JP2019527562A - 長時間作用性pcsk9特異的結合タンパク質及びその応用 - Google Patents
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Abstract
Description
その重鎖可変領域のCDR1のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:7に示された;
その重鎖可変領域のCDR2のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:8又はSEQ ID NO:13に示された;
その重鎖可変領域のCDR3のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:9又はSEQ ID NO:14に示されたアミノ酸配列である;
その軽鎖可変領域のCDR1のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:10に示された;
その軽鎖可変領域のCDR2のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:11に示された;
その軽鎖可変領域のCDR3のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:12に示された。
(a)、その重鎖可変領域のCDR1、CDR2とCDR3のアミノ酸配列は、それぞれに、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:8、SEQ ID NO:9に示された;その軽鎖可変領域のCDR1、CDR2とCDR3のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12に示された;又は
(b)、その重鎖可変領域のCDR1、CDR2とCDR3のアミノ酸配列は、それぞれに、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:14に示された;その軽鎖可変領域のCDR1、CDR2とCDR3のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12に示されたものから選べられたものである。
別の好ましい例において、上記のIgG1 Fcは、変異体IgG1 Fcであり、QL変異(SEQ ID NO:30の融合配列と対応する場合に、相応な変異はT255Q/M433L)を有し、又はYTE変異(SEQ ID NO:32の融合配列と対応する場合に、相応な変異はM257Y/S259T/T261E)有する。
別の好ましい例において、上記の結合タンパク質MV072は、Fab、F(ab’)、F(ab’)2、Fv、dAb、Fd、相補性決定領域(CDR)断片、一本鎖抗体(scFv)、二価一本鎖抗体、一本鎖ファージ抗体、二重特異性二本鎖抗体、三重鎖抗体、四重鎖抗体である。
別の好ましい例において、上記の結合タンパク質MV072の重鎖可変領域と軽鎖可変領域は、それぞれにSEQ ID NO:2とSEQ ID NO:4に示されたアミノ酸配列を有し、又はそれぞれにSEQ ID NO:6とSEQ ID NO:4に示されたアミノ酸配列を有し、その重鎖定常領域は、IgGl、IgG2a、IgG2bとIgG3から選べられた一つの重鎖タイプの定常領域である;かつその軽鎖定常領域は、κ鎖とλ鎖から選べられた一つの軽鎖タイプの定常領域である;
本発明のもう一つは、上記のPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072をコードする核酸を提供する。
本発明のもう一つは、上記の発現ベクターを含む、或いはそのゲノムに上記の核酸が組み込まれた宿主細胞を提供する。
本発明のもう一つは、PCSK9発現又は活性障害に関連する疾患を治療及び/又は予防するためのキットを提供し、当該キットは、上記のPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072、又は上記の薬品組成物を含む。
本発明が、PCSK9と特異的に結合できる結合タンパク質MV072を提供できる。本発明の結合タンパク質MV072は、完整な免疫グロブリン分子であっても良く、抗原結合断片であっても良い、Fab断片、Fd断片、Fv断片、F(ab’)2断片、相補性決定領域(CDR)断片、一本鎖抗体(scFv)、ドメイン抗体、二価一本鎖抗体、一本鎖ファージ抗体、二重特異性二本鎖抗体、三重鎖抗体、四重鎖抗体等を含むが、それらに限定されない。
本発明の好ましい形態として、本発明の結合タンパク質MV072は、IgG Fcと融合したタンパク質であっても良い。よりましくは、上記のIgG1 Fcは、変異体IgG1 Fcであって、T255Q/M433L変異又はM257Y/S259T/T261E変異を有する。発明者らが、酸性条件において、このように改造されて得た結合タンパク質と、抗体の回収と再利用を担当するFcRnとの結合は、著しく向上する(EC50値が著しく低下する)ことを見出した;これは、当該IgG1 Fc変異のMV072結合タンパク質は、生体内にエンドソーム(Endosome)に分解されにくいことを予測した;その生体内の半減期が、もっと長くなりつつ、MV072結合タンパク質と抗原との結合能を持ちつづける。
本発明の結合分子は、PCSK9発現又は活性障害に関連する疾患を診断、治療及び/又は予防する薬品組成物の調製に用いられる。
本発明の結合分子の適当な投与量の範囲は、例えば、0.001−100mg/kg体重、好ましくは、0.01−15mg/kg体重である。また、例えば、一回の注射で投与しても良く、時間の経過とともに投与量を複数回に分けて投与しても良く、又は治療状況の緊急性に応じて、比例して投与量を低減又は増加しても良い。本発明の分子と組成物は、好ましくは無菌なものである。それらの分子と組成物を無菌化する方法は、本分野によく知られることである。診断、予防及び/又は治療に使用する他の分子は、本発明の結合分子と類似する投与方案で投与されても良い。単独で他の分子を投与すると、本発明の一つ又は複数の結合分子又は薬品組成物を投与する前、同時又は後に、患者に他の分子を投与しても良い。通常に、人患者に対する精確な投与方案は、臨床実験にわたって選べられる。
一方、本発明は、免疫抱合体を含み、すなわち本明細書に記載された少なくとも一つの結合タンパク質を含みつつ、少なくとも一つの機能性分子(例えば検出可能の部分/物質の分子)も含む。上記の抗体と、上記の機能性分子とは、共有連結、カップリング、付着、架橋等の方式で、抱合体を構成できる。本発明の免疫抱合体は、一つ以上のマーカーを含んでも良い。上記のマーカーが、共有結合を通じて、本発明の結合タンパク質と直接に結合/抱合しても良い。又は、上記のマーカーは、一つ又は複数の連結化合物を通じて、上記の結合タンパク質と結合/抱合しても良い。マーカーと結合タンパク質との結合技術は、当業者によく知られるものである。本発明の免疫抱合体のマーカーは、治療剤であっても良い。
本発明に記載された結合分子に基づき、便利、快速かつ正確に測定しようとするサンプルにおけるPCSK9レベルを検出する試剤又はキットを調製できる。
便利に検出するために、上記のキットには、本発明の結合分子を含み、又はPCSK9結合分子と検出可能なマーカーとが構成する免疫抱合体を含む以外に、さらに他の検出試剤又は補助試剤(発色剤、マーカー、二次抗体、抗‐抗体、増感剤など)を含んでも良く、上記の補助試剤は、例えばELISAキットに通常に使用された試剤であり、それらの試剤の特性及びそれらの調製方法は、いずれも当業者によく知られるものである。当業者が理解すべきのは、本発明の結合分子をPCSK9認識用試薬として利用する限り、各の変化形式の検出キットは、いずれも本発明に含まれる。
本発明が提供した結合分子及び/又はキットを得た後に、複数の免疫学関連方法で、サンプルにおけるPCSK9又はその含有量を検出でき、そして測定しようとするサンプルのドナーに、PCSK9発現又は活性障害に関連する疾患が存在するか否かを確定する。
PCSK9モノクローナル抗体の最適化とスクリーニング
要件を満たすPCSK9抗体を探すために、発明者らが、大量の研究とスクリーニングで、全てヒト由来ファージライブラリーから、二つの優れた性能を有するモノクローナル抗体を得た。それらの可変ドメインの核酸配列及びアミノ酸配列は、以下のとおりである:
1、モノクローナル抗体9M284
重鎖可変領域ヌクレオチド配列は、SEQ ID NO:1である。
重鎖可変領域アミノ酸配列は、SEQ ID NO:2である。
重鎖の各CDR領域アミノ酸配列:
HCDR1:AFTFDSFGMH(SEQ ID NO:7);
HCDR2:LLWSDGSGEYYADSAKG(SEQ ID NO:8);
HCDR3:AMGAIYYYYAMDV(SEQ ID NO:9)。
重鎖各CDR領域のヌクレオチド配列:
HCDR1:GCCTTCACCTTCGACAGCTTCGGCATGCAC(SEQ ID NO:15);
HCDR2:CTGCTTTGGAGCGACGGCTCCGGCGAGTACTACGCCGACTCCGCTAAGGGC(SEQ ID NO:16);
HCDR3:GCGATGGGCGCCATCTACTACTACTACGCCATGGACGTG(SEQ ID NO:17)。
軽鎖ヌクレオチド配列は、SEQ ID NO:3である。
軽鎖アミノ酸配列は、SEQ ID NO:4である。
軽鎖の各CDR領域アミノ酸配列:
LCDR1:TGTSSNIGNQFVS(SEQ ID NO:10);
LCDR2:EYNKRPS(SEQ ID NO:11);
LCDR3:GSWDSSLSGYV(SEQ ID NO:12)。
軽鎖の各CDR領域ヌクレオチド配列:
LCDR1:ACCGGCACCTCCTCCAACATCGGCAACCAATTCGTGTCC(SEQ ID NO:18);
LCDR2:GAGTACAACAAGCGGCCCTCC(SEQ ID NO:19);
LCDR3:GGCTCCTGGGACTCTTCCCTGTCCGGCTATGTG(SEQ ID NO:20)。
重鎖ヌクレオチド配列は、SEQ ID NO:5である。
重鎖アミノ酸配列は、SEQ ID NO:6である。
重鎖の各CDR領域アミノ酸配列:
HCDR1:AFTFDSFGMH(SEQ ID NO:7);
HCDR2:LLWSDGSDEYYADSAKG(SEQ ID NO:13);
HCDR3:ALGAIYSYYAMDV(SEQ ID NO:14)。
重鎖の各CDR領域ヌクレオチド配列:
HCDR1:GCCTTCACCTTCGACAGCTTCGGCATGCAC(SEQ ID NO:15);
HCDR2:CTGCTTTGGAGCGACGGCTCCGACGAGTACTACGCCGACTCCGCTAAGGGC(SEQ ID NO:21);
HCDR3:GCGTTGGGCGCGATCTACAGCTACTACGCCATGGACGTG(SEQ ID NO:22)。
トランスフェクションされた細胞でPCSK9モノクローナル抗体の調製
上記のモノクローナル抗体9M284の重鎖ヌクレオチド配列の両端に、HindIII/NotIサイトを添加し、pCDNA3.1+プラスミドの相応するサイトに挿入した;上記のモノクローナル抗体9M284の軽鎖ヌクレオチド配列の両端に、HindIII/NotIサイトを添加し、pCDNA3.1+プラスミドのの相応するサイトに挿入した。上記のモノクローナル抗体9M284を発現する組換えプラスミドを得た。
リポフェクション法で、上記の組換えプラスミドを、懸濁しているHEK293細胞に一過性トランスフェクションした。
培養された大量のトランスフェクション細胞を、二次遠心分離処理(一回目遠心分離の条件は10min、1000g;二回目遠心分離の条件は30min、10000g)を経て、細胞と細胞破片を除去し、上清を得た。澄んだ上清を、Protein Aアフィニティークロマトグラフィーカラムにロードし、三回のリンス(リンス緩衝液は、順にPB 150mM NaCl pH6.5;20mM Na−citrate 1M NaCl pH5.5;20mM Na−citrate pH5.5である)で不純物を除去し、その後、pHリニア勾配溶離方式(開始緩衝液A:20mM Na−citrate pH5.5;標的緩衝液B:20mM Na−citrate pH3.0)で、標的抗体を分離、捕獲した。最後、限外濾過濃縮ステップで、標的抗体を、200mM HEPE、100mM NaCl、50mM NaOAc pH7.0緩衝液に置換した。
構築された、9M284重鎖(SEQ ID NO:23、それが、SEQ ID NO:24のアミノ酸配列をコードし、リードペプチドを有しない)と、9M284軽鎖(SEQ ID NO:25、それが、SEQ ID NO:26のアミノ酸配列をコードし、リードペプチドを有しない)を有するプラスミド(合計量20μgのプラスミドDNA)を、1.0×107宿主細胞CHO−K1細胞に混ぜた;当該細胞とプラスミドとの混合液をエレクトロポレーター(Gene Pulser II)に入れ、電圧300V、静電容量950μFの指数関数的減衰波で、細胞とプラスミドとの混合液に対して、電気ショックコトランスフェクションを行った。電気トランスフェクションされた細胞とDNAとの混合液を、2mL宿主細胞基礎培地(EX−CELL(登録商標) Advanced(商標) CHO Fed−batch Medium、Sigma、6mMのL−glutamine、Sigmaを含む)を含む6ウェルプレートに加え、細胞を二酸化炭素インキュベーターに入れ、37°Cで24h培養し、その後、培地を、選択的成長培地(EX−CELL(登録商標) Advanced(商標) CHO Fed−batch Medium、Sigma;Puromycin、20μg/mL、GIBCOと6mM L−glutamine、Sigmaを含む)に変更し、約3週間にわたって、細胞生存性が90%以上に回復するまで圧力スクリーニングを行い、重鎖と軽鎖が組み込まれたCHO−K1ゲノムを含むPool細胞系を得た。細胞生存性が90%以上まで回復した時点に、125 mL シェイクボトルにFed−batch培養を行い、培養体積は30 mLであり、開始細胞濃度は0.3×106/mLであった。3日目、5日目、7日目、9日目、11日目と13日目にフィード培地(Ex−CELL Advanced CHO feed 1 (グルコースを含む)、Sigma)を補充し、かつ細胞密度と生存性をサンプリングテストし、グルコース濃度が3g/Lまで低下した時点に、グルコースを6 g/Lまで添加し、生存性が70%以下になる時点に、培養を終了し、かつ抗体濃度を検出した。
抗体濃度が比較に高いPool細胞を選択し、モノクローンのスクリーニングを行い、50−200個Pool細胞を含む細胞懸濁液を、10mL半固体培地(CloneMedia CHO Growth A (L−Glnを含む)、Molecular devices)と均一に混ぜた後に、100mmペトリ皿に播種し、37°C、5%CO2インキュベーターに14日培養し、中等大きさの細胞コロニーを選択し、200μL選択的培地を含む96ウェルプレートに転移し、4−5日培養し、細胞懸濁液を吹き付けて均一に混ぜて、2つの96ウェルプレートに平均に配って、かつそれぞれに新鮮な培地を、200μL培養体系まで補充し、その中、1つのプレートには、正常に液体交換・増幅を行い、液体交換・増幅際に、細胞懸濁液を吹き付けて均一に混ぜて、100μL培地を取って捨て、100μL新鮮な培地を補充し、これによって類推した;もう1つのプレートには、液体交換を行わないまま、10日連続に培養し、細胞の上清を採取し、ELISA検出を行った。OD値によって、細胞株を選択し、増幅とサブクローンスクリーニングを行った。最初のラウンドの半固体スクリーニングから得た好ましい細胞株を、0.5細胞/ウェルの密度で、96ウェルプレートに播種した。7日後、細胞を観察し、単一細胞クローンが、一定のスクリーニング規模に成長したまで、単一細胞集団だけ存在するウェルを、単一細胞ウェルとして選択した。96ウェルプレートの単一細胞ウェルにおける培養液(適切な希釈を行っても良い)を、コーティングされたELISAプレートに転移し、ELISAスクリーニング分析を行い、TOP 3単一細胞系までスクリーニングし、Fed−Batchで、発現量を確認した。
PCSK9モノクローナル抗体の生物的分析特性
1、キャピラリー電気泳動(CE−SDS)
LabChip GXIIシステムより、キャピラリー電気泳動を行い、抗体を分析した。結果として、還元と非還元条件において、本発明のPCSK9モノクローナル抗体サンプルのピーク純度百分比と分子量は、表1(非還元条件)と表2(還元条件)に示された。
モノクローナル抗体を、0.2μmフィルターで濾過し(Thomson、カタログ番号25535−100)、その後、MAbPac SEC−1カラム(Thermo、カタログ番号07469620)にロードした。移動相緩衝液は、50 mMリン酸ナトリウム、300 mM 塩化ナトリウムであり、pH 6.2、流速は0.2 ml/minである。ピーク計算はChemStationソフトウェアを使用して統合された。本発明のPCSK9モノクローナル抗体の主ピークおよびマルチマーピークの百分比は、表3に示された。
示差走査熱量測定法(DSC)は、追加する必要が有るサンプルと、基準物質との熱量の差を、温度の関数とする測量技術である。示差走査熱量測定法は、複数のタンパク質の特性(50%タンパク質が変性(TM)した際の温度/融解温度を含む)の測量に使用でき、これはタンパク質の安定性を評価する方法の一つである。
抗体のPCSK9と結合する特性
PCSK9モノクローナル抗体の、人、マウス又はカニクイザルPCSK9と結合する能を、Octet Red96 システム(ForteBio)で表示した。抗ヒトIgG Fc(AHC)の動力学バイオセンサ(Fortebio、# 18−5063)を、pH 1.7のグリシンで予処理した後に、測定緩衝液に浸した。検出しようとするPCSK9モノクローナル抗体を、10μg/mlの濃度でAHCバイオセンサに120秒間固定した。その後、PCSK9モノクローナル抗体をロードしたAHCバイオセンサを、異なる濃度のヒトPCSK9抗原(GeneBank AX127530.1)、マウスPCSK9抗原(NCBI NM_153565.2)又はカニクイザルPCSK9抗原(NCBI NM_001112660.1)と緩衝液に浸した。緩衝液とロードされたバイオセンサの間の非特異的結合をテストするために、分析物カラムの最後希釈点には、検出緩衝液しか含まない。80〜120秒の間、抗原と抗体との結合を検出した、その後、120〜180秒の間、解離を発生した。検出緩衝液で、60秒間のベースラインを確定した。抗PCSK9のモノクローナル抗体の親和力曲線は、1:1に結合する動力学センシング単価結合モデルでフィッティングしたものである。
細胞LDL吸収の測定
ヒトHepG2細胞を、ウェルごとに5×104個細胞の濃度でブラック透明の96−ウェルプレート(Costar)における、10% FBSを補充したDMEM培地(Mediatech、Inc)に播種し、37℃(5% CO2)で一夜インキュベートした。PCSK9と抗体の複合体を形成させるために、20 μg/mlのヒトPCSK9を、吸収緩衝液(10% FBSを含むDMEM)で希釈した各濃度の抗体又は単独の緩衝液(コントロール)と共に、室温において1時間インキュベートした。細胞上清を除去した後に、PCSK9/抗体混合物を添加し、そして最終濃度が8μg/mlになるように吸収緩衝液で希釈したDil−LDL(Invitrogen)を添加した。37℃(5% CO2)で16〜18時間インキュベートした後、PBSで細胞を徹底に洗浄し、TECAN M1000で、554nm(励起)と571nm(発射)に、細胞蛍光シグナルを検出した。
PCSK9モノクローナル抗体が、高血脂アカゲザル体内の血中LDLレベルに対する影響
高脂血症アカゲザルにおいて、PCSK9モノクローナル抗体9M284が、非ヒト霊長類動物疾患モデルにおいて体内の血清LDLを低下する効果をテストした。4匹の7歳以上の、高脂血症を有するアカゲザルに、0日目、一回皮下注射の方式で、ベクター(PBS+0.01 % Tween20)又は3mg/kgの投与量の、好ましいPCSK9モノクローナル抗体9M284を注射した。それぞれに、0日目、1日目、3日目、5日目、7日目、9日目、11日目、14日目に、一晩中断食した後に、血清LDLの含有量を分析した。
そして、PCSK9抗体が、非ヒト霊長類動物疾患モデルの血清 LDLレベルを低下する。
Fcの改造で、PCSK9モノクローナル抗体9M284の生体内の半減期を延長
通常の遺伝子工学の改造方法で、9M284抗体のVH部分を、酵素消化より、それぞれに二つ又は三つの異なるアミノ酸変異を有するIgG1 Fc(野生型の配列は、例えばGenBank登録番号AAD38158.1)に連結した。
9M284YTEの重鎖配列は、例えばSEQ ID NO:31(ヌクレオチド)とSEQ ID NO:32(アミノ酸)である。
ELISAで、異なるFc変異体PCSK9モノクローナル抗体とFcRnとの結合を検出
コーティング液(15 mM Na2CO3、35 mM NaHCO3、pH 9.6)を使用し、標的抗体を10 μg/mLまで希釈した後、100μL/ウェルの量で96ウェルELISAプレートに添加し、4℃に一夜インキュベートし、コーティングを行った。コーティング終了した後、pH 7.4のPBSTで、サンプルウェルを4回洗浄し、300μL/ウェルの4%スキムミルク(PBS、pH7.4)を添加し、25℃に2時間インキュベートし、ブロッキングを行った。ブロッキング終了した後、pH 7.4のPBSTで、サンプルウェルを4回洗浄し、PBST (pH 6.0/7.4)に溶解した0.4%スキムミルクでそれぞれに希釈したFcRn(開始濃度 20μg/mL、2倍勾配希釈、合わせて11個濃度勾配がある)を100 μL/ウェルで添加し、25℃に1.5時間インキュベートした。インキュベート終了した後、pH 6.0/7.4のPBSTでサンプルウェルを4回洗浄し、0.4%スキムミルク(pH 6.0/7.4)でそれぞれに1/500に希釈したanti−His−Tag−HRPを添加し、25℃に1時間インキュベートした。インキュベート終了した後、pH 6.0/7.4のPBSTでサンプルウェルを4回洗浄し、かつ100μL/ウェルのTMBを添加し、発色を行った(発色条件:25℃、10〜15分間)。発色終了した後、100μL/ウェルの1M H2SO4を添加し、発色反応を終了し、450 nmの吸光値を読んだ(650nmの吸光度値に基づく減算補正した)。
Fcを改造した長い半減期PCSK9モノクローナル抗体の親和力と細胞活性の検出
具体的な実験ステップは、実施例4と実施例5を参照し、図5と表7に示されたように、9M284と比べて、改造された抗体9M284QLのFab領域(VHとVLを含む)は、変化しないから、長い半減期抗体9M284QLの、ヒトPCSK9タンパク質との親和力は、9M284と基本に一致する。親和力が変化しないから、長い半減期のFcを改造したPCSK9抗体9M284QL、9M284YTEと、一般的な半減期の抗体9M284の細胞活性LDL吸収実験の比較試験EC50も類似し、図6と表8に示された。
PCSK9モノクローナル候補抗体と異なるPCSK9変異タンパク質との結合能
ヒトPCSK9タンパク質は、異なる変異体があり、高血脂に関連するヒトPCSK9変異体は、多くの種類があると報道され、発明者らが、その中から、R218S、R306S、D374H、D374YのヒトPCSK9変異体タンパク質を選択し、本発明のPCSK9モノクローナル抗体と、異なる変異体PCSK9タンパク質と結合する能力を、Octet Red96システム(ForteBio)を使用し、以上に記載されたように表示した。動力学的分析は、図7と表9に示されたように、R306S以外に、他のヒトPCSK9タンパク質変異体の、本発明のPCSK9モノクローナル抗体(正常IgGと長い半減期のIgG形式)との親和力は、いずれも天然ヒトPCSK9タンパク質と、同じオーダーの大きさであり、ただし、長い半減期のPCSK9モノクローナル抗体9M284−QLと、PCSK9 R218S タンパク質との結合能は、9M284抗体より3倍に高い。
Claims (15)
- 軽鎖可変領域と重鎖可変領域を有する結合タンパク質MV072であって、
その重鎖可変領域のCDR1のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:7に示された;
その重鎖可変領域のCDR2のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:8又はSEQ ID NO:13に示された;
その重鎖可変領域のCDR3のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:9又はSEQ ID NO:14に示された;
その軽鎖可変領域のCDR1のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:10に示された;
その軽鎖可変領域のCDR2のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:11に示された;
その軽鎖可変領域のCDR3のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:12に示された
ことを特徴とするPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072。 - (a)その重鎖可変領域のCDR1、CDR2とCDR3のアミノ酸配列は、それぞれに、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:8、SEQ ID NO:9に示された;その軽鎖可変領域のCDR1、CDR2とCDR3のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12に示された;又は
(b)その重鎖可変領域のCDR1、CDR2とCDR3のアミノ酸配列は、それぞれに、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:13、SEQ ID NO:14に示された;その軽鎖可変領域のCDR1、CDR2とCDR3のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12に示された
ことを特徴とする請求項1に記載されたPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072。 - その重鎖可変領域のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:2又はSEQ ID NO:24に示され、その軽鎖可変領域のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:4又はSEQ ID NO:26に示された;又は
その重鎖可変領域のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:6又はSEQ ID NO:28に示され、その軽鎖可変領域のアミノ酸配列は、SEQ ID NO:4又はSEQ ID NO:26に示された
ことを特徴とする請求項1また2に記載されたPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072。 - その重鎖可変領域が、さらにIgG1 Fcと連結することを特徴とする請求項1又は2に記載されたPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072。
- 上記のIgG1 Fcは、QL変異又はYTE変異を有する変異体IgG1 Fcであることを特徴とする請求項4に記載されたPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072。
- 重鎖可変領域と、IgG1 Fcと連結して得たアミノ酸配列は、SEQ ID NO:30又はSEQ ID NO:32に示されたことを特徴とする請求項5に記載されたPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072。
- 請求項1〜6にいずれかに記載されたPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072をコードする核酸。
- 請求項7に記載された核酸を含む発現ベクター。
- 請求項8に記載された発現ベクターを含む、或いはそのゲノムに請求項7に記載された核酸が組み込まれた宿主細胞。
- 請求項1〜6にいずれか記載されたPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072が、PCSK9発現又は活性障害に関連する疾患を診断、治療及び/又は予防する薬品の調製における応用。
- 上記のPCSK9発現又は活性障害に関連する疾患は、高血清コレステロールレベルに関連する病症を含む;より好ましいのは、高コレステロール血症、冠状動脈心臓病、代謝症候群、急性冠動脈症候群を含む請求項10に記載された応用。
- 有効量の請求項1〜6にいずれか記載されたPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072と;薬学的に許容される担体を含有することを特徴とする薬品組成物。
- キットに請求項1〜6にいずれか記載されたPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072;又は請求項12に記載された薬品組成物を含むことを特徴とするPCSK9発現又は活性障害に関連する疾患を治療及び/又は予防するためのキット。
- 請求項1〜6にいずれか記載されたPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072、及び検出可能なマーカーを含む;より好ましくは、上記の検出可能なマーカーは、蛍光マーカー、発色マーカーを含むことを特徴とする免疫結合体。
- 請求項1〜6にいずれか記載されたPCSK9特異的結合の結合タンパク質MV072;又は請求項14に記載された免疫結合体を含むことを特徴とするPCSK9レベルの検出に用いられる検出キット。
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