JP2021511794A - 核酸増幅のための方法 - Google Patents

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Abstract

正確でスケーラブルな一次鋳型指向性増幅（ＰＴＡ）核酸増幅ならびに配列決定法のための組成物および方法、ならびに、研究、診断、および処置のためのそれらの応用が本明細書で提供される。【選択図】図１Ａ

Description

相互参照
本出願は、２０１８年１月２９日に出願された米国仮特許出願第６２／６２３，４７１号の利益を主張するものであり、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
核酸増幅（ｎｕｃｌｅｉｃ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）（例えば、次世代シーケンシング）を利用する研究方法は、複合サンプル、ゲノム、および他の核酸源に関する大量の情報を提供する。しかし、少量のサンプルを含む研究、診断、ならびに処置のための、非常に正確で、スケーラブルで、効率的な核酸増幅および配列決定の方法が必要とされる。
少なくとも１つの標的核酸分子およびアンプリコンライブラリを含む組成物が本明細書で提供され、ここで、上記アンプリコンライブラリは、少なくとも１つの標的核酸分子の増幅から得られた複数のポリヌクレオチドを含み、ポリヌクレオチドの少なくともいくつかは、ターミネーターヌクレオチドを含み、ポリヌクレオチドの少なくとも５％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである。ポリヌクレオチドの少なくとも１０％が少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである組成物が、本明細書でさらに提供される。ポリヌクレオチドの少なくとも１５％が少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである組成物が、本明細書でさらに提供される。ポリヌクレオチドの少なくとも２５％が少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである組成物が、本明細書でさらに提供される。ポリヌクレオチドの少なくとも５０％が少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである組成物が、本明細書でさらに提供される。ポリヌクレオチドの５〜５０％が少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである組成物が、本明細書でさらに提供される。ポリヌクレオチドの５〜２５％が少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである組成物が、本明細書でさらに提供される。本明細書にさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下が、少なくとも１つの標的核酸分子の配列の累積画分の少なくとも８０％の配列を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、複数のポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下が、標的核酸配列の累積画分の少なくとも８５％の配列を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、複数のポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下が、標的核酸配列の累積画分の少なくとも９０％の配列を含む組成物である。アンプリコンライブラリが０．５以下のジニ係数（Ｇｉｎｉ ｉｎｄｅｘ）を有する組成物が本明細書でさらに提供される。アンプリコンライブラリが０．４以下のジニ係数を有する組成物が、本明細書でさらに提供される。複数のポリヌクレオチドが約５０〜約２０００のヌクレオチド長さである組成物が、本明細書でさらに提供される。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドが約４００〜約６００のヌクレオチド長さである組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの数が１００〜５０００である組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの数が２５０〜１２５０である組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの数が少なくとも１００である組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの数が少なくとも５００である組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの数が少なくとも１０００である組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの少なくともいくつかがバーコードを含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、バーコードは細胞バーコードを含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、バーコードがサンプルバーコードを含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの少なくともいくつかが固有分子識別子（ｕｎｉｑｕｅ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｒ）を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、複数のポリヌクレオチドがゲノムを少なくとも部分的に表す配列を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、複数のポリヌクレオチドが少なくとも２つのゲノムを少なくとも部分的に表す配列を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、複数のポリヌクレオチドはｃＤＮＡからの配列を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの少なくとも９０％がターミネーターヌクレオチドを含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの少なくとも９８％がターミネーターヌクレオチドを含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ターミネーターヌクレオチドが少なくともいくつかのポリヌクレオチドの３’末端に結合している組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ターミネーターヌクレオチドが、α基修への修飾を伴うヌクレオチド、Ｃ３スペーサーヌクレオチド、ロックド核酸（ＬＮＡ）、逆核酸（ｉｎｖｅｒｔｅｄ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄｓ）、２’フルオロヌクレオチド、３’リン酸化ヌクレオチド、２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチド、およびトランス核酸（ｔｒａｎｓ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄｓ）からなる群から選択される組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、α基修への修飾を伴うヌクレオチドがα−チオジデオキシヌクレオチドである組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ターミネーターヌクレオチドがデオキシリボースの３’炭素のｒ基の修飾を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ターミネーターヌクレオチドが、ヌクレオチドを含有する３’ブロックされた可逆的ターミネーター、ヌクレオチドを含有する３’ブロックされてない可逆的ターミネーター、ターミネーターを含有する２’修飾のデオキシリボヌクレオチド、ターミネーターを含有する、窒素塩基への修飾を有するデオキシリボヌクレオチド、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ターミネーターヌクレオチドが、ジデオキシヌクレオチド、逆ジデオキシヌクレオチド、３’ビオチン化ヌクレオチド、３’アミノヌクレオチド、３’−リン酸化ヌクレオチド、３’−Ｏ−メチルヌクレオチド、３’Ｃ３スペーサーヌクレオチドを含む３’炭素スペーサーヌクレオチド、３’Ｃ１８ヌクレオチド、３’ヘキサンジオールスペーサーヌクレオチド、アシクロヌクレオチド（ａｃｙｃｌｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ）、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される組成物である。液滴中に含まれている組成物が本明細書でさらに提供される。
少なくとも１つの標的核酸分子およびアンプリコンライブラリを含む組成物が本明細書で提供され、ここで、上記アンプリコンライブラリは、少なくとも１つの標的核酸分子の増幅から得られた複数のポリヌクレオチドを含み、ポリヌクレオチドの少なくともいくつかは、ターミネーターヌクレオチドを含み、ポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下が、少なくとも１つの標的核酸分子の配列の累積画分の少なくとも８０％の配列を含む。本明細書でさらに提供されるのは、複数のポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下が、標的核酸配列の累積画分の少なくとも８５％の配列を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、複数のポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下が、標的核酸配列の累積画分の少なくとも９０％の配列を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、複数のポリヌクレオチドが約５０〜約２０００のヌクレオチド長さである組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドが約４００〜約６００のヌクレオチド長さである組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの数が１００−５０００である組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの数が２５０−１２５０である組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの数が少なくとも１００である組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの数が少なくとも５００である組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの数が少なくとも１０００である組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの少なくともいくつかがバーコードを含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、バーコードが細胞バーコードを含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、バーコードがサンプルバーコードを含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの少なくともいくつかが固有分子識別子を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、複数のポリヌクレオチドはゲノムを少なくとも部分的に表す配列を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、複数のポリヌクレオチドが少なくとも２つのゲノムを少なくとも部分的に表す配列を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、複数のポリヌクレオチドがｃＤＮＡからの配列を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの少なくとも９０％がターミネーターヌクレオチドを含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ポリヌクレオチドの少なくとも９８％がターミネーターヌクレオチドを含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ターミネーターヌクレオチドが少なくともいくつかのポリヌクレオチドの３’末端に結合している組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ターミネーターヌクレオチドが、α基修への修飾を伴うヌクレオチド、Ｃ３スペーサーヌクレオチド、ロックド核酸（ＬＮＡ）、逆核酸（ｉｎｖｅｒｔｅｄ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄｓ）、２’フルオロヌクレオチド、３’リン酸化ヌクレオチド、２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチド、およびトランス核酸（ｔｒａｎｓ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄｓ）からなる群から選択される組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、α基修への修飾を伴うヌクレオチドがα−チオジデオキシヌクレオチドである組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ターミネーターヌクレオチドがデオキシリボースの３’炭素のｒ基の修飾を含む組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ターミネーターヌクレオチドが、可逆的ターミネーターを含有する３’ブロックされたヌクレオチド、可逆的ターミネーターを含有する３’ブロックされてないヌクレオチド、ターミネーターを含有する２’修飾のデオキシリボヌクレオチド、ターミネーターを含有する、窒素塩基への修飾を有するデオキシリボヌクレオチド、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される組成物である。本明細書でさらに提供されるのは、ターミネーターヌクレオチドが、ジデオキシヌクレオチド、逆ジデオキシヌクレオチド、３’ビオチン化ヌクレオチド、３’アミノヌクレオチド、３’−リン酸化ヌクレオチド、３’−Ｏ−メチルヌクレオチド、３’Ｃ３スペーサーヌクレオチドを含む３’炭素スペーサーヌクレオチド、３’Ｃ１８ヌクレオチド、３’ヘキサンジオールスペーサーヌクレオチド、アシクロヌクレオチド（ａｃｙｃｌｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ）、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される組成物である。液滴中に含まれている組成物が本明細書でさらに提供される。
標的核酸分子を増幅する方法が本明細書で提供され、上記方法は：標的核酸分子、少なくとも１つの増幅プライマー、少なくとも１つの核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物を含むサンプルを接触させる工程であって、ここで、上記ヌクレオチドの混合物は、ポリメラーゼによる核酸複製を停止する少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを含む、工程と、複数の停止増幅産物（ｔｅｒｍｉｎａｔｅｄ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｐｒｏｄｕｃｔｓ）を生成するために標的核酸分子を増幅する工程であって、ここで、上記複製は鎖置換複製により進行する、工程と、を含む。増幅は実質的に等温条件下で実施される方法が、本明細書でさらに提供される。温度が１０°Ｃ以下変動する条件下で増幅が実施される方法が本明細書でさらに提供される。温度が５°Ｃ以下変動する条件下で増幅が実施される方法が本明細書で提供される。核酸ポリメラーゼがＤＮＡポリメラーゼである方法が本明細書でさらに提供される。ＤＮＡポリメラーゼが鎖置換（ｓｔｒａｎｄ ｄｉｓｐｌａｃｉｎｇ）ＤＮＡポリメラーゼである方法が本明細書でさらに提供される。核酸ポリメラーゼが、バクテリオファージｐｈｉ２９（Φ２９）ポリメラーゼ、遺伝子改変ｐｈｉ２９（Φ２９）ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノウ断片、ファージＭ２ ＤＮＡポリメラーゼ、ファージｐｈｉＰＲＤ１ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｔ ラージフラグメントＤＮＡポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｓｔポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｃａ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、ＩｓｏＰｏｌ ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩ、Ｔｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ５ ＤＮＡポリメラーゼ、シーケナーゼ（Ｓｅｑｕｅｎａｓｅ）、Ｔ７ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ７−シーケナーゼ、あるいはＴ４ ＤＮＡポリメラーゼである方法が本明細書でさらに提供される。核酸ポリメラーゼは３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を含み、および、少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドは、３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を阻害する方法が本明細書でさらに提供される。核酸ポリメラーゼは３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を含まない方法が本明細書でさらに提供される。ポリメラーゼが、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｓｔポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｃａ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、クレノウ断片（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、あるいはＴｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼである方法が本明細書でさらに提供される。少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドは、デオキシリボースの３’炭素のｒ基の修飾を含む方法が本明細書でさらに提供される。本明細書でさらに提供されるのは、少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドが、可逆的ターミネーターを含有する３’ブロックされたヌクレオチド、可逆的ターミネーターを含有する３’ブロックされてないヌクレオチド、ターミネーターを含有する２’修飾のデオキシリボヌクレオチド、ターミネーターを含有する、窒素塩基への修飾を有するデオキシリボヌクレオチド、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される方法である。本明細書でさらに提供されるのは、少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドが、ジデオキシヌクレオチド、逆ジデオキシヌクレオチド、３’ビオチン化ヌクレオチド、３’アミノヌクレオチド、３’−リン酸化ヌクレオチド、３’−Ｏ−メチルヌクレオチド、３’Ｃ３スペーサーヌクレオチドを含む３’炭素スペーサーヌクレオチド、３’Ｃ１８ヌクレオチド、３’ヘキサンジオールスペーサーヌクレオチド、アシクロヌクレオチド、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される方法である。本明細書でさらに提供されるのは、少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドが、α基修への修飾を伴うヌクレオチド、Ｃ３スペーサーヌクレオチド、ロックド核酸（ＬＮＡ）、逆核酸、２’フルオロヌクレオチド、３’リン酸化ヌクレオチド、２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチド、およびトランス核酸からなる群から選択される方法である。本明細書でさらに提供されるのは、α基修への修飾を伴うヌクレオチドがα−チオジデオキシヌクレオチドである方法である。増幅プライマーが４〜７０のヌクレオチド長さである方法が本明細書でさらに提供される。少なくとも１つの増幅プライマーが４〜２０のヌクレオチド長さである方法が、本明細書でさらに提供される。上記方法は、ＰＣＲを使用する追加の増幅工程をさらに含む方法が、本明細書でさらに提供される。少なくとも１つの増幅プライマーがランダム化された領域を含む方法が、本明細書でさらに提供される。本明細書でさらに提供されるのは、ランダム化された領域が４〜２０のヌクレオチド長さである方法である。本明細書でさらに提供されるのは、ランダム化された領域が８〜１５のヌクレオチド長さである方法である。本明細書でさらに提供されるのは、増幅産物が約５０〜約２０００のヌクレオチド長さである方法である。本明細書でさらに提供されるのは、増幅産物が約２００〜約１０００のヌクレオチド長さである方法である。低頻度の配列変異体（ｌｏｗ ｆｒｅｑｕｅｎｃｙ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｖａｒｉａｎｔｓ）の同定のための方法が本明細書でさらに提供される。本明細書でさらに提供されるのは、低頻度の配列変異体が全配列の≧０．０１％を構成する方法である。本明細書でさらに提供されるのは、低頻度の配列変異体が全配列の≧０．０５％を構成する方法である。本明細書でさらに提供されるのは、低頻度の配列変異体が全配列の≧０．１０％を構成する方法である。
標的核酸分子を配列決定する方法が本明細書で提供され、上記方法は：標的核酸分子、少なくとも１つの増幅プライマー、少なくとも１つの核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物を含むサンプルを接触させる工程であって、ここで、上記ヌクレオチドの混合物は、ポリメラーゼによる核酸複製を停止する少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを含む、工程と、複数の停止増幅産物を生成するために標的核酸分子を増幅する工程であって、ここで、上記複製は鎖置換複製により進行する、工程と；停止増幅産物から少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを除去する工程と；方法で得られた分子をアダプターに連結し、それにより、増幅産物のライブラリを生成する工程と；増幅産物のライブラリを配列決定する工程と、を含む。末端修復およびＡテーリングをさらに含む方法が本明細書でさらに提供される。本明細書でさらに提供されるのは、標的核酸がＤＮＡである方法である。本明細書でさらに提供されるのは、ＤＮＡがｃＤＮＡである方法である。本明細書でさらに提供されるのは、ＤＮＡがゲノムＤＮＡである方法である。本明細書でさらに提供されるのは、少なくとも１つの増幅プライマーが２つ以上のプライマーを含む方法である。本明細書でさらに提供されるのは、少なくとも１つの増幅プライマーがランダムプライマーである方法である。本明細書でさらに提供されるのは、少なくとも１つの増幅プライマーがバーコードを含む方法である。本明細書でさらに提供されるのは、バーコードが細胞バーコードを含む方法である。本明細書でさらに提供されるのは、バーコードがサンプルバーコードを含む方法である。本明細書でさらに提供されるのは、増幅プライマーが固有分子識別子（ＵＭＩ）を含む方法である。本明細書でさらに提供されるのは、最初のプライマーアニーリングの前に標的核酸またはゲノムＤＮＡを変性させる方法をさらに含む方法である。変性がアルカリ性条件下で実施され、その後、中和される方法が本明細書でさらに提供される。本明細書でさらに提供されるのは、サンプル、増幅プライマー、核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物が、マイクロ流体デバイスに含有されている方法である。本明細書でさらに提供されるのは、サンプル、増幅プライマー、核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物が液滴に含有されている方法である。サンプルは、組織サンプル、細胞、生体液サンプル、骨髄サンプル、精液サンプル、生検サンプル、癌サンプル、腫瘍サンプル、細胞溶解サンプル、法医学サンプル、考古学サンプル、古生物学サンプル、感染サンプル、生成物サンプル、植物全体、植物部分、細菌叢サンプル、ウイルス調製物、土壌サンプル、海水サンプル、真水サンプル、家庭用あるいは工業用サンプル、およびそれらの組み合わせならびに分離物から選択される方法が、本明細書でさらに提供される。生体液は、血液、尿、唾液、リンパ液、脳脊髄液（ＣＳＦ）、羊水、胸膜液、心膜液、腹水、および眼房水から選択される方法が、本明細書でさらに提供される。上記方法は、ＰＣＲを使用する追加の増幅工程をさらに含む方法が、本明細書でさらに提供される。
単一細胞を配列決定する方法が本明細書で提供され、上記方法は：上記単一細胞からの細胞溶解物を提供する工程と；細胞溶解物を、少なくとも１つの増幅プライマー、少なくとも１つの核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物と接触させる工程であって、ここで、ヌクレオチドの混合物は、ポリメラーゼによる核酸複製を停止する少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを含む、工程と、複数の停止増幅産物を生成するために標的核酸分子を増幅する工程であって、ここで、上記複製は鎖置換複製により進行する、工程と；停止増幅産物から少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを除去する工程と；上記方法で得られた分子をアダプターに連結し、それにより、増幅産物のライブラリを生成する工程と；増幅産物のライブラリを配列決定する工程と、を含む。細胞溶解にはタンパク質分解が伴う方法が本明細書でさらに提供される。サンプル、少なくとも１つの増幅プライマー、核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物が、マイクロ流体デバイスに含有されている方法が本明細書でさらに提供される。サンプル、少なくとも１つの増幅プライマー、核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物が、液滴に含有されている方法が本明細書でさらに提供される。少なくとも１つの増幅プライマーが固体支持体に結合される方法が本明細書でさらに提供される。固体支持体がビーズである方法が本明細書でさらに提供される。本明細書でさらに提供されるのは、少なくとも１つの増幅プライマーが切断可能なリンカーによって固体支持体に結合される方法である。本明細書でさらに提供されるのは、さらに、少なくとも１つの増幅プライマーがバーコードを含む方法である。増幅前に切断可能なリンカーを切断する工程をさらに含む方法が本明細書でさらに提供される。細胞は、動物細胞、植物細胞、真菌細胞、細菌細胞、および原生動物細胞から選択される方法が本明細書でさらに提供される。動物細胞はヒト細胞である方法が本明細書でさらに提供される。細胞は、着床前胚からの細胞、幹細胞、胎児細胞、腫瘍細胞、疑わしい癌細胞、癌細胞、遺伝子編集手順を受けた細胞、病原体からの細胞、法医学サンプルから得られた細胞、考古学サンプルから得られた細胞、および古生物学サンプルから得られた細胞から選択される方法が本明細書でさらに提供される。着床前胚細胞が割球である方法が本明細書でさらに提供される。割球は、体外受精によって生成された８つの細胞期の胚から得られる方法が本明細書でさらに提供される。胚細胞中の疾患の素因となる生殖系列変異体あるいは体細胞変異体の存在を決定する工程をさらに含む方法が、本明細書でさらに提供される。病原体は、細菌、真菌、あるいは原生動物である方法が本明細書でさらに提供される。病原体から得られる細胞は、患者、細菌叢サンプル、あるいは留置医療機器から採取された流体から得られる方法が、本明細書でさらに提供される。病原体の同一性を決定する工程をさらに含む方法が、本明細書でさらに提供される。処置に対する病原体の耐性の原因となる遺伝子変異体の存在を決定する工程をさらに含む方法が、本明細書でさらに提供される。細胞は、腫瘍細胞、疑わしい癌細胞、あるいは癌細胞である方法が本明細書でさらに提供される。１つ以上の診断変異あるいは予後変異（ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ ｏｒ ｐｒｏｇｎｏｓｔｉｃ ｍｕｔａｔｉｏｎｓ）の存在を決定する工程をさらに含む方法が本明細書でさらに提供される。処置に対する耐性の原因となる生殖系列変異体または体細胞変異体の存在を決定する工程をさらに含む方法が本明細書でさらに提供される。上記細胞は遺伝子編集手順を受けた細胞である方法が、本明細書でさらに提供される。遺伝子編集プロセスによって引き起こされた計画外の突然変異の存在を決定する工程をさらに含む方法が、本明細書でさらに提供される。細胞系統の履歴（ｈｉｓｔｏｒｙ）を決定する工程をさらに含む方法が本明細書でさらに提供される。低頻度の配列変異体の同定のための方法が本明細書でさらに提供される。低頻度の配列変異体が全配列の≧０．０１％を構成する方法が、本明細書でさらに提供される。低頻度の配列変異体が全配列の≧０．０５％を構成する方法が、本明細書でさらに提供される。低頻度の配列変異体が全配列の≧０．１０％を構成する方法が、本明細書でさらに提供される。上記方法は、ＰＣＲを使用する追加の増幅工程をさらに含む方法が、本明細書でさらに提供される。
環境条件の変異原性を決定する方法が本明細書で提供され、上記方法は：環境条件に細胞をさらす工程と；集団から単一細胞を単離する工程と；単一細胞からの細胞溶解物を提供する工程と；細胞溶解物を、少なくとも１つの増幅プライマー、少なくとも１つの核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物と接触させる工程であって、ここで、ヌクレオチドの混合物は、ポリメラーゼによる核酸複製を停止する少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを含む、工程と、複数の停止増幅産物を生成するために標的核酸分子を増幅する工程であって、ここで、上記複製は鎖置換複製により進行する、工程と；停止増幅産物から少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを除去する工程と；上記方法で得られた分子をアダプターに連結し、それにより、増幅産物のライブラリを生成する工程と；増幅産物のライブラリを配列決定する工程と、突然変異を同定するために、増幅産物の配列を少なくとも１つの参照配列と比較する工程と、を含む。単一細胞がヒト細胞である方法が本明細書でさらに提供される。環境条件が化学物質を含む方法が本明細書でさらに提供される。環境条件が放射線を含む方法が本明細書でさらに提供される。環境条件が紫外線を含む方法が本明細書でさらに提供される。単一細胞は、肝臓、皮膚、腎臓、血液、あるいは肺に由来する方法が本明細書でさらに提供される。増幅産物の少なくともいくつかがバーコードを含む方法が明細書でさらに提供される。本明細書でさらに提供されるのは、バーコードが細胞バーコードを含む方法である。本明細書でさらに提供されるのは、バーコードがサンプルバーコードを含む方法である。本明細書でさらに提供されるのは、増幅プライマーの少なくともいくつかが固有分子識別子（ＵＭＩ）を含む方法である。上記方法は、ＰＣＲを使用する追加の増幅工程をさらに含む方法が、本明細書でさらに提供される。
引用による組み込み
本明細書で言及される全ての刊行物、特許、および特許出願は、あたかも個々の刊行物、特許、または特許出願が引用によって組み込まれるよう具体的且つ個別に示されるかのように、同じ程度まで引用により本明細書に組み込まれる。
本発明の新規な特徴は、とりわけ添付の特許請求の範囲で説明される。本発明の特徴および利点のより良い理解は、本発明の原理が用いられる例示的実施形態を説明する以下の詳細な説明と、以下の添付図面とを引用することによって得られるであろう。
前の多置換増幅（ＭＤＡ）法と、一次鋳型指向性増幅（Ｐｒｉｍａｒｙ Ｔｅｍｐｌａｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）（ＰＴＡ）法の実施形態の１つ、すなわちＰＴＡ−不可逆的ターミネーター法との比較を示す。 ＰＴＡ−不可逆的ターミネーター法と、異なる実施形態、すなわちＰＴＡ可逆的ターミネーター法との比較を示す。 突然変異伝播（ｍｕｔａｔｉｏｎ ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ）に関連する場合の、ＭＤＡ法およびＰＴＡ不可逆的ターミネーター法の比較を示す。 増幅後に実施される方法の工程を示し、それは、アダプターライゲーション前のターミネーターの除去、末端修復、およびＡテーリングの実行を含む。その後、プールされた細胞のライブラリは、配列決定の前に、すべてのエクソンあるいは対象の他の特定領域についてハイブリダイゼーション媒介濃縮（ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｅｎｒｉｃｈｍｅｎｔ）を受ける場合がある。各リードの起原の細胞は、細胞バーコード（緑色および青色の配列として示される）によって同定される。 増大する濃度のターミネーター（上のゲル）の添加による、ＰＴＡを受けた後のアンプリコンの粒度分布を示す。下のゲルは、増大する濃度の可逆的ターミネーターの添加、あるいは増加する濃度の不可逆的ターミネーターの添加によるＰＴＡを受けた後のアンプリコンの粒度分布を示す。 ＭＤＡおよびＰＴＡの配列決定された塩基のＧＣ含有量の比較を示す（ＧＣ）。 単一細胞がＰＴＡまたはＭＤＡを受けた後の、ヒトゲノムにマッピングする（ｐ＿ｍａｐｐｅｄ）マップ品質スコア（ｍａｐＱ）を示す。 単一細胞がＰＴＡまたはＭＤＡを受けた後の、ヒトゲノムにマッピングする（ｐ＿ｍａｐｐｅｄ）リードのパーセントを示す。 単一細胞がＭＤＡおよびＰＴＡを受けた後の、２０００万のサブサンプリングされたリードのＰＣＲ複製であるリードのパーセントの比較を示す（ＰＣＲ）。 単一細胞が可逆的あるいは不可逆的ターミネーターを用いたＰＴＡを受けた後の、ヒトゲノムにマッピングする（ｐ＿ｍａｐｐｅｄ２）マップ品質スコア（ｃ）（ｍａｐＱ２）を示す。 単一細胞が可逆的あるいは不可逆的ターミネーターを用いたＰＴＡを受けた後の、ヒトゲノムにマッピングする（ｐ＿ｍａｐｐｅｄ２）リードのパーセントを示す。 様々な方法を使用した、Ａｌｕ要素と重複するリードの平均パーセントについてアライメントしたリードを記載する一連のボックスプロットを示す。ＰＴＡは、ゲノムにアライメントする最も多くのリードを有していた。 様々な方法を使用した、Ａｌｕ要素と重複するリードの平均パーセントについてＰＣＲ重複を記載する一連のボックスプロットを示す。 様々な方法を使用した、Ａｌｕ要素と重複するリードの平均パーセントについてリードのＧＣ含有量を記載する一連のボックスプロットを示す。 様々な方法を使用した、Ａｌｕ要素と重複するリードの平均パーセントのマッピング品質を記載する一連のボックスプロットを示す。ＰＴＡは、試験された方法の中で最も高いマッピング品質を有していた。 固定された７．５Ｘ配列決定深度で、様々なＷＧＡ法でのＳＣミトコンドリアゲノムカバレッジ幅の比較を示す。 各細胞を４０００万のペアリードにダウンサンプリングした後のランダムプライマーのＰＴＡ増幅細胞と比較した、高品質ＭＤＡ細胞（〜５０％細胞を表す）を選択した後の、第１染色体にわたる１０キロベースのウィンドウの平均カバレッジ深度を示す。この図は、ＭＤＡが、平均カバレッジ深度の２倍より高い（ボックスＡ）あるいはより低い（ボックスＣ）ウィンドウが多く、より低い均一性を有することを示す。反復領域（ボックスＢ）のより高いＧＣ含有量およびより低いマッピング品質ゆえに、セントロメアではＭＤＡとＰＴＡの両方においてカバレッジが存在しない。 ＭＤＡおよびＰＴＡの方法の配列決定カバレッジ対ゲノム位置のプロットを示す（上）。より低いボックスプロットは、バルクサンプル（ｂｕｌｋ ｓａｍｐｌｅ）と比較した、ＭＤＡとＰＴＡの方法の対立遺伝子頻度を示す。 ＭＤＡとＰＴＡの実験のカバレッジの均一性についての平均カバレッジ対ゲノムウィンドウのプロットを示す。ＰＴＡは、ＭＤＡよりも、ゲノムにわって非常に均一なカバレッジをもたらした。 様々な方法に対する増大する配列決定深度におけるカバレッジを評価するための、カバーされたゲノムの画分対リードゲノムの数のプロットを示す。ＰＴＡ法は、あらゆる深度で２つのバルクサンプルに近く、試験した他の方法よりも改善されている。 カバレッジの均一性を評価するための、ゲノムカバレッジ対リードの数の変動係数のプロットを示す。ＰＴＡ法は、試験された方法の中で最も高い均一性を有することが分かった。 全リードの累積画分対ゲノムの累積画分のローレンツプロットを示す。ＰＴＡ法は、試験された方法の中で最も高い均一性を有することが分かった。 完全な均一性との各増幅反応の違いを評価するために、試験された方法の各々について計算されたジニ係数（Ｇｉｎｉ Ｉｎｄｉｃｅｓ）の一連のボックスプロットを示す。ＰＴＡ法は、試験された他の方法よりも、再現性が高い均一性であることが分かった。 コールされるバルク変異体（ｂｕｌｋ ｖａｒｉａｎｔｓ）の画分対リードの数のプロットを示す。方法の各々の変異コールレート（ｖａｒｉａｎｔ ｃａｌｌ ｒａｔｅｓ）を、配列決定深度が増大する際の対応するバルクサンプルと比較した。感度を評価するために、各配列決定深度（図３Ａ）で各細胞において見つけられた６億５０００万のリードにサブサンプリングされた、対応するバルクサンプル中でコールされる変異体のパーセントを計算した。ＰＴＡの改善されたカバレッジおよび均一性は、次に最も感度が高い方法であったＱ−ＭＤＡ法よりも、３０％多い変異体の検出を結果としてもたらした。 Ａｌｕ要素と重複するリードの平均パーセントの一連のボックスプロットを示す。ＰＴＡ法は、これらのヘテロ接合部位で対立遺伝子の歪みを有意に減少させた。ＰＴＡ法は、試験された他の方法と比較して、同じ細胞中の２つの対立遺伝子をより平等に増幅する。 変異コールの特異性を評価するための、変異コールの特異性対リードの数のプロットを示す。バルクサンプルでは見つからなかった、様々な方法を使用して見つかった変異体は、偽陽性と見なされた。ＰＴＡ法は、試験された方法の中で最も低い偽陽性コール（最も高い特異性）を結果としてもたらした。 様々な方法に対する各タイプの塩基変化の偽陽性塩基変化の画分を示す。理論によって縛られることなく、そのようなパターンはポリメラーゼ依存性であってもよい。 偽陽性変異コールのＡｌｕ要素と重複するリードの平均パーセントの一連のボックスプロットを示す。ＰＴＡ法は、偽陽性変異コールの最も低い対立遺伝子頻度を結果としてもたらした。 本開示のクロノタイプの薬剤感受性のカタログの概略的な説明を示す。別個のクロノタイプの薬剤感受性を同定することによって、腫瘍学者が患者の腫瘍で同定されたクロノタイプを、抵抗性集団を最も良く標的とする薬剤のリストへと変換することができるカタログを生成することができる。 １００回のシミュレーション後の、１クローン当たりの白血球細胞の数の増加に伴う白血病のクローンの数の変化を示す。細胞ごとの突然変異率を使用して、１つの細胞が１００億〜１，０００億の細胞に増える際に、大量の様々なより小さなクローンが作られることがシミュレーションにより予測される（ボックスＡ）。最も高い頻度１−５クローンのみ（ボックスＣ）が、現在の配列決定方法を用いて検出される。本発明の一実施形態では、現在の方法（ボックスＢ）の検出レベルのすぐ下にある、数百のクローンの薬剤抵抗性を決定する方法が提供される。 本開示の例示的な実施形態を示す。下の列の診断サンプルと比較して、化学療法なしの培養が、活性化ＫＲＡＳ突然変異を抱えるクローン（赤色のボックス、右下隅）のために選択された。反対に、そのクローンはプレドニゾロンあるいはダウノルビシンによって殺されたが（緑色の箱、右上隅）、より低い頻度のクローンは正の選択を受けた（破線のボックス）。 本開示の１つの実施形態、すなわち、特定の薬剤への特定の遺伝子型を有するクローンの相対的感受性を定量化するための実験計画の概観である。 部分Ａは、切断可能なリンカー、固有の細胞バーコード、およびランダムプライマーを用いて結合されたオリゴヌクレオチドを有するビーズを示す。部分Ｂは、同じ液滴中に封入され、その後、細胞を溶解し、プライマーを切断した、単一細胞およびビーズを示す。その後、液滴を、ＰＴＡ増幅混合物（ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｍｉｘ）を含む別の液滴と融合してもよい。部分Ｃは、増幅後に液滴が破壊され、すべての細胞からのアンプリコンがプールされることを示す。その後、本開示によるプロトコルは、アダプターライゲーション前のターミネーターの除去、末端修復、およびＡテーリングのために利用される。その後、プールされた細胞のライブラリは、配列決定前に、対象のエクソンのハイブリダイゼーション媒介濃縮を受ける。その後、各リードの起原の細胞は、細胞バーコードを使用して同定される。 細胞のバーコードおよび／または固有分子識別子を含むプライマーを使用した、細胞のバーコードおよび／または固有分子識別子のＰＴＡの反応への取り込みを実証する。 細胞のバーコードおよび／または固有分子識別子を含むヘアピンプライマーを使用した、細胞のバーコードおよび／または固有分子識別子のＰＴＡの反応への取り込みを実証する。 固有分子識別子（ＵＭＩ）の取り込みがコンセンサスリードの生成を可能にし、配列決定および他のエラーにより引き起こされる偽陽性率を低下させ、生殖系列あるいは体細胞の変異コーリングを実施する際の感受性の増大につながることを示す（ＰＴＡ＿ＵＭＩ）。 同じＵＭＩを有するリードを崩壊させることにより、コピー数変異をコールする際に、増幅、および誤検出あるいは制限された感受性を結果としてもたらす他のバイアスを修正することができることを示す。 環境変異原性実験（ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｍｕｔａｇｅｎｉｃｉｔｙ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ）の直接測定のための突然変異の数対処理群のプロットを示す。単一のヒト細胞を、様々な処理レベルで、ビヒクル（ＶＨＣ）、マンノース（ＭＡＮ）、あるいは、直接突然変異原Ｎ−エチル−Ｎ−ニトロソウレア（ＥＮＵ）に暴露し、突然変異の数を測定した。 突然変異の数対様々な処理群およびレベルの一連のプロットを、塩基突然変異のタイプによってさらに分けて示す。 トリヌクレオチドに関する突然変異のパターン表現を示す。ｙ軸上の塩基はｎ−１位置にあり、ｘ軸上の塩基はｎ＋１位置にある。より暗い領域はより低い突然変異の頻度を示し、より明るい領域はより高い突然変異の頻度を示す。上の列（シトシン突然変異）にある黒一色のボックスは、シトシンがグアニンに続く場合、シトシン突然変異誘発がそれほど頻繁ではないことを示す。下の列（チミン突然変異）にある破線の黒色ボックスは、ほとんどのチミン突然変異が、アデニンがチミンのすぐ前にある位置で生じることを示す。 ＣＤ３４＋細胞における既知のＤＮａｓｅ Ｉの高感受性部位の位置を、Ｎ−エチル−Ｎ−ニトロソウレア処理細胞からの対応する位置と比較したグラフを示す。シトシン変異体の有意な濃縮は観察されなかった。 ＤＮａｓｅ Ｉ高感受性（ＤＨ）部位でのＥＮＵ誘発変異の割合を示す。予めＲｏａｄｍａｐ Ｅｐｉｇｅｎｏｍｉｃｓ Ｐｒｏｊｅｃｔによってカタログ化（ｃａｔａｌｏｇｕｅｄ）されたＣＤ３４＋細胞におけるＤＨ部位を使用して、ＥＮＵ突然変異がオープンクロマチンの部位を表すＤＨ部位においてより頻繁であるかどうかを調査した。ＤＨ部位での変異体の位置の有意な濃縮は同定されず、シトシンに制限された変異体の濃縮はＤＨ部位で観察されなかった。 特定のアノテーションを用いたゲノムの位置でのＥＮＵ誘発変異の割合の一連ボックスプロットを示す。各アノテーションを含むゲノム（右のボックス）の割合と比較して、特定の濃縮は、各細胞中の変異体（左のボックス）の特定のアノテーションにおいて見られなかった。
再現可能な様式で、配列表現、均一性、および正確さを増大させることにより現在の方法の制限を克服する、核酸増幅（単一細胞および多細胞のゲノム増幅を含む）と配列決定のための、新規で、スケーラブルで、正確で、ならびに効率的な方法を開発する必要がある。正確かつスケーラブルな一次鋳型指向性増幅（ＰＴＡ）ならびに配列決定をもたらすための組成物および方法が本明細書で提供される。単一のヌクレオチド変異体の決定、コピー数多型、クロノタイピング（ｃｌｏｎｏｔｙｐｉｎｇ）、および環境変異原性の測定の方法が本明細書でさらに提供される。そのような方法および組成物は、標的（あるいは「鋳型」）核酸の非常に正確な増幅を促進し、次世代シーケンシングなどの下流の適用（ｄｏｗｎｓｔｒｅａｍ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ）の精度と感度を増大させる。
定義
他に定義されない限り、本明細書で使用されるすべての技術的および科学的用語は、これらの発明が属する技術分野の当業者によって一般に理解されるものと同じ意味を有する。
本開示全体にわたって、数値的特徴は範囲形式で示される。範囲形式での記載は単に利便性と簡潔さのためのものに過ぎず、任意の実施形態の範囲に対する確固たる限定として解釈されてはならないということを理解されたい。したがって、範囲の記載は、文脈で別段の定めのない限り、すべての可能性のある下位範囲と、下限の単位の小数第２位までのその範囲内の個々の数値を具体的に開示していると考えられなければならない。例えば、１〜６などの範囲の記載は、１〜３、１〜４、１〜５、２〜４、２〜６、３〜６などの下位範囲と、例えば、１．１、２、２．３、５、および５．９のその範囲内の個々の数値を具体的に開示していると考えられなければならない。これは、範囲の広さにかかわらず適用される。これらの介在する範囲の上限および下限は、より小さな範囲内に独立して含まれてもよく、また、定められた範囲内のあらゆる具体的に除外された限界に従って、本発明内に包含される。定められた範囲が上限および下限の１つまたはその両方を含む場合、これらの含まれた上限および下限のいずれかまたは両方を除く範囲も、文脈が明らかに他に指示しない限り、本発明内に包含される。
本明細書で使用される用語は、特定の実施形態のみを記載するためのものあり、いずれの実施形態を限定することを意図してはいない。本明細書で使用されるように、単数形「ａ」、「ａｎ」、および「ｔｈｅ」は、文脈が他に明白に示していない限り、同様に複数形を含むように意図される。用語「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」および／または「含むこと（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」は、本明細書での使用時に、明示された特徴、整数、工程、操作、要素、および／または構成要素の存在を特定するが、１以上の他の特徴、整数、工程、操作、要素、構成要素、および／またはそれらの群の存在または追加を排除しないことが、さらに理解される。本明細書で使用されるように、用語「および／または」は、関連する列挙された項目の１つ以上のあらゆる組み合わせを含む。
別段の定めのない限り、あるいは文脈から明らかでない限り、本明細書で使用されるように、数あるいは数の範囲に関連して用語「約」とは、明示された数とその数＋／−１０％、あるいはある範囲の列挙された値について列挙された下限の１０％以下と列挙された１０％以上を意味するものと理解されたい。
「被験体」あるいは「患者」または「個体」という用語は、本明細書で使用されるように、例えば、ヒト、獣医学的な動物（ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ ａｎｉｍａｌｓ）（例えば、ネコ、イヌ、雌ウシ、ウマ、ヒツジ、ブタなど）、および疾患の実験動物モデル（例えば、マウス、ラット）などの哺乳動物を含む。本発明においては、従来の分子生物学、微生物学、および組換ＤＮＡ技法を、当業者の技能範囲内で利用することができる。そのような技術は、文献に十分に説明されている。とりわけ、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ， Ｆｒｉｔｓｃｈ ＆ Ｍａｎｉａｔｉｓ， Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ， Ｓｅｃｏｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ （１９８９） Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ （本明細書では“Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．， １９８９”）；ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ， Ｖｏｌｕｍｅｓ Ｉ ａｎｄ ＩＩ （Ｄ．Ｎ． Ｇｌｏｖｅｒ ｅｄ． １９８５）；Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ （ＭＪ． Ｇａｉｔ ｅｄ． １９８４）；Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ （Ｂ．Ｄ． Ｈａｍｅｓ ＆ Ｓ．Ｊ． Ｈｉｇｇｉｎｓ ｅｄｓ． （１９８５≫；Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ａｎｄ Ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎ （Ｂ．Ｄ． Ｈａｍｅｓ ＆ Ｓ．Ｊ． Ｈｉｇｇｉｎｓ， ｅｄｓ． （１９８４≫；Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ （Ｒ．Ｉ． Ｆｒｅｓｈｎｅｙ， ｅｄ． （１９８６≫；Ｉｍｍｏｂｉｌｉｚｅｄ Ｃｅｌｌｓ ａｎｄ Ｅｎｚｙｍｅｓ （ｌＲＬ Ｐｒｅｓｓ， （１９８６≫；Ｂ． Ｐｅｒｂａｌ， Ａ ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ｇｕｉｄｅ Ｔｏ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ （１９８４）；Ｆ．Ｍ． Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ． （ｅｄｓ．）， Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ， Ｉｎｃ． （１９９４）；を参照。
用語「核酸」は、一本鎖分子ならびに多鎖分子を包含する。二本鎖または三本鎖の核酸では、核酸鎖は同一の広がりをもつ必要がない（つまり、二本鎖または三本鎖の核酸は、両方の鎖の全長にわたって二本鎖である必要がない）。本明細書に記載される核酸鋳型は、サンプルに応じて任意のサイズ（小さな無細胞ＤＮＡ断片から全ゲノムまで）であってもよく、限定されないが、５０〜３００の塩基、１００〜２０００の塩基、１００〜７５０の塩基、１７０〜５００の塩基、１００〜５０００の塩基、５０〜１０，０００の塩基、あるいは５０〜２０００の塩基長さを含む。いくつかの例では、鋳型は、少なくとも５０、１００、２００、５００、１０００、２０００、５０００、１０，０００、２０，０００ ５０，０００、１００，０００、２００，０００、５００，０００、１，０００，０００であるか、あるいは１，０００，０００を超える塩基長さである。本明細書に記載される方法は、核酸鋳型などの核酸の増幅を提供する。本明細書にさらに記載される方法は、単離され、かつ少なくとも部分的に精製された核酸および核酸のライブラリの生成を提供する。核酸としては、限定されないが、ＤＮＡ、ＲＮＡ、環状ＲＮＡ、ｃｆＤＮＡ（無細胞ＤＮＡ）、ｃｆＲＮＡ（無細胞ＲＮＡ）、ｓｉＲＮＡ（低分子干渉ＲＮＡ）、ｃｆｆＤＮＡ（細胞フリー胎児ＤＮＡ）、ｍＲＮＡ、ｔＲＮＡ、ｒＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ（ｍｉｃｒｏＲＮＡ）、合成ポリヌクレオチド、ポリヌクレオチドアナログ、本明細書と一致する範囲で任意の他の核酸、あるいはそれらの任意の組み合わせを含むものが挙げられる。ポリヌクレオチドの長さは、提供される場合、塩基の数として記載され、ｎｔ（ヌクレオチド）、ｂｐ（塩基）、ｋｂ（キロベース）、あるいはＧｂ（ｇｉｇａｂａｓｅｓ）などに省略される。
用語「液滴」は、本明細書で使用されるように、液滴アクチュエータ上の液体の体積（ｖｏｌｕｍｅ）を指す。例えば、いくつかの例では、液滴は水性または非水性であるか、もしくは、水性および非水性の成分を含む混合物あるいはエマルジョンであってもよい。液滴操作を受け得る液滴流体の非限定的な例については、例えば、国際特許出願公開公報ＷＯ２００７／１２０２４１を参照されたい。液滴を形成および操作するための任意の適切なシステムが、本明細書に提示される実施形態において使用されてもよい。例えば、いくつかの例では、液滴アクチュエータが使用される。使用可能な液滴アクチュエータの非限定的な例については、例えば、米国特許第６，９１１，１３２号、第６，９７７，０３３号、第６，７７３，５６６号、第６，５６５，７２７号、第７，１６３，６１２号、第７，０５２，２４４号、第７，３２８，９７９号、第７，５４７，３８０号、第７，６４１，７７９号、米国特許出願公開ＵＳ２００６０１９４３３１、ＵＳ２００３０２０５６３２、ＵＳ２００６０１６４４９０、ＵＳ２００７００２３２９２、ＵＳ２００６００３９８２３、ＵＳ２００８０１２４２５２、ＵＳ２００９０２８３４０７、ＵＳ２００９０１９２０４４、ＵＳ２００５０１７９７４６、ＵＳ２００９０３２１２６２、ＵＳ２０１０００９６２６６、ＵＳ２０１１００４８９５１、国際特許出願公開第ＷＯ２００７／１２０２４１を参照されたい。いくつかの例では、ビーズは、液滴中で、液滴操作ギャップ中で、あるいは液滴操作面上でもたらされる。いくつかの例では、ビーズは、液滴操作ギャップの外部にあるか、あるいは液滴操作面から離れて置かれるリザーバー内で提供され、上記リザーバーは、ビーズを含む液滴が液滴操作ギャップ内にもたらされるか、あるいは、液滴操作面と接触することを可能にする流路と関連する。磁気応答性ビーズおよび／または非磁気応答性ビーズを固定するための、および／またはビーズを使用して液滴操作プロトコルを実施するための液滴アクチュエータ技術の非限定的な例は、米国特許出願公開ＵＳ２００８００５３２０５、国際出願公開ＷＯ２００８／０９８２３６、ＷＯ２００８／１３４１５３、ＷＯ２００８／１１６２２１、ＷＯ２００７／１２０２４１に記載されている。ビーズ特性は、本明細書に記載される方法の多重化の実施形態において使用され得る。多重化に適している特性を有するビーズ、ならびに、そのようなビーズから発せられたシグナルを検出および分析する方法の例は、米国特許出願公開ＵＳ２００８０３０５４８１、ＵＳ２００８０１５１２４０、ＵＳ２００７０２０７５１３、ＵＳ２００７００６４９９０、ＵＳ２００６０１５９９６２、ＵＳ２００５０２７７１９７、ＵＳ２００５０１１８５７４で見ることができる。
本明細書で使用されるように、用語「固有分子識別子（ＵＭＩ）」は、複数の核酸分子の各々に結合される固有の核酸配列を指す。核酸分子に組み込まれると、ＵＭＩは、いくつかの例では、増幅後に配列決定されるＵＭＩを直接計数することによって後の増幅バイアスを修正するために使用される。ＵＭＩの設計、組み込み、および適用は、例えば、国際出願公開ＷＯ２０１２／１４２２１３、Ｉｓｌａｍ ｅｔ ａｌ． Ｎａｔ． Ｍｅｔｈｏｄｓ （２０１４） １１：１６３−１６６， ａｎｄ Ｋｉｖｉｏｊａ， Ｔ． ｅｔ ａｌ． Ｎａｔ． Ｍｅｔｈｏｄｓ （２０１２） ９： ７２−７４において記載される。
本明細書で使用されるように、用語「バーコード」は、核酸材料のサンプルまたはソースを同定するために使用することができる、核酸タグを指す。したがって、核酸サンプルが複数のソースに由来する場合、各核酸サンプル中の核酸は、場合によっては、サンプルのソースを同定することができるように異なる核酸タグでタグ付けされる。指標、タグなどとも一般的に呼ばれるバーコードは、当業者に公知である。任意の適切なバーコードあるいはバーコードのセットが使用され得る。例えば、米国特許第８，０５３，１９２号、国際出願公開ＷＯ２００５／０６８６５６において提供される非限定的な例を参照されたい。単一細胞のバーコーディングは、例えば、米国特許出願２０１３／０２７４１１７において記載される通りに実施されてもよい。
用語「固体表面」、「固体支持体」、ならびに本明細書における他の文法的等価物は、本明細書に記載されるプライマー、バーコード、および配列の取り付けに適切であるか、あるいは、それらの取り付けに適切になるよう修飾され得る任意の材料を指す。例示的な基質としては、限定されないが、ガラスおよび改良ガラスあるいは機能化ガラス、プラスチック（アクリル樹脂、スチレンおよび他の材料のポリスチレンおよびコポリマー、ポリプロピレン、ポリエチレン、ポリブチレン、ポリウレタン、Ｔｅｆｌｏｎ（商標）などを含む）、多糖類、ナイロン、ニトロセルロース、セラミックス、樹脂剤、シリカ、シリカベースの材料（例えば、シリコンあるいは変性シリコン）、炭素、金属、無機ガラス、プラスチック、光ファイバー束、ならびに様々な他のポリマーなどが挙げられる。いくつかの実施形態において、固体支持体は、規則正しいパターンで、プライマー、バーコード、および配列を固定するのに適したパターン化表面を含む。
本明細書で使用されるように、用語「生体サンプル」としては、限定されないが、組織、細胞、体液、およびそれらの分離物（ｉｓｏｌａｔｅｓ）が挙げられる。本明細書に記載される方法において使用される細胞あるいは他のサンプルは、場合によっては、ヒト患者、動物、植物、土壌、あるいは、微生物、例えば、細菌、菌類、原生動物などを含む他のサンプルから単離される。いくつかの例では、生体サンプルはヒト由来である。いくつかの例では、生体はヒト以外に由来する。細胞は、いくつかの例では、本明細書に記載されるＰＴＡ法および配列決定を受ける。ゲノム全体にわたって、あるいは特定の位置で検出された変異体は、その被験体から単離された他のすべての細胞と比較して、研究または診断目的のために細胞系統の履歴を追跡することができる。
一次鋳型指向性増幅
「一次鋳型指向性増幅（ＰＴＡ）」などの核酸増幅方法が本明細書に記載されている。例えば、本明細書に記載されるＰＴＡ法は、図１Ａ−１Ｄに概略的に表される。ＰＴＡ法では、アンプリコンは、ポリメラーゼ（例えば、鎖置換ポリメラーゼ）を使用して、一次鋳型（「直接コピー」）から優先的に生成される。結果的に、エラーは、ＭＤＡと比較して、後の増幅中にドーターアンプリコン（ｄａｕｇｈｔｅｒ ａｍｐｌｉｃｏｎｓ）からより低い速度で伝播される。その結果、既存のＷＧＡプロトコルとは異なり、正確かつ再現可能な様式で、高いカバレッジ幅および均一性で、単一細胞のゲノムを含む低いＤＮＡ入力を増幅することが可能な、容易に実行される方法が得られる。さらに、停止増幅産物は、ターミネーターの除去後に方向ライゲーションを受ける場合があり、これにより、並列増幅反応を受けた後、すべての細胞からの産物がプールされ得るように、増幅プライマーに細胞バーコードを取り付けることができる（図１Ｂ）。
増幅のために鎖置換活性を有する核酸ポリメラーゼを使用する方法が本明細書に記載されている。いくつかの例では、そのようなポリメラーゼは、鎖置換活性および低いエラー率を含む。いくつかの例では、そのようなポリメラーゼは、鎖置換活性および校正エキソヌクレアーゼ活性、例えば、３’−＞５’校正活性を含む。いくつかの例では、核酸ポリメラーゼは、他の成分、例えば、可逆的あるいは不可逆的ターミネーター、または追加の鎖置換因子（ｓｔｒａｎｄ ｄｉｓｐｌａｃｅｍｅｎｔ ｆａｃｔｏｒｓ）と共に使用される。いくつかの例では、ポリメラーゼは鎖置換活性を有しているが、エキソヌクレアーゼ校正活性は有していない。例えば、いくつかの例では、そのようなポリメラーゼは、バクテリオファージｐｈｉ２９（Φ２９）ポリメラーゼを含み、それは、３’−＞５’校正エキソヌクレアーゼ活性の結果である非常に低いエラー率を有している（例えば、米国特許第５，１９８，５４３号および第５，００１，０５０号を参照）。いくつかの例では、鎖置換核酸ポリメラーゼの非限定的な例は、例えば、遺伝子改変されたｐｈｉ２９（Φ２９）ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノウ断片（Ｊａｃｏｂｓｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ． Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ４５：６２３−６２７ （１９７４））、ファージＭ２ ＤＮＡポリメラーゼ （Ｍａｔｓｕｍｏｔｏ ｅｔ ａｌ．， Ｇｅｎｅ ８４：２４７ （１９８９））、ファージｐｈｉＰＲＤ１ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｊｕｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ８４：８２８７ （１９８７）； Ｚｈｕ ａｎｄ Ｉｔｏ， Ｂｉｏｃｈｉｍ． Ｂｉｏｐｈｙｓ． Ａｃｔａ． １２１９：２６７−２７６ （１９９４））、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ（例えば、ＢｓｔラージフラグメントＤＮＡポリメラーゼ（Ｅｘｏ（−） Ｂｓｔ；Ａｌｉｏｔｔａ ｅｔ ａｌ．， Ｇｅｎｅｔ． Ａｎａｌ．（Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ） １２：１８５−１９５ （１９９６））、ｅｘｏ（−）Ｂｃａ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｗａｌｋｅｒ ａｎｄ Ｌｉｎｎ， Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ４２：１６０４−１６０８ （１９９６））、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼを含むＶｅｎｔＲ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｋｏｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２６８：１９６５−１９７５ （１９９３））、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼを含むＤｅｅｐ Ｖｅｎｔ ＤＮＡポリメラーゼ、ＩｓｏＰｏｌ ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩ、Ｔｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ５ ＤＮＡポリメラーゼ （Ｃｈａｔｔｅｒｊｅｅ ｅｔ ａｌ．， Ｇｅｎｅ ９７：１３−１９ （１９９１））、シーケナーゼ（Ｕ．Ｓ． Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ）、Ｔ７ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ７−シーケナーゼ、Ｔ７ ｇｐ５ ＤＮＡポリメラーゼ、ＰＲＤＩ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ４ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｋａｂｏｏｒｄ ａｎｄ Ｂｅｎｋｏｖｉｃ， Ｃｕｒｒ． Ｂｉｏｌ． ５：１４９−１５７ （１９９５））を含む。さらなる鎖置換核酸ポリメラーゼは、本明細書に記載される方法と適合性がある。所与のポリメラーゼが鎖置換複製を実行する能力は、例えば、鎖置換複製アッセイ（例えば、米国特許第６，９７７，１４８号に開示されるような）におけるポリメラーゼを使用することにより、決定することができる。例えば、そのようなアッセイは、いくつかの例において、使用される酵素の最適な活性に適した温度で実施され、例えば、ｐｈｉ２９ ＤＮＡポリメラーゼの場合は３２°Ｃ、ｅｘｏ（−）Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼの場合は４６°Ｃ〜６４°Ｃ、あるいは、超好熱性生物からの酵素の場合は約６０°Ｃ〜７０°Ｃで実施される。ポリメラーゼを選択するための別の有用なアッセイは、Ｋｏｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２６８：１９６５−１９７５ （１９９３）に記載されるプライマーブロックアッセイ（ｐｒｉｍｅｒ−ｂｌｏｃｋ ａｓｓａｙ）である。上記アッセイは、伸長プライマーの上流にハイブリダイズしてその進行をブロックするオリゴヌクレオチドの存在下または非存在下で、Ｍ１３一本鎖ＤＮＡ鋳型を使用するプライマー伸長アッセイからなる。このアッセイ中のブロッキングプライマーを置換することができる他の酵素は、場合によっては、本開示される方法に有用である。いくつかの例では、ポリメラーゼは、ほぼ等しい速度でｄＮＴＰおよびターミネーターを組み込む。いくつかの例では、本明細書に記載されるポリメラーゼについてのｄＮＴＰおよびターミネーターの取り込みの速度の比は、約１：１、約１．５：１、約２：１、約３：１、約４：１、約５：１、約１０：１、約２０：１、約５０：１、約１００：１、約２００：１、約５００：１、あるいは約１０００：１である。いくつかの例では、本明細書に記載されるポリメラーゼについてのｄＮＴＰおよびターミネーターの取り込みの速度の比は、１：１〜１０００：１、２：１〜５００：１、５：１〜１００：１、１０：１〜１０００：１、１００：１〜１０００：１、５００：１〜２０００：１、５０：１〜１５００：１、あるいは２５：１〜１０００：１である。
増幅の方法が本明細書に記載され、ここで、鎖置換因子、例えば、ヘリカーゼなどの使用を通じて、鎖置換を促進することができる。そのような因子は、いくつかの例では、ポリメラーゼ、ターミネーター、あるいは他の成分などの追加の増幅成分と共に使用されてもよい。いくつかの例では、鎖置換因子は、鎖置換活性を有していないポリメラーゼと共に使用される。いくつかの例では、鎖置換因子は、鎖置換活性を有しているポリメラーゼと共に使用される。理論によって縛られることなく、鎖置換因子は、より小さな二本鎖のアンプリコンが再刺激される率を増加することができる。いくつかの例では、鎖置換因子の存在下において鎖置換複製を実施することができる任意のＤＮＡポリメラーゼは、たとえＤＮＡポリメラーゼがそのような要因の不在下では鎖置換複製を実施しない場合でも、ＰＴＡ法での使用に適している。鎖置換複製に有用な鎖置換因子は、いくつかの例において、（限定されないが）ＢＭＲＦ１ポリメラーゼアクセサリーサブユニット（Ｔｓｕｒｕｍｉ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ６７（１２）：７６４８−７６５３ （１９９３））， アデノウイルスＤＮＡ結合タンパク質 （Ｚｉｊｄｅｒｖｅｌｄ ａｎｄ ｖａｎ ｄｅｒ Ｖｌｉｅｔ， Ｊ． Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ６８（２）： １１５８−１１６４ （１９９４））、単純ヘルペスウイルスタンパク質ＩＣＰ８（Ｂｏｅｈｍｅｒ ａｎｄ Ｌｅｈｍａｎ， Ｊ． Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ６７（２）：７１１−７１５ （１９９３）；Ｓｋａｌｉｔｅｒ ａｎｄ Ｌｅｈｍａｎ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ９１（２２）：１０６６５−１０６６９ （１９９４））；一本鎖ＤＮＡ結合タンパク質（ＳＳＢ； Ｒｉｇｌｅｒ ａｎｄ Ｒｏｍａｎｏ， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２７０：８９１０−８９１９ （１９９５））；Ｔ４ファージ遺伝子３２タンパク質 （Ｖｉｌｌｅｍａｉｎ ａｎｄ Ｇｉｅｄｒｏｃ， Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３５：１４３９５−１４４０４ （１９９６）；Ｔ７ヘリカーゼプライマーゼ；Ｔ７ ｇｐ２．５ ＳＳＢタンパク質；Ｔｔｅ−ＵｖｒＤ（Ｔｈｅｒｍｏａｎａｅｒｏｂａｃｔｅｒ ｔｅｎｇｃｏｎｇｅｎｓｉｓ）、子ウシ胸腺ヘリカーゼ（Ｓｉｅｇｅｌ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２６７：１３６２９−１３６３５ （１９９２））；細菌ＳＳＢ（例えば、大腸菌ＳＳＢ）、真核生物における複製タンパク質Ａ（ＲＰＡ）、ヒトミトコンドリアＳＳＢ（ｍｔＳＳＢ）、およびレコンビナーゼ（例えば、レコンビナーゼＡ（ＲｅｃＡ）ファミリータンパク質、Ｔ４ ＵｖｓＸ、ファージＨＫ６２０のＳａｋ４、Ｒａｄ５１、Ｄｍｃ１、あるいはＲａｄｂ）を含む。さらに、鎖置換およびプライミングを促進する因子の組み合わせも、本明細書に記載される方法と一致している。例えば、ヘリカーゼはポリメラーゼと共に使用される。いくつかの例では、ＰＴＡ法は、一本鎖ＤＮＡ結合タンパク質（ＳＳＢ、Ｔ４ ｇｐ３２、あるいは他の一本鎖ＤＮＡ結合タンパク質）、ヘリカーゼ、およびポリメラーゼ（例えば、ＳａｕＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕポリメラーゼ、Ｂｓｔ２．０、ＧｓｐＭ、ＧｓｐＭ２．０、ＧｓｐＳＳＤ、あるいは他の適切なポリメラーゼ）の使用を含む。いくつかの例では、逆転写酵素は、本明細書に記載される鎖置換因子と共に使用される。
ターミネーターヌクレオチド、ポリメラーゼ、および追加の因子あるいは条件の使用を含む増幅方法が本明細書に記載されている。例えば、そのような因子は、増幅中に核酸鋳型あるいはアンプリコンを断片化するために、いくつかの例において使用される。いくつかの例では、そのような因子はエンドヌクレアーゼを含む。いくつかの例では、因子はトランスポゼースを含む。いくつかの例では、機械的剪断（ｍｅｃｈａｎｉｃａｌ ｓｈｅａｒｉｎｇ）が、増幅中に核酸を断片化するために使用される。いくつかの例では、さらなるタンパク質あるいは条件の追加により断片化され得るヌクレオチドが増幅中に加えられる。例えば、ウラシルはアンプリコンに取り込まれており；ウラシル含有位置でのウラシルＤグリコシラーゼ断片核酸による処理。選択的な核酸切断のためのさらなるシステム、例えば、改変されたシトシン−ピレン塩基対を切断する操作されたＤＮＡグリコシラーゼも、いくつかの例でさらに使用される（Ｋｗｏｎ， ｅｔ ａｌ． Ｃｈｅｍ Ｂｉｏｌ． ２００３， １０（４）， ３５１）。
核酸複製を停止し、したがって、増幅産物のサイズを減少させる、ターミネーターヌクレオチドの使用を含む増幅方法が本明細書に記載される。そのようなターミネーターは、いくつかの例では、ポリメラーゼ、鎖置換因子、あるいは本明細書に記載される他の増幅成分と共に使用される。いくつかの例では、ターミネーターヌクレオチドは、核酸複製の効率を低減させる。いくつかの例では、そのようなターミネーターは、伸長率を少なくとも９９．９％、９９％、９８％、９５％、９０％、８５％、８０％、７５％、７０％、あるいは少なくとも６５％減少させる。いくつかの例では、そのようなターミネーターは、伸長率を５０％−９０％、６０％−８０％、６５％−９０％、７０％−８５％、６０％−９０％、７０％−９９％、８０％−９９％、あるいは５０％−８０％減少させる。いくつかの例では、ターミネーターは、平均アンプリコン産物の長さを少なくとも９９．９％、９９％、９８％、９５％、９０％、８５％、８０％、７５％、７０％、あるいは少なくとも６５％減少させる。いくつかの例では、ターミネーターは、平均アンプリコンの長さを５０％−９０％、６０％−８０％、６５％−９０％、７０％−８５％、６０％−９０％、７０％−９９％、８０％−９９％、あるいは５０％−８０％を減少させる。いくつかの例では、ターミネーターヌクレオチドを含むアンプリコンは、ループあるいはヘアピンを形成し、そのようなアンプリコンを鋳型として使用するポリメラーゼの能力を低下させる。いくつかの例では、ターミネーターの使用は、ターミネーターヌクレオチド（例えば、ＤＮＡ伸長を停止するために、エキソヌクレアーゼ耐性になるよう修飾されるジデオキシヌクレオチド）の取り込みによって、初期の増幅部位での増幅の速度を遅くし、より小さな増幅産物を結果としてもたらす。現在用いられている方法より小さな増幅産物（例えば、ＰＴＡ法の場合の５０−２０００のヌクレオチド長さの平均長と比較して、ＭＤＡ法の場合の＞１０，０００のヌクレオチドの平均産物長さ）を産生することによって、いくつかの例では、ＰＴＡの増幅産物は、切断の必要なくアダプターの直接ライゲーションを受け、細胞バーコードおよび固有分子識別子（ＵＭＩ）の効率的な取り込みを可能にする（図１Ｄ、２Ｂ−３Ｅ、９、１０Ａ、および１０Ｂを参照）。
ターミネーターヌクレオチドは、要因、例えば、ポリメラーゼ、鋳型、あるいは他の要因などに応じて様々な濃度で存在する。例えば、いくつかの例では、ターミネーターヌクレオチドの量は、非ターミネーターヌクレオチド対本明細書に記載される方法のターミネーターヌクレオチドの比率として発現される。いくつかの例では、そのような濃度は、アンプリコン長さの制御を可能にする。いくつかの例では、ターミネーターヌクレオチド対非ターミネーターの比は、約２：１、５：１、７：１、１０：１、２０：１、５０：１、１００：１、２００：１、５００：１、１０００：１、２０００：１、あるいは５０００：１である。いくつかの例では、ターミネーターヌクレオチド対非ターミネーターの比は、２：１〜１０：１、５：１〜２０：１、１０：１〜１００：１、２０：１〜２００：１、５０：１〜１０００：１、５０：１〜５００：１、７５：１〜１５０：１、あるいは１００：１〜５００：１である。いくつかの例では、本明細書に記載される方法を使用した増幅中に存在するヌクレオチドの少なくとも１つは、ターミネーターヌクレオチドである。各ターミネーターは、ほぼ同じ濃度で存在する必要はなく；いくつかの例では、本明細書に記載される方法において存在する各ターミネーターの比は、反応条件、サンプルタイプ、あるいはポリメラーゼの特定のセットのために最適化される。理論によって縛られることなく、各ターミネーターは、鋳型鎖上の対応するヌクレオチドと対になることに応答して、アンプリコンの伸長中のポリヌクレオチド鎖への取り込みについて異なる効率を有することがある。例えば、いくつかの例では、シトシンと対になるターミネーターは、平均ターミネーター濃度より約３％、５％、１０％、１５％、２０％、２５％、あるいは５０％高い濃度で存在する。いくつかの例では、チミンと対になるターミネーターは、平均ターミネーター濃度より約３％、５％、１０％、１５％、２０％、２５％、あるいは５０％高い濃度で存在する。いくつかの例では、グアニンと対になるターミネーターは、平均ターミネーター濃度より約３％、５％、１０％、１５％、２０％、２５％、あるいは５０％高い濃度で存在する。いくつかの例では、アデニンと対になるターミネーターは、平均ターミネーター濃度より約３％、５％、１０％、１５％、２０％、２５％、あるいは５０％高い濃度で存在する。いくつかの例では、ウラシルと対になるターミネーターは、平均ターミネーター濃度より約３％、５％、１０％、１５％、２０％、２５％、あるいは５０％高い濃度で存在する。いくつかの例で、核酸ポリメラーゼによる核酸伸長を停止することができる任意のヌクレオチドは、本明細書に記載される方法においてターミネーターヌクレオチドとして使用される。いくつかの例では、可逆的ターミネーターが核酸複製を停止するために使用される。いくつかの例では、非可逆的ターミネーター（ｎｏｎ−ｒｅｖｅｒｓｉｂｌｅ ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ）が核酸複製を停止するために使用される。いくつかの例では、ターミネーターの非制限の例は、可逆的および非逆的核酸ならびに可逆的および非逆的核酸アナログ、例えば、可逆的ターミネーターを含む３’ブロックされたヌクレオチド、可逆的ターミネーターを含む３’ブロックされてないヌクレオチド、ターミネーターを含む２’修飾のデオキシリボヌクレオチド、ターミネーターを含む、窒素塩基への修飾を有するデオキシリボヌクレオチド、あるいはそれらの任意の組み合わせなどを含む。一実施形態では、ターミネーターヌクレオチドはジデオキシヌクレオチドである。核酸複製を停止し、本発明を実施するのに適切であり得る他のヌクレオチド修飾は、限定されることなく、デオキシリボースの３’炭素のｒ基のあらゆる修飾、例えば、逆ジデオキシヌクレオチド、３’ビオチン化ヌクレオチド、３’アミノヌクレオチド、３’リン酸化ヌクレオチド、３’−Ｏ−メチルヌクレオチド、３’Ｃ３スペーサーヌクレオチドを含む３’炭素スペーサーヌクレオチド、３’Ｃ１８ヌクレオチド、３’ヘキサンジオールスペーサーヌクレオチド、アシクロヌクレオチド、およびそれらの組み合わせを含む。いくつかの例では、ターミネーターは、１、２、３、あるいは４以上の塩基長さを含むポリヌクレオチドである。いくつかの例では、ターミネーターは、検出可能な部分またはタグ（例えば、多量タグ、蛍光性のタグ、色素、放射性原子、あるいは他の検知可能な部分）を含まない。いくつかの例では、ターミネーターは、検知可能な部分またはタグの取り付けを可能にする化学的部分（例えば、「クリック」アジド／アルキン、結合付加パートナー、あるいはタグの取り付けのための他の化学的ハンドル（ｃｈｅｍｉｃａｌ ｈａｎｄｌｅ））を含まない。いくつかの例では、すべてのターミネーターヌクレオチドは、ヌクレオチドの領域（例えば、糖部、塩基部分、あるいはリン酸部分）で、増幅を減少させる同じ修飾を含む。いくつかの例では、少なくとも１つのターミネーターは、増幅を減少させる異なる修飾を有している。いくつかの例では、すべてのターミネーターは、実質的に同様の蛍光励起あるいは発光波長を有する。いくつかの例では、リン酸基への修飾のないターミネーターは、エキソヌクレアーゼ校正活性を有しないポリメラーゼと共に使用される。ターミネーターは、ターミネーターヌクレオチドを除去することができる３’−＞５’校正エキソヌクレアーゼ活性（例えば、ｐｈｉ２９など）を有するポリメラーゼと共に使用される場合、いくつかの例では、それらをエキソヌクレアーゼ耐性なるようにさらに修飾される。例えば、ジデオキシヌクレオチドは、これらのヌクレオチドを核酸ポリメラーゼの３’−＞５’校正エキソヌクレアーゼ活性に対して耐性にする、ホスホロチオエート結合を作成するαチオ基で修飾される。いくつかの例では、そのような修飾は、ポリメラーゼのエキソヌクレアーゼ校正活性を少なくとも９９．５％、９９％、９８％、９５％、９０％、あるいは少なくとも８５％減少させる。３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性に対する耐性をもたらす他のターミネーターヌクレオチド修飾の非限定的な例は、いくつかの例では、α基への修飾を伴うヌクレオチド、例えば、ホスホロチオエート結合を作成するα−チオジデオキシヌクレオチド、Ｃ３スペーサーヌクレオチド、ロックド核酸（ＬＮＡ）、逆核酸、２’フルオロ塩基、３’リン酸化、２’−Ｏ−メチル修飾（あるいは、他の２’−Ｏ−アルキル修飾）、プロピン修飾塩基（例えば、デオキシシトシン、デオキシウリジン）、Ｌ−ＤＮＡヌクレオチド、Ｌ−ＲＮＡヌクレオチド、逆結合を有するヌクレオチド（ｉｎｖｅｒｔｅｄ ｌｉｎｋａｇｅｓ）（例えば、５’−５’あるいは３’−３’）、５’逆塩基（例えば、５’逆２’，３’−ジデオキシｄＴ）、メチルホスホナート骨格、およびトランス核酸を含む。いくつかの例では、修飾を伴うヌクレオチドは、遊離３’ＯＨ基（例えば、２−ニトロベンジルアルキル化ＨＯＭｅｄＵ三リン酸、固体支持体あるいは他の大きな部分などの大きな化学基での修飾を含む塩基）を含む、塩基修飾核酸を含む。いくつかの例では、鎖置換活性を有するが、３’−＞５’エキソヌクレアーゼ校正活性を有しないポリメラーゼは、エキソヌクレアーゼ耐性にする修飾を伴うか、あるいは伴わない、ターミネーターヌクレオチドと共に使用される。そのような核酸ポリメラーゼは、限定されることなく、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、クレノウ断片（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼ、およびＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）を含む。
プライマーおよびアンプリコンライブラリ
少なくとも１つの標的核酸分子の増幅に起因するアンプリコンライブラリが本明細書に記載されている。そのようなライブラリは、いくつかの例では、本明細書に記載される方法、例えば、ターミネーターを使用するものなどを使用して生成される。そのような方法は、因子の鎖置換ポリメラーゼ、ターミネーターヌクレオチド（可逆的あるいは不可逆的）、または本明細書に記載される他の特徴および実施形態の使用を含む。いくつかの例では、本明細書に記載されるターミネーターの使用によって生成されたアンプリコンライブラリは、後の増幅反応（例えば、ＰＣＲ）でさらに増幅される。いくつかの例では、後の増幅反応はターミネーターを含まない。いくつかの例では、アンプリコンライブラリはポリヌクレオチドを含み、ここで、ポリヌクレオチドの少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、あるいは少なくとも９８％は、少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを含む。いくつかの例では、アンプリコンライブラリは、アンプリコンライブラリが由来する標的核酸分子を含む。アンプリコンライブラリは、複数のポリヌクレオチドを含み、ここで、ポリヌクレオチドの少なくともいくつかは、直接コピーである（例えば、標的核酸分子、例えば、ゲノムＤＮＡ、ＲＮＡ、あるいは他の標的核酸から直接複製された）。例えば、アンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、あるいは９５％よりも多くは、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである。いくつかの例では、アンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも５％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである。いくつかの例では、アンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも１０％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである。いくつかの例では、アンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも１５％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである。いくつかの例では、アンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも２０％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである。いくつかの例では、アンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも５０％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである。いくつかの例では、アンプリコンポリヌクレオチドの３％〜５％、３〜１０％、５％〜１０％、１０％〜２０％、２０％〜３０％、３０％〜４０％、５％〜３０％、１０％〜５０％、あるいは１５％〜７５％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである。いくつかの例では、ポリヌクレオチドの少なくともいくつかは、標的核酸分子の直接コピー、あるいは娘（標的核酸の第一のコピー）子孫である。例えば、アンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、あるいは９５％より多くは、少なくとも１つの標的核酸分子あるいは娘子孫の直接コピーである。いくつかの例では、アンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも５％は、少なくとも１つの標的核酸分子あるいは娘子孫の直接コピーである。いくつかの例では、アンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも１０％は、少なくとも１つの標的核酸分子あるいは娘子孫の直接コピーである。いくつかの例では、アンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも２０％は、少なくとも１つの標的核酸分子あるいは娘子孫の直接コピーである。いくつかの例では、アンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも３０％は、少なくとも１つの標的核酸分子あるいは娘子孫の直接コピーである。いくつかの例では、アンプリコンポリヌクレオチドの３％〜５％、３％〜１０％、５％〜１０％、１０％〜２０％、２０％〜３０％、３０％〜４０％、５％〜３０％、１０％〜５０％、あるいは１５％〜７５％は、少なくとも１つの標的核酸分子あるいは娘子孫の直接コピーである。いくつかの例では、標的核酸の直接コピーは、５０〜２５００、７５〜２０００、５０〜２０００、２５〜１０００、５０〜１０００、５００〜２０００、あるいは５０〜２０００の塩基長さである。いくつかの例では、娘子孫は、１０００〜５０００、２０００〜５０００、１０００〜１０，０００、２０００〜５０００、１５００〜５０００、３０００〜７０００、あるいは２０００〜７０００の塩基長さである。いくつかの例では、ＰＴＡ増幅産物の平均長は、５０〜２５００、７５〜２０００、５０〜２０００、２５〜１０００、５０〜１０００、５００〜２０００、あるいは５０〜２０００の塩基長さである。いくつかの例では、ＰＴＡから生成されたアンプリコンは、５０００、４０００、３０００、２０００、１７００、１５００、１２００、１０００、７００、５００、あるいは３００の塩基長さ以下を有する。いくつかの例において、ＰＴＡからの生成されたアンプリコンは、１０００〜５０００、１０００〜３０００、２００〜２０００、２００〜４０００、５００〜２０００、７５０〜２５００、あるいは１０００〜２０００塩基長さである。いくつかの例では、本明細書に記載される方法を使用して生成されたアンプリコンライブラリは、ユニーク配列を含む少なくとも１０００、２０００、５０００、１０，０００、１００，０００、２００，０００、５００，０００、あるいは５００，０００よりも多いアンプリコンを含む。いくつかの例では、ライブラリは、少なくとも１００、２００、３００、４００、５００、６００、７００、８００、９００、１０００、１１００、１２００、１３００、１４００、１５００、２０００、２５００、３０００、あるいは少なくとも３５００のアンプリコンを含む。いくつかの例では、１０００の塩基長さ未満を有するアンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも５％、１０％、１５％、２０％、２５％、３０％、あるいは３０％より多くは、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである。いくつかの例では、２０００の塩基長さ以下を有するアンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも５％、１０％、１５％、２０％、２５％、３０％、あるいは３０％よりも多くは、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである。いくつかの例では、３０００〜５０００塩基長さを有するアンプリコンポリヌクレオチドの少なくとも５％、１０％、１５％、２０％、２５％、３０％、あるいは３０％より多くは、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである。いくつかの例では、直接コピーのアンプリコン対標的核酸分子の比率は、少なくとも１０：１、１００：１、１０００：１、１０，０００：１、１００，０００：１、１，０００，０００：１、１０，０００，０００：１であるか、あるいは１０，０００，０００：１を超える。いくつかの例では、直接コピーのアンプリコン対標的核酸分子の比率は、少なくとも１０：１、１００：１、１０００：１、１０，０００：１、１００，０００：１、１，０００，０００：１、１０，０００，０００：１であるか、あるいは１０，０００，０００：１を超え、ここで、直接コピーのアンプリコンは、７００〜１２００の塩基長さ以下である。いくつかの例では、直接コピーのアンプリコンおよびドーターアンプリコン対標的核酸分子の比率は、少なくとも１０：１、１００：１、１０００：１、１０，０００：１、１００，０００：１、１，０００，０００：１、１０，０００，０００：１であるか、あるいは１０，０００，０００：１を超える。いくつかの例では、直接コピーのアンプリコンおよびドーターアンプリコン対標的核酸分子の比率は、少なくとも１０：１、１００：１、１０００：１、１０，０００：１、１００，０００：１、１，０００，０００：１、１０，０００，０００：１であるか、あるいは１０，０００，０００：１を超え、ここで、直接コピーのアンプリコンは、７００〜１２００塩基長さであり、およびドーターアンプリコンは２５００〜６０００塩基長さである。いくつかの例では、ライブラリは、標的核酸分子の直接コピーである約５０〜１０，０００、約５０〜５，０００、約５０〜２５００、約５０〜１０００、約１５０〜２０００、約２５０〜３０００、約５０〜２０００、約５００〜２０００、あるいは約５００〜１５００のアンプリコンを含む。いくつかの例では、ライブラリは、標的核酸分子の直接コピードーターアンプリコンである約５０〜１０，０００、約５０〜５，０００、約５０〜２５００、約５０〜１０００、約１５０〜２０００、約２５０〜３０００、約５０〜２０００、約５００〜２０００、あるいは約５００〜１５００のアンプリコンを含む。本明細書に記載される方法を使用して生成されたアンプリコンライブラリは、いくつかの例では、追加の工程、例えば、アダプターライゲーションおよびさらなるＰＣＲ増幅を受ける。いくつかの例では、そのような追加の工程は配列決定工程に先行する。
ＰＴＡ法から生成されたポリヌクレオチドのアンプリコンライブラリ、および、いくつかの例では、本明細書に記載される組成物（ターミネーター、ポリメラーゼなど）は、均一性を増大させた。均一性は、いくつかの例では、ローレンツ曲線（例えば、図５Ｃ）、あるいは他のそのような方法を使用して記載されている。いくつかの例では、そのような増加は、標的核酸分子（例えば、ゲノムＤＮＡ、ＲＮＡ、あるいは他の標的核酸分子）の所望のカバレッジに必要とされる、配列決定リードの低下をもたらした。例えば、ポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下は、標的核酸分子の配列の累積的な画分の少なくとも８０％の配列を含む。いくつかの例では、ポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下は、標的核酸分子の配列の累積画分の少なくとも６０％の配列を含む。いくつかの例では、ポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下は、標的核酸分子の配列の累積画分の少なくとも７０％の配列を含む。いくつかの例では、ポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下は、標的核酸分子の配列の累積画分の少なくとも９０％の配列を含む。いくつかの例では、均一性はジニ係数を用いて記載される（ここで、０のインデックス（ｉｎｄｅｘ）は、ライブラリの完全な均等性を表し、１のインデックスが完全な不均等性を表す）。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．５５、０．５０、０．４５、０．４０、あるいは０．３０以下のジニ係数を有する。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．５０以下のジニ係数を有する。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．４０以下のジニ係数を有する。いくつかの例では、そのような均一性メトリックは、得られたリードの数に依存する。例えば、１億、２億、３億、４億、あるいは５億以下のリードが得られる。いくつかの例では、リードの長さは、約５０、７５、１００、１２５、１５０、１７５、２００、２２５、あるいは約２５０の塩基長さである。いくつかの例では、均一性メトリックは、標的核酸のカバレッジの深度に依存する。例えば、カバレッジの平均深度は、約１０Ｘ、１５Ｘ、２０Ｘ、２５Ｘ、あるいは約３０Ｘである。いくつかの例では、カバレッジの平均深度は、１０〜３０Ｘ、２０〜５０Ｘ、５〜４０Ｘ、２０〜６０Ｘ、５〜２０Ｘ、あるいは１０〜２０Ｘである。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．５５以下のジニ係数を有し、約３億のリードが得られた。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．５０以下のジニ係数を有し、約３億のリードが得られた。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．４５以下のジニ係数を有し、約３億のリードが得られた。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．５５以下のジニ係数を有し、３億以下のリードが得られた。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．５０以下のジニ係数を有し、３億以下のリードが得られた。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．４５以下のジニ係数を有し、３億以下のリードが得られた。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．５５以下のジニ係数を有し、配列決定カバレッジの平均深度は約１５Ｘである。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．５０以下のジニ係数を有し、配列決定カバレッジの平均深度は約１５Ｘである。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．４５以下のジニ係数を有し、配列決定カバレッジの平均深度は約１５Ｘである。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．５５以下のジニ係数を有し、配列決定カバレッジの平均深度は少なくとも１５Ｘである。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．５０以下のジニ係数を有し、配列決定カバレッジの平均深度は少なくとも１５Ｘである。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．４５以下のジニ係数を有し、配列決定カバレッジの平均深度は少なくとも１５Ｘである。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．５５以下のジニ係数を有し、配列決定カバレッジの平均深度は１５Ｘ以下である。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．５０以下のジニ係数を有し、配列決定カバレッジの平均深度は１５Ｘ以下である。いくつかの例では、本明細書に記載されるアンプリコンライブラリは、０．４５以下のジニ係数を有し、配列決定カバレッジの平均深度は１５Ｘ以下である。本明細書に記載される方法を使用して生成された均一のアンプリコンライブラリは、いくつかの例では、追加の工程、アダプターライゲーションおよびさらにＰＣＲ増幅を受ける。いくつかの例では、そのような追加の工程は配列決定工程に先行する。
プライマーは、本明細書に記載される増幅反応を刺激するために使用される核酸を含む。いくつかの例では、そのようなプライマーは、限定されることなく、エキソヌクレアーゼ耐性にするための修飾を伴う、あるいは伴わない任意の長さのランダムなデオキシリボヌクレオチド、エキソヌクレアーゼ耐性にするための修飾を伴う、あるいは伴わない任意の長さのランダムなリボヌクレオチド、修飾核酸、例えば、特定のゲノム領域に標的とされるロックド核酸、ＤＮＡあるいはＲＮＡプライマー、およびプライマーゼなどの酵素で刺激される反応を含む。全ゲノムＰＴＡの場合には、ランダムあるいは部分的にランダムなヌクレオチド配列を有するプライマーのセットを使用することが好ましい。有意な複雑さの核酸サンプルでは、そのサンプル中に存在する特定の核酸配列は既知である必要がなく、プライマーは、任意の特定の配列に相補的に設計される必要はない。さらに正確に言えば、核酸サンプルの複雑さは、そのサンプル中の多くの様々なハイブリダイゼーション標的配列を結果としてもたらし、それは、ランダムあるいは部分的にランダムな配列の様々なプライマーに相補的である。ＰＴＡで使用されるプライマーの相補的部分は、いくつかの例では、十分にランダム化されるか、ランダム化される部分のみ含むか、そうでなければ選択的にランダム化される。いくつかの例では、プライマーの相補的部分におけるランダム塩基位置の数は、例えば、プライマーの相補的部分におけるヌクレオチドの合計数の２０％〜１００％である。いくつかの例では、プライマーの相補的部分におけるランダム塩基位置の数は、プライマーの相補的部分におけるヌクレオチドの合計数の１０％〜９０％、１５〜９５％、２０％〜１００％、３０％〜１００％、５０％〜１００％、７５〜１００％、あるいは９０〜９５％である。いくつかの例では、プライマーの相補的部分におけるランダム塩基位置の数は、プライマーの相補的部分におけるヌクレオチドの合計数の少なくとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、あるいは少なくとも９０％である。ランダムあるいは部分的にランダムな配列を有するプライマーのセットは、いくつかの例では、標準的な技術を使用して、各位置での任意のヌクレオチドの添加のランダム化を可能にすることにより合成される。いくつかの例では、プライマーのセットは、同様の長さおよび／またはハイブリダイゼーション特性のプライマーからなる。いくつかの例では、用語「ランダムプライマー」とは、各位置で４倍の縮退を示すことができるプライマーを指す。いくつかの例では、用語「ランダムプライマー」とは、各位置で３倍の縮退を示すことができるプライマーを指す。いくつかの例では、本明細書に記載された方法で使用されるランダムプライマーは、３、４、５、６、７、８、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、あるいはより多くの塩基長さであるランダム配列を含む。いくつかの例では、プライマーは、３〜２０、５〜１５、５〜２０、６〜１２、あるいは４〜１０の塩基長さであるランダム配列を含む。プライマーは、その生成されたアンプリコンの後の増幅を制限する、非拡張可能な要素（ｎｏｎ−ｅｘｔｅｎｄａｂｌｅ ｅｌｅｍｅｎｔｓ）も含んでいてもよい。例えば、非拡張可能な要素を有するプライマーは、いくつかの例では、ターミネーターを含む。いくつかの例では、プライマーは、ターミネーターヌクレオチド、例えば、１、２、３、４、５、１０、あるいは１０より多いターミネーターヌクレオチドを含む。プライマーは、増幅反応に外部から添加される成分に制限される必要はない。いくつかの例では、プライマーは、プライミングを促進するヌクレオチドおよびタンパク質の添加により、インサイチュで生成される。例えば、ヌクレオチドと組み合わせたプライマーゼ様酵素（ｐｒｉｍａｓｅ−ｌｉｋｅ ｅｎｚｙｍｅｓ）は、いくつかの例では、本明細書に記載される方法でランダムプライマーを生成するために使用される。いくつかの例では、プライマーゼ様酵素は、ＤｎａＧまたはＡＥＰ酵素スーパーファミリーのメンバーである。いくつかの例では、プライマーゼ様酵素は、ＴｔｈＰｒｉｍＰｏｌである。いくつかの例では、プライマーゼ様酵素は、Ｔ７ ｇｐ４ヘリカーゼ−プライマーゼである。そのようなプライマーゼは、いくつかの例では、本明細書に記載されるポリメラーゼあるいは鎖置換因子と共に使用される。いくつかの例では、プライマーゼは、デオキシリボヌクレオチドでプライミングを始める。いくつかの例では、プライマーゼは、リボヌクレオチドでプライミングを始める。
アンプリコンの特定のサブセットの選択が、ＰＴＡ増幅に続く場合がある。そのような選択は、いくつかの例では、サイズ、親和性、活性、プローブへのハイブリダイゼーション、あるいは当技術分野において他の既知の選択因子に依存する。いくつかの例では、選択は、アダプターライゲーションおよび／またはライブラリ増幅などの本明細書に記載される追加の工程に先行するか、あるいは追加の工程の後に続く。いくつかの例では、選択はアンプリコンのサイズ（長さ）に基づく。いくつかの例では、指数関数的増幅を受けている可能性が低い、より小さなアンプリコンが選択され、これによって、増幅を指数関数的増幅から準線形増幅プロセスにさらに変換しながら、一次鋳型に由来する産物を濃縮する（図１Ａ）。いくつかの例では、５０〜２０００、２５〜５０００、４０〜３０００、５０〜１０００、２００〜１０００、３００〜１０００、４００〜１０００、４００〜６００、６００〜２０００、あるいは８００〜１０００の塩基長さを含むアンプリコンが選択される。いくつかの例では、サイズ選択は、プロトコル、例えば、特定のサイズの核酸断片を濃縮するためのカルボキシル化常磁性ビーズ上の固体相の可逆的固定（ＳＰＲＩ）あるいは当業者に既知の他のプロトコルの使用の選択により行われる。随意に、あるいは組み合わせて、選択は、イルミナシーケンシング中のより小さな配列決定ライブラリフラグメントからのクラスタの優先的形成の結果と同様に、配列決定ライブラリを調製する間に、ＰＣＲ中のより小さな断片の優先的増幅（ｐｒｅｆｅｒｅｎｔｉａｌ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）によって行われる。より小さな断片を選択するための他の戦略は、本明細書に記載される方法とも一致しており、および、限定されることなく、ゲル電気泳動後に特定のサイズの核酸断片を単離すること、特定のサイズの核酸断片を結合するシリカカラムの使用、ならびに、より小さな断片をより強く濃縮する他のＰＣＲ戦略の使用を含む。
ＰＴＡで使用されるプライマーの非相補的部分は、増幅された配列をさらに操作および／または分析するために使用することができる配列を含み得る。そのような配列の一例は「検出タグ」である。検出タグは、検出プローブに相補的な配列を有し、それらの同族の検出プローブを使用して検出される。プライマー上には、１、２、３、４、あるいは４より多くの検出タグがあってもよい。プライマーのサイズを除いて、プライマー上に存在し得る検出タグの数に基本的制限はない。いくつかの例では、プライマー上に単一の検出タグがある。いくつかの例では、プライマー上に２つの検出タグがある。複数の検出タグがある場合、それらは同じ配列を有していてもよく、あるいは、それらは異なる配列を有していてもよく、各異なる配列は、異なる検出プローブに相補的である。いくつかの例では、複数の検出タグは同じ配列を有する。いくつかの例では、複数の検出タグは異なる配列を有する。
プライマーの非相補的部分に含まれ得る配列の別の例は、「アドレスタグ」である。アドレスタグは、アドレスプローブに相補的な配列を有する。アドレスタグは、増幅された鎖の末端に取り込まれるようになる。存在する場合、プライマー上に１つ、あるいは１つより多いアドレスタグがあってもよい。プライマーのサイズを除いて、プライマー上で存在し得るアドレスタグに数の基本的制限はない。複数のアドレスタグがある場合、それらは同じ配列を有していてもよく、あるいは、それらは異なる配列を有していてもよく、各異なる配列は、異なるアドレスプローブに相補的である。アドレスタグ部分は、アドレスタグとアドレスプローブの間の特定の安定したハイブリダイゼーションをサポートする任意の長さであり得る。いくつかの例では、１つを超えるソースからの核酸は、可変タグ配列を取り込むことができる。このタグ配列は、最大１００のヌクレオチド長さ、好ましくは、１〜１０のヌクレオチド長さ、最も好ましくは、４、５、あるいは６のヌクレオチド長さであり得、および、ヌクレオチドの組み合わせを含む。いくつかの例では、タグ配列は、１〜２０、２〜１５、３〜１３、４〜１２、５〜１２、あるいは１〜１０ヌクレオチドである。例えば、６つの塩基対がタグを形成するために選択され、かつ、４つの異なるヌクレオチドの順列（ｐｅｒｍｕｔａｔｉｏｎ）が使用される場合、各々が固有の６つの塩基タグを有する合計４０９６の核酸アンカー（例えば、ヘアピン）を作ることができる。
本明細書に記載されるプライマーは、溶液中に存在してもよいし、あるいは固体支持体上で固定化されてもよい。いくつかの例では、サンプルバーコードおよび／またはＵＭＩ配列を有するプライマーは、固体支持体上で固定化され得る。固体支持体は、例えば、１つ以上のビーズであり得る。いくつかの例では、個々の細胞を、個々の細胞を同定するために、サンプルバーコードおよび／またはＵＭＩ配列の固有のセットを有する１つ以上のビーズと接触させる。いくつかの例では、個々の細胞溶解物を同定するために、個々の細胞からのライゼートを、サンプルバーコードおよび／またはＵＭＩ配列の固有のセットを有する１つ以上のビーズと接触させる。いくつかの例では、個々の細胞から精製された核酸を同定するために、個々の細胞から精製された核酸を、サンプルバーコードおよび／またはＵＭＩ配列の固有のセットを有する１つ以上のビーズと接触させる。ビーズは、当技術分野において既知の任意の適切な様式、例えば、本明細書に記載されるような液滴アクチュエータを使用して、操作することができる。ビーズは、例えば、マイクロビーズ、微粒子、ナノビーズ、およびナノ粒子を含む、任意の適切なサイズであり得る。いくつかの実施形態において、ビーズは磁気応答性であり；他の実施形態では、ビーズは有意に磁気応答性ではない。適切なビーズの非限定的な例は、フローサイトメトリーマイクロビーズ、ポリスチレンの微粒子およびナノ粒子、機能化されたポリスチレン微粒子およびナノ粒子、コーティングされたポリスチレン微粒子およびナノ粒子、シリカマイクロビーズ、蛍光性のマイクロスフェアおよびナノスフェア、機能化された蛍光性のマイクロスフェアおよびナノスフェア、コーティングされた蛍光性のマイクロスフェアおよびナノスフェア、着色された微粒子およびナノ粒子、磁性微粒子およびナノ粒子、超常磁性微粒子およびナノ粒子（例えば、 Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｇｒｏｕｐ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡから入手可能なＤＹＮＡＢＥＡＤＳ（登録商標））、蛍光性の微粒子およびナノ粒子、コーティングされた磁気微粒子およびナノ粒子、強磁性の微粒子およびナノ粒子、コーティングされた強磁性の微粒子およびナノ粒子、ならびに米国特許出願ＵＳ２００５０２６０６８６、ＵＳ２００３０１３２５３８、ＵＳ２００５０１１８５７４、２００５０２７７１９７、および２００６０１５９９６２を含む。ビーズは、抗体、タンパク質、または抗原、ＤＮＡ／ＲＮＡプローブ、あるいは所望の標的に対する親和性を有する他の分子とあらかじめ結合され得る。いくつかの実施形態において、サンプルバーコードおよび／またはＵＭＩ配列を有するプライマーは、溶液中にあってもよい。ある実施形態では、複数の液滴が存在してもよく、ここで、複数の液滴中の各液滴は、ＵＭＩが液滴の収集物内で何度も反復されるように、液滴に固有のサンプルバーコードと、分子に固有のＵＭＩとを有する。いくつかの実施形態において、個々の細胞を同定するために、個々の細胞を、サンプルバーコードおよび／またはＵＭＩ配列の固有のセットを有する液滴と接触させる。いくつかの実施形態において、個々の細胞溶解物を同定するために、個々の細胞からのライゼートを、サンプルバーコードおよび／またはＵＭＩ配列の固有のセットを有する１つ以上の液滴と接触させる。いくつかの実施形態において、個々の細胞から精製された核酸を同定するために、個々の細胞から精製された核酸を、サンプルバーコードおよび／またはＵＭＩ配列の固有のセットを有する１つ以上の液滴と接触させる。
ＰＴＡプライマーは、配列特異的なプライマーあるいはランダムプライマー、細胞バーコードおよび／または固有分子識別子（ＵＭＩ）（例えば、図１０Ａ（線形プライマー）、１０Ｂ（ヘアピンプライマー）を参照）を含み得る。いくつかの例では、プライマーは配列特異的プライマーを含む。いくつかの例では、プライマーはランダムプライマーを含む。いくつかの例では、プライマーは細胞バーコードを含む。いくつかの例では、プライマーはサンプルバーコードを含む。いくつかの例では、プライマーは固有分子識別子を含む。いくつかの例では、プライマーは２つ以上の細胞バーコードを含む。いくつかの例では、そのようなバーコードは、固有のサンプルソース、あるいは固有のワークフローを同定する。そのようなバーコードあるいはＵＭＩは、いくつかの例では、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１５、２０、２５、３０、あるいは３０よりも多い塩基長さである。いくつかの例では、プライマーは、少なくとも１０００、１０，０００、５０，０００、１００，０００、２５０，０００、５００，０００、１０６、１０７、１０８、１０９、あるいは少なくとも１０１０の固有のバーコードまたはＵＭＩを含む。いくつかの例では、プライマーは、少なくとも８、１６、９６、あるいは３８４の固有のバーコードあるいはＵＭＩを含む。いくつかの例では、標準的アダプターは、配列決定前に増幅産物上に連結され；配列決定後、リードは、初めに細胞バーコードに基づいて特定の細胞に割り当てられる。ＰＴＡ法で利用され得る適切なアダプターは、例えば、Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ ＤＮＡ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（ＩＤＴ）から入手可能なｘＧｅｎ（登録商標） デュアルインデックスＵＭＩアダプターを含む。その後、各細胞からのリードは、ＵＭＩを使用してグループ化され、同じＵＭＩを有するリードは崩壊してコンセンサスリードになることがある。細胞バーコードの使用は、すべての細胞をライブラリ調製前にプールすることを可能にする。なぜなら、上記細胞は、後で細胞バーコードによって同定することができるからである。いくつかの例では、コンセンサスリードを形成するＵＭＩの使用は、ＰＣＲバイアスを修正し、コピー数多型（ＣＮＶ）検出を改善する（図１１Ａおよび１１Ｂ）。加えて、同じ分子からのリードの一定割合が各位置で同じ塩基変化が検出されることを要求することにより、配列決定エラーは修正されることがある。このアプローチは、バルクサンプル中のＣＮＶ検出を改善し、および、配列決定エラーを修正するために利用された。いくつかの例では、ＵＭＩは、本明細書に記載される方法と共に使用され、例えば、米国特許第８，８３５，３５８号は、ランダム増幅可能なバーコードを付けた後のデジタル計数の原則を開示する。ＳｃｈｍｉｔｔらおよびＦａｎらは、配列決定エラーを修正する同様の方法を開示する。
本明細書に記載される方法は、サンプルまたは鋳型上で実施される工程を含む、追加の工程をさらに含むことがある。いくつかの例では、そのようなサンプルあるいは鋳型は、ＰＴＡ前に１つ以上の工程を受ける。いくつかの例では、細胞を含むサンプルは、前処理工程を受ける。例えば、細胞は、凍結融解、トリトンＸ−１００、Ｔｗｅｅｎ ２０、およびプロテイナーゼＫの組み合わせを使用して、クロマチンアクセシビリティを向上させるために、溶解およびタンパク質分解を受ける。他の溶解戦略も、本明細書に記載される方法を実行するのに適切である。そのような戦略は、限定されることなく、界面活性剤および／またはリゾチームおよび／またはプロテアーゼ処理および／または細胞の物理的破壊、例えば、音波粉砕および／またはアルカリ性溶解および／または低張溶解の他の組み合わせを使用した溶解を含む。いくつかの例では、一次鋳型あるいは標的分子は、前処理工程を受ける。いくつかの例では、一次鋳型（あるいは標的）を、水酸化ナトリウムを使用して、その後、溶液を中和することで、変性させる。他の変性戦略も、本明細書に記載される方法を実行するのに適切であり得る。そのような戦略は、限定されることなく、アルカリ性溶解と他の塩基性溶液の組み合わせ、サンプルの温度の上昇および／またはサンプル中の塩濃度の変更、溶媒または油などの添加剤の添加、他の修飾、あるいはそれらの任意の組み合わせを含んでいてもよい。いくつかの例では、追加の工程は、サンプル、鋳型、あるいはアンプリコンを、サイズによって選別、濾過、または単離すること含む。例えば、本明細書に記載される方法を用いた増幅の後、アンプリコンライブラリを、所望の長さを有するアンプリコンについて濃縮する。いくつかの例では、アンプリコンライブラリを、５０〜２０００、２５〜１０００、５０〜１０００、７５〜２０００、１００〜３０００、１５０〜５００、７５〜２５０、１７０〜５００、１００〜５００、あるいは７５〜２０００塩基長さを有するアンプリコンについて濃縮する。いくつかの例では、アンプリコンライブラリを、７５、１００、１５０、２００、５００、７５０、１０００、２０００、５０００、あるいは１０，０００塩基長さ以下を有するアンプリコンについて濃縮する。いくつかの例では、アンプリコンライブラリを、少なくとも２５、５０、７５、１００、１５０、２００、５００、７５０、１０００、あるいは少なくとも２０００の塩基長さを有するアンプリコンについて濃縮する。
本明細書に記載される方法および組成物は、緩衝液あるいは他の製剤を含み得る。いくつかの例では、そのような緩衝液は、界面活性物質／界面活性剤または変性剤（Ｔｗｅｅｎ ２０、ＤＭＳＯ、ＤＭＦ、疎水基を含むペグ化高分子、あるいは他の界面活性物質を含む）、塩（カリウムまたはリン酸ナトリウム（一塩基あるいは二塩基の）、塩化ナトリウム、塩化カリウム、ＴｒｉｓＨＣｌ、塩化マグネシウムまたはサフレート（ｓｕｆｌａｔｅ）、アンモニウム塩、例えば、リン酸塩、硝酸塩、あるいは硫酸塩、ＥＤＴＡ）、還元剤（ＤＴＴ、ＴＨＰ、ＤＴＥ、βメルカプトエタノール、ＴＣＥＰ、あるいは他の還元剤）、または他の成分（グリセロール、親水性ポリマー、例えば、ＰＥＧ）を含む。いくつかの例では、緩衝液は、ポリメラーゼ、鎖置換因子、ターミネーター、あるいは本明細書に記載される他の反応成分などの成分と共に使用される。
本明細書に記載される方法に従って増幅された核酸分子は、当業者に既知の方法を用いて配列決定および分析され得る。いくつかの例で使用される配列決定方法の非限定的な例は、例えば、ハイブリダイゼーションによる配列決定（ＳＢＨ）、ライゲーションによる配列決定（ＳＢＬ）（Ｓｈｅｎｄｕｒｅ ｅｔ ａｌ． （２００５） Ｓｃｉｅｎｃｅ ３０９：１７２８）、定量的増分蛍光ヌクレオチド付加配列決定（ＱＩＦＮＡＳ）、段階的なライゲーションおよび切断、蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）、分子ビーコン、ＴａｑＭａｎレポータープローブ消化、パイロシークエンシング、蛍光インサチュ配列決定（ＦＩＳＳＥＱ）、ＦＩＳＳＥＱビーズ（米国特許第７，４２５，４３１号）、ゆらぎ配列決定（ｗｏｂｂｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ）（国際特許出願公開ＷＯ２００６／０７３５０４、マルチプレックス配列決定（米国特許出願ＵＳ２００８／０２６９０６８；Ｐｏｒｒｅｃａ ｅｔ ａｌ．， ２００７， Ｎａｔ． Ｍｅｔｈｏｄｓ ４：９３１）、重合コロニー（ｐｏｌｙｍｅｒｉｚｅｄ ｃｏｌｏｎｙ）（ＰＯＬＯＮＹ）配列決定（米国特許第６，４３２，３６０号、第６，４８５，９４４号および第６，５１１，８０３号、ならびに国際特許出願公開ＷＯ２００５／０８２０９８、ナノグリッドローリングサークル配列決定（ＲＯＬＯＮＹ）（米国特許第９，６２４，５３８）、対立遺伝子特異的オリゴライゲーションアッセイ（例えば、オリゴライゲーションアッセイ（ＯＬＡ）、連結された線形プローブ（ｌｉｎｅａｒ ｐｒｏｂｅ）およびローリングサークル増幅（ＲＣＡ）読み出し（ｒｅａｄｏｕｔ）を使用する単一の鋳型分子ＯＬＡ、連結されたパドロックプローブ、および／または連結された円形パドロックプローブおよびローリングサークル増幅（ＲＣＡ）読み出しを使用する単一の鋳型分子ＯＬＡ）、ハイスループットシーケンシング方法、例えば、Ｒｏｃｈｅ ４５４、Ｉｌｌｕｍｉｎａ Ｓｏｌｅｘａ、ＡＢ−ＳＯＬｉＤ、Ｈｅｌｉｃｏｓ、Ｐｏｌｏｎａｔｏｒプラットフォームなどを使用する方法、ならびに光ベースの配列決定技術（Ｌａｎｄｅｇｒｅｎ ｅｔ ａｌ． （１９９８） Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓ． ８：７６９−７６； Ｋｗｏｋ （２０００） Ｐｈａｒｍａｃｏｇｅｎｏｍｉｃｓ １：９５−１００； ａｎｄ Ｓｈｉ （２００１） Ｃｌｉｎ． Ｃｈｅｍ．４７：１６４−１７２）を含む。いくつかの例では、増幅核酸分子はショットガンシーケンシングされる。
方法および適用
ＰＴＡ法を用いて細胞中の突然変異を同定する方法が本明細書に記載されている。いくつかの例では、ＰＴＡ法の使用により、既知の方法、例えば、ＭＤＡよりも改善される。いくつかの例では、ＰＴＡは、ＭＤＡ法よりも低い偽陽性および偽陰性変異コーリング率を有する。いくつかの例では、ＮＡ１２８７８プラチナゲノムなどのゲノムは、ＰＴＡのより大きなゲノムカバレッジおよび均一性が、より低い偽陰性変異コーリング率を結果としてもたらすか否かを決定するために使用される。理論によって縛られることなく、ＰＴＡでのエラー伝播の欠如により偽陽性変異コール率を減少すると判断することができる。いくつかの例では、２つの方法を用いた対立遺伝子間の増幅平衡は、既知の陽性遺伝子座（ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｌｏｃｉ）でのヘテロ接合変異コールの対立遺伝子頻度を比較することによって評価される。いくつかの例では、ＰＴＡを使用して生成されたアンプリコンライブラリは、ＰＣＲによってさらに増幅される。
いくつかの例では、本明細書に記載される方法を使用して分析された細胞は、腫瘍細胞を含む。例えば、循環腫瘍細胞は、患者から採取された体液、例えば、制限されないが、血液、骨髄、尿、唾液、脳脊髄液、胸膜液、心膜液、腹水、あるいは眼房水から単離することができる。その後、細胞は、各細胞中の突然変異量および突然変異の組み合わせを決定するために、本明細書に記載される方法（例えば、ＰＴＡ）および配列決定を受ける。いくつかの例では、これらのデータは、特定の疾患の診断に使用されるか、あるいは処置応答を予測するツールとして使用される。同様に、いくつかの例では、いくつかの例での未知の悪性度を有する細胞は、患者から採取された体液、例えば、限定されないが、血液、骨髄、尿、唾液、脳脊髄液、胸膜液、心膜液、腹水、あるいは眼房水から単離される。本明細書に記載される方法および配列決定を利用した後に、そのような方法が、各細胞中の突然変異量および突然変異の組み合わせを決定するためにさらに使用される。いくつかの例では、これらのデータは、特定の疾患の診断に使用されるか、あるいは前癌状態から明白な悪性病変の進行を予測するツールとして使用される。いくつかの例では、細胞は原発性腫瘍サンプルから単離することができる。その後、細胞は、各細胞中の突然変異量および突然変異の組み合わせを決定するために、ＰＴＡおよび配列決定を受ける場合がある。これらのデータは、特定の疾患の診断に使用することができるか、あるいは、患者の悪性病変が利用可能な抗癌剤に耐性がある確率を予測するためのツールとして使用することができる。様々な化学療法薬剤にサンプルをさらすことによって、マイナークローンおよびメジャークローンが、既知の「ドライバー突然変異」の存在と必ずしも相関しない特定の薬剤に対して分差感受性を有していることが分かり、このことは、クローン集団内の突然変異の組み合わせが、特定の化学療法剤に対するその感受性を決定することを示唆している。理論によって縛られることなく、これらの発見により、まだ拡大しておらず、およびクローンに発展する前癌病変が検出される場合、悪性病変の根絶がより容易であることが示唆され、そのゲノム修飾の数の増加により、処置に耐性を有する可能性がより高くなる可能性がある。Ｍａ ｅｔ ａｌ．， ２０１８，“Ｐａｎ−ｃａｎｃｅｒ ｇｅｎｏｍｅ ａｎｄ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｏｍｅ ａｎａｌｙｓｅｓ ｏｆ １，６９９ ｐｅｄｉａｔｒｉｃ ｌｅｕｋｅｍｉａｓ ａｎｄ ｓｏｌｉｄ ｔｕｍｏｒｓ”を参照。いくつかの例では、単一細胞ゲノミクスプロトコルは、患者のサンプルから単離される正常細胞と悪性細胞の混合物内で、単一の癌細胞、あるいはクロノタイプの体細胞遺伝子変異体の組み合わせを検出するために使用される。この技術は、いくつかの例では、インビトロおよび／または患者内の両方で、薬剤にさらされた後に、正の選択を受けるクロノタイプを同定するためにさらに利用される。図６Ａに示されるように、診断で同定されたクローンと化学療法にさらされた残存するクローンを比較することによって、特定の薬剤に対する耐性を実証する癌クロノタイプのカタログを作成することができる。いくつかの例では、ＰＴＡ法は、既存する薬剤あるいは新規な薬剤、ならびにそれらの組み合わせに対する、複数のクロノタイプからなるサンプル中の特定のクローンの感受性を検出し、ここで、上記方法は、上記薬剤に対する特定のクローンの感受性を検出することができる。いくつかの例では、このアプローチは、１回の測定ですべての癌クローンの感受性をともに考慮する現在の薬剤感受性測定では検出されない可能性がある、特定のクローンについての薬剤の有効性を示す。所与の患者の癌における癌クロノタイプを検出するために、本明細書に記載されるＰＴＡ法を診断の時点で採取された患者のサンプルに適用する場合、薬剤感受性のカタログを使用してそれらのクローンを調べ、それにより、どの薬剤あるいは薬剤の組み合わせが作用しないか、および、どの薬剤あるいは薬剤の組み合わせがその患者の癌に対して最も効果的であるかに関して、腫瘍学者に通知することができる。
環境因子の変異原性を測定する方法が本明細書に記載されている。例えば、細胞（単一または集団）は潜在的な環境条件にさらされる。例えば、臓器（肝臓、膵臓、肺、結腸、甲状腺、あるいは他の臓器）、組織（皮膚、あるいは他の組織）、血液、または他の生体ソースに由来する細胞が、いくつかの例では、本方法と共に使用される。いくつかの例では、環境条件は、熱、光（例えば、紫外線）、放射線、化学物質、あるいはそれらの任意の組み合わせを含む。いくつかの例では、数分、数時間、数日、あるいはそれより長く環境条件にさらした後、単一細胞は単離されて、ＰＴＡ法を受ける。いくつかの例では、分子バーコードおよび固有分子識別子は、サンプルをタグ付するために使用される。サンプルを配列決定し、その後、分析することで、環境条件への暴露に起因する突然変異を同定する。いくつかの例では、そのような突然変異は、既知の非変異原物質、ビヒクル／溶媒、あるいは環境条件の欠如などの対照環境条件と比較される。いくつかの例では、そのような分析は、環境条件によって引き起こされた突然変異の合計数だけでなく、そのような突然変異の位置および性質も提供する。いくつかの例では、パターンはデータから識別され、疾患あるいは疾病の診断に使用され得る。いくつかの例では、パターンは、将来の疾患の状態あるいは状況を予測するために使用される。いくつかの例では、本明細書に記載される方法は、環境要因、例えば、潜在的変異原または催奇形物質などにさらされた後に、細胞中の突然変異量、位置、およびパターンを測定する。いくつかの例では、このアプローチは、疾患の進行に寄与し得る突然変異を誘発する可能性など、所与の薬剤の安全性を評価するために使用される。例えば、特定の薬剤の特定の濃度にさらした後の特定の細胞型に対する薬剤の癌原性あるいは催奇性を予測するために、上記方法を使用することができる。
ゲノム編集（例えば、ＣＲＩＳＰＲ技術を使用した）を受けた動物、植物、あるいは微生物細胞中の突然変異を同定する方法が本明細書に記載されている。いくつかの例では、そのような細胞を単離し、ＰＴＡおよび配列決定を行い、各細胞の突然変異量ならびに突然変異の組み合わせを決定することができる。いくつかの例では、ゲノム編集プロトコルに起因する細胞ごとの突然変異率および突然変異の位置が、所与のゲノム編集方法の安全性を評価するために使用される。
細胞療法、例えば、限定されないが、人工多能性幹細胞の移植、操作されていない造血細胞または他の細胞の移植、あるいはゲノム編集を受けた造血細胞または他の細胞の移植に使用される細胞中の突然変異を決定する方法が本明細書に記載される。その後、細胞は、各細胞中の突然変異量および突然変異の組み合わせを決定するために、ＰＴＡおよび配列決定を受ける場合がある。細胞療法産物中の細胞ごとの突然変異率および突然変異の位置は、産物の安全性ならびに潜在的な有効性を評価するために使用することができる。
さらなる実施形態では、細胞は、体外受精によって作られる割球から単離することができる。その後、その細胞は、各細胞中の潜在的な疾患の素因になる遺伝子変異体の量および組み合わせを決定するために、ＰＴＡおよび配列決定を受ける場合がある。その後、細胞の突然変異プロファイルは、移植前に特定の疾患への割球の遺伝的素因を外挿するために使用することができる。
別の実施形態では、微生物細胞（例えば、細菌、菌類、原生動物）は、植物あるいは動物から単離することができる（例えば、細菌叢サンプル［例えば、ＧＩ細菌叢、皮膚細菌叢、など］から、あるいは体液、例えば、血液、骨髄、尿、唾液、脳脊髄液、胸膜液、心膜液、腹水、あるいは眼房水などから）。加えて、微生物細胞は、限定されないが、静脈内カテーテル、尿道カテーテル、脳脊髄シャント、人工弁、人工関節、あるいは気管内チューブなどの留置医療機器から単離することができる。その後、細胞は、特定の微生物の同一性を決定するために、ならびに、特定の抗菌薬に対する応答（あるいは、耐性）を予測する微生物遺伝子変異体の存在を検知するために、ＰＴＡおよび配列決定を受ける場合がある。これらのデータは、特定の感染症の診断に使用され、および／または、処置応答を予測するためのツールとして使用することができる。
本明細書に記載されるＰＴＡ法を使用して、短い核酸を含むサンプルからアンプリコンライブラリを生成する方法が本明細書に記載されている。いくつかの例では、ＰＴＡは、より短い核酸の増幅の忠実度および均一性の改善につながる。いくつかの例では、核酸は２０００塩基長さ以下である。いくつかの例では、核酸は１０００塩基長さ以下である。いくつかの例では、核酸は５００塩基長さ以下である。いくつかの例では、核酸は、２００、４００、７５０、１０００、２０００、あるいは５０００の塩基長さ以下である。いくつかの例では、短い核酸断片を含むサンプルとしては、限定されないが、古代ＤＮＡ（何百、何千、何百万、あるいは何十億年前）、ＦＦＰＥ（ホルマリン固定パラフィン包埋）サンプル、無細胞ＤＮＡ、あるいは短い核酸を含む他のサンプルが挙げられる。
実施形態
標的核酸分子を増幅する方法が本明細書に記載され、上記方法は：ａ）標的核酸分子、１つ以上の増幅プライマー、核酸ポリメラーゼ、および、ポリメラーゼによる核酸複製を停止する１つ以上のターミネーターヌクレオチドを含むヌクレオチドの混合物を含む、サンプルを接触させる工程と、ｂ）複数の停止増幅産物を得るために、標的核酸分子の複製を促進する条件下でサンプルをインキュベートする工程であって、ここで、上記複製は鎖置換複製により進行する、工程と、を含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、上記方法は、複数の停止増幅産物から、約５０〜約２０００のヌクレオチド長さである産物を単離する工程をさらに含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、上記方法は、複数の停止増幅産物から、約４００〜約６００のヌクレオチド長さである産物を単離する工程をさらに含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、上記方法は：ｃ）停止増幅産物から末端ターミネーターヌクレオチドを除去する工程と；ｄ）末端修復およびＡテーリングを行う工程と、ｅ）工程（ｄ）で得られた分子をアダプターに連結し、それにより、増幅産物のライブラリを生成する工程と、を含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、上記方法は、増幅産物を配列決定する工程をさらに含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、増幅は実質的に等温条件下で実施される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼはＤＮＡポリメラーゼである。
上記方法のいずれかの１つの実施形態では、ＤＮＡポリメラーゼは鎖置換ＤＮＡポリメラーゼである。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは、バクテリオファージｐｈｉ２９（Φ２９）ポリメラーゼ、遺伝子改変ｐｈｉ２９（Φ２９）ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノウ断片、ファージＭ２ ＤＮＡポリメラーゼ、ファージｐｈｉＰＲＤ１ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｔ ラージフラグメントＤＮＡポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｓｔポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｃａ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、ＩｓｏＰｏｌ ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩ、Ｔｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ５ ＤＮＡポリメラーゼ、シーケナーゼ、Ｔ７ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ７−シーケナーゼ、およびＴ４ ＤＮＡポリメラーゼから選択される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは、３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を有し、およびターミネーターヌクレオチドはそのような３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を阻害する。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、α基への修飾を伴うヌクレオチド（例えば、ホスホロチオエート結合を作るαチオジデオキシヌクレオチド）、Ｃ３スペーサーヌクレオチド、ロックド核酸（ＬＮＡ）、逆核酸、２’フルオロヌクレオチド、３’リン酸化ヌクレオチド、２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチド、およびトランス核酸から選択される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは、３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を有しない。１つの特定の実施形態では、ポリメラーゼは、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｓｔポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｃａ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、クレノウ断片（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、およびＴｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼから選択される。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、デオキシリボースの３’炭素のｒ基の修飾を含む。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、可逆的ターミネーターを含む３’ブロックされたヌクレオチド、可逆的ターミネーターを含む３’ブロックされてないヌクレオチド、ターミネーターを含む２’修飾のデオキシリボヌクレオチド、ターミネーターを含む、窒素塩基への修飾を有するデオキシリボヌクレオチド、およびそれらの組み合わせから選択される。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、ジデオキシヌクレオチド、逆ジデオキシヌクレオチド、３’ビオチン化ヌクレオチド、３’アミノヌクレオチド、３’−リン酸化ヌクレオチド、３’−Ｏ−メチルヌクレオチド、３’Ｃ３スペーサーヌクレオチドを含む３’炭素スペーサーヌクレオチド、３’Ｃ１８ヌクレオチド、３’ヘキサンジオールスペーサーヌクレオチド、アシクロヌクレオチド（ａｃｙｃｌｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ）、およびそれらの組み合わせから選択される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、増幅プライマーは４〜７０のヌクレオチド長さである。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、増幅産物は、約５０〜約２０００ヌクレオチド長さである。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、標的核酸は、ＤＮＡ（例えば、ｃＤＮＡまたはゲノムＤＮＡ）である。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、増幅プライマーはランダムプライマーである。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、増幅プライマーはバーコードを含む。１つの特定の実施形態では、バーコードは細胞バーコードを含む。１つの特定の実施形態では、バーコードはサンプルバーコードを含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、増幅プライマーは固有分子識別子（ＵＭＩ）を含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、上記方法は、最初のプライマーアニーリングの前に標的核酸またはゲノムＤＮＡを変性させる工程を含む。１つの特定の実施形態では、変性はアルカリ性条件下で実施され、その後、中和される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプル、増幅プライマー、核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物は、マイクロ流体デバイスに含有されている。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプル、増幅プライマー、核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物は、液滴に含有されている。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプルは、組織サンプル、細胞、体液サンプル（例えば、血液、尿、唾液、リンパ液、脳脊髄液（ＣＳＦ）、羊水、胸膜液、心膜液、腹水、眼房水）、骨髄サンプル、精液サンプル、生検サンプル、癌サンプル、腫瘍サンプル、細胞溶解サンプル、法医学サンプル、考古学サンプル、古生物学サンプル、感染サンプル、産生サンプル、植物全体、植物部品、細菌叢サンプル、ウイルス調製物、土壌サンプル、海水サンプル、真水サンプル、家庭用あるいは工業用サンプル、およびそれらの組み合わせならびに分離物から選択される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプルは、細胞（例えば、動物細胞［例えば、ヒト細胞］、植物細胞、真菌細胞、細菌細胞、および原生動物細胞）である。１つの特定の実施形態では、細胞は複製前に溶解される。１つの特定の実施形態では、細胞溶解にはタンパク質分解が伴う。１つの特定の実施形態では、細胞は、着床前胚からの細胞、幹細胞、胎児細胞、腫瘍細胞、疑わしい癌細胞、癌細胞、遺伝子編集手順を受けた細胞、病原体からの細胞、法医学サンプルから得られた細胞、考古学サンプルから得られた細胞、および古生物学サンプルから得られた細胞から選択される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプルは、着床前胚（例えば、割球［例えば、体外受精によって生成された８つの細胞期の胚から得られる割球］）の細胞である。１つの特定の実施形態では、上記方法は、胚細胞中の疾患の素因となる生殖系列変異体あるいは体細胞変異体の存在を決定する工程をさらに含む。上記方法の１つの実施形態では、サンプルは、病原体（例えば、細菌、真菌、原生動物）の細胞である。１つの特定の実施形態では、病原体細胞は、患者、細菌叢サンプル（例えば、ＧＩ細菌叢サンプル、膣細菌叢サンプル、皮膚細菌叢サンプルなど）、あるいは留置医療機器（例えば、静脈内カテーテル、尿道カテーテル、脳脊髄シャント、人工弁、人工関節、気管内チューブなど）から採取された体液から得られる。１つの特定の実施形態では、上記方法は、病原体の同一性を決定する工程をさらに含む。１つの特定の実施形態では、上記方法は、処置に対する病原体の耐性の原因となる遺伝子変異体の存在を決定する工程をさらに含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプルは、腫瘍細胞、疑わしい癌細胞、あるいは癌細胞である。１つの特定の実施形態では、上記方法は、１つ以上の診断変異あるいは予後変異の存在を決定する工程をさらに含む。１つの特定の実施形態では、上記方法は、処置に対する耐性の原因となる生殖系列変異体あるいは体細胞変異体の存在を決定する工程をさらに含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプルは、遺伝子編集手順を受けた細胞である。１つの特定の実施形態では、上記方法は、遺伝子編集プロセスによって引き起こされた計画外の突然変異の存在を決定する工程をさらに含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、上記方法は、細胞系統の履歴を決定する工程をさらに含む。関連する態様では、本発明は、低頻度の配列変異体（例えば、全配列の≧０．０１％を構成する変異体）を同定するための上記方法のいずれかの使用を提供する。
関連する態様では、本発明は、核酸ポリメラーゼ、１つ以上の増幅プライマー、１つ以上のターミネーターヌクレオチドを含むヌクレオチドの混合物、および随意に使用説明書を含むキットを提供する。本発明のキットの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは鎖置換ＤＮＡポリメラーゼである。本発明のキットの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは、バクテリオファージｐｈｉ２９（Φ２９）ポリメラーゼ、遺伝子改変ｐｈｉ２９（Φ２９）ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノウ断片、ファージＭ２ ＤＮＡポリメラーゼ、ファージｐｈｉＰＲＤ１ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｔ ラージフラグメントＤＮＡポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｓｔポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｃａ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、ＩｓｏＰｏｌ ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩ、Ｔｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ５ ＤＮＡポリメラーゼ、シーケナーゼ、Ｔ７ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ７−シーケナーゼ、およびＴ４ ＤＮＡポリメラーゼから選択される。本発明のキットの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは、３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を有し、および、ターミネーターヌクレオチドは、そのような３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性（例えば、α基への修正を伴うヌクレオチド［例えば、α−チオジデオキシヌクレオチド］、Ｃ３スペーサーヌクレオチド、ロックド核酸（ＬＮＡ）、逆核酸、２’フルオロヌクレオチド、３’リン酸化ヌクレオチド、２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチド、トランス核酸）を阻害する。本発明のキットの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは、３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性（例えば、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｓｔポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｃａ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、クレノウ断片（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼ）を含まない。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、デオキシリボースの３’炭素のｒ基の修飾を含む。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、可逆的ターミネーターを含む３’ブロックされたヌクレオチド、可逆的ターミネーターを含む３’ブロックされてないヌクレオチド、ターミネーターを含む２’修飾のデオキシリボヌクレオチド、ターミネーターを含む、窒素塩基への修飾を有するデオキシリボヌクレオチド、およびそれらの組み合わせから選択される。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、ジデオキシヌクレオチド、逆ジデオキシヌクレオチド、３’ビオチン化ヌクレオチド、３’アミノヌクレオチド、３’−リン酸化ヌクレオチド、３’−Ｏ−メチルヌクレオチド、３’Ｃ３スペーサーヌクレオチドを含む３’炭素スペーサーヌクレオチド、３’Ｃ１８ヌクレオチド、３’ヘキサンジオールスペーサーヌクレオチド、アシクロヌクレオチド、およびそれらの組み合わせから選択される。
ゲノムを増幅する方法が本明細書に記載され、上記方法は：ａ）ゲノム、複数の増幅プライマー、（例えば、２つ以上のプライマー）、核酸ポリメラーゼ、および、ポリメラーゼによる核酸複製を停止する１つ以上のターミネーターヌクレオチドを含むヌクレオチドの混合物を含む、サンプルを接触させる工程と、ｂ）複数の停止増幅産物を得るために、ゲノムの複製を促進する条件下でサンプルをインキュベートする工程であって、ここで、上記複製は鎖置換複製により進行する、工程と、を含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、上記方法は、複数の停止増幅産物から、約５０〜約２０００のヌクレオチド長さである産物を単離する工程をさらに含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、上記方法は、複数の停止増幅産物から、約４００〜約６００のヌクレオチド長さである産物を単離する工程をさらに含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、上記方法は：ｃ）停止増幅産物から末端ターミネーターヌクレオチドを除去する工程と；ｄ）末端修復およびＡテーリングを行う工程と、ｅ）工程（ｄ）で得られた分子をアダプターに連結し、それにより、増幅産物のライブラリを生成する工程と、を含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、上記方法は、増幅産物を配列決定する工程をさらに含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、増幅は実質的に等温条件下で実施される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼはＤＮＡポリメラーゼである。
上記方法のいずれかの１つの実施形態では、ＤＮＡポリメラーゼは鎖置換ＤＮＡポリメラーゼである。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは、バクテリオファージｐｈｉ２９（Φ２９）ポリメラーゼ、遺伝子改変ｐｈｉ２９（Φ２９）ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノウ断片、ファージＭ２ ＤＮＡポリメラーゼ、ファージｐｈｉＰＲＤ１ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｔ ラージフラグメントＤＮＡポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｓｔポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｃａ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、ＩｓｏＰｏｌ ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩ、Ｔｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ５ ＤＮＡポリメラーゼ、シーケナーゼ、Ｔ７ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ７−シーケナーゼ、およびＴ４ ＤＮＡポリメラーゼから選択される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは、３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を有し、およびターミネーターヌクレオチドはそのような３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を阻害する。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、α基への修飾を伴うヌクレオチド（例えば、ホスホロチオエート結合を作るαチオジデオキシヌクレオチド）、Ｃ３スペーサーヌクレオチド、ロックド核酸（ＬＮＡ）、逆核酸、２’フルオロヌクレオチド、３’リン酸化ヌクレオチド、２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチド、およびトランス核酸から選択される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは、３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を有しない。１つの特定の実施形態では、ポリメラーゼは、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｓｔポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｃａ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、クレノウ断片（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、およびＴｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼから選択される。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、デオキシリボースの３’炭素のｒ基の修飾を含む。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、可逆的ターミネーターを含む３’ブロックされたヌクレオチド、可逆的ターミネーターを含む３’ブロックされてないヌクレオチド、ターミネーターを含む２’修飾のデオキシリボヌクレオチド、ターミネーターを含む、窒素塩基への修飾を有するデオキシリボヌクレオチド、およびそれらの組み合わせから選択される。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、ジデオキシヌクレオチド、逆ジデオキシヌクレオチド、３’ビオチン化ヌクレオチド、３’アミノヌクレオチド、３’−リン酸化ヌクレオチド、３’−Ｏ−メチルヌクレオチド、３’Ｃ３スペーサーヌクレオチドを含む３’炭素スペーサーヌクレオチド、３’Ｃ１８ヌクレオチド、３’ヘキサンジオールスペーサーヌクレオチド、アシクロヌクレオチド（ａｃｙｃｌｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ）、およびそれらの組み合わせから選択される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、増幅プライマーは４〜７０のヌクレオチド長さである。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、増幅産物は、約５０〜約２０００のヌクレオチド長さである。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、標的核酸は、ＤＮＡ（例えば、ｃＤＮＡまたはゲノムＤＮＡ）である。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、増幅プライマーはランダムプライマーである。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、増幅プライマーはバーコードを含む。１つの特定の実施形態では、バーコードは細胞バーコードを含む。１つの特定の実施形態では、バーコードはサンプルバーコードを含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、増幅プライマーは固有分子識別子（ＵＭＩ）を含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、上記方法は、最初のプライマーアニーリングの前に標的核酸またはゲノムＤＮＡを変性させる工程を含む。１つの特定の実施形態では、変性はアルカリ性条件下で実施され、その後、中和される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプル、増幅プライマー、核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物は、マイクロ流体デバイスに含有されている。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプル、増幅プライマー、核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物は、液滴に含有されている。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプルは、組織サンプル、細胞、体液サンプル（例えば、血液、尿、唾液、リンパ液、脳脊髄液（ＣＳＦ）、羊水、胸膜液、心膜液、腹水、眼房水）、骨髄サンプル、精液サンプル、生検サンプル、癌サンプル、腫瘍サンプル、細胞溶解サンプル、法医学サンプル、考古学サンプル、古生物学サンプル、感染サンプル、産生サンプル、植物全体、植物部品、細菌叢サンプル、ウイルス調製物、土壌サンプル、海水サンプル、真水サンプル、家庭用あるいは工業用サンプル、およびそれらの組み合わせならびに分離物から選択される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプルは、細胞（例えば、動物細胞［例えば、ヒト細胞］、植物細胞、真菌細胞、細菌細胞、および原生動物細胞）である。１つの特定の実施形態では、細胞は複製前に溶解される。１つの特定の実施形態では、細胞溶解にはタンパク質分解が伴う。１つの特定の実施形態では、細胞は、着床前胚からの細胞、幹細胞、胎児細胞、腫瘍細胞、疑わしい癌細胞、癌細胞、遺伝子編集手順を受けた細胞、病原体からの細胞、法医学サンプルから得られた細胞、考古学サンプルから得られた細胞、および古生物学サンプルから得られた細胞から選択される。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプルは、着床前胚（例えば、割球［例えば、体外受精によって生成された８つの細胞期の胚から得られる割球］）の細胞である。１つの特定の実施形態では、上記方法は、胚細胞中の疾患の素因となる生殖系列変異体あるいは体細胞変異体の存在を決定する工程をさらに含む。上記方法の１つの実施形態では、サンプルは、病原体（例えば、細菌、真菌、原生動物）の細胞である。１つの特定の実施形態では、病原体細胞は、患者、細菌叢サンプル（例えば、ＧＩ細菌叢サンプル、膣細菌叢サンプル、皮膚細菌叢サンプルなど）、あるいは留置医療機器（例えば、静脈内カテーテル、尿道カテーテル、脳脊髄シャント、人工弁、人工関節、気管内チューブなど）から採取された体液から得られる。１つの特定の実施形態では、上記方法は、病原体の同一性を決定する工程をさらに含む。１つの特定の実施形態では、上記方法は、処置に対する病原体の耐性の原因となる遺伝子変異体の存在を決定する工程をさらに含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプルは、腫瘍細胞、疑わしい癌細胞、あるいは癌細胞である。１つの特定の実施形態では、上記方法は、１つ以上の診断変異あるいは予後変異の存在を決定する工程をさらに含む。１つの特定の実施形態では、上記方法は、処置に対する耐性の原因となる生殖系列変異体あるいは体細胞変異体の存在を決定する工程をさらに含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、サンプルは、遺伝子編集手順を受けた細胞である。１つの特定の実施形態では、上記方法は、遺伝子編集プロセスによって引き起こされた計画外の突然変異の存在を決定する工程をさらに含む。上記方法のいずれかの１つの実施形態では、上記方法は、細胞系統の履歴を決定する工程をさらに含む。関連する態様では、本発明は、低頻度の配列変異体（例えば、全配列の≧０．０１％を構成する変異体）を同定するための上記方法のいずれかの使用を提供する。
関連する態様では、本発明は、核酸ポリメラーゼ、１つ以上の増幅プライマー、１つ以上のターミネーターヌクレオチドを含むヌクレオチドの混合物、および随意に使用説明書を含むキットを提供する。本発明のキットの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは鎖置換ＤＮＡポリメラーゼである。本発明のキットの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは、バクテリオファージｐｈｉ２９（Φ２９）ポリメラーゼ、遺伝子改変ｐｈｉ２９（Φ２９）ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノウ断片、ファージＭ２ ＤＮＡポリメラーゼ、ファージｐｈｉＰＲＤ１ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｔ ラージフラグメントＤＮＡポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｓｔポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｃａ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、ＩｓｏＰｏｌ ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩ、Ｔｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ５ ＤＮＡポリメラーゼ、シーケナーゼ、Ｔ７ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ７−シーケナーゼ、およびＴ４ ＤＮＡポリメラーゼから選択される。本発明のキットの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは、３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を有し、および、ターミネーターヌクレオチドは、そのような３−＞５’エキソヌクレアーゼ活性（例えば、α基への修正を伴うヌクレオチド［例えば、α−チオジデオキシヌクレオチド］、Ｃ３スペーサーヌクレオチド、ロックド核酸（ＬＮＡ）、逆核酸、２’フルオロヌクレオチド、３’リン酸化ヌクレオチド、２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチド、トランス核酸）を阻害する。本発明のキットの１つの実施形態では、核酸ポリメラーゼは、３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性（例えば、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｓｔポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｃａ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、クレノウ断片（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼ）を含まない。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、デオキシリボースの３’炭素のｒ基の修飾を含む。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、可逆的ターミネーターを含む３’ブロックされたヌクレオチド、可逆的ターミネーターを含む３’ブロックされてないヌクレオチド、ターミネーターを含む２’修飾のデオキシリボヌクレオチド、ターミネーターを含む、窒素塩基への修飾を有するデオキシリボヌクレオチド、およびそれらの組み合わせから選択される。１つの特定の実施形態では、ターミネーターヌクレオチドは、ジデオキシヌクレオチド、逆ジデオキシヌクレオチド、３’ビオチン化ヌクレオチド、３’アミノヌクレオチド、３’−リン酸化ヌクレオチド、３’−Ｏ−メチルヌクレオチド、３’Ｃ３スペーサーヌクレオチドを含む３’炭素スペーサーヌクレオチド、３’Ｃ１８ヌクレオチド、３’ヘキサンジオールスペーサーヌクレオチド、アシクロヌクレオチド（ａｃｙｃｌｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ）、およびそれらの組み合わせから選択される。
以下の実施例は、本明細書に開示される実施形態の原理および実践をより明白に当業者に例証するために記載され、任意の請求された実施形態の範囲を制限するものとして解釈されるものではない。他に明示されない限り、全ての部分およびパーセンテージは重量基準である。
実施例１：一次鋳型指向性増幅（ＰＴＡ）
ＰＴＡは、任意の核酸増幅に使用することができるが、全ゲノム増幅に特に有用である。なぜなら、ＰＴＡは、より均一でより再現可能な様式で、かつ現在用いられている方法、例えば、多置換増幅（ＭＤＡ）よりも低いエラー率で、細胞ゲノムより大きな割合を捕捉し、これにより、遺伝子座と対立遺伝子のランダムな過剰表現および突然変異伝播を結果としてもたらす、ポリメラーゼが初めにランダムプライマーを伸長する位置での指数関数的増幅などの、現在用いられている方法の欠点を回避することができるからである（図１Ａ−１Ｃを参照）。
細胞培養
ヒトＮＡ１２８７８（Ｃｏｒｉｅｌｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ）細胞を、１５％のＦＢＳと２ｍＭのＬ−グルタミン、および１００単位／ｍＬのペニシリン、１００μｇ／ｍＬのストレプトマイシン、ならびに０．２５μｇ／ｍＬのアムホテリシンＢ（Ｇｉｂｃｏ， Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）で補足されたＲＰＭＩ溶媒中で維持した。細胞を３．５×１０５細胞／ｍｌの密度で播種した。培養物を３日毎に分割して、５％のＣＯ２で、３７°Ｃで、加湿型インキュベータ中で維持した。
単一細胞の単離およびＷＧＡ
３．５×１０５細胞／ｍｌの密度での播種後、ＮＡ１２８７８細胞を最低３日間培養した後に、３ｍＬの細胞懸濁液を３００ｘｇで１０分間ペレット化した。その後、培地を破棄し、細胞を、１ｍＬの細胞洗浄緩衝液（Ｍｇ２またはＣａ２を含まない２％のＦＢＳを含有する１Ｘ ＰＢＳ）で３回洗浄し、３００ｘｇ、２００ｘｇ、および最後に１００ｘｇで５分間回転させた。その後、５００μＬの細胞洗浄緩衝液中で細胞を再撹拌した。その後、１００ｎＭのカルセインＡＭ（分子プローブ）および１００ｎｇ／ｍｌのヨウ化プロピジウム（ＰＩ；Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）で染色して、生細胞集団を識別した。ＥＬＩＭＩＮａｓｅ（Ｄｅｃｏｎ Ｌａｂｓ）を用いて完全に清潔にし、かつ細胞選別のためにＡｃｃｕｄｒｏｐ蛍光ビーズ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を使用してキャリブレーションしたＢＤ ＦＡＣＳｃａｎフローサイトメーター（ＦＡＣＳＡｒｉａ ＩＩ）（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）に細胞を充填した。ＰＴＡを受ける細胞中の０．２％のＴｗｅｅｎ ２０（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）を有する、３μＬのＰＢＳ（Ｑｉａｇｅｎ， ＲＥＰＬＩ−ｇ ＳＣ Ｋｉｔ）を含有する９６ウェルプレートの各ウェル内で、カルセインＡＭ−陽性画分、ＰＩ−陰性画分からの単一細胞を選別した。複数のウェルを意図的に空のままにして、ノーテンプレートコントロール（ＮＴＣ）として使用した。選別の直後に、プレートを短時間遠心分離機にかけ、氷上に置いた。その後、細胞を−２０°Ｃで最低夜通し凍結した。次の日に、ＨＥＰＡ除菌空気の一定の陽圧を提供する、各実験前にＵＶ光で３０分間除染されたプレＰＣＲワークステーション上で、ＷＧＡ反応物を組み立てた。
増幅均一性を改善すると以前示された修正と共に、ＲＥＰＬＩ−ｇ単一細胞キット（Ｑｉａｇｅｎ）を使用して、ＭＤＡを行った。具体的に、エキソヌクレアーゼ耐性のランダムプライマー（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ）を、緩衝液Ｄ２（ＲＥＰＬＩ−ｇ単一細胞キット、Ｑｉａｇｅｎ）に加えて、緩衝液Ｄ２中の最終濃度を１２５μＭにした。４μＬの結果として生じる溶解／変性の混合物（ｍｉｘ）を、単一細胞を含有するチューブに加え、ボルテックスし、短時間回転させ、および氷上で１０分間インキュベートした。細胞溶解物を、３μＬの停止液（ＲＥＰＬＩ−ｇ単一細胞キット、Ｑｉａｇｅｎ）の添加により中和し、短時間遠心分離機にかけ、ボルテックスにより混合し、および、室温に静置した。続いて、４０μｌの増幅混合物を加えた後に、３０°Ｃで８時間インキュベートし、その後、３分間６５°Ｃに加熱することにより増幅を停止した。
最初に、５％のトリトンＸ−１００（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）と２０ｍｇ／ｍｌのプロテイナーゼＫ（Ｐｒｏｍｅｇａ）の１：１の混合物の２μｌの予め冷却した溶液を加えることによる凍結融解の後、細胞をさらに溶解することによって、ＰＴＡを実行した。その後、細胞をボルテックスし、短時間遠心分離機にかけた後に、４０度で１０分間静置した。その後、４μｌの緩衝液Ｄ２（ＲＥＰＬＩ−ｇ単一細胞キット、Ｑｉａｇｅｎ）および１μｌの５００μＭのエキソヌクレアーゼ耐性のランダムプライマーを、溶解した細胞に加えて、ボルテックス、回転、および６５度での１５分間の静置前に、ＤＮＡを変性した。その後、４μｌの室温の停止液（ＲＥＰＬＩ−ｇ単一細胞キット、Ｑｉａｇｅｎ）を加え、サンプルをボルテックスして遠心沈殿させた。最終増幅反応物中に１２００μＭの濃度の等比でα−チオ−ｄｄＮＴＰｓを含有した５６μｌの増幅混合物（ＲＥＰＬＩ−ｇ単一細胞キット、Ｑｉａｇｅｎ）。次に、サンプルを３０°Ｃで８時間静置し、その後、３分間６５°Ｃに加熱することにより増幅を停止した。
増幅工程後に、ＭＤＡとＰＴＡの反応物の両方からのＤＮＡを、ＡＭＰｕｒｅ ＸＰ磁気ビーズ（Ｂｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ）を使用して、ビーズ対サンプルの２：１の比率で精製し、および、メーカーの説明書（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）に従ってＱｕｂｉｔ３．０蛍光測定器を用いたＱｕｂｉｔ ｄｓＤＮＡ ＨＳアッセイキットを使用して、収率を測定した。
ライブラリ調製
ＭＤＡ反応物は、４０μｇの増幅されたＤＮＡの産生をもたらした。コンディショニング溶液（ＫＡＰＡ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）の添加後に、ＫＡＰＡ ＨｙｐｅｒＰｌｕｓプロトコルに従って、１μｇの産物を３０分間断片化した。その後、１５μＭのデュアルインデックスアダプター（Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ ＤＮＡ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）および４サイクルのＰＣＲによる標準的なライブラリ調製を、サンプルに行った。４０−６０ｎｇの材料で各ＰＴＡの反応物を生成し、この材料を、切断せずにＫＡＰＡ ＨｙｐｅｒＰｌｕｓキットを使用して、その全体をＤＮＡ配列決定ライブラリ調製に使用した。ＵＭＩおよびデュアル指標（ｄｕａｌ ｉｎｄｉｃｅｓ）（Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ ＤＮＡ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を有する２．５μＭのアダプターを、ライゲーションで使用し、および、１５サイクルのＰＣＲを最終増幅で使用した。その後、ライブラリを、右側と左側選択でそれぞれ０．６５Ｘと０．５５Ｘの比率を用いて、両側のＳＰＲＩを使用して清潔にした。Ｑｕｂｉｔ ｄｓＤＮＡ ＢＲアッセイキットおよび２１００のバイオアナライザ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を使用して、最終ライブラリを定量化した後、Ｉｌｌｕｍｉｎａ ＮｅｘｔＳｅｑプラットフォーム上で配列決定した。ＮｏｖａＳｅｑを含むすべてのＩｌｌｕｍｉｎａシーケンシングプラットフォームはさらに、プロトコルと適合する。
データ分析
配列決定リードを、Ｂｃｌ２ｆａｓｔｑを使用して、細胞バーコードに基づいて逆多重化した。その後、ｔｒｉｍｍｏｍａｔｉｃを使用して上記リードを整え、続いて、ＢＷＡを使用してｈｇ１９にアラインメントした。リードに対してＰｉｃａｒｄによる複製マーキング（ｄｕｐｌｉｃａｔｅ ｍａｒｋｉｎｇ）を行い、その後、ＧＡＴＫ ４．０を使用して、局所的再アラインメント（ｌｏｃａｌ ｒｅａｌｉｇｎｍｅｎｔ）およびベース再キャリブレーション（ｂａｓｅ ｒｅｃａｌｉｂｒａｔｉｏｎ）を行った。品質メトリクスを計算するために使用されるファイルすべてを、Ｐｉｃａｒｄ ＤｏｗｎＳａｍｐｌｅＳａｍを使用して、２０００万のリードにダウンサンプリングした。ｑｕａｌｉｍａｐ、ならびに、Ｐｉｃａｒｄ ＡｌｉｇｎｍｅｎｔＳｕｍｍａｒｙＭｅｔｒｉｃｓおよびＣｏｌｌｅｃｔＷｇｓＭｅｔｒｉｃｓを使用して、最終ｂａｍファイルから品質メトリクスを取得した。全ゲノムカバレッジをさらに、Ｐｒｅｓｅｑを使用して評価した。
変異コーリング
一塩基変異（ｓｉｎｇｌｅ ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｖａｒｉａｎｔｓ）およびインデルを、ＧＡＴＫ ４．０からのＧＡＴＫ ＵｎｉｆｉｅｄＧｅｎｏｔｙｐｅｒを使用してコールした。ＧＡＴＫベストプラクティスを使用する標準的なフィルタリング基準（ ｆｉｌｔｅｒｉｎｇ ｃｒｉｔｅｒｉａ）を、プロセスのすべての工程で使用した（「＜ｈｔｔｐｓ：／／ｓｏｆｔｗａｒｅ．ｂｒｏａｄｉｎｓｔｉｔｕｔｅ．ｏｒｇ／ｇａｔｋ／ｂｅｓｔ−ｐｒａｃｔｉｃｅｓ／＞」）。コピー数変異を、Ｃｏｎｔｒｏｌ−ＦＲＥＥＣ（Ｂｏｅｖａ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ， ２０１２， ２８（３）：４２３−５）を使用してコールした。構造変異も、ＣＲＥＳＴ（Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ Ｍｅｔｈｏｄｓ， ２０１１， ８（８）：６５２−４）を使用して検出した。
結果
図３Ａおよび図３Ｂで示されるように、ジデオキシヌクレオチド（「可逆的」）のみを用いた増幅のマッピング率とマッピング品質のスコアはそれぞれ、１５．０＋／−２．２および０．８＋／−０．０８であり、エキソヌクレアーゼ耐性のα−チオジデオキシヌクレオチドターミネーター（「不可逆的」）の取り込みはそれぞれ、９７．９＋／−０．６２および４６．３＋／−３．１８のマッピング率と品質のスコアを結果としてもたらした。可逆的ｄｄＮＴＰ、およびターミネーターの様々な濃度を使用して、実験をさらに実行した（図２Ａ、下）。
図２Ｂ−２Ｅは、ＭＤＡ（Ｄｏｎｇ， Ｘ． ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ Ｍｅｔｈｏｄｓ． ２０１７， １４（５）：４９１−４９３）あるいはＰＴＡを受けたＮＡ１２８７８ヒト単一細胞から生成された比較データを示す。どちらのプロトコルも、同等に低いＰＣＲ重複率（ＭＤＡ １．２６％＋／−０．５２対ＰＴＡ １．８４％＋／−０．９９）およびＧＣ％（ＭＤＡ ４２．０＋／−１．４７対ＰＴＡ ４０．３３＋／−０．４５）を生成したが、ＰＴＡはより小さなアンプリコンを産生した。ＭＤＡ（ぞれぞれ、ＰＴＡ ９７．９＋／−０．６２対ＭＤＡ ８２．１３＋／−０．６２およびＰＴＡ ４６．３＋／−３．１８対ＭＤＡ ４３．２＋／−４．２１）と比較して、マッピングされたリードのパーセントおよびマッピング品質のスコアも、ＰＴＡで大幅に高かった。全体的に、ＰＴＡは、ＭＤＡと比較して、より使いやすいマッピングされたデータを生成する。図４Ａは、ＭＤＡと比較して、ＰＴＡが増幅の均一性を有意に改善し、カバレッジ幅がより大きくなり、およびカバレッジが０に近い領域がより少なくなることを示す。ＰＴＡの使用により、全配列の≧０．０１％を構成する変異体を含む、核酸の集団中の低頻度の配列変異体を同定することができる。ＰＴＡは、単一細胞ゲノム増幅に成功裡に使用することができる。
実施例２：ＰＴＡの比較分析
ＰＴＡおよびＳＣＭＤＡの細胞維持ならびに単離のベンチマーク
１０００のゲノムプロジェクト対象ＮＡ１２８７８（Ｃｏｒｉｅｌｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ， Ｃａｍｄｅｎ， ＮＪ， ＵＳＡ）からのリンパ芽球様細胞を、１５％のＦＢＳ、２ｍＭのＬ−グルタミン、１００単位／ｍＬのペニシリン、１００μｇ／ｍＬのストレプトマイシン、および０．２５μｇ／ｍＬのアムホテリシンＢで補足されたＲＰＭＩ培地中で維持した。細胞を３．５×１０５細胞／ｍｌの密度で播種し、３日毎に分割した。それらを５％のＣＯ２で、３７°Ｃで、加湿型インキュベータ中で維持した。単一細胞の単離前に、前の３日にわたって増殖した細胞の懸濁液３ｍＬを、３００ｘｇで１０分間回転させた。ペレット状の細胞を、１ｍＬの細胞洗浄緩衝液（Ｍｇ２＋またはＣａ２＋を含まない２％のＦＢＳを含む１ＸＰＢＳ）で３回洗浄し、５分間３００ｘｇ、２００ｘｇ、および最後に１００ｘｇで順次回転させて、死細胞を除去した。その後、細胞を５００ｕＬの細胞洗浄緩衝液において再懸濁し、その後、１００ｎＭのカルセインＡＭおよび１００ｎｇ／ｍｌのヨウ化プロピジウム（ＰＩ）で染色して、生細胞集団を識別した。ＥＬＩＭＩＮａｓｅを用いて完全に清潔にされ、かつＡｃｃｕｄｒｏｐ蛍光ビーズを使用してキャリブレーションされたＢＤ ＦＡＣＳｃａｎフローサイトメーター（ＦＡＣＳＡｒｉａ ＩＩ）に細胞を充填した。０．２％のＴｗｅｅｎ ２０を有する３ｕＬのＰＢＳを含む９６ウェルプレートの各ウェルにおいて、カルセインＡＭ−陽性画分、ＰＩ−陰性画分からの単一細胞を選別した。複数のウェルを意図的に空のままにして、ノーテンプレートコントロールとして使用した。選別の直後に、プレートを短時間遠心分離機にかけ、氷上に置いた。その後、細胞を−８０°Ｃで最低夜通し凍結した。
ＰＴＡおよびＳＣＭＤＡの実験
ＨＥＰＡ除菌空気で一定の陽圧を提供する、各実験前にＵＶ光で３０分間除染されたプレＰＣＲワークステーション上で、ＷＧＡ反応物を組み立てた。公開されたプロトコル（Ｄｏｎｇ ｅｔ ａｌ． Ｎａｔ． Ｍｅｔｈ． ２０１７， １４， ４９１−４９３）に従ってＲＥＰＬＩ−ｇ単一細胞キットを使用して、ＳＣＭＤＡ方法に従ってＭＤＡを実行した。具体的には、エキソヌクレアーゼ耐性のランダムプライマーを、１２．５ｕＭの最終濃度で溶解緩衝液に加えた。４ｕＬの結果として生じる溶解の混合物を、単一細胞を含有するチューブに加え、３〜６回ピペッティングし、短時間回転させ、および氷上で１０分間インキュベートした。細胞溶解物を３ｕＬのクエンチング緩衝液の添加により中和して、３回のピペッティングにより混合し、短時間遠心分離機にかけ、氷上に置いた。続いて、４０ｕｌの増幅混合物を加えた後に、３０°Ｃで８時間インキュベートし、その後、３分間６５°Ｃに加熱することにより増幅を停止した。最初に、５％のトリトンＸ−１００および２０ｍｇ／ｍｌのプロテイナーゼＫの１：１の混合物の２μｌの予め冷却した溶液を加えることによる凍結融解の後、細胞をさらに溶解することによって、ＰＴＡを実行した。その後、細胞をボルテックスし、短時間遠心分離機にかけた後に、４０度で１０分間静置した。その後、４μｌの変性緩衝液および１μｌの５００μＭのエキソヌクレアーゼ耐性のランダムプライマーを溶解した細胞に加えて、ボルテックス、回転、および６５度での１５分間の静置の前に、ＤＮＡを変性した。その後、４μｌの室温のクエンチング溶液を加えて、サンプルをボルテックスして、遠心沈殿させた。最終増幅反応において、１２００μＭの濃度の等しい比率でα−チオ−ｄｄＮＴＰｓを含有していた５６μｌの増幅混合物。次に、サンプルを３０°Ｃで８時間静置し、その後、３分間６５°Ｃに加熱することにより増幅を停止した。ＳＣＭＤＡまたはＰＴＡの増幅後、ＤＮＡを、ＡＭＰｕｒｅ ＸＰ磁気ビーズを使用して、ビーズ対サンプルの２：１の比率で精製し、メーカーの説明書に従って、Ｑｕｂｉｔ ３．０蛍光測定器を用いたＱｕｂｉｔ ｄｓＤＮＡ ＨＳアッセイキットを使用して、収率を測定した。可逆的ｄｄＮＴＰｓおよびターミネーターの様々な濃度を使用して、ＰＴＡの実験をさらに実行した（図２Ａ、上）。
ライブラリ調製
１ｕｇのＳＣＭＤＡ産物を、コンディショニング溶液の添加後に、ＨｙｐｅｒＰｌｕｓプロトコルに従って３０分間断片化した。その後、１５ｕＭのユニークインデックスアダプターおよび４サイクルのＰＣＲによる標準的なライブラリ調製をサンプルに行った。各ＰＴＡの反応物の全産物を、切断せずにＫＡＰＡ ＨｙｐｅｒＰｌｕｓキットを使用して、ＤＮＡ配列決定ライブラリ調製に使用した。２．５ｕＭのユニーク・デュアル・インデックス・アダプターをライゲーションで使用し、１５サイクルのＰＣＲを最終増幅で使用した。その後、ＳＣＭＤＡおよびＰＴＡのライブラリを、１％のアガロースＥ−ゲルで可視化した。４００−７００ｂｐの断片をゲルから切除し、ゲルＤＮＡ回収キット（Ｇｅｌ ＤＮＡ Ｒｅｃｏｖｅｒｙ Ｋｉｔ）を使用して回収した。Ｑｕｂｉｔ ｄｓＤＮＡ ＢＲアッセイキットおよびＡｇｉｌｅｎｔ２１００のバイオアナライザを使用して、最終ライブラリを定量化した後、ＮｏｖａＳｅｑ ６０００上で配列決定した。
データ分析
データをｔｒｉｍｍｏｍａｔｉｃを使用して整え、続いて、ＢＷＡを使用してｈｇ１９にアラインメントした。リードに対してＰｉｃａｒｄによる複製マーキングを行い、その後、ＧＡＴＫ ３．５ベストプラクティスを使用して、局所的再アラインメントおよびベース再キャリブレーションを行った。Ｐｉｃａｒｄ ＤｏｗｎＳａｍｐｌｅＳａｍを使用して、すべてファイルを、指定された数のリードにダウンサンプリングした。ｑｕａｌｉｍａｐ、ならびに、Ｐｉｃａｒｄ ＡｌｉｇｎｍｅｎｔＭｅｔｒｉｃｓＡｕｍｍａｒｙおよびＣｏｌｌｅｃｔＷｇｓＭｅｔｒｉｃｓを使用して、最終ｂａｍファイルから品質メトリクスを取得した。ローレンツ曲線を描いて、ｈｔＳｅｑＴｏｏｌｓを使用してジニ係数を計算した。ＵｎｉｆｉｅｄＧｅｎｏｔｙｐｅｒを使用して、ＳＮＶコーリングを実施し、その後、それを、どれが標準的な推奨基準（ＱＤ ＜ ２．０ ｜｜ ＦＳ ＞ ６０．０ ｜｜ ＭＱ ＜ ４０．０ ｜｜ ＳＯＲ ＞ ４．０ ｜｜ ＭＱＲａｎｋＳｕｍ ＜ −１２．５ ｜｜ ＲｅａｄＰｏｓＲａｎｋＳｕｍ ＜ −８．０）を使用してフィルタリングした。分析から除外された領域はなく、他のデータの正規化や操作は実施されなかった。試験された方法のシーケンシングメトリックが、表１に示される。
Figure 2021511794
ゲノムカバレッジの幅および均一性
ＰＴＡ法と、すべての一般の単一細胞のＷＧＡ法との包括的な比較を実施した。これを遂行するために、ＰＴＡおよび、単一細胞ＭＤＡ（Ｄｏｎｇ ｅｔ ａｌ． Ｎａｔ． Ｍｅｔｈ． ２０１７， １４， ４９１−４９３）（ＳＣＭＤＡ）と呼ばれるＭＤＡの改良版を、１０のＮＡ１２８７８細胞それぞれで実施した。加えて、ＤＯＰ−ＰＣＲ （Ｚｈａｎｇ ｅｔ ａｌ． ＰＮＡＳ １９９２， ８９， ５８４７−５８５１）、ＭＤＡキット１（Ｄｅａｎ ｅｔ ａｌ． ＰＮＡＳ ２００２， ９９， ５２６１−５２６６）、ＭＤＡキット２、ＭＡＬＢＡＣ（Ｚｏｎｇ ｅｔ ａｌ． Ｓｃｉｅｎｃｅ ２０１２， ３３８， １６２２−１６２６）、ＬＩＡＮＴＩ（Ｃｈｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ ２０１７， ３５６， １８９−１９４）、あるいはＰｉｃｏＰｌｅｘ（Ｌａｎｇｍｏｒｅ， Ｐｈａｒｍａｃｏｇｅｎｏｍｉｃｓ ３， ５５７−５６０ （２００２））による増幅を受けた細胞に対するそれらの結果を、ＬＩＡＮＴＩ試験の一部として生成されたデータを使用して比較した。
サンプルにわたって正規化するために、すべてのサンプルからのデータを整列し、同じパイプラインを使用して変異コーリングのために前処理を行った。その後、ｂａｍファイルを、比較を行う前に３億のリードへとそれぞれサブサンプリングした。重要なことは、ＰＴＡおよびＳＣＭＤＡの産物を、さらなる分析を実施する前にスクリーニングしなかったが、他のすべての方法では、後の分析で使用された最高品質の細胞を選択する前に、ゲノムカバレッジおよび均一性のためのスクリーニングを行った。注目すべきことに、ＳＣＭＤＡおよびＰＴＡをバルク二倍体ＮＡ１２８７８サンプルと比較したが、他のすべての方法では、ＬＩＡＮＴＩ試験で使用されたバルクＢＪ１二倍体線維芽細胞と比較した。図３Ｃ−３Ｆに見られるように、ＰＴＡは、ゲノムにアライメントしたリードの最も高いパーセント、ならびに最も高いマッピング品質を有している。ＰＴＡ、ＬＩＡＮＴＩ、およびＳＣＭＤＡは類似したＧＣ含有量を有しており、それらのすべては他の方法よりも低かった。ＰＣＲ重複率はすべての方法にわたって同様であった。さらに、ＰＴＡ法より、ミトコンドリアゲノムなどのより小さな鋳型で、試験された他の方法と比較して、より高いカバレッジ率（より大きな基準染色体に類似する）を得ることができた（図３Ｇ）。
その後、すべての方法のカバレッジの幅および均一性を比較した。ＳＣＭＤＡとＰＴＡについての第１染色体にわたるカバレッジプロットの例が示され、ＰＴＡがカバレッジの均一性を有意に改善したことが示される（図４Ｂおよび４Ｃ）。その後、増加した数のリードを使用して、すべての方法についてカバレッジ率を計算した。ＰＴＡは、すべての深度で２つのバルクサンプルに近く、他のすべての方法よりも有意に改善されている（図５Ａ）。その後、我々は、カバレッジの均一性を測定するために２つの戦略を使用した。第１のアプローチは、増大する配列決定深度でのカバレッジの変動係数を計算することであり、ＰＴＡが他のすべての方法と比べてより均一であることが分かった（図５Ｂ）。第２の戦略は、各サブサンプリングされたｂａｍファイルについてローレンツ曲線を計算することであり、ＰＴＡが最も大きな均一性を有することが再び分かった（図５Ｃ）。増幅均一性の再現性を測定するために、ジニ係数を計算して、完全な均一性との各増幅反応の違いを評価した（ｄｅ Ｂｏｕｒｃｙ ｅｔ ａｌ．， ＰｌｏＳ ｏｎｅ ９， ｅ１０５５８５ （２０１４））。ＰＴＡは、他の方法よりも再現性が高い均一性を再び示した（図５Ｄ）。
ＳＮＶ感度
ＳＮＶコーリングに対する、増幅方法の性能のこれらの差の影響を判定するために、増大する配列決定深度での、対応するバルクサンプルに対する各々の変異コール率を比較した。感度を評価するために、各配列決定深度で各細胞において見られた６億５０００万のリードにサブサンプリングされた対応するバルクサンプルにおける、コールされた変異体のパーセントを比較した（図５Ｅ）。ＰＴＡの改善されたカバレッジおよび均一性は、次に最も敏感な方法であったＭＤＡキット２よりも４５．６％多い変異体の検出を結果としてもたらした。バルクサンプルにおいてヘテロ接合としてコールされた部位の検査は、ＰＴＡが、ヘテロ接合部位で対立遺伝子の歪みを有意に減少させたことを示した（図５Ｆ）。この発見は、ＰＴＡはゲノム全体でより均一な増幅を有するだけなく、同じ細胞中の２つの対立遺伝子をより平等に増幅するという主張を裏付ける。
ＳＮＶ特異性
変異コールの特異性を評価するために、対応するバルクサンプルで見られない各単一細胞中でコールされた変異体を偽陽性とみなした。ＳＣＭＤＡの低温溶解は、偽陽性変異コールの数を大幅に減少させた（図５Ｇ）。熱安定性ポリメラーゼ（ＭＡＬＢＡＣ、ＰｉｃｏＰｌｅｘ、およびＤＯＰ−ＰＣＲ）を使用する方法は、配列決定深度が増大するにつれてＳＮＶコーリングの特異性をさらに減少させた。理論によって縛られることなく、これは、ｐｈｉ２９ ＤＮＡポリメラーゼと比較して、それらのポリメラーゼのエラー率が大幅に増加した結果である可能性がある。加えて、偽陽性コール中で見られた塩基変化パターンも、ポリメラーゼ依存性であるように見える（図５Ｈ）。図５Ｇで見られるように、ＰＴＡの抑えられたエラー伝播のモデルは、標準的なＭＤＡプロトコルと比較した、ＰＴＡのより低い偽陽性ＳＮＶコーリング率によって裏付けられる。加えて、ＰＴＡは、偽陽性変異コールの最低の対立遺伝子頻度を有し、これも、ＰＴＡによる抑えられたエラー伝播のモデルと一致している（図５Ｉ）。
実施例３：環境変異原性の直接測定（ＤＭＥＭ）
ＰＴＡを使用して、高解像度のゲノムワイドヒト・トキシコゲノミクス試験を実施するためのフレームワークをもたらす、新規な変異誘発性アッセイを実施した。エイムズ試験などの以前の試験は、ヒト細胞を代表すると仮定される測定を行なうために細菌遺伝学に依存するが、各露出した細胞中で引き起こされた突然変異数およびパターンに関する制限された情報のみを提供する。これらの制限を克服するために、ヒト変異誘発系「環境変異原性（ＤＭＥＭ）の直接測定」が開発され、単一のヒト細胞を、環境化合物にさらし、単一細胞として単離し、および各細胞中で誘発された新しい突然変異を同定するために単一細胞シーケンシングを行う。
基部／前駆体マーカーＣＤ３４を発現する臍帯血細胞を、増加する濃度の直接変異原であるＮ−エチル−Ｎ−ニトロン尿素（ＥＮＵ）にさらした。ＥＮＵは比較的低いＳｗａｉｎ−Ｓｃｏｔｔ基質定数を有すると知られており、Ｏ４チミン、Ｏ２チミン、およびＯ２シトシンの優先的なアルキル化を結果としてもたらす２段階ＳＮ１メカニズムによって主に作用することが示された。標的遺伝子の制限された配列決定によって、ＥＮＵは、マウスにおけるＴからＡへの（ＡからＴへの）、ＴからＣへの（ＡからＧへの）、およびＣからＴへの（ＧからＡへの）の変化を優先することが示され、これは大腸菌で見られるパターンと大幅に異なる。
変異誘発性実験のための臍帯血細胞の単離および増殖
ＥＮＵ（ＣＡＳ ７５９−７３−９）およびＤ−マンニトール（ＣＡＳ ６９−６５−８）を、それらの最大の溶解度で溶液に入れた。新しい抗凝固剤で処理された臍帯血（ＣＢ）を、Ｓｔ． Ｌｏｕｉｓ Ｃｏｒｄ Ｂｌｏｏｄ Ｂａｎｋから得た。ＣＢをＰＢＳで１：２に希釈し、および、単核細胞（ＭＮＣ）を、メーカーの説明書に従って、Ｆｉｃｏｌｌ−Ｐａｑｕｅ Ｐｌｕｓ上で密度勾配遠心分離によって単離した。その後、ＣＤ３４を発現するＣＢ ＭＮＣを、メーカーに従って、ヒトＣＤ３４マイクロビーズキットおよび磁気細胞分離（ＭＡＣＳ）法を使用して、免疫磁気的（ｉｍｍｕｎｏｍａｇｎｅｔｉｃａｌｌｙ）に選択した。細胞数と生存率を、Ｌｕｎａ ＦＬ細胞計数装置を使用して評価した。１Ｘ ＣＤ３４＋Ｅｘｐａｎｓｉｏｎ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ、１００単位／ｍＬのペニシリン、および１００ｕｇ／ｍＬのストレプトマイシンで補足されたＳｔｅｍＳｐａｎ ＳＦＥＭにおいて、ＣＢ ＣＤ３４＋細胞を２．５ｘ１０４細胞／ｍＬの密度で播種し、変異原曝露に進める前に９６時間増やした。
環境変異原性の直接測定（ＤＭＥＭ）
増やした臍帯血ＣＤ３４＋細胞を、１Ｘ ＣＤ３４＋Ｅｘｐａｎｓｉｏｎ Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ、１００単位／ｍＬのペニシリン、および１００ｕｇ／ｍＬのストレプトマイシンで補足されたＳｔｅｍＳｐａｎ ＳＦＥＭにおいて培養した。その細胞を、８．５４、８５．４、および８５４ｕＭの濃度のＥＮＵ、１１５２．８のＤ−マンニトール、ならびに１１５２８ｕＭ、あるいは０．９％の塩化ナトリウム（ビヒクル対照）に４０時間さらした。薬剤で処理された細胞およびビヒクル対照サンプルからの単一細胞懸濁液を、採取して、上記のように生存率について染色した。上記のように、単一細胞選別を実施した。ＰＴＡを実施し、本明細書に記載される方法の一般的な方法および実施例２に従って、単純化および改善されたプロトコルを使用して、ライブラリを調製した。
ＤＭＥＭデータの分析
ＤＭＥＭ実験において細胞から獲得したデータを、Ｔｒｉｍｍｏｍａｔｉｃを使用して整えて、ＢＷＡを使用してＧＲＣｈ３８に整列し、推奨パラメータから逸脱することなくＧＡＴＫ ４．０．１ベストプラクティスを使用して、さらに処理した。ＨａｐｌｏｔｙｐｅＣａｌｌｅｒを使用して遺伝子型判定を実施し、標準的なパラメータを使用して、ジョイント遺伝子型を再びフィルタリングした。変異体は、少なくとも１００のＰｈｒｅｄ品質スコアを有しており、１つの細胞のみで見られるが、バルクサンプルで見られない場合のみ、変異原の結果であると考えられた。各ＳＮＶのトリヌクレオチドの文脈を、ｂｅｄｔｏｏｌｓを使用して、参照ゲノムから周囲の塩基を抽出することにより決定した。突然変異の計数および文脈を、Ｒにおいてｇｇｐｌｏｔ２ならびにｈｅａｔｍａｐ２を使用して可視化した。
突然変異が、ＣＤ３４＋細胞のＤＮａｓｅ Ｉ過感受性部位（ｈｙｐｅｒｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｓｉｔｅｓ）（ＤＨＳ）で濃縮されるか否かを決定するために、Ｒｏａｄｍａｐ Ｅｐｉｇｅｎｏｍｉｃｓ Ｐｒｏｊｅｃｔによって生成された１０のＣＤ３４＋初代細胞データセットのＤＨＳ部位と重複する、各サンプル中のＳＮＶの割合を計算した。ＤＨＳ部位を、いずれかの方向に２つのヌクレオソーム、あるいは３４０の塩基だけ延長した。各ＤＨＳデータセットを単一細胞サンプルとペアにし、ＤＨＳと重複した細胞中で少なくとも１０ｘカバレッジを有するヒトゲノムの割合を決定し、それを、覆われたＤＨＳ部位内で見られたＳＮＶの割合と比較した。
結果
これらの試験と一致して、各細胞の突然変異数の用量依存性増加が観察され、マンニトールのビヒクル対照あるいは中毒量のいずれかと比較して、類似する数の突然変異がＥＮＵの最低用量で検出された（図１２Ａ）。ＥＮＵを使用したマウスにおける前の研究とも一致して、最も一般的な突然変異は、ＴからＡ（ＡからＴ）、ＴからＣ（ＡからＧ）、およびＣからＴ（ＧからＡ）である。ＣからＧ（ＧからＣ）へのトランスバージョンは稀のようだが、他の３つの型の塩基変化も観察された（図１２Ｂ）。ＳＮＶのトリヌクレオチド文脈の調査は、２つの異なるパターンを示す（図１２Ｃ）。第１のパターンは、グアニンがシトシンに続く場合、シトシン変異誘発が稀に現れるというものである。グアニンが続くシトシンは、ヒトゲノム中の５番目の炭素部位で一般的にメチル化され、これは、ヘテロクロマチンのマーカーである。理論によって縛られることなく、ヘテロクロマチンへの到達しにくさゆえに、あるいは、シトシンと比較して５−メチルシトシンとの好ましくない反応条件の結果として、５−メチルシトシンがＥＮＵによるアルキル化を受けないという仮説が立てられた。前の仮説を試験するために、突然変異部位の位置を、Ｒｏａｄｍａｐ Ｅｐｉｇｅｎｏｍｉｃｓ Ｐｒｏｊｅｃｔによってカタログ化されたＣＤ３４＋細胞の既知のＤＮａｓｅ Ｉ高感受性部位と比較した。図１２Ｄで見られるように、ＤＮａｓｅ Ｉ高感受性部位のシトシン変異（ｃｙｔｏｓｉｎｅ ｖａｒｉａｎｔｓ）の濃縮は観察されなかった。さらに、シトシンに制限された変異体の濃縮は、ＤＨ部位で観察されなかった（図１２Ｅ）。加えて、アデニンがチミンの前に存在する場所でほとんどのチミン変異が生じる。変異体のためのゲノム特徴のアノテーションは、ゲノム中のそれらの特徴のアノテーションとは大幅に異なっていなかった。（図１２Ｆ）
実施例４：超並列単一細胞ＤＮＡシーケンシング（Ｍａｓｓｉｖｅｌｙ Ｐａｒａｌｌｅｌ Ｓｉｎｇｌｅ−Ｃｅｌｌ ＤＮＡ Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ）
ＰＴＡを使用して、超並列ＤＮＡシーケンシングのためのプロトコルを確立する。初めに、細胞バーコードをランダムプライマーに加える。細胞バーコードにより導入された、増幅のいかなるバイアスも最小限に抑えるための２つの策略を使用した：１）ランダムプライマーのサイズの延長すること、および／または２）細胞バーコードが鋳型に結合するのを防ぐために、それ自体にループして戻るプライマーを作ること（図１０Ｂ）。一旦最適なプライマー戦略が確立されると、例えば、粘性液体でも高精度で２５ｎＬの容量までピペッティングできるＭｏｓｑｕｉｔｏ ＨＴＳリキッドハンドラーを使用して、最大３８４の選別された細胞を調整する（ｓｃａｌｅｄ）。このリキッドハンドラーはさらに、基準的な５０μＬの反応量の代わりに、１μＬのＰＴＡの反応を使用することにより、試薬コストをおよそ５０分の１に削減する。
増幅プロトコルは、細胞バーコードを有するプライマーを液滴に送達することにより、液滴に移行される。スプリットアンドプール（ｓｐｌｉｔ−ａｎｄ−ｐｏｏｌ）戦略を使用して作られたビーズなどの固体支持体が、随意に使用される。適切なビーズは、例えば、ＣｈｅｍＧｅｎｅｓから入手可能である。いくつかの例では、オリゴヌクレオチドは、ランダムプライマー、細胞バーコード、固有分子識別子、ならびに、ビーズおよび細胞が同じ液滴中に封入された後に、オリゴヌクレオチドを放出する切断可能な配列あるいはスペーサーを含む。このプロセス中に、液滴中の低いナノリットル量について、鋳型、プライマー、ｄＮＴＰ、α−チオ−ｄｄＮＴＰ、およびポリメラーゼの濃度が最適化される。いくつかの例では、最適化は、反応容量を増やすためにより大きな液滴の使用を含む。図９で見られるように、このプロセスは、細胞を溶解するために２つの連続反応、その後のＷＧＡを必要とする。溶解された細胞およびビーズを含有している第１の液滴を、増幅混合物を有する第２の液滴と組み合わせる。代替的に、あるいは組み合わせて、溶解の前にヒドロゲルビーズにおいて細胞を封入し、その後、両方のビーズを油滴に加えてもよい。Ｌａｎ， Ｆ． ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．， ２０１７， ３５：６４０−６４６を参照。
さらなる方法はマイクロウェルの使用を含み、それは、いくつかの例では、３”×２”のスライドガラスのサイズであるデバイス上の２０ピコリッターの反応チャンバにおいて、１４０，０００の単一細胞を補足する。液滴ベースの方法と同様に、これらのウェルは、細胞バーコードを含有しているビーズを細胞と組み合わせて、超並列処理を可能にする。Ｇｏｌｅ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．， ２０１３， ３１：１１２６−１１３２を参照。
実施例５：小児急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）へのＰＴＡの適用
ＥＴＶ６−ＲＵＮＸ１転座を抱える個々の白血病細胞の単一細胞エクソームシーケンシングを実施し、１細胞当たりおよそ２００のコーディング突然変異を測定し、それらのうちの２５のみが、その患者の標準的なバルクシーケンシングで検出されるのに十分な細胞中に存在した。その後、１細胞当たりの突然変異荷重を、このタイプの白血病の他の既知の特徴、例えば、複製に関連する突然変異率（１コーディング突然変異／３００の細胞分裂）、開始から診断までの時間（４．２年）、および診断の時点での個体群サイズ（１０００億の細胞）とともに取り込んで、その病気の進行のインシリコシミュレーションを作成した。小児ＡＬＬなどの遺伝学的に単純な癌であると思われたものでさえ、その患者の診断の時点で異なるコーディング突然変異プロファイルを有する概算３億３０００万のクローンが存在することが予想外に発見された。興味深いことには、図６Ｂで見られるように、５つの最も豊富なクローン（ボックスＣ）に対して１つのみが、標準的なバルクシーケンシングで検出され；少数の細胞からなり、したがって、臨床的に有意である可能性が低い何千万ものクローンが存在する（ボックスＡ）。したがって、細胞（ボックスＢ）の少なくとも０．０１％（１：１０，０００）を占めるクローンを検出することができるように（なぜなら、これが再発を引き起こす最も抵抗性の疾患が存在すると仮定される層であるため）、検出の感度の増強するための方法が提供される。
そのような大規模な集団遺伝的多様性を考慮すると、所与の患者内の処置に対して、より耐性があるクローンが存在すると仮定された。その仮説を試験するために、サンプルを培養液に入れて、標準的ＡＬＬ化学療法剤の増加する濃度に白血病細胞をさらす。図７で見られるように、対照サンプル、および低用量のアスパラギナーゼを受けるものにおいて、活性化するＫＲＡＳ突然変異を抱えるクローンは拡大し続けた。しかし、そのクローンは、プレドニゾロンおよびダウノルビシンに対してより敏感に反応することが分かったが、それらの薬剤による処置の後に、以前は検出不可能であった他のクローンを、より明確に検出することができた（図７、破線のボックス）。このアプローチは、処置されたサンプルのバルクシーケンシングも使用した。いくつかの例では、単一細胞ＤＮＡシーケンシングの使用により、拡大する集団の多様性およびクロノタイプを決定することができる。
ＡＬＬクロノタイプ薬剤感受性のカタログの作成
図８に示されるように、ＡＬＬクロノタイプ薬剤感受性のカタログを作るために、診断サンプルのアリコートを採取して、１０，０００の細胞の単一細胞配列決定を実施して、各クロノタイプの存在量を決定する。平行して、診断白血球細胞を、標準的なＡＬＬ薬剤（ビンクリスチン、ダウノルビシン、メルカプトプリン、プレドニゾロン、およびアスパラギナーゼ）、ならびに、標的とされた薬剤（イブルチニブ、ダサチニブ、およびルキソリチニブ）の群にインビトロでさらす。生細胞を選択して、単一細胞ＤＮＡシーケンシングを、１回の薬剤曝露当たり少なくとも２５００の細胞上で実施する。最後に、６週間の処置を終えた後の同じ患者の骨髄サンプルを、バルクシーケンシング試験のために確立されたプロトコルを使用して、生きている残存前白血病および白血病について選別する。その後、ＰＴＡを使用して、スケーラブルで、効率的で、費用対効果の高い様式で、何万もの細胞の単一細胞ＤＮＡシーケンシングを実施し、これにより以下の目的を達成する。
薬剤感受性のクロノタイプから薬剤感受性カタログまで
一旦シーケンシングデータが獲得されると、各細胞のクロノタイプが確立される。これを達成するために、変異体をコールしてクロノタイプを決定する。ＰＴＡを利用することによって、現在使用されるＷＧＡ法の間に導入される対立遺伝子欠落（ａｌｌｅｌｉｃ ｄｒｏｐｏｕｔ）およびカバレッジのバイアスが制限される。ＭＤＡを受けた単一細胞から変異体をコールするためのツールの体系的比較を実施し、最近開発されたツールＭｏｎｏｖａｒは、最も高い感度および特異性を有することが分かった（Ｚａｆａｒ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｔｈｏｄｓ， ２０１６， １３：５０５−５０７）。一旦変異コールが行われると、対立遺伝子欠落により一部の変異コールが欠落しているにかかわらず、２つの細胞は同じクロノタイプを有しているかどうかが決定される。これを達成するために、多変量のＢｅｒｎｏｕｌｌｉ分布の混合モデルを使用してもよい（Ｇａｗａｄ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ２０１４， １１１（５０）：１７９４７−５２）。細胞が同じクロノタイプを有することが立証された後に、カタログに含める変異体を決定する。以下の基準のいずれかを満たす遺伝子が含まれる：１）大規模な小児の癌ゲノムシーケンシングプロジェクトで識別された既知の癌抑制遺伝子に生じる、突然変異のホットスポットまたは機能喪失型変異体（フレームシフト、ナンセンス、スプライシング）のいずれかで検出された非同義変異体であること；２）再発性の癌サンプル中で繰り返し検出される変異体であること；および、３）ＡＬＬ患者が６週間の処置を受けるため、残存病変の現在のバルクシーケンシング試験において正の選択を受ける再発性変異体であること。クローンは、これらの基準を満たす少なくとも２つの変異体を有しない場合、カタログに含まれない。処置抵抗あるいは疾患再発に関連したより多くの遺伝子が同定されると、クローンを「救出」し、カタログに含むことができる。クロノタイプが対照と薬剤処置の間の正または負の選択を受けたか否かを決定するために、フィッシャーの正確確率検定を使用して、対照とは有意に異なるクローンを同定する。突然変異の少なくとも２つの一致した組み合わせが特定の薬剤への暴露と同じ相関を有すると示される場合のみ、クローンをカタログに加える。癌遺伝子中の既知の活性化する突然変異あるいは同じ遺伝子中の腫瘍抑制因子中の機能喪失型突然変異は、クローン間で同等であると考えられる。クロノタイプが正確に一致していない場合、共通の突然変異をカタログに入れる。例えば、クロノタイプ１がＡ＋Ｂ＋Ｃであり、クロノタイプ２がＢ＋Ｃ＋Ｄである場合、Ｂ＋Ｃクロノタイプをカタログに入れる。限られた数の同時に生じる突然変異を有する耐性細胞中で繰り返し変異する遺伝子が同定される場合、それらのクローンは崩壊して、機能的に同等なクロノタイプになる可能性がある。
実施例６：ＰＴＡ法
変更を伴う実施例１の一般的な方法を使用して、ＰＴＡ法を実施する。１つの実施形態では、ターミネーターを標準的ｄＮＴＰと取り替えて、増幅中の伸長を遅くするために添加剤を使用する。別の実施形態では、ターミネーターを標準的なｄＮＴＰと取り替えて、伸長速度を遅くするために鎖置換ポリメラーゼを修飾する。別の実施形態では、ターミネーターを、伸長中に、標準的なヌクレオチドよりもゆっくりと取り込むｄＮＴＰ、あるいは、標準的ヌクレオチドを含む鋳型と比べて、取り込み後により遅い伸長反応を結果としてもたらすｄＮＴＰと取り替える。いくつかの例では、そのような低速取り込みのｄＮＴＰは、ヌクレアーゼ耐性である。
実施例７：ターミネーターを用いるヘアピンあるいはループ方法
サンプルを随意に溶解し（単一細胞など）、サンプル鋳型（標的核酸分子）ＤＮＡを、準ランダムプライミングおよび線形増幅にさらす。ターミネーターとｄＮＴＰの混合物を、準ランダムプライミング工程中に使用する。プライマーを、ヘアピン構造あるいはループ構造を生成するように設計し、これは、オリジナルサンプル鋳型ＤＮＡよりも、さらなる増幅に対する効率が低い鋳型である。これにより、オリジナルサンプル鋳型に由来するアンプリコンの割合がより高くなる。次に、アンプリコンのライブラリを、指数関数的増幅工程を用いてさらに増幅して、配列決定のためのライブラリを生成する。いくつかの例では、溶解、線形増幅、および指数関数的増幅は、同じ容器内で生じる。代替的に、あるいは組み合わせて、ターミネーターを指数関数的増幅工程で使用する。いくつかの例では、標準的なｄＮＴＰを線形増幅中に使用し、ターミネーターを指数関数的増幅工程中に使用する。ターミネーターの使用により、非ターミネーターヌクレオチドと比較して、非オリジナル鋳型増幅が減少する。
実施例８：ターミネーターを用いるレコンビナーゼポリメラーゼ増幅（ＲＰＡ）
サンプルを随意に溶解し（単一細胞など）、サンプル鋳型ＤＮＡを、レコンビナーゼ、一本鎖ＤＮＡ結合タンパク質、プライマー、ポリメラーゼ、およびターミネーターとｄＮＴＰの混合物を含む、ＲＰＡ反応混合物（例示的な手順の場合、Ｄａｈｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｃｌｉｎ． Ｃｈｅｍ． ２０１６， ６２（７）， ９４７−９５８）にさらす。例えば、レコンビナーゼはＲｅｃＡであり、一本鎖ＤＮＡ結合タンパク質はＳＳＢである。いくつかの例では、レコンビナーゼはＴ４ ＵｖｓＸであり、一本鎖ＤＮＡ結合タンパク質はＴ４ ｇｐ３２である。様々なポリメラーゼとしては、限定されないが、ＳａｕポリメラーゼあるいはＢｓｕポリメラーゼが挙げられる。いくつかの例では、追加の薬剤、例えば、ポリエチレングリコールまたはＣａｒｂｏｗａｘ２０Ｍを反応混合物に加える。いくつかの例では、逆転写酵素を加えて、ＲＮＡサンプル鋳型を増幅する。いくつかの例では、完全にあるいは部分的にランダム化されたプライマーを使用する。ＲＰＡによって生成されたアンプリコンは、追加の工程、例えば、アダプターへのライゲーション、指数関数的増幅、配列決定、あるいはその任意の組み合わせを随意に受ける。ターミネーターの使用により、非ターミネーターヌクレオチドと比較して、非オリジナルの鋳型増幅が減少する。
実施例９：ターミネーターを用いるヘリカーゼ依存性増幅（ＨＤＡ）
サンプルを随意に溶解し（単一細胞など）、サンプル鋳型ＤＮＡを、ヘリカーゼ、ポリメラーゼ、およびターミネーターとｄＮＴＰの混合物を含むＨＤＡ反応混合物（例示的な手順の場合、Ｙａｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｃｈｅｍｂｉｏｃｈｅｍ ２０１５， １６（９）， １３６５−１３７０）にさらす。例えば、ポリメラーゼはＢｓｔ２．０、ＧｓｐＭ、ＧｓｐＭ２．０、ＧｓｐＳＳＤ、あるいは他のポリメラーゼであり、ヘリカーゼは、好熱性ヘリカーゼ、Ｔｔｅ−ＵｖｒＤ、あるいは他のヘリカーゼである。いくつかの例では、追加の一本鎖ＤＮＡ結合タンパク質を加える。いくつかの例では、逆転写酵素を加えてＲＮＡサンプル鋳型を増幅する。いくつかの例では、完全にあるいは部分的にランダム化されたプライマーを使用する。ＨＤＡによって生成されたアンプリコンは、追加の工程、例えば、アダプターへのライゲーション、指数関数的増幅、配列決定、あるいはその任意の組み合わせを随意に受ける。ターミネーターの使用により、非ターミネーターヌクレオチドと比較して、非オリジナルの鋳型増幅が減少する。
本発明の好ましい実施形態が本明細書で示され、記載されてきたが、こうした実施形態がほんの一例として提供されているに過ぎないということは当業者にとって明白である。当業者であれば、多くの変更、変化、および置換が、本発明から逸脱することなく思いつくだろう。本明細書に記載される本発明の実施形態の様々な代案が、本発明の実施において利用され得ることを理解されたい。以下の請求項は本発明の範囲を定義するものであり、この請求項とその均等物の範囲内の方法、および構造体がそれによって包含されるものであるということが意図されている。

Claims (138)

  1. 組成物であって、前記組成物は：
    少なくとも１つの標的核酸分子およびアンプリコンライブラリを含み、
    ここで、
    アンプリコンライブラリは、少なくとも１つの標的核酸分子の増幅から得られた複数のポリヌクレオチドを含み、
    ポリヌクレオチドの少なくともいくつかは、ターミネーターヌクレオチドを含み、
    ポリヌクレオチドの少なくとも５％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである、
    組成物。
  2. ポリヌクレオチドの少なくとも１０％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである、請求項１に記載の組成物。
  3. ポリヌクレオチドの少なくとも１５％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである、請求項１または２に記載の組成物。
  4. ポリヌクレオチドの少なくとも２５％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである、請求項１−３のいずれか１つに記載の組成物。
  5. ポリヌクレオチドの少なくとも５０％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである、請求項１−４のいずれか１つに記載の組成物。
  6. ポリヌクレオチドの５〜５０％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである、請求項１に記載の組成物。
  7. ポリヌクレオチドの５〜２０％は、少なくとも１つの標的核酸分子の直接コピーである、請求項１に記載の組成物。
  8. ポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下が、少なくとも１つの標的核酸分子の配列の累積画分の少なくとも８０％の配列を含む、請求項１−７のいずれか１つに記載の組成物。
  9. 複数のポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下が、標的核酸配列の累積画分の少なくとも８５％の配列を含む、請求項１−８のいずれか１つに記載の組成物。
  10. 複数のポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下が、標的核酸配列の累積画分の少なくとも９０％の配列を含む、請求項１−９のいずれか１つに記載の組成物。
  11. アンプリコンライブラリが０．５以下のジニ係数を有する、請求項１−９のいずれか１つに記載の組成物。
  12. アンプリコンライブラリが０．４以下のジニ係数を有する、請求項１−９のいずれか１つに記載の組成物。
  13. 複数のポリヌクレオチドが約５０〜約２０００のヌクレオチド長さである、請求項１−１２のいずれか１つに記載の組成物。
  14. ポリヌクレオチドが約４００〜約６００のヌクレオチド長さである、請求項１−１３のいずれか１つに記載の組成物。
  15. ポリヌクレオチドの数は１００〜５０００である、請求項１−１４のいずれか１つに記載の組成物。
  16. ポリヌクレオチドの数は２５０〜１２５０である、請求項１−１４のいずれか１つに記載の組成物。
  17. ポリヌクレオチドの数は少なくとも１００である、請求項１−１４のいずれか１つに記載の組成物。
  18. ポリヌクレオチドの数は少なくとも５００である、請求項１−１４のいずれか１つに記載の組成物。
  19. ポリヌクレオチドの数は少なくとも１０００である、請求項１−１４のいずれか１つに記載の組成物。
  20. ポリヌクレオチドの少なくともいくつかはバーコードを含む、請求項１−１９のいずれか１つに記載の組成物。
  21. バーコードは細胞バーコードを含む、請求項１６に記載の組成物。
  22. バーコードはサンプルバーコードを含む、請求項１６または２１に記載の組成物。
  23. ポリヌクレオチドの少なくともいくつかは固有分子識別子を含む、請求項１−２２のいずれか１つに記載の組成物。
  24. 複数のポリヌクレオチドが、ゲノムを少なくとも部分的に表す配列を含む、請求項１−２３のいずれか１つに記載の組成物。
  25. 複数のポリヌクレオチドが、少なくとも２つのゲノムを少なくとも部分的に表す配列を含む、請求項１−２３のいずれか１つに記載の組成物。
  26. 複数のポリヌクレオチドがｃＤＮＡからの配列を含む、請求項１−２３のいずれか１つに記載の組成物。
  27. ポリヌクレオチドの少なくとも９０％がターミネーターヌクレオチドを含む、請求項１−２６のいずれか１つに記載の組成物。
  28. ポリヌクレオチドの少なくとも９８％がターミネーターヌクレオチドを含む、請求項１−２７のいずれか１つに記載の組成物。
  29. ターミネーターヌクレオチドが少なくともいくつかのポリヌクレオチドの３’末端に結合している、請求項１−２８のいずれか１つに記載の組成物。
  30. ターミネーターヌクレオチドは、α基への修飾を伴うヌクレオチド、Ｃ３スペーサーヌクレオチド、ロックド核酸（ＬＮＡ）、逆核酸、２’フルオロヌクレオチド、３’リン酸化ヌクレオチド、２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチド、およびトランス核酸からなる群から選択される、請求項１−２９のいずれか１つに記載の組成物。
  31. α基修への修飾を伴うヌクレオチドがα−チオジデオキシヌクレオチドである、請求項１−３０のいずれか１つに記載の組成物。
  32. ターミネーターヌクレオチドは、デオキシリボースの３’炭素のｒ基の修飾を含む、請求項１−３１のいずれか１つに記載の組成物。
  33. ターミネーターヌクレオチドは、３’ブロックされた可逆的ターミネーターを含有するヌクレオチド、３’ブロックされてない可逆的ターミネーターを含有するヌクレオチド、ターミネーターを含有する２’修飾のデオキシリボヌクレオチド、ターミネーターを含有する、窒素塩基への修飾を有するデオキシリボヌクレオチド、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項１−３２のいずれか１つに記載の組成物。
  34. ターミネーターヌクレオチドは、ジデオキシヌクレオチド、逆ジデオキシヌクレオチド、３’ビオチン化ヌクレオチド、３’アミノヌクレオチド、３’−リン酸化ヌクレオチド、３’−Ｏ−メチルヌクレオチド、３’Ｃ３スペーサーヌクレオチドを含む３’炭素スペーサーヌクレオチド、３’Ｃ１８ヌクレオチド、３’ヘキサンジオールスペーサーヌクレオチド、アシクロヌクレオチド、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項１−３２のいずれか１つに記載の組成物。
  35. 組成物は液滴中に含まれている、請求項１−３４のいずれか１つに記載の組成物。
  36. 組成物であって、前記組成物は：
    少なくとも１つの標的核酸分子およびアンプリコンライブラリを含み、
    ここで、
    アンプリコンライブラリは、少なくとも１つの標的核酸分子の増幅から得られた複数のポリヌクレオチドを含み、
    ポリヌクレオチドの少なくともいくつかは、ターミネーターヌクレオチドを含み、
    ポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下が、少なくとも１つの標的核酸分子の配列の累積画分の少なくとも８０％の配列を含む、
    組成物。
  37. 複数のポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下が、標的核酸配列の累積画分の少なくとも８５％の配列を含む、請求項３６に記載の組成物。
  38. 複数のポリヌクレオチドの累積画分の５０％以下が、標的核酸配列の累積画分の少なくとも９０％の配列を含む、請求項３６または３７に記載の組成物。
  39. 複数のポリヌクレオチドが約５０〜約２０００のヌクレオチド長さである、請求項３６−３８のいずれか１つに記載の組成物。
  40. ポリヌクレオチドが約４００〜約６００のヌクレオチド長さである、請求項３６−３９のいずれか１つに記載の組成物。
  41. ポリヌクレオチドの少なくともいくつかはバーコードを含む、請求項３６−４０のいずれか１つに記載の組成物。
  42. バーコードは細胞バーコードを含む、請求項４１に記載の組成物。
  43. バーコードはサンプルバーコードを含む、請求項４１または４２に記載の組成物。
  44. ポリヌクレオチドの少なくともいくつかは固有分子識別子を含む、請求項３６−４３のいずれか１つに記載の組成物。
  45. 複数のポリヌクレオチドが、ゲノムを少なくとも部分的に表す配列を含む、請求項３６−４４のいずれか１つに記載の組成物。
  46. 複数のポリヌクレオチドが、少なくとも２つのゲノムを少なくとも部分的に表す配列を含む、請求項３６−４４のいずれか１つに記載の組成物。
  47. 複数のポリヌクレオチドがｃＤＮＡからの配列を含む、請求項３６−４４のいずれか１つに記載の組成物。
  48. ポリヌクレオチドの少なくとも９０％はターミネーターヌクレオチドを含む、請求項３６−４７のいずれか１つに記載の組成物。
  49. ポリヌクレオチドの少なくとも９８％はターミネーターヌクレオチドを含む、請求項３６−４８のいずれか１つに記載の組成物。
  50. ターミネーターヌクレオチドが少なくともいくつかのポリヌクレオチドの３’末端に結合している、請求項３６−４９のいずれか１つに記載の組成物。
  51. ターミネーターヌクレオチドは、α基修への修飾を伴うヌクレオチド、Ｃ３スペーサーヌクレオチド、ロックド核酸（ＬＮＡ）、逆核酸、２’フルオロヌクレオチド、３’リン酸化ヌクレオチド、２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチド、およびトランス核酸からなる群から選択される、請求項３６−５０のいずれか１つに記載の組成物。
  52. α基修への修飾を伴うヌクレオチドは、α−チオジデオキシヌクレオチドである、請求項３６−５１のいずれか１つに記載の組成物。
  53. ターミネーターヌクレオチドは、デオキシリボースの３’炭素のｒ基の修飾を含む、請求項３６−５２のいずれか１つに記載の組成物。
  54. ターミネーターヌクレオチドは、３’ブロックされた可逆的ターミネーターを含有するヌクレオチド、可逆的ターミネーターを含有する３’ブロックされてないヌクレオチド、ターミネーターを含有する２’修飾のデオキシリボヌクレオチド、ターミネーターを含有する、窒素塩基への修飾を有するデオキシリボヌクレオチド、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項３６−５３のいずれか１つに記載の組成物。
  55. ターミネーターヌクレオチドは、ジデオキシヌクレオチド、逆ジデオキシヌクレオチド、３’ビオチン化ヌクレオチド、３’アミノヌクレオチド、３’−リン酸化ヌクレオチド、３’−Ｏ−メチルヌクレオチド、３’Ｃ３スペーサーヌクレオチドを含む３’炭素スペーサーヌクレオチド、３’Ｃ１８ヌクレオチド、３’ヘキサンジオールスペーサーヌクレオチド、アシクロヌクレオチド、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項３６−５３のいずれか１つに記載の組成物。
  56. 組成物は液滴中に含まれている、請求項３６−５４のいずれか１つに記載の組成物。
  57. 標的核酸分子を増幅する方法であって、前記方法は：
    ａ．標的核酸分子、少なくとも１つの増幅プライマー、少なくとも１つの核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物を含むサンプルを接触させる工程であって、ここで、ヌクレオチドの混合物は、ポリメラーゼによる核酸複製を停止する少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを含む、工程と、
    ｂ．複数の停止増幅産物を生成するために標的核酸分子を増幅する工程であって、ここで、複製は鎖置換複製により進行する、工程と、
    を含む、方法。
  58. 増幅は実質的に等温条件下で実施される、請求項３７に記載の方法。
  59. 温度が１０°Ｃ以下変動する条件下で増幅が実施される、請求項３７または５８に記載の方法。
  60. 温度が５°Ｃ以下変動する条件下で増幅が実施される、請求項３７−５９のいずれか１つに記載の方法。
  61. 核酸ポリメラーゼはＤＮＡポリメラーゼである、請求項３７−６０のいずれか１つに記載の方法。
  62. ＤＮＡポリメラーゼは鎖置換ＤＮＡポリメラーゼである、請求項６１に記載の方法。
  63. 核酸ポリメラーゼは、バクテリオファージｐｈｉ２９（Φ２９）ポリメラーゼ、遺伝子改変ｐｈｉ２９（Φ２９）ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノウ断片、ファージＭ２ ＤＮＡポリメラーゼ、ファージｐｈｉＰＲＤ１ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｔ ラージフラグメントＤＮＡポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｓｔポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｃａ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、ＩｓｏＰｏｌ ＤＮＡポリメラーゼ、ＤＮＡポリメラーゼＩ、Ｔｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ５ ＤＮＡポリメラーゼ、シーケナーゼ、Ｔ７ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ７−シーケナーゼ、あるいはＴ４ ＤＮＡポリメラーゼである、請求項３７−６２のいずれか１つに記載の方法。
  64. 核酸ポリメラーゼは３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を含み、および、少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドは、３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を阻害する、請求項３７−６３のいずれか１つに記載の方法。
  65. 核酸ポリメラーゼは３’−＞５’エキソヌクレアーゼ活性を含まない、請求項３７−６３のいずれか１つに記載の方法。
  66. ポリメラーゼは、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｓｔポリメラーゼ、ｅｘｏ（−）Ｂｃａ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｂｓｕ ＤＮＡポリメラーゼ、ＶｅｎｔＲ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、クレノウ断片（ｅｘｏ−）ＤＮＡポリメラーゼ、あるいはＴｈｅｒｍｉｎａｔｏｒ ＤＮＡポリメラーゼである、請求項３７−６３のいずれか１つに記載の方法。
  67. 少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドは、デオキシリボースの３’炭素のｒ基の修飾を含む、請求項３７−６６のいずれか１つに記載の方法。
  68. 少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドは、可逆的ターミネーターを含有する３’ブロックされたヌクレオチド、可逆的ターミネーターを含有する３’ブロックされてないヌクレオチド、ターミネーターを含有する２’修飾のデオキシリボヌクレオチド、ターミネーターを含有する、窒素塩基への修飾を有するデオキシリボヌクレオチド、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項３７−６７のいずれか１つに記載の方法。
  69. 少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドは、ジデオキシヌクレオチド、逆ジデオキシヌクレオチド、３’ビオチン化ヌクレオチド、３’アミノヌクレオチド、３’−リン酸化ヌクレオチド、３’−Ｏ−メチルヌクレオチド、３’Ｃ３スペーサーヌクレオチドを含む３’炭素スペーサーヌクレオチド、３’Ｃ１８ヌクレオチド、３’ヘキサンジオールスペーサーヌクレオチド、アシクロヌクレオチド、およびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項３７−６８のいずれか１つに記載の方法。
  70. 少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドは、α基修への修飾を伴うヌクレオチド、Ｃ３スペーサーヌクレオチド、ロックド核酸（ＬＮＡ）、逆核酸、２’フルオロヌクレオチド、３’リン酸化ヌクレオチド、２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチド、およびトランス核酸からなる群から選択される、請求項３７−６９のいずれか１つに記載の方法。
  71. α基修への修飾を伴うヌクレオチドは、α−チオジデオキシヌクレオチドである、請求項３７−７０のいずれか１つに記載の方法。
  72. 増幅プライマーが４〜７０のヌクレオチド長さである、請求項３７−７１のいずれか１つに記載の方法。
  73. 少なくとも１つの増幅プライマーが４〜２０のヌクレオチド長さである、請求項３７−７２のいずれか１つに記載の方法。
  74. 少なくとも１つの増幅プライマーはランダム化された領域を含む、請求項３７−７３のいずれか１つに記載の方法。
  75. ランダム化された領域は４〜２０のヌクレオチド長さである、請求項７４に記載の方法。
  76. ランダム化された領域は８〜１５のヌクレオチド長さである、請求項７４または７５に記載の方法。
  77. 増幅産物は、約５０〜約２０００のヌクレオチド長さである、請求項３７−７６のいずれか１つに記載の方法。
  78. 増幅産物は、約２００〜約１０００のヌクレオチド長さである、請求項３７−７７のいずれか１つに記載の方法。
  79. 前記方法は、ＰＣＲを使用する追加の増幅工程をさらに含む、請求項３７−７８のいずれか１つに記載の方法。
  80. 標的核酸分子を配列決定する方法であって、前記方法は：
    ａ．標的核酸分子、少なくとも１つの増幅プライマー、少なくとも１つの核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物を含むサンプルを接触させる工程であって、ここで、ヌクレオチドの混合物は、ポリメラーゼによる核酸複製を停止する少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを含む、工程と、
    ｂ．複数の停止増幅産物を生成するために標的核酸分子を増幅する工程であって、ここで、複製は鎖置換複製により進行する、工程と、
    ｃ．停止増幅産物から少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを除去する工程と；
    ｄ．工程（ｃ）で得られた分子をアダプターに連結し、それにより、増幅産物のライブラリを生成する工程と；
    ｅ．増幅産物のライブラリを配列決定する工程と、
    を含む、方法。
  81. 末端およびＡテーリングを修復する工程をさらに含む、請求項８０に記載の方法。
  82. 標的核酸はＤＮＡである、請求項８０または８１のいずれか１つに記載の方法。
  83. ＤＮＡはｃＤＮＡである、請求項８２に記載の方法。
  84. ＤＮＡはゲノムＤＮＡである、請求項８２に記載の方法。
  85. 少なくとも１つの増幅プライマーは２つ以上のプライマーを含む、請求項８０−８４のいずれか１つに記載の方法。
  86. 少なくとも１つの増幅プライマーはランダムプライマーである、請求項８０−８５のいずれか１つに記載の方法。
  87. 少なくとも１つの増幅プライマーはバーコードを含む、請求項８０−８６のいずれか１つに記載の方法。
  88. バーコードは細胞バーコードを含む、請求項８７に記載の方法。
  89. バーコードはサンプルバーコードを含む、請求項８７または８８に記載の方法。
  90. 前記方法は、ＰＣＲを使用する追加の増幅工程をさらに含む、請求項８０−８９のいずれか１つに記載の方法。
  91. 増幅プライマーは固有分子識別子（ＵＭＩ）を含む、請求項８０−９０のいずれか１つに記載の方法。
  92. 前記方法は、最初のプライマーアニーリングの前に、標的核酸またはゲノムＤＮＡを変性させる工程をさらに含む、請求項８０−９１のいずれか１つに記載の方法。
  93. 変性はアルカリ性条件下で実施され、その後、中和される、請求項９２に記載の方法。
  94. サンプル、増幅プライマー、核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物が、マイクロ流体デバイスに含有されている、請求項８０−９３のいずれか１つに記載の方法。
  95. サンプル、増幅プライマー、核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物が、液滴に含有されている、請求項８０−９４のいずれか１つに記載の方法。
  96. サンプルは、組織サンプル、細胞、生体液サンプル、骨髄サンプル、精液サンプル、生検サンプル、癌サンプル、腫瘍サンプル、細胞溶解サンプル、法医学サンプル、考古学サンプル、古生物学サンプル、感染サンプル、生成物サンプル、植物全体、植物部分、細菌叢サンプル、ウイルス調製物、土壌サンプル、海水サンプル、真水サンプル、家庭用あるいは工業用サンプル、およびそれらの組み合わせならびに分離物から選択される、請求項８０−９５のいずれか１つに記載の方法。
  97. 生体液は、血液、尿、唾液、リンパ液、脳脊髄液（ＣＳＦ）、羊水、胸膜液、心膜液、腹水、および眼房水から選択される、請求項９６に記載の方法。
  98. 単一細胞を配列決定する方法であって、前記方法は：
    ａ．単一細胞からの細胞溶解物を提供する工程と；
    ｂ．細胞溶解物を、少なくとも１つの増幅プライマー、少なくとも１つの核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物と接触させる工程であって、ここで、ヌクレオチドの混合物は、ポリメラーゼによる核酸複製を停止する少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを含む、工程と、
    ｃ．複数の停止増幅産物を生成するために、標的核酸分子を増幅する工程であって、ここで、複製は鎖置換複製により進行する、工程と；
    ｄ．停止増幅産物から少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを除去する工程と；ｅ．工程（ｄ）で得られた分子をアダプターに連結し、それにより、増幅産物のライブラリを生成する工程と；
    ｆ．増幅産物のライブラリを配列決定する工程と、
    を含む、方法。
  99. 細胞溶解にはタンパク質分解が伴う、請求項９８に記載の方法。
  100. サンプル、少なくとも１つの増幅プライマー、核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物が、マイクロ流体デバイスに含有されている、請求項９８または９９に記載の方法。
  101. サンプル、少なくとも１つの増幅プライマー、核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物が、液滴に含有されている、請求項９８−１００のいずれか１つに記載の方法。
  102. 少なくとも１つの増幅プライマーが固体支持体に結合される、請求項９８−１０１のいずれか１つに記載の方法。
  103. 固体支持体はビーズである、請求項１０２に記載の方法。
  104. 少なくとも１つの増幅プライマーは切断可能なリンカーによって固体支持体に結合される、請求項１０２または１０３に記載の方法。
  105. 少なくとも１つの増幅プライマーはバーコードを含む、請求項９８−１０４のいずれか１つに記載の方法。
  106. 前記方法は、増幅前に切断可能なリンカーを切断する工程をさらに含む、請求項１０４に記載の方法。
  107. 前記方法は、ＰＣＲを使用する追加の増幅工程をさらに含む、請求項９８−１０６のいずれか１つに記載の方法。
  108. 細胞は、動物細胞、植物細胞、真菌細胞、細菌細胞、および原生動物細胞から選択される、請求項９８−１０７のいずれか１つに記載の方法。
  109. 動物細胞はヒト細胞である、請求項１０８に記載の方法。
  110. 細胞は、着床前胚からの細胞、幹細胞、胎児細胞、腫瘍細胞、疑わしいい癌細胞、癌細胞、遺伝子編集手順を受けた細胞、病原体からの細胞、法医学サンプルから得られた細胞、考古学サンプルから得られた細胞、および古生物学サンプルから得られた細胞から選択される、請求項９８−１０９のいずれか１つに記載の方法。
  111. 着床前胚細胞が割球である、請求項１１０に記載の方法。
  112. 割球は、体外受精によって生成された８つの細胞期の胚から得られる、請求項１１１に記載の方法。
  113. 胚細胞中の疾患の素因となる生殖系列変異体あるいは体細胞変異体の存在を決定する工程をさらに含む、請求項１１０−１１２のいずれか１つに記載の方法。
  114. 病原体は、細菌、真菌、あるいは原生動物である、請求項１１０に記載の方法。
  115. 病原体から得られる細胞は、患者、細菌叢サンプル、あるいは留置医療機器から採取された流体から得られる、請求項１１４に記載の方法。
  116. 病原体の同一性を決定する工程をさらに含む、請求項１１４または１１５に記載の方法。
  117. 処置に対する病原体の耐性の原因となる遺伝子変異体の存在を決定する工程をさらに含む、請求項１１０−１１６のいずれか１つに記載の方法。
  118. 細胞は、腫瘍細胞、疑わしい癌細胞、あるいは癌細胞である、請求項９８−１１０のいずれか１つに記載の方法。
  119. １つ以上の診断変異あるいは予後変異の存在を決定する工程をさらに含む、請求項９８−１１０または１１８のいずれか１つに記載の方法。
  120. 処置に対する耐性の原因となる生殖系列変異体あるいは体細胞変異体の存在を決定する工程をさらに含む、請求項９８−１１０、１１８、または１１９のいずれか１つに記載の方法。
  121. 細胞は遺伝子編集手順を受けた細胞である、請求項９８−１１０のいずれか１つに記載の方法。
  122. 遺伝子編集プロセスによって引き起こされた計画外の突然変異の存在を決定する工程をさらに含む、請求項１２１に記載の方法。
  123. 細胞系統の履歴を決定する工程をさらに含む、請求項９８−１２２のいずれか１つに記載の方法。
  124. 低頻度の配列変異体を同定するための、請求項３７−１２３のいずれか１つに記載の方法の使用。
  125. 低頻度の配列変異体が全配列の≧０．０１％を構成する、請求項１２４に記載の使用。
  126. 低頻度の配列変異体が全配列の≧０．０５％を構成する、請求項１２４に記載の使用。
  127. 低頻度の配列変異体が全配列の≧０．１０％を構成する、請求項１２４に記載の使用。
  128. 環境条件の変異原性を決定する方法であって、前記方法は：
    ａ．環境条件に細胞をさらす工程と；
    ｂ．集団から単一細胞を単離する工程と；
    ｃ．単一細胞からの細胞溶解物を提供する工程と；
    ｄ．細胞溶解物を、少なくとも１つの増幅プライマー、少なくとも１つの核酸ポリメラーゼ、およびヌクレオチドの混合物と接触させる工程であって、ここで、ヌクレオチドの混合物は、ポリメラーゼによる核酸複製を停止する少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを含む、工程と、
    ｅ．複数の停止増幅産物を生成するために、標的核酸分子を増幅する工程であって、ここで、複製は鎖置換複製により進行する、工程と；
    ｆ．停止増幅産物から少なくとも１つのターミネーターヌクレオチドを除去する工程と；
    ｇ．工程（ｆ）で得られた分子をアダプターに連結し、それにより、増幅産物のライブラリを生成する工程と；
    ｈ．増幅産物のライブラリを配列決定する工程と、
    ｉ．突然変異を同定するために、増幅産物の配列を少なくとも１つの参照配列と比較する工程と、
    を含む、方法。
  129. 単一細胞はヒト細胞である、請求項１２８に記載の方法。
  130. 環境条件は化学物質を含む、請求項１２８または１２９に記載の方法。
  131. 環境条件は放射線を含む、請求項１２８または１２９に記載の方法。
  132. 環境条件は紫外線を含む、請求項１２８または１２９に記載の方法。
  133. 単一細胞は、肝臓、皮膚、腎臓、血液、あるいは肺に由来する、請求項１２８−１３２のいずれか１つに記載の方法。
  134. 増幅産物の少なくともいくつかはバーコードを含む、請求項１２８−１３３のいずれか１つに記載の方法。
  135. バーコードは細胞バーコードを含む、請求項１３４に記載の方法。
  136. バーコードはサンプルバーコードを含む、請求項１３４または１３５に記載の方法。
  137. 増幅プライマーの少なくともいくつかは固有分子識別子（ＵＭＩ）を含む、請求項１２８−１３６のいずれか１つに記載の方法。
  138. 前記方法は、ＰＣＲを使用する追加の増幅工程をさらに含む、請求項１２８−１３７のいずれか１つに記載の方法。
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