JP2018509173A - トリコテセン変換アルコールデヒドロゲナーゼの使用、トリコテセンの変換方法およびトリコテセン変換添加物 - Google Patents

Abstract

Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示す少なくとも１つのトリコテセンの変換のための、金属イオンとキノン補因子とを含有する配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼ、またはそれに加えて、少なくとも８０％、好ましくは８６％、特に好ましくは少なくとも８９％の配列同一性を示す機能的変異体、および少なくとも１つのレドックス補因子の使用、ならびにトリコテセンの酵素利用変換のための方法、およびトリコテセン変換添加物。

Description

本発明はトリコテセン変換アルコールデヒドロゲナーゼの使用、トリコテセンの変換方法およびトリコテセン変換添加物に関する。

トリコテセン（ｔｒｉｃｈｏｔｈｅｃｅｎｅ）は、マイコトキシンの頻繁に見出される群を代表し、これらとしては、とりわけ、デオキシニバレノール（ｄｅｏｘｙｎｉｖａｌｅｎｏｌ）（ＤＯＮ、ＣＡＳ番号５１４８１−１０−８）、Ｔ−２毒素（ＣＡＳ番号２１２５９−２０−１）、ＨＴ−２毒素（ＣＡＳ番号２６９３４−８７−２）、ニバレノール（ｎｉｖａｌｅｎｏｌ）（ＣＡＳ番号２３２８２−２０−４）、フセラノン（ｆｕｓｅｒａｎｏｎ）−Ｘ（ＣＡＳ番号２３２５５−６９−８）、スクリペントリオール（ｓｃｒｉｐｅｎｔｒｉｏｌ）、１５−アセトキシシルペノール（ａｃｅｔｏｘｙｓｃｉｒｐｅｎｏｌ）（ＣＡＳ番号２６２３−２２−５）、４，１５−ジアセトキシシルペノール（ＣＡＳ番号２２７０−４０−８）、トリコデルモル（ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍｏｌ）（ＣＡＳ番号２１９８−９３−８）、ベルカリン（ｖｅｒｒｕｃａｒｉｎ）Ａ（ＣＡＳ番号３１４８−０９−２）、ベルカリンＪ（ＣＡＳ番号４６４３−５８−７）、イソトリコデルミン（ｉｓｏｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍｉｎ）（ＣＡＳ番号９１４２３−９０−４）、ヒドロキシイソトリコデルミン（ＣＡＳ番号３４４７８１−０２−８）、カロネクトリン（ｃａｌｏｎｅｃｔｒｉｎ）（ＣＡＳ番号３８８１８−５１−８）、Ｔ−２テトラオール（ｔｅｔｒａｏｌ）（ＣＡＳ番号３４１１４−９９−３）、デアセチルネオソラニオール（ｄｅａｃｅｔｙｌｎｅｏｓｏｌａｎｉｏｌ）（ＣＡＳ番号７４８３３−３９−９）、ネオソラニオール（ｎｅｏｓｏｌａｎｉｏｌ）（ＣＡＳ番号３６５１９−２５−２）、アセチルネオソラニオール（ＣＡＳ番号６５０４１−９２−１）、スポロトリキオール（ｓｐｏｒｏｔｒｉｃｈｉｏｌ）（ＣＡＳ番号１０１４０１−８９−２）、トリコトリオール（ｔｒｉｃｈｏｔｒｉｏｌ）（ＣＡＳ番号１０９８９０−３７−１）、サンブシノール（ｓａｍｂｕｃｉｎｏｌ）（ＣＡＳ番号９００４４−３３−０）およびクルモリン（ｃｕｌｍｏｒｉｎ）（ＣＡＳ番号１８３７４−８３−９）が挙げられる。トリコテセン、特に、ボミトキシンとしても知られるＤＯＮは、幾つかのフザリウム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ）真菌、特にフザリウム・グラミネアラム（Ｆ．ｇｒａｍｉｎｅａｒｕｍ）およびフザリウム・クルモルム（Ｆ．ｃｕｌｍｏｒｕｍ）により産生されうる。これらの真菌は、トウモロコシ、種々のタイプの穀物、例えばコムギ、オートムギまたはオオムギのような作物を冒すが、通常、該真菌の侵襲は収穫前に生じる。そして真菌増殖またはマイコトキシン生成は、収穫前にも、または不適切な貯蔵の場合には収穫後にも、生じうる。

国連食糧農業機構（ＦＡＯ）の推定によると、世界中で農産物の２５％がマイコトキシンで汚染されており、これは相当な経済的損失をもたらしている。２００９年１月から２０１１年１２月までの期間にＩ．ＲｏｄｒｉｇｕｅｓおよびＫ．Ｎａｅｈｒｅｒ（Ｔｏｘｉｎｓ，２０１２，４，６６３−６７５）によって世界中で行われた、より最近の研究において、合計２３，７８１個のサンプルが分析され、そのうちの８１％が少なくとも１つのマイコトキシンに関して陽性の試験結果を示し、５９％がトリコテセン、特にＤＯＮに関して陽性の試験結果を示した。世界の全ての地域において、そして試験された全ての穀物および食糧の種類、例えばトウモロコシ、ダイズ粉、コムギ、コムギふすま、ＤＤＧＳ（乾燥蒸留かす）ならびに調理食物混合物において、トリコテセン、特にＤＯＮが、１００％に及ぶ頻度で見出される場合があった。基本的な未加工食品だけでなく、コムギ粉、朝食シリアル、パスタ製品、パン、ペストリー、小児および乳児用コムギベース食品のような加工食品においても、トリコテセンの形跡が見出された。

トリコテセンは以下の構造式：

（式中、別々の置換残基Ｒ１〜Ｒ５はトリコテセンのタイプに応じて異なる）を有する。エポキシ基に加えて、トリコテセンのＣ−３原子上の完全なアルファ−ヒドロキシ基が協同してその毒性作用をもたらすことは公知の事実である。Ｃ−３原子上にヒドロキシ基を有するトリコテセン型には、デオキシニバレノール、Ｔ−２毒素、ＨＴ−２毒素、ニバレノール、フセラノン−Ｘ、１５−アセトキシシルペノール、４，１５−ジアセトキシシルペノール、トリコデルモール、Ｔ−２テトラノール、デアセチルネオソラニオール、アセチルネオソラニオール、スポロトリキオール、トリコトリオール、サンブシノールおよびクルモリンが含まれる。

デオキシニバレノール（ＤＯＮ）は特徴的なカルボニル基をＣ−８原子上に有し、以下の構造式

およびＩＵＰＡＣ名（３α、７α）−３，７，１５−トリヒドロキシ−１２，１３−エポキシトリコテカ−９−エン−８−オンを有する。自然界には、Ｃ−３原子上にヒドロキシ基を有する幾つかの毒性ＤＯＮ亜型も見出される。これらの例としては、アセチル化ＤＯＮ（例えば、１５アシルＤＯＮ）、グリコシル化ＤＯＮ、ＤＯＮスルホナート（例えば、ＤＯＮＳ−１、ＤＯＮＳ−２）またはＤＯＮスルファート（ＤＯＮ１５スルファート）が挙げられる。これらのＤＯＮ亜型も、Ｃ−３原子上にヒドロキシ基または置換ヒドロキシ基を有するトリコテセン型に属する。

ＤＯＮの毒性作用ゆえに、食品および飼料に関する所轄官庁によって、制限または最大レベルが定められている。例えば、欧州連合は食品中のＤＯＮ含量を規制しており（ＥＣ番号１８８１／２００６，ＥＣ番号１１２６／２００７）、飼料に関する推奨最大レベルを示している（２００６／５７６／ＥＣ）。米国においては、ＦＤＡが最大レベルを公表している。

ヒトまたは動物においてマイコトキシンを摂取することにより引き起こされる疾患は、マイコトキシン症と称される。トリコテセンまたはトリコテセン型の場合、これらは「トリコテセンマイコトキシン症」、より詳細には「Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンにより引き起こされるマイコトキシン症」、より一層詳細には「ＤＯＮマイコトキシン症」とも称される。動物およびヒトに対するトリコテセンの毒性作用が幾つかの要因に基づいていることは公知の事実である。これらの要因には、タンパク質生合成の抑制、セロトニンおよびドーパミン受容体との起こり得る相互作用、ならびに炎症性サイトカインのアップレギュレーションが含まれる（ＥＦＳＡ Ｊｏｕｒｎａｌ ２００４，７３，１−４１）。更に、ＤＯＮマイコトキシン症は、血中ＩｇＡ濃度の増加、肝臓におけるＳＯＣＳ３濃度の増加または血漿中のＩＧＦＡＬＳレベルの低下（Ｐｅｓｔｋａら，２００４，Ｔｏｘｉｃｏｌ．Ｌｅｔｔ．１５３，６１−７３）および腸におけるクローディン濃度の低下（Ｐｉｎｔｏｎら，２００９，Ｔｏｘ．Ａｐｐｌ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．２３７，４１−４８）により診断されるとおり、バイオマーカーにおける変化を引き起こす。

例えば、トリコテセンマイコトキシン症は、ブタにおいては、飼料摂取の減少、成長低下、嘔吐および下痢の発生ならびに免疫機能不全および腸内栄養素吸収障害により示される。家禽の場合には、トリコテセンマイコトキシン症は、とりわけ、飼料摂取の減少、体重増加の減少、下痢の発生および卵殻重量の減少を引き起こす。反芻動物の場合には、飼料摂取量の減少および乳生産の減少が記載されている。水産養殖においては、とりわけ、トリコテセンマイコトキシン症は、魚類（例えば、サケ、ナマズまたはマス）およびエビにおける飼料摂取の減少および成長率低下を引き起こす（Ｂｉｎｄｅｒら，Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｍｙｋｏｔｏｘｉｎｓ；ＩＳＢＮ ９７８−０−９５７３７２１−０−８）。イヌおよびネコにおける毒性作用も記載されている（ＥＦＳＡ Ｊｏｕｒｎａｌ ２００４，７３，１−４１）。ヒトにおいては、トリコテセンマイコトキシン症は、とりわけ、吐き気、嘔吐、下痢、腹痛、頭痛または発熱を引き起こしうる（Ｓｏｂｒｏｖａら，Ｉｎｔｅｒｄｉｓｃ．Ｔｏｘｉｃｏｌ．２０１０，３（３），９４−９９）。

食品または飼料のトリコテセンまたはＤＯＮ汚染の低減のための主な戦略は、例えば「適性農業規範」の遵守により、真菌の侵襲を抑制することである。これは、寄生虫および真菌を含有しない種子の使用、または作物残渣のすき込みを含む。更に、殺真菌薬の適切な使用により、圃場における真菌増殖が抑制されうる。収穫後、真菌増殖を防ぐために、作物は１５％未満の残留湿度および低温で貯蔵されるべきである。同様に、真菌侵襲によって汚染された作物は、任意の更なる加工の前に除去されるべきである。このような列挙されている手段にもかかわらず、米国および中欧のような農林規格が最も高い地域でさえも、２００９年〜２０１１年に試験された全てのトウモロコシサンプルの７９％または７２％がＤＯＮで汚染されていた、とＩ．ＲｏｄｒｉｇｅｓおよびＫ．Ｎａｅｈｒｅｒ（２０１２年）は報告している。

食品または飼料におけるマイコトキシン汚染を低減するための他の選択肢は、その吸着または変換である。吸着のためには、吸着剤へのマイコトキシンの結合が広いｐＨ範囲にわたって強くかつ特異的であること、およびそれが胃腸領域において消化過程の全体において安定なままであることが必要である。幾つかの非生物学的吸着剤、例えば活性炭、シリケート、または合成ポリマー、例えばコレスチラミンは、アフラトキシンに対して効率的に使用されうるが、他のマイコトキシン、特にトリコテセンに対するそれらの使用は有効ではない。生物学的吸着剤、例えば酵母または酵母エキスも文献に記載されているが、それらは非生物学的吸着剤と同様の制限を有する。吸着剤の大きな欠点は、栄養に不可欠でありうる他の分子に対して起こり得るそれらの非特異的な結合である。

また、ＤＯＮは非常に安定であり、３５０℃までの熱処理でも安定なままであるため、物理化学的処理によるトリコテセンの変換、特に無毒化は制限される。

考えうるＤＯＮの微生物利用変換はＥＰ−Ｂ １ ０４２ ４４９に記載されており、これによると、微生物ＢＢＳＨ ７９７（ＤＳＭ １１７９８）がＤＯＮの無毒化に使用されている。ここでの無毒化は、ＤＯＮのＣ−１２およびＣ−１３原子上のエポキシド環の開環に基づく。ＵＳ ２０１２／０２６３８２７ Ａは、国際カナダ国受託番号０４０４０８−１を有する微生物によるＤＯＮから３−ｅｐｉ−ＤＯＮへの生物学的変換を記載している。しかし、多数の技術的な飼料または食品プロセスにおいては、微生物または吸着剤の混合は不可能であるか、あるいは法的に許可されず、したがって、ＤＯＮまたはＤＯＮ亜型のようなトリコテセンの変換または無毒化は不可能である。

ＤＯＮおよびＤＯＮ亜型のようなトリコテセンはヒトまたは動物の体の胃腸管内に急速に吸収されるため、迅速で且つ標的化された無毒化が重要である。

配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼは、２−ケトグロン酸の生成に関してＪＰ−Ａ ２００３／１５９０７９に最初に記載された。ＷＯ ２００９／１３３４６４は、食品および飼料におけるデンプンの酸化のための、特に製パン業においてパンの熟成過程を減速させるための、配列番号１の酵素を使用した糖の酸化のための方法を記載している。ここで、アルコールデヒドロゲナーゼは、炭水化物のヒドロキシル基の酸化のために使用される。

配列番号２および３を有するアルコールデヒドロゲナーゼは、デボシア種（Ｄｅｖｏｓｉａ ｓｐ．）微生物のゲノム配列決定の過程で同定された。これらはＮａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ（ＮＣＢＩ）のサーバー内に識別番号ＧＩ：７３７０４１０２２およびＧＩ：６３０００２２６６としてオンラインで保存されている。配列番号２および３を有するアルコールデヒドロゲナーゼの更に厳密な特徴づけは、この研究の過程では得られなかった。

したがって、トリコテセンの毒性作用は様々であり、その発生は頻繁であるため、トリコテセンの特異的で安全で許容される変換、特に無毒化に使用されうる酵素のような物質または物質群が必要とされている。

欧州特許第１ ０４２ ４４９号明細書 米国特許出願公開第２０１２／０２６３８２７号明細書 特開２００３／１５９０７９号公報 国際公開第２００９／１３３４６４号

Ｉ．ＲｏｄｒｉｇｕｅｓおよびＫ．Ｎａｅｈｒｅｒ，Ｔｏｘｉｎｓ，２０１２，４，６６３−６７５ ＥＦＳＡ Ｊｏｕｒｎａｌ ２００４，７３，１−４１ Ｐｅｓｔｋａら，２００４，Ｔｏｘｉｃｏｌ．Ｌｅｔｔ．１５３，６１−７３ Ｐｉｎｔｏｎら，２００９，Ｔｏｘ．Ａｐｐｌ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．２３７，４１−４８ Ｂｉｎｄｅｒら，Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｍｙｋｏｔｏｘｉｎｓ；ＩＳＢＮ ９７８−０−９５７３７２１−０−８ Ｓｏｂｒｏｖａら，Ｉｎｔｅｒｄｉｓｃ．Ｔｏｘｉｃｏｌ．２０１０，３（３），９４−９９

本発明は、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示す少なくとも１つのトリコテセンをより低い毒性の産物へと変換することを可能にする特異的アルコールデヒドロゲナーゼおよびその変異体を使用することを目的とする。

この課題を解決するために、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示す少なくとも１つのトリコテセンの変換のために、金属イオンとキノン補因子とを含有する配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼ、またはそれに加えて、少なくとも８０％、好ましくは８６％、特に好ましくは少なくとも８９％の配列同一性を示す機能的変異体、および少なくとも１つのレドックス補因子を使用することにより、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセン、例えばＤＯＮ、Ｔ−２毒素またはニバレノールを、特異的かつ確実に変換することが可能となることが、驚くべきことに、本発明において実証された。

変換は、毒素の構造が変化した場合に生じると理解され、この場合、毒素は、好ましくは、無毒性またはより低い毒性の代謝産物へと変えられる（すなわち、変換される）。この場合、構造変化は、特に、Ｃ−３ヒドロキシル基からケト基への触媒変換により、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンのＣ−３原子上で起きる。驚くべきことに、本発明のアルコールデヒドロゲナーゼの使用は、バッファー、飼料マッシュ、唾液もしくは飼料含有胃液または飼料含有腸内容物のような最も多様な化学的および生物学的環境において、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセン、特にＤＯＮの変換をもたらす。これは格別なことである。なぜなら、酵素活性のためのそれぞれの環境において、ｐＨ値、プロテアーゼ濃度、イオン強度または物質マトリックスのような重要なパラメーターが著しく異なるからである。結果として、該酵素の活性は、食品および飼料に、その経口摂取物に、そしてまた、口および胃腸管において、水を加えることによって保証されうる。ある環境においては、レドックス因子の外部からの添加が省略されうることは驚くべきことである。これは、特に、飼料混合物、唾液および胃液の場合に当てはまる。

配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼは、キノン補因子依存的アルコールデヒドロゲナーゼである。活性ホロ酵素または活性アルコールデヒドロゲナーゼを生成するために、キノン補因子、好ましくはピロロキノリンキノン（ＰＣＣ）を、金属イオン、好ましくはＣａ^２＋の存在下で該酵素に結合させることが可能である。したがって、活性化アルコールデヒドロゲナーゼは、キノン補因子と金属イオンとの両方を含有し、ここで、酵素：キノン補因子のモル比は１：１である。更に、アルコールデヒドロゲナーゼの触媒活性のためにはレドックス補因子が必要であり、レドックス補因子は、合成的に生成されたレドックス因子の形態で、活性化アルコールデヒドロゲナーゼに加えて使用されるか、あるいは、食品または飼料中におよび動物またはヒトの分泌物中にも存在するレドックス因子が使用されてもよい。例えば、ヒトまたは動物の口および胃腸管における食品または飼料の供与、咀嚼（ｖｅｒａｒｂｅｉｔｕｎｇ）または消化の過程で、これらの天然レドックス補因子が形成され得、必要に応じて食品または飼料から抽出されうる。そのような天然レドックス補因子を含有するヒトまたは動物の分泌物の例としては、消化分泌物、例えば唾液、胃液、腸液、膵液、胆汁またはルーメン液（第一胃液）が挙げられる。

「ポリペプチド変異体」または「変異体」なる語は、配列番号１と比較して少なくともアミノ酸置換を有し、酵素機能を保持する機能的ポリペプチドを意味する。変換、特に、トリコテセンのＣ−３原子上のヒドロキシル基からケト基への酸化は、酵素機能と理解される。更に、「ポリペプチド変異体」はまた、配列番号１のポリペプチド配列と比較した場合、アミノ酸の挿入または欠失をも有し得、特に、Ｃ末端またはＮ末端が伸長または短縮された配列を有しうる。この場合に酵素機能を「実質的に保持する」と言えるのは、酵素反応機構が不変のままである場合、すなわち、トリコテセンが同じ部位で酸化され、該変異体の酵素活性が配列番号１の元の親ポリペプチドに対して少なくとも１０％、好ましくは少なくとも５０％、より好ましくは少なくとも９０％、特に１００％を超える場合である。

「配列同一性」なる語は、配列同一性の割合（％）を意味する。アミノ酸配列およびヌクレオチド配列に関しては、配列同一性は視覚的に決定されうるが、好ましくはコンピュータープログラムによって計算される。配列番号１のアミノ酸配列は、参照配列と定められる。配列比較はまた、配列セグメント内で行われ、この場合、セグメントは、参照配列の連続する配列であると理解される。ペプチド配列に関する配列セグメントの長さは、通常は３〜２００、好ましくは１５〜６５、最も好ましくは３０〜５０アミノ酸である。市販されているかまたは無料である多数のバイオインフォマティクスプログラムが、相同性を決定するために使用可能であり、そしてこれらは、更に実施され続けている。この例としては、ＧＣＧ Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ ＢｅｓｔＦｉｔパッケージ（Ｄｅｖｅｒｅｕｘら，１９８４）、ＢＬＡＳＴ（Ａｌｔｓｃｈｕｌら，１９９０）またはＢＬＡＳＴ ２（ＴａｔｕｓｏｖａおよびＭａｄｄｅｎ，１９９９）が挙げられる。これらのアルゴリズムは、その様々な設定オプションにより、同じ入力配列に関して、異なる結果を与えることができる。したがって、検索アルゴリズムおよび関連設定が定められる必要がある。本件では、“Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ”（ＮＣＢＩ，ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／）のホームページから入手可能であるＮＣＢＩ ＢＬＡＳＴ（Ｂａｓｉｃ Ｌｏｃａｌ Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ Ｓｅａｒｃｈ Ｔｏｏｌ）プログラム、特に、ポリペプチドに関してはＢＬＡＳＴＰを使用して、配列同一性を計算した。このように、Ａｌｔｓｃｈｕｌら，１９９７（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．，２５：３３８９−３４０２）のアルゴリズムにより、２以上の配列を互いに比較することが可能である。ここでは、２０１４年８月１２日付けのプログラムバージョンを使用した。特にアミノ酸比較のために、プログラム設定として、以下の基本設定を使用した：「最大標的配列」＝１００；「期待閾値」＝１０；「ワードサイズ」＝３；「マトリックス」＝ＢＬＯＳＯＭ６２；「ギャップコスト」＝「存在：１１；伸長（ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ）：１」；「計算調整」＝「条件付き構成スコアマトリックス調整」。

金属イオンとキノン補因子とを含有する本発明のアルコールデヒドロゲナーゼまたはその機能的変異体を使用することにより、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示す少なくとも１つのトリコテセン（特にＤＯＮ）の少なくとも２０％、好ましくは少なくとも５０％、特に少なくとも９０％を変換することが可能であり、この場合、金属イオンとキノン補因子とを含有するアルコールデヒドロゲナーゼまたはその機能的変異体を、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示す少なくとも１つのトリコテセンと、少なくとも１分間、好ましくは少なくとも５分間、特に少なくとも６０分間接触させれば十分である。

本発明のもう１つの実施形態においては、配列番号２〜４の群から選択される機能的変異体のアミノ酸配列が使用される。配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼに対して少なくとも８６％の配列同一性を有するこれらの機能的変異体を使用して、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセン、特にＤＯＮを、一貫して良好な結果で変換することが可能である。

本発明のもう１つの実施形態においては、ＰＣＣ、ＴＴＣ、ＴＰＣ、ＬＴＣおよびＣＴＣの群から選択されるキノン補因子、好ましくはＰＣＣを使用した。キノン補因子であるピロロキノリンキノン（ＰＣＣ、ＣＡＳ番号７２９０９−３４−３）、トリプトファントリプトフィルキノン（ＴＴＱ、ＣＡＳ番号１３４６４５−２５−３）、トパキノン（ＴＰＣ、ＣＡＳ番号６４１９２−６８−３）、リジンチロシルキノン（ＬＴＱ、ＣＡＳ番号１７８９８９−７２−５）またはシステイントリプトフィルキノン（ＣＴＣ、ＣＡＳ番号４００６１６−７２−０）の１つをアルコールデヒドロゲナーゼにおいて使用することにより、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセン、例えばＤＯＮを、無毒性であるか又は毒物学的観点から無害である誘導体へと変換することが可能である。

アルコールデヒドロゲナーゼへのキノン補因子の特に迅速かつ完全な結合は、Ｌｉ^＋、Ｎａ^＋、Ｋ^＋、Ｍｇ^２＋、Ｃａ^２＋、Ｚｎ^２＋、Ｚｎ^３＋、Ｍｎ^２＋、Ｍｎ^３＋、Ｆｅ^２＋、Ｆｅ^３＋、Ｃｕ^２＋、Ｃｕ^３＋、Ｃｏ^２＋およびＣｏ^３、好ましくはＣａ^２＋およびＭｇ^２＋の群から選択される金属イオンの少なくとも１つによって結合されることにより達成される。

フェナジンメトスルファート基（ＰＭＳ）、ＰＭＳ誘導体、カリウムヘキサシアノフェラート（ＩＩＩ）、ナトリウムヘキサシアノフェラート（ＩＩＩ）、シトクロムＣ、補酵素Ｑ１、補酵素Ｑ１０、メチレンブルーおよびＮ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラメチル−ｐ−フェニレンジアミン（ＴＭＰＤ）、好ましくはフェナジンメトスルファート（ＰＭＳ、ＣＡＳ番号：２９９−１１−６）、補酵素Ｑ１および補酵素Ｑ１０から選択される少なくとも１つのレドックス補因子をも使用することにより、トリコテセンの完全かつ迅速な変換が水分の存在下でのみ可能であり、それにより、飼料成分中に含有されるトリコテセンが、例えば飼料の製造中に、そしていずれの場合においても動物に使用される前に、無毒性誘導体へと既に変換されていることが保証される。ＰＭＳ誘導体の例としては、１−ヒドロキシフェナジン、２−（ペンタプレニルオキシ）ジヒドロフェナジン、５，１０−ジヒドロ−９−ジメチルアリルフェナジン−１−カルボン酸、５，１０−ジヒドロフェナジン−１−カルボン酸、５−メチルフェナジニウムメチルスルファート、６−アセトフェナジン−１−カルボン酸、ベントフェニン、クロファジミン、ジヒドロメタノフェナジン、エスメラルド酸、エスメラルジンＢ、イズミフェナジンＡ−Ｃ、ヤヌスグリーンＢカチオン、メタノフェナジンペラジオマイシンＡ、フェナジン、フェナジン−１，６−ジカルボン酸、フェナジン−１−カルボキサミド、フェナジン−１−カルボン酸、フェノサフラニン、ピオシアニン、サフェナマイシンまたはサフェン酸メチルエステルが挙げられる。

食品および飼料、特にブタ、家禽、ウシ、ウマ、魚類、水産養殖および家畜用の飼料における、ならびに食品および飼料の製造または加工に使用される植物ベース原料における、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンの変換により、動物およびヒトの健康に対する害を本発明の使用により防ぐことが可能である。

更に、本発明は、トリコテセン、特にＣ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンを、それを含有する農産物が加工されているか否かにかかわらず、より毒性の低い産物へと安全かつ確実に変換することを可能にする方法を提供することを目的とする。

この課題を解決するために、トリコテセンの酵素利用（ｅｎｚｙｍａｔｉｃ）変換のための本発明の方法は、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示す少なくとも１つのトリコテセンを、金属イオンとキノン補因子とを含有する配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼまたは少なくとも８０％、好ましくは少なくとも８６％、特に好ましくは少なくとも８９％の配列同一性を更に示す機能的変異体と、少なくとも１つのレドックス補因子および水、そして必要に応じて少なくとも１つの賦形剤と共に接触させることを、本質的に特徴とする。Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンを、金属イオンとキノン補因子とを含有する配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼ、ならびにそれに加えて、少なくとも１つのレドックス補因子および水と接触させることにより、トリコテセンのＣ−３原子上に存在するヒドロキシル基をケトンへと酸化することが可能であり、この場合、トリコテセン自体が無毒化され、無毒性または低毒性化合物へと変換される。

配列番号１のアミノ酸配列の代わりに配列番号２〜４の群から選択されるアミノ酸配列の機能的変異体を使用し続けることにより、配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼを使用することにより達成されるのと同じ利点が達成可能であり、食品および飼料中に含有されるトリコテセンの変換が、それらの加工状態にかかわらず、すなわち、それらが既に加工された農産物であるか否かにかかわらず、特に迅速かつ確実に達成可能である。

Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンの特に迅速かつ完全な変換は、本発明の方法において、５℃〜５５℃、好ましくは１０℃〜５０℃、特に好ましくは２８℃〜４５℃の温度で達成される。本発明の方法はそのような広い温度範囲で実施可能であるため、配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼ、または配列番号１の少なくとも８０％の配列を示すその機能的変異体は、非常に多様な用途、例えば水産養殖、あるいはまた、高温での技術的プロセスに使用されうる。高温でのトリコテセンの変換が重要であるそのような技術的プロセスの例としては、飼料を加工するための方法、パスタおよび他のトウモロコシ製品、例えばポレンタ、ポップコーン、コーンフレーク、コーンブレッドまたはトルティーヤの製造、ならびにデンプンの液化プロセス、糖化プロセス（Ｓａｃｃｈａｒｉｆｉｚｉｅｒｕｎｇｓｐｒｏｚｅｓｓｅ）、または発酵プロセス（Ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎｓｐｒｏｚｅｓｓｅ）、例えば、特にバイオエタノール製造における糖化プロセス（Ｍａｉｓｃｈ−ｐｒｏｚｅｓｓ）もしくは（Ｇａｒ−ｐｒｏｚｅｓｓ）発酵プロセスが挙げられるであろう。この場合、これらのプロセスによって製造された食品または飼料が有害な量のＣ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンを全く含有しないことを確実にすることが、重要である。

本発明の方法のもう１つの実施形態においては、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示す少なくとも１つのトリコテセンを、金属イオンとキノン補因子とを含有するアルコールデヒドロゲナーゼ、または少なくともその機能的変異体と、レドックス因子、水、そして必要に応じて賦形剤と共に、少なくとも１分間、好ましくは少なくとも５分間、特に好ましくは少なくとも６０分間にわたって接触させる方法により、行われる。トリコテセンから無毒性または低毒性の誘導体への適切な変換を達成するには１分〜６０分以上の接触時間で十分であるため、本発明の方法は、例えば、食品または飼料用の基本的農業材料を加工するための方法において使用されうる。一方、例えば、飼料に水を加え、５℃〜５５℃の温度で１分間〜約１時間まで放置することによって、給餌直前に農業従事者によって行われてもよく、この作業により、トリコテセンから無毒性産物への変換を開始する。

キノン補因子がＰＣＣ、ＴＴＣ、ＰＴＣ、ＬＴＣおよびＣＴＣの群から選択され、好ましくはＰＣＣである場合、特に迅速かつ完全な変換が可能であり、これは本発明の方法のもう１つの実施形態に相当する。そのようなキノン補因子は、アルコールデヒドロゲナーゼがトリコテセンのＣ−３原子上のヒドロキシル基を迅速かつ確実に攻撃し、ケト基含有無毒性誘導体へと変換することを可能にする。

本発明の方法における補因子が、Ｌｉ^＋、Ｎａ^＋、Ｋ^＋、Ｍｇ^２＋、Ｃａ^２＋、Ｚｎ^２＋、Ｚｎ^３＋、Ｍｎ^２＋、Ｍｎ^３＋、Ｆｅ^２＋、Ｆｅ^３＋、Ｃｕ^２＋、Ｃｕ^３＋、Ｃｏ^２＋およびＣｏ^３＋、好ましくはＣａ^２＋およびＭｇ^２＋の群から選択される少なくとも１つの金属イオンを利用してアルコールデヒドロゲナーゼに結合する場合、該反応の更なる完了、特に該反応の加速化が、考えうる。そのような様態での該方法の実施はアルコールデヒドロゲナーゼへのキノン補因子の強力な結合をもたらすだけでなく、トリコテセンの迅速かつ確実な変換をも可能にする。

トリコテセンの変換の更なる改善、特に変換反応の完了のためには、ＰＭＳ、ＰＭＳ誘導体、カリウムヘキサシアノフェラート（ＩＩＩ）、ナトリウムヘキサシアノフェラート（ＩＩＩ）、シトクロムＣ、補酵素Ｑ１、補酵素Ｑ１０、メチレンブルーおよびＴＭＰＤの群から選択される、好ましくはＰＭＳ、補酵素Ｑ１、補酵素Ｑ１０であるレドックス因子を使用して、本発明の方法を継続する。そのようなレドックス補因子を加えることにより、該レドックス因子（唾液、胃液または腸液から得られうる）を含有しない水性媒体、例えば水産養殖における動物に投与される飼料スラリーまたは飼料（例えば、該レドックス因子を添加する必要があるか、または該レドックス因子が存在している必要がある）において、あるいは該飼料スラリーまたは飼料を既に摂取している動物において、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンの変換を行うことが可能であり、その場合、飼料を摂取する動物によるトリコテセンの再吸収が予防されうる。

最後に、本発明は、飼料または食品中のトリコテセンを無毒性誘導体へと安全かつ確実に変換することを可能にするトリコテセン変換添加物を提供することを目的とする。

この課題を解決するために、本発明の添加物は、金属イオンとキノン補因子とを含有する配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼ、または少なくとも８０％、好ましくは少なくとも８６％、特に好ましくは少なくとも８９％の配列同一性を更に示す機能的変異体、そして必要に応じて更に、合成レドックス補因子および少なくとも１つの賦形剤からなる群から選択される少なくとも１つの追加的成分を含有することを、本質的に特徴とする。そのような添加物は低濃度（例えば、１トンの飼料に対して約１０ｇ〜１ｋｇ）で通常の飼料と混合されてもよく、そのような低濃度において、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンが無毒性誘導体へと変換されることを可能にして、結局は、例えば、この飼料が与えられた動物の健康および性能を改善し、それにより障害率を低下させることが可能であるだけでなく、飼料利用の改善をももたらす。

配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼの代わりに、配列番号２〜４の群から選択されるその機能的変異体を含有する本発明の添加物を使用して、一貫して良好な結果が達成されうる。

本発明の添加物によるトリコテセンのＣ−３原子上に存在するヒドロキシル基の本質的に完全な変換のために、更に、ＰＣＣ、ＴＴＣ、ＴＰＣ、ＬＴＣおよびＣＴＣの群から選択されるキノン補因子、ならびにＬｉ^＋、Ｎａ^＋、Ｋ^＋、Ｍｇ^２＋、Ｃａ^２＋、Ｚｎ^２＋、Ｚｎ^３＋、Ｍｎ^２＋、Ｍｎ^３＋、Ｆｅ^２＋、Ｆｅ^３＋、Ｃｕ^２＋、Ｃｕ^３＋、Ｃｏ^２＋およびＣｏ^３＋の群から選択される金属イオンを含有して実施される。そのような更なる実施形態により、一方においては、キノン補因子をアルコールデヒドロゲナーゼに安全かつ確実に結合させることが可能であり、他方においては、そのような補助物質を含有するアルコールデヒドロゲナーゼを使用して、分子のＣ−３原子上にヒドロキシル基を示すデオキシニバレノールのようなトリコテセンの完全な変換が達成されうる。

そのような反応が、レドックス補因子、例えば唾液、胃液または腸液に天然に存在するレドックス補因子などの非存在下でも行われるためには、更に、もう１つのレドックス補因子として、合成レドックス補因子が、ＰＭＳ、ＰＭＳ誘導体、カリウムヘキサシアノフェラート（ＩＩＩ）、ナトリウムヘキサシアノフェラート（ＩＩＩ）、シトクロムＣ、補酵素Ｑ１、補酵素Ｑ１０、メチレンブルーおよびＴＭＰＤの群、好ましくはＰＭＳ、補酵素Ｑ１、補酵素Ｑ１０の群から更に選択されるよう、本発明の添加物は更に実施される。

本発明のもう１つの実施形態においては、該賦形剤が、不活性担体、ビタミン、ミネラル物質、植物起源物質、酵素、およびマイコトキシンの無毒化のための追加的成分、例えばマイコトキシン分解酵素、特にアフラトキシン−オキシダーゼ、エルゴタミンヒドロラーゼ、エルゴタミンアミダーゼ、ゼアラレノンエステラーゼ、ゼアラレノンラクトナーゼ、ゼアラレノンヒドロラーゼ、オクラトキシンアミダーゼ、フモニシンアミノトランスフェラーゼ、フモニシンカルボキシトランスフェラーゼ、アミノポリオールアミンオキシダーゼ、デオキシニバレノールエポキシドヒドロラーゼ、デオキシニバレノールデヒドロゲナーゼ、デオキシニバレノールオキシダーゼ、トリコテセンデヒドロゲナーゼ、トリコテセンオキシダーゼ；およびマイコトキシン変換微生物、例えばＤＳＭ１１７９８；およびマイコトキシン結合物質、例えば微生物細胞壁または無機物質、例えばベントナイトまたはスメクタイトの群から選択されるよう、該添加物が開発される。例えば、そのような添加物の使用は、飼料または食品中に含有されうる、いかなる量のＣ−３原子上にヒドロキシル基を示す任意の量のトリコテセンおよびいずれかの追加的なマイコトキシン、例えばフザリウム毒素、エルゴタミン、オクラトキシンも、この飼料または食品を摂取する対象生物に対するマイコトキシンの有害な影響が存在しない程度まで確実に無毒化されることを、確実にしうる。

本発明の更なる用途は、本発明のアルコールデヒドロゲナーゼの少なくとも１つに加えて、タンパク質の分解に関与する少なくとも１つの酵素、例えばプロテアーゼ、又はデンプンもしくは繊維もしくは脂肪もしくはグリコーゲンの代謝に関与する少なくとも１つの酵素、例えばアミラーゼ、セルラーゼもしくはグルカナーゼ、および例えばヒドロラーゼ、脂肪分解酵素、マンノシダーゼ、オキシダーゼ、オキシドレダクターゼ、フィターゼまたはキシラナーゼを、更に含有する添加物である。

言うまでもなく、該添加物は、勿論、封入形態または被覆された形態で存在可能であり、この場合、標準的な方法、例えばＷＯ ９２／１２６４５に記載されている方法が使用されうる。封入または被覆により、該添加物を変質させることなく、特に、何ら分解されることも損傷されることもなく、使用されるべき場所へと輸送することが可能であり、それにより、該ポリペプチドは、動物の消化管内の場合のように、該殻が溶解した後で初めて効果を発揮し始め、例えば、酸性でありプロテアーゼに富みかつ嫌気性である環境中でさえも、より一層標的化された、より迅速かつより完全な、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンの分解を達成しうる。更に、封入または被覆により、該添加物におけるアルコールデヒドロゲナーゼの温度安定性を増強することも可能であり、この場合、例えば、飼料のためのペレット化プロセスにおける使用が改善される。

本発明の添加物は、トリコテセンマイコトキシン症、好ましくは、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンにより引き起こされるマイコトキシン症、特に例えばデオキシニバレノールマイコトキシン症の予防および／または治療のための化合物の製造のような多種多様な用途において使用されうる。そのようなマイコトキシン症は、ヒトおよび動物に対して重大な影響を及ぼす。予防の場合には、該添加物のそのような使用により、トリコテセン、特に、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセン、特にデオキシニバレノールを経口摂取したとしても、該毒素の無い又は低減した経口摂取の場合と本質的に同じレベルで、ヒトおよび動物の健康状態を維持することが可能である。マイコトキシン症の治療の場合には、そのような疾患の症状を軽減すること、特に、肝臓におけるＳＯＣＳ３濃度または血漿中のＩＧＦＡＬＳレベルおよび腸におけるクローディン濃度を正常化することが可能である。

更に、そのような使用により、家畜の生産性、特に飼料利用および体重増加を改善すること、ならびに死亡率を低下させることが可能である。

次に、実施形態および図面に基づいて本発明を説明する。

図１は配列番号１の活性化アルコールデヒドロゲナーゼおよび比較用対照（ＣＴＲ）に関するデオキシニバレノールの時系列変換を示す。 図２は配列番号１〜４の活性化アルコールデヒドロゲナーゼおよび比較用対照（ＣＴＲ）によるＤＯＮの時系列変換を示す。

［実施例１］：アルコールデヒドロゲナーゼの遺伝子のクローニングおよび精製
配列番号１〜４のアルコールデヒドロゲナーゼの、それぞれの宿主細胞のためのコドン最適化ヌクレオチド配列を、ＤＮＡ２．０から採用した。これは核酸レベルでは該配列の５’末端および３’末端に制限部位を含有し、アミノ酸レベルでは更にＣまたはＮ末端６×Ｈｉｓタグを含有していた。これらのヌクレオチド配列を大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）またはコマガテラ・パストリス（Ｋｏｍａｇａｔａｅｌｌａ ｐａｓｔｏｒｉｓ）における発現のための発現ベクター内に標準的な方法により組込み、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）またはコマガテラ・パストリス（Ｋ．ｐａｓｔｏｒｉｓ）内に形質転換し、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）またはコマガテラ・パストリス（Ｋ．ｐａｓｔｏｒｉｓ）において発現させた（Ｊ．Ｍ．Ｃｒｅｇｇ，Ｐｉｃｈｉａ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ，ｓｅｃｏｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，ＩＳＢＮ−１０：１５８８２９４２９３，２００７；Ｊ．Ｓａｍｂｒｏｏｋら，２０１２，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ４ｔｈ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ）。

配列番号１〜４を有するアルコールデヒドロゲナーゼを、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）における発現の場合には細胞ライセートから、そしてコマガテラ・パストリス（Ｋ．ｐａｓｔｏｒｉｓ）においては細胞間発現から、またはコマガテラ・パストリス（Ｋ．ｐａｓｔｏｒｉｓ）における細胞外発現の場合には培養上清から、ニッケルセファロースカラムによる標準的な方法を用いて、クロマトグラフィーにより選択的に強化した。該選択的強化溶出物を金属イオンおよびキノン補因子の存在下でインキュベートし、活性化した。この場合、「活性化」は、アルコールデヒドロゲナーゼが、結合した金属イオンおよびキノン補因子の両方を示すことを意味する。後記の実施例３〜７において、配列番号１〜４を有するアルコールデヒドロゲナーゼの酵素特性を決定するために、これらの活性化アルコールデヒドロゲナーゼを使用した。ブラッドフォード試薬（Ｓｉｇｍａ ＃ Ｂ６９１６）を使用して、総タンパク質濃度を測光法で測定した。この場合、マイクロプレート光度計（プレートリーダー，Ｂｉｏｔｅｋ，Ｓｙｎｅｒｇｙ ＨＴ）において５９５ｎｍの波長で吸光度を測定した。最大１５００μｇ／ｍｌまでの濃度のウシ血清アルブミン（ＢＳＡ，Ｓｉｇｍａ ＃Ａ４９１９）溶液を測定することによりブラッドフォードアッセイを用いて決定した検量線に基づいて、タンパク質濃度を確認した。

［実施例２］：配列同一性の決定
配列番号１〜４を有するアルコールデヒドロゲナーゼのアミノ酸配列の全長にわたる互いに対する配列同一性の割合（％）を、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ（ＮＣＢＩ，ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／）のホームページにおいて使用のために入手可能であるＢＬＡＳＴプログラム（Ｂａｓｉｃ Ｌｏｃａｌ Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ Ｓｅａｒｃｈ Ｔｏｏｌ）、特にＢＬＡＳＴＰを使用して決定した。これを使用して、Ａｌｔｓｃｈｕｌら，１９９７（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．（１９９７）２５：３３８９−３４０２）によるアルゴリズムにより、２以上の配列を互いに比較することが可能である。プログラム設定として、特に以下の基本設定を使用した：「最大標的配列」＝１００；「期待閾値」＝１０；「ワードサイズ」＝３；「マトリックス」＝ＢＬＯＳＯＭ６２；「ギャップコスト」＝「存在：１１；伸長（ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ）：１」；「計算調整」＝「条件付き構成スコアマトリックス調整」。該アミノ酸配列の互いに対する同一性（％）を表１に示す。

［実施例３］：Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンの変換
Ｃ−３上にヒドロキシル基を示すトリコテセン、特にＤＯＮ、ニバレノールおよびＴ−２毒素を変換する適合性を測定するために、実施例１に記載されているとおりに、配列番号１〜４を有するアルコールデヒドロゲナーゼをＣ末端６×Ｈｉｓタグと共に大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）において産生させた。

Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンを活性化アルコールデヒドロゲナーゼ、すなわち金属イオンとキノン補因子とを含有するアルコールデヒドロゲナーゼと接触させることにより、その量が減少した場合、変換が存在する。

各々の例において、２．０〜２．５の光学密度（ＯＤ６００ｎｍ）を有する１００ｍｌの大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）培養物を４℃での遠心分離により回収し、２０ｍｌのリン酸カリウムバッファーに再懸濁させた。細胞懸濁液を２０，０００ｐｓｉで３回のフレンチプレス処理により細胞溶解した。細胞ライセートを遠心分離により可溶性部分と不溶性部分とに分離した。上清を濾過滅菌し、アルコールデヒドロゲナーゼを、ニッケルセファロースカラムによる標準的な方法を用いて強化した。この後、１０キロダルトンのカットオフを有する特異的チューブでの透析によりバッファー交換を行った。得られた総タンパク質濃度をブラッドフォードアッセイにより測定した。

水溶液中のインキュベーションにより、キノン補因子および金属イオンをアルコールデヒドロゲナーゼに結合させた。ここでは、キノン補因子、例えばピロロキノリンキノン（ＰＣＣ、ＣＡＳ番号７２９０９−３４−３）、トリプトファントリプトフィルキノン（ＴＴＣ、ＣＡＳ番号１３４６４５−２５−３）、トパキノン（ＴＰＣ、ＣＡＳ番号６４１９２−６８−３）、リジンチロシルキノン（ＬＴＣ、ＣＡＳ番号１７８９８９−７２−５）およびシステイントリプトフィルキノン（ＣＴＣ、ＣＡＳ番号４００６１６−７２−０）を、存在するタンパク質の濃度に対し水溶液として約２０倍モル濃度過剰で加える。Ｌｉ^＋、Ｎａ^＋、Ｋ^＋、Ｍｇ^２＋、Ｃａ^２＋、Ｚｎ^２＋、Ｚｎ^３＋、Ｍｎ^２＋、Ｍｎ^３＋、Ｆｅ^２＋、Ｆｅ^３＋、Ｃｕ^２＋、Ｃｕ^３＋、Ｃｏ^２＋およびＣｏ^３＋、から選択される金属イオンとしてその塩の水溶液を使用する。特に示さない限り、通常、ＰＣＣ（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ ＃Ｄ７７８３）およびＣａ^２＋と共にアルコールデヒドロゲナーゼを使用し、５ｍＭ ＣａＣｌ_２溶液として活性化した。このようにして精製しそして活性化した酵素を、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンのインビトロ変換アッセイに使用した。特に示さない限り、「酵素」または「アルコールデヒドロゲナーゼ」なる語は、金属イオンとキノン補因子とを含有する適切に活性化されたアルコールデヒドロゲナーゼを意味すると常に理解されるべきである。

以下の成分を含有する水溶液中で変換アッセイを行った：１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５または１０％ Ｔｅｏｒｅｌｌ Ｓｔｅｎｈａｇｅｎ ｐＨ７．５；１ｍＭ フェナジンメトスルファート、ＰＭＳ（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ ＃Ｐ９６２５）、１ｍＭ メチレンブルー（Ｓｉｇｍａ ＃Ｍ９１４０）、１ｍＭ 補酵素Ｑ１０（Ｓｉｇｍａ ＃Ｃ９５３８）、１ｍＭ 補酵素Ｑ１（Ｓｉｇｍａ ＃Ｃ９５３８）および２０ｍＭ ナトリウムヘキサシアノフェラート（ＩＩＩ）ＰＦＣ（ＩＩＩ）（Ｆｌｕｋａ ＃６０３００）の群から選択される合成レドックス補因子；１０ｐｐｍ〜最大１００ｐｐｍのＣ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセン（所望の量の毒素基質ストック溶液を加えることによる）；ならびに１０ｎＭ〜１００ｎＭ、最大３００ｎＭの金属イオンとキノン補因子とを含有する配列番号１、２、３または４の活性化アルコールデヒドロゲナーゼ。特に示さない限り、通常、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌバッファー、レドックス補因子ＰＭＳ、ＤＯＮおよび配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼを使用する。各変換アッセイは１．５ｍｌ 褐色エッペンドルフ反応容器内で行った。反応混合物をサーモブロック内で３０℃で１２０分間まで、少なくとも４０分間インキュベートした。０、１０、２０、３０、４０分後に、各々の例において０．１ｍｌのサンプルを採取し、０．１ｍｌのメタノールと混合して−２０℃で保存するか、あるいはＬＣ−ＭＳ／ＭＳまたはＨＰＬＣにより直ちに分析した。

濾過滅菌した２０００ｐｐｍのＤＯＮ水溶液をＤＯＮ基質ストック溶液として使用した。この溶液を調製するために、結晶形態ＤＯＮ（Ｒｏｍｅｒ ＬａｂｓのＢｉｏｐｕｒｅ Ｓｔａｎｄａｒｄ，ａｒｔ．ｎｏ．００１０５０，少なくとも９８％の純度）を秤量し、溶解させた。

Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンおよびその変換代謝産物を定量するために、ＨＰＬＣ分析を行い、ここで、１５０ｍｍ×４．６ｍｍの寸法および５μｍの粒径を有するＰｈｅｎｏｍｅｎｅｘ Ｃ１８ Ｇｅｍｉｎｉ ＮＸカラムを使用するクロマトグラフィーにより物質を分離した。５ｍＭの酢酸アンモニウム濃度を有するメタノール／水混合物を溶離液として使用した。ＵＶシグナルを２２０ｎｍで記録し、評価した。ＬＣ−ＭＳ／ＭＳ分析による定量のために、１５０ｍｍ×４．６ｍｍの寸法および５μｍの粒径を有するＺｏｒｂａｘ ｅｃｌｉｐｓｅ Ｃ８カラムを使用するクロマトグラフィーにより物質を分離した。５ｍＭの酢酸アンモニウム濃度を有するメタノール／水混合物を溶離液として使用した。２２０ｎｍのＵＶシグナルを記録した。エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）をイオン化源として使用した。ＱＴｒａｐ／ＬＣ／ＭＳ／ＭＳ（三連四重極，ａｐｐｌｉｅｄ ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を「拡張モード」で使用して、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンを定量した。

線形範囲における変換線の負の勾配（すなわち経時的な毒性濃度の低下）を、アルコールデヒドロゲナーゼの活性に関する基準として用いた。残留活性を決定するために、種々のパラメーターに関する測定活性を、標準条件下（特に３０℃およびｐＨ７．５）で測定された基礎活性に対して適用し、通常は百分率として表した。図１は配列番号１の活性化アルコールデヒドロゲナーゼに関するＤＯＮの時系列変換を示し、図２は配列番号２〜４の活性化アルコールデヒドロゲナーゼを示す（図１Ｂ）。実時間に基づいてＤＯＮの濃度が低下したため、ＤＯＮの変換が生じることは図から明らかである。

図１は５０ｐｐｍ ＤＯＮおよび１ｍＭ ＰＭＳの存在下での、１００ｍＭ Ｔｒｉｓ ＨＣｌ（ｐＨ７．５）中の配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼによるＤＯＮの変換を示す。ＬＣ−ＭＳ／ＭＳ分析により測定結果を得（Ａ）、配列番号１〜４のアルコールデヒドロゲナーゼによるＤＯＮの変換を図２に示す。ＨＰＬＣ分析により測定結果を得た（Ｂ）。該試験においては、配列番号１〜４のアルコールデヒドロゲナーゼを除く変換アッセイの成分の全てを含有するＣＴＲを陰性対照として使用した。

キノン補因子の効率を比較するために、該変換アッセイにおいて、キノン補因子ＰＣＣ、ＴＴＣ、ＴＰＣ、ＬＴＣおよびＣＴＣで活性化された１０ｎＭの配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼ、１０ｐｐｍのＤＯＮならびに１ｍＭの合成レドックス因子ＰＭＳのそれぞれを１００ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）中で混合し、３０℃でインキュベートした。３０分後、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳによりＤＯＮ濃度を測定した。結果を表２に示す。

レドックス補因子の効率を比較するために、該変換アッセイにおいて、１０ｎＭの活性化酵素（配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼ）、１０ｐｐＭのＤＯＮおよびそれぞれ１ｍＭまたは２０ｍＭの試験用の合成レドックス因子を１００ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）中で混合し、３０℃でインキュベートした。３０分後、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳによりＤＯＮ濃度を測定した。結果を表２に示す。

該変換に対する活性化酵素中の金属イオンの影響を試験するために、配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼおよびＰＣＣを、各々の例において異なる金属イオン、すなわち、Ｍｇ^２＋、Ｃａ^２＋、Ｚｎ^２＋、Ｍｎ^２＋、Ｆｅ^２＋およびＣｕ^２＋を用いて、活性化した。該変換アッセイ物は、それぞれ１００ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）中に１０ｎＭの活性化アルコールデヒドロゲナーゼ、１０ｐｐｍのＤＯＮおよび１ｍＭのＰＭＳを含有し、これらを３０℃でインキュベートした。３０分後、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳによりＤＯＮ濃度を測定した。結果を表３に示す。

上述のＤＯＮ変換アッセイと同様にして、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示す他のトリコテセンを使用して変換アッセイを行った。これらのアッセイにおいては、５０ｐｐｍのＤＯＮの代わりに５０ｐｐｍのＴ−２毒素または５０ｐｐｍのニバレノールを使用した。金属イオンとキノン補因子とを含有する配列番号１〜４の４つ全てのアルコールデヒドロゲナーゼはＴ−２毒素およびニバレノールをも変換することが可能であった。これらの場合、使用した元の毒素の半分以上が３０分以内に変換された。

［実施例４］：活性領域の測定
異なる条件下でＤＯＮを変換する配列番号１〜４のアルコールデヒドロゲナーゼの能力を測定するために、配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼを一例として使用した。

実施例３に記載したとおりに、配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼを産生させ、Ｃａ^２＋およびＰＣＣで活性化した。１０℃〜５０℃の温度範囲および３．０〜９．０のｐＨ範囲にわたる酵素の活性を測定するために、１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）バッファーの代わりに１０％ Ｔｅｏｒｅｌｌ Ｓｔｅｎｈａｇｅｎバッファーを使用した。

種々の温度における活性を測定するための変換アッセイを、以下の成分を含有する水溶液中で行った：１０％ Ｔｅｏｒｅｌｌ Ｓｔｅｎｈａｇｅｎ（ｐＨ７．５）、１ｍＭ 合成レドックス補因子ＰＭＳ、５０ｐｐｍ ＤＯＮおよび１０ｎＭの配列番号１の活性化アルコールデヒドロゲナーゼ。該変換アッセイをサーモサイクラー（Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ）内で１０℃から５０℃までの温度勾配で６０分間までインキュベートした。０、１０、２０、３０、４０および６０分後、各々の例において０．０５ｍｌのサンプルを採取し、反応を停止させるために０．０５ｍｌのメタノールと混合し、−２０℃で保存した。実施例３に記載のとおりにＬＣ−ＭＳ／ＭＳのために該サンプルを調製し、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳにより分析した。実施例３に記載のとおりに、ＤＯＮの還元の経過を、各温度に関して決定し、活性を計算した。３０℃における変換線の線形範囲の勾配を基準値として用いて、その他の温度における残留活性を計算した。表４は温度（単位：℃）および関連残留活性（単位：％）を示す。驚くべきことに、配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼは広い温度範囲にわたって活性であることがここで示された。１０℃においては、４８％の残留活性が測定され、約５０℃においては、６７％の残留活性が測定された。

４．０〜９．０のｐＨ範囲における活性を測定するための変換アッセイを、以下の成分を含有する水溶液中で行った：１０％ Ｔｅｏｒｅｌｌ Ｓｔｅｎｈａｇｅｎ（ｐＨ４．０〜ｐＨ１０．０）、２０ｍＭ 合成レドックス補因子ＰＦＣ、１００ｐｐｍ ＤＯＮおよび２０ｎＭの配列番号１の活性化アルコールデヒドロゲナーゼ。該変換アッセイをサーモサイクラー内で３０℃で６０分間までインキュベートした。０、１０、２０、３０、４０および６０分後、各々の例において、０．０５ｍｌのサンプルを採取し、反応を停止させるために０．０５ｍｌのメタノールと混合し、−２０℃で保存した。実施例３に記載のとおりに、サンプルを希釈し、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳにより分析した。実施例３に記載のとおりに、ＤＯＮの還元の経過を各ｐＨ値に関して決定し、活性を計算した。ｐＨ７．５における変換線の線形範囲の勾配を基準値として用いて、その他の温度における残留活性を計算した。表５はｐＨ値および関連残留活性（７．５の基準ｐＨ値に対するＤＯＮ減少）を％で示す。

［実施例５］：温度安定性の測定
配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼの温度安定性を３０℃〜５５℃の範囲にわたって測定した。これを行うために、活性化アルコールデヒドロゲナーゼをサーモサイクラー（Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ）において特定の温度で、１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌバッファー（ｐＨ７．５）中で６０分間までインキュベートした。０、５、１０、１５、２０、３０、４０および６０分後、アルコールデヒドロゲナーゼのアリコートを採取し、実施例３に記載されているとおりにＤＯＮ変換アッセイにおいて活性を測定した。該変換アッセイ物は以下の成分を含有していた：１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、１ｍＭ ＰＭＳ、５０ｐｐｍ ＤＯＮ、１０ｎＭの配列番号１の活性化アルコールデヒドロゲナーゼ。実施例３に記載されているとおり、反応物をインキュベートし、活性を測定するためのサンプル採取を０、１０、２０、３０、４０および６０分後に行った。ＤＯＮの減少の経過を、各温度に関して、各インキュベーション時間に関して決定した。ＤＯＮ変換線の線形範囲の勾配を計算して、温度安定性を決定した。ｔ＝０分の時点におけるそれぞれの温度のＤＯＮ変換線の線形範囲の勾配を残留活性の計算のための基準値として用いた。表６は温度（単位：℃）、インキュベーション時間（単位：分）および関連残留活性（単位：％）を示す。配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼは、３０℃および３７℃の温度で１時間置いた場合に最も安定であった。これと比較して、該アルコールデヒドロゲナーゼは、４０℃において１時間置いた後でも尚７３％の残留活性を有していた。４５℃で３０分間置いた後では５０％の残留活性が測定された。驚くべきことに、５０℃で５分間置いた後でも、８４％の残留活性が検出された。

［実施例６］：ｐＨ安定性の測定
配列番号１の活性化アルコールデヒドロゲナーゼのｐＨ安定性をｐＨ４．０〜ｐＨ１０．０の範囲にわたって測定した。これを行うために、１０倍濃度の該活性化アルコールデヒドロゲナーゼ（１００ｎＭ）を１０％ Ｔｅｏｒｅｌｌ Ｓｔｅｎｈａｇｅｎバッファー（ｐＨ４．０〜ｐＨ１０．０）中で３０℃の温度で１２０分間まで置いた。０、６０および１２０分後、アルコールデヒドロゲナーゼのアリコートを採取し、変換アッセイにおいて活性を測定し、実施例３に記載されているとおりに、以下の成分を使用して３０℃で該アッセイを行った：１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、１ｍＭ ＰＭＳ、５０ｐｐｍ ＤＯＮ、１０ｎＭの配列番号１の活性化アルコールデヒドロゲナーゼ。活性を測定するためのサンプル採取を０、１０、２０、３０および４０分後に行った。ＤＯＮの減少の経過を、各ｐＨ値に関して、各時間に関して決定した。安定性を決定するために、ＤＯＮ変換線の線形範囲の勾配を各ｐＨ値に関してそれぞれの時間において計算した。ｔ＝０分の時点におけるそれぞれのｐＨ値のＤＯＮ変換線の線形範囲の勾配を後のインキュベーション時間の活性の計算のための基準値として用いた。表７はｐＨ値、インキュベーション時間（単位：分）および関連残留活性（単位：％）を示す。配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼは、ｐＨ５．０〜ｐＨ９．０において、６０分間のインキュベーションの後で安定であった。驚くべきことに、該アルコールデヒドロゲナーゼは酸性環境（ｐＨ５．０において活性喪失無し）において及び強アルカリ性環境において（ｐＨ９．０で１２０分間のインキュベーションの後で活性喪失無し）特に良好な安定性を示した。

［実施例７］：複合マトリックスにおけるＤＯＮの変換
合成レドックス補因子を外部から添加することなく複合マトリックスにおいてトリコテセンを変換する活性化アルコールデヒドロゲナーゼの能力を決定するために、配列番号１の活性化アルコールデヒドロゲナーゼを実施例３に記載のとおりに産生させ、複合マトリックスにおいてＤＯＮ変換アッセイを行った。ここでは、複合マトリックスは、とりわけ、ウシのルーメン液、ブタの空腸からの腸内容物、ブタの胃液、ヒトおよびブタの唾液、顆粒化した子ブタ用飼料（Ｆｅｒｋｅｌａｕｆｚｕｃｈｔｆｕｔｔｅｒ；ＦＡＦ）、および唾液、ルーメン液または腸内容物と混合された顆粒化した子ブタ用飼料と定義される。バッファー系との比較を行うために、実施例３に記載されているとおりにＴｒｉｓ−ＨＣｌを使用して検査を行った。子ブタ用飼料の場合、トウモロコシ、ダイズおよびオオムギに基づく標準飼料を使用した。

ルーメン液（ｐＨ５．９）におけるアルコールデヒドロゲナーゼ活性を測定するために、各々の例において１ｍｌの無菌ルーメン液濾液を、１００、２００および３００ｎＭの配列番号１の活性化アルコールデヒドロゲナーゼおよび５０ｐｐｍのＤＯＮに加えた。実施例３に記載されているとおりに水溶液中で対照バッチを試験した。該変換アッセイをサーモブロック内で３０℃で２４時間までインキュベートした。０、０．５、１．０、５．０および２４．０時間後にサンプルを採取した。この場合、各回に０．１ｍｌのサンプルを採取し、０．１ｍｌのメタノールで反応を停止させた。サンプルを−２０℃で保存し、解凍し、エッペンドルフ卓上遠心機で１３，０００ｒｐｍで１０分間遠心分離し、０．２μＭ Ｓｐａｒｔａｎフィルターで濾過滅菌した。ＬＣ−ＭＳ／ＭＳのために、サンプルを実施例３に記載のとおりに希釈し、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳにより分析した。ｔ＝０時間の時点でのＤＯＮの濃度を、後続の値に関する基準値（１００％）として用いた。表８は、ｔ＝０時間の時点に対する、ある時点で測定されたＤＯＮ濃度の百分率を示す。Ｔｒｉｓ−ＨＣｌバッファー中の活性に関しては、外部から添加された合成レドックス補因子の存在が必要である。なぜなら、ＤＯＮの変換はゆっくりと生じ、３００ｎＭのアルコールデヒドロゲナーゼ濃度で２４時間後に初めて検出可能であったからである。驚くべきことに、５．９のｐＨ値の無菌ルーメン液濾液中で外部から合成レドックス補因子を添加することなくＤＯＮが変換されることがここで実証された。これは、天然レドックス補因子として働く物質がルーメン液中に存在することを明らかに示している。３００ｎＭの濃度では、５時間のインキュベーションの後の該調製物中に初期ＤＯＮ量の僅か４２％が含有されているに過ぎなかった。２４時間のインキュベーションの後、２００ｎＭを超えるアルコールデヒドロゲナーゼ濃度でＤＯＮは少量しか検出可能でない。

混合飼料（Ｆｕｔｔｅｒｂｒｅｉ）を含有しない、約３のｐＨ値を有するブタ胃液、約６のｐＨ値を有するブタ腸内容物ならびにブタおよびヒト唾液におけるアルコールデヒドロゲナーゼ活性を測定するために、３００ｎＭの活性化アルコールデヒドロゲナーゼ配列番号１および約２０ｐｐｍのＤＯＮを、各々の例において、１ｍｌの胃液（濾過滅菌したもの）、１ｍｌの粥状腸内容物または１ｍｌの唾液と混合した。陰性対照として、２０ｐｐｍのＤＯＮと共に消化流体のみを含有するアッセイ物を含め、陽性対照として、２０ｍＭの合成レドックス補因子ＰＦＣ（ＩＩＩ）を含む全成分を含有する変換アッセイを用いた。０、３．０、５．０および２４．０時間後にサンプルを採取し、ここでは、各回に０．１ｍｌのサンプルを採取し、０．１ｍｌのメタノールで反応を停止させた。サンプルを−２０℃で保存し、解凍し、エッペンドルフ卓上遠心機で１３，０００ｒｐｍで１０分間遠心分離し、濾過滅菌（０．２μＭ Ｓｐａｒｔａｎフィルター）した。ＬＣ−ＭＳ／ＭＳのために、サンプルを溶離液中で１：１０で希釈し（実施例３を参照されたい）、実施例３と同様にしてＬＣ−ＭＳ／ＭＳにより分析した。表９は、サンプル採取の時点で測定されたそれぞれのＤＯＮ濃度を示す。驚くべきことに、合成レドックス補因子が外部から添加されることなく、唾液中のＤＯＮの減少が生じた（種を問わない）。これは、アルコールデヒドロゲナーゼ配列番号１によるＤＯＮの変換のための天然レドックス補因子として適した物質がヒトおよびブタの唾液分泌物中に存在することを明らかに示している。混合飼料を含有しない純粋な胃液においてはＤＯＮ濃度の実質的な低下は測定されなかった。腸内容物においては、合成レドックス補因子を加えることによって初めてＤＯＮ濃度の低下が生じた。

子ブタ用飼料におけるアルコールデヒドロゲナーゼの活性を測定するために、１００ｍｇの子ブタ用飼料を、それぞれ４００μｌの１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌバッファー（ｐＨ７．５）、４００μｌのブタ唾液、４００μｌの無菌ブタ胃液または４００μｌのブタ腸内容物と混合した。これらの子ブタ用飼料懸濁液を４℃で一晩置いた。この後、約２０ｐｐｍのＤＯＮ、および／または３００ｎＭの配列番号１の活性化アルコールデヒドロゲナーゼ、および／または２０ｍＭの合成レドックス補因子ＰＦＣ（ＩＩＩ）を全てのサンプルに加えた。アルコールデヒドロゲナーゼを含有しない調製物および外部合成レドックス補因子を含有しない調製物を陰性対照として使用した。添加されたアルコールデヒドロゲナーゼおよび合成レドックス補因子を含有する調製物を陽性対照として使用した。０、３．０、５．０および２４．０時間後にサンプルを採取した。各回に１つのサンプル全体を使用した。該サンプルに関しては、５００μｌのメタノールを加え、ついで３００ｒｐｍのシェーカー上で３０分間の均質化を行った。この後、該サンプルを１５分間遠心分離し（エッペンドルフ卓上遠心機、１３，０００ｒｐｍ）、上清を０．２μＭ Ｓｐａｒｔａｎフィルターを介してシリンジで濾過した。上清を−２０℃で保存し、解凍し、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳのために溶離液中で１：１０で希釈し、実施例３に記載のとおりにＬＣ−ＭＳ／ＭＳにより分析した。

表１０は、それぞれの時点でサンプル中に存在していたＤＯＮの濃度を示す。外部合成レドックス補因子の非存在下でＤＯＮ濃度が低下し続けているので、子ブタ用飼料バッファー混合物には、外部から添加された合成レドックス補因子の役割を担いうる物質が存在していた。上記のとおり、外部合成レドックス補因子の非存在下では該バッファーにおいてＤＯＮ変換は測定され得なかったので、これらの物質は、子ブタ飼料に由来する。外部合成レドックス補因子の存在下では、子ブタ用飼料バッファー混合物におけるＤＯＮの変換は、比較すると、より迅速に生じる。

子ブタ飼料と唾液との混合物においても、アルコールデヒドロゲナーゼは、外部合成レドックス補因子の存在に非依存的に活性を示したが、外部合成レドックス補因子を含有する変換アッセイにおいては、より迅速なＤＯＮの減少が生じた。

驚くべきことに、子ブタ用飼料混合物における配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼは、外部から合成レドックス補因子を添加しなくても活性である。子ブタ用飼料を胃液に加えることにより、一方においては、胃液のｐＨが上昇し、他方においては、外部合成レドックス補因子の代わりとなりうる天然に存在するレドックス補因子が子ブタ用飼料から放出された。腸内容物においては、外部合成レドックス補因子が変換アッセイに加えられた場合にのみ、アルコールデヒドロゲナーゼの活性が確認された。

Claims (21)

1. Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示す少なくとも１つのトリコテセンの変換のための、金属イオンとキノン補因子とを含有する配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼ、またはそれに加えて、少なくとも８０％、好ましくは８６％、特に好ましくは少なくとも８９％の配列同一性を示す機能的変異体、および少なくとも１つのレドックス補因子の使用。
2. 機能的変異体のアミノ酸配列が配列番号２〜４の群から選択されることを特徴とする、請求項１に記載の使用。
3. キノン補因子が、ＰＣＣ、ＴＴＣ、ＴＰＣ、ＬＴＣおよびＣＴＣの群から選択される、好ましくはＰＣＣであることを特徴とする、請求項１または２に記載の使用。
4. キノン補因子が、Ｌｉ^＋、Ｎａ^＋、Ｋ^＋、Ｍｇ^２＋、Ｃａ^２＋、Ｚｎ^２＋、Ｚｎ^３＋、Ｍｎ^２＋、Ｍｎ^３＋、Ｆｅ^２＋、Ｆｅ^３＋、Ｃｕ^２＋、Ｃｕ^３＋、Ｃｏ^２＋およびＣｏ^３、好ましくはＣａ^２＋およびＭｇ^２＋の群から選択される少なくとも１つの金属イオンによってアルコールデヒドロゲナーゼに結合されることを特徴とする、請求項１、２または３に記載の使用。
5. 少なくとも１つのレドックス補因子が、ＰＭＳ、ＰＭＳ誘導体、カリウムヘキサシアノフェラート（ＩＩＩ）、ナトリウムヘキサシアノフェラート（ＩＩＩ）、シトクロムＣ、補酵素Ｑ１、補酵素Ｑ１０、メチレンブルーおよびＴＭＰＤ、好ましくはＰＭＳ、補酵素Ｑ１および補酵素Ｑ１０の群から選択されることを特徴とする、請求項１〜４のいずれか１項に記載の使用。
6. 食品および飼料、特にブタ、家禽、ウシ、ウマ、魚類、水産養殖および家畜用の飼料における、ならびに食品および飼料の製造または加工に使用される植物ベース原料におけるＣ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンの変換が行われることを特徴とする、請求項１〜５のいずれか１項に記載の使用。
7. Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示す少なくとも１つのトリコテセンを、金属イオンとキノン補因子とを含有する配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼ、または少なくとも８０％、好ましくは少なくとも８６％、特に好ましくは少なくとも８９％の配列同一性を更に示す機能的変異体と、少なくとも１つのレドックス補因子および水、そして必要に応じて少なくとも１つの賦形剤と共に接触させることを特徴とする、トリコテセンの酵素利用変換のための方法。
8. 機能的変異体のアミノ酸配列が配列番号２〜４の群から選択されることを特徴とする、請求項７に記載の方法。
9. Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンが、５℃〜５５℃、好ましくは１０℃〜５０℃、特に好ましくは２８℃〜４５℃の温度で変換される、請求項７または８に記載の方法。
10. Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示す少なくとも１つのトリコテセンを、金属イオンとキノン補因子とを含有するアルコールデヒドロゲナーゼ、または少なくともその機能的変異体と、レドックス因子、水、そして必要に応じて賦形剤と共に、少なくとも１分間、好ましくは少なくとも５分間、特に好ましくは少なくとも６０分間にわたって接触させることを特徴とする、請求項７、８または９に記載の方法。
11. キノン補因子が、ＰＣＣ、ＴＴＣ、ＴＰＣ、ＬＴＣおよびＣＴＣの群から選択される、好ましくはＰＣＣであることを特徴とする、請求項７〜１０のいずれか１項に記載の方法。
12. キノン補因子が、Ｌｉ^＋、Ｎａ^＋、Ｋ^＋、Ｍｇ^２＋、Ｃａ^２＋、Ｚｎ^２＋、Ｚｎ^３＋、Ｍｎ^２＋、Ｍｎ^３＋、Ｆｅ^２＋、Ｆｅ^３＋、Ｃｕ^２＋、Ｃｕ^３＋、Ｃｏ^２＋およびＣｏ^３＋、好ましくはＣａ^２＋およびＭｇ^２＋の群から選択される少なくとも１つの金属イオンによってアルコールデヒドロゲナーゼに結合されることを特徴とする、請求項７〜１１のいずれか１項に記載の方法。
13. 少なくとも１つのレドックス補因子が、ＰＭＳ、ＰＭＳ誘導体、カリウムヘキサシアノフェラート（ＩＩＩ）、ナトリウムヘキサシアノフェラート（ＩＩＩ）、シトクロムＣ、補酵素Ｑ１、補酵素Ｑ１０、メチレンブルー、ＴＭＰＤ、好ましくはＰＭＳ、補酵素Ｑ１および補酵素Ｑ１０の群から選択されることを特徴とする、請求項７〜１２のいずれか１項に記載の方法。
14. 金属イオンとキノン補因子とを含有する配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼ、または少なくとも８０％、好ましくは少なくとも８６％、特に好ましくは少なくとも８９％の配列同一性を更に示す機能的変異体、そして必要に応じて更に、レドックス補因子および少なくとも１つの賦形剤からなる群から選択される少なくとも１つの追加的成分を含有することを特徴とするトリコテセン変換添加物。
15. 配列番号２〜４の群から選択される、配列番号１のアルコールデヒドロゲナーゼの機能的変異体を含有することを特徴とする、請求項１４に記載の添加物。
16. ＰＣＣ、ＴＴＣ、ＴＰＣ、ＬＴＣおよびＣＴＣの群から選択される、好ましくはＰＣＣであるキノン補因子を含有することを特徴とする、請求項１４または１５に記載の添加物。
17. Ｌｉ^＋、Ｎａ^＋、Ｋ^＋、Ｍｇ^２＋、Ｃａ^２＋、Ｚｎ^２＋、Ｚｎ^３＋、Ｍｎ^２＋、Ｍｎ^３＋、Ｆｅ^２＋、Ｆｅ^３＋、Ｃｕ^２＋、Ｃｕ^３＋、Ｃｏ^２＋およびＣｏ^３＋、好ましくはＣａ^２＋およびＭｇ^２＋の群から選択される少なくとも１つの金属イオンによってアルコールデヒドロゲナーゼに結合されるキノン補因子を含有することを特徴とする、請求項１４、１５または１６に記載の添加物。
18. レドックス補因子として、合成レドックス補因子が、ＰＭＳ、ＰＭＳ誘導体、カリウムヘキサシアノフェラート（ＩＩＩ）、ナトリウムヘキサシアノフェラート（ＩＩＩ）、シトクロムＣ、補酵素Ｑ１、補酵素Ｑ１０、メチレンブルーおよびＴＭＰＤ、好ましくはＰＭＳ、補酵素Ｑ１および補酵素Ｑ１０の群から選択されることを特徴とする、請求項１４〜１７のいずれか１項に記載の添加物。
19. 賦形剤が、不活性担体、ビタミン、ミネラル物質、植物起源（ｐｈｙｔｏｇｅｎｅｔｉｃ）物質、酵素、およびマイコトキシンの解毒のための追加的成分、例えばマイコトキシン分解酵素、特にアフラトキシン−オキシダーゼ、エルゴタミンヒドロラーゼ、エルゴタミンアミダーゼ、ゼアラレノンエステラーゼ、ゼアラレノンラクトナーゼ、ゼアラレノンヒドロラーゼ、オクラトキシンアミダーゼ、フモニシンアミノトランスフェラーゼ、フモニシンカルボキシトランスフェラーゼ、アミノポリオールアミンオキシダーゼ、デオキシニバレノールエポキシドヒドロラーゼ、デオキシニバレノールデヒドロゲナーゼ、デオキシニバレノールオキシダーゼ、トリコテセンデヒドロゲナーゼ、トリコテセンオキシダーゼ；およびマイコトキシン変換微生物、例えばＤＳＭ１１７９８；およびマイコトキシン結合物質、例えば微生物細胞壁または無機物質、例えばベントナイトの群から選択されることを特徴とする、請求項１４〜１８のいずれか１項に記載の添加物。
20. 封入または被覆形態で存在することを特徴とする、請求項１４〜１９のいずれか１項に記載の添加物。
21. トリコテセンマイコトキシン症、好ましくは、Ｃ−３原子上にヒドロキシル基を示すトリコテセンにより引き起こされるマイコトキシン症、特に例えばデオキシニバレノールマイコトキシン症の予防および／または治療のための化合物の製造のための、請求項１４〜２０のいずれか１項に記載の少なくとも１つの添加物の使用。

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