体内に挿入されて位置するか、染色体外に位置するかに関係なく、それらが全て含まれていてもよい。また、前記ポリヌクレオチドは、標的タンパク質をコードするＤＮＡやＲＮＡを含むものである。前記ポリヌクレオチドは、宿主細胞内に導入されて発現するものであれば、いかなる形態で導入されるものでもよい。例えば、前記ポリヌクレオチドは、自ら発現する上で必要な全ての要素を含む遺伝子構造体である発現カセット（expression cassette）の形態で宿主細胞に導入されてもよい。通常、前記発現カセットは、前記ポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーター（promoter）、転写終結シグナル、リボソーム結合部位及び翻訳終結シグナルを含む。前記発現カセットは、自己複製可能な発現ベクターの形態であってもよい。また、前記ポリヌクレオチドは、それ自体の形態で宿主細胞に導入され、宿主細胞において発現に必要な配列と作動可能に連結されたものであってもよいが、これに限定されるものではない。前記形質転換する方法は、核酸を細胞内に導入するいかなる方法であってもよく、当該分野において公知であるように、宿主細胞に適した標準技術を選択して行うことができる。例えば、エレクトロポレーション（electroporation）、リン酸カルシウム（ＣａＰＯ4）沈殿、塩化カルシウム（ＣａＣｌ2）沈殿、微量注入法（microinjection）、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）法、ＤＥＡＥ－デキストラン法、カチオン性リポソーム法、酢酸リチウム－ＤＭＳＯ法などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
また、前記「作動可能に連結」されたものとは、本発明の標的タンパク質をコードするポリヌクレオチドの転写を開始及び媒介するプロモーター配列と前記ポリヌクレオチド配列が機能的に連結されたものを意味する。作動可能な連結は当該技術分野で公知の遺伝子組換え技術を用いて作製することができ、部位特異的ＤＮＡ切断及び連結は当該技術分野の切断及び連結酵素などを用いて作製することができるが、これらに限定されるものではない。
本発明の微生物は、さらにＫｕ７０又はＫｕ８０のタンパク質活性が不活性化されるか、又はＵＲＡ３遺伝子の活性が不活性化されたものであってもよい。
本発明における「Ｋｕ７０」又は「Ｋｕ８０」は、Ｋｕタンパク質であり、Ｋｕ７０及びＫｕ８０は、Ｋｕヘテロ二量体（heterodimer）を形成し、切断されたＤＮＡ二本鎖の末端に結合し、非相同末端結合（non-homologous end joining, NHEJ）経路を介してＤＮＡ修復に関与する。本発明の一実施例においては、レチノール生合成遺伝子の相同組換えの効率を高めるために、ランダム挿入（random insertion）を抑制する機能を有するＫｕ７０／Ｋｕ８０遺伝子の１つが欠損した微生物を用いた。
本発明における「ＵＲＡ３遺伝子」とは、酵母のピリミジン合成経路においてオロチジン－５’－リン酸デカルボキシラーゼ（Orotidine 5'-phosphate decarboxylase, ODCase）をコードする遺伝子である。また、ＵＲＡ３＋酵母は、ウラシルやウリジンを添加していない培地で増殖するが、ピリミジン類似体である５－フルオロオロト酸（5-fluoroorotic acid, 5-FOA）を含む培地では増殖しないという特徴があるので、ＵＲＡ３遺伝子は、前記特徴を用いてポジティブ又はネガティブマーカーとして用いることができる。
本発明の一実施例によれば、レチノール生合成遺伝子が導入されたか否かを確認するために、ＵＲＡ３遺伝子が欠損した酵母を作製し、レチノール生合成遺伝子導入の際にＵＲＡ３遺伝子を同時に導入する方法により、ウラシルやウリジンを添加していない培地からレチノール生合成遺伝子が導入された菌株を選択した（実施例１－１）。
本発明における「不活性化」とは、本来微生物が有する酵素タンパク質の内在性活性又は改変前の活性に比べてその活性が低下することや、タンパク質が全く発現しないことや、発現してもその活性がないことを意味する。前記不活性化は、酵素をコードするポリヌクレオチドの変異などにより酵素自体の活性が、本来微生物が有する酵素の活性より低下したり、除去された場合や、酵素をコードする遺伝子の発現阻害又は翻訳（translation）阻害などにより細胞内で全体的な酵素活性の程度が天然の微生物より低下したり、除去された場合や、酵素をコードする遺伝子の一部又は全部が欠失した場合や、それらの組み合わせを含む概念であるが、これらに限定されるものではない。すなわち、酵素タンパク質の活性が不活性化された微生物とは、天然の野生型微生物又は非改変微生物より酵素タンパク質の活性が低下したり、除去された微生物を意味する。
前記酵素活性の不活性化は、当該分野で公知の様々な方法の適用により達成することができる。前記方法の例として、１）前記酵素をコードする染色体上の遺伝子の全部又は一部を欠失させる方法、２）前記タンパク質をコードする染色体上の遺伝子の発現が減少するように発現調節配列を改変する方法、３）前記タンパク質の活性が欠失又は低下するようにタンパク質をコードする染色体上の遺伝子配列を改変する方法、４）前記タンパク質をコードする染色体上の遺伝子の転写産物に相補的に結合するアンチセンスオリゴヌクレオチド（例えば、アンチセンスＲＮＡ）を導入する方法、５）前記タンパク質をコードする染色体上の遺伝子のシャイン・ダルガノ（Shine-Dalgarno）配列の前にシャイン・ダルガノ配列と相補的な配列を付加することにより２次構造物を形成させてリボソーム（ribosome）の付着を不可能にする方法、６）前記タンパク質をコードするポリヌクレオチド配列のＯＲＦ（open reading frame）の３'末端に逆転写するようにプロモーターを付加する方法（Reverse transcription engineering, RTE）などが挙げられ、それらの組み合わせによっても達成することができるが、前記例に特に限定されるものではない。
前記酵素をコードする染色体上の遺伝子の全部又は一部を欠失させる方法は、微生物中の染色体挿入用ベクターを用いて、染色体内の内在性標的タンパク質をコードするポリヌクレオチドを一部のヌクレオチド配列が欠失したポリヌクレオチド又はマーカー遺伝子に置換することにより行うことができる。このようなポリヌクレオチドの全部又は一部を欠失させる方法の一例として、相同組換えによりポリヌクレオチドを欠失させる方法が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
前記発現調節配列を改変する方法は、前記発現調節配列の活性がさらに低下するように、核酸配列の欠失、挿入、非保存的もしくは保存的置換、又はそれらの組み合わせにより発現調節配列上の変異を誘導して行うこともでき、より活性が低い核酸配列に置換することにより行うこともできる。前記発現調節配列には、プロモーター、オペレーター配列、リボソーム結合部位をコードする配列、及び転写と翻訳の終結を調節する配列が含まれるが、これらに限定されるものではない。
前記染色体上の遺伝子配列を改変する方法は、前記酵素の活性がさらに低下するように、遺伝子配列の欠失、挿入、非保存的もしくは保存的置換、又はそれらの組み合わせにより配列上の変異を誘導して行うこともでき、活性がさらに低下するように改良された遺伝子配列又は活性がなくなるように改良された遺伝子配列に置換することにより行うこともできるが、これらに限定されるものではない。
前記「一部」とは、ポリヌクレオチドの種類により異なり、具体的には１～３００個、より具体的には１～１００個、さらに具体的には１～５０個であるが、特にこれらに限定されるものではない。
前記レチノールを生産する微生物は、ゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ（GGPP synthase, crtE）、フィトエンシンターゼ（Phytoene synthase, crtYB）及びデサチュラーゼ（desaturase, crtI）のタンパク質活性が強化された微生物であり、β－カロテンを生産することができ、さらにβ－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ及びレチノールデヒドロゲナーゼタンパク質活性を強化することにより、レチノール生産能がさらに増加した微生物であってもよい。
本発明の微生物は、レチノール生産能を有する微生物であればいかなるものでもよいが、具体的にはヤロウィア・リポリティカ（Yarrowia lipolytica）又はサッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）である。
本発明の他の態様は、本発明の微生物を培養培地で培養するステップを含むレチノール生産方法を提供する。
前記「微生物」及び「レチノール」については前述した通りである。
本発明における「培養」とは、前記微生物を適宜調節した環境条件で生育させることを意味する。本発明の培養過程は、当該技術分野で公知の好適な培地と培養条件で行われてもよい。このような培養過程は、当業者であれば選択される微生物に応じて容易に調整して用いることができる。前記微生物を培養するステップは、特にこれらに限定されるものではないが、公知の回分培養法、連続培養法、流加培養法などにより行われる。本発明の微生物の培養に用いられる培地及び他の培養条件は、通常の微生物の培養に用いられるものであればいかなるものでもよく、具体的には好適な炭素源、窒素源、リン源、無機化合物、アミノ酸及び／又はビタミンなどを含有する通常の培地中で好気性条件下にて温度、ｐＨなどを調節して本発明の微生物を培養することができる。
培養するステップにおけるｐＨは、塩基性化合物（例えば、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム又はアンモニア）又は酸性化合物（例えば、リン酸又は硫酸）により調節することができ、具体的には５．５～７．５、５．５～７．０、６．０～７．５、６．０～７．０、６．５～７．５、又は６．５～７．０であり、より具体的には６．９であるが、これらに限定されるものではない。
また、培養物の好気状態を維持するために、培養物中に酸素又は酸素含有気体を注入してもよく、嫌気及び微好気状態を維持するために、気体を注入しなくてもよく、窒素、水素又は二酸化炭素ガスを注入してもよい。培養するステップにおける曝気量は、０．２～１．５ｖｖｍ、０．２～１．３ｖｖｍ、０．２～１．１ｖｖｍ、０．５～１．５ｖｖｍ、０．５～１．３ｖｖｍ、０．５～１．１ｖｖｍ、０．８～１．５ｖｖｍ、０．８～１．３ｖｖｍ、０．８～１．１ｖｖｍであり、より具体的には０．９ｖｖｍであるが、これらに限定されるものではない。
また、培養温度は、２０～４５℃、又は２５～４０℃に維持してもよく、具体的には２７～３１℃、２８～３１℃、２９～３１℃、又は３０～３１℃に維持し、より具体的には３０．２℃に維持するが、これらに限定されるものではない。
さらに、培養するステップにおける培養器の運転ｒｐｍは、５０～３００ｒｐｍ、５０～２５０ｒｐｍ、１００～３００ｒｐｍ、１００～２５０ｒｐｍ、１５０～３００ｒｐｍ、１５０～２５０ｒｐｍ、２００～３００ｒｐｍ、又は２００～２５０ｒｐｍであってもよく、より具体的には２４９．９ｒｐｍであるが、これらに限定されるものではない。
本発明における「培地」とは、本発明の微生物を培養する培養培地、及び／又は培養して得られた産物を意味する。前記培地は、微生物を含む形態、及び前記微生物を含む培養液から遠心分離、濾過などにより微生物を除去した形態をどちらも含む概念である。
本発明のレチノールを生産する微生物を培養するのに用いられる培養培地は、炭素供給源として糖及び炭水化物（例えば、グルコース、スクロース、ラクトース、フルクトース、マルトース、モラセス、デンプン及びセルロース）、油脂（例えば、大豆油、ヒマワリ油、落花生油及びココナッツ油）、脂肪酸（例えば、パルミチン酸、ステアリン酸及びリノール酸）、アルコール（例えば、グリセリン及びエタノール）、有機酸（例えば、酢酸）などを個別に又は混合して用いることができるが、これらに限定されるものではない。窒素供給源としては、窒素含有有機化合物（例えば、ペプトン、酵母抽出液、肉汁、麦芽抽出液、トウモロコシ浸漬液、大豆粕及び尿素）、無機化合物（例えば、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、炭酸アンモニウム、硝酸アンモニウム）などを個別に又は混合して用いることができるが、これらに限定されるものではない。リン供給源としては、リン酸二水素カリウム、リン酸水素二カリウム、それらに相当するナトリウム含有塩などを個別に又は混合して用いることができるが、これらに限定されるものではない。また、培地は、その他金属塩（例えば、硫酸マグネシウム又は硫酸鉄）、アミノ酸、ビタミンなどの必須成長促進物質を含んでもよい。
本発明のレチノールを生産する微生物の培養に用いる培養培地は、酵母抽出物（Yeast extract）、ペプトン（Peptone）、大豆（Soy bean）及びグルコース（Glucose）からなる群から選択される少なくとも１つの栄養成分を含むものであってもよい。
前記酵母抽出物は、本発明のレチノールを生産する微生物の培養培地に適量含まれ、具体的には培養培地全体の１００重量部に対して１～４重量部、１．５～４重量部、２～４重量部、２．５～４重量部、１～３．５重量部、１．５～３．５重量部、２～３．５重量部、又は２．５～３．５重量部含まれ、より具体的には３重量部含まれるが、これらに限定されるものではない。
また、前記ペプトンは、本発明のレチノールを生産する微生物の培養培地に適量含まれ、具体的には培養培地全体の１００重量部に対して０．５～４重量部、１～４重量部、１．５～４重量部、２～４重量部、２．５～４重量部、０．５～４重量部、１～３．５重量部、１．５～３．５重量部、２～３．５重量部、又は２．５～３．５重量部含まれ、より具体的には３重量部含まれるが、これらに限定されるものではない。
さらに、前記大豆は、本発明のレチノールを生産する微生物の培養培地に適量含まれ、具体的には培養培地全体の１００重量部に対して０．５～４重量部、１～４重量部、１．５～４重量部、２～４重量部、２．５～４重量部、０．５～４重量部、１～３．５重量部、１．５～３．５重量部、２～３．５重量部、又は２．５～３．５重量部含まれ、より具体的には３重量部含まれるが、これらに限定されるものではない。
さらに、前記グルコースは、本発明のレチノールを生産する微生物の培養培地に適量含まれ、具体的には培養培地全体の１００重量部に対して１～３重量部、１～２．５重量部、１．５～３重量部、又は１．５～２．５重量部含まれ、より具体的には２重量部含まれるが、これらに限定されるものではない。
前記培養により生産されたレチノールは、培地中に分泌されるか、細胞内に残留する。
また、本発明のレチノール生産方法は、前記微生物のマルチコピー（multi-copy）プラスミドを用いるものであってもよい。具体的には、一実施例においては、シングルコピーを用いて形質転換した菌株に比べて、マルチコピーを用いて形質転換した菌株を培養すると、レチノール生産量が約３倍に増加することが確認された（実施例３－２）。
また、本発明のレチノール生産方法は、前記培養された微生物又は培地からレチノールを回収するステップをさらに含むものであってもよい。本発明の前記培養ステップで生産されたレチノールを回収するステップは、培養方法に応じて、当該分野で公知の好適な方法を用いてレチノールを生産する微生物及びその培養液から目的とするレチノールを回収することができる。例えば、凍結乾燥、遠心分離、濾過、陰イオン交換クロマトグラフィー、結晶化、ＨＰＬＣなどが用いられ、当該分野で公知の好適な方法を用いて培養された微生物又は培地から目的とするレチノールを回収することができる。前記レチノールを回収するステップは、分離工程及び／又は精製ステップをさらに含んでもよい。
以下、実施例を挙げて本発明をより詳細に説明する。しかし、これらの実施例は本発明を例示するものにすぎず、本発明がこれらの実施例に限定されるものではない。
（実施例１）
レチノール生産用菌株の選定及びコドン最適化による遺伝子合成
実施例１－１：レチノール生産用サッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）プラットフォーム菌株の作製
組換えタンパク質の生産に広く活用される酵母菌株であるサッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）をレチノール生産用菌株として選定した。
次に、レチノール生産用菌株を作製するためにサッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）菌株のゲノム中の高効率遺伝子操作が必要であり、そのためには、ゲノム中で特定遺伝子群を繰り返し挿入、除去できる高効率遺伝子操作システム、及び挿入された遺伝子がゲノム中で相同組換え（homologous recombination）を高効率で行うことのできるシステムを構築しなければならない。よって、前記システムが構築されたサッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）プラットフォーム菌株を作製した。
具体的には、相同組換えの効率を高めるためには、ランダム挿入（random insertion）を抑制する機能を有するＫｕ７０／Ｋｕ８０遺伝子の１つを除去しなければならず、外来遺伝子挿入を確認するための栄養要求性選択マーカー（auxotrophic selection marker）としてＵＲＡ３を用いるためには、ゲノム中のＵＲＡ３遺伝子を除去しなければならない。よって、ＵＲＡ３及びＫｕ７０が除去されたレチノール生産用サッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）プラットフォーム菌株を作製した。以下の実験においては前記菌株を用いた。
実施例１－２：サッカロマイセス・セレビシエに合わせた高効率レチノール生産代謝経路の設計及び遺伝子合成
図１に示すように、ＧＧＰＰの生産からレチノールの生産までの代謝経路（GGPP→Phytoene→Neurosporene→Lycopene→β-carotene→Retinal→Retinol）を設計した。
具体的には、キサントフィロマイセス・デンドロアス（Xanthophyllomyces dendrorhous）由来のβ－カロテン生合成遺伝子であるゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ（GGPP synthase）、フィトエンシンターゼ（Phytoene synthase）及びデサチュラーゼ（desaturase）をコードする塩基配列（それぞれｃｒｔＥ、ｃｒｔＩ及びｃｒｔＹＢ）をサッカロマイセス・セレビシエに合わせてコドン最適化してから各遺伝子を合成し、ハロバクテリウム属ＮＲＣ－１（Halobacterium sp. NRC-1）又は海洋細菌６６Ａ０３（marine bacterium 66A03）由来のレチナール生合成遺伝子であるβ－カロテン１５，１５’－モノオキシゲナーゼ（β-Carotene 15,15'-Monooxygenase）をコードする塩基配列（それぞれＢＭＣＯ－ｂｌｈ又はＢＭＣＯ－ＳＲ）をサッカロマイセス・セレビシエに合わせてコドン最適化してから各遺伝子を合成し、レチノール生合成遺伝子であるレチノールデヒドロゲナーゼ（retinol dehydrogenase）をコードする塩基配列（ｙｂｂＯ）をサッカロマイセス・セレビシエに合わせてコドン最適化してから遺伝子を合成した。
ｃｒｔＥ、ｃｒｔＹＢ、ｃｒｔＩ、ＢＭＣＯ－ｂｌｈ、ＢＭＣＯ－ＳＲ及びｙｂｂＯをコードする塩基配列は、それぞれ配列番号１、配列番号２、配列番号３、配列番号４、配列番号５及び配列番号６で表される。
（実施例２）
レチノール生産用菌株の作製
実施例２－１：レチノール生産用Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ発現ベクターの作製
実施例１－２で合成したｃｒｔＥ、ｃｒｔＩ、ｃｒｔＹＢ、ＢＭＣＯ－ｂｌｈ、ＢＭＣＯ－ＳＲ及びｙｂｂＯ遺伝子の塩基配列をレチノール生産用サッカロマイセス・セレビシエプラットフォーム菌株で安定して発現させるために、ＧＰＤプロモーターとＣＹＣ１ターミネーター（terminator）を含み、ベクターシステムの繰り返し使用が可能なｕｒａマーカーシステムを適用した発現ベクターを作製した。
具体的には、まずＧＰＤプロモーター、ＣＹＣ１ターミネーター及びＵＲＡ Ｂｌａｓｔｅｒ ｃａｓｓｅｔｔｅが導入された発現ベクターに実施例１－２で合成したｃｒｔＥ、ｃｒｔＩ、ｃｒｔＹＢ、ＢＭＣＯ－ｂｌｈ、ＢＭＣＯ－ＳＲ及びｙｂｂＯ遺伝子をコードする塩基配列をマルチクローニングサイト（Multi Cloning Site）にあるＥｃＲＩ、ＸｈｏＩ制限酵素により挿入し、各遺伝子配列が挿入されたｐＢＣＡ＿ｃｒｔＥ、ｐＢＣＡ＿ｃｒｔＩ、ｐＢＣＡ＿ｃｒｔＹＢ、ｐＲＥＴ＿ＢＭＣＯ－ｂｌｈ、ｐＲＥＴ＿ＢＭＣＯ－ＳＲ及びｐＲＥＴ＿ｙｂｂＯベクターを作製した。
実施例２－２：レチノール前駆体の生合成遺伝子の挿入
Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅゲノム中に挿入する部位としては、レチノールの前駆体供給を増加させるために、除去するとレチノールの前駆体であるメバロン酸（mevalonate）の生産を増加させることが知られている遺伝子ＹＰＬ０６２ｗ、及びファルネシルピロリン酸（farnesyl pyrophosphate: FPP）の消費に関与するファルネソール（farnesol）生産遺伝子ＬＰＰ１、ＤＰＰ１を選定した。
具体的には、実施例２－１で作製したｐＢＣＡ＿ｃｒｔＥベクターを実施例１－１で作製したレチノール生産用サッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）プラットフォーム菌株に形質転換し、その後ｃｏｌｏｎｙ ＰＣＲにより菌株内の正確な位置にｃｒｔＥ遺伝子が挿入されたか否かを確認した（図２のＡ）。ｃｒｔＥ遺伝子が正確な位置に挿入されると、図３のＡの１、５、８及び１０レーンのように、４，０００ｂｐのバンドが観測される。挿入が確認された菌株は、ｕｒａ ｐｏｐ ｏｕｔによりｕｒａマーカーを除去し、その後のｃｒｔＩ遺伝子挿入に用いた。
前記方法により、ｃｒｔＩ遺伝子及びｃｒｔＹＢ遺伝子を順次挿入し、前記遺伝子が挿入されたことを確認した（図２のＢ及びＣ）。ｃｒｔＩ遺伝子が正確な位置に挿入されると、図２のＢの１１及び１２レーンのように、４，０００ｂｐ付近のバンドが観測され、ｃｒｔＹＢ遺伝子が正確な位置に挿入されると、図２のＣの１、２、５、９及び１０レーンのように、６，０００ｂｐ付近のバンドが観測される。このように、レチノールの前駆体であるβ－カロテンの生合成遺伝子であるｃｒｔＥ、ｃｒｔＩ及びｃｒｔＹＢ遺伝子が挿入された菌株を作製した。以下の実験では、前記菌株（S. cerevisiae CEN.PK2-1D Δleu2::PTEF1-ERG20 Δhis3::PCCW12-tHMG1 Δlpp1::PGPD-crtE Δdpp1::PGPD-crtI Δypl062w::PGPD-crtYB）を基本菌株としてレチノール生産用菌株を作製した。
実施例２－３：レチノール生合成遺伝子の挿入
前記２－１で作製したｐＢＣＡ－ＢＣＭＯベクターを実施例２－２で作製したレチノール前駆体生合成遺伝子が挿入されたサッカロマイセス・セレビシエ菌株に形質転換し、その後ＰＣＲ及びコロニー形成の観測により菌株内の正確な位置にＢＭＣＯ－ｂｌｈ又はＢＭＣＯ－ＳＲの各遺伝子が挿入されたか否かを確認した（図３、４）。
具体的には、ｐＢＣＡ－ＢＣＭＯベクター及びｐＵＣ－３Ｍｙｃ ＵＲＡ３－ＰGPDベクターにＥｃｏＲＩ／ＸｈｏＩ制限酵素によりＢＣＭＯを溶解させ、１％アガロースゲルで電気泳動して前記溶解させたＢＣＭＯを精製し、前記精製したＢＣＭＯとｐＵＣ－３Ｍｙｃ ＵＲＡ３－ＰGPDベクターをＥｃｏＲＩ／ＸｈｏＩ制限酵素により接合させてｐＵＣ－３Ｍｙｃ ＵＲＡ３－ＰGPD－ＢＣＭＯベクターを作製した。また、ＥｃｏＲＩ／ＸｈｏＩ制限酵素によりＢＣＭＯを溶解させた。その後、ＢＣＭＯ遺伝子を表１に示す塩基配列からなる挿入カセット用プライマーによりＹＰＲＣτ３遺伝子部位に挿入した。
Figure 2022515018000007
こうして、図３に示すように、ＰＣＲの結果から、前記ＢＣＭＯ－ＳＲ又はＢＣＭＯ－ｂｌｈ遺伝子が挿入されたＰGPD－ＢＣＭＯ ＵＲＡ３挿入用ベクターが作製されたことが確認された。
また、図４のＡ及びＢに示すように、コロニー形成の観測及びマスターコロニー（master colony）の取得により、前述したように作製した挿入用カセットを用いてＢＭＣＯ－ｂｌｈ又はＢＭＣＯ－ＳＲ遺伝子がサッカロマイセス・セレビシエＹＰＲＣτ３遺伝子部位に正常に形質転換されたことが確認された。さらに、図４のＣ及びＤに示すように、前記ＢＣＭＯ挿入マスターコロニーのＰＣＲを行った結果、ＢＣＭＯ－ＳＲ遺伝子が導入されると、２１レーンのように、５，１２４ｂｐ付近のバンドが観測され、同様にＢＣＭＯ－ｂｌｈ遺伝子が導入されると、１１及び１４レーンのように、５，１２４ｂｐ付近のバンドが観測されることが確認された。このようにして、ＢＣＭＯ遺伝子が挿入された菌株を作製した。
最終的に、レチノール生産用菌株を作製するために、前述したように作製した菌株にレチノールデヒドロゲナーゼをコードする遺伝子ｙｂｂＯが挿入されたレチノール生産用菌株を作製した。
具体的には、ＢＣＭＯ遺伝子導入方法と同様に、ｐＵＣ５７－３Ｍｙｃ ＵＲＡ３－ＰGPD－ｙｂｂＯ挿入用ベクターを作製した。その後、ｙｂｂＯ遺伝子は、表２に示す塩基配列からなる挿入カセット用プライマーを用いて、ＹＰＲＣｄｅｌｔａ１５遺伝子部位に挿入した。
Figure 2022515018000008
こうして、図５に示すように、ｙｂｂＯ挿入マスターコロニーのＰＣＲを行った結果、ｙｂｂＯ遺伝子が導入されると、１１レーンのように、３，６００ｂｐ付近のバンドが観測されることが確認された。このように、最終的にｃｒｔＥ、ｃｒｔＹＢ、ｃｒｔＩ、ＢＭＣＯ－ｂｌｈ、ＢＭＣＯ－ＳＲ及びｙｂｂＯ遺伝子が挿入されたレチノール生産用菌株を作製した。
（実施例３）
レチノール生産用菌株のレチノール生産の確認
実施例３－１：レチノール生産用菌株のレチノール生産可否の確認
前記レチノール生産用菌株のレチノール生産を確認するために、ＨＰＬＣ／ＵＶクロマトグラム及びＥＳＩ質量スペクトルを得た。具体的には、クロマトグラフィー分析方法は、分析スケール（analytical scale；面積３００ｍｍ×４ｍｍ）を用いて行うものとした。ＯＤＳ Ｃ１８ガードカラム（guard column；４ｍｍ×３ｍｍ）は、ランニングカラム（running column）として先行するものとした。クロマトグラフィー条件は、移動相Ａ：アセトニトリル／Ｈ2Ｏ／氷酢酸＝９０／１０／２；移動相Ｂ：アセトニトリル／メタノール＝９０／１０；移動相Ｃ：１００％ＴＨＦとした。全ての移動相は、使用前に、０．４５μｍのポアサイズを有するナイロンメンブレンフィルターでフィルタリングした。ランニングタイム全体のうち２６分間は、所定の流速（１ｍＬ／分）及び所定のカラム濃度（２２℃）で、０～４．５分１００％Ａ；４．５～６．５分１００％Ｂ；６．５～１２分６０％Ｂ，４０％Ｃ；１２～１５分６０％Ｂ，４０％Ｃ；１５～２０分１００％Ｂ；２０～２６分１００％Ａの濃度プログラムを用いた。
その結果、図６に示すように、前記レチノール生産用菌株を培養することにより形成されたコロニーのレチナール生産ピーク及びレチノール生産ピークが観測された。具体的には、ＨＰＬＣ／ＵＶクロマトグラム（３２５ｎｍ）の測定結果において、レチナール生産ピークは１０．４７分に観測され（図６のＡ）、レチノール生産ピークは１０．９７分に観測された。また、図７に示すように、ＣＥＮ．ＰＫ野生型菌株とは異なり（図７のＡ）、本発明のレチノール生産用菌株は、３０３．２３１８ｍ／ｚでレチノール生産ピークが観測された（図７のＢ）。
これらから、実施例２で作製したレチノール生産用菌株がレチノールを生産することが分かる。
実施例３－２：Ｍｕｌｔｉ ｃｏｐｙプラスミドを用いたレチノール生産量増加効果の確認
マルチコピー（multi-copy）プラスミドを用いて形質転換菌株を培養した場合の前記レチノール生産用菌株のレチノール生産量増加効果を確認した。
具体的には、図８に示すように、ｐＵＣ５７ベクターを用いてシングルコピーのＢＣＭＯ－ＳＲ遺伝子を導入して培養すると、レチノール１６９．１６μｇ／Ｌが生産された。それとは異なり、ｐ４２６ベクターを用いてマルチコピーのＢＣＭＯ－ＳＲ遺伝子を導入して培養すると、レチノール４９１．０９μｇ／Ｌが生産された。すなわち、シングルコピーを用いて形質転換した菌株に比べて、マルチコピーを用いて形質転換し菌株を培養すると、レチノール生産量が約３倍に増加することが確認された。よって、マルチコピー（multi-copy）プラスミドを用いて形質転換した微生物を培養すると、レチノール生産量が大幅に増加することが確認された。
本明細書においては、本発明の技術分野における通常の知識を有する者であれば十分に認識、類推できる内容はその詳細な記載を省略し、本明細書に記載されている具体的な例示以外に、本発明の技術的思想や必須構成を変更しない範囲で様々な変形をすることができる。よって、本発明は、本明細書において具体的に説明、例示したものとは異なる方式で実施することができ、それらは本発明の技術分野における通常の知識を有する者であれば理解できる事項である。

Claims (8)

  1. ゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ（GGPP synthase, crtE）、フィトエンシンターゼ（Phytoene synthase, crtYB）、デサチュラーゼ（desaturase, crtI）、β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ（β-carotene 15,15’ monooxygenase, BCMO）及びレチノールデヒドロゲナーゼ（retinol dehydrogenase, ybbO）タンパク質活性が強化された、レチノールを生産する微生物。
  2. 前記ゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ（GGPP synthase, crtE）、フィトエンシンターゼ（Phytoene synthase, crtYB）及びデサチュラーゼ（desaturase, crtI）は、キサントフィロマイセス・デンドロアス（Xanthophyllomyces dendrorhous）に由来するものである、請求項１に記載のレチノールを生産する微生物。
  3. 前記β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ（β-carotene 15,15’ monooxygenase, BCMO）及びレチノールデヒドロゲナーゼ（retinol dehydrogenase, ybbO）は、ハロバクテリウム属ＮＲＣ－１（Halobacterium sp. NRC-1）、海洋細菌６６Ａ０３（marine bacterium 66A03）又はエシェリキア属微生物に由来するものである、請求項１に記載のレチノールを生産する微生物。
  4. 前記ゲラニルゲラニル二リン酸シンターゼ（GGPP synthase, crtE）遺伝子は、配列番号１の塩基配列を含み、前記フィトエンシンターゼ（Phytoene synthase, crtYB）遺伝子は、配列番号２の塩基配列を含み、前記デサチュラーゼ（desaturase, crtI）遺伝子は、配列番号３の塩基配列を含み、前記β－カロテン１５，１５’モノオキシゲナーゼ（β-carotene 15,15’ monooxygenase, BCMO）遺伝子は、配列番号４又は配列番号５の塩基配列を含み、レチノールデヒドロゲナーゼ（retinol dehydrogenase, ybbO）遺伝子は、配列番号６の塩基配列を含む、請求項１に記載のレチノールを生産する微生物。
  5. 前記微生物は、ヤロウィア・リポリティカ（Yarrowia lipolytica）又はサッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）である、請求項１に記載のレチノールを生産する微生物。
  6. 請求項１～５のいずれか一項に記載の微生物を培養培地で培養するステップを含むレチノール生産方法。
  7. 前記培養培地は、酵母抽出物（Yeast extract）、ペプトン（Peptone）、大豆（Soy bean）及びグルコース（Glucose）からなる群から選択される少なくとも１つの栄養成分を含む、請求項６に記載のレチノール生産方法。
  8. 前記レチノール生産方法は、前記培養された微生物又は培地からレチノールを回収するステップをさらに含む、請求項６に記載のレチノール生産方法。
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