JP2018509464A - 抗菌組成物 - Google Patents
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Abstract
Description
別段の規定がない限り、本明細書で使用される全ての技術用語及び科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者によって一般に理解されるものと同じ意味を有する。
本発明は、少なくとも1つの不飽和脂肪酸又はその薬学的に許容可能な塩と、少なくとも1つのアルファヒドロキシ酸又はその薬学的に許容可能な塩と、少なくとも1つのアミノアルコールとを含む、抗菌組成物を提供する。
本発明は、細菌の生育及び/又は増殖の阻害、予防又は根絶に対する、単独での又は既知の抗微生物剤と組み合わせた本明細書に開示される組成物の使用を提供する。
被験体における細菌感染症、又はそれに関連する障害若しくは疾患の治療における治療剤としての使用のため、本発明の抗菌組成物は、典型的には、投与に先立って製剤化される。したがって、本発明は、1以上の本発明の組成物と、薬学的に許容可能な担体、希釈剤又は賦形剤とを含む医薬製剤を提供する。本発明の医薬製剤は、よく知られた容易に入手可能な成分を使用して、標準的な手法によって作製される。本発明の組成物の作製において、有効成分は、通常、担体と混合され、又は担体によって希釈され、又は担体に包まれてもよく、またカプセル剤、小袋、紙又は他の容器の形態であってもよい。
候補組成物の抗菌活性は、当該技術分野において既知の標準技術を使用して試験され得る。当該技術分野で知られているように、組成物の抗菌活性又は組成物は、細菌細胞の死滅をもたらしてもよく(すなわち殺菌活性)、又は細菌細胞の生育の遅延若しくは停止をもたらしてもよい(すなわち静菌活性)。したがって、本発明の組成物は、殺菌性及び/又は静菌性であってもよい。細菌細胞の生育を遅延又は停止する本発明の組成物は、他の既知の抗菌剤との併用療法に有用な場合がある。
候補化合物の細菌細胞の生育を阻害、予防又は根絶する能力を特定するin vitro法は当該技術分野でよく知られている。一般に、これらの方法は、目的の細胞の培養物と様々な濃度の候補組成物とを接触させることと、治療していない対照培養物と比較して該細胞培養物の生育をモニタリングすることとを含む。所望であれば、既知の抗菌剤と接触させた細胞を含む2つ目の対照培養物をかかる試験に含んでもよい。
本発明の抗菌組成物が低毒性を示すことが重要である。
また、試験組成物が抗菌剤として作用する能力を、標準的な技術を使用してin vivoで試験することができる。抗菌組成物の活性を試験するのに適した、容易に利用可能な多くの動物モデルが当該技術分野において知られている。
上記の試験に加えて、本発明の組成物を、安定性試験、バイオアベイラビリティー試験等の他の標準試験に供してもよい。当業者に容易に明らかになるように、本発明による組成物は、ヒトへの使用に適するように、また規定の要件を満たすように、特定の基準を満たす必要がある。したがって、本発明の組成物が動物投与に適しているとわかれば、ヒト臨床試験を計画するのに使用され得る、組成物及び組み合わせの代謝及び薬物動態(PK)に関する情報(適切な場合、薬物−薬物相互作用に関するデータを含む)を特定するため、標準的なin vitro及びin vivoの試験を行うことができる。
例示的な組成物Aの抗菌効果を、エンテロコッカス・フェカリス(Enterococcus faecalis)VRE(ATCC番号51575)及びスタフィロコッカス・アウレウスアウレウスMRSA(ATCC番号33591)の懸濁液に対して、2つの異なる濃度で評価した。
1.評価に先立って濃縮試験組成物を灌水用滅菌水、USPで希釈した。
試験材料、組成物Aの抗菌効果をエシェリキア・コリ(ATCC番号BAA−2469)及びクレブシエラ・ニューモニエニューモニエ(ATCC番号BAA−2146)の懸濁液に対して2つの異なる濃度で評価した。
2.評価に先立って濃縮試験生成物(組成物A)を灌水用滅菌水、USPで希釈した。
組成物Aに対する効能研究をC57bl−6マウス及びSprague Dawleyラットで行った。
2.4×107CFU/mlの好適な感染量が、各マウスに静脈内注射された0.1mLの細菌ストックによってもたらされた。組成物Aの経口又はIPの投与を、細菌注射の15分後、更に5日間に亘って1日1回行った。
対照群1:対照群の5匹のマウス全てが、細菌感染症により5日目、6日目及び7日目に立て続けに死亡した。死亡の1日前、無気力(正:apathy)を含む病気の所見、動きの制限及び食欲不振があった。それらマウスは夜のうちに死亡したことがわかった。死骸からは組織学的変化を観察することはできなかった。
1×107CFU/mlのMRSAをマウスに静脈内接種した。強制経口投与によって試験組成物を接種マウスに投与した。研究の終了時、14日後に血液を収集し、細菌検出のため培養した。
1)マウス5匹(G1)対照(MRSAのみ)
2)マウス5匹(G2)治療500mg/kgの組成物A、14日間に亘り1日1回 MRSAのIV誘導
3)マウス5匹(G3)治療100mg/kgの組成物A、14日間に亘り1日1回 MRSAのIV誘導
4)マウス5匹(G4)治療50mg/kgの組成物A、14日間に亘り1日1回 MRSAのIV誘導
5)マウス5匹(G5)治療25mg/kgの組成物A、14日間に亘り1日1回 MRSAのIV誘導
群G1〜群G5に対する血球培養の結果を図1A〜図1Fに示す。群1を除いて、全ての投薬された治療動物からの全ての血液培養物は、細菌の生育を全く示さなかった。対照群G1では、スタフィロコッカス・アウレウスのIV投与の10日後にマウス5番が死亡した。残りの全ての動物(4匹の動物)は大幅な細菌の生育を示した。治療群の動物の健康は影響を受けなかった。
手順(要約):
a)約2cm2の筋膜を露出することにより、麻酔をかけた各ラットの背中に創傷部位を作製した。
b)露出した筋膜に、107CFU/mLのATCC USA300 S.アウレウスの100μL懸濁液を接種した。
c)15分後、創傷を0.4mlの組成物A又は無菌生理食塩水(回復対照)で処理し、5日連続して毎日繰り返した。治療の5日後、綿球を創傷から取り出し、トリプチックソイ寒天上で培養し、35℃で一晩インキュベートして、生物の生存を判定するためコロニーを計数した。
d)3群、各3匹の雄性成体ラットを使用し、群は以下の通りとした。
動物総数9匹のラットが、5日間に亘って試験組成物又は生理食塩水対照の局所又は経口(強制)投与を毎日1回受けた。
群1)3匹のラット(対照)には、生理食塩水(400μL/ラット200g)を与えた;局所、5日間に亘って毎日1回
群2)3匹のラットを2000mg/kgの組成物A(400μL/ラット200g)で治療した;局所、5日間に亘って毎日1回
群3)3匹のラットを500mg/kgの組成物A(100μL/ラット200g)で治療した;経口投与、5日間に亘って毎日1回
対照群
いずれの動物も、創傷領域で活性な細菌感染症の痕跡を示した。組織残屑及び血清を含む死んだ白血球及び細菌からなる濃い黄色/緑色の不透明な液体が感染組織中に産生した。これは、対照群に由来する3匹のラット全てで観察された。動物は全て生存していた。
局所適用群(群2に関する添付の画像を参照されたい)では創傷の外観に著しい改善があり、傷が感染を示した「治療なし」群(生理食塩水)と比較して、膿(正:pus)又はいかなる類の分泌も示さなった。「治療群」(局所適用)において5日後にわずかなネクローシスが観察された。この効果は、試験材料(5日間の反復投与による2000mg/kgの治療)に起因する可能性がある。局所適用群では疾病の徴候は観察されなかった。
強制投与群では、全てのラットが3日目、4日目及び5日目に死亡した。500mg/kgの用量は、反復投与における組成物の蓄積によってラットの死亡をもたらした可能性がある。
約2cm2の筋膜を露出することにより、麻酔をかけた各ラットの背中に創傷部位を作製した。各々1つの創傷部位を有する雄性成体Sprague−Dawleyラット5匹を各治療群に使用した。露出した筋膜に、1×107CFU/mLのATCC us,300 S.アウレウスの100μLの懸濁液を接種した。15分後、創傷を0.4mlの組成物A又は無菌生理食塩水(回復対照)で局所適用により処理し、14日連続して毎日繰り返した。治療の14日後、綿球を創傷から取り出して、トリプチックソイ寒天上で培養し、35℃で一晩インキュベートして、生物の生存を判定するためコロニーを計数した。
1)5匹のラット(G1)対照(MRSAのみ)
2)5匹のラット(G2)治療25mg/kgの組成物A、14日間に亘り1日1回の直接の創傷適用 MRSAの誘導
3)5匹のラット(G3)治療50mg/kgの組成物A、14日間に亘り1日1回の直接の創傷適用 MRSAの誘導
4)5匹のラット(G4)治療100mg/kgの組成物A、14日間に亘り1日1回の直接の創傷適用 MRSAの誘導
5)5匹のラット(G5)治療500mg/kgの組成物A、14日間に亘り1日1回の直接の創傷適用 MRSAの誘導
群1では、5匹全てのラットに由来する5つの血球培養寒天プレートの全てに複数のコロニーが存在した。群2では、血液寒天培養物は、ラット7番及びラット9番に由来する2個の小さなコロニーを示す。群3では、血液寒天培地培養プレートは、ラット12番〜14番に由来する4個の小さなコロニーの存在を示した。群1では、0個のコロニーが血液寒天培養プレートで観察された。
経口又は局所の反復投与に続く組成物Aの安全性を確認するため、反復投薬の経口毒性及び局所適用の毒性試験をBALB/Cマウスで行った。
手順
組成物Aを、14日間に亘り毎日、0mg/kg/日(40μl/20gオリーブオイル)、1000mg/kg/日(40μl/20g組成物A)、300mg/kg/日(40μl/20g組成物A)、及び100mg/kg/日(40μl/20g組成物A)の用量でBALB/Cマウス(1群当たりn=雄5匹及び雌5匹)に投与した。
最大1000mg/kg/日の用量の試験組成物の経口投与は、雄性又は雌性のマウスのいずれの体重又は体重増加に対しても影響を示さなかった。
臨床化学検査−どの用量でも薬物の影響はなかった。
尿検査−どの用量又はどの時点でも薬物の影響はなかった。
肉眼所見−本発明者らは、観察された差が試験組成物と関連しないと結論づけた。
組織病理検査−幾つかの所見又は付帯的な所見は、どの用量でも組成物Aと関係しなかった。
手順
組成物Aを、14日間に亘り毎日、0mg/kg/日(40μL/20gオリーブオイル)、1000mg/kg/日(40μL/20g組成物A)、300mg/kg/日(40μL/20g組成物A)及び100mg/kg/日(40μL/20g組成物A)の用量で、BALB/cマウス(n=1群当たり雄5匹及び雌5匹)に局所適用した。
最大1000mg/kgの用量の試験組成物の局所投与は、雄性又は雌性のマウスの両方の体重又は体重増加に対して影響を示さなかった。
臨床化学検査−どの用量でも薬物の影響はなかった。
尿検査−どの用量又はどの時点でも薬物の影響はなかった。
肉眼所見−本発明者らは、観察された差が試験組成物と関連しないと結論づけた。
組織病理検査−幾つかの所見又は付帯的な所見は、どの用量でも組成物Aと関係しなかった。
投与後の異なる時間点でのマウスにおけるK2EDTA血漿試料中の組成物Aに由来するウンデシレン酸分析物の量/レベルを特定するため、抗菌組成物Aの2週間の反復投薬の経口毒性及び局所適用毒性に関する毒物動態学的研究をBALB/Cマウスで行った。
手順
0mg/kg/日(40μlオリーブオイル)、1000mg/kg/日(40μl組成物A)、300mg/kg/日(40μl組成物A)、及び100mg/kg/日(40μl組成物A)の用量で強制経口投与によりBALB/Cマウス(n=1群当たり雄18匹及び雌18匹)に組成物Aを投与し、一連の血液試料を、投与の1日目及び14日目に一時点(3時間、6時間、8時間、12時間及び24時間)当たり6匹のマウスから採取した。
2.群2 高用量−1000mg/kg−時間 投与の1日目及び14日目の3時間、6時間、8時間、12時間、及び24時間。6匹のマウス(雄3匹及び雌3匹)から各時点で血液試料を収集した。
3.群3 中用量−300mg/kg−時間 投与の1日目及び14日目の3時間、6時間、8時間、12時間、及び24時間。6匹のマウス(雄3匹及び雌3匹)から各時点で血液試料を収集した。
4.群4 低用量−100mg/kg−時間 投与の1日目及び14日目の3時間、6時間、8時間、12時間、及び24時間。6匹のマウス(雄3匹及び雌3匹)から各時点で血液試料を収集した。
100mg/kgの用量での試験組成物の経口投与は、投与の3時間後に雄性マウスの血漿中に検出可能な分析物を生じなかった。雌性マウスでは、1匹の動物がこの同じ用量レベルで検出可能なレベルの試験組成物を示した。
手順
0mg/kg/日(40μlオリーブオイル)、1000mg/kg/日(40μl組成物A)、300mg/kg/日(40μl組成物A)、及び100mg/kg/日(40μl組成物A)の用量で局所適用によりBALB/Cマウス(n=1群当たり雄18匹及び雌18匹)に組成物Aを投与し、一連の血液試料を、投与の1日目及び14日目に一時点(3時間、6時間、8時間、12時間及び24時間)当たり6匹のマウスから採取した。
2.群2 高用量−1000mg/kg−時間 投与の1日目及び14日目の3時間、6時間、8時間、12時間、及び24時間。6匹のマウス(雄3匹及び雌3匹)から各時点で血液試料を収集した。
3.群3 中用量−300mg/kg−時間 投与の1日目及び14日目の3時間、6時間、8時間、12時間、及び24時間。6匹のマウス(雄3匹及び雌3匹)から各時点で血液試料を収集した。
4.群4 低用量−100mg/kg−時間 投与の1日目及び14日目の3時間、6時間、8時間、12時間、及び24時間。6匹のマウス(雄3匹及び雌3匹)から各時点で血液試料を収集した。血液を心臓穿刺によって収集し(およそ500μL)、遠心分離機にかけ、各時間点で血漿を収集しプールして、将来の分析のため−80℃で凍結した。
100μg/kg/日の用量の試験組成物の局所適用では、雄雌のマウスのいずれにも検出可能な血清分析物レベルが生じなかった。300mg/kg/日の用量レベルでは、血清分析物レベルは雄性マウスにおいて検出レベル未満であった。雌性マウスでは、3時間の時点で、2匹の動物が検出可能な血清分析物レベルを有した。これらの値は、上記組成物を経口投与した雌性マウスで観察されたもののおよそ半分であり、血清分析物レベルが毛繕いに付随するものであった可能性がある。この仮説の更なる裏付けは、局所投与の3時間後に検出可能な血清分析物レベルを有する1匹の雄性動物に由来する。この場合、マウスは、経口投与で見られたものに匹敵する血清分析物レベルを有した。これらのデータに基づくと、試験組成物が皮膚を通して吸収される可能性はあるが、おそらくは同様に、中用量での局所投与後に見られる血清分析物レベルは、動物の毛繕いの結果であろう。
主要な抗MRSA抗生物質に対する効能比較研究をBALB/Cマウスで行った。
1)バンコマイシン
群1(6匹の雄性マウス)−MRSA誘導IP 治療なし
群2(6匹の雄性マウス)−MRSA誘導IP−7日間の経口治療
群3(6匹の雄性マウス)−誘導なし−7日間の経口治療
群4(6匹の雄性マウス)−MRSA誘導IP−組成物Aによる経口治療
2)クリンダマイシン
群1(6匹の雄性マウス)−MRSA誘導IP 治療なし
群2(6匹の雄性マウス)−MRSA誘導IP−7日間の経口治療
群3(6匹の雄性マウス)−誘導なし−7日間の経口治療
群4(6匹の雄性マウス)−MRSA誘導IP−組成物Aによる経口治療
3)エリスロマイシン
群1(6匹の雄性マウス)−MRSA誘導IP 治療なし
群2(6匹の雄性マウス)−MRSA誘導IP−7日間の経口治療
群3(6匹の雄性マウス)−誘導なし−7日間の経口治療
群4(6匹の雄性マウス)−MRSA誘導IP−組成物Aによる経口治療
1)バクトロバン
群1(6匹の雄性マウス)−MRSA誘導(創傷適用) 治療なし
群2(6匹の雄性マウス)−MRSA誘導(創傷適用)−7日間の治療
群3(6匹の雄性マウス)−誘導なし−7日間の局所適用
群4(6匹の雄性マウス)−MRSA誘導(創傷適用)−組成物Aによる治療
組成物Aについて、用量を100mg/kgとした。抗生物質について、マウス体重に変換したRX処方通りの用量とした。
1−1日2回のエリスロマイシン250mg/ptは、2.1mg/20gマウス/日 合計300mg/マウス12匹と等しい。1日2回のエリスロマイシン500mg/ptは、4.2mg/20gマウス/日と等しい。
2−1日2回のクリンダマイシン150mg/ptは、1.25mg/20gマウス/日 合計200mg/マウス12匹と等しい。1日2回のクリンダマイシン(正:Clindamycin)300mg/ptは、2.5mg/20gマウス/日と等しい。
3−1日2回のバンコマイシン250mg/ptは、2.1mg/20gマウス/日 合計300mg/マウス12匹と等しい。
4−少量(0.1g)のバクトロバン軟膏を患部/20gマウス/日に塗布した。
比較試験に関する血球培養結果を以下に検討する。
1.バンコマイシン群
群1−MRSA誘導−治療なし:マウス1番、4番、5番、6番から採取された血液より細菌が発生した。
群2−MRSA誘導 バンコマイシン治療:動物4番の血液培養物より1個のコロニーの細菌の生育があった。
群3−MRSA誘導なし バンコマイシン治療;いずれのプローブも陰性。
群4−MRSA誘導 組成物A治療:陰性。
群1−MRSA誘導 治療なし:6匹の動物はいずれも陽性コロニーを有する。
群2−MRSA誘導;エリスロマイシン治療:マウス1番及び2番で2個のコロニーを示す。
群3−MRSAなし エリスロマイシンによる治療:プローブはいずれも陰性であるが、写真は、プローブ3とプローブ4との間、及びプローブ5とプローブ6との間で幾らかの光反射を示す。
群4−組成物Aによる治療を伴うMRSA誘導:いずれのプローブも陰性−写真は幾らかの光反射を示す。
群1−MRSA誘導−治療なし:いずれの試料も陽性コロニーを示す。
群2−MRSA誘導−クリンダマイシン治療:いずれの試料も陰性コロニーを示す(プローブ1、5及び6で光反射効果)。
群3−MRSAなし−クリンダマイシン治療:いずれも陰性(試料1、2、3及び6で光効果)。
群4−MRSA誘導 組成物Aによる治療:いずれの試料も陰性、6番と2番で光効果。
群1−MRSA誘導−治療なし:試料はいずれも陽性のコロニーを示す。
群2−MRSA誘導−バクトロバン治療:マウス4番で血液プローブ陰性、創傷綿球陽性(コロニー5個)。
群3−MRSA誘導なし−バクトロバン治療:全て陰性。
群4−MRSA誘導−組成物A治療:動物2番で血液プローブ陰性、綿球に由来するプローブ1個が陽性(コロニー1個)。
ドレーズ(Draize)法の代替法を使用して、視覚刺激の可能性について組成物Aを試験した。このプロトコルは、現在のOECD化学薬品試験ガイドライン番号437に記載される方法に基づく。
1群当たり3個のウシ角膜に0.75mlの組成物A、最小必須培地(MEM)(陰性対照)又は100%エタノール(陽性対照)を投薬した。投薬した各群の角膜に対する10分間の曝露に続いて、混濁度の測定及びフルオレセインナトリウム透過性を特定した。結果を第6表に要約する。
3T3細胞への(UVA光の存在下又は非存在下での)試験組成物の細胞毒性及び光毒性を、ニュートラルレッドの取り込みによって評価した。OECD化学薬品試験ガイドライン番号432に基づく3T3ニュートラルレッド取り込み光毒性アッセイ(3T3 NRU PT)を、試験系としてBALB/C 3T3マウス線維芽細胞株を使用するin vitro細胞毒性アッセイにおいて、試験組成物及び疑似太陽光UVA+可視光の共同作用によって誘導された光毒性を検出するように設計した。
欧州連合(EU)分類(R38又は標識なし)、国連の化学品の分類及び表示に関する世界調和システム(GHS)分類システム(カテゴリー2及び非刺激性)、及びOECD化学薬品試験ガイドライン番号439に関するin vitro皮膚刺激性:再構築ヒト表皮試験法に従って、皮膚刺激性の危険を同定及び分類する上で、試験物品の皮膚刺激可能性を予測するため、本試験を行った。本研究をMatTekプロトコルin vitro EpiDerm(商標)皮膚刺激性試験に基づいて計画した。
USP−NF<51>−化粧品及びパーソナルケア製品で使用される試験組成物の抗微生物活性を評価するため、防腐剤負荷試験を行った。
3M製Tegaderm 3584のセルロース部分を抗微生物活性について試験したところ、様々な細菌種に対していかなる抗微生物活性も示さなかった。Tegadermの3Mセルロースファイバー(500mg)への5mgの組成物Aの導入は、E.Coliを含む幅広い範囲の細菌の99.99%の除去をもたらした。
a)200マイクロリットルのE.コリBを10mlのTSB培地で一晩生育させた。段階希釈試験は、ペトリ皿において高いE.コリ活性(108CFU/mL)を示した。200μLのE.コリB及び200μLの組成物Aを10mlのTSB培地に一晩分散させた。段階希釈試験はE.コリ活性を全く示さず、組成物Aの組み込みが、99.999%のE.コリB及びバクテリオファージ耐性E.コリBをもたらしたと結論づけた。
b)200μLの組成物Aを含む0.4gのエゾマツ/マツ/モミ(SPF)パルプ紙シートパッチを、200μLのE.コリを含む10mLのTSB培地に浸漬した。段階希釈試験はE.Coli活性を示さなかった。
c)200μLの組成物Aを含む0.4gのSPF紙シートパッチを一晩培養した10mLのE.コリに浸漬した(完全に生育した108CFU/mL)。段階希釈試験は、4logのE.コリ活性の減少(E.コリ活性の80%の低下に相当する)を示した。
1.0gのポリエチレン(PE、融点90℃〜100℃、分子量4000)を加熱して(110℃)溶解させた後、500μlの組成物AをPE溶解溶液に添加した。混合物を室温に到達するように平らなペトリ皿に入れ、薄膜状へと凝固させた。約0.5gの試料(PE組成物A)をE.コリ懸濁液に37℃で一晩浸漬させた。段階希釈試験(108CFU/mLからゼロまで)の後、完全なE.コリの除去を観察した。
1×107CFU/mlのMRSAをマウスに静脈内接種した。強制経口投与によって試験組成物を接種マウスに投与した。研究の終了時、14日後に血液を収集し、細菌検出のため培養した。
1)マウス5匹(G1)対照(MRSAのみ)
2)マウス5匹(G2)治療500mg/kgの組成物A、14日間に亘り1日1回 MRSAのIV誘導
3)マウス5匹(G3)治療100mg/kgの組成物A、14日間に亘り1日1回 MRSAのIV誘導
4)マウス5匹(G4)治療50mg/kgの組成物A、14日間に亘り1日1回 MRSAのIV誘導
5)マウス5匹(G5)治療25mg/kgの組成物A、14日間に亘り1日1回 MRSAのIV誘導
群G1〜群G5に対する血球培養の結果から、群1を除いて、全ての投薬された治療動物からの全ての血液培養物は、細菌の生育を全く示さなかったことが判明している。対照群G1では、スタフィロコッカス・アウレウスのIV投与の10日後にマウス5番が死亡した。残りの全ての動物(4匹の動物)は大幅な細菌の生育を示した。治療群の動物の健康は影響を受けなかった。
Claims (18)
- a)少なくとも1つの不飽和脂肪酸又はその薬学的に許容可能な塩であって、該遊離脂肪酸が炭素数6〜16の遊離脂肪酸から選択される、不飽和脂肪酸又はその薬学的に許容可能な塩と、
b)少なくとも1つのアルファヒドロキシ酸又はその薬学的に許容可能な塩と、
c)少なくとも1つのアミノアルコールと
を含む、抗菌組成物。 - 前記脂肪酸が炭素数8〜12である、請求項1に記載の抗菌組成物。
- 前記脂肪酸がウンデシレン酸又はその薬学的に許容可能な塩である、請求項1又は2に記載の抗菌組成物。
- 前記アルファヒドロキシ酸が乳酸である、請求項1〜3のいずれか一項に記載の抗菌組成物。
- 前記R2及びR4がいずれもC1〜C6アルキルである、請求項5に記載の抗菌組成物。
- 前記アミノアルコールが2−アミノ−2−メチル−1−プロパノール、モノエタノールアミン、又はアミノメチルプロパンジオールである、請求項1に記載の抗菌組成物。
- 請求項1〜7のいずれか一項に記載の組成物と、薬学的に許容可能な担体とを含む、医薬製剤。
- 局所投与用である、請求項8に記載の医薬製剤。
- クリーム、ローション、又はゲルの形態である、請求項9に記載の医薬製剤。
- 経口投与用である、請求項8に記載の医薬製剤。
- 細菌の生育及び/又は増殖の阻害用である、請求項8〜10のいずれか一項に記載の医薬製剤。
- 基体上の病原菌を死滅させる及び/又はその生育を阻害する方法であって、有効量の請求項1〜7のいずれか一項に記載の抗菌組成物を前記基体に適用することを含む、方法。
- 細菌感染症の治療又は予防に対する、それを必要とする哺乳動物における、請求項1〜7のいずれか一項に記載の組成物の使用。
- 化粧品、パーソナルケア製品、洗剤、光沢剤、塗料、スプレー、石鹸、洗浄剤、紙製品、又はプラスチック製品への組み込みに対する、請求項1〜7のいずれか一項に記載の組成物の使用。
- 細菌感染症、又はそれと関連する疾患若しくは障害の治療又は予防における、かかる治療法を必要とする被験体における、請求項1に記載の組成物の使用。
- 前記組成物が1以上の抗微生物剤と併用される、請求項4に記載の使用。
- 請求項1〜7のいずれか一項に記載の組成物を含む経皮パッチ。
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