JP2020536545A - 抗炎症および抗凝固および器官保護特性を有する核酸分子 - Google Patents
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Abstract
Description
驚くべきことに、本明細書に記載されている核酸分子が予想外の抗炎症、抗凝固および器官保護特性を示すことが見出された。
・それらのヌクレオチドの1、2、3、4もしくは5個または少なくとも20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%もしくは少なくとも90%もしくは100%が、天然に存在する分子に存在する対応ヌクレオチドと比較して、欠失しており、または付加されている;および/あるいは
・それらのヌクレオチド、ヌクレオシド、核酸塩基、核酸塩基リンカー部分および/またはバックボーン部分の1、2、3、4もしくは5個または少なくとも20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%もしくは少なくとも90%もしくは100%が、天然に存在する分子に存在しない対応ヌクレオチド、ヌクレオシド、核酸塩基、核酸塩基リンカー部分および/またはバックボーン部分により置換または代替されている。
・それらのヌクレオチドの1、2、3、4もしくは5個または少なくとも20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%もしくは少なくとも90%もしくは100%が、天然に存在する分子に存在する対応ヌクレオチドと比較して、欠失しており、または付加されている;および/あるいは
・それらのヌクレオチド、ヌクレオシド、核酸塩基、核酸塩基リンカー部分および/またはバックボーン部分の1、2、3、4もしくは5個または少なくとも20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%もしくは少なくとも90%もしくは100%が、天然に存在する分子に存在しない対応ヌクレオチド、ヌクレオシド、核酸塩基、核酸塩基リンカー部分および/またはバックボーン部分により置換または代替されている。
・少なくとも、この疾患もしくは状態の症状が改善していること、および/または
・少なくとも、この疾患または状態に関連したパラメーターが改善していること
を意味しうる。該改善は、少なくとも1時間、2時間、3時間、4時間、5時間、6時間、7時間、8時間、9時間、10時間、11時間、12時間、16時間、18時間、20時間、22時間、24時間、28時間、32時間、36時間、40時間、44時間、48時間、52時間、56時間、60時間、64時間、68時間、72時間、78時間、82時間、86時間、90時間、94時間、4日間、5日間、6日間、7日間、10日間、1週間、1ヶ月間、6ヶ月間以上の治療中に測定されうる。炎症および/または凝固および/または器官の損傷もしくは不全に関連した好ましいパラメーターは本明細書に既に記載されている。
・抗炎症性サイトカイン、例えばIL−10の発現レベルの検出可能な増加、ならびに/または
・白血球の炎症性浸潤物の数の検出の減少、ならびに/または
・炎症促進性受容体、例えばMAC−1、P−セレクチン、EPCRおよび/またはCD36の発現の検出可能な減少、ならびに/または
・炎症促進性受容体、例えばL−セレクチン、CD35、CD88、ICAM−1および/またはPECAM−1の発現の検出可能な減少、ならびに/または
・陽性急性期タンパク質であるフィブリノーゲンの血清レベルの検出可能な減少、ならびに/または
・少なくとも1か月、数か月もしくはそれ以上の、患者の生存時間の延長(治療されていない者もしくは対照で治療された者と比較した場合、または治療の開始時の被験者と比較した場合)。
・トロンボモジュリンの検出可能な増加および/もしくはプロテインCの検出可能な増加および/もしくはPECAM−1の検出可能な増加が観察される、ならびに/または
・フィブリン塊密度および/もしくは出血時間の検出可能な減少が観察される、ならびに/または
・トロンビン形成の減少、ならびに/または
・Dダイマーの減少、ならびに/または
・ヘパラン硫酸の減少、ならびに/または
・少なくとも1時間、2時間、3時間、4時間、5時間、6時間、7時間、8時間、9時間、10時間、11時間、12時間、16時間、18時間、20時間、22時間、24時間、28時間、32時間、36時間、40時間、44時間、48時間、52時間、56時間、60時間、64時間、68時間、72時間、78時間、82時間、86時間、90時間、94時間、4日、5日、6日、7日、10日、1か月、数か月以上の、患者の生存時間の延長(治療されていない者もしくは対照で治療された者と比較した場合、または治療の開始時の被験者と比較した場合)、ならびに/または
・線溶活性の検出可能な増加(tPAの増加、PAI−1とtPAとの複合体の減少)、ならびに/または
・フィブリノーゲンの検出可能な減少。
(a)炎症に関連したパラメーター、例えば炎症促進性サイトカインのレベル、炎症促進性インテグリンのレベルおよび/もしくは炎症促進性浸潤物の数が減少している、ならびに/または
(b)凝固に関連したパラメーター、例えばフィブリン塊形成および/もしくはトロンビン濃度が減少している、ならびに/または
(c)器官の損傷もしくは不全に関連したパラメーター、例えばAST、ALT、GGT、ALP、LDH、クレアチンキナーゼ、BUN、アルブミン、クレアチニン、グルコース、胆汁酸、総ビリルビン、抱合型ビリルビン、リン、総タンパク質、LDLコレステロール、HDLコレステロール、コレステロールおよび/もしくはトリグリセリドが改善している。
(a)炎症に関連したパラメーター、例えば炎症促進性サイトカインのレベル、炎症促進性インテグリンのレベルおよび/もしくは炎症促進性浸潤物の数が減少している、ならびに/または
(b)凝固に関連したパラメーター、例えばフィブリン塊形成および/もしくはトロンビン濃度が減少している、ならびに/または
(c)器官の損傷もしくは不全に関連したパラメーター、例えばAST、ALT、GGT、ALP、LDH、クレアチンキナーゼ、BUN、アルブミン、クレアチニン、グルコース、胆汁酸、総ビリルビン、抱合型ビリルビン、リン、総タンパク質、LDLコレステロール、HDLコレステロール、コレステロールおよび/もしくはトリグリセリドが改善している、ならびに/または
(d)免疫刺激に関連したパラメーターが増加している。
核酸
「核酸」なる語は当技術分野でよく知られている。本明細書中で用いる「核酸」は、一般に、核酸塩基を含む、DNA、RNAまたはその誘導体もしくは類似体の分子(1以上の鎖)を意味する。核酸塩基は、例えば、DNAにおいて見出される天然に存在するプリンまたはピリミジン塩基(例えば、アデニン「A」、グアニン「G」、チミン「T」またはシトシン「C」)またはRNA(例えば、A、G、ウラシル「U」またはC)を含む。「核酸」なる語は、「オリゴヌクレオチド」および「ポリヌクレオチド」なる語を、それぞれ「核酸」なる語の下位概念として含む。
本明細書中で用いる「核酸塩基」は、例えば、少なくとも1つの天然に存在する核酸(すなわち、DNAおよびRNA)において見出される天然に存在する核酸塩基(すなわち、A、T、G、CまたはU)のような複素環式塩基、ならびにそのような核酸塩基の天然に存在する又は天然に存在しない誘導体および類似体を意味する。核酸塩基は、一般に、天然に存在する核酸塩基のペア形成(たとえば、AとTとの間、GとCとの間およびAとUとの間の水素結合)と置換しうる様態で、少なくとも1つの天然に存在する核酸塩基と1以上の水素結合(「アニール」または「ハイブリダイズ」)を形成しうる。
本明細書中で用いる「ヌクレオシド」は、核酸塩基リンカー部分に共有結合した核酸塩基を含む個々の化学的単位を意味する。「核酸塩基リンカー部分」の非限定的な一例としては、5個の炭素原子を含む糖(すなわち、「五炭糖」)が挙げられ、これらはデオキシリボース、リボース、アラビノース、または五炭糖の誘導体もしくは類似体を包含するが、これらに限定されるものではない。五炭糖の誘導体または類似体の非限定的な例には、2’−フルオロ−2’−デオキシリボース、または炭素が糖環において酸素原子で置換されている炭素環式糖が含まれる。
本明細書中で用いる「ヌクレオチド」は、「骨格部分」を更に含むヌクレオシドを意味する。骨格部分は、一般に、ヌクレオチドを、ヌクレオチドを含む別の分子または別のヌクレオチドに共有結合させて、核酸を形成する。天然に存在するヌクレオチドにおける「骨格部分」は、典型的には、五炭糖に共有結合しているリン部分を含む。骨格部分の結合は、典型的には、五炭糖の3’位または5’位のいずれかにおいて生じる。しかし、特に、ヌクレオチドが、天然に存在する五炭糖またはリン部分の誘導体または類似体を含む場合には、他のタイプの結合が当技術分野で公知である。
核酸は、天然に存在する核酸に存在しうる、核酸塩基、核酸塩基リンカー部分および/またはバックボーン部分の誘導体または類似体を含むことが可能であり、あるいは、完全にそれらから構成されることが可能である。核酸類似体を含有するRNAも本発明の方法に従い標識されうる。本明細書中で用いる「誘導体」は、天然に存在する分子の化学的に修飾または改変された形態を意味し、「模倣体」または「類似体」なる語は、天然に存在する分子または部分に構造的に類似していても類似していなくてもよいが、類似機能を有する。本明細書中で用いる「部分」は、一般に、より大きな化学構造または分子構造の、より小さな化学成分または分子成分を意味する。核酸塩基、ヌクレオシドおよびヌクレオチド類似体または誘導体は当技術分野でよく知られており、記載されている(例えば、参照により本明細書に組み入れるScheit,1980を参照されたい)。
細胞内で核酸を産生させるための組換え法は当業者によく知られている。これらは、標的細胞または単に宿主細胞(大量の所望のRNA分子を産生させるためのもの)でありうる細胞に核酸を送達するためのベクター、プラスミド、コスミドおよび他のビヒクルの使用を含む。あるいは、そのようなビヒクルは、RNA分子を産生させるための試薬が存在する限り、無細胞系の状況で使用されうる。そのような方法には、Sambrook,2003、Sambrook,2001およびSambrook,1989(これらを参照により本明細書に組み入れることとする)に記載されているものが含まれる。ある実施形態においては、本発明は、合成物ではない核酸分子に関する。幾つかの実施形態においては、核酸分子は、天然に存在する核酸の化学構造および天然に存在する核酸の配列を有する。組換え技術の使用に加えて、そのような非合成核酸は、例えば、オリゴヌクレオチドを作製するために使用される技術を用いることにより、化学的に産生されうる。
本発明の核酸分子が導入される細胞または該分子の存在が評価される細胞は任意の生物に由来し、または含有されうる。好ましくは、細胞は脊椎動物細胞である。より好ましくは、細胞は哺乳類細胞である。より一層好ましくは、細胞はヒト細胞である。哺乳類細胞は生殖系列または体細胞、全能性または多能性、分裂または非分裂、上皮、不死化または形質転換細胞などに由来しうる。細胞は未分化細胞、例えば幹細胞、または分化細胞、例えば器官もしくは組織の細胞からの分化細胞でありうる。あるいは、細胞は上皮細胞、脳、乳房、子宮頸部、結腸、胃腸管、心臓、腎臓、大腸、肝臓、肺、卵巣、膵臓、心臓、前立腺、膀胱、小腸、胃、精巣または子宮細胞として認められうる。
る。ある実施形態においては、生物は哺乳動物、ヒト、霊長類またはマウスでありうる。当業者は、前記宿主細胞の全てを維持し、それらの分裂を可能にして後代を形成させるために、前記宿主細胞の全てをインキュベートするための条件を更に理解するであろう。
本発明は、幾つかの実施形態においては、核酸を細胞に送達することを含む。これは治療用途の一部として行われうる。RNA分子は、ベクターに含まれる核酸分子によりコードされうる。「ベクター」なる語は、核酸配列が複製されうる細胞内への導入のために核酸配列が挿入されうる担体核酸分子を意味するものとして用いられる。核酸配列は「外因性」であることが可能であり、これは、ベクターが導入される細胞にとって核酸配列が外的であること、または該配列が、該細胞内の配列と相同であるが、該配列が通常は見出されない宿主細胞核酸内の位置に存在することを意味する。ベクターには、プラスミド、コスミド、ウイルス(バクテリオファージ、動物ウイルス、レンチウイルスおよび植物ウイルス)および人工染色体(例えば、YAC)が含まれる。当業者は、Sambrookら,1989およびAusubelら,1996(これらを共に参照により本明細書に組み入れることとする)に記載されている標準的な組換え技術によりベクターを構築するための十分な能力を有するであろう。修飾ゲロニンのような修飾ポリペプチドをコードすることに加えて、ベクターは、タグまたは標的化分子のような非修飾ポリペプチド配列をコードしうる。標的化分子は、所望の核酸を特定の器官、組織、細胞、または対象身体内の他の部位に導く分子である。
本発明の核酸分子は、組成物、好ましくは医薬組成物中に存在しうる。本発明の核酸分子は、本明細書に記載されている状態または疾患の治療のために、単独で、または組成物もしくは医薬組成物の形態で対象に投与されうる。医薬組成物は、薬学的に使用されうる製剤への該タンパク質の加工を容易にする1以上の生理的に許容される担体、希釈剤、賦形剤または補助剤を使用する通常の方法で製剤化(処方)されうる。適切な製剤は、選択される投与経路に左右される。局所投与の場合には、本発明のタンパク質は、当技術分野でよく知られているとおり、溶液(水剤)、ゲル剤、軟膏剤、クリーム剤、懸濁剤などとして製剤化されうる。全身用製剤には、注射、例えば皮下、静脈内、筋肉内、くも膜下腔内または腹腔内注射による投与のために設計されたもの、および経皮、経粘膜、吸入、経口または肺投与のために設計されたものが含まれる。注射の場合には、本発明の核酸は、水溶液、好ましくは生理的に許容されるバッファー、例えばハンクス溶液、リンガー溶液または生理緩衝食塩水中に製剤化されうる。溶液は、製剤化剤、例えば懸濁化剤、安定剤および/または分散剤を含有しうる。あるいは、核酸分子は、適切なビヒクル、例えば発熱物質非含有滅菌水での使用前の還元(再構成)のための粉末形態でありうる。経粘膜投与の場合には、浸透すべきバリア(障壁)に適した浸透剤が製剤において使用される。そのような浸透剤は当技術分野で一般に公知である。経口投与の場合には、核酸は、当技術分野でよく知られた薬学的に許容される担体と該分子とを一緒にすることによって容易に製剤化されうる。そのような担体は、治療される患者による経口摂取のために、錠剤、丸剤、糖衣錠、カプセル剤、液剤、ゲル剤、シロップ剤、スラリー、懸濁液などとして本発明の核酸が製剤化されることを可能にする。経口固形製剤、例えば散剤、カプセル剤および錠剤の場合には、適切な賦形剤には、充填剤、例えば糖類、例えばラクトース、スクロース、マンニトールおよびソルビトール;セルロース製剤、例えばトウモロコシデンプン、コムギデンプン、コメデンプン、ジャガイモデンプン、ゼラチン、トラガカントガム、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウムおよび/またはポリビニルピロリドン(PVP);造粒剤;および結合剤が含まれる。必要に応じて、崩壊剤、例えば架橋ポリビニルピロリドン、寒天またはアルギン酸もしくはその塩、例えばアルギン酸ナトリウムが添加されうる。必要に応じて、固形剤形は、標準的な技術を用いて糖衣または腸溶コーティングに付されうる。経口液体製剤、例えば懸濁剤、エリキシル剤および溶液の場合には、適切な担体、賦形剤または希釈剤には、水、グリコール、油、アルコールなどが含まれる。また、香味剤、保存剤、着色剤などが添加されうる。頬側投与の場合には、該分子は、通常の方法で製剤化された錠剤、ロゼンジ剤などの形態をとりうる。吸入による投与の場合には、本発明の使用のための分子は、適切な噴射剤、例えばジクロロジフルオロメタン、トリクロロフルオロメタン、ジクロロテトラフルオロエタン、二酸化炭素または他の適切なガスを使用して、加圧パックまたはネブライザーからのエアゾールスプレーの形態で簡便に送達される。加圧エアロゾルの場合には、投与単位は、一定量を送達するためのバルブを設けることによって決定されうる。吸入器または吹送器における使用のためのゼラチンのカプセル剤およびカートリッジは、該核酸とラクトースまたはデンプンのような適切な粉末基剤との粉末混合物を含有するように製剤化されうる。核酸分子は、例えば通常の坐剤基剤、例えばカカオバターまたは他のグリセリドを含有する、直腸または膣組成物、例えば坐剤または停留浣腸剤にも製剤化されうる。
本発明の分子は、一般に、意図される目的を達成するのに有効な量で使用される。疾患状態を治療または予防するための使用には、本発明の分子またはその医薬組成物は治療的有効量で投与または適用される。治療的有効量は、本明細書中に既に定められている炎症または凝固に関連した症状またはパラメーターを改善または予防し、あるいは治療されている患者の生存を延長させるのに有効な量である。治療的有効量の決定は、特に本明細書に記載されている詳細な開示を考慮すれば、当業者の能力の範囲に十分に含まれるものである。
好ましくは、本明細書に記載されている分子の治療的有効量は、実質的な毒性を引き起こすことなく治療的利益をもたらす。本明細書に記載されている分子の毒性は、細胞培養または実験動物における標準的な薬学的方法により、例えば、LD50(集団の50%に致死的な用量)またはLD100(集団の100%に致死的な用量)を決定することにより決定されうる。毒性効果と治療効果との用量比は治療指数である。高い治療指数を示すタンパク質が好ましい。これらの細胞培養アッセイおよび動物実験から得られたデータは、ヒトでの使用に関する無毒性の投与量範囲を定めるのに使用されうる。本明細書に記載されているタンパク質の投与量は、好ましくは、毒性をほとんど又は全く伴わない有効用量を含む循環濃度の範囲内である。投与量は、使用される剤形および用いられる投与経路に応じて、この範囲内で変動しうる。厳密な処方、投与経路および投与量は、患者の状態を考慮して、個々の医師により選択されうる(例えば、Finglら,1975,In:The Pharmacological Basis of Therapeutics,Ch.l,p.lを参照されたい)。
「ペンダント基(pendant group)」が該核酸に結合またはコンジュゲート化されうる。ペンダント基は核酸の細胞取り込みを増加させうる。ペンダント基は核酸の任意の部分に連結されうるが、通常、オリゴヌクレオチド鎖の末端に連結されうる。ペンダント基の例には、アクリジン誘導体(すなわち、2−メトキシ−6−クロロ−9−アンモアクリジン);架橋剤、例えばソラレン誘導体、アジドフェナシル、プロフラビンおよびアジドプロフラビン;人工エンドヌクレアーゼ;金属錯体、例えばEDTA−Fe(II)、o−フェナントロリン−Cu(I)およびポルフィリン−Fe(II);アルキル化部分;ヌクレアーゼ、例えばアミノ−1−ヘキサノールブドウ球菌ヌクレアーゼおよびアルカリホスファターゼ;ターミナルトランスフェラーゼ;アブザイム;コレステリル部分;親油性担体;ペプチドコンジュゲート;長鎖アルコール;リン酸エステル;アミノ;メルカプト基;放射性マーカー;非放射性マーカー、例えば染料;ならびにポリリジンまたは他のポリアミンが含まれるが、これらに限定されるものではない。一例においては、核酸は炭水化物、硫酸化炭水化物またはグリカンにコンジュゲート化される。
「配列同一性」は、本明細書においては、配列を比較することにより決定される、2以上の核酸(ヌクレオチド、ポリヌクレオチド、RNA、DNA)配列の間の関係として定義される。当技術分野においては、「同一性」は、場合によっては、そのような配列のストリング間の一致によって決定される、核酸配列間の配列関連性の度合をも意味する。「同一性」および「類似性」は公知方法によって容易に計算可能であり、これらの方法には、以下のものに記載されている方法が含まれる:Computational Molecular Biology,Lesk,A.M.編,Oxford University Press,New York,1988;Biocomputing:Informatics and Genome Projects,Smith,D.W.編,Academic Press,New York,1993;Computer Analysis of Sequence Data,Part I,Griffin,A.M.およびGriffin,H.G.編,Humana Press,New Jersey,1994;Sequence Analysis in Molecular Biology,von Heine,G.,Academic Press,1987;ならびにSequence Analysis Primer,Gribskov,M.およびDevereux,J.編,M Stockton Press,New York,1991;ならびにCarillo,H.およびLipman,D.,SIAM J.Applied Math.,48:1073(1988)。
研究1:配列番号2の抗凝固効果
実施例1:配列番号2の抗凝固活性
尾出血モデル
材料および方法
ラット
合計36匹のSprague−Dawley雄および雌ラットを使用し、1群6匹の動物を含む6つの群に分けた。動物の取り扱いは国立衛生研究所(National Institute of Health)および実験動物管理の評価認定協会(Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care)のガイドラインに従い行った。動物には市販のげっ歯類用の餌(Teklad Certified Global 18% Protein Diet cat #:2018SC)を自由に与えた。動物は、地方自治体の供給から得られた高圧蒸気滅菌された酸性化飲料水(pH2.5〜3.5)を自由に摂取できた。新鮮な空気の供給を伴う、空気が調節され濾過された標準的な実験室条件下に動物を収容した。気候制御環境で動物を飼育した。
配列番号2(Biospring)(100mg)を5mlの生理食塩水に溶解して、20mg/mlのストック溶液を得た。ビヒクル(生理食塩水)は、静脈内投与にそのまま使用可能な形態でPharmaseedから提供された。リバロキサバン(Bayer,Pharmaseed Ltd)投与溶液を10mg/kgに希釈した(群2M)。ワルファリン(Ceriliant,Pharmaseed Ltd)を0.5mg/kgに希釈した(群3M)。リバロキサバンおよびワルファリンは共に、抗凝固活性を有する臨床標準物である。静脈内注射のための2ml/kgの用量体積および5mg/kgの用量レベルのための配列番号2の投与溶液(2.5mg/ml)を得るために、0.375mlの前記20mg/mlストック溶液を2.625mlの生理食塩水で希釈した(群4M)。静脈内注射のための2ml/kgの用量体積および20mg/kgの用量レベルのための配列番号2の投与溶液(10mg/ml)を得るために、1.5mlの前記20mg/mlストック溶液を1.5mlの生理食塩水で希釈した(群5M)。静脈内注射のための2ml/kgの用量体積および40mg/kgの用量レベルのための配列番号2の投与溶液(20mg/ml)を得るために、前記20mg/mlストック溶液を使用した(群6)。
出血時間アッセイの5分前にラットに静脈内注射した。群当たりのラットの量を表1に示す。3つの処置群は5、20および40mg/kg生理食塩水の用量レベルで配列番号2の投与を受けた。各性別において、対照群は生理食塩水ビヒクルの投与を受けた。陽性対照群はリバロキサバン(10mg/kg)の投与を受けた。リバロキサバンは出血時間アッセイの1時間前に強制経口投与された。第2の陽性対照群はワルファリン(0.5mg/kg)の投与を受けた。
雄および雌のラットをケタミン/キシラジンの腹腔内注射により麻酔した。血流が完全に30秒の間隔の間停止するまで又は30分間の終了時まで、Stupnisekら(2012)に記載されているとおりに出血時間をモニターした。深く麻酔されたラット(腹這い位で配置)において、尾を先端から2mmの位置で外科用メスで横切し(そして40mlの生理食塩水を含有するチューブ内に立向姿勢で室温で浸漬し)、出血の持続時間および量を測定して、該物質または生理食塩水の投与の止血効果を評価した。出血時間の評価の完了後、全てのラットをCO2窒息により直ちに犠死させた。
数値結果を平均±標準誤差として示した。適用可能な場合には、一元配置分散分析およびそれに続くダネットの多重比較事後検定により統計分析を行った。5%の確率(p<0.05)は有意であるとみなされた。図面には、群間の統計的有意差の度合は*p<0.05、**p<0.01および***p<0.001として示されている。
3つの異なる用量で静脈内投与された配列番号2の抗血栓活性をラットで評価した。図1に示されているとおり、群平均出血時間は、対応ビヒクル群(1M)と比較して、雄(図1A)および雌(図1B)の両方で、全ての処置群において有意に増加した。陽性対照群(リバロキサバンおよびワルファリン)と、試験した配列番号2の全用量との間で、雄ラット(図1A)および雌ラット(図1B)の両方で、同等の出血時間が測定された。対応治療群における出血時間は雄ラットおよび雌ラットの両方で類似していた。配列番号2の用量反応効果は雄ラットでは観察可能であったが、雌ラットではそうではなかった。
動静脈シャントモデル
材料および方法
ラット
この研究はShanghai WuXi AppTec Co.,Ltd.において実施され、動物福祉法(Animal Welfare Act)、実験動物の管理および使用のための指針(Guide for the Care and Use of Laboratory Animals)ならびに実験動物福祉局(Office of Laboratory Animal Welfare (OLAW))に従うIACUCガイドラインと共にWuXi IACUC標準動物処置法に従い実施された。体重が150〜200gの範囲のSprague−Dawley雄ラット(Vital River;Bejing,P.R.China)にげっ歯類用の餌を自由に与えた。動物は、高圧蒸気滅菌された酸性化飲料水を自由に摂取できた。新鮮な空気の供給を伴う、空気が調節され濾過された標準的な実験室条件下に動物を収容した。気候制御環境で動物を飼育した。
リバロキサバン(10mg/kg)を水に溶解し、4℃で保存した。20mgの配列番号2(Biospring)を3mlの生理食塩水に溶解し、5分間ボルテックスし、水浴超音波で1分間超音波処理して、6.66mg/mlの配列番号2を得た。
動物を体重に応じて3つの投与群に割り当てた(表2を参照されたい)。シャントアッセイの90分前に生理食塩水をビヒクル処置動物に静脈内注射した。シャントアッセイの90分前にリバロキサバン10mg/kgを陽性対照処置動物に経口投与した。シャントアッセイの5分前に配列番号2を静脈内注射した。用量体積を表2に示す。
シャントアッセイの60分前にペントバルビタールナトリウム(ip、50mg/kg、20mg/ml、2.5ml/kg)でラットを麻酔した。左頸静脈と右総頸動脈とを分離し、6cmの長さの2つの生理食塩水充填PE−60カテーテルでカニューレ挿入した。ポリエチレンカテーテル(American Health and Medical Supply International Corp.)を、二重の糸へと折り重ねた長さ6cmの粗ナイロン糸(サイズ:3−0、重量3.5mg)を含有する8cmの長さのPE−160ポリエチレンチューブに接続した。体外循環を15分間維持し、糸上に形成された血栓の重量を、粗ナイロン糸の平均重量を差し引くことにより計算した。
血液サンプル(2ml)を頸動脈カテーテルから採取し、血栓を除去した直後に、1/10容量の3.2% クエン酸三ナトリウムを含有するプラスチックチューブ内に収集した。ついで、血漿収集のためにサンプルを4℃で7000rpmで10分間遠心分離した。BCS−XP凝固分析装置(Coagulation Analyzer)(Siemens Marburg,Germany)を該製造業者のプロトコルに従い使用して、Labmedicin Skaneにより、APTT分析用のサンプルを二重に分析した。使用した試薬はAPTT試薬アクチンFSL(Siemens,Marburg,Germany)および無菌0.9% NaClである。
EXCELオフィスソフトウェアにより分散分析(ANOVA)を行うことにより、対照群と治療群との間の差の有意性を分析した。0.05未満のP値を、統計的に有意であるとみなした。
図2Aに示されているとおり、配列番号2で処置されたラットは、ビヒクル群と比較して有意に低い血栓重量を示した(ビヒクル群より48.1%低い)。体外循環の90分前にリバロキサバンが投与された陽性対照群も、有意に減少した血栓を形成した(ビヒクル群より26.5%低い)。図2Bに示されているとおり、陽性対照リバロキサバンはプロトロンビン時間を有意に延長したが、配列番号2の群は、ビヒクル群と比較して、有意差を示さなかった。図2Cに示されているとおり、配列番号2で処置されたラットは活性化部分トロンボプラスチン時間(APTT)の有意な増加を示したが、陽性対照リバロキサバンは、ビヒクル群と比較して何らの差異も示さなかった。APTTに対する配列番号2のこれらの正の効果は、同等のエクスビボ研究により、マウス、イヌ、非ヒト霊長類およびヒトにおいて確認されている。
材料および方法
ラット
動物の取り扱いは国立衛生研究所(National Institute of Health)(NIH)および実験動物管理の評価認定協会(Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care)(AAALAC)のガイドラインに従い行った。合計36匹のSprague−Dawleyラット(Envigo RMS)を、1群6匹の動物(雄3匹および雌3匹)を含む6つの群に分けた。Sprague−Dawley雄ラットは研究開始時に350gの平均体重を有していた。雌ラットは243gの体重を有していた。どちらにも市販のげっ歯類用の餌を自由に与えた。動物は、高圧蒸気滅菌された酸性化飲料水を自由に摂取できた。新鮮な空気の供給を伴う、空気が調節され濾過された標準的な実験室条件下に動物を収容した。気候制御環境で動物を飼育した。
配列番号2(Biospring)(100mg)を5mlの生理食塩水に溶解して、20mg/mlのストック溶液を得た。ビヒクル(生理食塩水、Teva)は、静脈内投与にそのまま使用可能な形態であった。リバロキサバン(Bayer,Pharmaseed Ltd)投与溶液を10mg/kgに希釈した(群2M)。ワルファリン(Ceriliant,Pharmaseed Ltd)を0.5mg/kgに希釈した(群3M)。リバロキサバンおよびワルファリンは共に、抗凝固活性を有する臨床標準物である。静脈内注射のための2ml/kgの用量体積および5mg/kgの用量レベルのための配列番号2の投与溶液(2.5mg/ml)を得るために、0.375mlの前記20mg/mlストック溶液を2.625mlの生理食塩水で希釈した(群4M)。静脈内注射のための2ml/kgの用量体積および20mg/kgの用量レベルのための配列番号2の投与溶液(10mg/ml)を得るために、1.5mlの前記20mg/mlストック溶液を1.5mlの生理食塩水で希釈した(群5M)。静脈内注射のための2ml/kgの用量体積および40mg/kgの用量レベルのための配列番号2の投与溶液(20mg/ml)を得るために、前記20mg/mlストック溶液を使用した(群6)。
群当たり6匹のラット(雄3匹および雌3匹)をそれぞれが含む6つの群を研究に割り当てた。各性別において、雄ラット1匹と雌ラット1匹との対照群にビヒクルを静脈内(i.v.)注射した。塩化第二鉄アッセイの1時間前に、雄2匹と雌2匹との最初の陽性対照群をリバロキサバン(10mg/kg)で経口処置した。塩化第二鉄アッセイの5分前に、雄ラット3匹と雌ラット3匹とからなる第2の陽性対照群にワルファリン(0.5mg/kg)を静脈内注射した。最後に、塩化第二鉄アッセイの5分前に、3つの群(4−6Mおよび4−6Fからなる)に、配列番号2を5、20および40mg/kgの用量レベルで静脈注射した。
雄ラットおよび雌ラットをケタミン/キシラジンの腹腔内注射により麻酔した。動脈血栓形成を、Lee J.ら(2009)に記載されているとおりに行った。右頸動脈を分離し、迷走神経および周辺組織が除去されるように解剖した。50% 塩化第二鉄(FeCl3;w/v、蒸留水中)で飽和した2−mm2 ワットマン・グレード1(Whatman Grade 1)濾紙を右頸動脈上に10分間包むことにより、動脈血栓形成を誘発させた。閉塞が発生するのに必要な時間を最大60分間測定し、その時間内に閉塞した血管に関して、60分の値を閉塞時間に割り当てた。
FeCl3の塗布後60分間、血餅形成を追跡した。凝固時間の評価が完了した後、直ちにペンタールの過剰投与により全てのラットを犠死させた。動脈壁を縦方向に切断し、血餅を取り出し、秤量し、キャリパーにより測定した。
数値結果を平均±SEとして示した。適用可能な場合には、二元または一元配置分散分析およびそれに続くボンフェローニ事後検定により統計分析を行った。5%の確率(p<0.05)は有意であるとみなされた。図面には、群間の統計的有意差の度合は*p<0.05、**p<0.01および***p<0.001として示されている。
FeCl3の塗布後60分間、血餅形成を追跡した。血餅の重量(図3A)およびサイズ(図3B)の減少が、対照群(ビヒクル)と比較して、全ての処置群(陽性対照および配列番号2)において観察された。最低用量(5mg/kg)の配列番号2で処置された雄ラットは、リバロキサバン陽性対照および高用量の配列番号2と比較して、血餅のサイズ(図3B)および重量(図3A)において、統計的有意差を示した。
実施例4:C57BL/6マウスにおけるLPS注射後のサイトカイン放出に対する処置の効果
材料および方法
マウス
雌のC57BL/6マウス(Taconic Biosciences)は研究の開始時に8週齢であった。動物は、高圧蒸気滅菌された酸性化飲料水を自由に摂取できた。新鮮な空気の供給を伴う、空気が調節され濾過された標準的な実験室条件下に動物を収容した。気候制御環境で動物を飼育した。
配列番号2(Biospring)(100mg)を5mlの生理食塩水に溶解して20mg/mlのストック溶液を得た。ビヒクルは食塩水である。デキサメタゾンストックを、デキサメタゾンとベータ−シクロデキストリンとを4:96の比で混合することにより調製し、1mL当たり2mgのデキサメタゾンとなるようにPBS中に可溶化し、−20℃で保存した。デキサメタゾンの投与溶液を、該ストック溶液をPBSで1mg/mlに希釈することにより調製した。5〜10mg/kgで投与(i.p.)したデキサメタゾンを免疫応答の抑制に関する陽性対照として使用する。
LPS注射の2時間後、マウスから採血し、血清を分離して、ゲル血餅活性化因子(Gel Clot Activator)チューブ内のEDTAに加えた。少なくとも100μlを分析した。eBioscienceのルミネックス(Luminex)キットを該製造業者のプロトコルに従い使用して、血清中のIL−10、TNF、IL−6およびIL−1βの濃度を測定した。各サンプルにおいて1回の分析を行った。
配列番号2の抗炎症活性を測定するために、LPS刺激前にマウスを配列番号2で処置した。複数の炎症促進性サイトカイン(TNF、IL−6およびIL−1β)および抗炎症性サイトカインIL−10を処置マウスからの血清サンプルにおいて評価した。IL−10の血清濃度を図4Aに示す。ビヒクル群と比較して、配列番号2に関してIL−10の増加が見られ、25および50mg/kgで投与した群において、差が有意であった。図4B、4Cおよび4Dから、配列番号2を5mg/kgで投与した群はビヒクル群に類似した血清中サイトカイン濃度を有していたことが認められうる。配列番号2を25および50mg/kgで投与した群は、TNF、IL−6およびIL−1βの、より低い血清中濃度を有していたが、50mg/kgで投与した群におけるIL−1β濃度の減少のみがビヒクル群と比較して統計的に有意であった。
材料および方法
マウス
雌のC57BL/6マウス(Taconic Biosciences)は研究の開始時に8週齢であった。動物は、高圧蒸気滅菌された酸性化飲料水を自由に摂取できた。新鮮な空気の供給を伴う、空気が調節され濾過された標準的な実験室条件下に動物を収容した。気候制御環境で動物を飼育した。
配列番号2(Biospring)(100mg)を5mlの生理食塩水に溶解して20mg/mlのストック溶液を得た。ビヒクルは食塩水である。デキサメタゾンストックを、デキサメタゾンとベータ−シクロデキストリンとを4:96の比で混合することにより調製し、1mL当たり2mgのデキサメタゾンとなるようにPBS中に可溶化し、−20℃で保存した。デキサメタゾンの投与溶液を、該ストック溶液をPBSで1mg/mlに希釈することにより調製した。5〜10mg/kgで投与(i.p.)したデキサメタゾンを免疫応答の抑制に関する陽性対照として使用する。
LPS注射の2時間後、マウスから採血し、血液サンプルを採取した。フローサイトメトリー研究をBD FACSCalibur(レーザー:488nm、635nmおよびUV)で行った。本発明者らの研究においては、白血球上のインテグリンMac−1(CD11b/18)の発現をフローサイトメトリーにより測定した。全ての白血球単球および顆粒球上のCD11bの発現を、二重蛍光染色(CD45/CD11b)を使用するフローサイトメトリーにより評価した。
白血球におけるCD11b+ CD14+細胞の割合およびCD11bの発現を図5に示す。デキサメタゾン群は、ビヒクル群と比較して、CD11b+細胞上のCD11bの発現の有意な減少を示したが、白血球におけるCD11b+ CD14+細胞の、類似した割合を示した。配列番号2を5mg/kgで投与した群は、ビヒクル群と比較して、白血球における類似したCD11bの発現および類似した割合のCD11b+ CD14+細胞を示した。
材料および方法
マウス
この研究においては、10〜12週齢の雌のC57BL/6マウス(Taconic Biosciences)を使用した。動物は、高圧蒸気滅菌された酸性化飲料水を自由に摂取できた。新鮮な空気の供給を伴う、空気が調節され濾過された標準的な実験室条件下に動物を収容した。気候制御環境で動物を飼育した。
大腸菌(E.coli)(O111:B4)由来のリポ多糖(LPS)をPBS中で希釈した。配列番号2を、使用するまで、粉末形態で4℃で保存した。粉末を生理食塩水に加え、溶液へとボルテックスして、配列番号2のストック溶液を調製した。
表5に示されているとおりにマウスを処置した。20匹の対照マウスの1群にはリポ多糖を投与しなかった。全ての他の群では、LPSを10mg/kgで腹腔内注射した。LPS投与の15分後および60分後に、配列番号2を10、25、50および100mg/kgの濃度でマウスに静脈内注射した。ただし、群6においては、LPS投与の15分後に1回および120分後に1回、静脈内注射を行った。
高用量のLPSを投与すると、動物はLPS誘発性ショックを引き起こし、死亡が観察されうる。LPS注射後72時間、マウスの死亡を毎日数回確認した。全ての生存マウスを研究終了時(3日目)に安楽死させた。
図6Aおよび対応生存グラフ(図6B)に示されているとおり、25、50および100mg/kgで投与した配列番号2は、ビヒクル処置マウスと比較して、生存を有意に改善した。これらの知見は、配列番号2の静脈内投与がこの研究におけるLPS誘発性ショックの治療に有効であることを示唆している。
材料および方法
マウス
この研究においては、10〜12週齢の雌のC57BL/6マウス(Taconic Biosciences)を使用した。動物は、高圧蒸気滅菌された酸性化飲料水を自由に摂取できた。新鮮な空気の供給を伴う、空気が調節され濾過された標準的な実験室条件下に動物を収容した。気候制御環境で動物を飼育した。
大腸菌(E.coli)(O111:B4)由来のリポ多糖(LPS)をPBS中で希釈した。配列番号2を、使用するまで、粉末形態で4℃で保存した。粉末を生理食塩水に加え、溶液へとボルテックスして、配列番号2のストック溶液を調製した。
表6に示されているとおりにマウスを処置した。20匹の対照マウスの1群にはリポ多糖を投与しなかった。全ての他の群では、LPSを10mg/kgで腹腔内注射した。LPS投与の15分後および60分後に、配列番号2を10、25、50および100mg/kgの濃度でマウスに静脈内注射した。ただし、群7においては、LPS投与の15分後に1回および120分後に1回、静脈内注射を行った。
28時間の時点で収集された血液が、IDEXX Laboratories,Inc.(N.Grafton,MA)により実施された拡張毒物学パネルのために分析された。本発明者らは、各群に関してそれぞれ5回の分析を行うのに十分な血液を収集することを試みた。
拡張毒物学的分析はAST、ALT、クレアチンキナーゼ、アルブミン、総タンパク質、BUN、コレステロール、グルコース、リン、トリグリセリド、HDLコレステロール、胆汁酸、LDLコレステロール、総ビリルビン、GGT、抱合型ビリルビンおよびクレアチニンの濃度を測定した。ここでは、AST、ALT、クレアチンキナーゼ、アルブミン、総タンパク質、BUN、コレステロール、リン、トリグリセリド、コレステロールおよびクレアチニンの結果が示されている。
図7AはAST、ALT、クレアチンキナーゼ、BUNおよびリンの濃度を示す。これらは、以前のフック(Hooke)研究20170510−2(Aptahem研究APT1−17−PPD018)において有意な改善を示したアナライトであり、ALTおよびクレアチンキナーゼの改善は統計的有意性に達しなかったものの、この研究においても改善を示した。
材料および方法
マウス
この研究においては、10〜12週齢の雌のC57BL/6マウス(Taconic Biosciences)を使用した。動物は、高圧蒸気滅菌された酸性化飲料水を自由に摂取できた。新鮮な空気の供給を伴う、空気が調節され濾過された標準的な実験室条件下に動物を収容した。気候制御環境で動物を飼育した。
大腸菌(E.coli)(O111:B4)由来のリポ多糖(LPS)をPBS中で希釈した。配列番号2を、使用するまで、粉末形態で4℃で保存した。粉末を生理食塩水に加え、溶液へとボルテックスして、配列番号2のストック溶液を調製した。
表7に示されているとおりにマウスを処置した。20匹の対照マウスの1群にはリポ多糖を投与しなかった。全ての他の群では、LPSを10mg/kgで腹腔内注射した。LPS投与の15分後および60分後に、配列番号2を10、25、50および100mg/kgの濃度でマウスに静脈内注射した。ただし、群7においては、LPS投与の15分後に1回および120分後に1回、静脈内注射を行った。
28時間の時点で収集した血液が、IDEXX Laboratories,Inc.(N.Grafton,MA)により実施されたクエン酸血漿からのフィブリノーゲンおよびDダイマー分析のために分析された。Hook Laboratoriesは、各群に関してそれぞれ5回の分析を行うのに十分な血液を収集することを試みたが、1つの場合(群4のDダイマー用のクエン酸血漿)において、本発明者らは、分析を4回行うのに十分な血液しか収集できなかった。
図8はフィブリノーゲンおよびDダイマーの濃度を示す。配列番号2処置マウスとビヒクル処置マウスとの間で血漿中フィブリノーゲン濃度における有意差はなかった。血漿Dダイマー濃度は、100mg/kgの配列番号2で処置された群ならびに50mg/kgの配列番号2で60分および120分の時点で処置された群においては、ビヒクル処置群と比較して有意に低かった。
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Claims (10)
- 抗炎症および/または抗凝固および/または器官保護薬としての医薬としての使用のための核酸分子であって、該核酸分子が、配列番号1または2を含むヌクレオチド配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有するヌクレオチド配列により表される、核酸分子。
- (a)炎症に関連したパラメーター、例えば炎症促進性サイトカインのレベル、炎症促進性インテグリンのレベルおよび/もしくは炎症促進性浸潤物の数が減少している、ならびに/または
(b)凝固に関連したパラメーター、例えばフィブリン塊形成および/もしくはトロンビン濃度が減少している、ならびに/または
(c)器官の損傷もしくは不全に関連したパラメーター、例えばAST、ALT、GGT、ALP、LDH、クレアチンキナーゼ、BUN、アルブミン、クレアチニン、グルコース、胆汁酸、総ビリルビン、抱合型ビリルビン、リン、総タンパク質、LDLコレステロール、HDLコレステロール、コレステロールおよび/もしくはトリグリセリドが改善している、請求項1記載の使用のための核酸分子。 - 該使用が、炎症および/または凝固および/または器官の損傷もしくは不全が生じる疾患または状態を予防し、治療し、消失させ、治癒させ、および/または遅延させるための医薬としてのものであり、該核酸分子が、配列番号1または2を含むヌクレオチド配列に対して少なくとも95%の配列同一性を有するヌクレオチド配列により表される、請求項1記載の使用のための核酸分子。
- 該核酸分子が一本鎖である、および/またはこの核酸分子のヌクレオチドが、RNAに存在するヌクレオチドと比較して修飾されている、前記請求項のいずれか1項記載の使用のための核酸分子。
- 該核酸分子のピリミジンがフッ素化されており、好ましくは、該核酸分子の全ピリミジンがフッ素化されている、請求項4記載の使用のための核酸分子。
- 前記請求項のいずれか1項記載の使用のための、前記請求項のいずれか1項記載の核酸分子を含む組成物であって、該組成物が、好ましくは、医薬組成物であり、該医薬組成物が、薬学的に許容される担体、アジュバント、塩、希釈剤および/または賦形剤を含む、組成物。
- 静脈内投与のためのものである、前記請求項のいずれか1項記載の使用のための核酸分子または組成物。
- 個体において炎症および/または凝固および/または器官の損傷もしくは不全が生じる疾患または状態を予防し、治療し、消失させ、治癒させ、および/または遅延させるための医薬の製造のための、請求項1〜7のいずれか1項記載の核酸または組成物の使用。
- 個体において炎症および/または凝固および/または器官の損傷もしくは不全が生じる疾患または状態の1以上の症状および/または特徴を軽減するための、ならびに/あるいは該疾患または状態のパラメーターを改善するための方法であって、請求項1〜7のいずれか1項記載の核酸分子または組成物を該個体に投与することを含む方法。
- 炎症および/または凝固および/または器官の損傷もしくは不全が生じる疾患または状態が、急性冠症候群(ACS)、血栓症、末梢血管閉塞、閉塞性動脈硬化症、血管炎、心臓手術後に起こる機能障害、臓器移植に起因する合併症、狭心症、一過性虚血発作、妊娠中毒症(子癇前症、子癇)、糖尿病、肝静脈閉塞症(VOD)、深部静脈血栓症(DVT)、敗血症、敗血症性ショック、重症敗血症、外傷、急性呼吸窮迫症候群(ARDS)、播種性血管内凝固(DIC)、関節リウマチ(RA)、若年性関節リウマチ、乾癬、乾癬性関節炎、強直性脊椎炎、クローン病または潰瘍性大腸炎を含む炎症性腸疾患、肝炎、敗血症、アルコール性肝疾患、非アルコール性脂肪肝、サルコイドーシス、自己免疫性糖尿病、糖尿病、ブドウ膜炎、多発性硬化症、臓器移植後の同種移植拒絶反応の制御、移植片対宿主病(GVHD)、喘息および慢性閉塞性肺疾患(COPD)を含む炎症性肺疾患、全身性エリテマトーデス(SLE)、サルコイドーシス、アトピー性皮膚炎、癌、感染症、中毒、吸引症候群、低灌流またはショック、熱誘発性疾患、虚血、虚血再灌流傷害(IRI)、自己免疫疾患、出血、膵炎、菌血症、火傷、全身性炎症反応症候群(SIRS)および多臓器不全または多臓器不全症候群、あるいはこれらの疾患または状態の1つに関連した進行の合併症または影響から選択される、前記請求項のいずれか1項記載の使用のための核酸分子、使用のための組成物、使用または方法。
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EP17194536.3 | 2017-10-03 | ||
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